Upload
ledat
View
221
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
LIETUVOS SVEIKATOS MOKSLŲ UNIVERSITETO
VETERINARIJOS AKADEMIJA
VETERINARIJOS FAKULTETAS
UŽKREČIAMŲJŲ LIGŲ KATEDRA
Jolanta Tammi
Audinių prieinkstinių liaukų histopatologinis tyrimas
Histopathological research of mink adrenal glands
MAGISTRO BAIGIAMASIS DARBAS
Darbo vadovas: doc. Nomeda Juodžiukynienė
KAUNAS 2014
2
PATVIRTINIMAS APIE ATLIKTO DARBO SAVARANKIŠKUMĄ
Patvirtinu, kad įteikiamas magistro baigiamasis darbas „Audinių prieinkstinių liaukų
histopatologinis tyrimas“
1. Yra atliktas mano pačios;
2. Nebuvo naudotas kitame universitete Lietuvoje ir užsienyje;
3. Nenaudojau šaltinių, kurie nėra nurodyti darbe, ir pateikiu visą panaudotos
literatūros sąrašą.
2014- 01 -16 Jolanta Tammi (parašas)
PATVIRTINIMAS APIE ATSAKOMYBĘ UŽ LIETUVIŲ
KALBOS TAISYKLINGUMĄ ATLIKTAME DARBE
Patvirtinu lietuvių kalbos taisyklingumą atliktame darbe.
2014- 01 -16 Jolanta Tammi (parašas)
MAGISTRO BAIGIAMOJO DARBO
VADOVO IŠVADOS DĖL DARBO GYNIMO
2014- 01 -16 doc. Nomeda Juodžiukynienė
(parašas)
MAGISTRO BAIGIAMASIS DARBAS
APROBUOTAS KATEDROJE
2014- 01 -16 prof. habil. dr. S. Petkevičius (katedros vedėjo vardas pavardė) (parašas)
Magistro baigiamasis darbas yra įdėtas į ETD IS
(gynimo komisijos sekretorės (riaus) parašas)
Magistro baigiamojo darbo recenzentas
(vardas, pavardė) (parašas)
Magistro baigiamųjų darbų gynimo komisijos įvertinimas:
(data) (gynimo komisijos sekretorės (-riaus) vardas, pavardė) (parašas)
3
TURINYS
SUMMARY ......................................................................................................................................... 4
SANTRAUKA ..................................................................................................................................... 5
ĮVADAS............................................................................................................................................... 6
1. TRUMPA AUDINIŲ PRIEINKSTINIŲ LIAUKŲ ANATOMIJA, HISTOLOGIJA IR
FIZIOLOGIJA ..................................................................................................................................... 7
1.1 Audinių ir šeškų prieinsktinių liaukų anatomija ............................................................................ 7
1.2 Histologija ir fiziologija ................................................................................................................. 8
2. AUDINIŲ PRIEINKSTINIŲ LIAUKŲ PAKITIMAI .................................................................. 11
2.1 Prieinkstinių liaukų žievės atrofija ............................................................................................... 11
2.2 Prieinkstinių liaukų žievės hipertrofija ........................................................................................ 12
2.3 Prieinkstinių liaukų hiperemija .................................................................................................... 13
2.4 Prieinkstinių liaukų hemosiderozė ............................................................................................... 14
2.5 Amiloidozė ................................................................................................................................... 15
2.6 Navikai ......................................................................................................................................... 16
3. TYRIMO MEDŽIAGA IR METODAI ......................................................................................... 17
3.1 Tyrimo medžiaga ......................................................................................................................... 17
3.2 Patologinės medžiagos paruošimas dažymui ............................................................................... 17
3.3 Tyrimo metodai ............................................................................................................................ 17
4. TYRIMO REZULTATAI .............................................................................................................. 19
4.1 Histopatologinis tyrimas .............................................................................................................. 19
4.2.1 Bendras patologijų dažnumas ................................................................................................... 24
4.2.2 Hemosiderozė audinių prieinkstinėse liaukose ......................................................................... 26
4.2.3 Plazmocitų infiltracija prieinkstinėse liaukose ......................................................................... 27
4.2.4 Prieinkstinių liaukų žievės hipertrofija ..................................................................................... 30
4.2.5 Prieinkstinių liaukų žievės lipidozė .......................................................................................... 31
4.2.6 Prieinkstinių liaukų žievės nekrozė ........................................................................................... 32
4.2.7 Papildomas žievės mazgelis ...................................................................................................... 34
REZULTATŲ APTARIMAS ............................................................................................................ 35
IŠVADOS .......................................................................................................................................... 37
LITERATŪROS SĄRAŠAS ............................................................................................................. 38
4
SUMMARY
Theme: Histopathological research of mink adrenal glands
Study object: adrenal gland histological samples (preparations) of 6-month-old minks from
farm X.
Venue of performance: in Pathology Center of the Veterinary Academy of the Lithuanian
University of Health Sciences
Volume of the paper: the total volume of the work comprises 41,i.e. 31 picture.
The aim of the research: to evaluate histomorphologic changes of mink adrenal glands.
Tasks of the work:
1. to make histological and histochemical analysis of samples.
2. to evaluate histopathologies of mink adrenal glands.
Research methods: during the routine autopsy was taken pathological material of adrenal
glands (n = 40) of 40 minks, which was fixed 10 per cent with neutral formalin solution, and
samples dyeing with hematoxylin eosin and Congo red were carried out. Statistical evaluation of the
survey data carried out using Microsoft Excel (2010) program. Calculated the frequency of the
appearance of various pathologies, their distribution in the cortex and core (in percent). Also, has
been assessed the distribution of pathology in cortex areas and their frequency of occurrence
percentage (in percent).
The most important conclusions :
1. An analysis of 40 male minks adrenal glands histological results showed that 92 per cent.
analyzed samples demonstrate a change.
2. The largest part of the pathological changes consist of infiltration by plasmocytes (70
percent.) and hemosiderosis (17 percent.).
3. The smallest part of the pathological changes consist lipidosis (5 percent.), necrosis (2
percent.) hypertrophy (2 percent.) and additional cortex nodule (2 percent).
4. After histochemical study of adrenal glands, protein amyloid accumulation in adrenal
glands was not found.
Key words: mink, adrenal glands, andrenal cortex, adrenal medulla, pathologies of adrenal.
5
SANTRAUKA
Tema : Audinių prieinkstinių liaukų histopatologinis tyrimas.
Tyrimo objektas: X ūkio 6 mėnesių amžiaus audinių prieinkstinių liaukų histologiniai
preparatai.
Atlikimo vieta: Lietuvos Sveikatos Mokslų Universiteto Veterinarijos Akademijos
Patologijos centras.
Darbo apimtis: 41 puslapis, naudoti 43 literatūros šaltiniai, 31 paveikslas.
Tyrimo tikslas: Įvertinti audinių prieinkstinių liaukų histomorfologinius pokyčius.
Tyrimo uždaviniai:
1. Atlikti histologinį ir histocheminį mėginių tyrimus.
2. Įvertinti audinių prieinkstinių liaukų histopatologijas.
Tyrimo metodai: Rutininio skrodimo metu buvo paimta 40 audinių prieinkstinių liaukų
pataloginė medžiaga (n=40), fiksuota 10 proc. neutraliu formalino tirpalu, atliktas mėginių
dažymas hematoksilinu eozinu ir Kongo raudonuoju. Histologinio tyrimo metu įvertintos
prieinkstinių liaukų patologijos. Tyrimo duomenų statistinis įvertinimas atliktas, naudojant
Microsoft Exel (2010) programą. Paskaičiuotas įvairių patologijų pasireiškimo dažnumas, jų
pasiskirstymas žievėje ir šerdyje (proc.). Taip pat įvertinta, kaip pasiskirstė patologijos žievės
zonose, jų pasireiškimo dažnumas procentais.
Išvados:
1. Atlikus histologinį tyrimą pakitusių audinių antinksčių rasta 92 proc.
2. Atlikus histocheminį prieinkstinių liaukų tyrimą, baltymo amiloido sankaupų prieinkstinėse
liaukose nerasta.
3. Didžiausią dalį patologinių pokyčių sudaro plazmocitų infiltracija (70 proc.) ir
hemosiderozė (17 proc.).
4. Mažiausią dalį patologinių pokyčių sudaro lipidozė (5proc.), nekrozė (2proc.), hipertrofija
(2proc.) ir papildomas žievės mazgelis (2 proc.).
