Embed Size (px)
Citation preview
KANDUNGAN NUTRISI DAN TINGKAT KECERNAAN IN VITRO PADA
TIGA VARIETAS SORGHUM HYDROPONIC FODDER (SHF)
SKRIPSI
RISTA KURNIA DEWI
PROGRAM STUDI KIMIA
FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA
2018 M/1439 H
KANDUNGAN NUTRISI DAN TINGKAT KECERNAAN IN VITRO PADA
TIGA VARIETAS SORGHUM HYDROPONIC FODDER (SHF)
SKRIPSI
Sebagai Salah Satu Syarat untuk Memperoleh Gelar Sarjana Sains
Program Studi Kimia
Fakultas Sains dan Teknologi
Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta
Oleh :
RISTA KURNIA DEWI
1113096000014
PROGRAM STUDI KIMIA
FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI
UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH JAKARTA
2018 M/1439 H
ABSTRAK
RISTA KURNIA DEWI. Kandungan Nutrisi dan Tingkat Kecernaan In Vitro Pada
Tiga Varietas Sorghum Hydroponic Fodder (SHF). Dibimbing oleh TEGUH
WAHYONO dan DEDE SUKANDAR.
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kandungan nutrisi dan tingkat kecernaan in
vitro dari tiga varietas Sorghum Hydroponic Fodder (SHF). Analisis kandungan
nutrisi meliputi bahan kering (BK), bahan organik (BO), protein kasar (PK), ekstrak
eter (EE), neutral detergent fiber (NDF) dan acid detergent fiber (ADF). Analisis
kecernaan in vitro meliputi Kecernaan Bahan Kering (KcBK), Kecernaan Bahan
Organik (KcBO) dan produk fermentasi rumen yaitu pH, konsentrasi NH3 dan total
volatile fatty acid (TVFA). Hasil yang didapat pada penelitian menunjukkan
kandungan nutrisi dan tingkat kecernaan in vitro pada ketiga varietas Sorghum
Hydroponic Fodder (SHF) memiliki beda nyata. Kandungan nutrisi tertinggi
dihasilkan oleh SHF Samurai 1 dengan nilai PK dan EE sebesar 19,80% dan 10,97%.
Kecernaan BK dan BO tertinggi pada SHF Pahat dengan nilai 65,21±5,32% dan
65,96±5,42%. Hasil tertinggi yang didapat dari produk fermentasi rumen yaitu pH,
konsentrasi NH3 dan total volatile fatty acid (TVFA) terdapat pada SHF Samurai 2
dengan nilai masing-masing 7,03±0,19; 6,13±0,24 mM dan 105,62±21,7 mM.
Kandungan nutrisi dari ketiga varietas SHF memiliki nilai yang cukup untuk
dijadikan sebagai sumber pakan ternak. Begitu pula dengan hasil kecernaan in vitro
yang didapat lebih dari 60% yang menunjukkan bahwa SHF dapat dicerna dengan
baik.
Kata kunci : In vitro, kandungan nutrisi, kecernaan, Sorghum Hydroponic Fodder
(SHF)
ABSTRACT
RISTA KURNIA DEWI. Nutrient content and level of In vitro digestibility of three
varieties Sorghum Hydroponic Fodder (SHF). Supervised by TEGUH WAHYONO
and DEDE SUKANDAR.
The aim of this research is for knowing nutrition content and in vitro
level digestibility of three varieties Sorghum Hydroponic Fodder (SHF). Nutrition
content analyze includes dry matter (DM), organic matter (BO), crude protein (CP),
ether extract (EE), neutral detergent fiber (NDF) and acid detergent fiber (ADF).
Analysis digestibility in vitro include dry material digestibility (DMD), organic
materials digestibility (OMD) and rumen fermentation product include pH,
concentration of NH3 and total volatile faty acid (TVFA). The result showed that no
significantly different on nutrition content and in vitro digestibility level of three
varieties Sorghum Hydroponic Fodder (SHF). SHF Samurai 1 has highest crude
protein and EE value by 19, 80% and 10.97%. DMD and OMD of SHF Pahat has
highest value is 65, 21 ± 5.32% and 65.96 ± 5.42%. The highest fermentation rumen
product (pH, NH3 and TVFA) obtained by SHF Samurai 2 (7.03 ± 0.19;
6.13 ± 0.24mM and 105.62 ± 21.7 mM). The results of in vitro digestibility show that
SHF has better native grass.
Keywords: In vitro, nutrion content, digestibility, Sorghum Hydroponic Fodder
(SHF)
viii
KATA PENGANTAR
Bismillahirohmaanirrahiim
Puji syukur penulis panjatkan kepada Allah SWT karena berkat
rahmat, karunia dan hidayah-Nya penulis dapat menyelesaikan skripsi yang
berjudul “Kandungan Nutrisi dan Tingkat Kecernaan In Vitro Pada Tiga
Varietas Sorghum Hydroponic Fodder (SHF)” sehingga terlaksana sesuai
dengan harapan. Tak lupa shalawat serta salam penulis haturkan kepada Nabi
Muhammad SAW beserta keluarga dan sahabatnya. Penelitian ini
dilaksanakan di Laboratorium Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi (PAIR)
BATAN, Jalan Lebak Bulus Raya No. 49, Jakarta Selatan, Indonesia pada
bulan Februari sampai April 2017.
Skripsi ini disusun untuk memenuhi syarat kelulusan dalam
menempuh pendidikan Strata 1 (S1) di Program Studi Kimia Fakultas Sains
dan Teknologi Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta.
Penulis menyadari bahwa, tanpa bantuan dan bimbingan dari berbagai pihak,
sangatlah sulit untuk menyelesaikan skripsi ini. Oleh karena itu, penulis
mengucapkan terima kasih sebanyak-banyaknya terutama kepada:
1. Teguh Wahyono, M.Si, selaku pembimbing I yang senantiasa membimbing
dan memberikan segala ilmunya kepada penulis dengan penuh kesabaran
dan keikhlasan.
ix
2. Drs. Dede Sukandar, M.Si, selaku pembimbing II yang telah memberikan
bimbingannya kepada penulis dan selaku Ketua Program Studi Kimia
Fakultas Sains dan Teknologi Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah
Jakarta.
3. Dr. Sandra Hermanto, M.Si, selaku penguji I yang telah memberikan
masukan dalam penulisan skripsi ini dengan penuh kesabaran dan
keikhlasan.
4. Anna Muawanah, M.Si, selaku penguji II yang telah memberikan masukan
dalam penulisan skripsi ini dengan penuh kesabaran dan keikhlasan.
5. Dr. Agus Salim, M.Si, selaku Dekan Fakultas Sains dan Teknologi
Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta.
6. Kedua orang tua tercinta yang selalu memberikan doa serta dukungan moril
maupun materil.
7. Pegawai BATAN PAIR Laboratorium Nutrisi Ternak (saudari Tia, Bapak
Edi, Bapak Dedi, Bapak Haryono, dll.) yang senantiasa membantu penulis
selama penelitian berlangsung.
8. Yulia dan Ariani sebagai patner kerja, Sinta, Syifa, Ersa, Ardhi, Dini dan
rekan seperjuangan Kimia 2013 UIN Syarif Hidayatullah Jakarta yang
selalu memberikan semangat dan dukungan.
x
Nasihat, kritik dan saran pada skripsi ini yang membangun dari pembaca
sangat penulis harapkan. Semoga skripsi ini dapat bermanfaat bagi perkembangan
ilmu pengetahuan.
Jakarta, Januari 2018
Penulis
xi
DAFTAR ISI
KATA PENGANTAR .............................................................................................. viii
DAFTAR ISI ............................................................................................................... xi
DAFTAR GAMBAR ................................................................................................ xiv
DAFTAR TABEL ....................................................................................................... 1
DAFTAR LAMPIRAN ............................................................................................... 2
BAB I PENDAHULUAN ........................................................................................... 1
1.1. Latar Belakang ................................................................................................... 1
1.2. Rumusan Masalah ............................................................................................. 5
1.3. Hipotesis ............................................................................................................ 5
1.4. Tujuan Penelitian ............................................................................................... 6
1.5. Manfaat pengujian .............................................................................................. 6
BAB II TINJAUAN PUSTAKA ................................................................................ 7
2.1. Hijauan Pakan Ternak ........................................................................................ 7
2.2. Sorgum ............................................................................................................. 10
2.3. Kandungan Kimia pada Sorgum ...................................................................... 15
2.4. Hydroponic Fodder .......................................................................................... 17
2.5. Ruminansia ....................................................................................................... 19
2.6. Pencernaan Ternak Ruminansia ....................................................................... 20
2.6. Kecernaan In Vitro ........................................................................................... 24
2.7. Analisis Kandungan Nutrisi Pakan .................................................................. 27
2.8. Volatile Fatty Acid (VFA) ................................................................................ 29
2.9. Amonia (NH3) .................................................................................................. 31
xii
BAB III METODE PENELITIAN ......................................................................... 34
3.1. Tempat dan Waktu Pelaksanaan ...................................................................... 34
3.2. Alat dan Bahan ................................................................................................. 34
3.2.1. Alat ............................................................................................................ 34
3.2.2. Bahan ........................................................................................................ 35
3.3. Tahapan Penelitian ........................................................................................... 35
3.4. Prosedur Kerja .................................................................................................. 36
3.4.1. Pembuatan Larutan Pupuk Cair ................................................................ 36
3.4.2. Penanaman Sorghum Hydroponic Fodder (Nugroho, 2015) .................... 36
3.4.3. Pemanenan Sorghum Hydroponic Fodder (Nugroho, 2015) .................... 37
3.4.4. Analisis Kandungan Nutrisi SHF .............................................................. 37
3.4.5. Analisis In Vitro Dua Tahap (Tilley and Terry, 1963) .............................. 41
3.4.6. Analisis statistik ........................................................................................ 45
3.5. Bagan Alir Penelitian ................................................................................... 46
BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN .................................................................. 47
4.1. Profil Nutrisi .................................................................................................... 47
4.1.1. Bahan Kering (BK) ................................................................................... 47
4.1.2. Bahan Organik (BO) ................................................................................. 49
4.1.3. Protein Kasar (PK) .................................................................................... 50
4.1.4. Ekstrak Eter (EE) ...................................................................................... 53
4.1.5. Neutral detergent fiber (NDF) dan Acid detergent fiber (ADF) ............... 54
4.2. Kecernaan In Vitro ........................................................................................... 58
4.2.1. Nilai pH ..................................................................................................... 58
4.2.2. Konsentrasi NH3 ....................................................................................... 60
xiii
4.2.3. Produksi Total Volatile Fatty Acid (TVFA) ............................................ 62
4.2.4. Kecernaan BO (KcBO) ............................................................................. 64
4.2.5. Kercernaan BK (KcBK) ............................................................................ 64
BAB V SIMPULAN DAN SARAN .......................................................................... 69
5.1. Simpulan .......................................................................................................... 69
5.2 Saran .................................................................................................................. 69
DAFTAR PUSTAKA ................................................................................................ 70
LAMPIRAN ............................................................................................................... 79
xiv
DAFTAR GAMBAR
Gambar 1. Sorgum hasil mutasi radiasi PAIR-BATAN ............................................. 11
Gambar 2. Struktur selulosa (Gascoigne, 1960) ......................................................... 12
Gambar 3. Struktur hemiselulosa (Fangel dan Wegener, 1995) ................................. 16
Gambar 4. Struktur lignin (Fangel dan Wegener, 199l).............................................. 16
Gambar 5. Sistem pencernaan ruminansia (Fariani, 2008) ......................................... 17
Gambar 6. Skema pencernaan karbohidrat didalam rumen dan perubahan asam....... 30
Gambar 7. Proses metabolisme protein pada ruminansia (Sakinah, 2005) ................. 33
Gambar 8. Bagan alir penelitian.................................................................................. 46
Gambar 9. Proses pembentukan asam amino (Kamal, 1994) ..................................... 51
Gambar 10. Skema pemisahan menggunakan detergent (Van Soet, 1982) ................ 55
Gambar 11. Hasil analisis pH SHF setelah diinkubasi selama 48 jam ....................... 67
Gambar 12. Hasil konsentrasi NH3 SHF setelah diinkubasi selama 48 jam. ............. 65
Gambar 13. Hasil Produksi TVFA SHF setelah diinkubasi selama 48 jam.. ............. 59
Gambar 14. Hasil KcBO SHF setelah inkubasi selama 48 jam... .............................. 61
Gambar 15. Hasil KcBK SHF setelah diinkubasi selama 48 jam. .............................. 62
1
DAFTAR TABEL
Tabel 1. Komposisi nutrisi dalam sorgum sebagai pakan ternak……………………12
Tabel 2. Data nilai kandungan nutrisi varietas sorgum………………..…………….13
Tabel 3. Komposisi nutrisi limbah sorgum sebagai pakan ternak…………………...14
Tabel 4. Nilai daya cerna in vitro dan in vivo sorgum…………………………...….15
Tabel 5. Jumlah bateri dan protozoa rumen pada sapi……………………………….23
Tabel 6. Profil nutrisi SHF dengan 9 hari waktu tanam……………………………..47
xv
2
DAFTAR LAMPIRAN
Lampiran 1. Hasil kandungan nutrisi .......................................................................... 79
Lampiran 2. Kecernaan in vitro dan produk fermentasi rumen .................................. 81
Lampiran 3. Uji statistik kandungan nutrisi SHF ....................................................... 83
Lampiran 4. Uji statistik kecernaan in vitro ................................................................ 86
Lampiran 5. Dokumentasi penelitian .......................................................................... 89
xvi
1
BAB I
PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang
Hewan ternak seperti ruminansia merupakan salah satu hewan yang menjadi
sumber protein hewani. Hal tersebut karena hewan ini mampu memanfaatkan bahan
makanan yang tidak dapat dimanfaatkan oleh manusia. Hijauan seperti rumput atau
limbah pertanian yang tidak dikonsumsi oleh manusia dapat dikonversikan ke dalam
makanan bernilai gizi tinggi. Makanan yang bernilai gizi tinggi tersebut adalah
sumber protein hewani berupa daging, telur dan susu. Kebutuhan masyarakat
Indonesia akan protein hewani semakin meningkat, sehingga harus diimbangi dengan
peningkatan produktivitas ternak. Sebagaimana juga dijelaskan di dalam Al-Qur’an
surah Al-Mu’minun ayat 21:
ا في بطونها ولكم فيها وإن لكم في النعام لعبرة نسقيكم مم
ا تأكلون منافع كثيرة ومنه
Artinya: Dan sesungguhnya pada binatang-binatang ternak, benar-benar terdapat
pelajaran yang penting bagi kamu, Kami memberi minum kamu dari air susu yang
ada dalam perutnya, dan (juga) pada binatang-binatang ternak itu terdapat faedah
yang banyak untuk kamu, dan sebagian daripadanya kamu makan (QS. Al-
Mu’minun: 21).
Dari ayat Al-qur’an pada surah Al-Mu’minun ayat 21 di atas dijelaskan bahwa
binatang-binatang ternak memiliki banyak manfaat bagi kehidupan manusia. Sebagai
2
binatang ternak, ruminansia juga membutuhkan pakan atau hijauan dalam
melangsungkan kehidupannya. Menurut ACIAR (2008), hijauan makanan ternak
yang dipergunakan untuk ternak ruminansia sebagian besar berupa rumput-rumputan,
sehingga rumput memegang peranan penting dalam penyediaan pakan dan telah
umum digunakan oleh peternak. Pakan hijauan yang diberikan sebaiknya hijauan
yang mempunyai kandungan nutrisi yang baik, tinggi dan disukai oleh ternak, seperti
rumput lapangan yang memiliki kandungan protein kasar (PK) sebesar 8,20% (Akbar,
2007).
Berbagai teknologi dapat diaplikasikan untuk mengatasi kebutuhan akan
tanaman pakan di lahan terbatas. Salah satunya adalah budidaya tanaman pakan
secara hidroponik. Hidroponik merupakan suatu cara bertanam tanpa media tanah.
Budidaya tanaman pakan menggunakan sistem hidroponik (hydroponic system)
menawarkan solusi yang tepat dalam penyediaan hijuan pakan yang memiliki
keterbatasan lahan dan iklim dalam budidaya tanaman pakan dan juga untuk
penyediaan hijauan pakan yang cepat dan bernutrisi tinggi (Krismawati, 2012).
Keuntungan dari budidaya tanaman secara hidroponik adalah keberhasilan
tanaman untuk tumbuh dan berproduksi lebih terjamin, perawatan lebih praktis dan
gangguan hama lebih terkontrol, pemakaian pupuk lebih hemat, tanaman yang mati
lebih mudah diganti dengan tanaman yang baru, tidak membutuhkan banyak tenaga
kasar karena metode kerja lebih hemat dan memiliki standarisasi, tanaman dapat
tumbuh lebih pesat dan dengan keadaan yang tidak kotor dan rusak, hasil produksi
lebih continue dan lebih tinggi dibanding dengan penanaman ditanah, beberapa jenis
tanaman dapat dibudidayakan di luar musim, harga jual hidroponik lebih tinggi dari
3
produk non-hydroponic, tidak ada resiko kebanjiran, erosi, kekeringan, atau
ketergantungan dengan kondisi alam dan tanaman hidroponik dapat dilakukan pada
lahan atau ruang yang terbatas, misalnya di atap, dapur atau garasi (Krismawati,
2012).
Beberapa tanaman yang di kembangkan sebagai sumber pakan ternak adalah
sorgum. Sorgum (Sorghum spp.) mempunyai kandungan gizi dan serat kasar yang
cukup memadai. Sorgum juga dapat digunakan sebagai sumber pakan ternak karena
sorgum memiliki kandungan nutrisi yang baik, bahkan kandungan proteinnya lebih
tinggi daripada beras (Sirappa, 2003). Sorgum yang digunakan pada penelitian ini
adalah sorgum Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2. Sorgum Pahat merupakan hasil
pemuliaan varietas sorgum yang dilakukan oleh Badan Tenaga Nuklir Nasional
(BATAN) yang menggunakan teknik iradiasi sinar gamma untuk memperbaiki sifat
agronomi dan kualitas sorgum (biji dan hijauan).
Varietas sorgum Samurai 1 dan Samurai 2 merupakan varietas yang
dihasilkan melalui pemuliaan mutasi radiasi dari sorgum Pahat sebagai varietas
mutan. Beberapa kelebihan sorgum Pahat sebagai varietas mutan adalah memiliki
produktivitas biji tinggi (5 ton/ha), batang semi pendek (158 cm), rendah tanin
(0.012%) dan multifungsi. Keunggulan Samurai 1 adalah produktivitas biji lebih
tinggi daripada Pahat (7.5 ton/ha), biomasa tinggi, kadar gula batang tinggi (12-18%)
sehingga cocok untuk bahan bioetanol. Samurai 2 memiliki keunggulan produktivitas
tinggi, biomasa total tanaman tinggi 47 ton/ha, kebal terhadap penyakit karat daun
dan busuk pelepah (Sihono et al., 2013).
4
Penelitian ini menggunakan teknik in vitro. Teknik in vitro atau yang dikenal
dengan teknik mengukur daya degradabilitas secara laboratoris adalah suatu teknik
alternatif untuk memecahkan permasalahan yang terdapat pada teknik in vivo
(Soebarinoto et al., 1990). Kecernaan suatu bahan pakan untuk ternak ruminansia
dapat dihitung secara akurat pada skala laboratorium dengan percobaan menggunakan
cairan rumen dan pepsin (Zakariah, 2012). Pada penelitian ini, teknik in vitro yang
digunakan adalah metode dua tahap Tilley dan Terry. Dua tahap in vitro pada
percobaan ini yaitu: tahap proses pencernaan fermentatif dan tahap proses pencernaan
secara hidrolisis (Andayani, 2010). Fase pencernaan fermentatif merupakan fase yang
pertama. Bahan pakan di fermentasi secara anaerob dalam cairan rumen yang
merupakan sumber mikroba rumen dan larutan buffer yang merupakan saliva buatan.
Fase selanjutnya adalah fase pencernaan hidrolitis. Pada fase kedua ini dilakukan
proses pencernaan hidrolitis atau enzimetis yaitu pencernaan oleh larutan asam
khlorida-pepsin pada kondisi aerob.
