KANDUNGAN NUTRISI PAKAN TERNAK DAN …repository.uinjkt.ac.id/dspace/bitstream/123456789...kandungan nutrisi pakan ternak dan degradabilitas in sacco jerami sorgum (sorghum bicolor

KANDUNGAN NUTRISI PAKAN TERNAK DAN

DEGRADABILITAS IN SACCO JERAMI SORGUM

(Sorghum bicolor (L.) Moench) HASIL

IRADIASI GAMMA

SKRIPSI

WIDIA APRILIANI

PROGRAM STUDI KIMIA

FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI

UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH

JAKARTA

2017 M/1438 H

KANDUNGAN NUTRISI PAKAN TERNAK DAN DEGRADABILITAS

IN SACCO JERAMI SORGUM (Sorghum bicolor (L.) Moench) HASIL

IRADIASI GAMMA

SKRIPSI

Sebagai Salah Satu Syarat Untuk Memperoleh Gelar Sarjana Sains

Program Studi Kimia

Fakultas Sains Dan Teknologi

Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah Jakarta

Oleh :

WIDIA APRILIANI

1113096000035

PROGRAM STUDI KIMIA

FAKULTAS SAINS DAN TEKNOLOGI

UNIVERSITAS ISLAM NEGERI SYARIF HIDAYATULLAH

JAKARTA

2017 M/1438H

PERNYATAAN

DENGAN INI SAYA MENYATAKAN BAHWA SKRIPSI INI ADALAH

HASIL KARYA SAYA SENDIRI DAN BELUM PERNAH DIAJUKAN

SEBAGAI SKRIPSI ATAU KARYA ILMIAH PADA PERGURUAN TINGGI

ATAU LEMBAGA MANAPUN

Jakarta, 17 September 2017

Widia Apriliani

1113096000035

vi

KATA PENGANTAR

Alhamdulillah segala puji dan syukur penulis panjatkan kehadirat Allah

SWT yang senantiasa melimpahkan berbagai nikmat terutama nikmat sehat

sehingga penulis dapat menyelesaikan skripsi yang berjudul “Kandungan

Nutrisi dan Degradabilitas In Sacco Jerami Sorgum (Sorghum bicolor (L.)

Moench) Hasil Iradiasi Gamma” ini dengan baik dan tepat waktu.

Skripsi ini disusun untuk memenuhi syarat kelulusan di Program Studi

Kimia, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Islam Negeri Syarif

Hidayatullah Jakarta. Dengan selesainya skripsi ini dengan baik, penulis ingin

menyampaikan ucapan terima kasih kepada :

1. Bapak Teguh Wahyono, M.Si selaku Pembimbing I yang selalu memberi

masukan, ilmu dan motivasi kepada penulis.

2. Ibu Anna Muawanah, M.Si selaku pembimbing II yang juga selalu

membimbing penulis dan memberi masukan yang positif kepada penulis.

3. Bapak Dr.Thamzil Las dan Ibu Nurhasni, M.Si selaku penguji yang sudah

memberikan masukan yang positif dan saran kepada penulis selama

penulisan skripsi berlangsung.

4. Drs. Dede Sukandar, M.Si selaku Ketua Prodi Kimia Fakultas Sains dan

Teknologi Universitas Islam Negeri (UIN) Syarif Hidayatullah Jakarta.

5. Dr. Agus Salim, M.Si selaku Dekan Fakultas Sains dan Teknologi UIN

Syarif Hidayatullah Jakarta.

6. Bapak Edi Kosasih dan Saudari Shintia NW Hardani atas bantuan, arahan,

dan waktu diskusi selama penelitian berlangsung

vii

7. Orangtua tercinta, Faridah (ibu) dan Edi Sunaedi (bapak), Saffa Fitriani

dan Nadhira Afarinnisa (adik) yang telah menyemangati, memberikan

doa dan dukungan kepada penulis.

8. Dito Prasetyo Utomo yang selalu menyemangati, membantu, dan

menjadi tempat berkeluh kesah selama proses penelitian dan penulisan

skripsi berlangsung.

9. Husnul Khotimah selaku teman satu penelitian yang selalu memberikan

semangat dan bantuan kepada penulis untuk pantang menyerah sehingga

skripsi ini dapat terselesaikan

10. Yulia Nofiana, Ika Restu Purwanti dan Teman-teman Prodi Kimia 2013

yang selalu memberikan motivasi dan semangat kepada penulis.

Dalam penulisan skripsi ini penulis mengharapkan kritik dan saran yang

bersifat membangun. Semoga skripsi ini bisa bermanfaat bagi perkembangan

ilmu pengetahuan.

Ciputat, September 2017

Penulis

viii

DAFTAR ISI

Halaman

KATA PENGANTAR .......................................................................................... vi

DAFTAR ISI ....................................................................................................... viii

DAFTAR TABEL ................................................................................................. x

DAFTAR GAMBAR ............................................................................................ xi

DAFTAR LAMPIRAN ....................................................................................... xii

BAB I PENDAHULUAN ...................................................................................... 1

1.1. Latar Belakang ............................................................................................. 1

1.2. Perumusan Masalah ..................................................................................... 4

1.3. Hipotesis ....................................................................................................... 4

1.4. Tujuan Penelitian ......................................................................................... 4

1.5. Manfaat Penelitian ....................................................................................... 5

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ........................................................................... 6

2.1. Hewan Ruminansia ...................................................................................... 6

2.2. Proses Fermentasi Rumen ............................................................................ 7

2.2.1. Volatile Fatty Acid (VFA) ................................................................. 8

2.2.2. Amoniak (NH3) ................................................................................. 9

2.3. Sorgum ....................................................................................................... 11

2.4. Lignin ......................................................................................................... 12

2.5. Radiasi ........................................................................................................ 14

2.6. Komposisi Kimia Pakan ............................................................................. 16

2.6. Metode Evaluasi Pakan Secara In Sacco ................................................... 18

2.7. Degradasi Pakan ......................................................................................... 19

BAB III METODE PENELITIAN .................................................................... 21

3.1. Waktu dan Tempat ..................................................................................... 21

3.2. Alat dan Bahan ........................................................................................... 21

3.2.1. Alat .................................................................................................. 21

3.2.2. Bahan ............................................................................................... 21

3.3. Rancangan Penelitian ..................................................................................22

ix

3.4. Prosedur Kerja ............................................................................................ 22

3.4.1. Preparasi Sampel Jerami ................................................................. 22

3.4.2. Analisis Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum ................................... 23

3.4.2.1. Penentuan Kadar Bahan Kering (BK) Dan Bahan

Organik (BO) ................................................................... 23

3.4.2.2. Penentuan Kadar Protein Kasar ...................................... 23

3.4.2.3. Penentuan Kadar NDF ..................................................... 24

3.4.2.4. Penentuan Kadar ADF ..................................................... 24

3.4.3. Pengamatan Secara In Sacco ........................................................... 25

3.4.4. Pengukuran Degradasi Jerami Sorgum ........................................... 25

3.4.4.1. Pengukuran Degradasi Bahan Kering .............................. 25

3.4.4.2. Pengukuran Degradasi Bahan Organik ........................... 25

3.4.5. Hasil Fermentasi Rumen ................................................................. 26

3.4.5.1. Pengukuran pH Cairan Rumen ......................................... 26

3.4.5.2. Total Volatile Fatty Acid (TVFA) .................................... 26

3.4.5.3. N-Amoniak (N-NH3) ........................................................ 27

3.4.6. Analisis Statistik ............................................................................. 27

3.4.7. Bagan Alir Penelitian ..................................................................... 28

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................ 30

4.1. Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum ............................................................ 30