Raktažodžiai : audinė, prieinkstinės liaukos, prieinkstinės liaukos žievė, prieinkstinės liaukos
šerdis, antinksčių patologijos
6
ĮVADAS
Kailinė žvėrininkystė pradėta plėtoti Amerikoje 19 amžiaus pabaigoje, o Europoje jau 20
amžiaus pradžioje. Iki šių dienų kailinė žvėrininkystė smarkiai patobulėjo kurdama vis tobulesnius
žvėrelių auginimo metodus, užtikrindama gyvūnų gerovės laikymo reikalavimus atitinkančias
laikymo sąlygas, ligų kontrolę ir veisimą. Laikui bėgant ir didėjant kailiukų poreikiui rinkoje,
Lietuvoje sparčiai plečiasi kailinės žvėrininkystės ūkio šaka. Kailinių žvėrelių ūkių Lietuvoje jau
yra apie 200. Audinių auginimas yra ne tik daug investicijų, bet ir nemažai specialių žinių
reikalaujantis verslas.
Kiekvienas audinių ūkis vis tobulina auginimo ir veisimo technologijas, siekdamas užauginti
kuo vešlesnio ir vertingesnio kailiuko žvėrelius. Su naujomis technologijomis ateina ir įvairių
preparatų, skatinančių kailiuko augimą, naudojimas, maisto papildų naudojimas, naujų racionų
sudarymas. Didesnis gyvūnėlių skaičius didina užkrečiamųjų ligų plitimo riziką, nepakankamos
priežiūros riziką, didesnį veiksnių, sukeliančių stresą, atsiradimą, o to pasekoje ir organizmo
funkcijų sutrikimus, dėl kurių pasireiškia patologiniai organų ir audinių pokyčiai.
Prieinkstinės liaukos, jų fiziologija ir svarba buvo aprašyta jau daugiau nei prieš 500 metų. (
Moreira et al., 2002 ). Prieinkstinės liaukos turi įtakos ne tik kailiuko kokybei, bet išskirdamos
hormonus atlieka ir gyvybiškai svarbias organizmo funkcijas, tokias kaip homeostazės palaikymas,
kraujo spaudimo reguliavimas, elektrolitų balanso palaikymas ir kt. Kadangi prieinkstinės liaukos
yra vienas iš labiausiai pažeidžiamų organų veikiant stresiniams ir toksiniams faktoriams,
ankstyvas patologinių pokyčių ir jų priežasčių nustatymas, gali padėti išvengti audinukų gaišimo,
bei kailiuko nuskurdimo. Lietuvoje audinių prieinkstinės liaukos mažai tirtos, todėl yra svarbu
atlikti pradinį audinių antinksčių histopatologinį tyrimą, kuris galėtų būti pagrindas tolimesniems
tyrimams šioje srityje.
Darbo tikslas: Įvertinti audinių prieinkstinių liaukų histomorfologinius pokyčius.
Darbo uždaviniai:
1. Atlikti histologinį ir histocheminį mėginių tyrimus.
2. Įvertinti audinių prieinkstinių liaukų histopatologijas.
7
1. TRUMPA AUDINIŲ PRIEINKSTINIŲ LIAUKŲ ANATOMIJA,
HISTOLOGIJA IR FIZIOLOGIJA
Prieinkstinės liaukos (lot. glandulae adrenales) – tai porinė, žemės riešuto formos, rausvos
spalvos, endokrininė liauka (Garcia et al., 2006). Šios liaukos dalyvauja organizmo atsake į ūmų ir
lėtinį stresą, reguliuodamos kraujo spaudimą, širdies ritmą, bronchodiliataciją, gliukozės kiekį
kraujyje ir elektrolitų balansą (Sammerson et al., 2007).
1.1 Audinių ir šeškų prieinkstinių liaukų anatomija
Prieinkstinės liaukos guli kraniomedialiniame inkstų krašte (Jensen et al., 2011). Kairiosios
prieinkstinės liaukos dydis siekia 6 – 8 mm. Ji glaudžiasi pilvinei aortai iš kairės, kaudaliai a.
superior mesenteric, medialiai kairiojo inksto proksimalinio galo. Dešinioji liauka 8 – 11 mm, guli
kranialiau, nei karioji prieinkstinė liauka, ventraliai posterior v. cavan (Lewington et al., 2007).
1 pav. Prieinkstinių liaukų topografija (Kenneth et al., 2000)
Audinių prieinkstinės liaukos mažos, jų anatominė sandara suskirstyta į dvi stambias zonas –
žievę ir šerdį. Abi prieinkstines liaukas supa jungiamojo audinio kapsulė išvarstyta arterijomis.
Arterijos atsišakoja iš trijų stambesnių arterijų:
a) iš inferior phrenic arterijos atsišakoja arteria superior suprarenalis;
b) iš pilvinės aortos – arteria suprarenalis;
c) iš inkstų arterijos – arteria inferior suprarenalis;
8
Iš kapsulės kraujagyslės tęsiasi iki šerdies ir atsiveria į šerdies kraujagyslių tinklą ( Rosol et
al., 2001). Per žievę praeina dviejų rūšių arterijos: vienos šakodamosis maitina žievę, kitos
nesišakoja, tik perveria žievę ir nueina į šerdį- tai šerdį maitinančios arterijos.Venulės suformuoja
centrinę veną, iš kurios išeina vena suprarenalis (Sammerson et al., 2007).
1.2 Histologija ir fiziologija
Kiekviena liaukos dalis turi skirtingą embrioninę kilmę.
Žievė. Žievė susiformuoja iš mezodermos ir sudaro 75 proc. organo masės. Mėsėdžiams
būdinga kreminė – geltona prieinkstinių liaukų spalva, o galvijams ir kiaulėms – mėsos spalva.
Spalvos intensyvumas priklauso nuo lipidų kiekio (Klein et al., 2013). Pagal ląstelių išsidėstymą ir
gaminamus hormonus, išskiriamos trys žievės sritys:
a) Išorinė zona - kamuolinė (zona glomerulosa). Sudaro 15 proc. žievės. Šios srities
ląstelės sudaro arkadas, nusitęsiančias į pluoštinę zoną. Zona glomerulosa ląstelės stulpiškos,
citoplazma acidofiliška, su smulkiais lipidų lašeliais, siūliškomis mitochondrijomis ir lygiuoju
endoplazminiu tinklu. Ląstelės turi po vieną ar du apskritus branduolėlius. Liaukos ląstelės išskiria
mineralkortikoidus, kurie atlieka svarbų vaidmenį organizmo homeostazės palaikyme.
Mineralkortikoidai veikdami inkstus, seilių ir prakaito liaukas stimuliuoja Na+ reabsorbciją, K+
ekskreciją. Veikdami inkstus taip pat stimuliuoja H+ ekskreciją. Kamuolinės srities ląstelių veikla
reguliuojama renino – angiotenzino sistemos (Thomas et al., 2001).
b) Vidurinė zona – pluoštinė (zona fasciculata) yra storiausia – sudaro apie 75 proc.
visos žievės. Pluoštinės dalies ląstelės kubinės ir daugiakampės, sukibusios tarpusavyje po dvi
ląsteles sudaro stygas, išsidėsto pluoštais šerdies link. Tarp sukibusių ląstelių - jungiamasis audinys
ir kapiliarai (Ramos et al., 1970). Ląstelės labiau išsipūtusios, nei kamuolinės zonos ląstelės, gausiai
pripildytos lipidų. Literatūroje apibūdinamos, kaip spongiocitai. Gamina gliukokortikoidus -
kortizolį, kortikosteroną, hidrokortizoną, taip pat išskiria nedaug androgenų. Gliukokortikoidai
veikia angliavandenių apykaitą (gliukoneogenezė, mažėja gliukozės panaudojimas), proteinų
katabolizmą, lipidų metabolizmą (lipolitinis). Sąlygoja hiperglikemiją, padidėjusią gliukozės
produkciją, taip pat slopina insulino poveikį ir imuninę sistemą, žaizdų gijimą (kolageno sintezė),
imuninę sistemą (Sammerson et al., 2007).
c) Vidinė - tinklinė zona (zona reticularis), arčiausiai šerdies esanti žievės dalis.
Sudaro 10 proc. žievės. Šios srities ląstelės tarpusavyje sukibusios į grandines, sudaro tinklą.
9
Ląstelių citoplazma mažiau acidofiliška, nei kamuolinės zonos ląstelių, jose mažesnis lipidų kiekis.