Berdasarkan penelitian Wahyono et al (2015) tentang evaluasi fermentabilitas
ransum kerbau yang mengandung sorgum dengan pendekatan In Sacco, In Vitro dan
RUSITEC membuktikan bahwa silase jerami sorgum samurai 2 sebagai sumber serat
mampu menggantikan sumber serat dari jerami sorgum Pahat. Maka di dalam
penelitian ini akan dilihat pengaruh varietas setiap sorgum yang dipanen pada umur 9
hari terhadap kandungan nutrisi dan tingkat kecernaan in vitro. Pengaruh varietas
diamati melalui penanaman sorgum varietas Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2
menggunakan metode hidroponik dengan umur panen pakan 9 hari. Pakan sorgum
5
Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2 yang telah dipanen kemudian diuji
fermentabilitasnya secara in vitro menggunakan metode dua tingkat Tilley and Terry
(1963). Kandungan nutrisi yang di uij meliputi kandungan bahan kering (BK), bahan
organik (BO), protein kasar (PK), ekstrak eter (EE), neutral detergent fiber (NDF)
dan acid detergent fiber (ADF). Tingkat kecernaan in vitro yang diukur meliputi
kecernaan bahan kering (KcBK) dan kecernaan bahan organik (KcBO). Produk
fermentasi rumen yang diukur meliputi konsentrasi NH3, volatile fatty acid (VFA),
pH.
1.2. Rumusan Masalah
1. Apakah sorgum Pahat, sorgum Samurai 1 dan sorgum Samurai 2 yang
ditanam secara hidroponik memiliki kandungan nutrisi yang tinggi untuk
hijauan pakan ternak ?
2. Bagaimana kecernaan in vitro dari sorgum Pahat, sorgum Samurai 1 dan
sorgum Samurai 2 yang di tanam secara hidroponik ?
1.3. Hipotesis
1. Hijauan sorgum Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2 yang ditanam secara
hidroponik memiliki kandungan nutrisi yang tinggi.
2. Sorgum Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2 yang ditanam secara hidroponik
memiliki tingkat kecernaan in vitro yang tinggi.
6
1.4. Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui kandungan nutrisi dan tingkat
kecernaan in vitro pada tiga varietas sorgum yaitu varietas Pahat, Samurai 1 dan
Samurai 2 yang di tanam secara hidroponik sebagai pakan ternak ruminansia.
1.5. Manfaat pengujian
Penelitian ini diharapkan dapat menyelesaikan masalah akan keterbatasan
lahan untuk budidaya pakan ternak dengan alternatif budidaya secara hidroponik.
Selain itu, pada penelitian ini juga diharapkan mampu memberikan informasi
tentang kandungan nutrisi dan kecernaan secara in vitro dari sorgum yang
ditanam secara hidroponik.
7
BAB II
TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Hijauan Pakan Ternak
Pakan adalah kebutuhan mutlak yang harus selalu diperhatikan dalam
kelangsungan hidup pemeliharaan ternak, apalagi pada ternak ruminansia yang
memerlukan sumber hijauan yang proporsinya lebih besar. Pemberian pakan dengan
cara dibatasi adalah yang cukup baik, tetapi kuantitas dan kualitasnya harus
diperhitungkan agar mencukupi kebutuhan ternak. Perlu dilakukan penyusunan
ransum yang didasarkan kepada kelas, jenis kelamin, keadaan fisiologis dan prestasi
produksi ternak bersangkutan (Santosa, 2006). Pakan digunakan untuk kebutuhan
harian hidup pokok, produksi dan bereproduksi. Sapi membutuhkan pakan berupa
hijauan 10% dari berat badan dan pakan tambahan berupa konsentrat 1-2% dari berat
badan berupa dedak halus, bungkil kelapa, gaplek atau ampas tahu (Tabrany, 2004).
Hijauan diartikan sebagai pakan yang mengandung serat kasar atau bahan
yang tak tercerna relatif tinggi. Konsentrat adalah pakan yang mengandung serat
kasar atau bahan yang tak tercerna relatif rendah. Contoh pakan hijauan yaitu rumput
gajah dan contoh konsentrat yaitu bungkil inti sawit (Siregar, 1993).
Bahan pakan adalah bahan yang dapat dimakan, dicerna dan digunakan untuk
kehidupan ternak tanpa menyebabkan penyakit dan keracunan. Beberapa hal penting
yang harus diperhatikan dalam memilih bahan pakan antara lain adalah (a) bahan
pakan harus mudah diperoleh dan sedapat mungkin terdapat di daerah sekitar
sehingga tidak menimbulkan masalah biaya transportasi dan kesulitan mencarinya,
9
(b) bahan pakan harus terjamin ketersediaannya sepanjang waktu dan dalam jumlah
yang mencukupi keperluan, (c) bahan pakan harus mempunyai harga yang layak dan
sedapat mungkin, mempunyai fluktuasi harga yang tidak terlalu besar, (d) bahan
pakan harus diusahakan tidak bersaing dengan kebutuhan manusia, (e) bahan pakan
harus dapat diganti oleh bahan pakan lain yang kandungan zat-zat makanannya
hampir setara, (f) bahan pakan tidak mengandung racun dan tidak dipalsukan atau
tidak menampakkan perbedaan warna, bau atau rasa dari keadaan normal
(Santosa,1995).
Kemampuan ternak ruminansia dalam mengkonsumsi pakan dipengaruhi oleh
banyak faktor, seperti faktor ternak itu sendiri, faktor pakan yang diberikan dan faktor
lainnya. Faktor ternak meliputi bobot badan, status fisiologik, potensi genetik, tingkat
produksi dan kesehatan ternak. Faktor pakan meliputi bentuk dan sifat pakan,
komposisi zat-zat gizi, toksisitas atau anti nutrisi. Sedangkan faktor lain meliputi
suhu dan kelembapan udara, curah hujan, lama siang atau malam dan keadaan ruang
kandang serta tempat pakan (Santosa, 1995).
Pakan dari tumbuh-tumbuhan dapat berupa hasil tanaman maupun hasil
sisanya misalnya jagung, dedak halus dan jerami, sedangkan pakan asal hewan lebih
banyak dari hasil produksi sisa yang sudah digunakan oleh manusia yaitu misalnya
tepung ikan, tepung tulang, daging dan lain-lainnya. Karena di dalam tubuh ternak
terdiri atas zat-zat gizi, maka ternak memerlukan zat-zat gizi dari luar yang dapat
dipakai oleh ternak untuk menjaga kehidupan dan produksi (Kusumo, 1994).
Ditambahkan Kusumo (1994) bahwa zat yang ada dalam pakan terdiri atas
komposisi zat kimia yang berguna untuk menunjang kehidupan suatu organisme
10
disebut zat gizi atau nutrien. Zat gizi inilah yang diperlukan oleh ternak, sesuai
dengan umur, besarnya ukuran tubuh ternak, jenis ternak dan tingkat produktivitas
suatu ternak terhadap kebutuhan tertentu akan suatu zat gizi (nutrient requirement).
2.2. Sorgum
Sorgum (Sorghum bicolor L.(Moench)) termasuk jenis tanaman serealia yang
berasal dari Ethiopia (Somantri et al., 2007). Sorgum digunakan sebagai bahan
pangan untuk manusia, pakan ternak dan bahan baku industri karena mengandung
nilai gizi yang cukup tinggi (Soeranto, 2007). Rismunandar (1989) menyatakan
bahwa sorgum digunakan sebagai pakan ternak dan sebagai pangan manusia pada
musim kering dimana ketersediaan bahan pangan lain menurun dan OISAT (2011)
menjelaskan bahwa sorgum memiliki kandungan nutrisi yang tinggi.
Tanaman sorgum yang digunakan sebagai pakan ternak unggas berupa biji,
sedangkan untuk ternak ruminansia menggunakan daun dan batang (Somantri et al.,
2007). Sorgum digunakan sebagai sumber hijauan karena mengandung serat kasar
yang cukup tinggi pada daun yaitu sekitar 32,2% (Hartadi et al., 1997). Sorgum
mempunyai struktur akar yang kuat dan dilapisi lilin, sehingga tanaman sorgum
relatif tahan kering dan dapat digunakan sebagai cadangan makanan pada musim
kemarau. Berdasarkan keunggulan-keunggulan tersebut, penggunaan sorgum sebagai
pakan ternak mulai dilakukan. Indrawan (2002) menggunakan daun dan batang
sorgum hasil mutasi oleh Badan Tenaga Nuklir Nasional. Gambar 1 berikut ini
merupakan gambar sorgum hasil mutasi yang dilakukan oleh BATAN. Berikut ini
pula merupakan taksonomi dari sorgum.
11
Gambar 1. Sorgum hasil mutasi radiasi PAIR-BATAN (Dokumentasi pribadi, 2017)
Kingdom : Plantae
Divisi : Magnoliophyta
Kelas : Liliopsida
Ordo : Poales
Famili : Poaceae
Genus : Sorgum
Spesies : Sorgum bicolor
Limbah sorgum (daun dan batang segar) dapat dimanfaatkan sebagai hijauan
pakan ternak. Potensi daun sorgum manis sekitar 14-16% dari bobot segar batang
atau sekitar 3 t daun segar/ha dari total produksi 20 t/ha. Soebarinoto et al (1996)
melaporkan bahwa setiap hektar tanaman sorgum dapat menghasilkan jerami 2,62 +
0,53 t bahan kering. Konsumsi rata-rata setiap ekor sapi adalah 15 kg daun segar/hari
(Direktorat Jenderal Perkebunan 1996). Daun sorgum tidak dapat diberikan secara
langsung kepada ternak, tetapi harus dilayukan dahulu sekitar 2-3 jam. Nutrisi daun
12
sorgum setara dengan rumput gajah dan pucuk tebu. Komponen nutrisi yang terdapat
dalam tanaman sorgum disajikan dalam Tabel 1.
Tabel 1. Komponen nutrisi dalam sorgum sebagai pakan ternak
Perakitan varietas sorgum bukan hanya dilakukan oleh Badan Litbang
Pertanian tetapi juga instituti lain seperti BATAN (Badan Tenaga Nuklir) yang
menggunakan teknik iradiasi sinar gamma untuk memperbaiki sifat agronomi dan
kualitas sorgum (biji dan hijauan). Induksi mutasi untuk meningkatkan keragaman
genetik tanaman sorgum menghasilkan satu varietas pada tahun 2013 yang diberi
nama Pahat (pangan sehat) untuk dikembangkan sebagai bahan pangan dan pakan
alternatif di daerah kering (Soeranto et al. 2002).
Dari sorgum Pahat tersebut kemudian BATAN melakukan pemuliaan kembali
yang menghasilkan varietas baru yaitu sorgum Samurai 1 dan sorgum Samurai 2.
Ketiga varietas sorgum tersebut dihasilkan melalui pemuliaan mutasi radiasi yang
memanfaatkan teknologi nuklir sehingga menghasilkan varietas mutan sorgum yang
berpotensi dalam industri pangan (kadar gula tinggi) dan bioetanol serta memiliki
palatabilitas tinggi. Tujuan pemuliaan sorgum dengan teknik mutasi radiasi adalah
Nutrien (% BK)
Bahan Kering
Bahan Organik
Protein Kasar
Ekstrak Ether
Serat Kasar
Ekstrak Tanpa Nitrogen
Ca
P
90.78
90.70
4.41
4.56
31.69
50.04
0.32
0.06
Sumber: Purwantari (2008)
13
untuk menghasilkan tanaman yang memiliki genotipe tahan terhadap kondisi lahan
sub-optimal, namun tetap memiliki produktivitas dan kualitas yang tinggi.
Beberapa kelebihan sorgum Pahat sebagai varietas mutan adalah memiliki
produktivitas biji tinggi (5 ton/ha), batang semi pendek (158 cm), rendah tanin
(0.012%) dan multifungsi. Keunggulan Samurai 1 adalah produktivitas biji lebih
tinggi daripada Pahat (7.5 ton/ha), biomasa tinggi, kadar gula batang tinggi (12-18%)
sehingga cocok untuk bahan bioetanol. Samurai 2 memiliki keunggulan produktivitas
tinggi, biomasa total tanaman tinggi 47 ton/ha, kebal terhadap penyakit karat daun
dan busuk pelepah (Sihono, et al., 2013). Ada pula data nilai kandungan nutrisi dari
sorgum pahat dan sorgum samurai 2 disajikan pada tabel 2.
Tabel 2. Data nilai kandungan nutrisi varietas sorgum
Perlakuan Bahan Kering
(BK) %
Protein Kasar
(PK) %
ABU
%
NDF
%
ADF
%
Sorgum Pahat 93.23 10.09 12.02 79.96 48.02
Sorgum Samurai 2 93.28 8.66 11.79 78.99 50.34
Sumber: Wahyono et al. (2016)
Sebagai komoditas tanaman pangan, pengembangan sorgum di Indonesia
masih menghadapi sejumlah kendala baik teknis maupun sosial ekonomi. Selain itu,
pemerintah juga belum menempatkan sorgum sebagai prioritas dalam program
perluasan areal tanam dengan alasan sorgum bukan kebutuhan pokok, sehingga
perluasan sorgum tidak masuk dalam rencana strategis dan belum ada anggaran
khusus (Direktorat Serealia, 2013). Berdasarkan data Direktorat Jenderal Tanaman
Pangan terjadi kecenderungan penurunan dari waktu ke waktu yang mana pada tahun
14
1990 menunjukkan luas tanam sorgum di Indonesia di atas 18.000 ha dan tahun 2011
luas tanam sorgum menurun menjadi 3.607 ha (Direktorat Jenderal Tanaman Pangan,
2012).
Tabel 3. Komposisi nutrisi limbah sorgum dan bahan lainnya sebagai pakan ternak
Limbah Protein
kasar %
Lemak
%
Serat kasar
%
Abu
%
Daun Sorgum 7,82 2,60 28,94 11,43
Rumput gajah 6 1,08 34,25 11,79
Pucuk tebu 5,33 0,90 35,48 9,69
Ubi kayu 20,40 6 22,80 9,90
Jerami Sorgum 4,40 1,60 32,30 8,90
Padi 4,50 1,50 28,80 20
Jagung 7,40 1,50 27,80 10,80
Kacang tanah 11,10 1,80 29,90 18,70
Kedelai 10,60 2,80 36,30 7,60
Ubi jalar 11,30 2,5 24,90 14,50
Sumber: Poespodiharjo (1983)
Nutrisi daun sorgum setara dengan rumput gajah dan pucuk tebu. Komposisi
kimia dari limbah sorgum dibandingkan dengan limbah pertanian lainnya disajikan
pada Tabel 3. Sedangkan data nilai daya cerna dan komponen serat dari limbah
sorgum dibandingkan dengan limbah lainnya disajikan dalam Tabel 4. Berdasarkan
data-data tersebut dapat disimpulkan bahwa nutrisi jerami sorgum tidak kalah
dibanding jerami jagung dan pucuk tebu.
Penurunan luas lahan ini berkaitan dengan tidak masuknya perluasan areal
tanam sorgum ke dalam rencana strategis dan belum ada anggaran khusus (Direktorat
Serealia, 2013) sehingga data perluasan areal tanam sorgum pada tahun 2014 belum
diperoleh secara konkrit. Kenyataan ini merupakan peluang sekaligus tantangan agar
produktivitas sorgum ditingkat petani dapat meningkat dengan meningkatkan
berbagai aspek budidaya pada tanaman sorgum.
15
Tabel 4. Nilai daya cerna in vitro dan in vivo serta fraksi serat limbah sorgum
Komponen Jerami Daun ubi
kayu
Pucuk tebu
Sorgum Jagung Kacang tanah
Bobot kering (%) 39,80 39,80 29,30 23,50 37,40
Dinding sel (%) 81,80 79,50 69,40 62,40 86,50
Serat (%) 76, 73,50 62 58,50 81,50
Hemiselulosa (%) 5,80 6 7,40 3,40 5
Lignin (%) 16 12,80 6,80 14,20 9,20
Silika (%) 4,40 20,40 1,90 1,60 4,60
BKTIV (%) 39,40 32,70 67,30 54,30 39,40
BOTIV (%) 39,20 30,70 59,00 48,70 36,30
Daya cerna in vivo
TNT (%) 33 36,60 67,20 54,30 39,40
Protein tercerna (%) 1 0,60 3,90 - 1,50
ET (kkal/kg) 1.766 902 2,992 - 1.917
Sumber: Hartadi et al. (1981)
Keterangan: BKITV: Bahan Kering Tanpa In Vitro; BOITV: Bahan Organik Tanpa
In Vitro; TNT: Trinitrotoluene.
2.3. Kandungan Kimia pada Sorgum
Sorgum memiliki kandungan serat pangan yang tinggi. Serat pangan yang
terdapat pada sorgum adalah selulosa, hemiselulosa, lignin, (Laroche et al., 2006).
Selulosa adalah zat penyusun tanaman yang terdapat pada struktur sel dimana struktur
selulosa dapat dilihat pada gambar 2. Kadar selulosa dan hemiselulosa pada tanaman
pakan yang muda mencapai 40% dari bahan kering. Bila hijauan makin tua proporsi
selulosa dan hemiselulosa makin bertambah (Tillman et al., 1998). Selulosa
merupakan komponen utama penyusun dinding sel tanaman. Kandungan selulosa
pada dinding sel tanaman tingkat tinggi sekitar 35-50% dari berat kering tanaman
(Lynd et al, 2002).
16
Gambar 2. Struktur selulosa (Gascoigne, 1960)
Hemiselulosa merupakan kelompok polisakarida heterogen dengan berat
molekul rendah. Jumlah hemiselulosa biasanya antara 15 dan 30 persen dari berat
kering bahan lignoselulosa (Taherzadeh, 1999). Hemiselulosa relatif lebih mudah
dihidrolisis dengan asam menjadi monomer yang mengandung glukosa, mannosa,
galaktosa, xilosa dan arabinosa. Struktur hemiselulosa dapat dilihat pada gambar 3.
Hemiselulosa mengikat lembaran serat selulosa membentuk mikrofibril yang
meningkatkan stabilitas dinding sel. Hemiselulosa juga berikatan silang dengan lignin
membentuk jaringan kompleks dan memberikan struktur yang kuat (Suparjo, 2010).
Gambar 3. Struktur hemiselulosa (Fangel dan Wegener, 1995)
Lignin adalah gabungan beberapa senyawa yang hubungannya erat satu sama
lain, mengandung karbon, hidrogen dan oksigen, namun proporsi karbonnya lebih
tinggi dibanding senyawa karbohidrat. Pada gambar 4 menunjukkan struktur lignin,
17
dimana lignin sangat tahan terhadap degradasi kimia, termasuk degradasi enzimatik
(Tillman et al., 1989). Lignin sering digolongkan sebagai karbohidrat karena
hubungannya dengan selulosa dan hemiselulosa dalam menyusun dinding sel, namun
lignin bukan karbohidrat. Hal ini ditunjukkan oleh proporsi karbon yang lebih tinggi
pada lignin (Suparjo, 2008). Pengerasan dinding sel kulit tanaman yang disebabkan
oleh lignin menghambat enzim untuk mencerna serat dengan normal. Hal ini
merupakan bukti bahwa adanya ikatan kimia yang kuat antara lignin, polisakarida
tanaman dan protein dinding sel yang menjadikan komponen-komponen ini tidak
dapat dicerna oleh ternak (McDonald et al., 2002).
Gambar 4. Struktur lignin (Fangel dan Wegener, 199l)
2.4. Hydroponic Fodder
Hidroponik adalah budidaya tanaman pada media tanam selain tanah dan
menggunakan campuran nutrisi esensial yang dilarutkan di dalam air (Sudarmodjo,
18
2008). Hydroponic fodder dapat dijadikan sebagai teknologi alternatif untuk
memproduksi pakan hijauan. Teknik hidroponik memiliki kemampuan untuk
menghasilkan produk berkualitas selain itu sistem hidroponik tidak tergantung
dengan musim sehingga tanaman dapat ditanam sepanjang tahun dan dapat ditanam
di lahan yang sempit dengan sistem green house. Budidaya tanaman dengan sistem
hidroponik umumnya dilakukan di dalam green house (Suhardiyanto, 2009).
