Upload
others
View
2
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
UNIVERZITET U NIŠU
PRIRODNO-MATEMATIČKI FAKULTET
DEPARTMAN ZA BIOLOGIJU I EKOLOGIJU
Milica S. Stanković
Etnobotanička studija, antioksidativna i antimikrobna
aktivnost vrsta iz roda Rosa L. na Vlasinskoj visoravni
MASTER RAD
Niš, 2017.
UNIVERZITET U NIŠU
PRIRODNO-MATEMATIČKI FAKULTET
DEPARTMAN ZA BIOLOGIJU I EKOLOGIJU
Etnobotanička studija, antioksidativna i antimikrobna
aktivnost vrsta iz roda Rosa L. na Vlasinskoj visoravni
MASTER RAD
Kandidat: Mentor:
Milica S. Stanković Prof. dr Vladimir Ranđelović
Br. indeksa 157
Niš, 2017.
UNIVERSITY OF NIŠ
FACULTY SCIENCES AND MATHEMATICS
DEPARTMANT OF BIOLOGY AND ECOLOGY
Ethnobotanical study, antioxidant and antimicrobial
activity species of genus Rosa L. on Vlasina plateau
MASTER THESIS
Candidate: Mentor:
Milica S. Stanković PhD Vladimir Ranđelović
No. of index: 157
Niš, 2017.
ZAHVALNICA
Najsrdačnije se zahvaljujem svom mentoru prof. dr Vladimiru
Ranđeloviću koji mi je omogućio da radim istraživanje svog područja.
Zahvaljujem se na poverenju, strpljenju i razumevanju.
Neizmernu zahvalnost dugujem docentu dr Jeleni Matejić na stručnoj
pomoći tokom laboratorijskih istraživanja, kao i na prijateljskoj potpori da
istrajem u ovom poduhvatu do samog kraja.
Zahvaljujem se i prof. dr Ani Džamić na stručnoj pomoći u Botaničkoj
bašti „Jevremovac“, kao i doc. dr Zorici Stojanović-Radić na saradnji.
Najveću zahvalnost dugujem dragim ljudima oko sebe, a posebno svojoj
porodici bez čije ljubavi i podrške ne bih mogla da ostvarim svoje zamisli i
postanem ovo što sam danas.
Veliko Hvala !!!!!
Ovaj rad posvećujem porodici, s ljubavlju !!!!!
BIOGRAFIJA KANDIDATA
Milica Stanković je rođena 03. avgusta 1991. godine u Surdulici, gde je završila
Osnovnu školu „Vuk Stefanović Karadžić“ 2006. godine. Gimnaziju „Svetozar Marković“,
opšti smer, završila je 2010. godine, takođe u Surdulici. Iste godine upisala je osnovne-
akademske studije Prirodno-matematičkog fakulteta u Nišu, na departmanu za biologiju i
ekologiju. Osnovne studije je završila 2014. godine i stekla zvanje „Biolog“. Školske
2014/2015 je upisala master studije na Prirodno-matematičkom fakultetu, na smeru Biologija.
SAŽETAK
Cilj ovog rada bio je ispitivanje tri vrste rod Rosa L.: R. canina L., R. dumalis L. i R.
corymbifera Borkh. sa Vlasinske visoravni. Etnobotaničko istraživanje je sprovedeno kroz
anketu u kojoj je učestvovalo 104 ispitanika iz 3 naselja koja obuhvataju 45 manjih mahala.
Utvrđeno je da se ove vrste koriste u lečenju prehlade, suvog kašlja, stomačnih tegoba, kao
sredstvo protiv dijareje, kao diuretik i u ishrani. Ekstrakcija biljnog materijala urađena je sa
dva rastvarača, metanolom i etanolom pomoću metode ultrazvučne ekstrakcije.
Spektrofotometrijske metode su korišćene za merenje količine ukupnih fenola, flavonoida i
antioksidativne aktivnosti, a metoda mikrodilucije za određivanje antimikrobne aktivnosti. Za
dobijanje ukupnih fenola korišćena je spektrofotometrijska metoda po Folin-Ciocalteau.
Najveća količina fenola zabeležena je u etanolnom ekstraktiu R. dumalis 9,98±0,009 mg
GA/g, dok je najveća kocentracija flavonoida bila u metanolnom ekstraktu R. corymbifera
0,85±0,002 mg Qu/g. Najviši antioksidativni potencijal imali su metanolni i etanolni ekstrakti
R. dumalis u iznosu od 0,22±0,015 mg/ml i 0,27±0,028 mg/ml, korišćenjem DPPH testa.
Metanolni i etanolni ekstrakti R. dumalis pokazali su najviši antioksidativni potencijal i kod
ABTS testa od 0,42±0,016 mg VitC/g i 0,43±0,051 mg VitC/g. Vrsta R. dumalis se izdvojila
kao najbolji antioksidativni agens u ondnosu na ostale testirane vrste. Sojevi koji su bili
najosetljivi na testirane ekstrakte su Pseudomonas aeruginosa i Enterococcus faecalis.
Testirane vrste iz roda Rosa se mogu koristiti kao jako dobri prirodni antioksidansi i kao
preventivni antimikrobni agensi.
Ključne reči: Rosa canina, R. dumalis, R. corymbifera, etnobotanika, antioksidativna
aktivnost (DPPH, ABTS), fenoli, flavonoidi, antimikrobna aktivnost
ABSTRACT
The aim of this study was to examine three species of Rosa L. genus: R. canina L., R. dumalis
L. and R. corymbifera Borkh. from Vlasina plateau. Ethnobotanical research was done as a
survey which included 104 interviewed people coming from 3 settlements with 45 small
quarters (mahalas). It was determined that the most common conditions threated with this
plants are colds, dry cough, stomachache, diarrhea, as a diuretic and in nutrition. Extraction of
plant material was carried out with two solvents, methanol and ethanol using ultrasound
extraction method. Spectrophotometric methods were used for measuring the amount of total
phenols, flavonoids and antioxidant activity, microdilution method was used for determining
the antimicrobial activity. Folin-Ciocalteau’s spectrophotometric method was used for
obtaining total phenol content. The greatest amount of phenol was observed in the ethanolic
extract of R. dumalis 9.98±0.009 mg GA/g, while the highest levels of flavonoids in the
methanol extract of R. corymbifera 0.85±0.002 mg Qu/g. The highest antioxidative potential
were methanol and ethanol extracts of R. dumalis in the amount of 0.22±0.015 mg/ml and
0.27±0.028 mg/ml, using the DPPH assay.The methanolic and ethanolic extracts of R.
dumalis showed the highest antioxidant effect, with ABTS assay of 0.42±0.016 mg VitC/g
and 0.43±0.051 mg VitC/g. In comparison with all other tested species R. dumalis was the
best antioxidant agent. Microdilution method was used for antimicrobial activity testing.
Pseudomonas aeruginosa and Enterococcus faecalis were the most sensitive strains to the
tested extracts. The tested species of Rosa genus can be used as very good natural
antioxidants as well as preventive antimicrobial agents.
Key words: R. canina, R. dumalis, R. corymbifera, ethnobotany, antioxidant activity (DPPH,
ABTS), phenols, flavonoids, antimicrobial activities
SADRŽAJ:
1. UVOD .................................................................................................................................... 1
1.1. Opšte karakteristike familija Rosaceae ............................................................................ 3
1.2. Antioksidativna aktivnost i antioksidansi ........................................................................ 7
1.3. Antimikrobna aktivnost ................................................................................................. 12
2. CILJ RADA .......................................................................................................................... 16
3. MATERIJAL I METODE .................................................................................................... 17
3.1. Etnobotanička istraživanja ............................................................................................. 17
3.1.1. Geografske odlike Vlasinske visoravni .................................................................. 17
3.1.2. Etnobotanička anketa .............................................................................................. 19
3.2. Hemijske karakteristike ................................................................................................. 22
3.2.1. Priprema ekstrakata ................................................................................................. 22
3.2.2 Analiza ukupnih fenola u ekstraktima ..................................................................... 23
3.2.3. Analiza ukupnih flavonoida u ekstraktima ............................................................. 23
3.3. Antioksidativna aktivnost .............................................................................................. 24
3.3.1. DPPH test ................................................................................................................ 24
3.3.2. ABTS test ................................................................................................................ 24
3.4. Antimikrobna aktivnost ................................................................................................. 24
3.4.1 Testirani mikroorganizmi ......................................................................................... 24
3.4.2 Testiranje antimikrobne aktivnosti .......................................................................... 25
4. REZULTATI I DISKUSIJA ................................................................................................ 27
4.1. Etnofarmakološka upotreba različitih vrsta iz roda Rosa na Vlasinskoj visoravni ....... 27
4.2. Određivanje sadržaja fenola .......................................................................................... 29
4.3. Određivanje sadržaja flavonoida ................................................................................... 31
4.4. DPPH test ...................................................................................................................... 32
4.5. ABTS test ...................................................................................................................... 34
4.6. Antimikrobna aktivnost ................................................................................................. 35
5. ZAKLJUČAK ...................................................................................................................... 39
6. LITERATURA ..................................................................................................................... 41
1
1. UVOD
Vlasinska visoravan je jedna od najzagonetnijih visoravni u Republici Srbiji. Prvi
podaci o visoravni datiraju iz XVIII veka. Netaknuta priroda sa mnogobrojnim izvorima,
bogatom florom i faunom, dobrom klimom i plovećim ostrvima proglašena je za predeo
izuzetnih odlika, koji poseduje brojne endemične vrste kao što su maljava breza, zlatna bukva,
rosulja itd. što visoravni daje dodatnu jedinstvenost.
Slika 1. Vlasinska visoravan
Vegetacija Vlasinske visoravni na prvi pogled deluje jednolično, zbog ogromne
površine obojene u zelenom. Na ovom predelu nalazi se veliki broj različitih biljnih vrsta.
Vegetacija se deli u dva perioda pre i posle stvaranja jezera. Za mnoge od njih dokazano je da
poseduju lekovita dejstva.
U prošlosti teritoriju Vlasinske visoravni prekrivale su bukove šume, danas su one
zamenjene sekundarnom vegetacijom suvih livada tipa Festuco-Nardetum strictae i Dantonio-
Trifolietum velenovskyi (Ranđelović, 1978). Na Čemerniku gde je zemljište veoma kiselo
razvila se acidofilna bukova šuma sa mahovinama (Polytricho formosi-Fagetum).
Potencijalna vegetacija oko rečnih dolina predstavljena je šumama Salix alba i S.
fragilis, one se i danas nalaze oko pritoka Cvetkove i Jarčeve reke. Mada najveća vegetacija u
dolinama reka zbog izlivanja obrasta higrofilna vegetacija dolinskih i močvarnih livada. U
2
dolinskim livadama nalaze se zajednice Deschampsietum caespitosae (Ranđelović, 1978;
Ranđelović i Ranđelović, 1990), Equiseto-Scirpetum silvaticae i Filipenduletum ulmariae.
Oko jezera i njegovih donjih pritoka razvijeni su fragmenti, zajednice sveze Alnion
glutinosae, ovu svezu karakteriše prisustvo vrba Salix aurita, S. pentandra i S.cinerea. Ove
vrste vrba često se nastanjuju i na tresetnim ostrvima gde se mešaju sa maljavom brezom –
Betula pubescens koja je ujedno ugrožena vrsta ovog predela (Ranđelović i Zlatković, 2010).
Zajednice sveze Rumicion balcanicae, Cirision appendiculatae (Ranđelović, 1988) i
Cardamino-Montion naseljavaju izvore i gornje pritoke jezera (Ranđelović i Zlatković, 2010).
U flori Vlasinske visoravni zabeleženo je 944 biljnih vrsta, od toga 217 vrsta pripada
lekovitim biljkama ili ima primenu u fitoterapiji i industrijskoj proizvodnji lekova. Činjenica
da 23% ukupne flore Vlasinske visoravni ima lekovito dejstvo govori koliko je ovo područje
bogato i značajno u daljem istraživanju flore Srbije.
Lekovite biljke su razvrstane u 14 grupa farmakodinamskom analizom. Najveći broj
vrsta obuhvataju droge koje deluju na kardiovaskularni sistem, zatim droge koje deluju na
organe za varenje i droge koje deluju na organe za disanje (Ranđelović i sar., 2002).
Na Vlasinsoj visoravni nalazi se familija Rosaceae sa 42 prestavnika, od toga njih 7
pripadaju divljim ružama: Rosa canina L., R. corymbifera Borkh., R. tomentosa Sm., R.
scabriuscula Sm., R. vosagica Desp., R. rubiginosa L. i R. pendulina L. (Ranđelović i
Zlatković, 2010).
3
1.1. Opšte karakteristike familija Rosaceae
Familija Rosaceae obuhvata žbunove, šiblje ili zeljaste višegodišnje biljke, ređe
jednogodišnje. Listovi biljaka su jednostavni ili složeni, naizmenični sa zaliscima, koji su
srasli sa lisnom drškom, a tokom vremena mogu da otpadnu. Cvetovi aktinomorfni i
hermafroditni, pojedinačni ili grade cvasti u obliku grozda, metlice ili glavice. Cvetni omotač
čine pet čašičnih listića zelene boje, jednostavne građe i pet krunična listića beli ili obojeni,
pri osnovi suženi. Unutar kruničnih listića nalazi se veliki broj prašnika, raspoređenih u dva ili
više krugova. Prašnički konci su slobodni i končasti. Plodnik je građen od jedne ili više
karpela, koje su podcvetne, sredcvetne ili nadcvetne. U plodniku su jedan ili dva anatropna
semena zametka. Plod formiraju u vidu orašice, ahenije, suve koštunice, zbirne orašice i
zbirne koštunice (Josifović, 1972).