Smulkiausios ląstelės įvairios formos, su piknotiškais branduoliais. Ląstelės atsakingos už hormonų
(dehidroepiandrosterono ir androsterono) išskyrimą, kurie artimi lytinių liaukų išskiriamam
testosteronui (Sjaastad et al., 2010).
Nors prieinkstinių liaukų žievė gamina per 50 įvairiausių steroidų, kortizolio ir aldosterono yra
daugiausia, ir jie fiziologiškai labiausiai aktyvūs. Gliukokortikoidų išsiskyrimą reguliuoja
adrenokortikotropinis hormonas (ACTH), kurį gamina priekinės hipofizės dalies bazofilinės
ląstelės. Aldosterono gamybą reguliuoja renino – angiotenzino sistema. Gliukokortikoidai
stimuliuoja gliukoneogenezę, mažina gliukozės sunaudojimą ląstelėse, mobilizuoja amino ir riebalų
rūgštis, slopina insulino poveikį, skatina ketogenezę, didina eritrocitų ir trombocitų kiekį, slopina
uždegiminius procesus ( Reingardienė, 2002).
2. pav. Prieinkstinė liauka ( Bossen, 2003 )
Šerdis. Šerdis susiformuoja iš neuroektodermos ir gamina katecholaminus – adrenaliną ir
noradrenaliną, kurie atsakingi už organizmo atsaką į stresą. Šerdis sudaro 25 proc. liaukos.
Adrenalinas ir noradrenalinas aktyvina organizmą, parengia jį sudėtingai užduočiai vykdyti,
prisitaikyti prie netikėtų sąlygų. Veikimo principas – „kaukis arba traukis“ (Klein et al., 2013).
Literatūroje šerdies ląstelės apibūdinamos dvejopai. Pasak A. Sammerson (2007), šerdį sudaro
dviejų tipų ląstelės: adrenocitai ir noradrenocitai. Kituose literatūros šaltiniuose prieinkstinių liaukų
šerdies ląstelės vadinamos feochromocitais (chromafininėmis ląstelėmis) (Garcia et al., 2006).
Ląstelės užpildytos granulėmis, kurios atsakingos už adrenalino ir noradrenalino gamybą ir
kaupimą. Iš jų 80 proc. ląstelių išskiria adrenaliną, ir tik 20 proc. noradrenaliną. Adrenaliną
10
išskiriančių ląstelių granulės smulkesnės, tankiau susibūrusios branduolyje. Feochromacitai šerdyje
yra susibūrę į grupeles, pluoštelius.Tarp ląstelių grupių įsiterpę kapiliarai, ganglinės ląstelės
(Kierszenbaum, et al., 2012).
3 pav. Prieinkstinės liaukos šerdis ( Nodar, 2013 )
Adrenalino ir noradrenalino sekreciją reguliuoja simpatinė nervų sistema. Hormonai veikdami
adrenerginius receptorius veikia širdies, kraujagyslių, bronchų, visceralinių lygiųjų raumenų veiklą.
Adrenalinas taip pat skatina kepenų ir skeleto raumenų glikogeno skaidymą į gliukozę, taip
didinamas gliukozės kiekis kraujyje (Fung, 2008).
11
2. AUDINIŲ PRIEINKSTINIŲ LIAUKŲ PAKITIMAI
Literatūroje mažai duomenų apie audinių prieinkstinių liaukų patologinius pokyčius. Dažniau
pasitaikantys patologiniai pakitimai yra degeneracija (vakuolinė ar granuliacinė), liaukos žievės
atrofija, hipertrofija, fibrozė, hiperplazija, hemoragijos ir nekrozė. Pažeidimai labiau vyrauja zonose
fasciculata ir reticularis, nei glomerulosa zonoje. Prieinkstinų liaukų šerdinės dalies ląstelės
pažeidžiamos rečiau. Pasak Thomas J. Rosol (2001), taip yra todėl, kad žievės ląstelės gausiai
užpildytos lipidais, ir yra palankios sąlygos jose kauptis riebaluose tirpiems toksinams.
Degeneraciją, nekrozę ar hemoragijas dažnai sukelia ūmus prieinkstinės liaukos žievės
pažeidimas, o lėtinis pažeidimas sukelia prieinkstinės liaukos žievės atrofiją, fibrozę arba
hiperplaziją. Dėl šių patologinių pokyčių sutrinka prieinkstinių liaukų veikla, o to pasekoje
sutrikdomos įvairios organizmo funkcijos. Literatūroje taip pat yra duomenų, kad prieinkstinių
liaukų pažeidimai gali ir nerodyti ryškių organizmo funkcijų sutrikimų. 1997 m. atliktas 51 kliniškai
sveiko šeško prieinkstinių liaukų histopatologinis tyrimas. Ištyrus prieinkstinių liaukų mėginius, 23
rasta mėginiuose žievės hiperplazija, 1 mėginyje žievės karcinoma, tačiau kliniškai jokie
simptomai šeškams nepasireiškė (Neuwirth et al., 1977).
Audinių prieinkstinės liaukos yra vienas iš labiausiai pažeidžiamų organų, veikiant toksiniams
faktoriams, stresui (Thomas Rosol et al., 2001). Literatūroje yra duomenų apie atliktus tyrimus,
kaip stresas paveikia prieinkstinių liaukų funkciją, lyginant tarpusavyje Arktinę lapę, 3 Europines
audines ir ūdrą. Audinėms rasti histomorfologiniai pokyčiai - zona glomerulosa atrofija ir zona
fasciculata ląstelių citoplazmos vakualizacija (John et al., 1975).
2.1 Prieinkstinių liaukų žievės atrofija
Atrofija (gr. atrophia – nuvytimas) vadinamas organų ar audinių sumažėjimas, prisitaikant prie
pakitusių sąlygų (Bonaldo et al., 2013).
Atrofijos atsiradimo priežastys labai įvairios. Viena iš atrofiją sukeliančių priežasčių gali būti
uždegiminiai procesai – adrenalitas (Frank et al., 2013). Sumažėjusi liaukos inervacija dėl
neurologinių sutrikimų organizme, arba sumažėjusi hormoninė stimuliacija, sumažėjęs aprūpinimas
krauju ir maisto medžiagomis taip pat gali sąlygoti atrofiją. Atrofija galima ir dėl spaudimo - kai
organą iš išorės spaudžia navikas, susikaupęs skystis, išsiplėtusi kraujagyslė. Prieinkstinių liaukų
atrofiją taip pat gali įtakoti ilgas gydymas kortikosteroidais, nes sumažėjus AKTH iš
adenohipofizės, nestimuliuojamos žievės ląstelės. Liaukos atrofiją skatiną ne tik sumažėjusi
12
hormoninė stimuliacija, bet ilgalaikis gydymas hormonais (2 pav). Dėl ilgalaikio gydymo
gliukokortikoidais, sutrinka grįžtamojo ryšio mechanizmas, atsiranda antinksčių žievės atrofija ir
sumažėja endogeninių gliukokortikoidų sekrecija (Slauson et al., 2002).
Pasak Dadhich (2002), prieinkstinių liaukų atrofiją gali sukelti ir cinko trūkumas. 2002 m.
atliktas tyrimas su laboratorinėmis žiurkėmis, kurioms buvo taikyta speciali dieta. Atlikus tyrimą,
nustatyta prieinkstinių liaukų atrofija zona glomerulosa. Cinko trūkumas taip pat turėjo įtakos
degeneraciniams ir nekrotiniams procesams zona fasciculata.
Patomorfologija. Atrofijos paveikta liauka sumažėjusi, praradusi savo įprastą formą, standžios
konsistencijos. Pjūvyje matoma, kad žievės storis yra mažesnis nei šerdies.
Histologinis vaizdas. Mikroskopuojant matomi ląstelių formos pokyčiai. Ląstelės
susitraukusios, sumažėjęs citoplazmos kiekis, susitraukę branduoliai ( 2 pav.),. Atrofija ryškiausia
žievinėje prieinkstinių liaukų zonoje. Pastarosiose atrofavusių ląstelių funkcija yra susilpnėjusi, bet
jos nemirusios.
