Universidad de La Salle Universidad de La Salle

Ciencia Unisalle Ciencia Unisalle

Medicina Veterinaria Facultad de Ciencias Agropecuarias

3-2009

Determinación de hematocrito Hto, proteínas plasmáticas totales Determinación de hematocrito Hto, proteínas plasmáticas totales

ppt y albumina Alb en caballos de salto antes y después de cada ppt y albumina Alb en caballos de salto antes y después de cada

entrenamiento en Bogotá entrenamiento en Bogotá

Juan Nicolas Ussa Usaquen Universidad de La Salle, Bogotá

Jesus Aurelio Salgado Farias Universidad de La Salle, Bogotá

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1

DETERMINACIÓN DE HEMATOCRITO (Hto), PROTEINAS PLASMÁTICAS

TOTALES (ppt) Y ALBUMINA (Alb) EN CABALLOS DE SALTO ANTES Y

DESPUÉS DE CADA ENTRENAMIENTO EN BOGOTÁ

JUAN NICOLAS USSA USAQUEN

JESUS AURELIO SALGADO FARIAS

UNIVERSIDAD DE LA SALLE

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

PROGRAMA DE MEDICINA VETERINARIA

BOGOTÁ

2009

2

DETERMINACIÓN DE HEMATOCRITO (Hto), PROTEINAS PLASMÁTICAS

TOTÁLES (ppt) Y ALBÚMINA (Alb) EN CABALLOS DE SALTO ANTES Y

DESPUES DE CADA ENTRENAMIENTO EN BOGOTÁ.

JUAN NICOLÁS USSA USAQUEN

JESUS AURELIO SALGADO FARIAS

Trabajo de grado

Director:

DRA. CLAUDIA AIXA MÚTIS

UNIVERSIDAD DE LA SALLE

FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS

PROGRAMA DE MEDICINA VETERINARIA

BOGOTÁ

2009

3

UNIVERSIDAD DE LA SALLE

DIRECTIVOS

Rector Hno. Carlos Gabriel Gómez

Restrepo

Vicerrector Académico Hno. Fabio Humberto Coronado

Padilla

Vicerrector de Promoción y

Desarrollo Humano Hno. Carlos Pabón Meneses

Vicerrector de Investigación y Hno. Manuel Cancelado Jiménez

Transferencia

Vicerrector Administrativo Dr. Mauricio Fernández

Fernández

Decano de la Facultad de

Ciencias agropecuarias Dr. Luis Carlos Villamil Jiménez

Director Programa

Medicina Veterinaria Dr. Pedro Pablo Martínez

Méndez

4

Nota de aceptación: _______________________________

Dra. Claudia Aixa Mutis Director

_______________________________

Dr. Ernesto A. Dalmau B. Jurado

_______________________________ Dr. Andrey Galindo

Jurado

Bogotá, marzo de 2009

5

6

TABLA DE CONTENIDO

pág.

INTRODUCCIÓN 133

1.1 COMPOSICIÓN SANGUÍNEA DEL CABALLO ATLETA 14

1.1.1 Eritrocitos: 15

1.1.2 Leucocitos: 15

1.1.3 Plaquetas: 18

1.1.4 Plasma: 18

1.2 VOLUMEN CELULAR AGLOMERADO (VCA) / HEMATOCRITO 19

1.3 PROTEÍNAS PLASMÁTICAS TOTALES 21

1.3.1 Albúmina 22

1.4 PERDIDA DE FLUIDOS V.S TERMOREGULACIÓN 24

2. DISEÑO METODOLÓGICO 27

2.1 LOCALIZACIÓN 27

2.2 POBLACIÓN Y MUESTRA 27

2.3 VARIABLES 27

2.4ANÁLISIS ESTADÍSTICO 28

2.5 MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS 29

3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN 31

3.1 HEMATOCRITO 31

3.2 PROTEINAS PLASMÁTICAS TOTALES 33

3.3 ALBÚMINA 35

4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES 37

BIBLIOGRAFÍA 38

7

LISTA DE FIGURAS

pág.

Figura. 1 Diferentes componentes de la sangre. 19

8

LISTA DE TABLAS

pág.

Tabla 1. Porcentajes de referencia de VCA/Hematocrito 20

Tabla 2. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%). 31

Tabla 3. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del

ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos

números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para

hematocrito (%). 32

Tabla 4. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL) 34

Tabla 5. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del

ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos

números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para

proteína total (g/dL) 34

Tabla 6. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL) 35

Tabla 7. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del

ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos

números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para

albúmina (g/dL). 36

9

GLOSARIO

ALBÚMINA: proteína que se encuentra en gran proporción en el plasma

sanguíneo, siendo la principal proteína de la sangre y a su vez la más

abundante en el ser humano. Es sintetizada en el hígado.

ENTRENAMIENTO: se refiere a la adquisición de conocimiento, habilidades, y

capacidades como resultado de la enseñanza de habilidades.

HEMATOCRITO: es el porcentaje del volumen de la sangre que ocupa la

fracción de los glóbulos rojos.

HÍGADO: es un órgano o víscera del cuerpo y a la vez, la glándula más

voluminosa de la anatomía y una de las más importantes en cuanto a la

actividad metabólica del organismo. Desempeña funciones únicas y vitales

como la síntesis de proteínas plasmáticas, función desintoxicante, almacén de

vitaminas, glucógeno, etc. Además, es el responsable de eliminar de la sangre

las sustancias que pueden resultar nocivas para el organismo,

transformándolas en otras innocuas.

PLASMA: es la fracción líquida y acelular de la sangre. Está compuesto por

agua el 90% y múltiples sustancias disueltas en ella. De éstas las más

abundantes son las proteínas. También contiene glúcidos y lípidos, así como

los productos de desecho del metabolismo. Es el componente mayoritario de la

sangre, puesto que representa aproximadamente el 55% del volumen

sanguíneo total. El 45% restante corresponde a los elementos formes (tal

magnitud está relacionada con el hematocrito).

PRESIÓN ONCÓTICA: también conocida como presión coloidosmótica es la

presión hidrostática a consecuencia del efecto osmótico ejercido por las

proteínas dentro de un espacio específico (matriz extracelular, vasos

sanguíneos, etc.) delimitado por una membrana selectivamente permeable

10

.

PROTEÍNAS: son macromoléculas formadas por cadenas lineales de

aminoácidos.

REPOSO: es un estado de movimiento rectilíneo uniforme en el cual la

velocidad es nula.

SUERO: es el remanente del plasma sanguíneo una vez consumidos los

factores hemostáticos por la coagulación de la sangre.