4.2. Degradasi Bahan Kering (DBK) dan Degradasi Bahan Organik (DBO)

Jerami Sorgum ........................................................................................... 34

4.2.1. Degradasi Bahan Kering Jerami Sorgum ........................................ 34

4.2.2. Degradasi Bahan Organik Jerami Sorgum ..................................... 37

4.3. Hasil Fermentasi Rumen ............................................................................ 40

4.3.1. pH .................................................................................................... 40

4.3.2. Konsentrasi NH3 .............................................................................. 42

4.3.3. Produksi TVFA ............................................................................... 45

BAB V KESIMPULAN DAN SARAN .............................................................. 49

5.1. Kesimpulan ................................................................................................ 49

5.2. Saran ........................................................................................................... 49

DAFTAR PUSTAKA .......................................................................................... 50

LAMPIRAN ......................................................................................................... 59

x

DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 1. Komponen Nutrisi Dalam Tanaman Sorgum Sebagai Pakan Ternak .... 11

Tabel 2. Komposisi Nutrisi Limbah Sorgum Dan Bahan Lainnya Sebagai

Pakan Ternak (%) ................................................................................... 12

Tabel 3. Kandungan Protein Dalam Beberapa Pakan Ternak .............................. 17

Tabel 4. Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum ........................................................ 30

xi

DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 1. Kerbau Rawa ...................................................................................... 6

Gambar 2. Sistem Pencernaan Hewan Ruminansia............................................... 7

Gambar 3. Proses Metabolisme Karbohidrat dalam Rumen Ternak

Ruminansia ........................................................................................... 9

Gambar 4. Proses Metabolisme Protein dalam Rumen Ternak Ruminansia ....... 10

Gambar 5. Tanaman Sorgum ............................................................................... 11

Gambar 6. Satuan Penyusun Lignin .................................................................... 13

Gambar 7. Struktur Kimia Lignin ....................................................................... 13

Gambar 8. Skema Analisa Proksimat .................................................................. 17

Gambar 9. Bagan Alir Penelitian ......................................................................... 28

Gambar 10. Grafik Presentase Degradasi Bahan Kering Jerami Sorgum ........... 35

Gambar 11. Grafik Presentase Degradasi Bahan Organik Jerami Sorgum ......... 38

Gambar 12. Efek dari Preatreatment pada lignoselulosa .................................... 39

Gambar 13. Grafik Hubungan pH dengan Waktu Inkubasi ................................ 41

Gambar 14. Grafik Hubungan NH3 dengan Waktu Inkubasi .............................. 43

Gambar 15. Grafik Hubungan TVFA dengan Waktu Inkubasi ........................... 45

xii

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran 1. Dokumentasi Kegiatan .................................................................... 59

Lampiran 2. Contoh perhitungan ........................................................................ 61

Lampiran 3. Hasil Analysis Of Varience Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum .... 65

Lampiran 4. Hasil Uji Lanjut Duncan Peubah BK Pada Kandungan Nutrisi ..... 65

Lampiran 5. Hasil Uji Lanjut Duncan Peubah BO Pada Kandungan Nutrisi ..... 65

Lampiran 6. Hasil uji lanjut Duncan peubah NDF pada kandungan nutrisi ....... 66

Lampiran 7. Hasil uji lanjut Duncan peubah ADF pada kandungan nutrisi ....... 66

Lampiran 8. Hasil uji lanjut Duncan peubah PK pada kandungan nutrisi .......... 66

Lampiran 9. Hasil Analysis of Varience fermentasi cairan rumen ...................... 67

Lampiran 10. Hasil uji lanjut Duncan pH cairan rumen pada waktu inkubasi

0 jam ........................................................................................... 70


12 jam .......................................................................................... 70


24 jam .......................................................................................... 70


48 jam .......................................................................................... 71


72 jam .......................................................................................... 71

Lampiran 15. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi NH3 pada waktu inkubasi

0 jam ............................................................................................ 71


12 jam .......................................................................................... 72


24 jam .......................................................................................... 72

Lampiran 18. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi pada waktu inkubasi

48 jam .......................................................................................... 72

xiii


72 jam .......................................................................................... 73

Lampiran 20. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi TVFA pada waktu inkubasi

0 jam ............................................................................................ 73


12 jam .......................................................................................... 73


24 jam .......................................................................................... 74


48 jam .......................................................................................... 74


72 jam .......................................................................................... 74

Lampiran 25. Hasil Analysis Of Varience Degradasi bahan kering dan bahan

organik pada jerami sorgum ........................................................ 75

Lampiran 26. Hasil uji lanjutan Duncan DBK pada waktu inkubasi 0 jam ........ 77

Lampiran 27. Hasil uji lanjutan Duncan DBK pada waktu inkubasi 12 jam ...... 77




Lampiran 31. Hasil uji lanjutan Duncan DBO pada waktu inkubasi 0 jam ........ 78

Lampiran 32. Hasil uji lanjutan Duncan DBO pada waktu inkubasi 12 jam ...... 78




xiv

ABSTRAK

WIDIA APRILIANI. Kandungan Nutrisi dan Degradabilitas In Sacco Jerami

Sorgum (Sorghumbicolor (L.) Moench) Hasil Iradiasi Gamma. Dibimbing oleh

TEGUH WAHYONO dan ANNA MUAWANAH.

Jerami sorgum merupakan limbah pertanian dan sumber serat kasar yang

dibutuhkan oleh ternak ruminansia. Kandungan lignoselulosa dari jerami sorgum

menyebabkan jerami sorgum sulit untuk dicerna dan didegradasi. Salah satu cara

memutuskan ikatan lignoselulosa adalah dengan iradiasi sinar gamma. Tujuan

penelitian ini adalah untuk mengetahui pengaruh iradiasi sinar gamma dengan

dosis 50, 100, dan 150 kGy terhadap kandungan nutrisi dan degradabilitas jerami

sorgum. Degradabilitas jerami sorgum diuji secara in sacco selama 0, 12, 24, 48,

dan 72 jam. Parameter kandungan nutrisi yang diuji yaitu bahan kering (BK),

bahan organik (BO), protein kasar (PK), Neutral Detergent Fiber (NDF) dan Acid

Detergent Fiber (ADF). Hasil penelitian menunjukkan bahwa dosis 150 kGy

mampu meningkatkan kandungan protein kasar sebesar 1,12% dan menurunkan

kadar NDF dan ADF sebesar 2,38% dan 4,45%. Dosis 100 kGy mampu

meningkatkan Degradasi BK dan BO dari jerami sorgum setelah 72 jam inkubasi

sebesar 13,04% dan 10,8%. Iradiasi gamma pada jerami sorgum Samurai 2

mampu memutuskan ikatan lignoselulosa sehingga lebih mudah didegradasi

bakteri rumen.

Kata kunci : degradabilitas, in sacco, jerami sorgum, kandungan nutrisi, radiasi

gamma.

xv

ABSTRACT

WIDIA APRILIANI. Nutrition Content and Degradability In Sacco of Gamma

Irradiated Sorghum (Sorghum bicolor (L.) Moench) Straw. Supervised by

TEGUH WAHYONO and ANNA MUAWANAH.