4 pav. Prieinkstinės liaukos atrofija ( The joint pathology center, 2011)
2.2 Prieinkstinių liaukų žievės hipertrofija
Hipertrofija (hypertrophia) – tai organo ar audinio padidėjimas, padidėjus ląstelių apimčiai, bet
nepadidėjus jų skaičiui. Hipertrofija gali būti patologinė ir fiziologinė, sukelta padidėjus organo
funkcinei apkrovai, arba esant specifinių hormonų stimuliacijai. Audinėms būdinga fiziologinė
hipertrofija. Nustatyta, kad rujos metu, audinių prieinkstinių liaukų žievė hipertrofuoja, tačiau po
rujos vėl sugrįžta į pradinį dydį (Ramos, 1972). Pirminė prieinkstinės liaukos patologinės
hipertrofijos, taip pat ir hiperplazijos, priežastis gali būti padidėjusi adrenokortikotropinio hormono
stimuliacija, dėl toksinų sukelto pažeidimo, navikų ( Harvey et al., 2010).
Patologinę hipertrofiją gali sukelti ir lėtinis širdies nepakankamumas – stimuliuojamas
katecholaminų išskyrimas lėtinio širdies nepakankamumo atveju, sukelia prieinkstinių liaukų
šerdies hipertrofiją (Schneider et al., 2011).
13
Hipertrofija pasireiškia ir kaip organizmo atsakas į stresą. 2006 m. Minesotoje atliktas tyrimas
su laboratorinėmis žiurkėmis, siekiant išsiaiškinti ar lėtinis stresas gali iššaukti prieinkstinių liaukų
padidėjimą. Eksperimento metu pasitvirtino, kad lėtinis stresas sukelia prieinkstinių liaukų šerdies ir
žievės zona fasciculata hipertrofiją ( Ulrich-Lai et al., 2006).
Hipertrofija sąlygoja prieinkstinės liaukos funkcijos sustiprėjimą. Priklausomai nuo to, kuri
liaukos dalis hipertrofuota, atitinkamai suintensyvėja tos zonos hormonų išskyrimas. Hipertrofavus
z. glomerulosa pasireiškia mineralkortikoidų hipersekrecija, z.reticularis - androgenų, o šerdies
hipertrofijos atveju - didėja katecholaminų išskyrimas. Pluoštinės zonos hipertrofija skatina
padidėjusį gliukokortikoidų išskyrimą. Šios zonos hipertrofija ir padidėjusi kortizolio gamyba
pasireiškia esant Kušingo sindromui ( Morris et al., 2002).
Patomorfologija. Prieinkstinės liaukos padidėjusios, praradusios įprastą formą.
Histologinis vaizdas. Mikroskopuojant ląstelės padidėjusios, ir kartais, labai žymiai
hipertrofuoja pluoštinė ir tinklinė zonos. Kamuolinė – labai retai.
2.3 Prieinkstinių liaukų hiperemija
Padidėjęs kraujo priplūdimas vadinamas arterine hiperemija (lot. hyperaemia arterialis).
Priežastiniai veiksniai. Viena iš hiperemiją sukeliančių priežasčių gali būti staigūs aplinkos
temperatūros pokyčiai. Ilinojaus universitete (1960 m.) atliktas tyrimas su pelėmis, kurio metu
laikant peles skirtingose temperatūrose, nustatyta, kad prieinkstinėse liaukose hiperemija susidarė
ne tik prie aukštos 30o C, 40
o C temperatūros, bet ir esant - 20
o C, - 33
o C temperatūrai. Hipoksija,
sustiprėjusi medžiagų apykaita, kraujotakos sutrikimai, taip pat gali sąlygoti prieinkstinės liaukos
hiperemiją. Z. reticularis ir z. fasciculata hiperemija galima dėl infekcinio, toksinio, kardiogeninio
šoko ( Smith et al., 1991).
5 pav. Hiperemija (Beigel, 2009)
14
Patomorfologija. Perpildyti krauju organai padidėję, šviesiai raudonos spalvos.
Histologinis vaizdas. Mikroskopuojant matomos išsiplėtusios kraujagyslės.
2.4 Prieinkstinių liaukų hemosiderozė
Hemosiderinas yra geltonai rudų granulių pavidalo feritino irimo produktas. Hemosiderino
susidarymą gali įtakoti ligos, kurios susijusios su geležies pertekliumi organizme. Žiurkėms
hemosiderinas blužnyje susiformuoja jau 4 mėnesių amžiaus, tačiau jokių klinikinių simptomų
nerasta (Masuda et al., 1993). Dažniausiai audiniuose nusėdęs pigmentas nepažeidžia parenchimos
ląstelių ir nesutrikdo organizmo funkcijų, nors literatūroje pažymima, kad labai didelės geležies
sankaupos, esant hemochromatozei, gali sukelti kepenų, kasos pažeidimus, ko pasekoje išsivysto
kepenų fibrozė, širdies nepakankamumas (Bovell et al., 2009).
Priežastiniai hemosiderozės veiksniai – tai infekcinės ligos, hemolizinė anemija, intoksikacija
hemolizuojančiais nuodais (gyvačių, nuodingųjų grybų), didelio laipsnio nudegimas, atšalimas.
Hemosiderino sankaupos siejamos ir su hemoragijomis, židininiu infarktu, navikais (Derelanko et
al., 2010). Dažniausiai hemosiderino randama kepenyse, blužnyje, širdyje, kasoje ir prieinkstinėse
liaukose (Bovell et al., 2009).
Patomorfologija. Jei hemosiderino susikaupę nedaug, prieinkstinėse liaukose gali nebūti jokių
matomų pakitimų. Jei susikaupia daug - organai būna rūdžių spalvos ir padidėję (Mačiulskis et al.,
2007).
Histologinis vaizdas. Antinksčių audinyje matomi geltonai rudi grūdeliai, laisvi arba
makrofaguose (hemosiderofagai) (Yingze Wang, 2010).
6 pav. Hemosiderozė ( Jae, 2005 )
15
2.5 Amiloidozė
Amiloidozė (lot. amyloidosis) - bendras terminas apibūdinantis ligų grupę, kurioms būdingas
patologinis fibrininio baltymo nusėdimas įvairiuose audiniuose (Cotran et al., 1999). Pagal išplitimą
amiloidozė gali būti generalizuota, sisteminė arba vietinė (pagal pažeistą organą). Histologiškai
skiriami du generalizuotos amiloidozės tipai. Bazinių membranų tipas išryškėja tada, kai amiloido
(gal amiloidas) kaupiasi šalia kraujagyslių arba epitelinių liaukų bazinių membranų. Perikolageninis
tipas – kai daugiausia amiloido kaupiasi pagal kraujagyslių sienos adventicijos ir medijos kolageno
skaidulas. Pirmine (idiopatine) amiloidoze vadinamas procesas, susijęs su plazmocitų
nenormalumais (plazmocitoblastoma, kitos B limfocitų proliferacijos), tiriant imunochemiškai –
dažniau AL proteinas. Dažniausiai amiloido aptinkama miokarde, skrandyje ir žarnose, blužnyje ir
inkstuose, kepenyse, plaučiuose ir antinksčiuose. Audinėms amiloido kaupimąsi sukelia aleutinė
audinių liga (Ménsua, et al., 2003). Gyvūnams dažniausiai nustatoma AA – amiloidozė (antrinė).
AA - amiloidozė siejama su lėtiniu uždegiminiu procesu, plazmocitoze, neoplastinėmis ligomis ar
idiopatinės kilmės, kai priežastis lieka nenustatyta. Amiloidozės komplikacijos priklauso nuo
pažeidimo laipsnio. Sąlygoja prieinkstinių liaukų nepakankamumą (Kim et al., 2005; Snyder,
2007).
7 pav. Amiloidozė (Sponarova, 2008)
Patomorfologija. Stipriai amiloidozės pažeisti organai ryškiai padidėję, standūs, blyškūs.
16
Histologinis vaizdas. (4 pav.) Amiloidas identifikuojamas nudažius audinius Kongo
raudonuoju – matomas rausvos, homogeniškos masės susikaupimas tarp organo ląstelių. Tiriant
poliarizuojančiu mikroskopu, amiloidinės masės švyti obuolio žalumo spalva (Woldemeskel et al.,
2012).
2.6 Navikai
Literatūroje pateikiama nemažai duomenų apie prieinkstinių liaukų navikų pasireiškimą šunims
ir šeškams, tačiau audinių prieinkstinių liaukų navikai neaptarti. Remiantis literatūra apie kailinių
žvėrelių navikus, prieinkstinėse liaukose gali susiformuoti gerybiniai navikai, nedarantys žalos ir
piktybiniai –sukeliantys padidintą, sumažintą hormonų sekreciją arba visai neturintys įtakos
hormonų išskyrimui. Gerybiniai navikai dažniausiai yra maži, nesukelia funkcijos sutrikimų ir
dažniausiai aptinkami atsitiktinai atliekant ultragarsinį tyrimą. Piktybiniams navikams priskiriama
prieinkstinės liaukos žievės karcinoma, neuroblastoma ir šerdies feochromacitoma.