11

RESUMEN

Esta investigación tuvo como objetivo estudiar la variación en los niveles de hematocrito (Hto), proteínas plasmáticas totales (ppt) y albúmina (Alb) en caballos de salto antes y después de cada entrenamiento en la ciudad de Bogotá D.C., en el que se utilizaron 12 equinos (edad entre 5 y 9 años) de salto de la Escuela de Equitación del Ejército Nacional de Colombia (EEE), como metodología se tomaron muestras sanguíneas directamente de la vena yugular de los equinos, sometidos a ejercicio monitorizado y cronometrado (30 minutos) en 3 momentos específicos: en reposo (T1), inmediatamente finalizado el entrenamiento (T2) y a las 6 horas post-entrenamiento (T3), durante un periodo total de 2 meses. Estas tomas se realizaron en los días 0, día 15, día 30, día 45 y día 60, bajo los parámetros antes mencionados; los resultados obtenidos fueron depurados y analizados por medio del programa EXCEL y STATISTIX, haciéndose un análisis de estadística descriptiva y de comparación de medias por medio del test de Tukey, con un nivel de significancia de p<0.05; lo cual determinó diferencias estadísticamente significativas entre T1 y T2 y entre T1 y T3 en el mismo día de muestreo para hematocrito, en contraste con los niveles séricos de proteínas plasmáticas totales y albúmina que mostraron diferencias significativas entre los valores obtenidos en los distintos días de muestreo (0, 15, 30, 45, 60); indicando que la síntesis de proteínas séricas puede verse afectada por factores ambientales, nutricionales, patologías agudas y crónicas, factores fisiológicos como la edad, cambios hormonales, factores extrínsecos y por estrés. Se concluyó que las diferencias significativas entre los días de muestreo para albúmina, puede relacionarse a factores como baja disponibilidad de agua, aumento de la temperatura ambiental, entre otros.

Palabras clave: Equino, Hematocrito, proteínas plasmáticas totales, albumina

12

ABSTRACT This research has a study about the variation in the hematocritc (Hto), total plasmatic proteins (ppt) and albumin (Alb) levels in jump horses before and after each training in Bogota D.C. They were used 12 equines (with ages between 5 and 9 years old) of the School of Horsemanship of the National Army of Colombia (EEE), as a methodology, blood samples were took directly from the jugular vein of the equines, submitted to exercise monitored and timed (30 minutes) in 3 specific moments: In rest (T1), immediately when the training was over (T2) and at 6 hours post-training (T3), during a total period of 2 months. These captures were realized in day 0, day 15, day 30, day 45 and day 60, under the parameters before mentioned; the results were analyzed using the program EXCEL and STATISTIX, with an analysis of descriptive statistics and a significative comparison by Tukey test, with a level of significance of p <0.05; which determined statistically significant differences between T1 and T2 and between T1 and T3 in the same day of sampling for hematocritc, In contrast with the seric levels of total plasmatic proteins and albumin that showed significant differences between the values obtained in the different days of sampling (0, 15, 30, 45, 60); indicating that the synthesis of seric proteins can be affected by environmental factors, nutritional factors, pathology acute and chronicles, physiological factors as the age, hormonal changes, extrinsic factors and for stress. By these different samplings we can conclude that the significant differences between the days of sampling for albumin, this can be related to factors as low availability of water, increase of the environmental temperature, among others. Key words: Equine, hematocritc, total plasmatic proteins, albumin

13

INTRODUCCIÓN

El estudio del hematocrito y de las proteínas plasmáticas del equino (entre

otros parámetros) determina un valor objetivo importante que junto a la

observación clínica del paciente ofrecen una información muy valedera sobre el

estado de hidratación del mismo. Es sabido que un desequilibrio tanto en el

estado hidroeléctrolitico, como en el equilibrio ácido básico del equino es el

responsable de una sucesión de alteraciones que se desencadenan en forma

de cascada que terminan alterando las grandes funciones del caballo atleta, el

rendimiento del mismo y algunas veces responsables de estados irreversibles

que llevan a la muerte del equino.

Hablar sobre entrenamiento siempre requiere de mucho cuidado, debido a que

las personas vinculadas a la preparación atlética siempre están expectantes de

poder encontrar un protocolo de trabajo que les permita tener éxito y

lamentablemente, no es posible dar con una receta mágica que se adapte a

todos los caballos de cada una de las disciplinas hípicas. Esto se debe a que

una gran cantidad de variables como la edad del animal, alimentación y

nutrición, tipo de entrenamiento, temperamento, factores extrínsecos, raza, tipo

de superficie sobre la cual se entrena y disciplina del animal, hacen que los

niveles hematológicos y fisiológicos se modifiquen.

Es por esto que estudiar la variación del hematocrito (Hto), proteínas

plasmáticas totales (ppt) y albúmina (Alb) en caballos de salto antes y después

de cada entrenamiento en Bogotá, se hace indispensable para determinar los

cambios fisiológicos entre estas variables.

14

1. GENERALIDADES DEL CABALLO ATLETA

La evolución del caballo como animal de presa lo ha dotado con un sistema

cardiovascular de funciones muy especializadas. La capacidad que posee este

animal para correr con eficacia a grandes velocidades eclipsa las

correspondientes habilidades de los seres humanos y de la mayor parte de las

especies. Esto se debe en gran medida a la capacidad única del caballo para

adaptarse rápidamente a las demandas de las actividades aeróbicas y

anaeróbicas.

Todos los caballos que participan en competencias de alto rendimiento deben

someterse a un plan de entrenamiento; este debe tener como finalidad

desarrollar un atleta que expresa el máximo de su potencial, preservando al

animal para que tenga una campaña o vida deportiva lo más duradera posible y

con el menor numero de lesiones. La especificidad del entrenamiento hace

referencia a dos leyes que siempre deben tenerse en cuenta y dicen:

El plan de entrenamiento debe ser específico para cada caballo

(variación individual)

El plan de entrenamiento debe ser específico para cada disciplina hípica

(el tipo de ejercicio que realiza durante las sesiones de entrenamiento =

al tipo de ejercicio que realizará durante la competencia), (Boffi, 2007).

1.1 COMPOSICIÓN SANGUÍNEA DEL CABALLO ATLETA

La sangre es un tipo de tejido conjuntivo, y obtener una muestra de sangre es

en esencia hacer una biopsia; la sangre está compuesta por diversas células

rodeadas por una sustancia no celular, al igual que ocurre con otro tipo de

tejidos como el tejido fibroso, el hueso o el cartílago. Por supuesto la diferencia

principal es que la substancia extracelular de la sangre es un líquido llamado

plasma; ésta característica, además del hecho de que la mayoría de este “

tejido” se localiza cerca de la superficie del animal permite obtener una muestra

15

de sangre de manera comparativamente más sencilla que obtenerla de

órganos y tejidos más densos (Voigt, 2003).

La sangre del caballo es un líquido que contiene, en volumen

aproximadamente 45% de eritrocitos, glóbulos rojos o hematíes, 1% de células

blancas (leucocitos) y plaquetas, y un 54% de plasma. La sangre puede

separarse en sus componentes celular y líquido mediante centrifugación. La

fase líquida de la sangre es mucho más ligera que las células, este líquido

acelular o extracelular de la sangre se denomina plasma, (Mutis y Ramírez,

2003).

1.1.1 Eritrocitos: Glóbulos rojos sanguíneos o hematíes son el tipo de células

más numerosos del organismo, su producción tiene lugar en la médula ósea,

requiriendo de 6 a 8 días para alcanzar la madurez; si se produce un

incremento de la demanda puede ser liberado a sangre de 3 a 5 días (Voigt,

2003); la vida media de los eritrocitos en el caballo en promedio es de 140-155

días (Schalm´s, 2000), los eritrocitos son esenciales para transportar oxigeno a

los tejidos a través del sistema vascular, los antiguos son extraídos y

eliminados por el bazo, (Boffi, 2007).