Sorghum straw is an agricultural waste and the source of the crude fiber

feed for ruminants. The lignocelullose content of sorghum straw causes low

digestibility and degradability. One way to break the lignocellulosic bond is by

gamma irradiation. The purpose of this study was to determine the effect of

gamma ray irradiation with doses of 50, 100, and 150 kGy on the nutritional

content and degradability of sorghum straw. The degradability of sorghum straw

was evaluated by in sacco methods for 0, 12, 24, 48, and 72 hours incubation

time. Parameters of nutrient content tested were dry matter (BK), organic matter

(BO), crude protein (PK), Neutral Detergent Fiber (NDF), Acid Detergent Fiber

(ADF). The results showed that doses of 150kGy were able to increase the crude

protein content by 1.12% and decrease the NDF and ADF levels by 2.38% and

4.45%. The 100 kGy dose was able to increase the degradation of BK and BO

from the sorghum straw after 72 hours of incubation 13.04% and 10.8%

respectively. Gamma irradiation on sorghum straw Samurai 2 is able to break the

lignocellulose bond and it make more easily degraded by rumen bacteria.

Keywords: degradability, gamma radiation, in sacco, nutritional content, sorghum

straw,

1

BAB I

PENDAHULUAN

1.1. Latar Belakang

Ternak ruminansia seperti sapi, kerbau, domba dan kambing merupakan

komoditas utama yang berperan besar sebagai penghasil susu dan daging dalam

sektor peternakan. Kegunaaan hewan ternak sendiri telah tercantum dalam surat

Al-Muminun ayat 21

Artinya : Dan sesungguhnya pada binatang-binatang ternak, benar-benar terdapat

pelajaran yang penting bagi kamu, Kami memberi minum kamu dari air susu yang

ada dalam perutnya, dan (juga) pada binatang-binatang ternak itu terdapat faedah

yang banyak untuk kamu, dan sebagian daripadanya kamu makan (Q.S. Al-

Muminun : 21)

Ayat tersebut menjelaskan bahwa hewan ternak memiliki banyak manfaat

untuk manusia. Kualitas produksi ternak ruminansia berhubungan dengan kualitas

pakan yang diberikan (Ismartoyo, 2011). Nutrisi untuk pakan ternak ruminansia

tidak hanya berkaitan pada sumber protein saja namun juga membutuhkan serat

kasar sebagai sumber nutrisi utamanya. Pakan yang biasa diberikan untuk ternak

ruminansia berasal dari bahan hijauan berupa rumput atau sebagian jenis

leguminosa (Qadriyanti, 2014).

2

Kebiasaan peternak di Indonesia masih melakukan pemberian pakan ternak

dengan seadanya. Menurut Ismartoyo (2011), ternak ruminansia di Indonesia

biasanya diberi makan berupa jerami-jeramian (Roughages). Jerami sendiri

merupakan limbah pertanian yang bisa dimanfaatkan untuk pakan ternak.

Keterbatasan penggunaan jerami disebabkan karena adanya ikatan hidrogen antara

lignin, selulosa dan hemiselulosa (Eun et al., 2006). Jenis jerami yang digunakan

salah satunya jerami yang berasal dari tanaman sorgum.

Sorgum merupakan tanaman yang cocok dikembangan di lahan marginal

karena memerlukan kebutuhan air yang sedikit (Wahyono et al., 2014). Sorgum

sendiri mulai masuk ke Indonesia pada tahun 1925. Sorgum merupakan tanaman

yang dapat dimanfaatkan sebagai bahan pangan, pakan dan energi yang sedang

gencar dikembangkan di Indonesia. Limbah tanaman sorgum berupa jerami dapat

dimanfaatkan sebagai pakan ruminansia. Tanaman sorgum mengandung

kandungan nutrisi yang tinggi dan juga kandungan protein kasar sebanyak 12,8%

(OISAT, 2011). Wahyono et al. (2014) juga menjelaskan bahwa pemanfaatan

jerami sorgum sebagai bahan pakan ruminansia sudah dilakukan oleh para

peternak.

Sebagai sumber pakan, jerami sorgum harus bisa didegradasi oleh mikroba

yang berada di dalam rumen untuk digunakan sebagai sumber energi.

Mikroorganisme rumen tersebut nantinya akan memecah ikatan-ikatan glikosidik

yang ada di dalam bahan pakan. Jerami sorgum sebagaimana sumber pakan yang

berasal dari tanaman, mengandung lignin yang bersifat resistan terhadap degradasi

mikroba rumen. Hal tersebut akan menghambat proses pencernaan ruminansia

(Ismartoyo, 2011).

3

Ada tiga cara yang dapat dilakukan untuk mempercepat degradasi pakan.

Secara kimia bisa dengan menambahkan asam-asam kuat atau alkali seperti

NaOH untuk memutuskan ikatan glikosidik antara lignin dan hemiselulosa

(Ismartoyo, 2011). Secara biologi yaitu dengan proses silase. Proses silase sendiri

adalah proses fermentasi yang menggunakan mikroorganisme anaerob. Secara

fisik yaitu dengan iradiasi sinar gamma. Sinar gamma digunakan karena bersifat

merusak struktur yang dilewatinya. Penyinaran sinar gamma dapat memutuskan

ikatan senyawa lignin dan hemiselulosa (Shahbazi et al., 2008).

Penelitian tentang peningkatkan degradasi pakan dengan menggunakan

iradiasi sinar gamma pernah dilakukan. Shahbazi et al. (2008) melaporkan bahwa

dosis efektif untuk meningkatkan degradasi bahan kering dan ADF pada jerami

alfalfa adalah 100 kGy. Wahyono et al. (2017) juga melaporkan bahwa jerami

Samurai 1 yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy meningkatkan degradasi bahan

kering sebesar 11,83% dari jerami non iradiasi.

Evaluasi degradasi pada pakan ternak bisa dilakukan dengan berbagai

metode, salah satunya adalah metode in sacco. Metode in sacco adalah metode

yang digunakan untuk memperkirakan degradasi bahan pakan ternak ruminansia

baik protein, kecernaan serat kasar, bahan kering, maupun kandungan ADF dan

NDF. Metode ini memiliki kelebihan dapat mengetahui laju degradasi bahan

pakan pada waktu tertentu (Wati et al., 2012). Shahbazi et al. (2011) pernah

melakukan metode in sacco untuk mengetahui degradasi ADF dan NDF dari

jerami alfalfa. Wahyono et al. (2017) juga menggunakan metode yang sama untuk

mengetahui degradasi BK, BO, ADF dan NDF dari jerami sorgum varietas

Samurai 1.

4

Melalui penelitian ini akan diuji pengaruh dosis iradiasi sinar gamma 0, 50,

100 dan 150 kGy terhadap kandungan nutrisi seperti bahan kering, bahan organik,

protein kasar, NDF, ADF, degradabilitas bahan kering, degradabilitas bahan

organik serta hasil fermentasi rumen berupa NH3, TVFA, dan juga pH dari jerami

sorgum varietas Samurai 2

1.2. Perumusan Masalah

1. Bagaimana pengaruh dari dosis iradiasi gamma dalam meningkatkan

kandungan nutrisi jerami sorgum varietas Samurai 2?

2. Berapakah dosis iradiasi yang optimal untuk meningkatkan degradabilitas

dan fermentabilitas dari jerami sorgum varietas Samurai 2?

1.3. Hipotesis

1. Iradiasi gamma mampu meningkatkan kandungan nutrisi pada jerami

sorgum varietas Samurai 2.