Feochormacitomos dažniau pasireiškia žiurkėms, negu kitiems gyvūnams (Tischler et al., 2004).
Navikams būdingas prieinkstinės liaukos išdidėjimas, formos, parenchimos ląstelių pokyčiai
(Hoerauf et al., 1999).
2005 metais atliktas histopatologinis tyrimas su šeškais, kurio metu iš 25 prieinkstinių liaukų
mėginių nustatytos 3 prieinkstinių liaukų adenomos ( dešinės prieinkstinės liaukos) ir 4 karcinomos
(abipusės) (Juliette ir kt., 2000). 2001 metais Kanadoje atliktas histopatologinis šeškų prieinkstinių
liaukų tyrimas, kuriuo nustatyta, kad prieinkstinių liaukų navikų pasireiškimas priklausomas ir nuo
gyvūno lyties. Navikų pasireiškimas dažnesnis tarp šeškų patinėlių, nei patelių (Lair et al., 2002).
17
3. TYRIMO MEDŽIAGA IR METODAI
3.1 Tyrimo medžiaga
Tyrimas atliktas 2013 metais. Patologinė medžiaga surinkta Lietuvos sveikatos mokslų
universiteto veterinarijos akademijos patologijos centre. Tyrimo objektas: X ūkio audinių patinėliai,
6 mėnesių amžiaus. Rutininio skrodimo metu buvo paimta 40 audinių prieinkstinių liaukų
patologinė medžiaga (n=40).
Histopatologiniam tyrimui imti audiniai fiksuoti 10 proc. neutraliu formalino tirpalu 3 - 5
dienas vienkartiniuose indeliuose.
3.2 Patologinės medžiagos paruošimas dažymui
1. Patologinė medžiaga supjaustoma, sudedama į biopsines kasetes, vandeniu
išplaunamas formalinas.
2. Patologinės medžiagos dehidratavimas 60 º, 80 º ir 96 º etilo alkoholyje po 2 - 3
val. ir izopropanolio alkoholyje po 1-3 val.
3. Skaidrinimas chloroform 1-3 val.
4. Impregnavimas parafinu audinių įliejimo įranga Tes 99.
5. Parafininių blokelių su patologine medžiaga atvėsinimas.
6. Pjaustymas 4 µm storio parafininiais audinių pjūviais (mikropjūviai), naudojant
„Sakura Accu-Cut® SRM ™, Japonija“ pusiau automatinį rotacinį mikrotomą
7. Pjūvio tiesinimas 37 ºC temp. vandens vonelėje.
8. Pjūvio perkėlimas ant objektinio stiklelio.
9. Džiovinimas termostate 24 val. 37 ºC temp.
10. Po 24 val. išdžiūvę termostate parafininiai audinių pjūviai dažomi naudojant
histologinių pjūvių automatinį dažymo įrenginį „Sakura Tissue - Tek® DRS ™,
Japonija“.
3.3 Tyrimo metodai
Siekiant ištirti patologijas, atliktas histologinis dažymas hematoksilinu eozinu (HE) ir
histocheminis dažymas Kongo raudonuoju. Kongo raudonasis buvo naudojamas amiloido
nustatymui.
18
a) Dažymas HE
1. Pjūvio deparafinavimas ksilenu - 13 min;
2. Pjūvio dehidravimas izopropanolio alkoholiu - 2 min., 96° etilo alkoholiu - 4 min. Prieš
dažymą skalaujama vandeniu, kuris pašalina alkoholį;
3. Pjūvio dažymas hematoksilinu - 10 min., merkiamas į vandenį - 5 min., etiloalkoholis 96°-
2 min., vanduo - 5 min., eozino dažai - 5 min., vanduo - 1 min.;
4. Pjūvių dehidratavimas 96° etiloalkoholiu - 1 min., izopropolio alkoholiu - 1 min.;
5. Pjūvių skaidrinimas ksilenu - 1 min. Nudažius, objektiniai stikleliai dengiami ilgalaikio
saugojimo dengiamąja terpe „Thermo Shandon Consul-Mount histology formulatio“.
Mėginiai analizuojami ir diagnozuojami „Olympus BX41“ mikroskopu. Mikroskopinės
nuotraukos daromos naudojant histologinių vaizdų analizatorių (mikroskopą) „Olympus DP72
BX63“. Visos tyrimo rezultatuose panaudotos nuotraukos yra autorės.
b) Dažymas Kongo raudonuoju:
1. Ksilenas I – 5 min.
2. Ksilenas II – 5 min.
3. Etiloalkoholis I 96° - 5 min.
4. Etiloalkoholis II 96° - 5 min.
5. Etiloalkoholis I 70° - 5 min.
6. Etiloalkoholis II 70° - 5 min.
7. Veikimas Kongo raudonuoju 30 min.
8. Plovimas tekančiu vandeniu 3 min.
9. Hematoksilinas 30 s.
10. Plovimas tekančiu vandeniu 3 min.
11. Etiloalkoholis I 96° - 15 s.
12. Ksilenas I – 1 min.
13. Ksilenas II – 1 min.
Taip pat atlikta statistinė duomenų analizė.
Tyrimo duomenų statistinis įvertinimas atliktas, naudojant Microsoft Exel (2010) programą.
Paskaičiuotas įvairių patologijų pasireiškimo dažnumas, jų pasiskirstymas žievėje ir šerdyje (proc.).
Taip pat įvertinta, kaip pasiskirstė patologijos žievės zonose.
19
4. TYRIMO REZULTATAI
4.1 Histopatologinis tyrimas
Šio tyrimo metu atlikus histologinį HE dažytų 40 audnių prieinkstinių liaukų mėginių tyrimą,
rasti šie patologiniai pokyčiai: hemosiderozė, hipertrofija, nekrozė, lipidozė, plazmocitų infiltracija
ir priedinis žievės mazgelis.
Atlikus mėginių dažymą Kongo raudonuoju amiloidui nustatyti, nė viename mėginyje nerasta
teigiamos Kongo raudonojo reakcijos amiloidui. Mėginiai taip pat buvo peržiūrėti poliarizaciniu
mikroskopu, ir taip pat nerasta amiloidui būdingos reakcijos.
8 pav. Hemosiderino sankaupos. Dažyta HE, x200
1. Hemosiderinas
Atliekant prieinkstinių liaukų histologinį tyrimą buvo rastos geltonai rudos spalvos, apvalių
dalelių sankaupos – hemosiderinas. Hemosiderinas išsidėstęs ir žievėje ir šerdyje nedideliais
ploteliais. Jo sankaupų rasta tarp ląstelių, o kai kur hemosiderinas gaubia ląstelių branduolius. Šalia
hemosiderino matomi grupelėmis išsidėstę eritrocitai.
20
9 pav. Lipidozė. Dažyta HE, x100
Lipidų sankaupos. Mikroskopuojant žievės pluoštinėje zonoje aptiktos įvairaus dydžio
ląstelės, Pakitusios ląstelės ovalios, kai kurios – daugiakampės. Ląstelės užpildytos riebalų
lašeliais, branduoliai nustumti į šoną, prie ląstelių sienelių.
10 pav. Nekrozė. Dažyta HE, x400
21
Nekrozės pažeistos ląstelės praradusios formą. Ląstelių ribų nesimato, jų sienelės suirusios.
Matomi ląstelių branduolių pokyčiai. Branduoliai suspausti, kai kur suirę ( kariolizė ). Tarp suirusių
ląstelių – eritrocitų sankaupos, pavieniai plazmocitai. Nekrozė rasta prieinkstinės liaukos žievės
pluoštinėje zonoje.
11 pav. Plazmocitų infiltracija. Dažyta HE, x400
1. Plazmocitai
Histologinio tyrimo metu, prieinkstinių liaukų mėginiuose aptiktos ląstelės su tamsiais
branduoliais ir negausia, kiek šviesesne citoplazma – plazmocitai. Plazmocitų infiltracija negausi.
Kai kur plazmocitai išsidėstę grupelėmis, o kai kur rasti tik pavieniai. Plazmocitų rasta ir
prieinkstinių liaukų žievėje ir šerdyje.