La función de los hematíes es transportar el pigmento respiratorio hemoglobina

(Hb) de los pulmones a los tejidos corporales, debido a que la Hb atrae y libera

oxigeno, la función esencial del eritrocito es distribuir dicho elemento por todo

el organismo; el diámetro de los eritrocitos en el equino tiene un tamaño en

promedio de 5,8 micras y un rango de 4,0 – 8,0 micras, (Voigt, 2003).

Cuando el contenido de hemoglobina de la sangre aumenta, también crece la

capacidad de transportar oxígeno. Esto último sucede en muchos mamíferos,

pero especialmente en el caballo atleta cuando se esta ejercitando; ya que, se

produce la contracción del bazo, que libera a la circulación más eritrocitos,

(Funquist, 2001).

1.1.2 Leucocitos: Los leucocitos también llamados glóbulos blancos son un

conjunto heterogéneo de células sanguíneas que son los efectores celulares de

la respuesta inmune, así intervienen en la defensa del organismo contra

16

sustancias extrañas o agentes infecciosos. Se originan en la médula ósea y en

el tejido linfático, (Mutis y Ramírez, 2003).

A diferencia de lo que ocurre con los eritrocitos, no existe diferencia en los

glóbulos blancos de un caballo sedentario en reposo y un caballo atleta. Sin

embargo se presentan alteraciones transitorias durante el ejercicio debido a

una distribución intravascular de granulocitos y linfocitos. Es por esto que tras

un ejercicio extremo podría observarse un leve incremento en los glóbulos

blancos presentando una variación en la relación neutrófilo-linfocito. Esta

condición podría persistir incluso varias horas después de haber finalizado el

ejercicio (Boffi, 2007).

Tipos de leucocitos

Se han identificado varios tipos que incluso tienen funciones diferentes.

Se clasifican en:

1) Granulocitos: Entre los granulocitos existen tres clases: neutrófilos,

eosinófilos y basófilos

Neutrófilos

Son la primera línea de las defensas del organismo. Forman aproximadamente

un 60% del total de glóbulos blancos, o entre 3.500 a 6.000 en número por ml.

Reaccionan rápidamente, en unas cuatro horas, ante cualquier problema. Con

ciertos tipos de infecciones severas pueden aumentar en número, hasta

40.000. Sin embargo, sus números bajan ante problemas relacionados con

estrés fuerte o algún virus. Si se ve un aumento en el número del neutrófilo

segmentado, quiere decir que el animal está experimentando un estrés agudo y

está utilizando incluso los neutrófilos inmaduros producidos recientemente por

la médula ósea. Se pueden ver también bajo un microscopio cambios en la

estructura celular, que pueden indicar un problema de infección o inflamación

(Thrall, 2004).

17

Eosinófilos:

Son células grandes de color rojo, que reaccionan ante problemas relacionados

con alergias o irritaciones en el sistema respiratorio. Una variación por debajo

de lo normal sólo sale al principio de un problema, cuando los eosinófilos han

salido de la sangre para ir al tejido afectado, y no ha pasado suficiente tiempo

para producir más (Thrall, 2004).

Basófilos

Reaccionan ante problemas relacionados con alergias e inflamación de tejidos.

La cantidad de basófilos, normalmente, es de entre un 0 a 1% del total de la

proporción de los glóbulos blancos, así que posibles cambios son difíciles de

notar. Contienen heparina e histamina. Cuando hay inflamación, evita que la

sangre se coagule y ayudan a prevenir respuestas alérgicas. Hay un equilibrio

delicado entre los basófilos y los eosinófilos en casos de inflamación (Thrall,

2004).

2) Agranulocitos: se encuentran los linfocitos, y los monocitos.

Estos se encuentran en distinta proporción y cantidades, y son la base de

elaboración del denominado "recuento leucocitario diferencial" o" fórmula

leucocitaria", la cual es utilizada para establecer el estado fisiológico normal y

otros estados de salud. Un análisis de la cantidad total de glóbulos blancos

está considerado normal si oscila entre 6.000 y 10.000 u/ml (Mutis y Ramírez,

2003).

Linfocitos

Existen varios tipos que funcionan como la segunda línea de defensa, después

de los neutrófilos. Los linfocitos transportan las proteínas del sistema y tienen

un papel en la producción de anti-cuerpos. Su número baja ante problemas

relacionados con estrés crónico, crecimiento, lesiones o un caballo con carácter

nervioso, aumentan ante problemas crónicos, como cáncer o infecciones. Si los

18

linfocitos no se regeneran después de un descanso o cuando se disminuye el

trabajo del caballo, quiere decir que hay un estrés en el organismo, crónico y

persistente. En este estado, el caballo no puede llegar a su máximo nivel de

forma física hasta que se encuentre la causa real del problema (Thrall, 2004;

Boffi, 2007).

Monocitos

Son células de gran importancia, porque su presencia significa que hay un

proceso de reparación. Su función es ayudar a la reparación directa,

dispersando y absorbiendo el tejido dañado después de alguna lesión. Al igual

que los eosinófilos y monocitos, la cantidad de células baja al empezar el

proceso y luego presenta un aumento cuando ya están producidas las células

nuevas que necesita el organismo. Si el caballo ha pasado una temporada

larga de entrenamiento y aumentan los monocitos, puede significar que el

caballo está sobre-entrenado. El caballo necesitará descanso en este caso

(Thrall, 2004; Boffi, 2007).

1.1.3 Plaquetas: Los trombocitos son porciones del citoplasma de una gran

célula que se encuentra en la médula ósea (megacariocito) y presenta una gran

variedad de tamaños y formas; son pequeños, de tinción suave y pueden

contener gránulos. Su función es la de contribuir al proceso de coagulación

cuando se dañan los vasos sanguíneos; hay aproximadamente 400.000

plaquetas/mL de sangre con una vida media de 9 a 11 días. Un ejercicio

extenuante incrementaría la agregabilidad plaquetaria de los equinos; sin

embargo, se ha demostrado una reacción significativamente menor de la

agregabilidad plaquetaria en caballos con una historia clínica de hemorragia

pulmonar inducida por el ejercicio que en aquellos caballos sin esos

antecedentes (Boffi, 2007).

1.1.4 Plasma: está compuesto principalmente por agua (92%), se denomina

plasma gracias a su contenido proteínico (6%), el cual le da el color amarillo

19

pálido característico y por otras sustancias que se disuelven y quedan

suspendidas en el plasma mismo, como glucosa, grasas, aminoácidos,

vitaminas, hormonas, electrolitos y anticuerpos (Mutis y Ramírez, 2003). El

plasma, sin contenido de agentes coagulantes (proteínas) se denomina suero

(Boffi, 2007). De esta forma se distribuyen los componentes de la sangre (Fig.

1)

Fig. 1 Diferentes componentes de la sangre.