2. Dosis optimal iradiasi untuk meningkatkan degradabilitas dan

fermentabilitas jerami sorgum Samurai 2 adalah pada kisaran 100-150 kGy.

1.4. Tujuan Penelitian

1. Menentukan pengaruh dari iradiasi sinar gamma terhadap kandungan

nutrisi jerami sorgum varietas Samurai 2

2. Menentukan dosis optimal untuk meningkatkan degradabilitas in sacco dan

fermentabilitas pada jerami sorgum varietas Samurai 2.

5

1.5. Manfaat Penelitian

Manfaat dari penelitian ini diharapkan mampu mengoptimalkan penggunaan

radiasi pada bahan pakan ternak untuk peningkatan kandungan nutrisi dan

degradabilitasnya. Selain itu, diharapkan dengan penelitian ini dapat memberikan

informasi mengenai berbagai metode berbasis teknologi nuklir untuk mendukung

sektor peternakan di Indonesia.

6

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1. Hewan Ruminansia

Hewan ruminansia adalah hewan yang memiliki empat buah lambung

(rumen, retikulum, omasum, dan abomasum) serta mengalami proses memamah

biak atau pengembalian makanan dari lambung ke mulut untuk dimamah. Hewan

ruminansia termasuk sub ordo Ruminansia dari ordo Artiodaktil (berkuku belah)

(Apik, 2011). Lambung hewan ini terdiri dari banyak ruang (poligastrik), atau

disebut berperut banyak. Makanan hewan ini banyak mengandung selulosa yang

sulit dicerna sehingga sistem pencernannya berbeda dengan sistem pencernaan

hewan lain (Hidayah, 2011).

Kerbau rawa merupakan salah satu hewan ruminansia dari sub famili

Bovidae. Kerbau rawa memiliki ciri spesifik berupa tanduk yang melingkar

panjang ke belakang, berwarna abu-abu coklat, bentuk tubuh yang gempal dan

berisi mampu membuktikan bahwa kerbau ini mampu mengubah pakan yang

berkualitas rendah berupa rumput dan pakan lainnya (Gambar 1).

Gambar 1. Kerbau Rawa (Dok.Pribadi)

7

Sistem pencernaan hewan ruminansia meliputi pencernaan mekanik,

hidrolitik dan fermentatif (Gambar 2). Pencernaan mekanik terjadi di dalam

mulut oleh gigi dengan proses mengunyah yang bertujuan untuk memperkecil

ukuran pakan. Pakan selanjutnya masuk ke dalam usus melalui pencernaan

hidrolitik dimana nantinya pakan akan diuraikan menjadi molekul sederhana oleh

enzim-enzim pencernaan yang dihasilkan (Sutardi, 1980). Sistem pencernaan

ruminansia bergantung pada perkembangan populasi mikroba yang mendiami

rumen. Mikroba tersebut berperan sebagai pencerna pakan berserat sehingga dapat

dimanfaatkan sebagai sumber protein mikroba rumen untuk memenuhi kebutuhan

asam-asam amino yang tidak terpenuhi (Sutardi, 1980)

Gambar 2. Sistem Pencernaan Hewan Ruminansia (Neil et al., 2006)

2.2. Proses Fermentasi Rumen

Rumen merupakan tempat berlangsungnya proses fermentasi terbesar.

Kondisi dalam rumen bersifat anaerobik dengan suhu 39oC. pH dalam rumen

dipertahankan oleh buffer karbonat dari saliva karena cairan rumen mengandung

VFA (Volatile Fatty Acid) dan amoniak sehingga kondisi pH tetap pada nilai 6,8.

Selain itu, saliva berfungsi sebagai pelumas dan surfaktan yang membantu proses

mastikasi dan ruminasi (Arora,1995).

8

Pencernaan secara fermentatif dilakukan oleh mikroorganisme yang ada di

dalam rumen (Tillman et al., 1998). Faktor yang mempengaruhi pertumbuhan dan

aktifitas mikroba rumen adalah temperatur, pH, kapasitas buffer, tekanan osmotik,

kandungan bahan kering dan potensial oksidasi reduksi (Dehority, 2004).

Perkembangan populasi mikroba rumen dibatasi oleh kadar amoniak cairan rumen

yang rendah (Kurniawati, 2009). Hasil pencernaan fermentatif dari rumen berupa

VFA, NH3 dan air yang sebagian akan diserap ke dalam rumen dan sebagian lagi

diserap omasum (Arora, 1989).

2.2.1. Volatile Fatty Acid (VFA)

Volatile Fatty Acid adalah hasil pencernaan fermentatif rumen berupa asam

asetat, propionat dan butirat, serta gas-gas CH4 dan CO2 hasil fermentasi dari

senyawa monosakarida seperti glukosa. Glukosa sendiri dihasilkan dari hidrolisis

karbohidrat oleh enzim-enzim mikroba rumen (McDonal et al., 2002). VFA akan

dibawa ke hati oleh peredaran untuk diubah menjadi gula darah dan memenuhi

kebutuhan energi bagi hewan ruminansia (Lehninger, 1982). Peningkatan jumlah

VFA menunjukkan terjadinya degradasi pakan oleh mikroba rumen. Komposisi

VFA berubah dengan adanya perbedaan bentuk fisik, taraf pemberian pakan,

frekuensi dan komposisi pakan. Jumlah VFA yang tinggi menunjukkan

kecukupan energi bagi ternak (Sakinah, 2005).

Selain sebagai sumber energi, VFA merupakan sumber kerangka karbon

bagi pembentukan protein mikroba (Sutardi et al., 1980). Konsentrasi VFA

sendiri selain dipengaruhi oleh ransum juga dipengaruhi oleh jenis ternak.

Menurut Ulya (2007) konsentrasi VFA pada sapi lebih kecil daripada kerbau,

9

kambing dan domba. Proses metabolisme karbohidrat dan pembentukan VFA

disajikan pada Gambar 3.

Gambar 3. Proses Metabolisme Karbohidrat dalam Rumen Ternak

Ruminansia(McDonald et al., 2002).

2.2.2. Amoniak (N-NH3)

Amoniak merupakan sumber nitrogen utama untuk sintesis protein mikroba

(Sakinah, 2005). Mikroorganisme di dalam rumen dapat mensintesis asam-asam

amino esensial untuk kebutuhannya. Produksi NH3 berasal dari protein yang

10

didegradasi enzim proteolitik. Sutardi (1977) menjelaskan protein dari bahan

makanan yang masuk ke dalam rumen akan mengalami proteolisis oleh enzim-

enzim protease menjadi oligopeptida, sebagian dari oligopeptida akan

dimanfaatkan oleh mikroba rumen untuk menyusun protein sel, sedangkan

sebagian lagi akan dihidrolisa menjadi asam amino yang kemudian dideaminasi

menjadi asam keto alfa dan amoniak. Amoniak hasil fermentasi tidak semuanya

disintesis menjadi protein mikroba, sebagian akan dibawa ke hati untuk diubah

menjadi urea (Sutardi, 1977). Konsentrasi optimum amoniak untuk sintesis

protein mikroba berkisar antara 6-21 mM (McDonald et al., 2002). Proses

metabolisme protein dan pembentukan amoniak disajikan pada Gambar 4.