22
12 pav. Papildomas žievės mazgelis. Dažyta HE, x100
1. Kapsulė
2. Kamuolinė zona
3. Pluoštinė zona
Papildomas žievės mazgelis mikroskopuojant rastas šalia prieinkstinės liaukos. Apsuptas
capsules mazgelis sudarytas iš prieinkstinei liaukai būdingų ląstelių. Jame rastos prieinkstinių
liaukų kamuolinei ir pluoštinei zonoms būdingos ląstelės.
13 pav. Hiperemija. Dažyta HE, x100
23
Hiperemija nustatyta visuose mėginiuose. Hiperemiškose prieinkstinėse liaukose matomi
išsiplėtę kapiliarai gausiai užpildyti eritrocitais.
14 pav. Žievės hipertrofija. Dažyta HE, x40
Žievės tinklinėje zonoje aptiktos padidėjusios ląstelės su stambiais branduoliais.
24
4.2 Audinių prieinkstinių liaukų patologijų pasireiškimo dažnumas
4.2.1 Bendras patologijų dažnumas
Visi audinių prieinkstinių liaukų mėginiai dėl gaišinimo CO2 dujomis buvo paveikti
hiperemijos. Kadangi hiperemija sukelta mechaniškai, skaičiuojamos tik kitos patologijos,
neturinčios ryšio gaišinimo procesu. Ištyrus 40 mėginių, tik trys mėginiai rasti be pakitimų, t.y. su
pakitimais prieinkstinių liaukų skaičius buvo 13 kartų didesnis nei sveikų (15 pav.).
15 pav. Bendras pakitusių ir nepakitusių audinių prieinkstinių liaukų mėginių
skaičius (proc.)
Iš 16 paveikslo matyti, kad dažniausiai pasitaikiusi prieinkstinių liaukų patologija – tai
infiltracija plazmocitais, kuri pasireiškė 30 mėginių. Antra pagal pasireiškimo dažnumą –
hemosiderozė (8 mėginiuose).
Atlikus tyrimą, dalyje prieinkstinių liaukų rasta po keletą patologijų ( 17 pav.) : lipidozė, ir
plazmocitų infiltracija (n=1), nekrozė ir plazmocitų infiltracija (n=1), plazmocitų infiltracija ir
papildomas žievės mazgelis (n=1). 6 mėginiuose iš 8, rasta hemosiderozė su plazmocitų
infiltracija.
25
16 pav. Nustatytų prieinkstinių liaukų patologijų pasireiškimo dažnumas (proc.)
17 pav. Mišrių patologijų pasireiškimas (proc.)
26
4.2.2 Hemosiderozė audinių prieinkstinėse liaukose
Atlikus histologinį prieinkstinių liaukų tyrimą, iš 40 tirtų mėginių, 8 pažeisti hemosiderozės
(20 % visų tirtų mėginių).
18 pav. Hemosiderozės pasireiškimas prieinkstinėse liaukose (proc.)
Tiriant hemosiderozės pasireiškimą žievėje ir šerdyje (19 pav.) buvo nustatyta, kad ji
pasireiškė abiejose prieinkstinės liaukos zonose. Hemosideriozė, dažniau pasireišė žievėje (n=5)
nei šerdyje (n=3).
19 pav. Hemosiderozės pasireiškimo dažnumas žievėje ir šerdyje (proc.)
27
Lyginant hemosiderozės pasireiškimo dažnumą visose trijose žievės zonose (20 pav.),
nustatyta, kad 1 mėginyje hemosiderozės buvo rasta ir z. reticuliaris ir z. glomerulosa, tai yra 2 %
iš visų tirtų mėginių ir po 16,67%, jei lyginamas pasireiškimas atskirose žievės zonose, kuriose
rasta hemosiderozės. Dažniau nei minėtose žievės zonose, hemosiderozės rasta z. fasciculata net 4
mėginiuose iš 5, kuriuose pasireiškė hemosiderozė. Tai yra 10% iš visų tirtų mėginių ir 66, 67% ,
jei lyginamas pasireiškimas atskirose zonose, kuriose buvo rasta hemosiderozės.
20 pav. Hemosiderozės pasireiškimo dažnumas žievės zonose
4.2.3 Plazmocitų infiltracija prieinkstinėse liaukose
Gana dažna patologija audinių prieinkstinėse liaukose buvo plazmocitų infiltracija. Iš 40 tirtų
mėginių plazmocitų sankaupos rastos 30 mėginių ( 21 pav. ) .
28
21 pav. Plazmocitų infiltracijos dažnumas prieinkstinėse liaukose (proc.)
Plazmocitų sankaupos dalyje mėginių rastos ir žievėje ir šerdyje (8 mėginiuose). Vien žievėje
rasta 21 mėginyje, o vien tik šerdyje - 1 mėginyje. Žievinėje prieinkstinės liaukos zonoje
plazmocitų susikaupimas rastas didesnis (67 proc.), nei šerdyje – (33 proc.).
Dalyje mėginių plazmocitų infiltracija rasta tik žievėje.
22 pav. Plazmocitų infiltracijos pasireiškimo dažnumas žievėje ir šerdyje (proc.)
29
Plazmocitinės infiltracijos dažnumas atskirose žievės zonose pateiktas 23 paveiksle. Tokių
mėginių buvo 21, iš jų 9 mėginiuose plazmocitų infiltracija pasireiškė z.glomerulosa, 7 mėginiuose
z. fasciculata, 5 mėginiuose z. reticularis. Dviejuose mėginiuose rasta plazmocitų infiltracija ir
z.glomerulosa ir z.fasciculata. Didžiausias pasireiškimo dažnumas rastas z.glomerulosa, o
mažiausias - z. reticularis.
23 pav. Plazmocitozės pasireiškimas tarp žievės zonų (proc.)
30
4.2.4 Prieinkstinių liaukų žievės hipertrofija
Hipertrofija rasta tik viename mėginyje iš 40. Šis patologinis procesas rastas žievėje. Tai
sudarė 2 % iš visų tirtų atvejų. (24 pav.)
24 pav. Hipertrofijos pasireiškimo dažnumas prieinkstinėse liaukose (proc.)
Lyginant hipertrofijos pasireiškimą žievėje ir šerdyje, nustatyta, kad hipertrofija pasireiškė tik
žievinėje zonoje (25 pav.). Nors literatūroje rašoma, kad hipertrofija gali būti randama ir šerdyje,
šiame tyrime šerdinėje dalyje hipertrofijos nebuvo rasta.
25 pav. Hipertrofijos pasireiškimo dažnumas tarp žievės ir šerdies (proc.)
31
Palyginus hipertrofijos pasireiškimą atskirose žievės zonose (26 pav), hipertrofija pasireiškė
tik z.reticularis, nei z. glomerulosa, nei z. fasciculata hipertrofija nepasireiškė.
26 pav. Hipertrofijos pasireiškimo dažnumas žievės zonose (proc.)
4.2.5 Prieinkstinių liaukų žievės lipidozė
Tiriant lipidozės pasireiškimo dažnumą prieinkstinių liaukų žievėje (27 pav.), nustatyta, kad
lipidozė rasta 2 mėginiuose iš 40. Lipidozė prieinkstinių liaukų žievėje (5%) pasireiškė dažniau nei
hipertrofija prieinkstinių liaukų žievėje (2%), bet rečiau nei homosiderozė prieinkstinių liaukų
žievėje (12,5%).
27 pav. Lipidozės pasireiškimo dažnumas prieinkstinėse liaukose (proc.)
32
Lyginant, kaip dažnai lipidozė pasireiškia tarp atskirų žievės zonų, nustatyta, kad lipidozė
pasireiškė tik z. fazciculata. Tai sudaro 5% iš visų tirtų mėginių.
28 pav. Lipidozės pasireiškimas tarp žievės zonų (proc.)
4.2.6 Prieinkstinių liaukų žievės nekrozė
Ištyrus, kaip dažnai prieinkstinių liaukų žievėje pasireiškia nekrozė (29 pav.), tokių atvejų
nustatyta 1 iš 40. Nekrozės pasireiškimas prieinkstinių liaukų žievėje toks pat, kaip ir hipertrofijos
(2 proc.)
33
29 pav. Nekrozės pasireiškimo dažnumas procentais tarp prieinkstinių liaukų
Prieinkstinių liaukų žievės nekrozė rasta tik z. fasciculata (2 proc. visų mėginių) (29 pav.).