Ova familija sadrži oko 100 rodova sa oko 3000 vrsta, koje su kosmopoliti, ali se
najviše nalaze u severnoj hemisferi. U flori Balkanskog poluostrvu nalazi se 188 vrsta, od
kojih je 13 endemita (Tatić i Blečić, 2002).
Familija Rosaceae na osnovu građe plodova i drugih osobina cveta se deli u četiri
podfamilije: Spiraeoideae, Rosoideae, Prunoideae i Maloideae (Tatić i Blečić, 2002).
Rod Rosa
Vrste roda Rosa su listopadni, zimzeleni i poluzimzeleni žbunovi, retko se javljaju u
vidu povijuša. Na stablu i granama nalaze se prave ili povijene bodlje, koje nekada potpuno
odsustvuju. Listovi su spiralno raspoređeni, neparno perasti, sastavljeni od 3-9 listića koji su
po obodu prosto ili dvostruko testerasti, dok su zalisci većinom visoko srasli sa lisnom
petiljkom. Cvetovi pojedinačni ili formiraju cvasti u vidu gronje, grozda i metlice. Cvetni
omotač ima pet čašičnih listića koji ostaju na zrelim podovima ili rano opadaju, i pet
kruničnih listića različitih boja, naročito kod gajenih vrsta. Vrste roda Rosa imaju veliki broj
prašnika i tučkova. Formiraju plodove u vidu pojedinačnih orašica, koje su u donjem delu
obavijene proširenom, mesnatom, unutar dlakavom cvetnom ložom sa kojom formiraju zbirni
plod. Zbirni plod je crven, ružičast ili crn, okrugao ili jajast, sa prstenom na vrhu.
4
Rod Rosa obuhvata oko 400 vrsta koje su rasprostranjene isključivo na severnoj
Hemisferi (Josifović, 1972). Poznat je i veliki broj hibrida, ovog taksonomski izuzetno teškog
i kompleknog roda.
Rosa canina L.
Stablo ove vrste je drvenasto visine do
2,5 m, razgranato, sa brojnim srpastim
bodljama. Listovi spiralno postavljeni,
naspramno perasti sa 7 listića, goli, glatki,
testerasto nazubljeni i eliptičnog oblika. Cvetne
drške su kratke, na kojima se nalaze pojedinačni
cvetovi ili cvasti izgrađene od 3-5 cvetova.
Čašičnih listića ima 5. Lancetastog su oblika,
nakon cvetanja povijeni, kasnije pripijeni uz
plod, ali ubrzo opadaju. Kruničnih listića ima 5,
kraći su od čašičnih, bledoružičaste boje.
Prašnika i tučkova ima više.
Slika 2. Rosa canina
R. canina formira plod u vidu zbirne orašice poznate u narodu kao šipak – šipurak,
crvene boje, veličine 1-2 cm, širokoovalanog oblika.
Stanište: Ova vrsta naseljava svetle delove lišćarskih i četinarskih šuma, livade i
pašnjake.
Nalazište: Veoma rasprostranjena.
Koristi se: Plod– Rosae caninae fructus.
Berba: Crveni, čvršći, nedovoljno zreli plod sakuplja se u septembru i oktobru. Tako
sakupljen plod treba odmah sušiti, na suncu, u sušarama za voće ili na promaji u hladu. Radi
bržeg sušenja pogodno je preseći plod na polovinu. Tamnocrveni, mekan, zreo plod sakuplja
se u novembru i on se upotrebljava odmah.
Sastojci: Plod vrste R. canina bogat je vitaminom C (1-askorbinska i 1-
dehidroaskorbinsko delovanje vitamina C), vitaminom K, manjom količinom kompleksa
5
vitamina B. U masnom ulju orašica ima vitamina E. Takođe, šipurak sadrži i kompleks
flavonoidnih heterozida voćnih kiselina, šećera, pektina, mineralnih materija i tanina
(Kovačević, 2004).
Delovanje: Zasniva se na prisustvu vitamina C i flavonoidnih heterozida.
Primena: Sakupljeni i osušeni plodovi tokom godine koriste se u vidu osvežavajućeg
napitka, čaja i džema. U narodnoj medicini šipak se koristi kao blag diuretik, protiv dijareje,
infektivnih oboljenja, i kao dopunska terapija kod reumatizma i atritisa (Tucakov, 1986).
Rosa dumalis Bechst.
Žbunasta biljka, veličine od 1,5-2 m sa pojedinačnim ili dvema bodljama koje su
široke, lučno savijene i sa povijenim
granama. Listovi R. dumalis imaju 5-7
jajastih listića u osnovi okruglasti na
vrhu tupi ili zašiljeni, goli. Cvetovi
pojedinačni ili grupisani u cvasti.
Čašični listići uglavnom imaju trepljaste
žlezde, a krunični, veći i manji, su
ružičaste boje. Javljaju se dlakavi stubići
koji mogu bit i retko, goli. Ova vrsta
formira okruglast ili jajasto–eliptičan
plod.
Stanište: Kao i R. canina
naseljava svetle lišćarske i četinarske
šume. Može se naći na različitim
tipovima zemljišta: brdovitim delovima i
planinama, na ivici šuma, pašnjacima,
krečnjaku, silikatu i serpentinu. (Kovačević, 2004). Slika 3. Rosa dumalis
Nalazište: Rasprostranjena
Koristi se: Plod – Rosae dumalis fructus.
Berba: Plodovi se sakupljaju u septembru i oktobru.
6
Sastojci: Vitamin C i to 567 mg% suve mase (Jordanov, 1973).
Rosa corymbifera Borkh.
Stabljika vrste R. corymbifera visoka je 1,5-2,5 m sa povijenim granama, i zelenom ili
crvenkastom korom. U osnovi ima srpasto zakrivljene, guste, široke bodlje, koje ponekad
mogu biti i retko raspoređene. Listovi su najčešće zaokrugljeni, jajastog ili eliptičnog oblika.
Sa naličja imaju guste dlake, a na licu su goli ili sa dlakama. Ima ih 7 i ređe imaju pojedinačne
žlezdane čekinje po glavnom nervu.
Dužina listova je 7-9 cm, a lisna drška
je prekrivena gustim dlakama, na kojoj
se ponekad nalaze i male bodlje i
pojedinačne žlezdane trihome. Širina
zalistaka je 0,5 cm dok su nešto širi na
cvetnim drškama. Čašični listići su
lancetasti ili linearni sa dodacima koji
su sa obe stane prekriveni dlakama.
Kada biljka procveta oni se povijaju ka
nazad i opadaju do sazrevanja ploda.
Krunični listići su pojedinačni ili 2-5 u
cvetu, veličine 4-6 cm. Latice su
bledoroze, retko bele. Plodovi ove vrste
su crveni, elipsoidnog do okruglastog
oblika, veliki, dužine 1,5-2,5 cm, a
širine 1-1,5 cm. Slika 4. Rosa corymbifera
Stanište: Naseljavaju planinski pojas do 1000 m nadmorske visine, šume i podnožja
planina.
Nalazište: Rasprostranjena.
Koristi se: Plod – Rosae corymbiferae fructus.
Berba: U septembru i oktobru.
Sastojci: Vitamin C i to 527-709 mg % suve mase (Jordanov, 1973).
7
1.2. Antioksidativna aktivnost i antioksidansi
Mnogi naučnici su radili istraživanja o antioksidansima i njihovim delovanjima na
ljudski organizam, i upravo iz tog razloga postoje i niz različitih definicija šta su antioksidansi
i kako oni deluju. Jedna od najprihvaćenijih definicija, po Halliwellu koja kaže:
„antioksidansi su supstance prisutne u malim koncentracijama u odnosu na supstrat koji se
oksiduje i značajno usporavaju ili sprečavaju oksidaciju tog supstrata.”
Antioksidansi sprečavaju štetne efekte fiziološkog procesa oksidacije u tkivima.
Tokom ovog procesa elektroni se prenose sa oksidacionog sredstva na neki drugi molekul, a
kao posledica ovog prenošenja dovodi do nastanka slobodnih radikala koji imaju jedan ili vise
nesparenih elektrona, što ponovo dovodi do stupanja u lančane reakcije sa drugim molekulima
radi davanja ili preuzimanja elektrona, a kao posledica svega dolazi do oštećenja ćelijskih
struktura (Dimitrijević, 2014).
Antioksidansi svoju aktivnost pokazuju pomoću različitih mehanizama jer imaju
sposobnost da deluju kao:
”hvatači” slobodnih radikala,
donori ili akceptori elektrona,
donori ili akceptori H-atoma peroksil ili hidroksil radikala,
razgrađuju lipidne hidro-perokside,
inhibiraju neke enzime i
redukuju neka jedinjenja.
Podela antioksidanasa može se izvršiti:
1. Na osnovu nivoa i načina delovanja u ljudskom organizmu (Shi i sar., 2001):
preventivni antioksidanti – sprečavaju nastanak slobodnih radikala,
”hvatači” antioksidansi – hvatači slobodnih radikala i
”reparacioni” (fosfolipaze, proteaze, transferaze…) antioksidansi – obnavljaju i
uklanjaju oštećenje vitalnih biomolekula.
8
2. Prema mestu nastajanja (Ruberto i sar., 2007):
endogeni antioksidanti – nastaju u ljudskom organizmu,
egzogeni antioksidanti - unose se putem hrane ili lekova.
3. Prema prirodi i načinu delovanja (Jacob, 1995):
ne-enzimski, metabolički i hranljivi antioksidansi,
endogeni enzimski antioksidansi,
metal vezujući proteini i
fitosupstance i fitonutrijenti.
Veliku ulogu u odbrani organizma ima i grupa prirodnih antioksidanasa – sekundarni
metaboliti u biljkama. U sekundarne metabolite biljaka spadaju biljni polifenoli, sumporna
jedinjena, terpenoidi itd., koji pored antioksidativnih ispoljavaju i antiinflamatorna,
antikancerogena, antimikrobna i druga svojstva. Pored prirodnih antioksidanata postoje i
veštački – sintetički antioksidansi, koji se koriste u prehrambenoj industriji. Preterana
upotreba sintetičkih antioksidanata dovodi do toksičnih dejstava (Moure i sar., 2001). Zbog
toga se danas sve više primenjuju prirodni biljni proizvodi koji su bogati antioksidansima i
intenzivno se istražuju. Dosadašnja istraživanja su pokazala da primena prirodnih
antioksidanasa sprečava pojavu bolesti poput dijabetesa, kancera, Alchajmerove bolesti,
Parkinsonove bolesti, Daunovog sindroma, starenja itd. (Aruoma, 2003).
Fiziološki procesi koji u organizmu funkcionišu neprekidno i čiji je cilj da spreče
štetno delovanje prooksidativnih faktora naziva se antioksidativna zaštita. Sistem
antioksidativne zaštite obuhvata enzimske i ne-enzimske antioksidanse koji deluju na
uklanjanje kiseonika ili smanjenje njegove koncetracije, uklanjanje jona metala, uklanja
superoksidativnih anjona, vodonik peroksida i drugih reaktivnih vrsta kiseonika (Dimitrijević,
2014).
Enzimski sistemi spadaju u primarnu antioksidativnu zaštitu i njih čine: superoksid
dismutaza (SOD), glutation peroksidaza (GPx), katalaza (CAT), glutation reduktaza (GR). U
sistem primarne antioksidativne zaštite spadaju i ne-enzimske supstance: vitamin C, vitamin E
i redukovani glutation (GSH) (Jacobs, 1995; Harris, 1992). Pored primarne postoji i
9
sekundarna antioksidativna zaštita, koju čine jedinjenja niskih molekulskih vrednosti,
različitog porekla, kao što su: tokoferoli, L-askorbinska kiselina, karotenoidi, fenoli i njihove
kiseline, itd. Ova jedinjenja imaju različitu strukturu na osnovu čega ostvaruju svoju aktivnost
u sistemu antioksidativne zaštite (Veličković, 2013).
U sistem sekundarne antioksidativne zaštite ubrajaju se i enzimi koji otklanjaju
oksidativna oštećenja nukleinskih kiselina, lipida i proteina. Polifenoli predstavljaju
najznačajniju grupu sekundarnih metabolita biljaka sa antioksidativnim delovanjem.
Polifenolna jedinjenja se najčešće nalaze u ćelijskom zidu (Guern i sar., 1987), u
epidermalnim i subepidermalnim ćelijama, jer biosinteza polifenolnih jedinjenja zavisi od
svetlosti (Wollenweber, 1994; Machex i sar., 1990). Ova jedinjenja se sintetišu i prilikom
oštećenja biljnih tkiva, infekcije i tretiranja biljaka UV zračenjem (Britton, 1983; Dixson i
Paiva, 1995).
U grupu polifenola spadaju: fenoli, fenolne kiseline, flavonoidi, hinoni, kumarini i
jedinjenja slične strukture (Petrović, 2005).
Dosadašnja istraživanja su pokazala da ekstrakti biljaka koji sadrže polifenole imaju
antiviralna, antioksidativna, antiinflamatorna i antialergijska dejstva (Capasso i sar., 2005).
Tipični fenoli sa antioksidativnim dejstvom su fenolne kiseline i flavonoidi. Fenolne
kiseline su prirodni antioksidansi koje se nalaze u spoljašnim delovima biljaka, naročito u
plodovima, voću i povrću. U biljkama su najzastupljenije kafena, ferulinska i vanilinska
kiselina. Antioksidativni potencijal fenolne komponente duguju svojim redukujućim
svojstvima, što im omogućava važnu ulogu u adsorpciji i neutralizaciji slobodnih radikala
(Čančarević i sar., 2013).