Gambar 4. Proses Metabolisme Protein dalam Rumen Ternak Ruminansia

(McDonald et al., 2002)

11

2.3. Sorgum

Sorgum merupakan tanaman serelia (Gambar 5) yang potensial untuk

dibudidayakan dan dikembangkan sebagai pakan ternak ruminansia pada daerah

marginal dan kering di Indonesia (Koten et al., 2012). Hampir seluruh bagian dari

tanaman sorgum dapat dimanfaatkan. Keseluruhan tanaman sorgum merupakan

biomassa yang potensial untuk dijadikan bahan pakan segar bagi ternak (Sari,

2009). OISAT (2011) menjelaskan bahwa sorgum memiliki kandungan nutrisi

yang tinggi dan juga kandungan protein kasar sebanyak 12,8%. Komponen

nutrisi yang terdapat dalam tanaman sorgum adalah disajikan dalam Tabel 1.

Tabel 1. Komponen Nutrisi Dalam Tanaman Sorgum Sebagai Pakan Ternak

Nutrien (% BK)

Bahan Kering

Bahan Organik

Protein Kasar

Ekstrak Ether

Serat Kasar

Ekstrak Tanpa Nitrogen

Ca

P

90.78

90.70

4.41

4.56

31.69

50.04

0.32

0.06

Sumber: Purwantari (2008)

Gambar 5. Tanaman Sorgum (Dok.Pribadi)

12

Jerami sorgum adalah limbah pertanian yang dapat dimanfaatkan sebagai

hijauan pakan ternak. Konsumsi rata-rata setiap ekor sapi adalah 15 kg daun

segar/hari (Direktorat Jenderal Perkebunan 1996). Daun sorgum tidak dapat

diberikan secara langsung kepada ternak, tetapi harus dilayukan dahulu sekitar 2-3

jam. Nutrisi daun sorgum setara dengan rumput gajah dan pucuk tebu. Komposisi

kimia dari limbah sorgum dibandingkan dengan limbah pertanian (Tabel 2).

Berdasarkan data - data tersebut dapat disimpulkan bahwa nutrisi jerami sorgum

tidak kalah dibanding jerami jagung dan pucuk tebu.

Tabel 2. Komposisi Nutrisi Limbah Sorgum Dan Bahan Lainnya Sebagai Pakan

Ternak (%)

Limbah Protein

kasar

Lemak Serat

kasar

Abu BETN

Daun

Sorgum 7,82 2,60 28,94 11,43 40,57

Rumput gajah 6 1,08 34,25 11,79 46,84

Pucuk tebu 5,33 0,90 35,48 9,69 48,60

Ubi kayu 20,40 6 22,80 9,90 40,90

Jerami

Sorgum 4,40 1,60 32,30 8,90 52,80

Padi 4,50 1,50 28,80 20 45,20

Jagung 7,40 1,50 27,80 10,80 53,10

Kacang tanah 11,10 1,80 29,90 18,70 38,20

Kedelai 10,60 2,80 36,30 7,60 42,80

Ubi jalar 11,30 2,5 24,90 14,50 46,80

BETN : bahan ekstrak tanpa nitrogen

Sumber : Sirappa (2003)

2.4. Lignin

Lignin merupakan senyawa gabungan yang mempunyai hubungan erat

dengan selulosa dan hemiselulosa dalam menyusun dinding sel. Satuan penyusun

lignin adalah kumaril alkohol, koniferil alkohol, dan sinapsil alkohol (Gambar 6).

Jumlah karbon yang tedapat pada lignin lebih besar dibanding karbohidrat dalam

satu polimer. Lignin sangat tahan terhadap degradasi kimia termasuk degradasi

enzimatik (Tilman et al., 1989).

13

Gambar 7. Struktur Kimia Lignin (Qiu and Chen, 2006)

Para Kumaril Alkohol Koniferil Alkohol Sinapil Alkohol Model Kerangka C

Gambar 6. Satuan penyusun lignin (Steffen, 2003)

14

Pengerasan dinding sel kulit tanaman yang disebabkan oleh lignin

menghambat enzim untuk mencerna serat dengan normal. Hal ini karena adanya

ikatan kimia yang kuat antara lignin, polisakarida tanaman dan protein dinding sel

yang menjadikan komponen-komponen ini tidak dapat dicerna oleh ternak

(McDonald et al., 2002)

Keterbatasan penggunaan jerami sorgum sebagai pakan ternak disebabkan

karakteristik dinding sel yang mengalami lignifikasi lanjut menyebabkan ikatan

kompleks antara lignin, selulosa, dan hemiselulosa (Eun et al., 2006). Arroyo

(2000) menjelaskan bahwa lignin merupakan polimer poli aromatik yang

mempunyai berat molekul yang tinggi dan termasuk golongan phenolik lignin.

Oleh karena itu, lignin tahan terhadap hidrolisis enzimatik termasuk fermentasi

oleh mikroba rumen (Steffen and Hattaka, 2000) sehingga membatasi kecernan

selulosa dan hemiselulosa sebaga pakan ternak (Prihatini et al., 2011). Menurut

Eun et al. (2006) komposisi lignin menentukan kecernan jerami. Sehingga

peningkatan kualitas jerami diutamakan pada pemutusan senyawa kompleks

lignin-selulosa.

2.5. Radiasi

Radiasi adalah pancaran energi dari suatu materi dalam bentuk panas, foton,

dan partikel dari sumber radiasi. Berdasarkan jenisnya radiasi dibedakan menjadi

radiasi alpha (α), beta (β), gamma (γ), sinar-X dan neutron (n). Radiasi gamma

sendiri termasuk radiasi pengion dimana jenis radiasi ini akan menyebabkan efek

ionisasi apabila berinteraksi dengan sel-sel hidup (Suyatno, 2010). Radiasi gamma

sering digunakan untuk pengawetan bahan pangan. Sinar gamma sendiri memiliki

gelombang elektromaknetik yang bergerak dengan kecepatan tinggi, tidak

15

dipegaruhi medan magnet, tidak memiliki muatan, dan mempunyai daya ionisasi

yang kecil dengan daya tembus yang tinggi (Ikmalia, 2008). Selain untuk bahan

pangan, radiasi gamma juga digunakan untuk memecah ikatan dari serat di produk

hasil pertanian (Al Masri and Zarkawi, 1994). Selain memecah ikatan yang ada di

bahan pakan, iradiasi sinar gamma juga bisa meningkatkan nilai gizi dan

menginaktivasi zat-zat antinutrisi dalam bahan pakan seperti lignin (Siddhuraju et

al., 2002;. Farkas, 2006).

Radiasi gamma berinteraksi dengan bahan dengan tiga proses utama yaitu

efek fotolistrik, efek penghambuan compton dan efek produksi pasangan. Pada

efek fotolistrik energi foton diserap oleh elektron orbit, sehingga elektron terlepas

dari atom. Efek fotolistrik terjadi pada elektron berenergi rendah yaitu dengan

energi +0,01 meV hingga 0,5 meV. Pada efek compton, foton dengan energi hv

dihamburkan dan elektron tersebut dilepaskan dari ikatannya dengan atom dan

bergerak dengan energi kinetik tertentu. Proses produksi pasangan terjadi apabila

foton datang (Yudi, 2008).

Menurut Shawrang et al. (2012) iradiasi yang dilakukan pada tanaman tidak

akan mempengaruhi komposisi kimianya seperti protein kasar, lemak kasar, dan

abunya. Iradiasi yang dilakukannya hanya bisa menurunan kandungan NDF dan

ADF pada tanaman. Semakin tinggi dosis iradiasi yang diberikan, maka

penurunan NDF dan ADF semakin besar sehingga meningkatkan degradasi dari

bahan kering dan kandungan nutrisinya.