Fuente: Boffi, 2007

1.2 VOLUMEN CELULAR AGLOMERADO (VCA) / HEMATOCRITO

Se define el hematocrito (Hto) como la fracción de volumen que los eritrocitos

ocupan en un volumen de sangre (Coby, 2003), según Voigt (2003), el

hematocrito significa “dividir o separar la sangre”. Se utiliza el hematocrito para

estudiar casos de deshidratación y anemia. Según Boffi (2007), los niveles

normales de hematocrito de caballos pura sangre ingles en reposo oscilan

entre 32% y 47%, a diferencia de Shalm´s (2000), donde los denota entre 32%

y 53% en caballos de sangre fría (pony) y sangre caliente (cuarto de milla,

20

árabe) respectivamente. Si los niveles están por debajo o por encima de lo

anterior, indica que hay algún problema.

El objetivo de medir el volumen celular aglomerado es determinar el porcentaje

de eritrocitos que circulan por la sangre periférica en el momento de la

extracción (Tabla 1).

Tabla 1. Porcentajes de referencia de VCA/Hematocrito

Especie Media % Rango %

Perro

Caballo Sangre Caliente Sangre Fría Bovino Hembra Humana Varón Humano

45

43 35 35 42 47

37-55

32 – 55 24 – 44 24 – 46

--- ---

Fuente: Voigt Gregg l., Conceptos y técnicas hematológicas para técnicos veterinarios (2003).

Cuanto más se haya ejercitado el caballo, mayor será el Hto, hasta un máximo

de aproximadamente 0,65 a 0,70% con relación al valor normal. El Hto

aumenta con el ejercicio como consecuencia de la movilización esplénica de

los hematíes producidos por dicho ejercicio, y hay una menor proporción de

este incremento que es debido a la pérdida de líquidos producto de la

sudoración durante los ejercicios prolongados. En efecto, existe una relación

directa entre el valor de Hto y la velocidad de carrera hasta el máximo del Hto.

Lleva entre 30 y 60 segundos para que se produzca una movilización esplénica

como consecuencia de una mayor concentración de adrenalina circulante. El

bazo secuestra la mayoría de los glóbulos rojos dentro de los primeros 30

minutos, aunque la mayor caída del Hto se observa dentro de los primeros 5

minutos. (Boffi, 2007).

Al interpretar el hemograma completo hay que tener en cuenta un número de

factores que podrían influir en las propiedades normales de los eritrocitos,

incluyendo la edad, raza, tono simpático, condición física, nutrición y variación

individual del animal y el almacenamiento de la muestra de sangre. Los

caballos Sangre Pura de Carrera presentan un Hto con una concentración de

21

hemoglobina y un número de glóbulos rojos más elevado que otras razas, una

vez iniciado el entrenamiento para las carreras. El bazo equino reacciona a las

catecolaminas liberadas durante el ejercicio con la contracción y liberación de

un gran número de eritrocitos, esto causa una policitemia a corto plazo con el

objetivo de satisfacer una mayor demanda de oxigeno requerida por los

músculos activos (Boffi, 2007).

Es obvio que las desviaciones de un hematocrito normal pueden tener grandes

consecuencias en términos de la capacidad de la sangre para transportar

oxígeno. El hematocrito afecta la viscosidad de la sangre, cuando el

hematocrito se eleva por encima del 40% la viscosidad aumenta con rapidez. A

esto se le denomina policitemia (Meyer, 1998).

El problema de un aumento en la viscosidad de la sangre es que ocasiona

viscosidad dificultad del bombeo de la sangre al corazón, la policitemia produce

una sobrecarga fuerte para el corazón y puede ocasionar insuficiencia cardíaca

si el corazón no está sano, en caso de que ocurra lo disímil, es decir, que el

hematocrito sea muy bajo, se denomina Anemia; esta es la condición baja,

anormal de la cantidad de glóbulos rojos en la sangre. Esta alteración conlleva

a un aumento del gasto cardiaco con el fin de proveer la cantidad adecuada de

oxigeno cada minuto a todos los tejidos. Esta necesidad de aumentar el gasto

cardiaco también impone un incremento en la carga de trabajo y puede

producir insuficiencia en un corazón enfermo. De este modo el rango del

hematocrito entre 40 al 50% provee a la sangre la hemoglobina suficiente para

llevar a cabo el transporte de oxigeno (García, 1996).

1.3 PROTEÍNAS PLASMÁTICAS TOTALES

De forma colectiva, las proteínas plasmáticas realizan una función nutritiva,

ejercen presión coloide osmótica y ayudan en el mantenimiento del equilibrio

acido-base. Las proteínas de forma individual sirven como enzimas, factores de

coagulación, hormonas y sustancias de transporte. El principal lugar de síntesis

22

de las proteínas plasmáticas es el hígado y el segundo lugar de síntesis

principal es el sistema inmunitario (Duncan y Prasse´s, 2005).

Las proteínas presentes en el plasma son la albúmina, las globulinas y el

fibrinógeno. Las albúminas generalmente se utilizan para ligar hormonas

esteroideas, mientras que las globulinas en algunos casos forman los

anticuerpos usados en la defensa contra las enfermedades; y el fibrinógeno

que se disuelve en el plasma, es el responsable de la coagulación en presencia

del calcio. (Boffi, 2007). Las proteínas conceden al plasma su color amarillo

pálido característico. Las proteínas plasmáticas se sintetizan en el hígado y se

añaden al torrente sanguíneo cuando éste pasa por los capilares hepáticos

(Mutis y Ramírez, 2003).

1.3.1 Albúmina

La albúmina es la proteína de mayor concentración en el plasma y transporta

muchas moléculas pequeñas en la sangre (por ejemplo, bilirrubina, calcio,

progesterona y drogas); representa el 35 – 50% de la concentración total de

proteínas en animales domésticos (equinos, bovinos). También es de vital

importancia para impedir que el líquido de la sangre se filtre hacia los tejidos.

Esto se debe a que, a diferencia de las moléculas pequeñas como el sodio y el

cloro, la concentración de albúmina en la sangre es mucho mayor que en el

líquido por fuera de ésta.

Dado que la albúmina es producida por el hígado, la disminución de esta a

nivel sérico puede ser producto de una enfermedad hepática, pero también

puede ser el resultado de una enfermedad renal que permite que la albúmina

se escape a la orina. La disminución de la albúmina también tiene su

explicación por desnutrición o por una dieta baja en proteínas. Existe una

correlación directa entre el recambio de albumina y el tamaño corporal, la vida

media de la albumina en el caballo es de 19 días. La albúmina tiene carga

negativa; la membrana basal del glomérulo renal, también esta cargada

negativamente, lo que impide la filtración glomerular de la albúmina a la orina.

23

En el síndrome nefrótico, esta propiedad es menor, y se pierde gran cantidad

de albúmina por la orina (Duncan & Prasse´s 2005). .

La función principal de las proteínas en el equilibrio ácido-base es de servir

como buffer intracelular, amortiguando o disminuyendo los cambios de acidez

de una solución cuando a ésta se le añade un ácido o un álcali y conseguir,

por lo tanto, que el pH de la solución cambie lo menos posible; su efecto es

prácticamente inmediato. Lo ideal es que un buffer tenga la misma cantidad de

sus dos componentes (ácido y base), para amortiguar tanto un ácido como una

base (Duncan & Prasse´s 2005).