Remiantis 20 pav., 26 pav., 28 pav., ir 30 pav., matyti, kad prieinkstnių liaukų žievės pluoštinėje
zonoje nekrozės rasta tik vienas atvejis (1 iš 40), lipidozės - du (2 iš 40), kiek daugiau
hemosiderozės – keturi (4 iš 40), o hipertrofijos nerasta.
30 pav. Nekrozės pasireiškimo dažnumas tarp žievės zonų (proc.)
34
4.2.7 Papildomas žievės mazgelis
Ištyrus audinių prieinkstines liaukas nustatyta, kad papildomų žievės mazgelių aptikta tik 1
mėginyje.
31 pav. Papildomų žievės mazgelių pasireiškimo dažnumas audinių prieinkstinėse
liaukose (proc.)
35
REZULTATŲ APTARIMAS
Išanalizavus 40 audinių histologinius preparatus, nustatyta, kad 92 proc. (n=37) prieinkstinių
liaukų yra pakitusios, o 8 proc. (n=3) - sveikos. Daugiausia pažeidimų vyrauja prieinkstinių liaukų
žievinėje dalyje. T. J. Rosol (2001) prie dažniausiai pasitaikančių prieinkstinių liaukų patologijų
priskiria degeneraciją, atrofiją, hipertrofiją, fibrozę, hiperplaziją, hemoragijas ir nekrozę. Atlikus 40
audinių prieinkstinių liaukų histologinį tyrimą, iš visų autoriaus paminėtų patologijų, šio tyrimo
metu nustatytos tik dvi : hipertrofija ir nekrozė. Didžiausią procentą sudaro plazmocitų infiltracija
68 proc. (n=30) ir hemosiderozė 18 proc. (n=8). Šios patologijos sudarė daugiau kaip pusę ( 86
proc.) visų patologijų. Mažiausią dalį sudaro lipidozė - 5 proc. (n=2), nekrozė - 2 proc.(n=1),
hipertrofija - 2 proc. (n=1) ir papildomas žievės mazgelis 2 proc. (n=1).
Didesnis plazmocitų infiltracijos pasireiškimo dažnumas nustatytas žievėje ir sudaro 67
proc. (n=20). Plazmocitų infiltracija šerdyje sudaro 33 proc. (n=10). Plazmocitų infiltracija tarp
žievės z.glomerulosa ir z.fasciculata pasireiškė beveik vienodai: z.glomerulosa sudarė 42,85 proc.
(n=9), o z.fasciculata 33,33 proc. (n=7). Mažiausias plazmocitozės pasireiškimas nustatytas
tinklinėje zonoje 23,80 proc. (n=5). Plazmocitų infiltracija mėginiuose negausi. Nustatyta, kad
grupelėmis susikaupę plazmocitai būdingesni reticularis ir glomerulosa zonoms, o pavieniai –
z.fasciculata. Plazmocitų susikaupimą galėjo įtakoti audinių aleutinė liga. Pasak Pennick (2007),
plazmocitų infiltacija yra aleutinės ligos požymis. Plazmocitų židiniai ar difuzinis infiltratas
audiniuose gali būti randami ir esant autoimuniniam uždegimui ( Adissu et al., 2013).
Iš 40 tirtų mėginių, hipertrofijos atvejų rasta labai mažai, tik 2 proc. (n=1). Hipertrofija
pasireiškė tik tinklinėje zonoje. Audinėms būdinga fiziologinė tinklinės zonos hipertrofija
poravimosi metu (Ramos et al., 1972). Būtų galima daryti prielaidą, kad rasta hipertrofija –
fiziologinė, tačiau tirtos audinės buvo vienodo amžiaus, o hipertrofija rasta tik viename
prieinkstinių liaukų mėginyje. Tarp kitų hipertrofiją sukeliančių priežasčių, literatūroje minima
adrenokortikotropinio hormono stimuliacija, dėl navikų, ar streso poveikio (Harvey et al., 2006).
Prieinkstinių liaukų hipertrofija gali pasirekšti ir veikiant toksiniams faktoriams, tokiems kaip
mazutas ( Massey et al., 2007).
Dar viena iš rastų patologijų – hemosiderozė. Rastos hemosiderozės sankaupos audinių
prieinkstinėse liaukose nedidelės. Ištyrus 40 audinių prieinkstinių liaukų mėginių, hemosiderozė
rasta 8 mėginiuose (20 proc.). Nustatyta, kad hemosiderozė pasireiškė abiejose prieinkstinės
liaukos zonose, tačiau dažnesnis pasireiškimas nustatytas žievėje - 62,50 proc.( n = 5 ), o šerdyje tik
36
37,50 proc. ( n = 3 ). Pastebėta, kad hemosiderino sankaupos labiau pasireiškė pluoštinėje žievės
zonoje. Mėginiuose, kuriuose nustatyta hemosiderozė, nei navikų, nei hemoragijų ar infarkto
nenustatyta. Tikėtina, kad viena iš hemosiderino kaupimosi priežasčių galėjo būti geležies
perteklius organizme, kaip teigia Masuda (1933).
Žievės lipidozė rasta tik dviejuose mėginiuose ir jos pažeidimo laipsnis yra nedidelis.
Nustatyta, kad lipidozė pasireiškė tik z. fasciculata. Pasak Katkiewicz (2010), patologinį lipidų
kaupimąsi gali sukelti metaboliniai sutrikimai, įvairių toksinų poveikis, sutrikęs cholesterolio
metabolizmas.
Mažiausią dalį patologijų sudarė papildomas žievės mazgelis (2 proc.) ir nekrozė (2 proc.).
Nekrozė pasireiškė tik vienoje žievės zonoje – z. fasciculata. Prieinkstinių liaukų nekrozę gali
sukelti uždegimas, parazitų invazija, virusai, bei septicemija. Taip pat pažymima, kad dažnai
nekrozę sukelia embolija (Jubb, 1993). Literatūroje pažymima, kad įgimtas papildomas žievės
mazgelis yra dažnas reiškinys gyvūnams. Kai kuriems gyvūnams, pavyzdžiui žiurkėms, papildomo
žievės mazgelio susiformavimas yra būdingesnis, nei kitiems gyvūnams. Mazgelis gali būti
sudarytas iš vieno ar visų trijų žievės sluoksnių. Būna, kad mazgelis turi ir žievinių ir šerdinių
ląstelių. Rečiau papildomas žievės mazgelis pasireiškia kaip prieinkstinės liaukos žievės
hiperplazija ( Greaves, 2010). Atlikto tyrimo metu rasta tik viena prieinkstinė liauka su papildomu
žievės mazgeliu, kuriame nustatytos kamuolinė ir pluoštinė zonos. Mazgelis inkapsuliuotas.
Atlikus tyrimą, dėl baltymo amiloido, jo prieinkstinių liaukų mėginiuose nerasta, galimai dėl
labai jauno audinių amžiaus. Literatūroje teigiama, kad amiloidozė pasireiškia esant plazmocitų
infiltracijai, tačiau labiau būdinga vyresnio amžiaus gyvūnams.Taip pat amiloidozė siejama su
lėtiniu uždegiminiu procesu, plazmocitų infiltracija esant aleutinei audinių ligai, o kartais ir
idiopatinės kilmės ( Kim ir kt., 2005 ).
T. J. Rosol teigia, kad pažeidimai labiau vyrauja pluoštinėje ir tinklinėje zonose, tai aptikta ir
šio atlikto tyrimo metu.
37
IŠVADOS
1. Atlikus histologinį tyrimą pakitusių audinių antinksčių rasta 92 proc.
2. Atlikus histocheminį prieinkstinių liaukų tyrimą, baltymo amiloido sankaupų
prieinkstinėse liaukose nerasta.
3. Didžiausią dalį patologinių pokyčių sudaro plazmocitų infiltracija (70 proc.) ir
hemosiderozė (19 proc.).
4. Mažiausią dalį patologinių pokyčių sudaro lipidozė (5 proc.), nekrozė (2 proc.),
hipertrofija (2 proc.) ir papildomas žievės mazgelis (2 proc.).
38
LITERATŪROS SĄRAŠAS
1. Adissu, H. A., A. Hamel-Jolette, and R. A. Foster. Lymphocytic adenohypophysitis and
adrenalitis in a dog with adrenal and thyroid atrophy. Veterinary Pathology Online. 2010.
Vol. 47. Issue 6 : 1082 - 1085.