Sumber radiasi yang digunakan untuk mengiradiasi jerami sorgum ini

adalah Cobalt-60. 60

Co memilki energi radiasi yang lebih besar dan memancarkan

sinar gamma dengan energi masing-masing 1,17 meV dan 1,33 meV.

16

Penembakan sinar gamma yang dilakukan dalam iradiasi bahan pakan

ditempatkan dalam sebuah mesin (Ikmalia, 2008). Isotop Cobalt-60 merupakan

radioisotop buatan yang diproduksi dengan mengiradiasi logam murni Cobalt-59

dengan neutron dalam suatu reaktor nuklir.

59Co + n

60Co + ɣ

Iradiator 60

Co yang terdapat di PAIR-BATAN antara lain Gamma Cell 220,

iradiator panorama serbaguna (IRPASENA), iradiator karet alam (IRKA), dan

Gamma Chamber 4000A. Untuk pengaplikasian dengan dosis iradiasi yang lebih

tinggi digunakan iradiator IRKA.

2.6. Komposisi Kimia Pakan

Komposisi kimia pada pakan ternak bergantung pada varietas, kondisi

tanah, pupuk, cara pengolahan , dan faktor lainnya. Umumnya bahan pakan yang

berasal dari limbah pertanian tidak bisa digunakan sebagai pakan tunggal untuk

hewan ruminansia karena tidak memenuhi standar kebutuhan ternak. Penentuan

komposisi kimia pakan biasanya ditentukan dengan analisa proksimat (Gambar 8)

dan analisa kecernaan bahan pakan. Untuk analisa proksimat meliputi kadar air,

abu, protein, lemak kasar, serat kasar dan bahan ekstrak tanpa nitrogen (Beta-N)

(McDonald et al., 2002).

17

Gambar 8. Skema Analisa Proksimat

Kadar protein dari bahan pakan (Tabel 3) dianalisis menggunakan kadar

protein kasar. Analisis ini menentukan kadar protein dengan menghitung kadar

nitrogennya secara kimiawi kemudian dikali dengan faktor 6,25 = (100:16).

Faktor tersebut digunakan sebab nitrogen mewakili 16% dari protein (Murtidjo,

1987).

Tabel 3. Kandungan Protein Dalam Beberapa Pakan Ternak

Bahan N dalam Protein (%) Faktor Protein

Jagung 16.0 6.25

Dedak gandum 15.8 6.31

Bungkil kapas 18.9 5.30

Protein Bijian 17.0 5.90

Ikan 16.0 6.25

Susu 15.8 6.38

Telur dan daging 16.0 6.25

Sumber : Crampton (1969)

Sedangkan serat kasar merupakan residu hasil pertanian setelah perlakuan

asam atau alkali. Serat kasar terdiri dari selulosa, dengan sedikit lignin dan

pentosa. Serat kasar juga merupakan kumpulan serat yang tidak bisa dicerna oleh

ternak. Meskipun tidak mempunyai nilai gizi, serat kasar berperan dalam

18

pencernaan tubuh (Hermayanti et al., 2006). Analisis serat kasar dilakukan

dengan cara gravimetri. Perbedaan berat yang dihasilkan dari penimbangan

menunjukkan berat serat kasar dalam bahan pakan (Murtidjo, 1987).

2.6. Metode Evaluasi Pakan Secara In Sacco

Metode evaluasi pakan secara in sacco merupakan kombinasi pengukuran

nilai nutrisi baik di lapangan maupun di laboratorium. Metode ini digunakan

untuk memperkirakan degradasi bahan pakan ternak ruminansia baik protein,

kecernaan serat kasar, bahan kering, maupun kandungan ADF dan NDF. Prinsip

dari metode ini adalah pakan ternak yang dimasukkan ke dalam kantung nilon

diinkubasi dalam rumen ternak ruminansia. Dari hasil inkubasi, sisa residu yang

tidak bisa didegradasi mikroorganisme dalam rumen akan diukur. Selain

mengukur kecernaan, dengan metode ini juga dapat diukur laju degradasi dari

pakan tersebut. Keunggulan metode ini adalah dapat menggambarkan kinetik

degradasi dan menghitung gerakan laju pakan keluar rumen (Suparjo, 2010).

Tingkat degradasi in sacco dipengaruhi oleh beberapa faktor diantaranya

jenis dan ukuran pakan, ukuran pori-pori kantong nilon dan waktu inkubasi

(Suparjo, 2010). Menurut Widyobroto (1996) waktu inkubasi untuk degradasi

pakan bervariasi diantaranya 48 jam untuk pakan konsentrat dan 72 jam untuk

pakan berserat. Inkubasi pakan dengan waktu berbeda memungkinkan

pengukuran hubungan waktu dengan degradasi mikroba rumen yang digambarkan

dalam kurva degradasi (Akhirany, 2011).

19

2.7. Degradasi Pakan

Degradasi pakan didefinisikan sebagai pemecahan pakan oleh

mikroorganisme rumen dalam retikulo-rumen yang kemudian dilanjutkan dengan

pencernaan pakan (Ismartoyo, 2011). Kecernaan pakan sendiri ditentukan oleh

karakteristik degradasi dan laju zat pakan tersebut meninggalkan rumen

(Qadriyanti, 2014). Laju degradasi sendiri berbanding lurus dengan substrat

sedangkan waktu inkubasi yang semakin lama akan mengurangi jumlah substrat

(Suhartanto et al., 2000). Aurora (1989) menjelaskan bahwa degradasi dari bahan

pakan dipengaruhi beberapa faktor diantaranya populasi mikroba di dalam rumen,

jenis ternak, jenis pakan, pH dan aktivitas mikroba. Degradasi optimal terjadi

pada pH 6-7.

Ada tiga cara yang dapat dilakukan untuk mempercepat degradasi pakan

ternak dalam rumen. Secara kimia yaitu dengan menambahkan asam-asam kuat

atau alkali untuk memutuskan ikatan polisakarida misalnya menambahkan H2SO4

(Ismartoyo, 2011). Secara biologi yaitu dengan proses silase. Proses silase sendiri

adalah proses fermentasi yang menggunakan mikroorganisme anaerob. Secara

fisik yaitu dengan iradiasi sinar gamma. Sinar gamma digunakan karena bersifat

merusak sel benda yang dilewatinya. Sehingga penyinaran sinar gamma dapat

memutuskan ikatan senyawa lignin dan hemiselulosa (Shahbazi et al., 2008).

Kecernaan bahan kering dipengaruhi kandungan isi sel. Bahan kering

sendiri merupakan komponen pakan ternak yang sudah tidak mengandung air.

Kecernaan bahan kering menjadi indikator derajat degradasi pakan (Wati et al.,

2012). Selain bahan kering kecernaan bahan organik juga merupakan indikator

yang penting. Bahan organik merupakan bahan kering yang telah dikurangi abu

20

atau bahan yang bila difermentasi menghasilkan asam lemak sebagai sumber

energi bagi ternak (Blummel et al., 1997). Faktor yang mempengaruhi kecernaan

bahan organik antara lain kandungan serat kasar dan mineral bahan pakan (Ismail,

2011). Semakin tinggi bahan kering dan bahan organik yang terdegradasi maka

proses fermentasi yang terjadi juga semakin lama.