Fenolne kiseline se mogu podeliti u dve grupe (Robbins, 2003):
derivati benzeove kiseline
derivati cimetne kiseline.
Funkcije fenola u biljkama su: odgovor na oštećenja i infekciju, odbijanje herbivora i
sprečavaju širenje patogena (Ranđelović i sar., 2012).
10
Najrasprostranjenija fenolna jedinjena su flavonoidi - prirodna jedinjenja biološkog
porekla, čiji sastav zavisi od starosti i uslova sredine u kojima se biljka nalazi. Njihov skelet
gradi 15 atoma ugljenika (Cook i Sanman, 1996). Veću antioksidativnu aktivnost poseduju
flavonoidi koji imaju više hidroksilnih grupa nego fenolne kiseline (Čančarević i sar., 2013).
Dok se antioksidativna aktivnost smanjuje ukoliko se poveća molekulska masa. Najveća
zastupljenost flavonoida je u perikarpu voća i povrća.
Flavonoidi spadaju u grupu prirodnih antioksidanata i imaju različite funkcije:
inhibiraju oksidaciju lipida – sprečavaju pojavu hroničnih oboljenja i starenja
ćelije,
inhibiraju neke enzimske sisteme,
reaguju sa peroksil radikalom kao vitamin E,
štite biljku od UV zračenja, insekata, temperature i oksidativnog stresa.
Dosadašnja istraživanja pokazuju da su dobri ”hvatači” slobodnih radikala, zbog čeka
imaju značajnu ulogu u farmaceutskoj i prehrambenoj industriji (Veličković, 2013).
Prema Halliwellu i Gutteridgeu 1999 pod slobodnim radikalima označava se svaki
atom molekula, grupa atoma ili molekula sa jednim ili više nesparenih elektrona u svojoj
poslednjoj atomskoj ili molekulskoj orbitali. Taj nespareni elektron dovodi do visoke
nestabilnosti i neselektivne aktivnosti. Radi postizanja stabilne strukture slobodni radikali teže
da spare svoje elektrone ili prisvoje druge elektrone iz okoline.
Organizam je svakodnevno izložen delovanju jonizujućeg zračenja, višku jona
prelaznih metala, koji spadaju u egzogene oksidanse. Pored egzogenih oksidanasa, postoje i
endogeni oksidansi koji nastaju u citosolu, endoplazmatičnom retikulumu, mitohondrijama,
lizozomima i drugim ćelijskim organelama. Ovi oksidansi utiču na stvaranje slobodnih
radikala (Borozan i sar., 2004). U zavisnosti od mesta nalaženja nesparenog elektrona
razlikujemo slobodne radikale: kiseonika, azota, hlora, itd.
Slobodni radikali se nalaze u organizmu u malim količinama i kao takvi su neophodni
za život. Ukoliko dođe do nagomilavanja slobodnih radikala, odnosno ne dolazi do sparivanja
nesparenog elektrona i njihove neutralizacije, dolazi do oštećenja ćelija i različitih oboljenja
11
(srčanog udara, arteroskleroze, reperfuzionih oštećenja i ishemične demencije (Veličković,
2013)).
Nagomilavanje slobodnih radikala u organizmu i nemogućnost organizma da ih
eliminiše ili neutrališe dovodi do stanja koje se naziva oksidativni stres.
Posledice oksidativnog stresa su: bolesti srca, dijabetes, poremećaj bubrega, astma,
upala pluća, reumatoidni artritis, gastrointestinalne bolesti, leukemija, rak dojke, rak rektuma,
očne bolesti, kožne lezije, imunodepresije, bolesti jetre, AIDS, neplodnost, prevremeno
rođenje dece i proces starenja (Pham-Huy i sar., 2008; Valko i sar., 2007; Agarwal i
Prabakaran, 2005; Pourmorad i sar., 2006; O´Donovan i Fernandes, 2004; Dufor i sar., 2007).
Prirodni antioksidansi, vitamin C, fenolna jedinjenja, vitamin E, karotenoidi, su
prisutni u voću i povrću i doprinose u odbrani od oksidativnog stresa (Podsedek, 2007).
Svakodnevni unos prirodnih antioksidanasa ishranom sprečava pojavu oksidativnog stresa.
Uloga antioksidanasa je neutralisanje slobodnih radikala, što pomaže u zaštiti
organizma od različitih bolesti koje su rezultat oštećenja tkiva. Takodje, ove supstance mogu
da sprečavaju ili odlažu oksidaciju lipida i drugih molekula, inhibirajući inicijaciju ili
propagaciju lančanih reakcija oksidacije (Čančarević i sar., 2013).
12
1.3. Antimikrobna aktivnost
Mikroorganizmi obuhvataju heterogenu grupu organizma. Naziv potiče od grčke reči
micros - mali, ne vidljivi golim okom. U mikroorganizme se ubrajaju: bakterije, virusi, alge,
gljive i protozoe.
Zajednička osobina svih mikroorganizma pored mikroskopske veličine jeste: široka
geografska rasprostranjenost, brz rast i razmnožavanje (Simić, 1988).
Najzastupljeniji mikroorganizmi u prirodi su bakterije. To su jednoćelijski organizmi,
veličine 0,5-0,8 µm (Simić, 1988). Naseljavaju razne životne sredine. Mogu se naći u vodi,
vazduhu, zemljištu, u termalnim izvorima, halofitim, kiselim i baznim staništima. Zbog
visoke rasprostranjenosti učestvuju u stvaranju, održavanju i funkcionisanju različitih
ekosistema. Po načinu ishrane mogu biti: saprobi, paraziti, i retko autotrofi. Oblik bakterija
može biti loptast, štapićast, izuvijan i končast (Petrović i sar., 2007).
Najprihvatljivija podela bakterija izvršena je na osnovu građe ćelijskog zida na Gram
pozitivne i Gram negativne bakterije. Gram pozitivne bakterije imaju jednoslojan ćelijski zid
bez lipopolisaharida i boje se ljubičastom bojom. Gram negativne bakterije sadrže višeslojan
ćelijski zid sa lipopolisaharidima i boje se crvenom bojom (Mihajilov-Krstev, 2010).
Streptococcus pyogenes
Gram pozitivna bakterija, loptastog oblika, nepokretna, formira duge ili kratke lance.
Pripadnik serološke grupe A, dijametra 0,5 – 1,0 µm. Raste na krvnom agaru, oko kolonija
javlja se β-hemoliza, S. pyogenes ne raste u baznim uslovima pH 9,6, ukoliko je koncentracija
NaCl 6,5%, 0,1% metilenskog plavog i 40% žuči.
U zdravom organizmu se nalazi u malim količinama, ako se broj kolonija poveća S.
pyogenes postaje patogen za čoveka. Izaziva zapaljenjska oboljenja gornjeg respiratornog
trakta, infekciju kože i potkožnih tkiva, šarlah, septikemička oboljenja, reumatične bolesti i
glomerulonefritis (Karakašević i sar., 1967).
Staphylococcus aureus
Po Gramu se boji pozitivno, bakterija loptastog oblika, koja nema flagele pa je zbog
toga nepokretna. Kod nekih sojeva javlja se kapsula, i takvi sojevi su virulentniji. Raste na
većini hranljivih podloga, može da raste i na podlozi bogatoj NaCl. Prilikom rasta na podlozi
13
formira okrugle, glatke i sjajnje kolonije. Koloniji daje karakterističan pigment, koji može biti
zlatnožuti, svetložuti, boje krema ili bele boje (Grašić, 2016).
S.aureus je patogen za čoveka i izaziva gnojna oboljenja (apces, furunkul, karbunkul),
a ako bakterija uđe u krvotok izaziva oboljenja: meningitis, artritis, stafilokokne sepse itd.
(Petrović, 2007).
Staphylococcus epidermidis
Gram pozitivna bakterija, loptastog oblika, nepokretna. Prilikom rasta na čvrstoj
podlozi ćelije se sakupljaju u grozdovima, formiraju bele kolonije sa ravnim ivicama.
Optimalna temperature od 30 do 37°C, na krvnom agaru ne dovodi do hemolize. Pripadnik je
normalne mikrobiote kože čoveka i životinja.
Prilikom povećanja broja S. epidermidis kod čoveka dovodi do intrahospitalnih
infekcija kao bakterije koje se razvijaju na sistem za drenažu likvora, veštačkim zglobovima,
katetrima itd. (Stojković, 2015).
Enterococcus faecalis
Gram pozitivna bakterija, loptastog oblika, kolonije mogu biti kratki ili dugi lanci.
Nemaju kapsulu, ali postoje sojevi kod kojih se javlja tanka kapsula. Pripadnik je mikrobiote
debelog creva, nalazi se u zemlji, vodi, biljkama.
Izaziva infekcije debelog creva, rana, urinarnog trakta i abdomena (Grašić, 2016).
Escherichia coli
Gram negativna bakterija, koja prilikom razmnožavanja ne formira spore, aerobna i
fakultativno anaerbna, dobro uspeva na svim podlogama, na krvnom agaru raste u vidu
glatkih, sjajnih, konveksnih i priličn ovelikih kolonija, neki sojevi izazivaju β-hemolizu,
optimalna temperature 37°C. Štapićastog oblika, jako pokretna zbog posedovanja flagele, dok
neke poseduju i kapsulu. E. coli vrši fermentaciju mnogih šećera i prilikom fermentacije
oslobađa gas (Karakašević i sar., 1967).
Pripadnik je normalne mikrobiote digestivnog trakta čoveka i životinje. Prisustvo E.
coli u digestivnom traktu omogućava varenje ugljenih hidrata i sintezu vitamin K i B12.
Uglavnom su sojevi bezopasni, a kao patogeni izazivaju oboljenja poput: sepse, neonatalnog
14
meningitisa, urinarne infekcije, infekcije digestivnog trakta i zapaljenje pluća (Stojković,
2015).
Klebsiela pneumonia
Pripada grupi Gram negativnih bakterija. Kratki, zdepasti, prilično debeli štapići,
javljaju se u grupi po dve ili više bakterija zajedno. Oko svake ćelije prisutna je debela
kapsula, sluz, mada postoje sojevi sa tanjom kapsulom, ili bez nje, nepokretne. Raste, formira
kolonije i razmnožava se brzo na običnim bakteriološkim podlogama. Prilikom fermentacije
oslobađaju se gas i kiselina.
Klebsiela pneumoniae izaziva oboljenje tešku pneumoniju koja se često komplikuje sa
plućnim apcesom, izaziva anginu, zapaljenje hroničnog uva, meningitis, moždane apcese i
tromboze sinusa (Karakašević i sar., 1967).
Pseudomonas aeruginosa
Javlja se u obliku štapića, koji su vitki, srednjih dužina, ne produkuje spore, i po
Gramu boji se negativno. Zbog prisustva flagela, od 1 do 3, ređe 5, ovi štapići su izuzetno
pokretni. Raste na svim običnim bakteriološkim podlogama. Na površini podloge prilikom
rasta formira sočne, sivo-žućkaste smeđe kolonije. Ima karakterističan miris koji podseća na
miris lipe. Na krvnom agaru uočava se β-hemoliza. P. aeruginosa ne vrši fermentaciju
nijednog ugljenog hidrata koji se koristi prilikom rutinske prakse.
Kod ljudi ova vrsta bakterija izaziva: infekcije creva, infekcije rana, uočava se plavi
gnoj na površini rane, apces, meningitis, infekciju pupčanog patrljka. Izazivač je poznatog
kožnog oboljenja erythema gangrenosum terebrans. Ukoliko bakterija dospe u krv izaziva
opasnu i često letalnu sepsu (Karakašević i sar., 1967).
Candida albicans
Candida albicans je gljiva iz grupe kvasaca. Ćelije su okrugle ili ovalne blastospore
veličine 2 – 4 µm. Ova gljiva raste brzo i obilno na običnim bakteriološkim i mikološkim
podlogama, u aerobnim uslovima. Optimalna temperature za rast C. albicans je 25°C, mada
dobro uspeva i na temperaturi od 37°C. Na čvrstim podlogama raste u vidu kolonija koje su
okrugle, glatke, vlažne i sjajne. Prečnik kolonija iznosi 1 – 2 mm, imaju kiselast miris kvasca.
15
Dekstrozu i maltozu fermentiše u kiselinu i gas, saharozu samo u kiseline, dok laktozu ne
fermentiše.
U organizmu čoveka često naseljava usnu šupljinu, grlo, vaginu, creva i kožu, i izaziva
kandidijazu. C. albicans javlja se i u vidu superinfekcije nakon ili prilikom unošenja
antibiotika (Karakašević i sar., 1967).
16
2. CILJ RADA
Statistika pokazuje da je iz godine u godini primena sintetičkih lekova u porastu.
Bakterije koje su se ranije lečile antibioticima postaju sve rezistentnije i samim tim postoji
potreba za većim brojem različitih lekova čija je primena postala masovna.
Cilj istraživanja u ovom radu je povratak tradicionalnoj medicini, tradicionalnom
načinu pripreme i upotrebe različitih vrsta iz roda Rosa sa područja Vlasinske visoravni, kako
bi se na prirodan način prevazišla upotreba sintetičkih lekova.
Osnovni ciljevi rada se mogu predstaviti u nekoliko celina:
Ispitivanje lokalnog stanovništva o upotrebi divljih ruža na Vlasinskoj visoravni;
Priprema ekstrakаta metodom ultrazvučne ekstrakcije;
Određivanje ukupne količine polifenola u ekstraktima;
Određivanje ukupne količine flavonoida u ekstraktima;
Utvrđivanje antioksidativne aktivnosti ekstrakata korišćenjem DPPH i ABTS testova
Utvrđivanje antimikrobne aktivnosti ekstrakata vrsta R. dumalis, R. canina i R.
coymbifera.