Pemanfaatan teknik hidroponik untuk penanaman hijauan pakan diharapkan
dapat mengatasi keterbatasan produksi hijauan sebagai pakan sapi perah dan dapat
mengatasi kekurangan kandungan nutrisi pada pakan terutama vitamin esensial yang
sangat dibutuhkan sapi perah. Hijauan pakan yang diproduksi dengan teknik
hidroponik memiliki kandungan tinggi protein dan energi metabolisme yang sangat
mudah dicerna oleh hewan (Cader, 2002).
Budidaya sistem hidroponik fokus pada cara pemberian air dan hara yang
optimal, sesuai dengan kebutuhan tanaman, umur tanaman, dan kondisi lingkungan
sehingga tercapai hasil yang maksimum (Prihmantoro dan Indriani, 2001). Unsur hara
atau nutrisi diberikan ke tanaman dengan cara dilarutkan dalam air, kemudian
disirkulasikan ke akar tanaman secara berkala atau pun terus menerus tergantung dari
jenis sistem hidroponik yang dipakai (Lingga, 2000). Nutrisi yang digunakan dalam
budidaya dengan sistem hidroponik adalah nutrisi AB mix. Nutrisi AB Mix
mengandung 16 unsur hara esensial yang diperlukan tanaman, dari 16 unsur tersebut
6 diantaranya diperlukan dalam jumlah banyak (makro) yaitu N, P, K, Ca, Mg, S, dan
10 unsur diperlukan dalam jumlah sedikit (mikro) yaitu Fe, Mn, Bo, Cu, Zn, Mo, Cl,
Si, Na, Co (Agustina, 2004).
19
Salah satu tantangan dalam memproduksi hijauan pakan (green fodder)
dengan sistem hidroponik yaitu tumbuhnya jamur. Keadaan lingkungan (suhu,
kelembaban dan cahaya) yang kurang mendukung dapat menyebabkan jamur
berkembang yang kemudian merusak tanaman dan menyebabkan masalah kesehatan
pada ternak yang diberi pakan berjamur. Kerusakan pada biji jagung biasanya
disebabkan oleh jamur, sehingga diperlukan disinfektan untuk mengurangi
pertumbuhan jamur. Hypocloride aman digunakan dan bersifat bakterisid.
Disinfektan ini dipakai dengan cara perendaman selama 15 menit. Larutan ini
merupakan disinfektan yang sangat aktif pada semua bakteri, virus, jamur, parasit dan
beberapa spora (Anusavice, 2004).
Sutiyoso (2004) mengungkapkan bahwa keberhasilan sistem hidroponik ini
dipengaruhi oleh faktor lingkungan diantaranya kelembaban, temperatur dan angin.
Pemberian mulsa dimaksudkan untuk mencegah hilangnya air akibat penguapan,
memperkecil perbedaan suhu antara siang dan malam hari, mencegah penyinaran
langsung dari matahari yang menyebabkan kerusakan pada tanaman terutama pada
saat perkecambahan. Disamping itu, mulsa akan dapat mempertahankan kelembaban
nisbi udara dipermukaan tetap meningkat sehingga kecepatan penguapan dapat
dibatasi dan kelembaban udara dapat dipertahankan (Doring et al. 2006 dan Djazuli,
1986).
2.5. Ruminansia
Ruminansia adalah mamalia berkuku genap seperti sapi, kerbau, domba,
kambing, rusa, dan kijang yang merupakan sub ordo dari ordo Artiodactyla. Nama
20
ruminansia berasal dari bahasa Latin “ruminare” yang artinya mengunyah kembali
atau memamah biak, sehingga dalam bahasa Indonesia dikenal dengan hewan
memamah biak. Hijauan seperti rumput atau limbah pertanian yang tidak dimakan
oleh manusia dapat dikonversikan ke dalam makanan bernilai gizi tinggi yang dapat
dikonsumsi oleh manusia (Direktorat Jendral Budidaya Ternak Ruminansia, 2009).
Ternak ruminansia dapat dibagi menjadi dua kelompok, pertama kelompok
ternak ruminansia besar yaitu sapi dan kerbau dan kelompok ternak ruminansia kecil
yaitu kambing dan domba (Blakely dan Bade, 1998). Ternak ruminansia adalah
hewan ternak yang pada sistem pencernaanya mempunyai alat pencernaan yang
berbentuk rumen (perut besar). Berdasarkan susunan alat-alat pencernaanya hewan
ternak dibagi dalam 2 kelompok besar yaitu ternak berlambung tunggal dan ternak
berlambung jamak. Kelompok ternak berlambung jamak inilah yang biasa di sebut
sebagai ternak ruminansia. Dalam rumen (perut besar) ternak ruminansia terdapat
berjuta-juta mikroba yang hidup bersimbiosis dengan ternak inang dan sangat
berguna dalam proses pencernaan. Dengan mikroba-mikroba tersebut, ternak
ruminansia mampu memanfaatkan bahan makanan berkadar serat tingi seperti
rumput-rumputan dan dedaunan menjadi makanan (Fariani, 2008).
2.6. Pencernaan Ternak Ruminansia
Pencernaan merupakan serangkaian proses perubahan fisik maupun kimia
yang dialami bahan pakan ketika berada dalam saluran pencernaan. Pencernaan
mekanik ruminansia terjadi di mulut dengan tujuan memperkecil ukuran partikel
pakan. Pencernaan fermentatif terjadi di rumen dengan bantuan mikrobia rumen.
21
Proses pencernaan kimiawi dibantu oleh enzim pencernaan yang dihasilkan oleh
organ pencernaan (Van Soest, 1994).
Ruminansia memiliki perut majemuk yang terdiri dari rumen, retikulum,
omasum dan abomasum yang ditunjukkan pada gambar 5. Rumen merupakan
struktur terbesar yang tersusun dari 1/7 sampai 1/10 massa ternak. Pada bagian ini
merupakan tempat berlangsungnya proses fermentasi terbesar. Kondisi dalam rumen
adalah anaerobic dengan suhu 38-42○C. Tekanan osmosis pada rumen mirip dengan
tekanan aliran darah, pH dipertahankan oleh buffer karbonat dari saliva karena
adanya VFA dan amonia. Saliva yang masuk ke dalam rumen berfungsi sebagai
buffer dan membantu mempertahankan pH tetap pada 6,8. Selain itu saliva juga
berfungsi sebagai zat pelumas dan surfaktan yang membantu dalam proses mastikasi
dan ruminasi (Arora, 1995).
Rumen merupakan bagian saluran pencernaan vital pada ternak ruminansia.
Pada rumen terjadi pencernaan secara fermentatif dan pencernaan secara hidrolitik.
Pencernaan fermentatif membutuhkan bantuan mikroba dalam mencerna pakan
terutama pakan dengan kandungan selulase dan hemiselulase yang tinggi. Sedangkan
pencernaan hidrolisis membutuhkan bantuan enzim dalam mencerna pakan. Protein
pakan di dalam rumen akan mengalami hidrolisis menjadi asam amino dan
oligopeptida. Selanjutnya asam amino mengalami katabolisme lebih lanjut dan
menghasilkan amonia, VFA, dan CO2. Ternak ruminansia besar seperti sapi potong
dan sapi perah dapat memanfaatkan pakan dengan kandungan nutrisi yang sangat
rendah, akan tetapi boros dalam penggunaan energy (Van Soest, 1994).
22
Gambar 5. Sistem pencernaan ruminansia (Fariani, 2008)
Pakan berserat (hijauan) yang dimakan ditahan untuk sementara di dalam
rumen. Pada saat hewan beristirahat, pakan yang telah berada dalam rumen
dikembalikan ke mulut (proses regurgitasi), untuk dikunyah kembali (proses
remastikasi), kemudian pakan ditelan kembali (proses redeglutasi). Selanjutnya pakan
tersebut dicerna lagi oleh enzim-enzim mikroba rumen. Kontraksi retikulum rumen
yang terkoordinasi dalam rangkaian proses tersebut bermanfaat pula untuk
pengadukan digesta inokulasi dan penyerapan nutrien. Selain itu kontraksi retikulum
rumen juga bermanfaat untuk pergerakan digesta meninggalkan retikulo rumen.
Rumen dihuni tidak kurang dari empat jenis mikroba yaitu: bakteri, protozoa,
fungi dan virus (Preston dan Leng, 1987). Pada tabel 5 dapat dilihat bahwa jumlah
bakteri total kerbau (16,20 x 108 sel/ml) lebih tinggi daripada sapi (13,20 x 10
8
sel/ml). Persentase bakteri selulolitik dari total bakteri, pada kerbau (42,3 %) lebih
tinggi daripada sapi (19,5 %). Hal ini sejalan dengan pendapat Kosakoy et al. (1978)
23
yang melaporkan bahwa aktivitas bakteri selulolitik dalam cairan rumen kerbau lebih
tinggi daripada cairan rumen sapi. Akibatnya laju degradasi dan kecernaan benang
kapas pada cairan rumen kerbau jauh lebih cepat daripada cairan rumen sapi sehingga
kecernaan pada cairan rumen kerbau lebih tinggi. Sama seperti populasi bakteri total,
jumlah protozoa rumen pada kerbau (2,8 x 105 sel/ml) lebih tinggi dibandingkan sapi
(1,5 x 105sel/ml) (Pradhan, 1994). Hal inilah yang membuat tingkat efisiensi
kecernaan ransum pada kerbau lebih tinggi dibandingkan sapi (Ruangprim et al.,
2007).
Tabel 5. Jumlah bakteri dan protozoa rumen pada sapi dan kerbau yang diberi pakan
berserat tinggi
Mikrobiota Sapi Kerbau
Bakteri (x 108sel/ml)
Selulolitik 2,58 6,86
Proteolitik 0,41 0,54
Amilolitik 8,63 11,05
Total Bakteri 13,2 16,20
Protozoa (x 105 sel/ml)
Total Protozoa 1,15 1,59
Sumber: Pradhan (1994)
Bakteri pencerna pati yaitu Streptococcus bovis, Ruminobacter amylophilus,
Prevotella ruminicola, Succinomonas amylophilus dan Selenomonas ruminantium.
Sedangkan bakteri pencerna selulosa adalah Ruminococcus flavefaciens, R. albus, F.
succinogenes dan B. fibrisolvens. Bakteri tersebut mempunyai enzim yang mampu
menghancurkan karbohidrat kompleks menjadi glukosa dan VFA (Freer dan Dove,
2002). Arora (1995) menyatakan bahwa pertumbuhan populasi bakteri di dalam
24
rumen sangat dipengaruhi oleh konsentrasi amonia dan VFA yang merupakan sumber
kerangka karbon untuk pertumbuhan dan pembentukan protein mikroba.
Sutardi (1979) menyatakan bahwa adanya bakteri dan protozoa yang hidup
dalam rumen menyebabkan ruminansia dapat mencerna ransum yang mengandung
serat kasar tinggi. Pernyataan ini didukung pula oleh Arora (1995) yang menyatakan
bahwa protozoa berperan dalam pola fermentasi rumen dengan cara mencerna
partikel-partikel pati sehingga dapat mempertahankan pH dan menghasilkan
konsentrasi VFA rendah, selain itu protozoa juga memangsa bakteri untuk memenuhi
kebutuhannya karena kemampuan protozoa untuk mensintesis vitamin B kompleks
dan asam amino sangat rendah. Penghuni terbesar dalam cairan rumen adalah bakteri
yaitu 1010
-1012
sel/ml cairan rumen dan populasi terbesar kedua diduduki oleh
protozoa yang populasinya mencapai 105-10
6 sel/ml cairan rumen (Hungate, 1966).
2.6. Kecernaan In Vitro
In vitro adalah suatu kegiatan yang dilakukan di luar tubuh ternak dengan
mengikuti keadaan yang sesungguhnya pada ternak tersebut. Secara tidak langsung
kita dapat mengamati kegiatan yang terjadi di dalam rumen dengan cara in vitro
(Arora, 1989). Kondisi yang dapat dimodifikasi dalam hal ini antara lain penggunaan
larutan penyangga dan media nutrisi, tabung fermentasi, pengadukan dan fase gas,
suhu fermentasi, pH optimum, sumber inokulum, kondisi anaerob, periode waktu
fermentasi serta akhir proses fermentasi (Candra, 2013). Metode in vitro
dikembangkan untuk memperkirakan kecernaan dan tingkat degradasi rumen
terhadap pakan, dan mempelajari berbagai respon perubahan kondisi rumen. Metode
25
ini biasa digunakan untuk evaluasi pakan, meneliti mekanisme fermentasi mikroba
dan untuk mempelajari aksi terhadap faktor antinurisi, aditif dan suplemen pakan
(Lopez, 2005).
Metode in vitro sering digunakan untuk mengetahui kecernaan hewan, pakan
dan hasil proses pencernaan dalam saluran pencernaan ternak. Teknik in vitro
memberikan hasil analisa yang cepat dalam proses yang murah dan jumlah yang
digunakan sangat sedikit (Tisserand, 1989). Kelebihan metode in vitro adalah hasil
penelitian dapat diperoleh dalam waktu singkat beberapa bahan makanan yang tidak
dapat diberikan secara tunggal pada hewan, kecernaannya dapat diteliti dengan
metode in vitro tidak diperlukan pengumpulan feses atau sisa makanan, sehingga
dapat menghemat waktu, tenaga dan biaya. Sedangkan kekurangannya adalah
menggunakan waktu standar, padahal waktu lamanya bahan makanan berada dalam
rumen bervariasi menurut jenis dan bentuk makanan, tidak terjadi penyerapan zat-zat
makanan seperti yang terjadi pada hewan hidup (Rusdi, 2000).
Metode in vitro yang digunakan pada penelitian ini merupakan metode
evaluasi nilai nutrisi pakan dengan melalui pengukuran kecernaan menggunakan
mikroorganisme rumen dari cairan rumen segar. Metode ini memakai dasar sistem
pencernaan dua tahap Tilley dan Terry (1963). Tahap pertama meliputi perlakuan
fermentasi bahan pakan termasuk hijauan dalam fermentasi in vitro menggunakan
mikroba cairan rumen yang merupakan sumber mikroba rumen dan larutan buffer
yang merupakan saliva buatan segar selama 48 jam pada kondisi anaerob. Pencernaan
tahap kedua adalah pencernaan hidrolisis komponen bahan kering oleh asam klorida-
pepsin menggambarkan pencernaan dalam abomasums. Pencernaan tahap pertama
26
mensimulasi pencernaan dalam rumen dan tahap kedua mensimulasi pencernaan yang
terjadi di dalam organ alat pencernaan pasca rumen. Nilai koefisien cerna yang
diperoleh dari teknik analisis in vitro tersebut mendekati hasil dengan sistem in vivo
(Tilley dan Terry, 1963).
Metode in vitro Tilley dan Terry (1963) yang dimodifikasi oleh Makkar
(2002) merupakan proses metabolisme nutrien pakan yang terjadi di dalam rumen dan
abomasum atau di luar tubuh ternak. Metode ini sering digunakan untuk menduga
kecernaan komponen bahan pakan dalam saluran pencernaan ternak. Teknik in vitro
ini memberikan hasil analisa yang cepat dan proses yang murah, serta dapat
digunakan untuk mengevaluasi bahan pakan dalam jumlah besar. Namun metode ini
sulit diterapkan pada material seperti sampel jaringan atau fraksi dinding sel (Makkar,
2002).
Inkubasi 48 jam digunakan untuk mengetahui konsentrasi produk akhir
fermentasi sebelum terjadi pencernaan hidrolitik oleh enzim pepsin. Keragaman hasil
fermentasi dapat terjadi akibat berbagai faktor termasuk kualitas cairan rumen yang
digunakan. Jumlah dan jenis mikroba dalam cairan rumen sangat bervariasi
tergantung kepada jenis dan pola pemberian pakan serta waktu pengambilan cairan
rumen setelah pemberian pakan. Dengan teknik yang sama kecernaan bahan organik
dapat ditentukan dengan mengukur kadar bahan organik bahan pakan dan residu
proses fermentasi (McDonald et al., 2002).
27
2.7. Analisis Kandungan Nutrisi Pakan
Analisis kandungan nutrisi atau bisa disebut analisis proksimat adalah
analisisis dengan hasil yang diperoleh hanya mendekati nilai yang sebenarnya, oleh
karena itu untuk menunjukkan nilai dari sistem analisis proksimat selalu dilengkapi
dengan istilah minimum atau maksimum sesuai dengan manfaat fraksi tersebut
(Kamal, 1998). Dari sistem analisis proksimat dapat diketahui adanya 5 macam fraksi
yaitu: 1). Air, 2). Abu, 3). Protein kasar, 4). Lemak kasar (ekstrak ether), 5). Serat
kasar dan 6). Khusus untuk BETN nilainya dicarihanya berdasarkan perhitungan
yaitu: 100% dikurangi jumlah dari kelima fraksi yang lain. Analisis ini didasarkan
atas komposisi susunan kimia dan kegunaannya (Tilman et al., 1998).
Air dalam analisis proksimat adalah semua cairan yang menguap pada
pemanasan dalam beberapa waktu pada suhu 105-110 ºC dengan tekanan udara bebas
hingga mempunyai bobot tetap. Penentuan kandungan kadar air dari suatu bahan
bertujuan untuk menentukan kadar bahan kering dari bahan tersebut (Kamal, 1998).
Setelah pemanasan tersebut sampel bahan pakan disebut sebagai sampel bahan kering
dan penggunaanya dengan sampel disebut kadar air (Tillman et al.,1998). Kadar air
dalam bahan pakan terdapat dalam bentuk air bebas, air terikat lemah dan air terikat
kuat. Faktor yang mempengaruhi kadar air yaitu pengeringan dan kandungan air dari
suatu bahan pakan (Sutardi, 2006).
Kadar abu adalah banyaknya sisa pembakaran sempurna dari suatu bahan.
Suatu bahan apabila dibakar sempurna pada suhu 500 – 600 ºC selama beberapa
waktu, semua senyawa organiknya akan terbakar menjadi CO2, H2O yang menguap.
Mineral dapat menguap sewaktu pembakaran, contohnya Na (Natrium), Cl (Klor), F
28
(Fosfor), dan S (Belerang), oleh karena itu abu tidak dapat dan gas lain untuk
menunjukan adanya zat anorganik didalam pakan secara tepat baik secara kualitatif
maupun kuantitatif. Kadar abu dari pakan yang berasal dari hewan dan ikan dapat
digunakan sebagai indeks untuk kadar Ca (Kalsium) dan P (Fofsor), yang juga
merupakan tahap awal penentuan berbagai mineral yang lain (Kamal,1998).
Serat kasar merupakan residu dari bahan makanan atau hasil pertanian setelah
diperlakukan dengan asam atau alkali mendidih dan terdiri dari selulosa, dengan
sedikit lignin dan pentosa. Serat kasar juga merupakan kumpulan dari semua serat
yang tidak bisa dicerna, komponen dari serat kasar ini yaitu terdiri dari selulosa,
pentosa, lignin, dan komponen-komponen lainnya. Komponen dari serat kasar ini
serat ini tidak mempunyai nilai gizi akan tetapi serat ini sangat penting untuk proses
memudahkan dalam pencernaan didalam tubuh agar proses pencernaan tersebut
lancar (peristaltic) (Hermayati et al., 2006). Analisis kadar serat kasar adalah usaha
untuk mengetahui kadar serat kasar bahan baku pakan. Zat-zat yang tidak larut
selama pemasakan bisa diketahui karena terdiri dari serat kasar dan zat-zat mineral,
kemudian disaring, dikeringkan, ditimbang dan kemudian dipijarkan lalu didinginkan
dan ditimbang sekali lagi. Perbedaan berat yang dihasilkan dari penimbangan
menunjukkan berat serat kasar yang ada dalam makanan atau bahan baku pakan
(Murtidjo, 1987).
Protein kasar adalah nilai hasil bagi dari total nitrogen amonia dengan faktor
16% (16/100) atau hasil kali dari total nitrogen amonia dengan faktor 6,25 (100/16).