21

BAB III

METODE PENELITIAN

3.1. Waktu dan Tempat

Penelitian ini dilaksanakan di Laboratorium Nutrisi Ternak, kelompok

Produksi Ternak Pusat Aplikasi Isotop dan Radiasi, Badan Tenaga Nuklir

Nasional (PAIR-BATAN), lokasi penelitian terletak di Jalan Lebak Bulus Raya

No.49, Jakarta Selatan. Waktu penelitian dilaksanakan pada bulan Oktober sampai

Desember 2016.

3.2. Alat dan Bahan

3.2.1. Alat

Alat yang digunakan pada penelitian ini antara lain grinder, penggiling,

oven, gelas beaker, timbangan analitik, pinset, sendok, refluks, sokhlet, tanur,

pemanas air, magnetic stirer, cawan masir, cawan porselen, labu kejdhal, nampan,

pH meter, buret, cawan conway, Steam Destilation dan komputer dengan aplikasi

Statistical Package for the Social Sciences (SPSS)

3.2.2. Bahan

Bahan yang digunakan pada penelitian ini adalah kerbau berfistula, plastik

polyethylene, HCl, NaOH, petroleum ether, kertas saring, kantong nilon, Neutral

Detergent Soluble (NDS), Acid Detergent Soluble (ADS), H2SO4, K2CO3, H3BO3,

KH2PO4, Sorgum Samurai 2 hasil varietas yang diperoleh dari Pusat Aplikasi

Isotop dan Radiasi (PAIR)-BATAN,

22

3.3. Rancangan Penelitian

Penelitian ini terdiri dari dua fase antara lain 1) proses iradiasi jerami

sorgum menggunakan sinar gamma pada dosis 50, 100 dan 150 kGy, 2) pengujian

degradasi sorgum menggunakan metode in sacco. Parameter yang diamati pada

penelitian ini yaitu kandungan nutrisi seperti kadar Bahan Kering (BK), Bahan

Organik (BO), Protein Kasar (PK), Neutral Detergent Fiber (NDF), Acid

Detergent Fiber (ADF), Degradasi Bahan Kering, Bahan Organik, Total Volatile

Fatty Acid, pH dan N-NH3.

Rancangan percobaan pada penelitian ini adalah rancangan acak lengkap

(RAL) empat perlakuan dengan empat pengulangan, perlakuannya adalah iradiasi

dosis 0 kGy, iradiasi dosis 50 kGy, iradiasi dosis 100 kGy, iradiasi dosis 150 kGy

sehingga diperoleh sampel sebanyak 16. Kontrol yang digunakan untuk uji

kandungan nutrisi dan in sacco adalah jerami sorgum iradiasi dosis 0 kGy. Data

yang diperoleh dianalisis menggunakan analysis of variance (ANOVA) pada IBM

SPSS versi 22.0 dan dilanjutkan dengan uji Duncan untuk melihat perbedaan antar

perlakuan.

3.4. Prosedur Kerja

3.4.1. Preparasi Sampel Jerami (Wahyono, 2015)

Sorgum samurai 2 yang telah berumur 100 hari dipanen dan diambil

jeraminya (daun dan batangnya). Jerami sorgum kemudian di keringkan pada

suhu 60o dan dipotong hingga berukuran 2 mm menggunakan grinder. Setelah itu

jerami sorgum yang telah halus dimasukkan ke dalam plastik polyethylene dan

diiradiasi menggunakan sinar gamma di iradiator IRKA dengan sumber iradiasi

23

cobalt-60 pada dosis 50, 100, dan 150 kGy dengan laju dosis 3,7 kGy/jam di

PAIR BATAN

3.4.2. Analisis Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum

3.4.2.1. Penentuan Kadar Bahan Kering (BK) Dan Bahan Organik (BO)

Cawan kosong (a) diisi oleh jerami sorgum hasil inkubasi sebanyak 1 g (b).

Dalam penimbangan dilakukan pengulangan sebanyak 5 kali. Cawan dan sampel

dimasukkan ke dalam desikator kembali selama 30 menit dan ditimbang (c).

Cawan kemudian dimasukkan ke dalam tanur dengan suhu 600oC selama 6 jam.

Cawan didiamkan sehari dan dimasukkan dalam desikator selama 30 menit dan

ditimbang (d). Kadar BK dan BO dihitung menggunakan rumus:

% kadar BK =

x 100%

% Kadar abu =

%Kadar BO = 100- kadar abu

Keterangan:

a = berat cawan kosong (g)

b = berat cawan yang diisi dengan sampel (g)

c = berat cawan berisi sampel yang sudah dikeringkan (g)

d = berat cawan berisi sampel yang sudah jadi abu (g)

3.4.2.2. Penentuan Kadar Protein Kasar (AOAC, 2005)

Sampel ditimbang sebanyak 0,25 g kemudian dimasukkan ke dalam labu

Kjhedhal dicampur dengan 1 g selenium dan 5 mL H2SO4 pekat. Kemudian

didestruksi selma 30 menit. Hasil destruksi ditambah 10 ml NaOH 50%.

Selanjutnya proses destilasi dilakukan selama 15 menit. Destilasi yang dihasilkan

ditampung pada erlenmeyer yang sebelumnya ditambah 10 mL HCl 0,1 N dan 2

tetes indikator metil merah. Kemudian dititrasi dengan NaOH 1 N hingga terjadi

24

perubahan warna dari merah muda menjadi tidak berwarna. Selanjutnya

ditentukan nilai protein kasar menggunakan rumus:

Total Nitrogen (%) = ( )

Protein kasar (%) = Total N x 6,25

Keterangan:

V HCl : Volume HCl saat destilasi (mL)

N HCl : Normalitas HCl

Ar N : Massa atom relatif Nitrogen

6,25 : Faktor untuk mencari % protein

3.4.2.3. Penentuan Kadar NDF (Van Soest, 1976)

Sampel diambil sebanyak 0,5 g (a) kemudian dimasukkan ke dalam gelas

piala yang telah ditambahkan 50 mL larutan NDS (air destilasi, EDTA,

Na2B4O7.10H2O, Na2HPO4.10H2O, ethylene glycol monoethyl ether) . Larutan

kemudian dipanaskan selama 1 jam. Kemudian larutan disaring dengan pompa

vakum dan penyaring kaca masir yang telah ditimbang (b). Pencucian dilakukan

dengan aseton dan air panas. Sampel kemudian dikeringkan dalam oven dan

dimasukkan ke dalam desikator selama 1 jam lalu lalu dtimbang (c).

% kadar NDF =

3.4.2.4. Penentuan Kadar ADF (Van Soest, 1976)

Sampel diambil sebanyak 0,5 g (a) kemudian dimasukkan ke dalam gelas

piala yang telah ditambahkan 50 mL larutan ADS (H2SO4,

Cetyltimethylammonium Bromida). Larutan kemudian dipanaskan salama 1 jam.

Kemudian larutan disaring dengan pompa vakum dan penyaring kaca masir yang

telah ditimbang (b). Pencucian dilakukan dengan aseton, dan air panas. Sampel

kemudian dikeringkan dalam oven dan dimasukkan ke dalam desikator selama 1

jam lalu dtimbang (c).

25

% kadar ADF =

3.4.3. Pengamatan Secara In Sacco (Ørskov, 1979)

Kantong nilon yang telah disiapkan diberi kode sesuai waktu inkubasi.