La mayor parte de la proteína total está compuesta por albúmina y globulina,

con una concentración reducida de fibrinógeno. En caballos sanos y en reposo,

la relación albúmina/globulina es de aproximadamente 0,7:1 a 1:1. En

consecuencia, las proteínas plasmáticas tienden a ejercer un efecto osmótico

sobre los líquidos que rodean a los tejidos. La concentración de proteínas

plasmáticas puede alterarse como consecuencia del entrenamiento y el

ejercicio. Cuando se inicia a un caballo en el entrenamiento, podría observarse

una leve disminución de las proteínas totales durante los 2 primeros meses, y

una elevación subsiguiente con el ejercicio. En caballos de carrera, es común

que se produzca un incremento del 15%, mientras que los caballos de

endurance experimentan un aumento máximo del 25%. El menor volumen

plasmático y la mayor viscosidad sanguínea posiblemente presenten efectos

perjudiciales para el rendimiento deportivo, ya que reducen la perfusión de los

órganos y tejidos y alteran el mecanismo de termorregulación. La

concentración de albúmina aumenta con la deshidratación, pero podría

disminuir como consecuencia de algún estado patológico. Por lo tanto, un

incremento de las proteínas totales con una disminución de la relación

albúmina/globulina indicaría una condición patológica o inflamación más que un

simple estado de deshidratación (Boffi, 2007).

La pérdida del volumen de plasma durante el ejercicio prolongado ha sido

reportado en 1,5% por hora y la perdida de fluidos puede llegar cerca de 5,4%

a 20% del total del volumen corporal en las primeras dos horas de ejercicio, la

perdida de fluidos del fluido extracelular es reemplazada por el volumen del

24

fluido intracelular. Después de este periodo aumentan las proteínas

plasmáticas totales, representado en la perdida continua de agua corporal por

la sudoración y la ventilación, con reducción subsecuente del volumen del

fluido intracelular. El estudio del hematocrito y de las proteínas plasmáticas del

equino (entre otros parámetros) determina un valor objetivo importante que

junto a la observación clínica del paciente ofrecen una información muy

valedera sobre el estado de hidratación del mismo. Es sabido que un

desequilibrio tanto en el estado hidroeléctrolitico, como en el equilibrio ácido

básico del equino es el responsable de una sucesión de alteraciones que se

desencadenan en forma de cascada que terminan alterando las grandes

funciones del caballo atleta, el rendimiento del mismo y algunas veces

responsables de estados irreversibles que llevan a la muerte del equino

(Flaminio and Rush, 1998).

1.4 PERDIDA DE FLUIDOS V.S TERMOREGULACIÓN

El trabajo y movimiento continuo son los responsables de la producción de

calor. El 75 al 80 % de toda la energía producida es eliminada como calor y

puede aumentar la temperatura corporal de 3 a 4 grados del rango normal. El

significado más eficiente de la disipación de calor es por medio de la

evaporación del sudor, lo cual puede comprometer el volumen de fluidos,

aproximadamente 5 al 6 % del peso corporal durante la carrera. La producción

de sudor es proporcional a las condiciones de clima. Otras formas de pérdida

de calor incluyen la convección, disipación y radiación (Carlson, 1983).

Las venas superficiales en el cuerpo del caballo se dilatan con el ejercicio

extendiendo el área de exposición al ambiente lo que facilita la eliminación de

calor. El sudor permite la disipación de calor del cuerpo del caballo lo que lleva

a una excesiva pérdida de fluidos y electrolitos. Los caballos que compiten en

eventos de trabajo pierden entre 10 a 15 litros de fluido por hora, (Carlson,

1983). Si las condiciones ambientales combinan calor y humedad se produce

más sudor en una manera compensatoria pero no eficiente de perdida de calor.

En los aspectos prácticos, cuando la temperatura ambiental y la humedad

25

aumentan más de 110 °F es una indicación de condiciones inapropiadas para

el entrenamiento exponiendo al caballo a un riesgo de cansancio (Ecker Gl,

1996).

La arteria pulmonar y carótida tienen el papel de promover la perdida de calor

desde la circulación pulmonar (Hodgson, 1993). Un 30% del calor corporal se

pueden disipar por mecanismos pulmonares a un 40% del consumo máximo de

oxigeno. Esta ruta de disipación de calor se puede comprometer por la

deshidratación debido al aumento de la viscosidad de la sangre. Una

frecuencia respiratoria aumentada puede ser una línea de defensa secundaria

y costo metabólica contra la hipertermia y también contribuye a la perdida de

fluidos. (Ecker Gl, 1996)

La deshidratación tiene un costo predictivo en un atleta. Durante el ejercicio

grandes volúmenes de sangre son requeridos por los músculos para el

intercambio gaseoso, para la suplencia de energía y la remoción de desperdicio

metabólico. La hipertermia resulta en un gasto cardíaco aumentado por una

frecuencia cardíaca aumentada debido al aumento de la circulación periférica

extra para la disipación de calor. Algunos caballos tienen un patrón de

respiración especial para la humedad y los días calurosos. Estos animales

tienden a actuar con una mayor frecuencia cardíaca, pero muestran una tasa

de recuperación normal a pesar de la inversión (frecuencia respiratoria mayor

que la frecuencia cardíaca) (Naylor, 1993).

Se recomienda evaluar la temperatura rectal y la habilidad de control de la

hipertermia y deshidratación. La disipación de calor puede ocasionar un fluido

de sangre inadecuado a los sistemas que lo requieren.

El ejercicio puede disminuir el fluido sanguíneo a otras áreas como el tracto

digestivo lo que induciría cólico. Con deshidratación continua la perfusión de

órganos vitales y músculos es reducida por un aumento de la viscosidad

sanguínea lo que disminuiría la actividad de trabajo, energía necesaria y

producción de calor. Si las indicaciones de peligro de fatiga no son

consideradas el cansancio puede ocurrir rápidamente.

El estado de hidratación se puede evaluar por el examen físico, la cantidad de

sudor producido, grave depresión y anorexia.

26

El sudor del caballo es hipertónico al plasma por iones de Na, K, Cl, Ca y Mg

CARLSON (1083), ROSE (1990). Durante el ejercicio prolongado esta

diferencia disminuye como la concentración de electrolitos séricos por la

perdida constante de fluido (Snow, 1991).

Algunos caballos no beben agua en las primeras 20 millas de recorrido por lo

que no es raro encontrar signos clínicos de deshidratación al inicio de la

carrera. (Ecker Gl, 1994, 1996). Interesantemente la ansiedad disminuye con

las millas recorridas y el consumo de agua tiende a aumentar como indicador

de mejor hidratación en los chequeos veterinarios tardíos.

27

2. DISEÑO METODOLÓGICO

2.1 LOCALIZACIÓN

La investigación se llevó a cabo en las instalaciones de la escuela de

equitación del ejercito nacional (EEE) ubicada en la ciudad de Bogotá, donde el

alojamiento de los animales se basa en pesebreras cubiertas con techo de teja

de zinc, paredes en bloque debidamente pañetadas y pintadas, con puertas en

madera con pernos de movilidad y chapas de seguridad.