Nitrogen yang terdapat di dalam pakan tidak hanya berasal dari protein saja tetapi ada
juga nitrogen yang berasal dari senyawa bukan protein atau nitrogen nonprotein
29
(non–protein nitrogen/ NPN). Nilai yang diperoleh dari perhitungan diatas merupakan
nilai dari apa yang disebut protein kasar (Kamal,1998). Kadar protein suatu bahan
pakan secara umum dapat diperhitungkan dengan analisis kadar protein kasar.
Analisis kadar protein ini merupakan usaha untuk mengetahui kadar protein bahan
baku pakan. Analisis kadar protein digunakan untuk menguji kadar protein,
ditentukan kadar nitrogennya secara kimiawi kemudian angka yang diperoleh
dikalikan dengan faktor 6,25 = (100 : 16). Faktor tersebut digunakan sebab nitrogen
mewakili sekitar 16% dari protein (Murtidjo, 1987).
2.8. Volatile Fatty Acid (VFA)
Ransum yang diberikan kepada ternak ruminansia sebagian besar terdiri dari
karbohidrat. Di dalam rumen, polisakarida dihidrolisa menjadi monosakarida oleh
enzim-enzim mikroba rumen. Kemudian monosakarida tersebut, seperti glukosa,
difermentasi menjadi VFA (Volatile Fatty Acid) berupa asetat, propionat dan butirat,
serta gas-gas CH4 dan CO2. VFA yang terbentuk akan diserap melalui dinding rumen
dan gas CH4 serta CO2 akan hilang melalui eruktasi (McDonald et al., 2002). Proses
ini disebut juga glukoneogenesis yaitu diserapnya VFA ke dalam sistem peredaran
darah yang kemudian VFA diubah oleh hati menjadi gula darah. Gula darah inilah
yang akan mensuplai sebagian besar kebutuhan energi bagi ternak ruminansia
(Lehninger, 1982).
Menurut Arora (1995), peranan VFA sangat penting sebagai sumber energi
utama bagi ternak dan merupakan produk akhir fermentasi gula. Namun, selain itu
VFA juga merupakan sumber kerangka karbon bagi pembentukan protein mikroba.
30
Nilai VFA sebagai sumber energi hanya berbeda sedikit, akan tetapi keefisienannya
sebagai kerangka karbon jauh berbeda (Sutardi et al., 1980). Konsentrasi VFA
tergantung pada jenis ransum yang dikonsumsi (McDonald et al., 2002), sedangkan
konsentrasi VFA yang dibutuhkan untuk pertumbuhan optimal mikroba rumen, yaitu
80-160 mM (Sutardi, 1979). Skema pembentukan VFA dapat dilihat pada Gambar 6
(McDonald et al., 2002).
Gambar 6. Skema pencernaan karbohidrat didalam rumen dan perubahan asam
piruvat menjadi VFA (McDonald et al., 2002)
VFA dalam rumen yang dapat mendukung pertumbuhan mikroba berkisar
antara 70-150 mM (McDonald et al., 2002). Peningkatan produksi VFA dapat
mengindikasikan kemudahan suatu nutrien dalam pakan terutama karbohidrat dan
protein didegradasi oleh mikroba rumen, sehingga produksi VFA di dalam rumen
31
dapat digunakan sebagai tolak ukur fermentabilitas pakan yang berkaitan erat dengan
aktivitas dan populasi mikroba rumen (Hartati, 1998). Perubahan komposisi VFA
didalam rumen sangat berhubungan dengan bentuk fisik pakan, komposisi pakan,
tarafdan frekuensi pemberian pakan, serta pengolahan.
Konsentrasi VFA selain dipengaruhi oleh jenis ransum yang dikonsumsi
,dipengaruhi juga oleh jenis ternak ruminansia tersebut. Ulya (2007) memaparkan
bahwa konsentrasi VFA pada ternak sapi lebih kecil daripada ternak kerbau, kambing
dan domba. Hal ini disebabkan oleh mikroba ternak sapi kurang mampu
memfermentasi karbohidrat pada BBJP. Pradhan (1994) juga menyatakan bahwa
populasi bakteri total dalam cairan rumen sapi lebih rendah daripada kerbau sehingga
enzim yang dihasilkan mikroba pada cairan rumen kerbau lebih banyak dibandingkan
sapi. Enzim sangat berguna dalam memecah karbohidrat kompleks menjadi molekul
yang sederhana seperti VFA.
2.9. Amonia (NH3)
NH3 merupakan nitrogen yang paling banyak dibutuhkan mikroorganisme
rumen yang bersama dengan kerangka karbon dari sumber energi akan disintesa
menjadi protein mikroba. Hungate (1966), menjelaskan bahwa mikroorganisme
sangat penting untuk mengatur kecepatan tumbuh dan efisiensi penggunaan makanan
bagi ruminansia dan nutrisi mikroorganisme ini sangat penting untuk induk semang.
Faktor-faktor pembatas untuk pertumbuhan mikroba rumen adalah ketersediaan
ammonia, asam amino, sulfur dan mineral (Tamminga, 1982). Apabila nutrisi tidak
mencukupi maka pertumbuhan mikroorganisme dipengaruhi oleh ketersediaan energi.
32
NH3 yang tidak digunakan oleh bakteri akan diserap oleh dinding rumen (Van Soest,
1982).
Kandungan protein ransum yang tinggi dan proteinnya mudah didegradasi akan
menghasilkan konsentrasi NH3 di dalam rumen (McDonald et al., 2002). Selain itu,
tingkat hidrolisis protein bergantung kepada daya larutnya yang akan mempengaruhi
kadar NH3. Pengukuran NH3 in vitro dapat digunakan untuk mengestimasi degradasi
protein dan penggunaanya oleh mikroba. Produksi amonia dipengaruhi oleh waktu
setelah makan dan umumnya produksi maksimum dicapai pada 2-4 jam setelah
pemberian pakan yang bergantung kepada sumber protein yang digunakan dan mudah
tidaknya protein tersebut didegradasi (Wohlt et al., 1976). Kadar NH3 yang
dibutuhkan untuk menunjang pertumbuhan mikroba rumen yang maksimal berkisar
antara 4-12 mM atau setara dengan 5,6-16,8 mg/100 ml (Sutardi, 1980).
NH3 merupakan sumber nitrogen utama dan penting untuk sintesis protein
mikroba (Sakinah, 2005). NH3 hasil fermentasi tidak semuanya disintesis menjadi
protein mikroba, sebagian akan diserap ke dalam darah. NH3 yang tidak terpakai
dalam rumen akan dibawa ke hati diubah menjadi urea, sebagian dikeluarkan melalui
urine dan yang lainnya dibawa ke kelenjar saliva. Proses metabolisme protein dan
pembentukan NH3 ditunjukkan pada Gambar 7. Untuk mencegah dampak yang buruk
dari pemenuhan nitrogen amonia asal urea, produksi NH3 di dalam rumen akan
diproduksi terus-menerus walaupun sudah terjadi akumulasi (Sutardi, 1977).
Konsentrasi amonia yang optimum untuk menunjang sintesis protein mikroba dalam
cairan rumen sangat bervariasi, berkisar antara 6-21 mM (McDonald et al., 2002).
33
Gambar 7. Proses metabolisme protein pada ruminansia (Sakinah, 2005)
34
BAB III
METODE PENELITIAN
3.1. Tempat dan Waktu Pelaksanaan
Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Nutrisi Ternak Bidang Pertanian
Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi, Badan Tenaga Nuklir Nasional (PAIR-BATAN),
yang beralamat di Jalan Lebak Bulus Raya No. 49, Jakarta Selatan, Indonesia.
Penelitian ini dilaksanakan pada Bulan Februari sampai April 2017.
3.2. Alat dan Bahan
3.2.1. Alat
Alat yang digunakan dalam penelitian ini adalah ember, rak penanaman,
paralon hidroponik untuk saluran pengairan, talang air untuk wadah benih sorgum
yang akan di tanam, plastik hitam besar, timbangan digital, pengaduk, timbangan
pakan, penggiling besar, timbangan analitik (Sartorius), termos, oven (Fisher),
erlenmeyer, gelas ukur, hot plate (Kika), labu takar, spatula, bulb, gegep, cawan petri,
cawan porselin, cawan masir, desikator, tabung centrifuge 100 ml dan rak tabung,
sumbat karet yang dilengkapi dengan klep gas (rubber policemen with slit),
thermometer, gelas silinder, labu penyaring, kain kasa, pipet volumetrik, pH meter,
stirrer, buret, inkubator (Polystat), waterbath, seperangkat alat destilasi TVFA
(Glascol), cawan conway, pompa vakum, sintered glass, buret, statif, tanur listrik
(Pyrolabo), High Speed Centrifuge (Vario), tabung gas CO2 dan Nitrogen Analyzer
(Primacs).
35
3.2.2. Bahan
Bahan yang digunakan dalam penelitian ini adalah benih sorgum berbagai
varietas yaitu pahat, samurai 1 dan samurai 2 yang diperoleh dari Pusat Aplikasi
Isotop dan Radiasi (PAIR)-BATAN, pupuk cair mineral AB Mix dengan komposisi
pupuk A unsur hara makro (N, P, K, Ca, Mg, S) dan pupuk B unsur hara mikro (Fe,
Mn, Zn, B, Cu, Mo), 10% larutan pemutih (NaClO; Natrium Hipoklorit), larutan Acid
Detergent Solution (ADS) yang terdiri dari campuran (H2SO4 98%; Cetyl Trimethyl
Amonium Bromide (CTAB); Akuades), larutan Neutral Detergent Solution (NDS)
yang terdiri dari campuran (Akuades; natrium-lauryl sulfat; disodium ethylene
diaminetetraacetate (EDTA); Na2B4O7.10H2O; Na2HPO4, larutan pepsin HCl, HCl
0,1 N, petroleum ether, larutan Mc Dougall (larutan makromineral, mikromineral,
buffer, resazurin), cairan rumen dari kerbau fistula Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi
(PAIR)-BATAN, gas CO2, indikator pp, aquadest, rumput lapangan yang berasal dari
kawasan PAIR-BATAN dan vaselin.
3.3. Tahapan Penelitian
Penelitian ini meliputi beberapa tahapan yang dibagi menjadi tiga tahapan
besar, yaitu tahapan pertama merupakan tahap budidaya SHF meliputi tahap
pembuatan pupuk cair, penanaman, dan pemanenan. Tahap kedua adalah analisis
kandungan nutrisi meliputi analisis Bahan Kering (BK), Bahan Organik (BO), Protein
Kasar (PK), Ekstrak Eter (EE), Neutral Detergent Fiber (NDF) dan Acid Detergent
Fiber (ADF). Tahap terakhir adalah tahap analisis tingkat kecernaan SHF secara in
vitro meliputi analisis Kecernaan Bahan Kering (KcBK), Kecernaan Bahan Organik
36
(KcBO) dan produk fermentasi rumen (NH3, pH dan VFA). Penelitian ini
menggunakan rancangan acak lengkap (RAL) 3 perlakuan dan 1 kontrol positif
dengan lima pengulangan. Data yang diperoleh dianalisis menggunakan analysis of
variance (ANOVA) pada IBM SPSS versi 20.0.
3.4. Prosedur Kerja
3.4.1. Pembuatan Larutan Pupuk Cair
Pupuk cair untuk hidroponik biasanya menggunakan pupuk hidroponik AB
Mix. Pembuatan larutan pupuk cair yaitu dengan mencampurkan larutan pupuk A:
larutan pupuk B 5 ml : 5 ml kedalam 1 l air.
3.4.2. Penanaman Sorghum Hydroponic Fodder (Nugroho, 2015)
Penanaman dilakukan pada biji sorgum Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2 yang
sebelumnya direndam selama semalam di dalam air. Biji sorgum yang telah direndam
semalaman, kemudian direndam dalam larutan hipoklorit selama 20 menit lalu
dibilas. Biji sorgum lalu dipindahkan ke media hidroponik yaitu talang air yang
sebelumnya telah dialiri 10% larutan pemutih selama 15 menit untuk meminimalisir
tumbuhnya jamur pada biji sorgum, kemudian dibilas dengan air bersih dan diangin-
anginkan selama lebih kurang 10 menit untuk menghilangkan bau dari larutan
pemutih tersebut.
Penyebaran biji sorgum pada talang air disebar dengan kerapatan 0.36 g cm-2
dan ditutup dengan plastik hitam besar, kemudian dialiri larutan pupuk cair selama
dua menit setiap dua jam sekali. Lama penutupan dengan plastik hitam besar adalah 2
hari sejak penanaman dengan kondisi lembab tidak kering maupun tergenang hingga
37
tumbuh kecambah. Selanjutnya penanaman dilakukan terbuka tanpa plastik sampai
waktu panen tiba yaitu hari ke 9.
3.4.3. Pemanenan Sorghum Hydroponic Fodder (Nugroho, 2015)
Pemanenan dilakukan pada umur 9 hari setelah penanaman. Pemanenan
dilakukan dengan memisahkan bagian tumbuhan (daun, batang, dan akar) dari
medianya kemudian ditimbang berat segarnya dan dianalisis BK dan BO (Nugroho,
2015). Hasil SHF umur panen 9 hari diangin-anginkan diudara terbuka selama dua
sampai tiga hari. Selanjutnya SHF dikeringkan pada oven bersuhu 60oC selama dua
hari dan digiling serta disaring pada ukuran 2 mm (Wahyono, 2015). SHF dengan
umur panen 9 siap digunakan untuk analisis kandungan nutrisi dan analisis kecernaan
secara in vitro.
3.4.4. Analisis Kandungan Nutrisi SHF
3.4.4.1. Analisis Bahan Kering dan Abu (AOAC, 2005)
Pada tahap pengukuran kadar air dan bahan kering, pertama-tama cawan
porselen dicuci dengan akuades. Lalu dikeringkan dalam oven pada suhu 105oC
selama 1 hari. Kemudian dimasukkan dalam desikator selama 30 menit dan
ditimbang (a). Cawan yang telah ditimbang kemudian ditambah sampel sorgum yang
berbeda varietas masing-masing sebanyak 1 gr (b). Masing-masing dilakukan
pengulangan sebanyak 5 kali. Selanjutnya dimasukkan dalam oven selama 1 hari
pada suhu 105oC. Lalu dimasukkan dalam desikator selama 30 menit dan ditimbang
(c). Kemudian masukkan ke dalam tanur selama 6 jam pada suhu 600oC, didiamkan
selama sehari dan dimasukkan dalam desikator selama 30 menit. Kemudian
38
ditimbang (d). Selanjutnya dilakukan perhitungan Kadar Bahan Kering (BK), Kadar
Bahan Organik (BO), Kadar Air dan Kadar Abu dengan rumus sebagai berikut:
% Kadar BK = x 100%
% Kadar BO = x 100%
% Kadar Air = 100 - BK
% Kadar Abu = 100 – BO
Keterangan:
a = berat cawan kosong (gr)
b = berat cawan yang diisi dengan sampel (gr)
c = berat cawan berisi sampel yang sudah dikeringkan (gr)
d = berat cawan berisi sampel yang sudah jadi abu (gr)
3.4.4.2. Analisis Protein Kasar (PK), Ekstrak Eter (EE), Neutral Detergent Fiber
(NDF) dan Acid Detergent Fiber (ADF)
Protein Kasar ditentukan dengan menggunakan instrumen Nitrogen Analyzer.
Kras gas Helium dan Oksigen dibuka dan tombol Power PC dinyalakan. Software
pada PC dibuka dan pilihan Connection diklik lalu klik Autoconnect. Send Setting to
Analyzer dipilih untuk mengirim data agar sesuai dengan yang kita inginkan dengan
suhu combustion 1050˚C dan suhu reduction 600˚C lalu alat siap untuk analisis
dengan tanda berkedipnya lampu indikator. Menu view dipilih lalu Live Signal
Monitor dan Autozero Nitrogen diklik lalu tunggu sampai garis datar pada signal
kurang lebih 10000 di graphnya, tanda detektor sudah siap. Menu Template dipilih
39
lalu pilih New dan File Name. Jumlah sampel yang akan dianalisis dipilih dengan
memasukkan Berat Sampel, Position, dan Identification, serta Concentration TN
46,7% (urea) kemudian pilih OK.
Masing-masing sampel ditimbang (SHF Pahat, SHF Samurai 1 dan SHF
Samurai 2) 100 mg lalu ditempatkan ke crucible dan dimasukkan ke wadah
autosampler. Pilih analisis lalu klik New, File Name dimasukkan, dan simpan lalu
dipilih File Template yang sudah dibuat sebelumnya. Menu Start Analysis diklik.
Untuk mematikan instrumen, Setting dan Stand-by diklik. Dipilih Stand-by On dan
ditunggu hingga suhu Combustion 250˚C dan Reduction 30˚C. Saat Combustion
sudah tercapai suhu tersebut, pilih Exit. Tombol Power dimatikan dan PC dimatikan
serta tutup kran gas Oksigen dan Helium. Sampel melalui 2 tahapan, yaitu tahap
pembakaran dengan suhu tinggi 1000˚C dan tahap reduksi. Setelah itu, N2 diukur
dengan Thermal Conductivity Detection (TCD). Sinyal hasil pengukuran dari TCD
dapat dikonversikan ke total kandungan nitrogen atau dalam bentuk %.
Analisis ekstrak eter dilakukan dengan menimbang sampel 0,5 – 1 gram (X)
kemudian dibungkus dengan kertas saring bebas lemak. Kemudian sampel
dimasukkan ke dalam oven dengan suhu 105oC selama satu malam. Lalu bungkusan
sampel ditimbang tanpa didinginkan (Y). Setelah ditimbang, bungkusan dimasukkan
ke dalam sokhlet dan diekstraksi dengan menggunakan petroleum ether selama 8 jam.
Hasil sokhlet kemudian kembali di oven pada suhu 105oC selama semalam. Sampel
kembali ditimbang tanpa didinginkan (Z) (AOAC, 1990).
% Kadar lemak =
40
Kandungan NDF ditentukan dengan cara menimbang 0.5 g (a) sampel ke
dalam beaker glass 500 ml, kemudian ditambahkan 30 ml larutan Neutral Detergent
Soluble (NDS). Bahan tersebut dipanaskan hingga mendidih selama 60 menit
kemudian disaring dengan cawan masir yang diketahui beratnya (b) dengan bantuan
pompa vakum. Residu hasil penyaringan dibilas dengan air panas dan terakhir dengan
aseton secukupnya. Hasil saringan dipanaskan dalam oven pada suhu 105oC selama
semalam, dimasukkan ke dalam desikator dan ditimbang (c). Kandungan NDF dapat
dihitung dengan rumus (Ørskov dan McDonald 1979, Krishnamoorthy 2001) :
% NDF = x 100%
Kandungan ADF ditentukan dengan cara timbang sampel 0,5 gram (a gr)
kemudian masukkan kedalam beaker glass 500 ml. Tambahkan 30 ml larutan ADS
kemudian tutup rapat tabung reaksi tersebut. Refluks dalam air mendidih selama 1
jam. Larutan disaring dengan cawan masir yang telah diketahui beratnya (b gr) sambil
diisap dengan pompa vakum. Residu hasil penyaringan dibilas dengan air panas dan
terakhir dengan aseton secukupnya. Kemudian ovenkan pada suhu 105oC selama
semalam. Dinginkan dalam deksikator lebih kurang setengah jam kemudian timbang
(c gr) (Van Soest, 1976).
% ADF = x 100%
41
3.4.5. Analisis In Vitro Dua Tahap (Tilley and Terry, 1963)
3.4.5.1. Pengambilan Cairan Rumen (Wahyono, 2015)
Pengambilan cairan rumen kerbau dilakukan pada pagi hari sebelum diberi
pakan. Cairan rumen diambil dari kerbau fistula Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi
(PAIR)-BATAN. Cairan rumen kerbau diambil dan dimasukkan kedalam termos
yang sebelumnya diisi air pada suhu ± 39oC yang dibuang terlebih dahulu. Cairan
rumen disaring dengan kain kasa empat lipatan untuk menyaring material pakan.
Dalam proses penyaringan selalu diinkubasi pada suhu 39oC disertai aliran gas CO2.
Sebelum digunakan sebagai media fermentor, cairan rumen dalam termos harus
dialiri gas CO2 terlebih dahulu.