17
3. MATERIJAL I METODE
3.1. Etnobotanička istraživanja
3.1.1. Geografske odlike Vlasinske visoravni
Vlasinska visoravan nalazi se na krajnjem jugoistoku Srbije, na 20-ak km od Bugarske
granice. Jedna je od najrasprostiranijih i najviših visoravni u Srbiji. Do Vlasinske visoravni
može se doći iz dva pravca: iz Vladičinog Hana preko Surdulice ili iz pravca Vlasotinca preko
Crne Trave (Petrović, 2013). Smeštena između visokih planina Rodopskog masiva: Bukove
glave na istoku, Čemernika na zapadu, Plane na severu i Vardenika na jugu, sa nadmorskom
visinom od 1600 do 1800 m. Najviši vrh Vlasinske visoravni, Veliki Strešer nalazi se na 1875
m n.v., najveća površina visoravni nalazi se na visini od 1200 m n.v. koja je ujedno i najniža
tačka Vlasinske visoravni nastala za vreme tercijera (Ranđelović i Zlatković, 2010).
Površinski sloj visoravni uglavnom je tanak humus, nastao raspadanjem tla i organskih
sastojaka koji su bili na njemu. Istraživanja čuvenog profesora Jovana Cvijića pokazuju da je
na dnu visoravni nekada bilo jezero, koje je zbog klimatsih promena, erozivnim nanosima i
muljem postajalo sve pliće, i formiralo Vlasinsko blato (Cvetković, 1985).
Vlasinska visoravan naziv dobija prema današnjem akumulacinom jezeru (Randjelović
i Zlatković, 2010).
Godine 1949 u centralnom delu Vlasinske visoravni započinje izgradnja drugog po
veličini akumulacionog jezera u našoj zemlji, koje se takođe ubraja u najviše veštačke
akumulacije Balkanskog poluostrva. Na mestu gde se sužavalo pomenuto Vlasinsko blato,
odnosno prelazilo u korito reke Vlasine i polako oticalo, sagrađena je zemljana brana i upravo
je na taj način formirano jezero čije se punjenje završava 1954. godine (Cvijić, 1896). Dužina
obale iznosi 132,5 km i sitno je razuđena.
Planinski masivi koji okružuju visoravan bogati su izvorima koji formiraju pritoke,
rečice i reke koje se ulivaju u jezero. Najveći vodotoci Vlasinskog jezera: Bratašnica, Murina,
Jarčeva i Dejanova reka (Petrović, 2013).
Najveća pritoka Vlasinskog jezera sa zapadne strane je Bratašnica, izvire ispod Kule
na Čemerniku. Kula, Veliki i Mali Čemernik bogati su izvorima koji se slivaju u Manožinu
reku i Čemernicu, a zatim u Bratašnicu, oko kojih se razvijaju hidro i mezofilne vegetacije.
18
Pored Bratašnice u veće pritoke jezera sa zapadne strane spadaju Cvetkova reka i
Manojlovica. Jarčeva reka predstavlja najveću pritoku jezera sa južne strane, izvire ispod
Pandžinog groba i sakuplja sve izvore sa Vardenika, oko nje i njenih pritoka formira se
tresavska vegetacija. Najveća pritoka Vlasinskog blata bila je Murina reka. Veći deo ove reke
potopljen je prilikom akumulacije, ali i danas ona je najveća pritoka istočne strane jezera u
kojoj se slivaju svi izvori sa Bukove Glave, na ušću Murine reke u jezeru formira se bogata
sfagnumska vegetacija (Ranđelović i Zlatković, 2010).
Formiranjem Vlasinskog jezera potopljena je najveća tresava Balkanskog poluostrva.
Posledica stagnacije vode i niske temperature sprečava potpuna razlaganja uginulih
biljnih delova, čije nagomilavanje dovodi do stvaranja tresetnog zemljišta. Tresetno zemljište
predstavlja najrasprostiranije zemljište na Vlasinskoj visoravni. Površina nekadašnje tresave
iznosila je oko 500 ha (Katić, Košanin, 1910). Danas delovi tresave koji nisu potopljeni
zauzimaju 30 ha debljine 1 – 3,5 m. Nakon punjenja jezera slojevi potopljenih tresava su se
otkidali sa dna i izdizali na površini jezera formirajući tresetna ostrva. Najveća površina
izdignutog treseta smestila se na obali jezera, jedan deo je naseo na plitko dno jezera ili
plivaju na vodi. Dok je najveći deo treseta ostao potopljen na dnu jezera (Tešić, i sar., 1979).
Najveća tresetno ostrvo u jezeru je Mobi Dik, sa površinom od 2 hektara.
Klimatske prilike
Zbog položaja i nadmorske visine klima Vlasinske visoravni je dosta surova (Košanin,
1910). Leta su prohladna, a zime dosta hladne. U toku leta temperature prelazi i 30°C, zbog
postojanja dotoka taloga od Južnog Pomoravlja, padavine su oskudne (Petrović, 2013).
Srednja godišnja temperatura pre potapanja tresave akumulacijom iznosila je 6,4°C,
najtopliji mesec avgust sa srednjom mesečnom temperaturom 16,1°C, dok je najhladniji
mesec bio januar sa temperaturom 3,4°C. Tokom vegetacije vrednost temperature bila je
13,6°C. Najveće količine padavine bile su maja i juna, kao i u periodu vegetacije odnosno
novembra, prosečna srednja godišnja količina padavina iznosila je 838 mm, a za vreme
vegetacije 342 mm. Nakon akumulacije dolazi do promene klime, zbog velike količine vode.
Srednja godišnja temperatura se smanjuje i iznosi 5,7°C, a prosečna količina padavina takođe
opada na 722,9 mm. Avgust ostaje najtopiji mesec sa temperaturom koja je opala na 14,7°C i
januar kao najhladniji mesec sa temperaturom -4°C. Temperatura u vegetacijskom periodu
19
znatno je niža 12,5°C, a srednja količina padavina iznosi 309,1 mm. Vlažnost vazduha iznosi
81,6%, a u vegetacijskom period 79,9% (Ranđelović i Zlatković, 2010).
3.1.2. Etnobotanička anketa
Vlasinska visoravan je predeo izuzetnih odlika sa specifičnom klimom, raznovrsnim
biljnim i životinjskim svetom, na čijim padinama se nalaze tri velika naselja (Slika 6) –
Vlasina Rid, Vlasina Okruglica i Vlasina Stojkovićeva sa brojnim mahalama (Tabela 1).
Nalazi se u jugoistočnoj Srbiji, na teritoriji opštine Surdulica na 30 km od doline Južne
Morave, sa koordinatama 42° 42′ 26.6″ N, 22° 20′ 32.37″ E.
Slika 5. Položaj Vlasinskog jezera Slika 6. Naselja na Vlasinskoj visoravni
Anketirano je lokalno stanovništvo iz 3 veća naselja koja su podeljena na 45 manjih mahala.
20
Tabela 1. Spisak mahala (bliži lokalitet).
Dalji lokalitet Bliži lokalitet
Vlasina Okruglica
Braništari
Okruglica
Šundina mahala
Ulazna
Čipaci
Đorina mahala
Ivanova mahala
Jarčeva mahala
Koljandini
Lučina mahala
Pejina mahala
Radojina mahala
Cakina mahala
Čubrina mahala
Dimina mahala
Damjaničovi
Daškova mahala
Đidini
Vlasina Stojkovićeva Kurdini
Radenkovi
Uroševi
Čikina mahala
Draškovi
Dražina mahala
Marina mahala
Perine barake
Savina mahala
Simina mahala
Skela
Albanci
Čičina mahala
Gadžina mahala
Milenkova mahala
Andrejinci
Vlasina Rid
Đošini
Jančina mahala
Pepeljaci
Velkova mahala
Lujinci
Rid
Strahinjini
Stevančeva mahala
Mandžina mahala
Raninci
Prestojčeva
21
Područje istraživanja je specifično po svim aspektima demografskog razvoja.
Karakteriše ga ekstremno raseljavanje u toku druge polovine XX veka i početkom XXI veka
sa permanentnim smanjenjem broja stanovnika. Ovi trendovi su doveli do negativnih promena
u demografskoj strukturi stanovništva, tako da danas na Vlasinskoj visoravni živi pretežno
staračko stanovništvo uglavnom iznad 60 godina starosti (Tabela 2).
Tabela 2. Demografski prikaz kretanja broja stanovnika na Vlasinskoj visoravni za
period 1948 – 2011.
Naselja Broj stanovnika
1948 1953 1961 1971 1981 1991 2002 2011
Vlasina Okruglica 1686 1852 1576 1180 666 281 163 128
Vlasina Rid 2669 2689 1945 1186 641 426 276 157
Vlasina Stojkovićeva 1359 1279 1084 764 489 284 252 164
U svim posećenim mahalama stanovništvo ispod 20 godina je u manjini, jer se
uglavnom zbog školovanja odseljava do najbližih većih mesta i tamo ostaje – Surdulica,
Vladičin Han, Vranje itd. Migracija mladog stanovništva iz planinskih naselja ukazuje na
potencijalnu opasnost od zaborava i gubljenja tradicionalnih podataka o korišćenju biljaka u
medicinske svrhe i njihovoj upotrebi u budućnosti.
Stanovništvo u istraživanom području bavi se uglavnom voćarstvom i poljoprivredom.
Pretežno stanovništvo je srpskog porekla, koje govori srpskim jezikom tj. specifičnim
dijalektom za ovo područje.
Etnobotanička istraživanja zasnivaju se na informacijama sakupljanim u toku
istraživanja u periodu od 18.07.2016 do 03.09.2016. Istraživanja su rađena na osnovu
prikupljenih podataka i informacijama o stavovima i mišljenjima ispitanika uz pomoć
anketnog upitnika o korišćenju divljih ruža na Vlasinskoj visoravni i njenoj primeni u
tradicionalnoj medicini.
U anketi su učestvovala 104 ispitanika lokalnog stanovništva, različite starosne dobi i
obrazovnog statusa. Ispitanici su bili svesni značaja istraživanja i saglasni da daju odgovore
tokom istraživanja u trajanju oko dva meseca. Upitnik koji je korišćen tokom istraživanja
obuhvatao je sledeća pitanja: naziv lokaliteta, pol, godine, obrazovni nivo, da li koriste divlje
ruže, koji deo biljke se primenjuje, na koji način pripremiti biljku i etnofarmakološka
upotreba (za koje bolesti se koristi).
22
Stepen tačnosti (FL – fidelity level) je koeficijent primenjen za poznate i priznate
bolesti ili oboljenja (Sarma i Devi, 2015). To je odnos dobijenih podataka i informacija od
ispitanika o korišćenju biljnih vrsta u određenu svrhu (Np) i ukupnog broja podataka o
korišćenju biljke za lečenje bilo koje bolesti (N). Stepen tačnosti se izražava pomoću sledeće
formule: FL (%) = Np/N x 100.
3.2. Hemijske karakteristike
3.2.1. Priprema ekstrakata
Biljni materijal korišćen u ovom radu je sakupljen i determinisan od strane prof. dr
Vladimira Ranđelovića na Vlasinskoj visoravni. Vaučeri se nalaze u herbarijumu Prirodno-
matematičkog fakulteta u Nišu (HMN) (Tabela 3).
Tabela 3. Vaučerski brojevi za vrste R. corymbifera, R. canina i R. dumalis.
Naziv vrste Dalji
lokalitet Bliži lokalitet
Bliži
lokalitet 1
Datum
branja
Vaučerski
brojevi
Rosa corymbifera Borkh. Vlasina Ušće
Cvetkove reke međe 29.9.2015. 12441
Rosa canina L. Vlasina Đerdap međe 29.9.2015. 12442
Rosa dumalis Bechst. Vlasina Ušće
Cvetkove reke pored puta 29.9.2015. 12443
Sveža cvetna loža (25 g) je očišćena od orašica i samlevena u blenderu. Usitnjeni
materijal je preliven sa 150 ml rastvarača – metanol i etanol (96%). Elnermajeri sa svežom
cvetnom ložom i rastvaračem svake biljne vrste ekstrahovani su u ultrazvučnom kupatilu sat
vremena. Nakon toga su ostavljeni 24 h na tamnom mestu. Poslednjeg sata je ekstrakcija
vršena ponovo pomoću ultrazvučnog kupatila. Posle filtracije (filter papir Whatman No1)
vršeno je uparavanje ekstrakta do suva pomoću vakuum uparivača (Büchi Waterbath B-48).
Suvi ekstrakti se stavljaju u bočice i čuvaju na tamnom i hladnom mestu. Pre pakovanja
ekstrakta u bočice, vrši se merenje mase praznih bočica, a nakon pakovanja i mase punih
bočica. Razlika između masa bočica je količina dobijenog ekstrakta završene ekstrakcije od
25 g biljnog materijala i 150 ml rastvarača.
23
a) b) c)
Slika 7. Plodovi: a) Rosa dumalis b) Rosa canina c) Rosa corymbifera
3.2.2 Analiza ukupnih fenola u ekstraktima
Prisustvo i količina fenola u ekstraktima je utvrđena i određena pomoću
spektrofotometrijske metode upotrebom Folin-Ciocalteu-ovog reagensa (Singleton i sar.,
1999).