2.2 POBLACIÓN Y MUESTRA

Se seleccionaron 12 equinos clínicamente sanos, de 5 a 9 años de edad, con

similares condiciones de alimentación, mismas de manejo y entrenamiento. Se

extrajeron muestras de sangre por punción directa de la vena yugular mediante

agujas, la muestra fue recolectada en tubos al vacío BD Vacutainer® (K2 EDTA

7,2 mg) estériles. Las muestras de reposo (T1) fueron extraídas entre las 6:30 y

las 6:45 de la mañana, las muestras inmediatamente después del ejercicio (T2)

entre las 8:00 y las 8:30 de la mañana, y las muestras de las 6 horas post-

entrenamiento (T3) de acuerdo al tiempo de la última toma. De cada caballo se

extrajeron 5 ml de sangre venosa en cada tiempo de muestreo, para un total de

15 ml por día de muestreo; es decir 75 ml de sangre por animal en el tiempo de

muestreo general (día 0 – 60), y un total de 180 muestras sanguíneas en la

investigación. Posteriormente las muestras se trasladaron al laboratorio para su

correspondiente análisis.

2.3 VARIABLES

Se determinó si existe o no diferencia estadísticamente significativa entre:

reposo v.s post-ejercicio; reposo de los distintos muestreos (día 15 a día

60) v.s reposo del día 0 y post-ejercicio de los distintos muestreos (día 15 a

día 60) v.s post-ejercicio del día 0, como consecuencia del entrenamiento.

28

Además de estimar la correlación existente entre las características

evaluadas.

2.4 ANÁLISIS ESTADÍSTICO

El análisis estadístico, fue realizado por medio de un diseño en bloques con

arreglo factorial AXB, donde A= días de muestreo, B= horario del muestreo. El

diseño se encuentra expresado en el siguiente modelo:

Donde: Yijk = µ +λK + αi + βj + (αβ) ij + Eijk

Yijk = Es la variable dependiente (respuesta proteína, hematocrito y albúmina)

µ= Es la media general

λK= Efecto del bloque (grupos de edad de los animales)

αi, βj = Efectos principales de α (cinco niveles 0, 15, 30, 45, 60) y β (6am, 8am y

2pm )

(αβ) ij = El efecto de la interacción de los DOS factores

Eijk = Error aleatorio asociado a cada observación

La hipótesis nula afirma que no existe diferencia entre los factores αi, βj, si

esta hipótesis es rechazada con un nivel de significancia de P<0,05 y se

realizarán las pruebas respectivas de comparación de medias, para este caso

Tukey.

La hipótesis alterna afirma que existe diferencia entre los factores αi, βj, si esta

hipótesis es rechazada, no se realizarán las pruebas respectivas de

comparación de medias.

Los resultados obtenidos fueron analizados por medio del programa EXCEL y

STATISTIX, haciéndose un análisis de estadística descriptiva, de correlación y

comparación de medias por medio del test de Tukey, para determinar si existen

diferencias significativas entre las características evaluadas durante: reposo del

día 0 v.s post-ejercicio de los distintos muestreos (día 15 a día 60), reposo v.s

post-ejercicio del mismo día (0, 15, 30, 45, 60), como consecuencia del

entrenamiento teniendo en cuenta la toma de las muestras en tiempo, periodo

entre cada toma e intensidad del ejercicio (30 minutos) de 12 ejemplares de la

29

Escuela de Equitación del Ejército Nacional como continuación de la

investigación inicial del proyecto POLAR.

2.5 MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS

El estudio se realizó en las instalaciones de la escuela de equitación del

Ejército Nacional (EEE) ubicada en la ciudad de Bogotá, la cuál cuenta con

pista de entrenamiento de piso de arena, con promedios de perímetro de pista

de 25 metros de ancho por 70 de largo, con formas similares a un rectángulo.

Para determinar el esfuerzo físico que realizaron los caballos en los

entrenamientos, se caracterizó la corrida según el tipo de ejercicio. Se

extrajeron muestras de sangre directamente de la vena yugular con el propósito

de determinar el hematocrito, proteínas plasmáticas totales y albúmina antes y

después de cada entrenamiento. Los análisis se determinaron en un laboratorio

privado de la ciudad de Bogotá D.C. Utilizando para hematocrito los tubos de

tapa roja (sin anticoagulante), de estos se sacó en tubos de microhematocrito

la sangre y luego estos tubos fueron sometidos a centrifugación a 12000 RPM

por 2 min., posteriormente se leyó en la tabla de lectura para tubos de

microhematocrito.

Para determinar la albúmina se utilizó el equipo STATFAX 3000, con reactivo

SPINREACT (verdebromocresol pH 4.2) y ALBUMIN CAL (patrón primario

acuoso de albúmina 5 g/dL), donde la albúmina se combina con el

verdebromocresol a pH ligeramente acido, produciéndose un cambio de color

del indicador, de amarillo verdoso a verde azulado proporcional a la

concentración de albúmina presente en la muestra.

Para determinar las proteínas totales se utilizó el equipo STATFAX 3000, con

reactivo SPINREACT (Biuret) y T PROTEIN CAL (patrón primario) donde en

medio alcalino, las proteínas dan un intenso color violeta azulado en presencia

de sales de cobre; contiene yoduro como oxidante. La intensidad del color

formado es proporcional a la concentración de proteína total en la muestra.

30

Los caballos fueron sometidos (día 0, 15, 30, 45, 60) a los ejercicios de

entrenamiento, en horas de la mañana.

Las muestras se mantuvieron refrigeradas mediante un termo con gel enfriador

hasta el arribo al laboratorio y su posterior procesamiento dentro de las 24

horas de recolectadas.

En el plasma se determinaron las concentraciones de proteínas plasmáticas

totales.

31

3. RESULTADOS Y DISCUSIÓN

3.1 HEMATOCRITO

Los valores del hematocrito presentaron como medias y desviaciones estándar

en los días 0, 15, 30, 45 y 60 variando entre 42.27± 4.58% y 43.61 ± 5.08%

(Tabla 2); estos valores son semejantes a los reportados por PAZ (2007), quien

encontró valores entre 45.50 ± 3.07% y 39.50 ± 3.57%.

Comparando los valores del hematocrito entre los diferentes días de evaluación

no se encontraron diferencias significativas, resultados similares, fueron

reportados por GALINDO-OROZCO (2007), quien trabajando con caballos pura

sangre árabe en el Brasil, sometidos a diferentes días de ejercicio (día 0, 45 y

90), no encontraron diferencias significativas entre los valores de las muestras

tomadas antes del ejercicio con las muestras tomadas una hora después del

ejercicio y seis horas después del ejercicio entre los días de evaluación.

Tabla 2. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%).