3.4.5.2. Pembuatan Larutan Saliva (Krishnamoorthy, 2001)
Pembuatan larutan Mc Dougall diawali dengan menyiapkan reagen
penyusunnya (larutan mikromineral, buffer, larutan makromineral dan resazurin).
Larutan mikromineral dibuat dengan mencampurkan CaCl2.2H2O 13.2 g,
MnCl2.4H2O 10 g, CoCl2.6H2O 1 g dan FeCl3.6H2O 8 g pada 100 ml akuades.
Larutan buffer dibuat dengan mencampurkan NaHCO3 35 g dan NH4HCO3 4 g pada
1000 ml akuades. Larutan makromineral dibuat dari Na2HPO4 5.7 g, KH2PO4 6.2 g
dan MgSO4.7H2O 0.6 g yang dicampurkan dalam 1000 ml akuades. Resazurin dibuat
dari 100 mg resazurin yang dilarutkan pada 100 ml akuades. Khusus untuk larutan
mikromineral dan resazurin harus selalu dikondisikan dalam keadaan dingin sebelum
digunakan. Pembuatan larutan Mc Dougall adalah dengan mencampurkan akuades
620 ml, mikromineral 0.16 ml, buffer 310 ml, makromineral 310 ml, resazurin 1.60
42
ml dan larutan pereduksi (Na2S.H2O; NaOH) 60 ml. Larutan Mc Dougall sebelum
digunakan harus disiapkan dalam kondisi inkubasi pada suhu 39oC.
3.4.5.3. Tahap Inkubasi Tilley and Terry (Tilley and Terry, 1963)
Sampel kering ditimbang 0,5 gram. Sampel dimasukkan kedalam tabung.
Ditambahkan 50 ml campuran larutan buffer dan cairan rumen (4:1) kedalam setiap
tabung. Tabung dialiri dengan CO2 dan tabung ditutup dengan penutup karet agar
kondisi dalam tabung anaerob. Tabung dimasukkan kedalam waterbath pada suhu
38°C selama 48 jam dan dikocok 2 kali dalam sehari. Blanko berisi larutan buffer dan
cairan rumen. Setelah 48 jam, tabung-tabung diangkat dari waterbath, kemudian
direndam dalam air dingin, sesekali digojok. Tabung di centrifuge pada 2500 rpm
selama 10 menit. Supernatant yang terdapat pada tabung diambil atau dibuang.
Ditambahkan 50 ml larutan pepsin HCl (0,2% larutan pepsin dalam 0,1 N HCl) dan
diaduk dengan spatula. Tabung dan isinya kemudian diinkubasi kembali dalam
waterbath selama 48 jam pada suhu 38°C dengan digojok 2 kali per hari. Setelah 48
jam, tabung diambil dan di centrifuge. Supernatant dibuang, lalu residu dipindahkan
ke dalam crucible yang telah ditimbang. Crucible dan residu dikeringkan di dalam
oven dengan suhu 105°C selama satu malam, kemudian didinginkan kedalam
desikator dan ditimbang. Selanjutnya, crucible dan residu dimasukkan kedalam tanur
dengan suhu 500°C selama satu malam untuk mengetahui bahan organik.
3.4.5.6. Pengukuran pH (AOAC, 2005)
PH meter dinyalakan dengan menekan tombol start dan dilakukan kalibrasi
alat dengan menggunakan pH standar. Lalu elektroda pH dimasukkan ke dalam
43
cairan sampel dan dicatat nilai pHnya setelah nilai stabil. Setelah itu elektroda
diangkat dan dibilas dengan akuades sebelum pengujian sampel berikutnya.
3.4.5.7. Pengukuran NH3 (Conway 1962)
Pengukuran konsentrasi NH3 dilakukan menggunakan metode Mikrodifusi
Conway. Sebelum pengukuran, vaselin dioleskan pada bagian bibir dan tutup cawan
agar cawan tertutup rapat sehingga dapat memerangkap NH3. Cairan sampel hasil
inkubasi sebanyak 1 ml dimasukkan pada ruang bagian kanan. Pada ruang bagian kiri
dimasukkan K2CO3 jenuh 1 ml. Pada bagian tengah cawan Conway diisi dengan 1 ml
asam borat (H3BO3) yang berindikator merah metil dan hijau brom kresol. Cawan
Conway ditutup rapat dan digerakkan hingga sampel dan Na2CO3 jenuh tercampur
rata dan dibiarkan selama 2 jam pada suhu kamar.
Pada prosesnya, Ion hidrogen asam borat akan mengikat N-Amonia dari
sampel dan warna asam borat berubah menjadi hijau brom kresol. Asam borat
kemudian dititrasi dengan HCl 0.014 N sampai warnanya berubah menjadi merah
muda.
Kadar NH3 dihitung dengan persamaan sebagai berikut:
NH3 (mM) = N HCl x volume titrasi x 100/17
3.4.5.8. Produksi VFA Total (General Laboratory Procedures 1966)
Penentuan produksi VFA dilakukan dengan metode destilasi uap (General
Laboratory Procedures, 1966). Sampel hasil inkubasi disentrifus 3000 rpm selama 10
menit. Sebanyak 5 ml supernatan ditambahkan 1 ml H2SO4 15% kemudian
dimasukan dalam tabung khusus dan segera dimasukkan pada alat destilasi. Tabung
khusus tersebut dihubungkan dengan labu pendingin dan labu yang berisi aquades
44
yang dipanaskan. Hasil destilat ditampung dalam erlemeyer berisi 5 ml NaOH 0.5 N.
Proses destilasi dilakukan sampai destilat yang ditampung mencapai volume lebih
kurang 300 ml. Destilat ditambahkan 1-2 tetes indikator phenoptealein dan dititrasi
dengan HCl 0.5 N sampai warna berubah dari merah muda menjadi bening.
Produksi VFA total dihitung dengan rumus:
Total VFA = (a – b) x N HCl x (1000/5 mM)
Keterangan:
a = ml HCl volume titrasi Blangko (5 ml NaOH);
b = ml volume titrasi sampel
3.4.3.9. Pengukuran Kecernaan Bahan Kering dan Bahan Organik (BSN, 1992)
Pengukuran degradasi untuk bahan kering hampir sama tahapannya dengan
penentuaan kadar bahan kering. Sampel yang diinkubasi dalam rumen disaring
dengan cawan masir, kemudian cawan masir dioven pada suhu 105oC dan dilakukan
penimbangan cawan masir hingga konstan. Nilai degradasi bahan kering ditentukan
dari selisih berat bahan kering sebelum dan sesudah sampel diinkubasi, seperti yang
tercantum pada rumus sebagai berikut.
%KcBK = 100 - %BK tidak terdegradasi
Pengukuran bahan organik dilakukan dengan proses pengabuan sebagian
sampel pakan ke tanur bersuhu 600oC. Kadar bahan organik dihitung dari selisih
berat sampel sebelum dan sesudah diabukan. Degradasi bahan organik dihitung
dengan rumus:
%KcBO = 100 - %BO tidak terdegradasi
45
3.4.6. Analisis statistik
Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 4
perlakuan dan lima kali ulangan. Perlakuan pada penelitian ini adalah:
1. Kontrol Positif ( Rumput Lapangan)
2. SHF Pahat
3. SHF Samurai 1
4. SHF Samurai 2
Data yang diperoleh kemudian dianalisis menggunakan analysis of variance
(ANOVA) pada IBM SPSS versi 20.0 dengan batas kepercayaan 95% (α = 0,05).
46
3.5. Bagan Alir Penelitian
Gambar 8. Bagan alir penelitian
media hidroponik
penanaman benih
sorgum
pahat
sorgum
samurai 1
sorgum
samurai 2
pemanenan pada hari ke-9
pengeringan
penggilingan ukuran 1mm
analisis
kecernaan in vitro Tilley
& Terry (1963)
kandungan
nutrisi
fermentatif oleh mikroba
(inkubasi dalam rumen dan
buffer)
enzimatis oleh
larutan asam
klorida dan pepsin
- konsentrasi NH3
- volatile fatty acid (VFA)
- pH
Kecernaan BK
dan BO
-BK
-BO
-Protein Kasar (PK)
-Lemak Kasar (LK)
-Neutral Detergent Fiber
(NDF)
-Acid Detergent Fiber
(ADF)
47
BAB IV
HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Profil Nutrisi
Pada tabel 6 menyajikan data kandungan nutrisi dari tiga varietas Sorghum
Hydroponic Fodder (SHF) dengan waktu tanam 9 hari. Kandungan nilai BK dan LK
terendah ditunjukkan pada varietas sorgum Samurai 2 dengan nilai masing-masing
91,53% dan 7,26% (P<0,05). Kandungan NDF dari ketiga perlakuan tidak berbeda
nyata. Nilai BO dan ADF tertinggi dari ketiga varietas ditunjukkan pada varietas
sorgum Samurai 2 dengan nilai masing-masing 95,78% dan 31,83% (P<0,05).
Kandungan PK tertinggi ditunjukkan pada varietas sorgum Samurai 1 bila
dibandingkan dengan sorgum varietas Pahat sebagai varietas indukan (P<0,05).
Tabel 6. Profil nutrisi sorghum hydroponic fodder (SHF) dengan 9 hari waktu tanam
Profil nutrisi (%) Perlakuan
Pahat Samurai 1 Samurai 2 SEM
Bahan kering (BK) 93,64b
93,38b
91,53a
0,365
Bahan organik (BO) 95,10b 95,32
b 95,78
a 0,212
Protein kasar (PK) 16,33a 19,80
b 17,82
b 0,463
Ekstrak Eter (EE) 8,44a 10,97
b 7,26
a 0,251
Neutral detergent fiber (NDF) 53,35 52,26 51,48 0,947
Acid detergent fiber (ADF) 20,90a 26,16
b 31,83
c 1,326
Keterangan: superscript (a,b,c) berbeda pada baris yang sama menunjukkan
perbedaan yang nyata (P<0,05).
4.1.1. Bahan Kering (BK)
Hasil penelitian pada profil nutrisi BK dari tiga varietas SHF yang memiliki
nilai paling besar adalah pada SHF Pahat sebesar 93,64%. Nilai kandungan BK pada
48
SHF Pahat dan SHF Samurai 2 berbeda nyata (P<0,05) dengan masing-masing nilai
93,64% dan 91,53%. Kandungan nilai nutrisi BK pada SHF pahat dan SHF Samurai 1
tidak berbeda nyata dan nilai SHF Samurai 1 dengan SHF Samurai 2 berbeda nyata
(P<0,05) dengan nilai masing-masing 93,38% dan 91,53%.
Kandungan BK pada SHF dengan waktu tanam 9 hari merupakan waktu
terbaik dibandingkan SHF dengan waktu tanam 7 dan 8 hari yaitu sebesar 94,13%.
Hal ini sesuai dengan penelitian Khotimah (2017) yang didukung oleh penelitian
Koten et al. (2012). Pada penelitian tersebut, dilaporkan bahwa kandungan BK
tertinggi sorgum (Sorghum bicolor (L.) Moench) yang ditanam secara konvensional
dengan varietas lokal rote sebagai hijauan pakan ruminansia dan dipanen pada umur
50, 70 dan 90 hari memiliki kandungan BK tertinggi pada umur panen 90 hari yaitu
sebesar 86,58%. Hal ini disebabkan karena makin lama waktu yang tersedia bagi
tanaman untuk berfotosintesis maka semakin banyak terjadi akumulasi hasil
fotosintesis di dalam jaringan tanaman (Koten et al., 2012). Gardner et al. (2008)
juga berpendapat bahwa makin lama terjadinya asimilasi, makin tinggi berat kering
tanaman.
Kandungan BK pada sorgum varietas Pahat paling tinggi dibanding 2 varietas
lainnya karena sorgum Pahat merupakan varietas mutan yang memiliki produktivitas
biji tinggi dan dikembangkan sebagai bahan pangan dan pakan. Salisbury dan Ross
(1995) menjelaskan bahwa komponen utama dalam berat kering tanaman adalah
senyawa polisakarida dan lignin pada dinding sel, ditambah komponen sitoplasma
seperti protein, lipid, asam amino dan asam organik.
49
4.1.2. Bahan Organik (BO)
Pada tabel 6 menunjukkan hasil BO tertinggi dari ketiga varietas SHF
ditunjukkan pada SHF Samurai 2 sebesar 95,78% yang berbeda nyata dengan SHF
pahat dan SHF Samurai 1 (P<0,05). Kandungan nilai BO terendah pada SHF pahat
sebesar 95,10% dan tidak berbeda nyata dengan nilai kandungan BO pada SHF
Samurai 1 sebesar 95,32%.
Berbanding terbalik dengan BK, BO pada sorgum varietas Pahat memiliki
nilai terendah dan varietas samurai 2 memiliki nilai tertinggi. Koten et al. (2012)
menjelaskan produksi BO hijauan sorgum semakin meningkat dengan meningkatnya
umur panen dan jumlah nitrogen ternyata mempengaruhi produksi BO. Hasil BO
pada penelitian ini tidak berbeda nyata namun memiliki nilai yang cukup tinggi
karena SHF dipanen pada fase generatif atau fase dimana tanaman akan memproduksi
batang dan daun secara maksimal. Pertumbuhan daun dan batang mengakibatkan
penurunan kandungan nutrisi pada benih, seperti kandungan protein, karbohidrat
mudah larut, mineral (Koten et al., 2012).
Purwanti (2008) berpendapat bahwa kandungan BO jerami sorgum yang
ditanam secara konvensional umur panen 80 hari yang dapat digunakan sebagai
pakan ternak sekitar 90,70%. BO SHF dari ketiga varietas yang diperoleh pada
penelitian ini sebesar 95,10%, 95,32% dan 95,78% yang menunjukkan nilai tersebut
sudah mencukupi kebutuhan pakan untuk ruminansia.
50
4.1.3. Protein Kasar (PK)
Nilai PK tertinggi pada varietas sorgum Samurai 1 yaitu 19,80% yang berbeda
nyata dengan SHF varietas Pahat yaitu sebesar 16,33% (P<0,05) dapat dilihat pada
tabel 6. Sedangkan SHF varietas Samurai 2 tidak memiliki beda nyata dengan SHF
varietas samurai 1 yang memiliki nilai sebesar 17,82%. Kandungan PK dapat
dikaitkan dengan berkurangnya beberapa komponen BK, terutama karbohidrat mudah
larut karena digunakan sebagai komponen dalam proses respirasi selama
perkecambahan sehingga waktu tumbuh yang lebih lama menyebabkan penurunan
komponen BK dan meningkatkan kadar protein (Naik et al., 2015). Berikut reaksi
respirasi pada sel tumbuhan:
C6H12O6 + O2 → 6CO2 + H2O + energi
Dalam pembentukan protein, N adalah bagian tak terpisahkan dari klorofil
yang mampu mengubah energi cahaya menjadi energi kimia yang dibutuhkan untuk
fotosintesis. Bentuk dasar klorofil adalah cincin porphyrin yang disusun oleh empat
cincin pyrrole, masing-masing terdiri atas satu atom N dan empat atom C di mana
sebuah atom Mg terikat ditengah-tengah cincin porphyrin tersebut. Kecukupan suplai
N diasosiakan dengan aktivitas fotosintesis yang tinggi, pertumbuhan vegetatif yang
bagus, dan warna daun hijau tua. Ketercukupan suplai N mempengaruhi penggunaan
karbohidrat. Ketika suplai kurang, karbohidrat akan dideposit pada sel vegetatif yang
dapat menyebabkan penebalan. Namun ketika suplai N cukup dan kondisi
mendukung untuk pertumbuhan, maka protein akan terbentuk dari proses produksi
karbohidrat. Sedikitnya karbohidrat yang disimpan pada bagian vegetatif, maka
51
menghasilkan tanaman yang lebih sukulen (Havlin et al. 2005). Gambar 9
menunjukkan reaksi pembentukan protein melalui penyerapan N oleh benih:
Gambar 9. Proses pembentukan asam amino (Sumber: Kamal, 1994)
Koten et al. (2012) berpendapat bahwa urea berpengaruh dalam tinggi
rendahnya PK. Semakin banyak dosis urea yang digunakan maka semakin banyak
pula N yang tersedia sebagai bahan baku pembentukan protein. Nitrogen merupakan
salah satu unsur hara esensial yang termasuk ke dalam unsur hara makro. Nitrogen
dapat diserap tanaman dalam bentuk ion NH4+
dan NO3- (Lakitan, 2010). Peranan
utama nitrogen bagi tanaman adalah untuk merangsang pertumbuhan secara
keseluruhan, khususnya batang, cabang dan daun (Lingga et al., 2008). Nitrogen
merupakan bahan penyusun asam amino, protein dan enzim serta esensial untuk
pembelahan dan pembesaran sel. Pandutama et al. (2003) menjelaskan bahwa makin
banyak N tersedia bagi tanaman maka semakin tinggi pula produksi protein sorgum.
52
Daun dan batang pada tanaman sorgum dapat mencerminkan kualitas
tanaman. Selain itu, persentase daun berpengaruh terhadap kandungan PK tanaman.
Komponen utama penyusun zat hijau daun (klorofil) adalah Nitrogen, dimana N
tersebut merupakan sumber utama PK tanaman. Daun merupakan kontributor utama
kadar protein pada tanaman sorgum (Hanna et al. 1981; Snyman dan Joubert 1996).
Penurunan rasio daun atau batang dan peningkatan persentase batang kemungkinan
akan menurunkan kualitas hijauan karena kandungan PK daun lebih besar dan daun
merupakan bagian yang lebih mudah dicerna dibandingkan dengan batang (Silungwe,
2011).
Sorgum sebagai pakan ternak sapi perah menurut Nutrient Requirements of
Dairy Cattle (2001) memiliki kandungan PK sekitar 11,6%. Purwanti (2008) juga
melaporkan bahwa penggunaan jerami sorgum yang ditanam secara konvensional
umur panen 80 hari sebagai pakan ternak untuk PK sebesar 4,41%. Bean et al. (2013)
juga melaporkan kandungan PK sorgum berbagai varietas selama beberapa tahun
tercatat antara 5.4% sampai 7.8% dengan kekonsistenan varietas bmr memiliki
kandungan PK terendah. Dalam penelitian ini kandungan PK berkisar antara 16%
sampai 19%. Tabel 6 menunjukkan bahwa varietas atau galur sorgum tidak
berpengaruh terhadap kadar PK tanaman. Hasil yang diperoleh pada penelitian ini
menunjukkan bahwa penggunaan SHF varietas Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2 telah
mencukupi kebutuhan ternak untuk asupan PK.
53
4.1.4. Ekstrak Eter (EE)
Hasil penelitian dari ketiga varietas SHF pada tabel 6 didapatkan EE tertinggi
pada varietas sorgum Samurai 1 sebesar 10,97% yang berbeda nyata dengan nilai EE
SHF Pahat yaitu 8,44% (P<0,05). Namun bila dibandingkan dengan hasil nilai EE
pada SHF Pahat dan Samurai 2 tidak memiliki beda nyata. Nilai EE terendah
dihasilkan oleh SHF Samurai 2 sebesar 7,26%.
Ekstrak eter biasa disebut sebagai lemak kasar. Lemak merupakan sumber
energi selain karbohidrat. Kadar lemak kasar pada daun sorgum tergolong besar,
menurut Wahyono dan Hardianto (2004), kadar lemak kasar untuk pakan ruminansia
dibedakan untuk kebutuhan pembibitan dan penggemukan, untuk pembibitan
diperlukan lemak kasar sebanyak 2,6% sedangkan untuk penggemukan 3%. Daun
sorgum memiliki kadar lemak kasar yang cukup besar karena adanya lapisan lilin
pada permukaan daun. Lapisan lilin pada tumbu-tumbuhan menghambat kehilangan
air karena transpirasi. Lilin larut dalam eter dan termasuk ke dalam ekstrak eter
sehingga nilai lemak kasar pada hijauan makanan ternak mempunyai nilai lebih tinggi
(Tillman et al., 1991).