Pomešano je 1,5 ml Folin-Ciocalteovog reagensa i 0,3 ml metanolnog tj. etanolnog
ekstrakta i ostavljeno 6 minuta u mraku. Smeši je nakon 6 minuta dodato 1,2 ml Na2CO3.
Sadržaj je izmešan pomoću vorteksa. Epruvete se zatvaraju i drže 2 h u mraku na sobnoj
temperaturi. Slepa proba umesto uzorka sadrži destilovanu vodu. Na spektofotometru se
nakon 2 h, vrši merenje apsorbancije na talasnoj dužini od 740 nm u tri ponavljanja. Na
osnovu kalibracione krive za galnu kiselinu izračunava se ukupna količina fenola u uzorku
(mg ekvivalenata galne kiseline po g suvog ekstrakta). Sva merenja su vršena u tri
ponavljanja.
3.2.3. Analiza ukupnih flavonoida u ekstraktima
Spektrofotometrijski je određen ukupan sadržaj flavonoida u uzorcima na osnovu
metode Woisky i Salationa 1998.
Uzorak se priprema mešanjem 0,6 ml ekstrakta i 2,58 ml smeše 80% C2H5OH, 10%
Al(NO3)3x9H2O i 1M C2H3KO2. Tako pripremljen uzorak sipa se u epruvete, koje se
zatvaraju i ostavljaju 40 minuta u mraku na sobnoj temperaturi. Nakon toga vrši se merenje
apsorbancije u tri ponavljanja na talasnoj dužini od 415 nm. Ukupna količina flavonoida
24
dobija se na osnovu kalibracione krive za kvercetin hidrat. Rezultati se izražavaju kao mg
ekvivalenta kvercetina po g suvog ekstrakta. Sva merenja su vršena u tri ponavljanja.
3.3. Antioksidativna aktivnost
3.3.1. DPPH test
Pomoću DPPH testa po Blois-u 1958 određena je antioksidativna aktivnost uzoraka.
DPPH test kao reagens koristi stabilan slobodan radikal 1,1-difenil-2-pikrihidrazil. Smeša od
0,3 ml ekstrakta i 2,7 ml metanolnog rastvora DPPH ostavljena je u mraku na sobnoj
temperaturi 30 minuta. Nakon toga spektofotometrijski je merena apsorbancija DPPH na
talasnoj dužini od 517 nm. Svako merenje je urađeno u tri ponavljanja.
Smanjenje apsorbancije DPPH se izračunava u % pomoću formule:
% smanjenja apsorbancije (na 517 nm) = (A0-A1) x 100/ A0
A0 – srednja vrednost apsorbancije slepe probe;
A1 – srednja vrednost apsorbancije uzorka.
3.3.2. ABTS test
ABTS je spektrofotometrijska metoda koja je rađena po Miller i Rice-Evans, 1997. Za
određivanje antioksidativne aktivnosti koristi se smeša od 19,2 mg ABTS-a i 5 ml rastvora
K2O8S2. Smeša se ostavlja 12-16 sati u mraku na sobnoj temperaturi. Zatim se 0,075 ml
ekstrakta dodaje u 3 ml ABTS rastvora. Ostavlja se da stoji 30 minuta u vodenom kupatilu na
temperaturi od 30°C. Merenje se vrši na talasnoj dužini od 734 nm, i svi uzorci su mereni u tri
ponavljanja.
3.4. Antimikrobna aktivnost
3.4.1 Testirani mikroorganizmi
Prilikom ispitivanja antimikrobnog dejstva u ovom radu testirane su Gram pozitivne,
Gram negativne bakterije i gljiva, uzete iz mikrobiološke laboratorije Prirodno matematičkog
fakulteta u Nišu. U ispitivanju je korišćeno 7 bakterija i jedna gljiva. Testirani bakterijski
sojevi i gljiva prikazani su u Tabeli 4.
25
Tabela 4. Testirani bakterijski sojevi i gljiva.
Gram pozitivne bakterije Gram negativne bakterije Gljiva
Staphylococcus aureus
(ATCC 6538)
Klebsiella pneumonia
(ATCC 10031)
Candida albicans
(ATCC 24433)
Staphylococcus epidermidis
(ATCC 12228)
Escherichia coli
(ATCC 8739)
Streptococcus pyogenes
(ATCC 19615)
Pseudomonas aeruginosa
(ATCC 9027)
Enterococcus faecalis
(ATCC 19433)
3.4.2 Testiranje antimikrobne aktivnosti
Testiranje antimikrobne aktivnosti u ovom radu vršeno je metodom mikrodilucije. Od
kultura: S. aureus, S. pyogenes, E. faecalis, E. coli, K. pneumonia, P. aeruginosa i C.
albicans. Za ovaj eksperiment napravljena je suspenzija. U sterilni fiziološki rastvor unošene
su bakterijske ćelije i gljiva iz prekonoćne kulture i podešavanjem turbiditeta dobijene
suspenzije na standardnu vrednost od 0,5 McFarland-a, što približno iznosi 1 – 1,5 x 108
ćelija/ml. Standardizacija turbiditeta urađena je korišćenjem McFarland densitometrom
(DEM-l Biosan).
Mikrodiluciona metoda rađena je na mikrotitarskim pločama. Standardna mikrotitar
ploča sadrži 96 ležišta u 12 kolona i 8 redova volumena 0,1 ml. U svakom ležištu nalazi se
različita koncentracija ekstrakta/antibiotika. Inokulacija se obavlja uz pomoć mehanizovanog
dozera. Nakon inikulacije manuelno ili uz pomoć automatizovanog uređaja izračunava se
najmanja koncentracija ekstrakta/antibiotika koja je sprečila rast bakterija što predstavlja
minimalnu inhibitornu koncentraciju (MIK).
26
Svaki ekstrakt divljih ruža rastvoren je u rastvaraču dimetil sulfoksidu (DMSO), a
zatim je svaki ekstrakt testiran kao potencijalni antimikrobni agens. Početna koncentracija
ekstrakta bila je 30 mg/ml, rastvarana u 100% DMSO, a finalna koncentracija ćelija u svakom
ležištu iznosila je ~ 106 CFU/ml. Kao negativna kontrola korišćen je 10% DMSO, jer je u
svakom bunarčiću to bila njegova finalna koncentracija. Raspon testiranih koncentracija bio je
30,00 – 0,015 mg/ml.
Mikrotitar ploče inkubirane su na 37°C, u trajanju od 24 h. Mikrobiološki rast je
očitavan pomoću vodenog rastvora trifenil tetrazolijum hlorida (TTC). Najniža koncentracija
pri kojoj nije bilo zamućenja, odnosno vidljivog rasta uzeta je za minimalnu inhibitornu
koncentraciju (MIK).
Ova metoda ima prednost za razliku od drugih metoda kojim se određuje antimikrobna
aktivnost zbog: mogućnosti ponavljanja i upotrebe manje količina reagensa (Reller i sar.,
2009).
27
4. REZULTATI I DISKUSIJA
U skladu sa postavljenim ciljevima istraživanja, rad u svojoj strukturi sadrži i analizu
ukupnog sadržaja fenola, flavonoida, antioksidativnu i antimikrobnu aktivnost ekstrakata tri
vrste iz roda Rosa L. – R. dumalis, R. corymbifera i R.canina. Prinos testiranih ekstrakata
nalazi se u Tabeli 5. Pored laboratorijskog rada urađeno je i etnobotaničko istraživanje
primene ovih vrsta u tradicionalnom lečenju na Vlasinskoj visoravni.
Tabela 5. Prinosi ekstrakata.
Vrste MeOH EtOH
Rosa dumalis 3,164g 4,734g
Rosa canina 3,206g 4,290g
Rosa corymbifera 3,316g 3,452g
Slika 8. Prinos ekstrakata
4.1. Etnofarmakološka upotreba različitih vrsta iz roda Rosa na Vlasinskoj
visoravni
U Tabeli 6 prikazani su demografski podaci o ispitanicima (pol, godine, obrazovanje)
sa Vlasinske visoravni. U istraživanju je učestvovalo 104 ispitanika, od toga 58 žena
(55,76%) i 46 muškaraca (44,23%). Ispitanici između 50 i 80 godina (70,18%) imaju najveće
učešće u anketiranju, a zatim grupa ispitanika od 30 do 50 godina (18,26%). Većinu ispitanika
28
čine ljudi srednjeg obrazovnog profila 57 (54,80%), a zatim stanovnici sa završenom
osmogodišnjom školom 16 (15,38%).
Tabela 6. Demografski podaci o ispitanicina sa Vlasinske visoravni.
Pol Godine Obrazovanje
Muški 46 (44,23%) 20-30 8 (7,62%) Nepismen 7 (6,73%)
Ženski 58 (55,76%) 30-40 5 (4,80%) Osnovna škola 14 (13,46%)
40-50 14 (13,46%) Osmogodišnja škola 16 (15,38%)
50-60 30 (28,84%) Srednja škola 57 (54,80%)
60-70 27 (25,96%) Viša škola 4 (3,84%)
70-80 16 (15,38%) Fakultet 6 (5,76%)
80-100 5 (4,80%)
Broj ispitanika 104
Podaci dobijeni tokom etnobotaničkog istraživanja na području Vlasinske visoravni
nalaze se u Tabeli 7.
Tabela 7. Podaci dobijeni u tokom etnobotaničkog istraživanja.
Način upotrebe broj (%) Etnofarmakološka upotreba broj (%)
Čaj 104 100% Protiv prehlade 103 99,03%
Džem 70 67,30% U ishrani 71 68,26%
Sok 16 15,38% Stomahik 3 2,88%
Vino 1 0,96% Suvi kašalj 9 8,65%
Protiv dijareje 16 15,38%
Diuretik 3 2,88%
Protiv blage dečije dijareje 4 3,84%
Na osnovu dobijenih podataka može se primetiti da se plodovi divlje ruže koriste za
lečenje: prehlade, suvog kašlja, stomačnih tegoba, kao sredstvo protiv dijareje kod odraslih i
dece, i kao diuretik. Lokalno stanovništvo koristi plodove divlje ruže i u ishrani: kao čaj,
džem i vino. Plod divlje ruže na Vlasinskoj visoravni najčešće se koristi u lečenju prehlade
103 ispitanika (99,03%). Svi ispitanici koriste plod šipurka za spremanje čajeva. Sa udelom
od 67,30% dospeva na drugo mesto korišćenje u vidu džema. Na trećem mestu sa ukupnim
procentom od 15,38% koristi se za pripremu sokova. U toku anketiranja ispitanika došlo se do
podatka da samo jedna (0,96%) od 104 osobe šipurak koristi za proizvodnju vina, što je
ranijih godina bilo mnogo zastupljenije. Takođe, zanimljiv je podatak da samo jedna osoba
pored šipurka koristi i list divlje ruže za pripremu čaja. Ovaj podatak o upotrebi vina i listova
divljih ruža potkrepljuje činjenicu o iseljavanju mladog stanovništva sa Vlasinske visoravni,
29
što dovodi do gubljenja znanja o korišćenja lekovitih biljaka u tradicionalne medicinske
svrhe.
Tokom prikupljanja podataka i informacija o korišćenju ploda divljih ruža, došlo se do
saznanja o načinu pripreme: čaja, džema, soka i vina.
Čaj – U odgovarajućem periodu sakupiti zrele plodove i osušiti ih u provetrenoj
prostoriji. U 200 ml ključale vode staviti kašiku sušenog ploda, ostaviti da odstoji 5 min,
procediti, ohladiti i popiti. Neki od ispitanika maceriraju plod, a zatim ga preliju
proključanom vodom.
Džem – Očistiti plod šipurka, i kuvati sve dok plod ne omekša. Nakon toga vruću
smesu ispasirati. Dobijenu gustu tečnost nakon pasiranja,procediti kroz što gušću gazu ili
svilenu tkaninu, kako bi otklonili delovi ploda. Vratiti na vatru, kuvati, i dodati šećer, nastaviti
kuvanje dok se ne dobije željena gustina.
Sok – Skuvati 3 kg šipurka u 5 l vode. Nakon kuvanja procediti, dodati šećer (onoliko
kg koliko l tečnosti ima nakon ceđenja). Na 1 l tečnosti staviti 1 limontus. Nakon stavljanja
šećera prokuvati sok. Ukoliko se sok ne prokuva onda staviti konzervans. Sok sakupiti u
vruće flaše, i ostaviti tako preko noći na toplom.
Vino – Očistiti i oprati šipurak, staviti u veću teglu i preliti ohlađenom, prokuvanom
vodom sa šećerom. Teglu dobro zatvoriti i ostaviti neko vreme da stoji na sobnoj temperaturi.
Fermentacija se odvija sama bez ikakvih dodataka. Nakon toga procediti tečnost, sipati u flaše
i zatvoriti plutanim zatvaračem.
4.2. Određivanje sadržaja fenola
Najčešće korišćena metoda za merenje sadržaja polifenola u biljnom materijalu je analiza
ukupnih fenolnih jedinjenja pomoću Folin-Ciocalteu reagensa (Singleton i Rossi, 1965). Ovaj
reagens u blago baznoj sredini daje kompleks tamno plave boje čija se apsorbanca meri na
spektrofotometru na talasnoj dužini od 740 nm. Koncentracija ukupnih polifenola u uzorcima
izražava se u ekvivalentima galne kiseline i dobija se tako što su koncentracije dobijene na
osnovu kalibracione krive galne kiseline pomnožene sa faktorom razblaženja.
30
Tabela 8. Ukupan sadržaj fenola u ekstraktima ploda R. dumalis, R. canina i R. corymbifera.