DIA N M ± DE *

Hematocrito

0 36 42.27± 4.58 A

15 36 43.61± 5.08 A

30 36 42.66± 5.01 A

45 36 42.86± 5.14 A

60 36 42.33± 3.78 A

* Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey

Después de realizar el análisis de los resultados, se encontró que hubo

diferencia estadísticamente significativa entre T1 y T2 y entre T1 y T3 (véase

tabla 3), diferencias también reportadas por (Paz, 2007) en su trabajo

desarrollado con equinos mestizos con edades también variando entre 6 y 9

años de edad, entrenados para competir en pruebas de resistencia. Entre T2 y

T3, a pesar de tener valores diferentes no presentaron diferencias

estadísticamente significativas (P≤0,05) (Tabla 3); estos resultados similares a

32

los obtenidos por (Islas et al,. 2007), los cuales en una evaluación realizada en

caballos mestizos pura sangre ingles, sometidos a entrenamiento de

resistencia, encontraron que existen diferencias significativas (P≤0,05) entre T2

(5 minutos post ejercicio) y T3 (15 minutos post ejercicio) con el tiempo de

reposo. No obstante; también fueron diferentes a los resultados presentados

por (Paz, 2007), quien encontró que entre T2 (5 minutos post ejercicio) y T3 (15

minutos post ejercicio) se dieron diferencias significativas (P ≤ 0,05). Por otro

lado, (Galindo-Orozco, 2007), encontró que no hubo diferencias

estadísticamente significativas entre las muestras tomadas en reposo y las que

se tomaron una y seis horas después del ejercicio.

Tabla 3. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para hematocrito (%).

HORA N M±DE*

Hematocrito

T1 60 41.24 ± 4.14 B

T2 60 43.66 ± 4.59 A

T3 60 43.33 ± 5.09 A

*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey

De acuerdo con los datos presentados en la Tabla 3, los valores para el

hematocrito aumentaron comparativamente entre los muestreos realizados

entre el reposo y las muestras tomadas después del ejercicio; los valores

obtenidos de animales en reposo se mostraron dentro de los rangos

presentados por MESSER (1995), quien en su reporte de clínica patológica

muestra rangos variando de 32% a 52% y los resultados que este trabajo arrojo

fueron de 41.24 ± 4.14%.

Las variaciones de hematocrito pueden deberse a las exigencias del organismo

para compensar las necesidades de energía y disponibilidad de oxígeno, ya

que según Hoyos, 2003, las variaciones de un hematocrito en reposo pueden

tener grandes consecuencias en términos de la capacidad de la sangre para

transportar oxígeno, así como de aumentar los niveles de hemoglobina.

Muchos autores coinciden en que el aumento de la masa eritrocitaria en la

33

sangre se da por la contracción esplénica, debido a la respuesta propia del

organismo frente al estrés fisiológico o para este caso el estrés producido por el

ejercicio.

Conforme con Inoue et al, 2005, citado por Galindo-Orozco, 2007, existe una

relación directa entre el valor del hematocrito, la velocidad del entrenamiento y

las distancias recorridas durante las pruebas, llevando aproximadamente entre

30 y 60 segundos para que se liberen catecolaminas y se de la contracción del

bazo, haciendo que se liberen los hematíes a la circulación sanguínea para su

utilización por parte del sistema nervioso central y de la musculatura

esquelética.

3.2 PROTEINAS PLASMÁTICAS TOTALES

Los valores encontrados para proteínas totales (Tabla 4), muestran las

variaciones estadísticamente significativas entre los valores obtenidos en los

diferentes días de muestreo, variando de 4.92± 0.93 g/dL hasta 6.10± 0.83

g/dL. Estos resultados difieren de los encontrados por (Galindo–Orozco, 2007),

quien trabajando caballos Pura Sangre Árabes, realizó tres evaluaciones en

diferentes tiempos, encontró que existió diferencia significativa entre la primera

prueba y la última (día 0 y día 90). Sin embargo entre las dos ultimas pruebas

(día 45 y día 90) no hubo diferencias significativas. Al igual que la albúmina,

estas variaciones pueden deberse más a condiciones de manejo y ambientales

que a las propias del animal. Sin embargo, según Harkins et al., 1993 y

Pellegrini et al., 2000, citados por Galindo-Orozco, 2007, recomiendan

relacionar otros factores que pueden interferir en los resultados hematológicos

como son la conducta y temperamento del animal, edad, tipo de entrenamiento,

nutrición, hora de la toma de la muestra, transporte adecuado hacia el

laboratorio de las muestras, análisis e interpretación laboratorial.

34

Tabla 4. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL)

DIA N M ± DE*

Proteína total

0 36 6.10± 0.83 A

15 36 5.83± 1.06 A B

30 36 5.61± 0.64 A B

45 36 4.92± 0.93 C

60 36 5.40± 0.91 B C

*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey

En la tabla 5, se presentan los valores medios encontrados en los diferentes

tiempos de mediciones, en los cuales no se encontró diferencias significativas.

Durante el ejercicio de los equinos, se producen diversos cambios en la

distribución y composición de los líquidos y electrolitos del plasma,

dependiendo de la duración, y la intensidad de los procesos realizados.

Tabla 5. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para proteína total (g/dL)

HORA N M±DE*

Proteína total

T1 60 5.53 ± 1.02 A

T2 60 5.66 ± 1.09 A

T3 60 5.54 ± 0.98 A

*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey.

Según Islas et al. 2007, los equinos no presentan cambios significativos en las

proteínas plasmáticas después de los ejercicios realizados, lo que se debe a

que los caballos fueron sometidos a un ejercicio de corta duración y de

intensidad moderada, a diferencia de lo expuesto por Adams and Sojka (1999),

quienes sustentan que en pruebas de resistencia (enduro) de larga duración se

observa un aumento de la concentración de proteínas plasmáticas debido a

deshidratación.

35

De esta manera con el experimento realizado, se pudo comprobar que las

condiciones de manejo pueden influir en el resultado de las proteínas

plasmáticas totales, ya que se observo diferencias significativas entre los días,

pero no entre las tomas de muestras en un mismo día; esto puede estar dado

principalmente por factores externos como la temperatura, la disponibilidad de

agua en las caballerizas, tipo de alimentación, ubicación geográfica entre otras.

3.3 ALBÚMINA

Realizando la comparación de los resultados encontrados para albúmina, entre

las muestras tomadas en los diferentes días de evaluación (Tabla 6), se puede

observar que existieron algunas diferencias estadísticamente significativas

entre casi todas las medias, estas variaciones pueden ser sustentadas con los

reportes presentados por (Schalm et al, 1981) y (Rottshild et al, 1988), los

cuales exponen que la síntesis de proteínas séricas puede verse afectada por

factores ambientales, nutricionales, enfermedades agudas y crónicas, factores

fisiológicos como preñez, lactación, edad, cambios hormonales y por estrés

La albúmina es una proteína plasmática única que contiene una pequeña

cantidad de carbohidratos, la medición de sus niveles permite inferir sobre el

funcionamiento fisiológico del animal, su estado nutricional, su rendimiento,

además de ser un indicador de los niveles de deshidratación que se presentan

en los equinos (Duncan & Prasse´s, 2005). De esta manera se puede concluir

que en los resultados obtenidos de las muestras, las alteraciones pueden estar

dadas por factores extrínsecos como la temperatura (alta o baja), la no

disponibilidad de agua o las variaciones en la alimentación de los animales

estudiados.

Tabla 6. Días de muestreo con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL)

DIA N M ± DE*

Albúmina 0 36 3.22± 0.75 A B 15 36 2.88± 0.69 B C 30 36 3.32± 0.64 A 45 36 2.73± 0.55 C 60 36 2.64± 0.52 C

*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey

36

Al no existir estudios acerca de los parámetros estándar de la concentración

albúmina en la sangre de los equinos, se dificulta realizar una comparación

entre el por qué los valores bajan en los días 45 y 60 con relación a los

iníciales, y así arrojar un resultado más claro; de aquí la importancia de

establecer parámetros y rangos específicos para esta especie, llevando a la

generación de nuevas rutinas de alimentación, entrenamiento y condiciones

ambientales que mejoren la condición de los animales.