Peningkatan EE bisa disebabkan produksi klorofil yang berhubungan dengan
pertumbuhan tanaman dalam pengukuran EE sebab klorofil membantu menghasilkan
karbohidrat melalui proses fotosintesis, hasil fotosintesis berupa karbohidrat
digunakan untuk sintesis triasilgliserol (Cuddeford, 1989). Klorofil merupakan
tempat terjadinya proses fotosintesis yang menghasilkan karbohidrat. Karbohidrat
melalui proses glikolisis menghasilkan asam piruvat, kemudian senyawa piruvat yang
54
dihasilkan akan dikonversi menjadi asetil ko-A oleh kompleks enzim piruvat
dehidrogenase yang terdapat di plastida (Durrett et al., 2008). Asetil Ko-A yang
dihasilkan selanjutnya diaktifkan menjadi malonil Ko-A yang dikatalis oleh
kompleks enzim asetil ko-A karboksilase (ACC) di plastida (Nikolau et al., 2003).
Malonil Ko-A yang dihasilkan oleh ACC menyusun donor karbon untuk masing-
masing siklus lintasan biosintesis asam lemak. Berikut reaksi yang terjadi:
Glukosa Asam Piruvat Asetil Ko-enzimA Asam lemak
Hasil EE pada penelitian ini dari ketiga varietas menunjukan tidak berbeda
nyata sama seperti penelitian yang telah dilakukan oleh Praptiwi et al., 2010 bahwa
sorgum varietas Numbu, Genjah dan Kawali memiliki nilai EE yang tidak berbeda
nyata yaitu 3,30%, 3,88% dan 3,59%. Hal ini menunjukkan bahwa perbedaan varietas
tidak berpengaruh pada hasil EE yang didapatkan.
4.1.5. Neutral detergent fiber (NDF) dan Acid detergent fiber (ADF)
Kandungan NDF tertinggi pada penelitian ini sebesar 53,35% yaitu pada SHF
Pahat kemudian menurun pada varietas Samurai 1 sebesar 52,26% dan nilai
kandungan NDF terendah pada SHF Samurai 2 yaitu 51,48%. Nilai NDF dari ketiga
varietas tersebut hanya berkisar antara 51–53% dan tidak memiliki beda nyata.
Sedangkan kandungan ADF berkisar antara 20-31%. Kandungan ADF tertinggi
terdapat pada SHF Samurai 2 sebesar 31,83% yang berbeda nyata dengan nilai
kandungan ADF pada SHF Samurai 1 yaitu 26,16% (P<0,05). Kandungan ADF
terendah terdapat pada SHF Pahat sebesar 20,90% yang berbeda nyata dengan kedua
varietas SHF lainnya (P<0,05).
55
Menurut Pangestu et al., 2009, NDF bahan pakan hasil samping agroindustri
berbeda antar bahan pakan, berkisar antara 16,9 dan 78,5%. Sehingga masih banyak
komponen serat yang masuk ke dalam usus dan tidak dapat dicerna. NDF mewakili
kandungan dinding sel yang terdiri dari lignin, selulosa, hemiselulosa dan protein
yang berikatan dengan dinding sel (Suparjo, 2010). Semakin tua tanaman kandungan
ADF, NDF, selulosa, hemiselulosa dan lignin juga semakin bertambah. Komponen
dinding sel tanaman tersebut merupakan bagian yang sukar dicerna, bahkan
komponen lignin tidak bisa dicerna sama sekali (Praptiwi et al., 2010). Mikroba
rumen hidup di rumen ternak ruminansia dan sel pencernaan paling belakang (sekum)
ternak tertentu. Pembagian hijauan menurut Van Soest (1982) dengan sistem analisa
detergent terdapat pada gambar 10.
Gambar 10. Skema pemisahan bagian-bagian hijauan segar pemotongan (forage)
dengan menggunakan detergent (Van Soes, 1982)
56
Koten et al., 2012 juga berpendapat bahwa kandungan NDF dan ADF yang
semakin tinggi seiring dengan meningkatnya umur panen SHF karena memasuki fase
generatif pada tanaman maka rasio batang dan daun meningkat yang mengakibatkan
kandungan serat kasar dan ligninnya bertambah. Praptiwi (2011) melaporkan dalam
penelitiannya bahwa kandungan NDF beberapa varietas sorgum yaitu Numbu, Hegari
Genja dan Kawali berkisar 72-77%, sedangkan untuk ADF berkisar 41-45%. Preston
dan Leng (2006) melaporkan semakin rendah fraksi NDF dan ADF maka kecernaan
pakan semakin tinggi. Anas (2010) melaporkan bahwa persentase kandungan ADF
dan NDF yang diberikan untuk ternak berkisar 25-45% untuk ADF dan NDF 30-60%
dari bahan kering hijauan.
Lignin adalah faktor paling kritis dalam menentukan kualitas pakan utamanya
hijauan, tetapi sering tidak ditentukan dengan jelas batasannya. Lignin adalah
senyawa polifenolik yang sama sekali tidak tercerna maupun terfermentasi. Lignin
berlaku seperti semen diantara lapisan dinding sel luar dan dalam. Semakin tua
tanaman, lignifikasi dinding akan semakin meningkat. Peningkatan lignifikasi
dinding sel menurunkan ketersediaan karbohidrat serat yang berhubungan dengan
fraksi dinding sel atau NDF. Efek ini dapat diukur secara langsung dengan prosedur
fermentabilitas NDF (Saun dan Heinrich 2008).
Pada tabel 6 dapat dilihat bahwa nilai NDF tidak berbeda nyata (P<0,05),
sedangkan hasil ADF menunjukan nilai yang berbeda nyata dari ketiga varietas
sorgum (P<0,05). Hasil dari varietas Pahat memiliki kandungan lignin lebih rendah
dibandingkan dengan varietas Samurai 1 dan Samurai 2. Kandungan lignin hijauan
57
bisa berkisar antara 2- 24% berat BK, namun akibat dari kandungan tersebut mampu
menurunkan kecernaan hijauan yang sangat tinggi (NRC 2007). Kecernaan potensial
NDF bisa menurun dari 90% menjadi 20% akibat peningkatan kandungan lignin pada
dinding sel dari 5 hingga15% (Schwartz et al., 1998).
Pembentukan dan akumulasi lignin biasanya terjadi pada fase pendewasaan
tanaman, seperti layaknya membangun dinding sel kedua, banyak terdapat selulosa,
pada jaringan batang dan daun dewasa (Carmi et al., 2006). Apabila membandingkan
pada jenis sweet sorghum dan fiber sorghum hanya terdapat sedikit perbedaan pada
karbohidrat non struktural (selulosa, hemiselulosa) dan komponen serat sorgum
manis (Amaducci et al., 2004). Dengan demikian faktor genetik lebih banyak
mempengaruhi kandungan lignin dan selulosa daripada faktor input agroteknik. Pada
dasarnya beberapa isi sel seperti karbohidrat terlarut, pati (dalam beberapa hijauan),
protein, asam organik, lipid, dan mineral- mineral terlarut tersebut dapat tercerna
secara utuh, sedangkan penyusun dinding sel (seperti selulosa, hemiselulosa dan
lignin) mempunyai kecernaan yang beragam tergantung pada konfigurasi polimerik,
tingkat kristalitas, dan tingkat lignifikasinya.
Lignin sendiri secara umum tidak tercerna pada kondisi anaerob dan hal
tersebut yang mempengaruhi kecernaan penyusun dinding sel yang berasosiasi
dengannya. Kecernaan selulosa dan hemiselulosa beragam ketika tidak berasosiasi
dengan lignin, dan tidak tercerna ketika terikat kuat dengan lignin (Jones dan
Theodorou 2000). Kandungan hemiselulosa sorgum berkisar antara 26-29% dan
58
cenderung menurun apabila mengalami penundaan pemanenan (Amaducci et al.
2000).
Kandungan serat kasar tanaman sorgum pada penelitian ini tergolong hijauan
dengan kandungan serat kasar yang rendah. Rendahnya kandungan serat kasar
tersebut salah satunya mengindikasikan bahwa umur pemanenan yang dilakukan telah
tepat. Carmi et al. (2006) mengemukakan bahwa pembentukan dan akumulasi lignin
biasanya terjadi pada fase pendewasaan tanaman, seperti layaknya membangun
dinding sel kedua, banyak terdapat selulosa, pada jaringan batang dan daun dewasa.
Tanaman sorgum yang memiliki kandungan lignin lebih rendah dan kandungan
karbohidrat non-struktural yang lebih tinggi dapat meningkatkan kecernaan selama
perombakan anaerob (Mahmood et al. 2013).
4.2. Kecernaan In Vitro
4.2.1. Nilai pH
Nilai pH disajikan pada gambar 11. Nilai pH tertinggi sebesar 7,14 dihasilkan
oleh rumput lapangan dan nilai pH terendah dihasilkan oleh SHF varietas Pahat yaitu
6,94 (P<0,05). Ketiga varietas sorgum menghasilkan nilai yang tidak berbeda nyata.
SHF Samurai 2 menghasilkan nilai pH tertinggi dibandingkan kedua varietas lain,
yaitu sebesar 7,03.
Kisaran pH normal untuk aktivitas mikroba cairan rumen, yaitu sebesar 5,5 -
7,5 (Imanda et al., 2016). Pada gambar 11 dapat dilihat bahwa hasil analisis ketiga
SHF masih berada pada kisaran pH normal. Menurut Preston (2006), peningkatan
konsumsi urea oleh mikroorganisme rumen akan meningkatkan pH rumen kerbau.
59
Hasil analisis menunjukkan nilai pH tidak berbeda nyata yang dikarenakan konsumsi
urea pada setiap perlakuan SHF sama sehingga dapat menyediakan sumber N yang
sama bagi mikroorganisme.
Gambar 11. Hasil analisis pH Sorghum Hydroponic Fodder (SHF) setelah
diinkubasi selama 48 jam. Keterangan: Angka-angka yang diikuti
huruf berbeda menunjukkan perbedaan nyata (P<0,05).
Nilai pH normal pada rumen akan mendukung interelasi optimal antara
protozoa, fungi dan bakteri khususnya bakteri selulolitik. Pertumbuhan bakteri
selulolitik akan meningkatkan kecernaan serat yang berpengaruh positif pada
konsumsi dan kecernaan pakan (Wahyono et al., 2014). Nilai pH yang tidak berbeda
nyata menunjukkan nilai pH hasil analisis tersebut stabil. PH yang stabil pada
penelitian ini menyebabkan produksi NH3 dan TVFA yang stabil meningkat dengan
meningkatnya nilai pH. Nilai pH yang lebih rendah akan berpengaruh terhadap
ekosistem mikroba terutama populasi bakteri selulolitik (Russel dan Wilson 1996).
Pertumbuhan bakteri selulolitik akan meningkatkan kecernaan serat yang
berpengaruh positif pada konsumsi dan kecernaan pakan (Wahyono et al., 2014).
60
Nilai pH yang stabil pada saat inkubasi ini dikarenakan pada penelitian ini
menggunakan larutan buffer pada pembuatan saliva buatan. Selaras dengan pendapat
Krause et al. (2003) menjelaskan bahwa pH pada rumen hewan hidup dipengaruhi
salah satunya oleh saliva sebagai buffer. Apabila pH tidak stabil akan menghambat
pertumbuhan bakteri selulolitik. Hal ini sejalan dengan penelitian Kumar et al. (2012)
yang melaporkan bahwa nilai pH yang tidak stabil akan menyebabkan terganggunya
aktivitas mikroba rumen kerbau yang menyebabkan menurunnya produk-produk
fermentasi seperti VFA, NH3 dan degradasi nutrien pakan.
4.2.2. Konsentrasi NH3
Gambar 12 menyajikan hasil konsentrasi NH3. Konsentrasi NH3 terendah
dihasilkan oleh rumput lapangan yaitu sebesar 5,54 mM. Hasil konsentrasi NH3 antar
perlakuan tidak berbeda nyata.
NH3 merupakan sumber nitrogen utama dan penting untuk sintesis protein
mikroba (Sakinah, 2005). Amonia dalam rumen merupakan perantara penting dalam
proses degradasi mikroba dan sintesis protein. Jika pakan kekurangan protein, atau
protein dalam pakan sulit didegradasi maka konsentrasi amonia dalam rumen akan
menurun sehingga menyebabkan menurunnya pertumbuhan organisme dalam rumen
dan lambatnya pemecahan karbohidrat (McDonald et al., 2002). Menurut Arora
(1989), produksi NH3 berasal dari protein yang didegradasi oleh enzim proteolitik.
Tingkat hidrolisis protein tergantung dari daya larutnya yang berkaitan dengan
kenaikan kadar NH3.
61
Pada gambar 12 dapat dilihat bahwa konsentrasi NH3 pada tiap perlakuan
tidak berbeda nyata dan pada perlakuan SHF Samurai 2 memiliki konsentrasi NH3
yang paling tinggi. Hal ini dapat disebabkan adanya peningkatan kadar protein pada
SHF Samurai 2 yang mudah didegradasi menjadi NH3. Pada penelitian ini
Konsentrasi NH3 terbesar terdapat pada SHF Samurai 2 sebesar 6,13±0,24 mM yang
berkolerasi dengan tingginya nilai pH pada SHF Samurai 2 sebesar 7,03±0,19
dibandingkan kedua SHF lainnya dan rumput lapangan. Hal ini sependapat dengan
Kumar et al., 2012 bahwa pH berpengaruh terhadap produksi NH3 karena aktivitas
mikroba rumen dipengaruhi oleh pH yang berpengaruh terhadap produk fermentasi
seperti VFA dan NH3.
Gambar 12. Hasil konsentrasi NH3 Sorghum Hydroponic Fodder (SHF) setelah
diinkubasi selama 48 jam. Keterangan: NH3: amonia; Angka-angka
yang tidak diikuti huruf menunjukkan tidak berbeda nyata.
Menurut Astuti et al. (1993), sumbangan NH3 pada ternak ruminansia sangat
penting mengingat bahwa prekusor protein mikroba adalah amonia dan senyawa
sumber karbon, makin tinggi kadar NH3 di rumen maka kemungkinan makin banyak
62
protein mikroba yang terbentuk sebagai sumber protein tubuh. Konsentrasi NH3 yang
diperoleh sudah cukup menyediakan amonia untuk pembentukan protein mikroba.
Selaras dengan pernyataan Sutardi (1980) menyatakan konsentrasi amonia optimum
untuk pembentukan protein mikroba sebesar 5-17,65 mM pada 3-4 jam setelah
pemberian pakan.
4.2.3. Produksi Total Volatile Fatty Acid (TVFA)
Hasil produksi Total volatile fatty acid (TVFA) disajikan pada gambar 13.
Varietas sorgum Samurai 2 menunjukkan nilai tertinggi yaitu sebesar 105,62 mM.
Rumput lapangan memiliki nilai terendah yaitu 75,3 mM dan berbeda nyata dari
ketiga varietas lain (P<0,05). Varietas sorgum Pahat dan Samurai 1 tidak berbeda
nyata dengan nilai masing-masing 88,2 mM dan 80,19 mM.
Gambar 13. Hasil Produksi TVFA Total Sorghum Hydroponic Fodder (SHF) setelah
diinkubasi selama 48 jam. Keterangan: TVFA: total volatile fatty acid;
Angka-angka yang diikuti huruf berbeda menunjukkan perbedaan nyata
(P<0,005)
Pada gambar diatas menunjukkan konsentrasi TVFA pada masing-masing
perlakuan berbeda sangat nyata (P<0,01). Konsentrasi TVFA yang paling tinggi pada
perlakuan SHF Samurai 2. Hal ini dapat disebabkan adanya peningkatan jumlah
63
bakteri selulolitik pada SHF Samurai 2 yang memecah serat kasar menjadi TVFA dan
selain itu adanya urea sebagai sumber nitrogen non protein dapat dimanfaatkan
mikroba rumen untuk fermentasi (Silalahi, 2003). Menurut Hungate (1966), TVFA
merupakan produk akhir fermentasi karbohidrat dan merupakan sumber energi utama
ruminansia asal rumen. Peningkatan jumlah VFA menunjukkan mudah atau tidaknya
pakan tersebut didegradasi oleh mikroba rumen. Produksi VFA di dalam cairan
rumen dapat digunakan sebagai tolak ukur fermentabilitas pakan (Hartati, 1998).
TVFA memiliki kolerasi positif dengan serat kasar yaitu NDF dan ADF.
Menurut McDonald et al., 2002 didalam serat NDF dan ADF terdapat selulosa dan
hemiselulosa yang akan diubah oleh bakteri selulotik menjadi asam-asam lemak
terbang berupa asetat, propionat, butirat dan gas CH4 serta CO2. Sehingga semakin
tinggi nilai serat NDF dan ADF maka akan semakin banyak TVFA yang dihasilkan.
Hal ini sesuai dengan hasil penelitian yang dilakukan pada SHF Samurai 2 memiliki
kandungan serat ADF yang paling tinggi dibandingkan kedua SHF lainnya yaitu
sebesar 31,83% dan pada SHF Samurai 2 juga memiliki nilai TFVA yang paling
tinggi yaitu 105,62 mM.
Produksi TVFA berkisar antara 80 - 160 mM untuk pertumbuhan optimal
mikroba (Sutardi, 1980) dan besarnya dipengaruhi oleh jenis pakan yang diberikan.
Hasil konsentrasi TVFA yang diperoleh berkisar 75 - 105 mM. Pada hasil TVFA
Rumput Lapangan berada di bawah kisaran optimal untuk pertumbuhan mikroba.
Menurut Rafis (2006) pengukuran konsentrasi VFA yang dilakukan pada waktu
inkubasi 48 jam dimana sebagian VFA yang ada telah disintesis menjadi kerangka
64
karbon untuk protein mikroba sehingga konsentrasi VFA berkurang. Hal ini sesuai
dengan pernyataan Arora (1989) bahwa asam-asam amino tertentu disintesa kembali
melalui interaksi radikal amonia dengan asam lemak terbang berantai cabang sebagai
sumber rantai karbon.
Menurut Ulya (2007), semakin lama waktu inkubasi akan terjadi penurunan
populasi bakteri amilolitik akibat fase pertumbuhan bakteri yang lebih cepat dan
adanya persaingan dengan protozoa dalam mencerna pati. Penurunan populasi bakteri
amilolitik ini juga dapat mempengaruhi produksi VFA yang dihasilkan pada waktu
inkubasi 48 jam. Namun, dari ketiga varietas SHF yaitu Pahat, Samurai 1 dan
Samurai 2 memiliki kadar TVFA yang baik untuk pertumbuhan optimum mikroba
rumen.
4.2.4. Kercernaan BO (KcBO)
Gambar 14 menyajikan data hasil KcBO. Rumput lapangan menghasilkan
KcBO terkecil dibandingkan ketiga varietas sorgum yaitu 53,61% (P<0,05). Sorgum
varietas Pahat menghasilkan KcBO tertinggi yaitu 65,96%. Dari ketiga varietas
sorgum, menghasilkan KcBO yang tidak berbeda nyata.
Ketiga perlakuan tidak berpengaruh nyata terhadap KcBO dapat dilihat pada
gambar 14. KcBO merupakan faktor penting yang dapat menentukan nilai kualitas
pakan (Sutardi,1977). Sneath et al., 2003 melaporkan bahwa kecernaan hijauan
menurun dengan meningkatnya kandungan serat. Pernyataan ini sesuai dengan hasil
penelitian yang didapat bahwa nilai KcBO menunjukkan hubungan positif dengan
nilai serat kasar terutama fraksi ADF. Dimana nilai KcBO SHF Pahat lebih besar
65
dibandingkan dengan kedua varietas SHF lainnya yaitu sebesar 65,96±5,42% dan
nilai ADF SHF Pahat lebih kecil dibandikan dengan SHF Samurai 1 dan SHF
Samurai 2 yaitu sebesar 20,90%. Hubungan positif juga terlihat antara nilai KcBO
dan nilai PK, dimana nilai KcBO SHF Pahat lebih besar dibandingkan dengan kedua
varietas SHF lainnya, sehingga nilai PK SHF Pahat lebih rendah dari kedua varietas
SHF lainnya yaitu sebesar 16,33%.
Gambar 14. Hasil Kecernaan BO Sorghum Hydroponic Fodder (SHF) setelah
inkubasi selama 48 jam. Keterangan: BO: Bahan Organik; angka-
angka yang diikuti huruf berbeda menunjukkan perbedaan nyata
(P<0,05).