Sadržaj ukupnih fenola
(740 nm)
Tip
rastvarača
Testirana koncentracija (0,1 mg/ml)
mg GA/g
Rosa dumalis MeOH 9,81±0,009
EtOH 9,98±0,012
Rosa canina MeOH 2,32±0,010
EtOH 6,18±0,004
Rosa corymbifera MeOH 3,61±0,002
EtOH 6,71±0,019
BHA 63,31±0,001
Vitamin C 40,91±0,002
Za sve vrednosti računata je srednja vrednost za tri ponavljana ±standardna devijacija.
Upoređivanjem uzoraka svih vrsta u etanolnom i metanolnom rastvaraču, utvrđeno je
da je sadržaj ukupnih fenola više dobijen ultrazvučnom ekstrakcijom u etanolnom rastvaraču
nego u metanolnom (Tabela 8).
Ako se uporede dobijeni rezultati za ove tri vrste vidi se da ekstrakti R. caninae imaju
najmanji sadržaj fenola u oba rastvarača, zatim sledi R. corymbifera, dok R. dumalis ima
najveći sadržaj fenola.
Kao kontrola za utvrđivanje fenola u uzorcima korišćeni su antioksidansi BHA i
vitamin C.
Rezultati za ukupan sadržaj fenola u različitim ekstraktima R. canina (vodeni ekstrakt,
50% etanolni ekstrakt i 70% etanolni ekstrakt) kreću se između 55,4 – 69,4 mg GAE/g suve
materije (GAE; mg galne kiseline po g suve materije). Najveći ukupni sadržaj fenola dobijen
je u 50% etanolnom rastvaraču – 69,4 mg GAE/g suve materije, dok je najniži nivo pronađen
u vodenom ekstraktu 55,4 mg GAE/g suve materije (Ivanov i sar., 2016). U radu Ercisli i
Yilmanz 2011 ukupan sadržaj R. caninae iznosio je 102 mg GAE/g suve materije, dok je
rezultat ukupnog sadržaja fenola za R. dumalis bio niži i iznosio je 91 mg GAE/g suve
materije. Svi ovi rezultati ukazuju na to da R. canina predstavlja najznačajniji prirodni izvor
antioksidanata. Analizirajući rezultate istraživanja Demir i sar., 2014. godine može se
uporediti ukupan sadržaj fenola R. canina (31,08±0,19 mg GAE/g suve materije) i R. dumalis
36,86±3,88 mg GAE/g suve materije).
31
Slika 9. Ukupan sadržaj fenola
4.3. Određivanje sadržaja flavonoida
Flavonoidi pripadaju grupi biljnih fenola, poseduju biološke aktivnosti kao što su:
antiinflamatorne, antialergijske, antitumorne i antivirusne, a povoljno utiču i na
kardiovaskularni sistem. Često prisustvo visokog sadržaja flavonoida u ekstraktima, pokazuje
jaku antioksidativnu aktivnost čija je uloga otklanjanje slobodnih radikala.
Metoda koja je korišćena za utvrđivanje ukupnih flavonoida u ovom radu daje
kompleks žute boje čija se apsorbanca meri na spektofotometru na talasnoj dužini od 415 nm.
Koncentracija ukupnih flavonoida u uzorcima izražava se preko ekvivalenta kvercetin hidrata
(Qu, mg kvercetin hidrata po g) i dobija se tako što su koncentracije dobijene na osnovu
kalibracione krive kvercetin hidrata pomnožene sa faktorom razblaženja (Matejić, 2013).
Tabela 9. Ukupan sadržaj flavonoida u ekstraktima ploda R. dumalis, R. canina i R.
corymbifera.
Sadržaj ukupnih flavonoida
(415 nm)
Tip
rastvarača
Testirana koncentracija (0,1 mg/ml)
mg Qu/g
Rosa dumalis MeOH 0,59±0,000
EtOH 0,85±0,001
Rosa canina MeOH 0,59±0,002
EtOH 0,59±0,000
Rosa corymbifera MeOH 0,85±0,002
EtOH 0,66±0,000
BHA _
Vitamin C _
32
Za sve vrednosti računata je srednja vrednost za tri ponavljanja±standardna devijacija.
Na osnovu podataka (Tabela 9) može se zaključiti da se sadržaj ukupnih flavonoida
metanolnih ekstrakata kreće u opsegu od 0,59 do 0,85 mg Qu/g. Na osnovu dobijenih
rezultata putem spektrofotometrije dolazi se do zaključka da metanolni ekstrakti vrste R.
dumalis i ekstrakti vrste R. canina imaju istu vrednost koja iznosi 0,59 mg Qu/g. Metanolni
ekstrakti vrste R. corymbifera imaju najveću vrednost sadržaja flavonoida u iznosu od
0,85±0,002 mg Qu/g, a samim tim i najbolju aktivnost.
Sadržaj ukupnih flavonoida etanolnih ekstrakata kreće se u opsegu od 0,59 do 0,85 mg
Qu/g. U okviru roda Rose najveći sadržaj flavonoida prisutan je u ekstraktu ploda vrste R.
dumalis, dok je najmanje flavonoida prisutno u ekstraktu vrste R.canina.
Tumačenjem rezultata može se zaključiti sledeće: R. canina u metanolnom i
etanolnom ekstraktu ima vrednost sadržaja flavonoida 0,59 mg Qu/g.. Takođe, vrsta R.
corymbifera u metanolnom ekstraktu pokazuje najveću vrednost sadržaja flavonoida u iznosu
od 0,85±0,002 mg Qu/g, dok u etanolnom ekstraktu sadržaj ukupnih flavonoida ima najmanju
vrednost od 0,66±0,000 mg Qu/g.
Czyzowska i sar. 2014. godine ispitivali su ukupni sadržaj flavonoida u vinu nakon
fermentacije, dobijenom od vrste R. canina. Sadržaj flavonoida iznosio je 3008±134 mg/l.
Analizirajući rezultate istraživanja Demir i sar., 2014. godine može se uporediti ukupan
sadržaj flavonoida R. canina (9,48±0,94 mg rutina/g suve materije) sa R. dumalis (10,48±0,47
mg rutina/g suve materije). Ukupan sadržaj flavonoida (Hajslova i sar., 2017) u metanolnom
ekstraktu R. dumalis iznosio je od 0-25% što spada u izuzetno nisku koncentraciju u odnosu
na vrste koje su ispitivane u ovom istraživanju. U radu Oprica i sar. 2016 pokazano je da je
najveća količina flavonoida u metanolnom ekstraktu pulpe i semena R. corymbifere bila 4,1
mg CE/g suve materije i 1,3 mg CE/g suve materije (CE, mg katehina po g suve materije).
4.4. DPPH test
DPPH je veoma brza, osetljiva i jednostavna in vitro metoda za određivanje
antioksidativnog kapaciteta biljnih ekstrakata (Pourmorad i sar., 2006). Metoda je veoma
pogodna jer se za kratko vreme može analizirati veliki broj uzoraka, i detektovati
antioksidanti u malim koncentracijama. Rezultati antioksidativne aktivnosti prikazani su u
Tabeli 10.
33
Tabela 10. Smanjenje apsorbance DPPH u ekstraktima R. dumalis, R. canina i R.
corymbifera.
DPPH test (517 nm) Tip
rastvarača IC50 (mg/ml)
Rosa dumalis MeOH 0,22±0,015
EtOH 0,27±0,028
Rosa canina MeOH 0,54±0,006
EtOH 0,64±0,038
Rosa corymbifera MeOH 0,50±0,002
EtOH 0,77±0,014
BHA 0,09±0.018
Vitamin C 0,05±0.002
Za sve vrednosti računata je srednja vrednost za tri ponavljana±standardna devijacija.
DPPH ima slobodan elektron na azotu zbog čega molekul ne formira dimere. Ova
delokalizacija omogućava pojavu ljubičaste boje, prilikom primanja jednog protona od nekog
antioksidansa, redukuje se u hidrazin i dolazi do pojave žute boje i do smanjenja intenziteta
apsorbancije. To smanjenje je proporcionalno antioksidativnoj aktivnosti supstance.
Dobijeni rezultati se tumače pomoću vrednosti ”efikasne koncentracije“ – EC50 tj. IC50
– koncentracije antioksidanata koja je potrebna da smanji koncentraciju DPPH radikala za
50%. Najniža IC50 vrednost odgovara najvišoj slobodno-radikalskoj aktivnosti.
Rezultati testiranih uzoraka DPPH testom pokazuju da metanolni ekstrakti imaju veću
antioksidativnu aktivnost u odnosu na etanolne ekstrakte.
Na osnovu rezultata predstavljenih u Tabeli 10 može se uočiti da najbolju
antoksidativnu aktivnost od metanolnih ekstrakata ima vrsta R. dumalis (0,22±0,015 mg/ml),
zatim slede R. corymbifera (0,50±0,002 mg/ml) i R. canina (0,54±0,006 mg/ml).
Od etanolnih ekstrakata R. dumalis je ponovo imala najbolju aktivnost (0,27±0,028
mg/ml), dok je antioksidativni kapacitet R. canina (0,64±0,038 mg/ml) veći od R. corymbifera
(0,77±0,014 mg/ml).
Kao kontrola za određivanje antioksidativne aktivnosti koriste se antioksidansi BHA
(3-tert-butil-4-hidroksianizol) i vitamin C.
34
Na osnovu literaturnih podataka nađenoje da su Ivanov i sar. 2016. godine ustanovili
da antioksidativna aktivnost u 50% i 70% etanolnom ekstraktu R. canina iznosi 295,0 ± 1,0
mM TE/g (TE, mg troloksa po g suve materije)., i 286,4 ± 2,9 mM TE/g suve materije.
Njihovo istraživanje vrste R. canina u Bugarskoj pokazuje njenu veliku primenu u ishrani i
biljnim kozmetičkim preparatima. Metodom DPPH testa Czyzowska i sar. 2014. godine su
utvrdili antioksidativnu aktivnost vina dobijenog od R. canina i dobili vrednost od 8,6±0,5
mg/L. Demir i sar. 2014. godine su ispitivali antioksidativnu aktivnost metanolnog ekstrakta i
dobili vrednost od 27,90±5,60 µg/mL za R. caninu i 181,45±2,80 µg/mL za R. dumalis. U
istraživanju iz 2017. godine Češke naučnice Hajslove i sar. su utvrdile da antioksidativna
aktivnost metanolnoog ekstrakta ploda R. dumalis iznosi 76-100%, odnosno pokazuje visok
antioksidativni kapacitet. Metodom DPPH testa Oprica i sar. 2016. godine, u Rumuniji su
testirali antioksidativnu aktivnost pulpe R. corymbifere i dobijaju vrednosti u opsegu između
8,31% i 19,31%.
4.5. ABTS test
Pored DPPH testa za određivanje antioksidativne aktivnosti koristi se i ABTS test.
ABTS test takođe ima ulogu prikupljanja slobodnih radikala. Dobro se rastvara u vodi i
organskim rastvaračima. Veoma je precizan ukoliko se u uzorku nalazi antocijanin.
U uzorcima antioksidativna aktivnost se izražava u ekvivalentima vitamina C (VitC,
mg vitamin C po g) i dobija se tako što su koncentracije dobijene na osnovu kalibracione
krive vitamina C pomnožene sa faktorom razblaženja.
Tabela 11. Određivanje antioksidativne aktivnosti pomoću ABTS test-a u ekstraktima
ploda R. dumalis, R. canina i R. corymbifera.
ABTS test (734nm) Tip rastvarača Testirana koncentracija (0,1 mg/ml)
mg VitC/g
Rosa dumalis MeOH 0,42±0,016
EtOH 0,43±0,051
Rosa canina MeOH 0,09±0,000
EtOH 0,20±0,001
Rosa corymbifera MeOH 0,13±0,003
EtOH 0,34±0,008
BHA 2,66±0,005
Vitamin C _
Za sve vrednosti računata je srednja vrednost za tri ponavljana±standardna devijacija.
35
Antioksidativna aktivnost metanolnih ekstrakata kreće se u opsegu od 0,09 do 0,42 mg
VitC/g. Najbolja aktivnost u ispitivanim vrstama roda Rosa zabeležena je u ekstraktu vrste R.
dumalis, a najslabija u ekstraktima vrste R. canina.
Antioksidativna aktivnost etanolnih ekstrakata kreće se u opsegu od 0,20 do 0,43 mg
VitC/g. Najbolja aktivnost u ispitivanim vrstama roda Rosa zabeležena je u ekstraktu vrste R.
dumalis, a najslabija u ekstraktima vrste R. canina.
Poređenjem dobijenih rezultata primećuje se da veću aktivnost imaju etanolni ekstrakti
u odnosu na metanolne ekstrakte (Tabela 11).
Najbolji slobodno radikalski kapacitet dobijen pomoću metode ABTS testa pokazuje
ekstrakt biljne vrste R. dumalis u etanolnom rastvaraču čija je vrednost iznosila 0,43±0,051
mg VitC/g (Tabela 11), dok je najslabiju aktivnost imao metanolni ekstrakt biljne vrste R.
canina čija je vrednost iznosila 0,09±0,000 mg VitC/g (Tabela 11).
Kao kontrola za određivanje antioksidativne aktivnosti korišćen je standardni
antioksidans BHA (3-tert-butil-4-hidroksianizol).