2. Bacha W. J., Bacha L. Jr. Color atlas of veterinary histology second edition. 2000. P. 192.
3. Beigel, F., Jürgens M., Tillack C., Subklewe M., Mayr D., Göke B., Ochsenkühn, T.
Hepatosplenic T-cell lymphoma in a patient with Crohn's disease. Nature Reviews
Gastroenterology and Hepatology. 2009. Vol. 6 (7). P. 433-436.
4. Bonaldo P., Sandri M. Cellular and molecular mechanisms of muscle atrophy. Disease
models & mechanisms. 2013. Vol. 6. Issue 1. P. 25 - 39.
5. Bornstein, S. R. Predisposing factors for adrenal insufficiency. New England Journal of
Medicine. 2009. Vol. 360. Issue 22. P. 2328 - 2339.
6. Burkhardt W. A., Guscett, F., Boretti F. S., Todesco A., Aldajarov N., Lutz T. A., Sieber-
Ruckstuhl, N. S.. Adrenocorticotropic hormone, but not trilostane, causes severe adrenal
hemorrhage, vacuolization, and apoptosis in rats. Domestic animal endocrinology. 2011.
Vol. 40 Issue 3. P. 129 - 182.
7. Cotran R.S., Collins K. V., Collins V., Robbins. T. Pathologic Basis of Disease, 6th ed.
Saunders Co. Philadelphia. 1999. P. 251 – 259.
8. Cunningham J. G., Klein B. G. Textbook of veterinary physiology fourth edition. Saunders
Elsevier. 2007. P. 410; 436.
9. Eatwell K. Two unusual tumours in a ferret (Mustela putorius furo). Journal of small animal
practice. 2004.Vol. 45. Issue 9. P. 454 - 459.
10. Frank C. B., Valentin S. Y., Scott-Moncrieff J. C. R., Miller, M. A. Correlation of
Inflammation with Adrenocortical Atrophy in Canine Adrenalitis. Journal of comparative
pathology. 2013. Vol. 149, Issues 2–3. P. 268 – 279.
11. Fung M. M., Viveros O. H., O’Connor D. T. Diseases of the adrenal medulla. Acta
Physiologica. 2008. Vol. 192 Issue 2.P. 325 -335.
12. García A. G., García-De-Diego A. M., Gandía L., Borges R., García-Sancho J. Calcium
signaling and exocytosis in adrenal chromaffin cells. Physiological reviews. 2006. Vol. 86.
Issue 4. P. 1093 - 1131.
39
13. Greaves P. Histopathology of Preclinical Toxicity Studies: Interpretation and Relevance in
Drug Safety Evaluation. 2011. P. 743 – 745.
14. Harvey P. W., Sutcliffe C. Adrenocortical hypertrophy: establishing cause and toxicological
significance. Journal of Applied Toxicology. 2010. Vol. 30. Issue 7. P. 617 - 626.
15. Katkiewicz M., Osin´ska B. Lipidosis of dog adrenals in the histopathological examination.
Medycyna Weterynaryjna. 2010. Vol. 66. Issue 7. P. 489 - 494.
16. Kerr J., Cotmore S, Bloom E. M. Parvoviruses.2005. P.325 – 326.
17. Koko V., Djordjeviæ J., Cvijiæ G., Davidoviæ V. Effect of acute heat stress on rat adrenal
glands: a morphological and stereological study. Journal of experimental biology. 2004.
Vol. 207. Issue 24. P. 4225 - 4230.
18. Levine S. Allergic adrenalitis and adenohypophysitis: further observations on production
and passive transfer. Endocrinology. 1969. Vol. 84. Issue 3. P. 75 - 469.
19. Lewington J. H.Ferret Husbandry, Medicine and Surgery second edition. Elsevier.
2007.Vol. 503. P. 28.
20. MacLachlan J., Dubovi E. J. Fenner`s Veterinary virology fourth edition. Saunders Elsevier.
2011. Vol. 507. P. 234.
21. Mačiulskis P., Aniulienė A., Pockevičius A., Juodžiukynienė N. Makroskopiniai ir
mikroskopiniai organų ir audinių tyrimai. Naujasis lankas. 2007. P. 65 – 86.
22. McGavin M. D., Carlton W. W., Zachary F. J. Thomson`s special veterinary pathology third
edition. Mosby. 2001. P. 290.
23. Ménsua C., Carrasco L., Bautista M. J. Biescas E., Fernández A., Murphy C. L., Luján L.
Pathology of AA amyloidosis in domestic sheep and goats. Veterinary Pathology Online.
2003. Vol. 40. Issue 1. P. 71 - 80.
24. Moges, W. A concise review of amyloidosis in animals. Veterinary medicine international.
2012. P. 11.
25. Moreira S. G., Pow-Sang J. M. Evaluation and management of adrenal masses. Cancer
Control. 2002. Vol. 9 Issue 4. P. 326 - 334.
26. Morris D., Grossman A. The medical management of Cushing's syndrome. Annals of the
New York Academy of Sciences. 2002. Vol. 970. Issue 1. P. 119 - 133.
27. Neuwirth L., Collins B., Calderwood‐MAYS M., Tran T. Adrenal ultrasonography
correlated with histopathology in ferrets. Veterinary Radiology & Ultrasound. 1997. Vol 38.
Issue 1. P. 69 - 74.
40
28. Pennick K. E., Latimer K. S., Brown C. A., Hayes J. R., Sarver C. F.. Aleutian disease in
two domestic striped skunks (mephitis mephitis). Veterinary Pathology Online. 2007. Vol.
44. (5). P. 687 - 690.
29. Ramos A. S., Basrur P. K. Seasonal polymorphism of the adrenal cortex in the male mink.
Canadian Journal of Comparative Medicine. 1972. Vol. 36 Issue 3. P. 249.
30. Reingardienė, D. Toksinis šoko sindromas. GAS. 2002. Tomas.1 (2). P. 4 - 13.
31. Rosol T. J., Yarrington J. T., Latendresse J., & Capen C. C.. Adrenal gland: structure,
function, and mechanisms of toxicity. Toxicologic pathology. 2001. Vol. 29. Issue 1. P. 41 -
48.
32. Samuelson A. Textbook of veterinary histology. Saunders Elsevier. 2007. P. 412 – 414.
33. Schneider J., Lother A., Hein L., Gilsbach R. Chronic cardiac pressure overload induces
adrenal medulla hypertrophy and increased catecholamine synthesis. Basic research in
cardiology. 2011. Vol. 106 Issue 4. P. 591 - 602.
34. Sealander Jr, John A. Effect of environmental temperature and starvation on adrenal glands
of the white-footed mouse. Am. J. Physiol. 1950. Vol. 163. P. 92 - 95.
35. Sjaastad V., Sand O., Hove K. Physiology of domestic animals second edition. 2010. Vol.
804. P. 244 – 249.
36. Smith J. E., Henderson R. Mycotoxins and Animal Foods. 1991. P. 518.
37. Sponarova J., Nyström S. N., Westermark G. T.. AA-amyloidosis can be transferred by
peripheral blood monocytes. PloS one. 2008. Vol. 3 (10). P. 3308.
38. Ulrich-Lai, Y. M., Figueiredo, H. F., Ostrander, M. M., Choi, D. C., Engeland, W. C., &
Herman, J. P. Chronic stress induces adrenal hyperplasia and hypertrophy in a subregion-
specific manner. American Journal of Physiology-Endocrinology And Metabolism Vol. 291.
Issue 5. P. 965 - 973.
39. Woldemeske, M. Amyloidosis in Domestic Animals: Pathology, Pathogenesis, Gross and
Microscopic Lesions and Clinical Findings. 2011. P. 216.
40. Jae H. L., Shaolei Lu Ph.D., Calvin E. Digital Pathology
http://www.brown.edu/Courses/Digital_Path/systemic_path/pulmonary/iph.html prieiga per
internetą 2014 – 01 – 16
41. The joint pathology center http://www.askjpc.org/vspo/show_page.php?id=154 prieiga per
internetą 2014 – 01 – 16
41
42. Nodar S. R. Adrenal gland and paraganglia.
http://www.pathologyoutlines.com/topic/adrenalglandhistology.html prieiga per internetą
2014 – 01 – 16.
43. Kierszenbaum A. L., Tres L. L. Histology and Cell Biology 3rd edition
https://www.inkling.com/read/histology-cell-biology-kierszenbaum-tres-3rd/chapter-
19/adrenal-gland prieiga per internetą 2014 – 01 – 16.