Suardin et al., 2014 berpendapat bahwa kecernaan bahan organik dalam
saluran pencernaan ternak meliputi kecernaan zat-zat makanan berupa komponen
bahan organik seperti karbohidrat, protein, lemak dan vitamin. Bahan-bahan organik
yang terdapat dalam pakan tersedia dalam bentuk tidak larut, oleh karena itu
diperlukan adanya proses pemecahan zat-zat tersebut menjadi zat-zat yang mudah
larut sehingga lebih mudah terdegradasi. Fraksi karbohidrat non serat yang tinggi
66
menyebabkan tingginya tingkat KcBO, karena proses degradasi akan lebih mudah
terjadi apabila karbohidrat sudah dalam bentuk yang sederhana
Hasil analisis in vitro menunjukkan bahwa KcBO sama seperti KcBK yaitu
lebih dari 60%. Menurut Fabio et al. (2007) bahwa nilai kecernaan bahan organik
yang tinggi dipengaruhi oleh kandungan serat dari bahan pakan dan aktivitas bakteri
selulolitik akibat perubahan pH. Tingginya KcBO yang dihasilkan oleh SHF
berdasarkan hasil analisis menunjukan bahwa kecernaan lemak, karbohidrat dan
protein yang terkandung dalam SHF juga tinggi. Hal ini sesuai dengan pernyataan
Elita (2006) bahwa KcBO menunjukkan jumlah nutrien seperti lemak, karbohidrat
dan protein yang dapat dicerna oleh ternak.
4.2.5. Kecernaan BK (KcBK)
Kecernaan bahan kering (KcBK) disajikan pada gambar 15. Sorgum varietas
Pahat menghasilkan kecernaan BK yang paling tinggi yaitu 65,21%. Nilai kecernaan
terendah dari ketiga varietas yaitu pada varietas sorgum Samurai 2 sebesar 60,87%.
Sorgum varietas Samurai 1 memiliki nilai KcBK yang lebih tinggi dibanding dengan
rumput lapangan yaitu 62,94% dan 49,55% (P<0,05).
Gambar 15 menunjukkan bahwa KcBK pada tiap perlakuan tidak berpengaruh
nyata. KcBK terbesar terdapat pada SHF Pahat sebesar 65,21±5,32 dibanding dengan
kedua SHF lainnya yaitu SHF Samurai 1 dan SHF Samurai 2. Menurut Suryahadi et
al., 1993 degradasi bahan kering dan degradasi bahan organik menggambarkan nilai
efisiensi kandungan zat makanan dalam ransum untuk dapat dimanfaatkan oleh
67
mikroba rumen. Besar nilai degradasi bahan kering maupun bahan organik
berkorelasi positif dengan kecernaan ransum dalam tubuh ternak.
Gambar 15. Hasil KcBK Sorghum Hydroponic Fodder (SHF) setelah diinkubasi
selama 48 jam. Keterangan: KcBK: Kecernaan Bahan Kering; angka-
angka yang diikuti huruf berbeda menunjukkan perbedaan nyata
(P<0,05)
Sugoro et al., 2014 menyatakan bahwa adanya korelasi antara %KcBK
dengan konsentrasi TVFA. Semakin tinggi konsentrasi TVFA, maka semakin tinggi
pula %KcBK. TVFA dihasilkan dari fermentasi karbohidrat yang menunjukkan
degradasi pakan. Selain dari konsentrasi TVFA, hasil %KcBK juga diperkuat dengan
hasil konsentrasi NH3 yang rendah. Hasil konsentrasi ammonia yang rendah terjadi
karena ammonia yang dihasilkan dari degradasi protein, dimanfaatkan sebagai
sumber nitrogen bagi mikroba. Namun pada penelitian ini hasil KcBK yang diperoleh
tidak menunjukkan hubungan positif dengan VFA dan konsentrasi NH3, dimana nilai
KcBK tertinggi terdapat pada SHF Pahat sebesar 65,21±5,32 dan konsentrasi VFA
tertinggi terdapat pada SHF Samurai 2 sebesar 105,62±21,7 dan nilai NH3 terendah
terdapat pada SHF Samurai 1 sebesar 5,54±0,66. KcBK berkolerasi juga dengan
KcBO, dimana semakin tinggi KcBK maka KcBO juga semakin meningkat. Hal ini
68
sesuai dengan hasil penelitian bahwa KcBK dan KcBO pada SHF Pahat memiliki
nilai yang paling besar.
Hasil analisis in vitro menunjukkan bahwa KcBK dari SHF memiliki
kecernaan lebih dari 60 % pada semua varietas. Tingginya angka KcBK pada SHF
menunjukkan bahwa SHF memiliki nutrisi yang tinggi dan dapat dimanfaatkan untuk
pertumbuhan ternak. Nilai KcBO SHF yang lebih tinggi dari rumput lapangan
menunjukkan kecernaan yang tinggi dengan besarnya sumbangan nutrien dari pakan
tertentu pada ternak, sedangkan pakan dengan kecernaan yang rendah menunjukkan
bahwa pakan tersebut kurang mampu menyuplai nutrient untuk hidup pokok dan
tujuan produksi ternak (Yusmadi, 2008).
69
BAB V
SIMPULAN DAN SARAN
5.1. Simpulan
1. Kandungan nutrisi SHF tertinggi dihasikan oleh SHF Samurai 1. Dimana pada
SHF Samurai 1 memiliki nilai kandungan Protein Kasar (PK) tertinggi dan Ekstrak
Eter (EE) tertinggi dengan masing-masing nilai 19,80% dan 10,97%. SHF
memiliki kandungan nutrisi yang tinggi terutama pada SHF Samurai 1.
2. Kecernaan in vitro terbaik terdapat pada SHF Pahat dimana memiliki nilai KcBK
dan KcBO tertinggi yaitu sebesar 65,21% dan 65,96%. Produk fermentasi rumen
yang menghasilkan nilai pH, NH3 dan Total Volatile Fatty Acid (TVFA) tertinggi
dihasilkan oleh SHF Samurai 2 dengan masing-masing nilai 7,03, 6,13mM dan
105,62 mM. Kecernaan in vitro pada SHF lebih tinggi dibandingkan dengan
rumput lapangan.
5.2 Saran
1. Perlu dilakukan penelitian tingkat kecernaan pada Sorghum Hydroponic Fodder
(SHF) secara in vivo.
2. SHF perlu diteliti sebagai pakan fungsional karena memiliki kandungan nutrisi
yang tinggi.
70
DAFTAR PUSTAKA
ACIAR. 2008. Improving smallholder crop-livestock systems in eastern Indonesia.
Project FinalReport. Published ACIAR Project No . AS2/2004/005.
Agustina. 2004. Dasar Nutrisi Tanaman. Rineka Cipta. Jakarta.
Amaducci S, Amaducci MT, Benati R, Venturi G. 2000. Crop yield and quality
parameters of four annual fibre crops (hemp, kenaf, maize and sorghum) in
the north of italy. Industrial Crops and Products (11) 179–186.
Amaducci S, Monti A, Venturi G. 2004. Non-structural carbohydrates and fibre
components in sweet and fibre sorghum as affected by low and normal input
techniques. Industrial Crops and Products (20) 111–118.
Anas, S., Andy. 2010. Kandungan NDF dan ADF Silase Campuran Jerami Jagung
(Zea mays) dengan Beberapa Level Daun Gamal (Grilicidia maculata). Sistem
Agrisistem. 6(2): 77-81.
Anusavice, K. J. 2004. Buku Ajar Ilmu Bahan Kedokteran Gigi. Budiman JA,
Purwoko S, penerjemah. Jakarta (ID): Penerbit EGC. Terjemahan dari: Phillips'
Science of dental materialsh. Ed ke-10.
AOAC. 2005. Official Method of Analysis. Association of Official Analytical
Chemists. Maryland.
Arora, S. P. 1995. Pencernaan Mikroba pada Hewan Ruminansia. Penerjemah: R.
Muwarni. Gajah Mada University Press, Yogyakarta.
Astuti, D. A., B. Sastradipradja, Kiranadi, E. Budiarti. 1993. Pengaruh Perlakuan
Jerami Jagung dengan Asam Asetat Terhadap Metabolisme in vitro dan in
vivo pada Kambing Laktasi. Laporan Penelitian. Fakultas Kedokteran Hewan.
Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Blakely, J., Bade, D. H. 1998. Ilmu Peternakan. Edisi ke empat.Gajah Mada
University Press.
[BSN] Badan Standarisasi Nasional. 1992. Cara Uji Makanan dan Minuman. SNI 01-
2891-1992. Jakarta: Badan Standarisasi Nasional.
Cader, B. 2002. Simple Shed Company. Queensland (AUS). Scholarship Report. p9.
Carmi, A., Aharoni, Y., Edelstein, M., Umiel, N., Hagiladi, A., Yosef, E., Nikbachat,
M., Zenou, A., Miron, J. 2006. Effects of irrigation and plant density on yield,
71
composition and in vitro digestibility of a new forage sorghum variety, tal, at
two maturity stages. Anim. Feed Sci. Technol. (131) 121–133.
Cordava, H. 2001. Quality Protein Maize: Improved nutrition and livelihoods for the
poor. Maize Research Highlights. 27-31
Direktorat Budidaya Ternak Ruminansia. 2009. Pedoman Optimalisasi Penggunaan
Bahan Pakan Lokal. Direktorat Jenderal Peternakan. Departemen Pertanian.
Direktorat Jenderal Perkebunan. 1996. Sorgum manis komoditi harapan di propinsi
kawasantimur Indonesia. Risalah Simposium Prospek Tanaman Sorgum untuk
Pengembangan Agroindustri, 17-18 Januari 1996. Edisi Khusus Balai
Penelitian Tanaman Kacang-kacangan dan Umbi-umbian No.4-1996: 612.
Direktorat Jenderal Tanaman Pangan. 2012. Kebijakan direktorat jenderal tanaman
pangan dalam pengembangan komoditas serealia untuk mendukung pertanian
bioindustri. Seminar Nasional Serealia, Maros Sulawesi Selatan.
Direktorat Serealia. 2013. Kebijakan direktorat jenderal tanaman pangan dalam
pengembangan komoditas serealia untuk mendukung pertanian bioindustri.
Seminar Nasional Serealia, Maros Sulawesi Selatan.
Djazuli. 1986. Pemberian Mulsa, Pospat dan Kapur pada Ubi Jalar. Bogor (ID):
Balai Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Pusat Perpustakaan Pertanian
dan Biologi.
Doring, T., Heimbach, U., Thieme, T., Finckch, M., Saucke, H. 2006. Aspect of straw
mulching in organic potatoes-I, effects on microclimate, Phytophtora infestans,
dan Rhizoctonia solani.Nachrichtenbl. Deut. J flanzenschutzd. 58(3):73-78
Durrett, T. P., Benning, C., Ohlrogge, J. 2008. Plant Triacylglycerols as Feedstocks
for The Production of Biofuels. Plant J. (54): 593–607.
Elita, R., Widjaya. 2006. Analisis Penggunaan Sumber Energi Biomassa di Bidang
Pertanian [Laporan Akhir]. Tangerang (ID): Balai Besar Pengembangan
Mekanisasi Pertanian, Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian.
Fengel, D., dan Wegener, G. 1995. Kayu : Kimia, Ultrastruktur, Reaksi-reaksi.
Diterjemahkan oleh Hardjono Sastrohamidjoyo. Cetakan I, Gajah Mada
University Press, Yogyakarta. 124-154.
Fariani, A. 2008. Pengembangan Ternak Ruminansia Berdasarkan Ketersediaan
Lahan dan Tenaga Kerja di Kabupaten Musi Rawas, Sumatera Selatan. Jurnal
72
Freer, M., and Dove, H. 2002. Sheep Nutrition. CABI and CSIRO Publishing,
Canberra.
Gardner, F. P., R. B. Pearce, dan R. L. Mitchell. 2008. Fisiologi Tanaman Budidaya.
Terjemahan. UI Press. Jakarta.
Hakim, R. S. 2002. Evaluasi in vitro respons mikroba rumen ternak ruminansia
terhadap penambahan DABA (2,4 – diaminobutyric acid) dan lamtoro merah
(Acacia villosa) dalam ransum. Skripsi. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian
Bogor, Bogor.
Harian Medan Bisnis, 2012. Hidroponik Dengan Sistem Pertanian ramah
Lingkungan.
Hartadi, H., Reksohadiprojo, S., Tillman, A. D. 1997. Tabel – tabel dari Komposisi
Bahan Makanan Ternak untuk Indonesia. Gadjah Mada University Press,
Jogjakarta.
Hartati, E. 1998. Suplementasi minyak lemuru dan seng ke dalam ransum yang
mengandung silase pod kakao dan urea untuk memacu pertumbuhan sapi
Holstein jantan. Disertasi. Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor,
Bogor.
Havlin, J. L., Beaton, J. D., Tisdale, S. L., Nelson, W. L. 2005. Soil Fertility and
Fertilizers: An Introduction to Nutrient Management. 7th Ed. New Jersey (US):
Pearson Prentice Hall.
Hermawan, D. E. 2001. Peningkatan fermentabilitas daun akasia (Acacia villosa dan
Acacia angustissima) dengan penambahan polyetihylen glycol (PEG).Skripsi.
Fakultas Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Hermayanti, Yeni, Eli Gusti. 2006. Modul Analisa Proksimat. Padang: SMAK 3
Padang.
Hungate, R. E. 1966. The Ruminant and Its Microbes. Academic Press, New York.
Imanda, S., Effendi, Y., Sihono, Sugoro, I. 2016. Evaluasi In Vitro Silase Sinambung
Sorgum Varietas Samurai 2 yang Mengandung Probiotic BIOS K2 dalam
Cairan Rumen Kerbau. Jurnal Ilmiah Aplikasi Isotop dan Radiasi. 12(1): 1-
12.
Johnson, L. M., Horrison, J. H., Davidson, D., Mahanna, W. C., Shinners, K. 2003.
Corn silage management: effect of hybrid, maturity, inoculation and
mechanical processing on fermentation characteristics. J. Dairy Sci. (86) :287-
308.
73
Jones, D. I. H., Theodorou, M. K. 2000. Forage Evaluation in Ruminant Nutrition.
Givens DI, Owen E, Axford RFE, Omed HM, editor. Oxon (UK): CABI
Publishing.
Kamal, M. 1998. Nutrisi Ternak I. Rangkuman. Lab. Makanan Ternak, Jurusan
Nutrisi dan Makanan Ternak, Fakultas Peternakan, UGM. Yogyakarta.
Kosakoy, S., E. Henny, dan Sutardi, T. 1978. Laju degradasi benang kapas dalam
cairan rumen kerbau dan sapi. Bull. I. M. T. (3) : 202.
Koten, B. B., Ngadiyono, N., Soestrisno, R. D., Suwignyo, B. 2012. Produksi
Tanaman Sorgum (Sorghum Bicolor (L.) Moench) Varietas Lokal Rote Sebagai
Hijauan Pakan Ruminansia pada Umur Panen dan Dosis Pupuk Urea yang
Berbeda. Buletin Peternakan, Vol. 36(3): 150-155.
Krause, K. M., Combs, D. K. 2003. Effects of Forage Particle Size, Forage Source,
and Grain Fermentability on Performance and Ruminal pH in Midlactation
Cows. J Dairy Sci. (86): 1382–1397.
Krishnamoorthy, U. 2001. RCA Training Workshop on In Vitro Techniques for Feed
Evaluation. April 23-27th. The International Atomic Energy Agency. Jakarta
(ID): 17.
Krismawati, A. 2012. Teknologi Hidroponik Dalam Pemanfaatan Lahan
Pekarangan. BPTP: Malang.
Kusumo, S. P. 1994. Ilmu Gizi Komparatif. BPFE.Yogyakarta.
Kumar, M. K., Kalyani, P., Mahendar, M., Lakshmi, D. N. 2012. Effect of Palm Press
Fibre and Sheanut Cake Based Complete Diet on Rumen Fermentation Pattern
in Graded Murrah Buffalo Calves. Int J Sci Res Pub. 2(9): 1-6.
Lakitan, B. 2010. Dasar Dasar Fisiologi Tumbuhan. Rajawali Pers. Jakarta.
Lehninger, A. L. 1982. Dasar-dasar Biokimia. Penerjemah : M. Thenawidjaja.
Erlangga, Jakarta.
Lingga, P. 2000. Hidroponik Bercocok Tanam Tanpa Tanah. Penebar Swadaya.
Jakarta.
Lingga, P. dan Marsono. 2008. Petunjuk Penggunaan Pupuk. Penebar Swadaya.
Jakarta.
74
Lopez, S. 2005. In vitro and In situ techniques for estimating digestibility. Dalam J.
Dijkstra, J. M. Forbes, and J. France (Eds). Quantitative Aspect for Ruminant
Digestion and Metabolism. 2nd Edition. ISBN 0-85199-8143. CABI Publishing,
London.
Lynd, L. R., P. J. Weimer, W. H., van, Zyl, W. H., I. S., Pretorius. 2002. Microbial
Cellulose Utilization: Fundamentals and Biotechnology. Microbiol. Mol. Biol.
Rev. 66(3):506-577.
Mahmood, A., Ullah, H., Ijaz, M., Javaid, M. M., Shahzad, A. N., Honermeier, B.
2013. Evaluation of sorghum hybrids for biomass and biogas production.
Australian Journal of Crop Sci. 7(10):1456-1462.
McDonald, P. R., A. Edwards, J. F. D., Greenhalg., C. A. Morgan. 2002. Animal
Nutrition 6th Edition. Longman Scientific and Technical Co. Published in The
United States with John Willey and Sons Inc, New York.
Miller, F. R., Stroup, J. A. 2003. Brown midrib forage sorghum, sudangrass, and
corn: What is the potential?. 33rd California Alfalfa dan Forage Symposium
1719 December 2003.
Murtidjo. 1987. Pedoman Beternak Ayam Broiler. Yogyakarta: Kanisius.
Naik, P. K., Swain, B. K., Singh, N. P. 2015. Production and Utilization of
Hydroponic Fodder. Indian J. Anim. Nutr. 32(1):1-9.
Nikolau, B. J., Ohlrogge, J. B., Wurtele, E. S. 2003. Plant Biotin-containing
Carboxylases. Arch. Biochem. Biophys. (414): 211–222.
[NRC] National Research Council. 2007. Nutrient Requirement of Small Ruminant.
Washington DC (US). The National Academic Press.
Nugroho, H., D. 2015. Pemanfaatan bioslurry pada maize hydroponic foddersebagai
suplemen silase jagung (in vivo) di Kpsbu Lembang Jawa Barat . [Tesis].
Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Nutrient Requirements of Dairy Cattle: Seventh Revised Edition. 2001. Washington,
D.C: The National Academies Press. h. 288.
Odenyo, A. A., P. O. Osuji., Negassa. 1999. Microbial evaluation of fodder tree
leaves as ruminant feed. J. Anim. Sci. 12 (5) : 708-714.
OISAT. 2011. Sorghum. PAN Germany Pestizid Aktions-Netzwekk e.V. PAN
Germany.
75
Pandutama, M. H., A. Mudjiharyati, Suyono., Wustamidin. 2003. Dasar-Dasar Ilmu
Tanah. Jurusan Tanah Fakultas Pertanian Universitas Jember.
Pangestu, E., Achmadi, J., Wahyono, F., Nuswantara, L. K. 2009. Karakteristik Daya
Ikat Serat Dari Beberapa Bahan Pakan Hasil Samping Agroindustri Terhadap
Kalsium. Pemberdayaan Peternakan Berbasis Sumber Daya Lokal untuk
Ketahanan Pangan Nasional Berkelanjutan. Seminar Nasional Kebangkitan
Peternakan – Semarang, 20 Mei 2009.
Pradhan, K. 1994. Rumen ecosystem in relation to cattle and buffalo nutrition. In:
Wanapat, M. and K. Somniart (Editor). Proc.First Asian Buffalo Association
Congress.
Praptiwi, I., I. 2011. Fermentabilitas In Vitro dan Produksi Biomassa Mikroba
Ransum Komplit yang Mengandung Jerami Sorgum, Konsentrat dengan
Penambahan Suplemen Pakan. J. Agricola. 1(2): 149-152.