Ivanov i sar. 2016. godine su dokazali da antioksidativna aktivnost metodom ABTS
test u 50% i 70% etanolnom ekstraktu R. canine iznosi 368,40 ± 3,0 mM TE/g dw i 358,2 ±
5,4 mM TE/g suve materije,dok u destilovanoj vodi ima najnizu vrednost i iznosi 313,1 ± 4,5
mM TE/g suve materije. Antioksidativna aktivnost u vinu iz R. canine iznosi 13,5±0,6 mg/L
(Czyzowska i sar. 2014). Pored DPPH test Demir i sar. 2014. godine, ispitivali su i
antioksidativnu aktivnost metanolnih ekstrakata metodom ABTS testom i dobijaju iznos od
35,51±0,00 µmol TE/g suve materije za R. canina i 35,53±0,04 µmol TE/g suve materije za R.
dumalis.
4.6. Antimikrobna aktivnost
Rezultati dobijena na osnovu testova za određivanja antimikrobne aktivnosti dati su u
Tabeli 12. Analizom antimikrobne aktivnosti metanolnih i etanolnih ekstrakata ispitivanih
vrsta R. dumalis, R. canina i R. corymbifere na testirane mikroorganizme, ustanovljeno je da
je etanolni ekstrakt R. canina pokazao najbolju antimikrobnu aktivnost. Od metanolnih
ekstrakata najefikasniji je ekstrakt R. corymbifera, dok je metanolni ekstrakt R. dumalis
pokazao najslabije rezultate (Tabela 12).
36
Metanolni ekstrakti R. dumalis najbolje je delovao na sojeve S. pyogenes i E. faecalis
dok je od etanolni ekstrakt ove vrste najefikasnije delovao protiv bakterija S. aureus, S.
epidermidis i P. aeruginosa.
Oba ekstrakta R. canina su pokazali najbolju antimikrobnu aktivnost na soj P.
aeruginosa. Rezistentnost prema ekstraktima R. canine pokazali su sojevi E. coli i K.
pneumonia. Metanolni ekstrakti su imali bolju aktivnost na sojeve S. aureus, E. fecalis i P.
aeruginosa, dok su sojevi S. pyogenes, E. fecalis i S. epidermidis bili osetljiviji na etanolni
ekstrakt.
Kod vrste R. corymbifere etanolni ekstrakti su imali jače dejstvo u odnosu na
metanolne ekstrakte. U nižim koncentracijama su inhibitorno delovali na sojeve S. pyogenosa,
E. faecalis, S. epidermidis i P. aeruginosa. Najjaču antimikrobnu aktivnost poseduje
metanolni ekstrakt vrste R. corymbifere na soj S. pyogenes (7,5 mg/ml).
Rezultati dobijeni u ovom radu su pokazali da su Gram negativne bakterije bile
rezistentnije u odnosu na Gram pozitivne. Razlog tome je specifična građe ćelijskog zida
Gram negativnih bakterija.
Najveću rezistentnost na testirane ekstrakte pokazuju sojevi E. coli i K. pneumonia, a
najmanju bakterija P. aeruginosa. Osetljivost na ove ekstrakte su pokazale i E. faecalis kao i
S. pyogenes.
U radu je ispitivano i delovanje ekstrakata na gljivu C. albicans koja se pokazala
rezistentnosnom na njihovu primenu.
Poređenjem dobijenih rezultata dobijene za antimikrobnu aktivnost ekstrakata sa
standardnim antibioticima, uočava se da je aktivnost ekstrakata bila znatno niža u odnosu na
antibiotike.
Na osnovu svih istraživanja i dobijenih rezultata može se zaključiti da su ekstrakti R.
dumalis, R. canine i R. corymbifere pokazali jaču antioksidativnu aktivnost u odnosu na
antimikrobnu aktivnost. Takođe je primećena i bolja antimikrobna aktivnost etanolnih
ekstrakata u odnosu na metanolne ekstrakte.
Istraživanja Ercisli i Yilamz 2011. godine pokazuju da metanolni ekstrakti različitih
vrsta roda Rosa pokazuju veliku antibakterijsku aktivnost. Metanolni ekstrakt R. canina
inhibirao je rast E. faecalis u disk difuzionoj metodi sa 10 mm inhibitorne zone dok su sojevi
E .coli, S. aureus i K. pneumonia bile rezistentne na ovaj ekstrakt. Ekstrakt R. dumalis
37
inhibirao je rast K. pneumonia, gde je veličina inhibitorne zone bila12 mm, dok na rast sojeva
E. coli, S. aureus i E. faecalis nije uticao. Vrednosti minimalne inhibitorne koncentracije u
njihovom istraživanju određene mikrodilucionom metodom kreću se od 7,81 – 250 µg/ml.
Vrednost MIK za E. coli iznosi 250 µg/ml,a za S. aureus i K. pneumoniae je 125 µg/ml, dok
je za E. faecalis 7,81 µg/ml.
38
Tabela 12 .Antimikrobna aktivnost ekstrakta R. dumalis, R. canine i R. corymbifere.
Rosa (mg/ml) S. aureus S. pyogenes E. faecalis S. epidermidis E. eoli K. pneumoniae P. aeruginosa C.albicans
R. dumalis MeOH 30,00 15,00 15,00 30,00 30,00 30,00 30,00 30,00
EtOH 15,00 30,00 30,00 15,00 30,00 30,00 15,00 /
R. canina MeOH 15,00 30,00 15,00 30,00 / / 15,00 /
EtOH 30,00 15,00 15,00 15,00 / 30,00 7,50 30,00
R. corymbifera MeOH 30,00 7,50 15,00 30,00 / / 15,00 30,00
EtOH 30,00 15,00 15,00 15,00 / 30,00 15,00 30,00
Hloramfenikol
(µg/ml) / 0,39 0,19 0,39 0,19 0,78 0,39 0,39 /
Nistatin
(µg/ml) / / / / / / / / 0,09
39
5. ZAKLJUČAK
Na osnovu istraživanja i dobijenih rezultata možemo zaključiti sledeće:
Broj stanovnika na Vlasinskoj visoravni iz godine u godinu se rapidno smanjuje.
Stanovnici Vlasinske visoravni koriste plod divljih ruža za čaj, džem, sok, vino, u
ishrani, ali i za lečenje.
Poznata oboljenja koja se leče plodom divljih ruža su: prehlada, suvi kašalj, stomačne
tegobe, dijareja kod dece i odraslih, a koristi se i kao diuretik.
Utvrđeno je da je sadržaj ukupnih fenola bio veći u etanolnim nego u metanolnim
ekstraktima vrsta Rosa canina, R. dumalis i R. corymbifera. Najveći sadržaj fenola
imali su ekstrakti R. dumalis, a najmanji ekstrakti R. canina.
Količina flavonoida u svim ekstraktima je bila niska. Veći sadržaj flavonoida bilo je u
etanolnim nego u metanolnim ekstraktima testiranih vrsta. Najveći sadržaj flavonoida
od etanolnih ekstrakata ima vrsta R. dumalis, zatim R. corymbifera i na kraju R.
canina, dok kod metanolnih R. corymbifera, dok R. canina i R. dumalis imaju
približno istu količinu flavonoida.
Antioksidativna aktivnost testirana DPPH testom pokazuje da metanolni ekstrakti
imaju veću antioksidativnu aktivnost u odnosu na etanolne ekstrakte. Najbolju
antioksidativnu aktivnost od metanolnih ekstrakata imala je vrsta R. dumalis, zatim R.
corymbifera i na kraju R. canina. Od etanolnih ekstrakata R. dumalis je bio najjači
antioksidans, zatim R. canina, a dok se kao najslabiji antioksidans pokazao ekstrakt R.
corymbifera.
40
Antioksidativna aktivnost testirana ABTS testom pokazuje veću aktivnost etanolnih u
odnosu na metanolne ekstrakte.
Najbolju antioksidativnu aktivnost od metanolnih ekstrakata imala je vrsta R. dumalis,
zatim R. corymbifera i na kraju R. canina. Najbolju antoksidativnu aktivnost od
etanolnih ekstrakata posedovala je vrsta R. dumalis, zatim R. corymbifera i na kraju R.
canina. U ovom testiranju R. canina se pokazala kao najslabija.
Veću antimikrobnu aktivnost pokazali su etanolni ekstrakti u odnosu na metanolne
ekstrakte.
U prisustvo ekstrakata R. canina, R. dumalis i R. corymbifera najotporniji
mikroorganizmi su bili sojevi E. coli i K. pneumonia, kao i gljiva C. albicans.
Najosetljivija na testirane ekstrakte bila je bakterija P. aeruginosa.
Na osnovu svega navedenog možemo zaključiti da se vrste iz roda Rosa (R. dumalis,
R. canina i R. corymbifera) mogu koristiti kao prirodni antioksidansi, odnosno da je
potvrđena njihova tradicionalna primena na Vlasinskoj visoravni u lečenju i ishrani.
Rezultati dobijeni u ovom radu mogu poslužiti kao smernica za dalja
etnofarmakološka istraživanja i u drugim delovima zemlje.
41
6. LITERATURA
Agarwal, A., Prabakaran, S.A., 2005: Mechanism, measurement and prevention of oxidative
stress in male reproductive physiology. - Indian Jurnal of Experimental Biology 43: 963-974.
Aruoma, O.I., 2003: Methodological considerations for characterizing potential antioxidant
actions of bioactive components in plant foods. - Mutation Research, 9-20: 523-524.
Blois, M.S.,1958: Antioxidant determination by the use of stabile free radical. - Nature 181:
1199-1200.
Borozan, S.Z., Gađanski-Omerović, G.N., Stajković, S.S., 2004: Effects of ionizing radiation
on antioxidant system in human erythrocytes. - Central European Journal of Occupational
and Environmental Health 10(1): 12-7.
Britton, G., 1983: The biochemistry of natural pigments. Cambridge University Press. - Cam-
bridge. UK.
Čančarević, A., Bugarski, B., Šavikin, K., Zdunić, G., 2013: Biološka aktivnost vrste Thymus
vulgaris i Thyimus serpyllum i njihovo korišćenje u etnomedicini. - Lekovite sirovine 33: 3-
17.
Capasso, F., Gaginella, T.S., Grandolini, G., Izzo, A.A., 2005: Fitoterapija. Priručnik biljne
medicine, Prometej. Novi Sad.
Cook, N.C., Samman, S., 1996: Flavonoids-Chemistry, metabolism, cardioprotective effects,
and dietary sources. Nutritional Biochemistry 7: 66-76.
Cvetković, B., 1985: Vlasinske hidroelektrane godine uspeha - Nova Jugoslavija, Vranje.
Cvijić, J., 1896: Izvori, tresave i vodopadi u istočnoj Srbiji, - Glas Srpske Kraljevske Akad.,
LI, 18: 11-22. Beograd.
Czyzowska, A., Klewicka, E., Pogorezelski, E., Nowak, A., 2014: Polyphenols, vitamin C and
antioxidant activity in winw from Rosa canina L. Ande Rosa rugosa Thunb. – Journal of
Food Composition and Analysis.
42
Demir, N., Yildiz, O., Alpaslan, M., Hayaloglu, A.A., 2014: Evaluation of volatiles, phenolic
compounds and antioxidant activities of Rose hip (Rosa L.) fruits in Turkey – LWT – Food
science and Technology (57): 126-133.
Dimitrijević, D., 2014: Analiza hemijskog sastava i antioksidativne aktivnosti ekstrakata duda
(Morus spp., Moraceae), PhD thesis, - Prirodno-matematički fakultet. Univerzitet u Nišu.
Dixon, R.A., Paiva, N.L., 1995: Stress-induced phenylpropanoid metabolism. - Plant Cell, 7:
1085-1097.
Dufor, D., Pichette, A., Mshvildadze, V., Bradette-Hebert, M., Lavoie, S., Longtion, A.,
Laprise, C., Legault, J., 2007: Antioxidant, anti-inflammatory and anticancer activities of
methanolic extracts from Ledum groenlandicum. - Retizius. Jurnal of Ethnopharmacol 111:
22-28.
Ercisli, S. i Yilmaz, S.O., 2011: Antibacterial and antioxidant activity of fruits of some rose
species from Turkey. – Romanian Biotechnological Letters 6(4): 6407-6411.
Grašić, Lj., 2016: Antimikrobna svojstva etarskog ulja biljnih vrsta Peucedanum L., Master
thesis, - Prirodno-matematički fakultet, Univerzitet u Nišu.
Guern, J., Renaudin, J.P., Brown, S.C., 1987: The compartmentation of secondary metabolites
in plant cell cultures, in : Cell culture in phytochemistry. Constabel, F., Vasil, I.K., (Eds.),
Academic Press, London, UK, 43-76.
Hajslova, J., Bhave, A., Schulzova, V., Chmelarova, H., Mrnka, L., 2017: Assessment of Rose
hip basedon the content of their biologically active compounds – Journal of food and drug
analysis 1-10.
Halliwell, B., Guteridge, J.M.C., 1999: Free radicals in biology and medicine. - Clarendon
Press, Oxford.
Harris, E.D., 1992: Regulation of antioxidant enzymes. - Jurnal of Nutrition 122: 625-626.
https://tools.wmflabs.org/geohack/geohack.php?pagename=Vlasinsko_jezero¶ms=42_42
_26.60_N_22_20_32.37_E_type:waterbody_region:CS
www.geocities.ws/surdulica_com/slike/karta1.jpg
43
https://www.google.rs/search?q=vlasinska+visoravan&espv=2&source=lnms&tbm=isch&sa=
X&ved=0ahUKEwiX6--
O1LrTAhUCP5oKHeq1DC0Q_AUIBigB&biw=1366&bih=613#imgrc=9s-iRwf8YUwzOM:
https://www.google.rs/search?q=vlasinska+visoravan&espv=2&source=lnms&tbm=isch&sa=
X&ved=0ahUKEwiX6--
O1LrTAhUCP5oKHeq1DC0Q_AUIBigB&biw=1366&bih=613#tbm=isch&q=karta+vlasinsk
og+jezera&imgrc=WLrTTJzchBCSOM:
Ivanov, I., Taneva, I., Petkova, N., Dimov, I., Denev, P., 2016: Characterization of rosa hip
(Rosa canina L.) fruits extracts and evaluation of their in vitro antioxidant activity – Journal
of Pharmacognosy and Phytochemistry 5(2): 35-38.