Es importante resaltar que durante las pruebas realizadas no se observaron

diferencias estadísticamente significativas entre los valores de albúmina,

tomados en diferentes tiempos en un mismo día (Tabla 7), sin embargo, los

valores fueron menores en el reposo y aumentaron un poco después del

ejercicio. Este aumento puede deberse muy posiblemente a la necesidad del

organismo de reponer la energía utilizada por medio de los ácidos grasos, los

cuales son transportados por la albúmina para ser después degradados en el

tejido muscular, produciendo energía (Duren, 2000)

Tabla 7. Horario del muestreo: reposo (T1), inmediatamente después del ejercicio (T2), seis horas después del ejercicio (T3), con sus respectivos números de observaciones (N), medias (M) y desviaciones estándar (DE) para albúmina (g/dL).

HORA N M±DE*

Albúmina

T1 60 2.89 ± 0.66A

T2 60 2.92 ± 0.68 A

T3 60 3.07 ± 0.71 A

*Letras diferentes indican diferencias significativas (P<0,05) por el Test de Tukey

37

4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES

Se determinaron los niveles para hematocrito, proteínas plasmáticas

totales y albúmina en caballos de salto antes y después de cada

entrenamiento, obteniendo similares resultados de estudios realizados

por otros autores.

Se analizó las variables Hto, ppt y Alb, con diferencias estadísticamente

significativas entre T1 y T2 y entre T1 y T3 en el mismo día de la

muestra para hematocrito, sin obtener diferencias significativas entre los

días de muestreo (0, 15, 30, 45, 60); variando la edad (entre 5 y 9 años)

y teniendo en cuenta la ubicación de la Escuela de Equitación del

Ejército Nacional (EEE) en la ciudad de Bogotá D.C. que es de 2600

m.s.n.m.

No se presentaron diferencias significativas entre los días de muestreo

para hematocrito con relación al tiempo de entrenamiento (30 minutos)

A diferencia de los análisis de hematocrito, en las proteínas plasmáticas

los valores encontrados muestran variaciones significativas entre los

diferentes días de muestreo (0, 15, 30, 45, 60), teniendo en cuenta que

la nutrición de los animales es en base a heno, agua y concentrado,

además; del tipo de entrenamiento y temperamentos que proceden de

los ejemplares.

Se concluyó que las diferencias significativas entre los días de muestreo

para albúmina, puede relacionarse a factores como baja disponibilidad

de agua, aumento de la temperatura ambiental, entre otros.

Los valores arrojados por esta investigación para hematocrito son

considerados normales por algunos autores.

Se recomienda tener en cuenta para estudios próximos relacionados con

la albúmina, tener en cuenta aspectos como el perfil hepático; ya que la

síntesis de esta proteína se presenta en el hígado.

38

BIBLIOGRAFÍA

BOFFI F. M., Fisiología del ejercicio equino, ed. Intermédica, Buenos Aires,

República Argentina, 2007.

CARLSON GP, thermoregulation and flid balance in the exercising horse. In

Snow DH, Persson SGB, Rose RJ (eds): Equine exercise physiology.

Cambridge, England, Granta Editions, 1983, p 291.

COBY B., Centro de nutrición equina - horse 1, análisis de sangre para el

caballo de deporte, revista Ecuestre, España, 2003 http://www.horse1.es/

DUNCAN & PRASSE´S, KENNETH S. Latimer, EDWARD A. Mahaffey, KEITH

W. Prasse, Patología clínica veterinaria, 4ª edición, Multimédica ediciones

veterinarias, Barcelona, España, 2005.

DUREN, S.E. Feeding the endurance horse. In: PAGAN, J.D. Advances in

equine nutrition, Nottingham: University Press, p.351-363, 2000.

ECKER GL, Lindinger MI: Fluid and electrolytes: In short supply? Part 1 and 2.

The equine athlete 7(3,4): 15, 1, 1994.

ECKER GL: Management of horses participating in endurance rides.

Compendium Continuing Educ Practicing Vet 18:566, 1996.

FLAMINIO, M. J. B. F.; RUSH, R. B. Fluid and electrolyte balance in endurance

horses. Veterinary clinics of North America: equine practice, Ed. W. B.

Saunders Company, vol 14, n.1, pg 147-158. Philadelphia-USA. 1998.

FUNQUIST P., Effects of phlebotomy on haemodinamic characteristics during

exercise in standarbred trotters with red cell hipervolemia, In: Equine Veterinary

Journal (2001) Vol. 3 Nº 4.

39

GALINDO-OROZCO, C. A. Respostas hematológicas e bioquímicas de eqüinos

da raça puro sangue árabe em testes de esforço progressivo realizados em

esteira rolante durante a fase de treinamento e em prova de enduro a campo.

Tesis (Doctorado en Medicina Veterinaria) - Facultad de Ciências Agrárias e

Veterinárias, Universidade Estadual Paulista, Jaboticabal, 131p, 2007.

GARCÍA A, et al, Fisiología veterinaria, New York: Mc Graw Hill Interamericana,

1996.

GORDON, M. E.; McKEEVER, K.H.; BETROS, C. L. Exercise-induced

alterations in plasma concentrations of ghrelin, adiponectin, leptin, glucose,

insulin, and cortisol in horse. Veterinary Journal, London, v.23, p. 1-9, 2006.

HODSON DR, McCutcheon LJ, Byrd SK, et al: Dissipatión of metabolic heat in

the horse during exercise.J Appl Physiol 74:1164, 1993.

MEYER D., Veterinary laboratory medicine, WB Saunders Company, Second

edition, Philadelphia, Pennsylvania, 1998.

MUTIS A., RAMÍREZ E., Determinación y análisis de valores fisiológicos pre y

post ejercicio en una población de atletas equinos de salto en Bogotá,

Colombia, Universidad de la Salle, Facultad de Medicina Veterinaria, Bogotá,

Colombia, 2003.

NAYLOR JRJ, Bayly WN, Gollnick PD, et al: Effects of dehydration on

thermoregulatory responses of horses during low-intensity exercise, J Appl

Physiology 75:994, 1993.

ROSE RJ: Electrolytes: Clinical applications. Vet Clin North Am Equine Pract

6:281, 1990.

40

VOIGT G. L., Conceptos y técnicas hematológicas para veterinarios, ed. Acribia

S.A., Zaragoza, España, 2003.

SHALM´S, Bernard F., Feldman, Joseph G., Nemi C., Veterinary Hematology,

5a ed., Lippincott Williams and wilkink, Philadelphia, USA, 2000.

SNOW DH: Fatigue and exhaustion in the horse. Australian Equine Veterinarian

9:3, 1991.

Statistix for Windows. 1985. Statistix for Windows Manual.

http://www.cuencarural.com/ganaderia/equinos/efecto_de_dos_ejercicios_difer

entes_sobre_el_hematocrito_hemoglobina_ph_y_gases_en_sangre_en_equino

s_entrenados_para_participar_en_pruebas_de_resistencia/