Preptiwi, I. I., Ako, A., Hasan, Syamsuddin. 2010. Analisis Limbah Beberapa
Varietas Tanaman Sorgum (Sorghum Bicolor (L.) Moench) Sebagai Sumber
Pakan Untuk Ternak Ruminansia.
Preston, T. R., R. A., Leng. 1987. Matching Ruminant Production System with
Available Resources in Tropic. Penambul Books, Armidale.
Preston, R. L. 2006. Feed Composition Tables.
http://beefmag.com/mag/beef_feed_composition. diakses 24 April 2017.
Prihmantoro, H., Indriani, Y. H. 2001. Hidroponik Sayuran Semusim untuk Bisnis
dan Hobi. Penebar Swadaya.Jakarta.
Purwantari, T. 2008. Fermentabilitas in vitro dan produksi biomassa mikroba ransum
komplit yang mengandung jerami sorgum, konsentrat dengan penambahan
suplemen pakan. [Skripsi]. Bogor: Fakultas Peternakan, Institut Pertanian
Bogor.
Rafis, H. N. 2006. Pengaruh Pemberian Urea Molasses Multinutrient Block (UMMB)
Atau Suplemen Pakan Multinutrien (SPM) Dalam Ransum Terhadap Produksi
Susu Sapi Perah Laktasi. Skripsi. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian
Bogor. Bogor.
Rismunandar. 1989. Sorghum Tanaman Serba Guna. Sinar Baru, Bandung.
Ruangprim, T., C. Chantalakhana, P. Skunmun, P. Prucsasri., M. Wanapat. 2007.
Rumen microbes and ecology of male dairy, beef cattle and buffalo. Kasetsart
University, Nakhon Pathom.
76
Russel, J. B., Wilson, D. B. 1996. Why are Ruminal Celulolytic Bacteria Unable to Digest
Cellulose at Low pH.J Dairy Sci. (79): 1503-1509.
Sakinah, D. 2005. Kajian suplementasi probiotik bermineral terhadap produksi VFA,
NH3, dan kecernaan zat makanan pada domba. Skripsi. Fakultas Peternakan.
Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Salisbury, F. B., C. W. Ross. 1995. Fisiologi Tumbuhan – Jilid 3. Terjemahan.
Penerbit ITB. Bandung.
Santosa, U. 1995. Tata Laksana Pemeliharaan Ternak Sapi. Penebar Swadaya.
Jakarta.
Santosa, U. 2006. Manajemen Usaha Ternak Potong. Penebar Swadaya. Jakarta.
Saun, R. J. V., Heinrich, A. J. 2008. Trouble Shooting silage problem. Proceedings
of the Mid-Atlantic Conference Pensylvania.
Schwartz, C. C., Renecker, L. A. 1998. Ecology and Management of the North
American Moose. Franzman AW, Schwartz CC, editor. Washington DC (US).
Smithsonian Institution Press.
Sihono, Human, S., Indriatama, W. M., Puspitasari, W., Parno, Carkum. 2013.Galur
Mutan Sorgum PATIR-1 Berdaya Hasil Biji, Biomasa danGula Batang Tinggi
serta Galur PATIR-4 Hasil Biji Tinggi KualitasBaik. Perbaikan Proposal
Pelepasan Varietas. Pusat Aplikasi Isotopdan Radiasi. Jakarta (ID): BATAN.
Silalahi, R. E. 2003. Uji fermentabilitas dan kecernaan in vitro suplemen Zn
anorganik dan Zn organik dalam ransum ruminansia. Skripsi. Fakultas
Peternakan. Institut Pertanian Bogor, Bogor.
Silungwe, D. 2011. Evaluation of forage yield and quality of sorghum, sudangrass
and pearl millet cultivars in manawatu. [tesis]. Palmerston North (NZ):
Massey University.
Sirappa, M. P. 2003. Prospek pengembangan sorgum di Indonesia sebagai komuditas
alternatif untuk pangan, pakan, dan Industri.
Siregar, S. B. 1993. Ransum Ternak Ruminansia. Penebar Swadaya. Jakarta.
Soebarinoto., Hermanto. 1996. Potensi jerami sorgum sebagai pakan ternak
ruminansia. Risalah Simposium Prospek Tanaman Sorgum untuk
Pengembangan Agroindustri, 1718 Januari 1995. Edisi Khusus Balai Penelitian
Tanaman Kacang-kacangan dan Umbi-umbian No. 4-1996: 217-221.
77
Soeranto, H., Carkum, dan Sihono. 2002. Perbaikan varietas tanaman gandum
melalui pemuliaan mutasi. Prosiding Pertemuan Koordinasi Penelitian dan
Pengembangan.
Soeranto. 2007. Pemuliaan tanaman sorgum di PATIR-BATAN. 29 Ferbuari 2017.
http://www. google.com-www.batan.go.id.
Somantri, I. H., Hasanah, M., Adisoemarto, S. 2007. Mengenal plasma nutfah biogen.
Balai Besar Penelitian dan Pengembangan Bioteknologi dan Sumberdaya
Genetik Pertanian. Badan Penelitian dan Pengembangan Pertanian. Departemen
Pertanian.
Srivasta, L. M. 2001. Plant Growth and Development: Hormones and Environment.
California (US): Academic Press.
Sudarmodjo. 2008. Hidroponik. Parung Farm. Bogor (ID). Tidak dipublikasikan.
Suhardiyanto, H. 2009. Teknologi Rumah Tanaman untuk lklim Tropika Basah:
Pemodelan dan Pengendalian Lingkungan. Bogor (ID): IPB Pr.
Suparjo. 2008. Degradasi komponen lignoselulosa oleh kapang pelapuk putih.
Suparjo. 2010. Analisis Bahan Secara Kimiawi Analisis Proksimat dan Analisis
Serat. Laboratorium Makanan Ternak Fakultas Peternakan Universitas Jambi.
Sutardi, T. 1979. Ketahanan protein bahan makanan terhadap degradasi oleh mikroba
rumen dan manfaatnya bagi peningkatan produktivitas Ternak.Proceeding
seminar dan penunjang peternakan. Lembaga Penelitian Peternakan, Bogor.
Sutardi, T. 1980. Landasan Ilmu Nutrisi I. Fakultas Peternakan. Institut Pertanian
Bogor, Bogor.
Sutardi, T. 1981. Sapi Perah dan Pemberian Makanannya, Departemen Ilmu
Makanan Ternak Fakultas Peternakan IPB, Bogor.
Sutardi, T. 2006. Landasan Ilmu Nutrisi Jilid 1. Departemen Ilmu Makanan Ternak.
Fakultas Peternakan IPB, Bogor.
Sutiyoso Y. 2004. Hidroponik ala Yos. Jakarta (ID): Penebar Swadaya.
Taherzadeh, M. J. 1999. Ethanol from Lignocellulose: Physiological Effects of
Inhibitors and Fermentation Strategies. [Thesis]. Göteborg: Department of
Chemical Reaction Engineering, Chalmers University Of Technology.
78
Tabrany, H. 2004. Pengaruh Proses Pelayuan Terhadap Keempukan Daging.
Tillman, A. D., H. Hartadi., S. Reksohadiprodjo., S. Prawirokusumo., S.
Lebdosoekojo. 1991. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Cet. 5. Gadjah Mada
University Press, Yogyakarta.
Tillman, A. D., Hartadi, H., Reksohadiprodjo, S., Prawiro KS., Lebdosoekoekojo, S.
1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Gadjah Mada University Press,
Yogyakarta.
Ulya, A. 2007. Kajian in vitro mikroba rumen berbagai ternak ruminansia dalam
proses fermentasi bungkil biji jarak pagar (Jatropha curcas L.). Skripsi.
Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor, Bogor
Van Soest, P. J. 1994. Nutrition Ecology of the Ruminant.2nd Edition. Comstock
Publishing Associates, A Division of Cornell University Press, Ithaca and
London.
Wahyono, D. E., Hardiyanto, R. 2004. Pemanfaatan Sumber Daya Pakan Lokal untuk
Pengembangan Usaha Sapi Potong. Lokakarya Nasional Sapi Potong.
Wahyono, T. 2015. Evaluasi fermentabilitas ransum kerbau yang mengandung
sorgum dengan pendekatan in sacco, in vitro dan rusitec. [Tesis]. Program
Pasca Sarjana. Institut Pertanian Bogor. Bogor.
Wahyono, T., Astuti D. A., Wiryawan, K. G., Sugoro, I. 2014. Pengujian Ransum
Kerbau Berbahan Baku Sorgum Sebagai Sumber Serat Secara In Vitro dan In
Sacco. Jurnal Ilmiah Aplikasi Isotop dan Radiasi. 10(2): 113-126.
Yoku, O., D. Soetrisno, R. Utomo., S. A. Siradz. 2007. Pengaruh perlakuan jarak
tanam dan pemupukan NPK terhadap produksi rumput sudan (Sorghum
sudanense). Jurnal Agritek (15): 81-87.
Yusmadi. 2008. Kajian mutu dan palatabilitas silase dan hay ransum komplit berbasis
sampah organik primer pada kambing PE [tesis]. Bogor (ID): Institut
Pertanian Bogor.
Zakariah, M. A., 2012.Fermentasi Asam Laktat Pada Silase. Fakultas Peternakan.
Universits Gajah Mada. Yogyakarta.
79
LAMPIRAN
Lampiran 1. Hasil Kandungan Nutrisi
Perlakuan Parameter Pengamatan
%BK %Air %Abu %BO %PK %EE %NDF %ADF
SHF Pahat
94,81 5,19 5,33 94,67 15,88 9,94 53,04 22,01
93,53 6,47 5,01 94,99 16,06 10,84 54,44 21,34
95,38 4,62 5,12 94,88 16,00 6,48 54,68 23,00
92,70 7,30 4,54 95,46 18,81 6,54 51,72 18,39
91,84 8,16 4,50 95,50 14,94 8,42 52,84 19,79
Rerata 93,64 6,35 4,90 95,10 16,30 8,09 53,34 20,90
SHF
Samurai 1
92,18 7,82 4,65 95,34 18,94 10,86 53,57 24,51
93,05 6,95 5,27 94,72 19,94 10,17 55,65 24,15
94,31 5,69 4,27 95,72 19,44 11,87 48,56 27,50
93,52 6,48 5,11 94,88 19,94 11,49 56,61 30,61
93,87 6,13 4,06 95,93 20,75 10,46 46,92 24,02
Rerata 93,38 6,61 4,67 95,32 19,80 11,10 52,26 26,16
SHF
Samurai 2
91,50 8,50 5,47 94,52 16,44 6,58 45,76 29,49
91,96 8,04 6,66 93,33 18,00 6,19 49,60 35,59
90,10 9,90 6,58 93,41 19,00 8,75 48,63 29,93
91,44 8,56 6,08 93,91 17,06 7,39 56,16 31,35
92,69 7,31 6,26 93,73 18,62 7,39 57,26 32,81
Rerata 91,53 8,46 6,21 95,78 17,82 7,26 51,48 31,83
80
Contoh perhitungan Bahan Kering (BK)
% BK SHF Pahat = x 100% %Air SHF Pahat = 100 - %BK
= x 100% =100 – 94,81%
= 94,81% = 5,19%
% Abu SHF Pahat = x 100%
= x 100%
= 5,33%
% BO SHF Pahat =%BK -%abu
= 100 – 5,33
= 94,67%
Ekstrak Eter (EE)
% EE SHF Pahat = x 100%
= x100%
= 9,94%
Neutral Detergent Fiber (NDF) Acid Detergent Fiber (ADF)
% NDF SHF Pahat = x 100% % ADF SHF Pahat = x 100%
= x 100% = x
100%
= 54,68% = 22,01%
81
Lampiran 2. Kecernaan In Vitro dan Produk Fermentasi Rumen
Parameter
Perlakuan
SHF Pahat SHF Samurai 1 SHF Samurai 2 Rumput
Lapangan
KcBK (%)
72,47 65,67 57,83 48,14
60,89 61,28 58,65 50,31
65,58 65,71 65,13 52,27
59,29 57,15 62,33 49,05
67,85 64,93 60,44 48,03
Rerata 65,22 62,95 60,88 49,56
*SD ±5,32 ±3,72 ±2,94 ±1,77
KcBO (%)
73,28 66,16 57,67 52,21
60,53 62,55 58,70 54,91
66,26 66,31 64,91 55,54
60,88 58,11 65,95 52,96
68,87 66,23 59,24 52,46
Rerata 65,96 63,87 61,29 53,62
*SD ±5,42 ±3,59 ±3,83 ±1,51
pH
6,90 6,95 7,09 7,20
6,97 6,96 6,69 7,14
6,92 6,95 7,15 7,15
6,98 7,01 7,11 7,11
6,96 6,98 7,13 7,13
Rerata 6,95 6,97 7,03 7,15
*SD ±0,03 ±0,02 ±0,19 ±0,03
Konsentrasi NH3(mM)
6,00 4,71 6,29 5,29
5,82 5,88 6,47 5,88
5,76 5,29 6,00 5,35
5,70 6,47 5,88 6,47
5,41 5,35 6,00 4,71
Rerata 5,74 5,54 6,13 5,54
*SD ±0,21 ±0,67 ±0,24 ±0,67
TVFA (mM)
99,756 80,196 129,096 70,416
89,976 80,196 70,416 70,416
80,196 80,196 104,646 70,416
85,086 80,196 109,536 89,976
85,086 80,196 114,426 75,306
Rerata 88,02 80.196 105,624 75,306
*SD ±7,42 ±0 ±21,70 ±8,47
82
2.1 Kecernaan Bahan Kering (KcBK)
KcBK SHF Pahat (%) = 100 - BK SHF Pahat tdk terdegdradasi (%)
= 100 - 27,53
= 72,47
2.2 Kecernaan Bahan Organik (KcBO)
KcBO SHF Pahat (%) = 100 - BO SHF Pahat tdk terdegdradasi (%)
= 100 – 26,72
= 73,28
2.3Konsentrasi NH3
N-NH3 SHF Pahat (mM) = N HCl x volume titrasi x 1000 / 17
= 0,1 x 1,02 x 1000 /17
= 5,74 mM
2.4 Total Volatile Fatty Acid (TVFA)
TVFA SHF Pahat (mM) = (a – b) x N HCl x (1000/5 mM)
= (4,92–3,90) x 0,489 x (1000/5 mM)
= 99,756mM
83
Lampiran 3. Uji Statistik Kandungan Nutrisi SHF
3.1 Hasil Analysis of Variance (ANOVA) Kandungan Nutrisi Sorghum Hydroponic
Fodder (SHF) Pahat, Samurai 1 dan Samurai 2
Sum of Squares df Mean Square F Sig.
BK Between Groups 13.264 2 6.632 5.387 .021
Within Groups 14.773 12 1.231
Total 28.037 14
BO Between Groups 6.928 2 3.464 16.456 .000
Within Groups 2.526 12 .211
Total 9.454 14
NDF Between Groups 8.715 2 4.357 .290 .753
Within Groups 179.998 12 15.000
Total 188.712 14
ADF Between Groups 298.917 2 149.459 25.377 .000
Within Groups 70.676 12 5.890
Total 369.593 14
PK Between Groups 30.200 2 15.100 12.223 .001
Within Groups 14.824 12 1.235
Total 45.024 14
EE Between Groups 35.868 2 17.934 10.080 .003
Within Groups 21.349 12 1.779
Total 57.216 14
3.2 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Bahan Kering pada Analisis Kandungan Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
SHF SAMURAI 2 5 91.5311
SHF SAMURAI 1 5 93.3805
SHF PAHAT 5 93.6449
Sig. 1.000 .713
84
3.3 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Bahan Organik pada Analisis Kandungan
Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
SHF SAMURAI 2 5 93.7852
SHF PAHAT 5 95.1049
SHF SAMURAI 1 5 95.3238
Sig. 1.000 .465
3.4 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Neutral Detergent Fiber (NDF) pada Analisis
Kandungan Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha =0.05
1
SHF SAMURAI 2 5 51.4883
SHF SAMURAI 1 5 52.2651
SHF PAHAT 5 53.3470
Sig. .484
3.5 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Acid Detergent Fiber (ADF) pada Analisis
Kandungan Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2 3
SHF PAHAT 5 20.9074
SHF SAMURAI 1 5 26.1642
SHF SAMURAI 2 5 31.8394
Sig. 1.000 1.000 1.000
85
3.6 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Protein Kasar pada Analisis Kandungan Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
SHF PAHAT 5 16.3380
SHF SAMURAI 2 5 17.8240
SHF SAMURAI 1 5 19.8020
Sig. .056 1.000
3.7 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Ekstrak Eter pada Analisis Kandungan Nutrisi
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
SHF SAMURAI 2 5 7.2650
SHF PAHAT 5 8.4473
SHF SAMURAI 1 5 10.9726
Sig. .186 1.000
86
Lampiran 4. Uji Statistik Kecernaan In Vitro dan Produk Fermentasi Rumen
pada Inkubasi 48 Jam
4.1 Hasil Analysis of Variance(ANOVA) Kecernaan In Vitro dan Produk Fermentasi
Rumen Sorghum Hydroponic Fodder(SHF) Pahat, Samurai 1, Samurai 2 dan
Rumput Lapangan pada Inkubasi 48 Jam
KcBK Between Groups 725.892 3 241.964 17.912 .000
Within Groups 216.130 16 13.508
Total 942.022 19
KcBO Between Groups 436.688 3 145.563 9.820 .001
Within Groups 237.170 16 14.823
Total 673.858 19
pH Between Groups .120 3 .040 3.954 .028
Within Groups .162 16 .010
Total .282 19
NH3 Between Groups 1.153 3 .384 1.549 .240
Within Groups 3.971 16 .248
Total 5.124 19
TVFA Between Groups 2653.047 3 884.349 5.917 .006
Within Groups 2391.210 16 149.451
Total 5044.257 19
4.2 Hasil uji lanjutan Duncan peubah Kecernaan Bahan Kering (KcBK) pada Analisis
KecernaanIn Vitro waktu inkubasi 48 jam
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
Rumput Lapangan 5 49.5587
SHF SAMURAI 2 5 60.8756
SHF SAMURAI 1 5 62.9460
SHF PAHAT 5 65.2159
Sig. 1.000 .095
87
4.3. Hasil uji lanjutan Duncan peubah Kecernaan Bahan Organik (KcBO) pada
Analisis KecernaanIn Vitro waktu inkubasi 48 jam
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
Rumput Lapangan 5 53.6159
SHF SAMURAI 2 5 61.2934
SHF SAMURAI 1 5 63.8695
SHF PAHAT 5 65.9629
Sig. 1.000 .087
4.4 Hasil uji lanjutan Duncan peubah pH pada Analisis KecernaanIn Vitro waktu
inkubasi 48 jam
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
SHF PAHAT 5 6.9460
SHF SAMURAI 1 5 6.9700
SHF SAMURAI 2 5 7.0340 7.0340
Rumput Lapangan 5 7.1460
Sig. .208 .097
4.5 Hasil uji lanjutan Duncan peubah NH3 pada Analisis KecernaanIn Vitro waktu
inkubasi 48 jam
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1
SHF SAMURAI 1 5 5.5412
Rumput Lapangan 5 5.5412
SHF PAHAT 5 5.7412
SHF SAMURAI 2 5 6.1294
Sig. .104
88
4.6 Hasil uji lanjutan Duncan peubah TVFA pada Analisis KecernaanIn Vitro waktu
inkubasi 48 jam
Perlakuan N
Subset for alpha = 0.05
1 2
Rumput Lapangan 5 75.3060
SHF SAMURAI 1 5 80.1960
SHF PAHAT 5 88.0200
SHF SAMURAI 2 5 105.6240
Sig. .138 1.000
89
Lampiran 5. Dokumentasi Penelitian
Penanaman SHF
Pemanenan SHF
Analisis kandungan nutrisi
Pengambilan cairan rumen
90
Analisis in vitro
![[INFO NUTRISI] Kandungan Gizi Bahan Pangan Dan Olahan](https://img.dokumen.tips/doc/110x75/55cf9c89550346d033aa2dbc/info-nutrisi-kandungan-gizi-bahan-pangan-dan-olahan.jpg)