Йорданов, Д. (ед.), 1963-1986: Флора на НП България, I-VIII. Издателство на
БАН.София.
Jacob, R.A., 1995: The integrated antioxidant system. - Nutrition Research 15: 755-766.
Jacob, R.A., 1995: The integrated antioxidant system. - Nutrition Research 15: 755-766.
Josifović, M., 1972: IV Flora SR srbije - SANU. Beograd.
Karakašević, B., Aleraj, D., 1967: Priručnik standardnih metoda za mikrobiološki rutinski rad.
- Medicinska knjiga. Beograd.
Katić, D., 1910: Vlasinska tresava i njezina prošlost, Spomenik Srpske Kraljevske Akademije,
prvi razred, 50(8): 14-56. Beograd.
Košanin, N., 1910: Vlasinska biljnografska studija. - Glas Srpske Kraljevske Akademije,
Beograd, 81: 86-186.
Kovačević, N., 2004: Osnovi farmakognozije.Treće izdanje - Institut za farmakognoziju.
Farmaceutski fakultet Univerzitet u Beogradu. Srpska škola knjiga. Beograd
Leposavić, G.,2008: Patološka fiziologija - Farmaceutski fakultet. Beograd.
Macheix, J.J., Fleuriet, A., Billot, J.,1990: Fruit phenolics. CRC Press. Boca Raton. FL.
Matejić, J., 2013: Biološka aktivnost etarskih ulja i ekstrakata odabranih vrsta iz familije
Apiaceae, PhD thesis, - Biološki fakultet, Univerzitet u Beogradu.
44
Mihajlov-Krstev, T., 2008: Radna sveska iz Mikrobiologije. Univerzitet u Nišu. - Prirodno-
matematički fakultet, Odsek za biologiju i ekologiju. Niš.
Miller, N., Rice-Evans, C., 1997: Factors infuencing the antioxidant activity determined by
the ABTS radical cation assay. - Free Radical Research 26: 195-199.
Moure A., Cruz J.M., Franco D., Dominguez J.M., Sineiro J., Dominguez H., Nunez M.J.,
Parajo, J.C., 2001: Natural antioxidants from residual sources. - Food Chemistry, 72: 145-171.
O´donoval, D.J., Fernandes, C.J., 2004: Free radicals and diseasesin premature infants. -
Antioxidants & Redox Signaling 6: 169-176.
Oprica, L., Bucsa C., Zamfirache. M.M:, 2016: Evaluation of some phytochemical
constituents and the antioxidant activity in six Rose hips species collected from different
altitude of suceava district. Analele Științifice ale Universității „Alexandru Ioan Cuza”.
Petrović, D., 2013: Uporedni pregled močvarne vegetacije na slatinama Južne Srbije i
Vlasinskoj visoravni, Master thesis, - Prirodno-matematički fakultet, Niš.
Petrović, O., Knežević, P., Simeunović, J., 2007: Mikrobiologija. Univerzitet u Novom Sadu,
-Prirodno-matematički fakultet, Departman za biologiju i ekologiju. Novi Sad.
Pham-Huy, L.A., He, H., Pham-Huy, C., 2008: Free radicals, antioxidants in disease and
health. International - Jurnal of Biomedical Science 4: 89-96.
Podsedek, A., 2007: Natural antioxidants and antioxidant capacity of Brassica vegetables. -
LTW-Food Science and Technology 40: 1-11.
Pourmoard, F., Hosseinimehr, S.J., Shahabimajd, N., 2006: Antioxidant activity, phenol and
flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants African. - Journal of
Biotechnology 5: 1142-1145.
Pourmorad, F., Hosseinimehr, S.J., Shahabimajd, N., 2006: Antioxidant activity, phenol and
flavonoid contents of some selected Iranian medicinal plants – African Jurnal of
Biotechnology, 5(11): 1142-1145.
Ranđelović, N., 1978: Fitocenološko ekološke karakteristike brdskih travnjaka jugoistočne
Srbije, PhD thesis, Prirodoslovno-matematički fakultet, Univerzitet u Zagrebu.
45
Ranđelović, N., 1988: Biocenoze visokih zeleni i silikatnih točila u subalpskom region
planina jugoistočne Srbije. IV Kongres ekologija Jugoslavije. -Zbornik izvoda saopštenja:
330. Ohrid.
Ranđelović, N., Ranđelović, V., 1990: Fitocenoza Caricetum rostrato-vesicariae W. Koch
1926. u planinskim predelima Vlasine. Naučni skup ” Populacija, vrsta i biocenoza” povodom
80 godina rođenja profesora Dr Živka Slavnića zbornik rezimea: 67. Sarajevo.
Ranđelović, V., Matejić, J., Mitić, Z., 2012: Praktikum iz sistematike i ekologije lekovitih
biljaka. - Grafičko izdavačko preduzeće PUNTA i Biološko društvo „ Dr Sava Petrović“, Niš.
Ranđelović, V., Zlatković, B., 2010: Flora i vegetacija Vlasinske visoravni. - Prirodno-
matematički fakultet. Niš.
Reller, L.B., Weinstein, M., Jorgensen, J.H., Ferraro, M.J., 2009: Antimicrobial susceptibility
testing: Areview of general principles and contemporary practices – Clinical infection
diseases 49(11): 1749-1755.
Robbins, R.J., 2003: Phenolic acidis in foods. An overiver of analytical methodology. - Jurnal
of Agriculture and Food Chemistry 51: 2866-2887.
Ruberto G., Randa A. Daquino C., Amico V., 2007: Polyphenol constituents and antioxidant
activity of grape pomace extracts from five Siciliand red grape cultivars. - Food Chem., 100:
203-210.
Sarma, R., Devi,R., 2015: Ethopharmacological survey of Garcinia pedunculata Roxb. Fruit
in six different district of Assam, India. Int. J. Pharm. Sci. Invent. 4: 20-28.
Shi H., Noguchi N., Niki E.,2001: Introducing natural antioxidants, U: Antioxidants in food
Practical applications, Pokorny J., Yanishlieva N., Gordon M., Woodhead Publishing
Limited, EDS., Cambridge, England, 22-70.
Simić, D., 1988: Mikrobiologija I. - Izdavač IRO Naučna knjiga. Beograd.
Singlenton, V.L., Orthofer, R., Lamuela-Raventos, R.M., 1999: Analysis of total phenols and
other oxidation substrates and antioxidants by means of Folin-Ciocalteu reagen. – Methods in
Enzimology 299:152-178.
46
Singlenton, V.L., Rossi, J.A., 1965: Colorimetry of total phenolics with phosphomolybdic-
phosphotungstic acid reagents. - American Journal of Enology and Viticulture 16(48): 144-
158.
Stojković, M., 2015: Antimikrobna aktivnost metanolnih, etil acetatnih, acetonskih i vodenih
ekstrakata odabranih vrsta Eryngium, Master thesis, - Prirodno- matematički fakultet, Niš.
Tatić, V., Blečić, V., 2002: Sistematika i filogenija viših biljaka. Drugo izdanje. - Zavod za
udžbenike i nastavna sredstva. Beograd.
Tešić, Ž., Gigov, A., Bogdanović, , M., Milić, Č., (1979): Tresava Srbije. Zborn. rad. Geograf.
Inst. „ Jovan Cvijić“, 31: 19-64. Beograd.
Tucakov, J., 1986: Lečenje biljem. Izdavačka radna organizacija ”Rad“. Beograd.
Valko, M., Leibfritz, D., Moncol, J., Cronin, M.T.D., Maruz, M., Telser, J., 2000: Free
radicals and antioxidants in normal physiological functions and human disease. The
International -Journal of Biochemistry and cell Biology 39: 44-84.
Veličković, J., 2013: Hemijska analiza i antioksidativna aktivnost ekstrakata odabranih biljnih
vrsta bogatih fenolnim jedinjenjima, PhD thesis. - Prirodno-matematički fakultet, Univerzitet
u Nišu.
Woisky, R., Salation, A., 1998: Analysis of propolis: some parameters and procedures for
chemicalquality control. - Journal of Apicultural Research 37: 99-105.
Wollenweber, E., 1994: Flavones and flavonols. In: Harborne, J.B. (ed.): The flavonoides:
advances in research since 1986. - Chapman & Pharmaceutical Bulletin 48(9): 1367-1369.
ПРИРОДНO - MАТЕМАТИЧКИ ФАКУЛТЕТ
НИШ
КЉУЧНА ДОКУМЕНТАЦИЈСКА ИНФОРМАЦИЈА
Редни број, РБР:
Идентификациони број, ИБР:
Тип документације, ТД: Mонографска
Тип записа, ТЗ: Tекстуални / графички
Врста рада, ВР: Mастер рад
Аутор, АУ: Милица Станковић
Ментор, МН: Владимир Ранђеловић
Наслов рада, НР: Етноботаничка студија, антиоксидативна и антимикробна активност
врста из рода Rosa L. на Власинској висоравни
Језик публикације, ЈП: Српски
Језик извода, ЈИ: Енглески
Земља публиковања, ЗП: Р. Србија
Уже географско подручје, УГП: Р. Србија
Година, ГО: 2017.
Издавач, ИЗ: Ауторски репринт
Место и адреса, МА: Ниш, Вишеградска 33.
Физички опис рада, ФО: (поглавља/страна/ цитата/табела/слика/графика/прилога)
53 странa, 12 табелa, 9 сликa
Научна област, НО: Биологија
Научна дисциплина, НД: Систематика и екологија лековитих билјака
Предметна одредница/Кључне речи, ПО: R. canina, R. dumalis, R. corymbifera, етноботаника, антиоксидативна
akтивност (DPPH, ABTS), феноли, флавоноиди, антимикробна активност
УДК 58:579.6(551.574+551.4.034)(497.11)
58:542.943(551.574.41+5.51.4.034)(497.11)
Чува се, ЧУ: Библиотека
Важна напомена, ВН:
Извод, ИЗ: На Власионској висоравни срећу се три врсте рода Rosa: R. canina L., R.
dumalis L. i R. corymbifera Borkh. Урађена је етноботаничка студија, у
којој је испитано 104 становника Власинске висоравни. Плодови ружа су
екстраховани методом ултразвучне екстракције. Испитивани су
метанолни и етанолни екстракти како би се утврдила антиоксидативна и
антимикробна активност екстраката. За одређивање антиоксидативне
активности (DPPH и ABTS-тест) као и одређивање укупних фенола и
флавоноида коришћена је UV спектрофотометрија. За тестирање
антимикробне активности коришћена је микродилуциона метода.
Датум прихватања теме, ДП: 19.04.2017.
Датум одбране, ДО:
Чланови комисије, КО: Председник: др Ана Џамић, ванредни професор, Биолошки факултет, Београд
Члан: др Јелена Матејић, доцент, Медицински факултет, Ниш
Члан, ментор: др Владимир Ранђеловић, редови професор, ПМФ, Ниш
Прилог 5/2
ПРИРОДНО - МАТЕМАТИЧКИ ФАКУЛТЕТ
НИШ
KEY WORDS DOCUMENTATION
Accession number, ANO:
Identification number, INO:
Document type, DT: Monograph
Type of record, TR: Textual / graphic
Contents code, CC: Master thesis
Author, AU: Milica Stanković
Mentor, MN: Vladimir Ranđelović
Title, TI: Ethnobotanical study, antioxidant and antimicrobial activity species of genus
Rosa L on Vlasina plateau
Language of text, LT: Serbian
Language of abstract, LA: English
Country of publication, CP: Republic of Serbia
Locality of publication, LP: Serbia
Publication year, PY: 2017
Publisher, PB: Author’s reprint
Publication place, PP: Niš, Višegradska 33.
Physical description, PD: (chapters/pages/ref./tables/pictures/graphs/appendixes)
53 page, 12 tables, 9 pictures
Scientific field, SF: Biology
Scientific discipline, SD: Systematics and ecology of plants
Subject/Key words, S/KW: R. canina, R. dumalis, R. corymbifera, ethnobotany antioxidant activity
(DPPH, ABTS), phenols, flavonoids, antimicrobial activity
UC 58:579.6(551.574+551.4.034)(497.11)
58:542.943(551.574.41+5.51.4.034)(497.11)
Holding data, HD: Library
Note, N:
Abstract, AB: On Vlasina plateau are encountered three species of Rosa L.: R. canina L.,
R. dumalis L. i R. corymbifera Borkh. Ethnobotanical research was done as a
survey which included 104 interviewed people coming from Vlasina
plateau.The fruits rose was extracted using an ultrasound extraction method.
The methanol and ethanol extracts were tested to determine antioxidant and
antimicrobial activity of extracts. For the determination of antioxidant activity
(DPPH and ABTS-assay) as well as determination of total phenols and
flavonoids was used UV spectrophotometry. Microdilution method was used
for antimicrobial activity testing.
Accepted by the Scientific Board on, ASB: 19.04.2017.
Defended on, DE:
Defended Board, DB: President: PhD Ana Džamić, Professor, Faculty of Biology in Belgrade
Member: PhD Jelena Matejić, Assistant Professor, Faculti of Мedicine in Nis
Member, Mentor: PhD Vladimir Ranđelović, Professor of Science in Nis