Jerami sorgum yang telah diradiasi kemudian dimasukkan ke dalam kantong nilon

(in sacco) sebanyak 5 gram yang sebelumnya telah ditimbang. Kemudian kantong

nilon diikat dengan karet gelang. Kanton nilon yang telah direndam kemudian

dimasukkan ke dalam rumen kerbau berfistula dan diinkubasi selama 0, 12, 24,

48, dan 72 jam. Ransum harian yang diberikan berupa rumput-rumputan dan

jerami segar serta konsentrat. Pengujian dilakukan simplo serta diberi pemberat

kelereng yang telah diketahui beratnya. Kantong yang telah diinkubasi kemudian

dicuci dengan air kemudian dimasukkan ke dalam oven pada suhu 105oC selama

24 jam. Sampel kemudian dimasukkan ke dalam eksikator selama 30 menit dan

ditimbang sampai beratnya konstan. Setelah ditimbang sampel dianalisis kadar

DBK dan DBO.

3.4.4. Pengukuran Degradasi Jerami Sorgum

3.4.4.1. Pengukuran Degradasi Bahan Kering (BSN, 1992)

Kantong nilon yang telah diinkubasi dalam rumen dioven pada suhu 105oC

dan dilakukan penimbangan kantong hingga konstan. Nilai degradasi bahan

kering ditentukan dari selisih berat bahan kering sebelum dan sesudah sampel

diinkubasi, seperti yang tercantum pada rumus sebagai berikut.

%DBK = ( ) ( )

( )

3.4.4.2. Pengukuran Degradasi Bahan Organik (BSN, 1992)

Pengukuran bahan organik dilakukan dengan proses pengabuan sebagian

sampel pakan ke tanur bersuhu 600oC. Kadar bahan organik dihitung dari selisih

26

berat sampel sebelum dan sesudah diabukan. Degradasi bahan organik dihitung

dengan rumus:

%DBO = ( ) ( )

( )

3.4.5. Hasil Fermentasi Rumen

Dalam penelitian ini dilakukan juga pengambilan cairan rumen dengan

paramater:

3.4.5.1. Pengukuran pH Cairan Rumen (AOAC, 2005)

pH meter HANNA dinyalakan dengan menekan tombol start. Kemudian

dilakukan kalibrasi alat dengan menggunakan pH standar. Lalu elektroda pH

dimasukkan ke dalam cairan rumen dan dicatat nilai pHnya setelah nilai stabil.

Setelah itu elektroda diangkat dan dibilas dengan akuades sebelum pengujan

sampel berikutnya.

3.4.5.2. Total Volatile Fatty Acid (TVFA) (AOAC, 2005)

Dimasukkan sebanyak 5 mL cairan rumen dan ditambahkan 1 mL H2SO4

15% ke dalam tabung reaksi kemudian disentrifugasi selama 10 menit dengan

kecepatan 3000 rpm. Kemudian diambil sebanyak 5 mL supernatan dan

dimasukkan ke dalam tabung destilat. Cairan rumen kemudian didestilasi, di

dalam tabung destilat ditambahkan NaOH 0,4765 N dan ditampung hingga

mencapai volume 300 mL. Hasil destilasi kemudian ditambah 1 mL indikator

fenoftalein dan dititrasi dengan HCl 0,5 N sampai terjadi perubahan warna dari

berwarna merah muda menjadi tidak berwarna. Kadar VFA dihitung dengan

rumus:

TVFA (mM) = (a-b) x N HCl x (1000/5 mM)

Keterangan :

27

a : volume HCl saat titrasi Blanko (mL)

b : volume titrasi sampel (mL)

N HCl: normalitas HCl

3.4.5.3 N-Amoniak (N-NH3) (Orskov, 1979)

Sebanyak 1 mL cairan rumen hasil inkubasi pada waktu 0, 12, 24, 48, dan

72 jam dimasukkan pada salah satu ujung alur cawan conway yang ujungnya telah

dimasukkan 1 mL larutan K2CO3 jenuh. Kemudian cawan kecil di bagian tengah

diisi asam borat (H3BO3) berindikator metil merah dan brom kresol hijau

sebanyak 1 mL. Cawan conway lalu ditutup rapat dan digoyang-goyangkan

sampai tercampur kemudian didiamkan 2 jam dalam suhu kamar. Larutan asam

borat yang terikat dengan amoniak kemudian dititrasi dengan HCl 0,1 N hingga

terjadi perubahan warna dari biru menjadi merah jambu. Penentuan N-NH3

dihitung dengan rumus

N-NH3 (mg/100 mL) = N-HCl x volume titrasi HCl x BM NH3 x 100

3.4.6. Analisis Statistik

Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak Lengkap (RAL) dengan 4

perlakuan dan 4 kali ulangan. Perlakuan pada penelitian ini adalah:

1. Kontrol berupa jerami sorgum tanpa iradiasi

2. Jerami sorgum yang telah diiradiasi dengan dosis 50 kGy



Data yang diperoleh kemudian dianalisis menggunakan analysis of variance

(ANOVA) pada IBM SPSS versi 20.0 dengan batas kepercayaan 95% (α = 0,05)

dan dilanjutkan dengan uji Duncan untuk melihat perbedaan antar perlakuan.

28

3.4.7. Bagan Alir Penelitian

Gambar 9 merupakan bagan alir dari penelitian ini:

Gambar 9. Bagan Alir Penelitian

Jerami sorgum

dikeringkan

Dihaluskan hingga

berukuran 2mm

dan diradiasi

50 kGy 100 kGy 150 kGy

Pengukuran kandungan nutrisi:

-bahan kering

-bahan organik

-protein kasar

-Acid Detergent Fiber

-Neutral Detergent Fiber

Degradabilitas In

sacco 12,24,48,dan 72

jam

Hasil fermentasi

-pH

- NH3

- TVFA

Pengukuran Deradabilitas

Bahan Organik dan

Degradabilitas Bahan

Kering

Analisis statistik

Kontrol

30

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1. Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum

Hasil analisis kandungan nutrisi jerami sorgum varietas Samurai 2 yang

diiradiasi dengan dosis 0, 50, 100, dan 150 kGy disajikan dalam Tabel 5.

Berdasarkan tabel di bawah, kandungan bahan kering dan bahan organik pada

jerami sorgum yang diiradiasi gamma maupun non iradiasi tidak menunjukkan

perbedaan yang nyata (Lampiran 4). Pada bahan kering, jerami sorgum yang

diiradiasi dengan dosis 50 kGy cenderung mengalami peningkatan sebesar 0,13%

dibandingkan jerami yang non iradiasi. Sedangkan untuk jerami sorgum yang

diiradiasi dengan dosis 100 kGy dan 150 kGy cenderung mengalami penurunan

sekitar 0,05% dan 0,54% dibandingkan jerami sorgum non iradiasi.

Tabel 4. Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum

Perlakuan Bahan

kering

(%)

Bahan

organik

(%)

Protein

kasar (%)

NDF (%) ADF (%)

S.2 0 92,77 87,71 8,66b 78,99

b 50,34

b

S.2 50 92,90 87,95 8,23ab

82,13c 48,25

ab

S.2 100 92,72 87,95 7,92a 78,45

ab 48,35

ab

S.2. 150 92,23 87,86 9,78c 76,61

a 45,89

a

SEM 0,206 0,077 0,222 0,658 0,629

Keterangan: Supescript (a,b,c) huruf yang berbeda pada kolom yang sama

menunjukkan perbedaan yang nyata (P<0,05); S.2 0 (Samurai 2

non iradiasi); S.2 50 (Samurai 2 iradiasi 50 kGy); S.2 100 (Samurai

2 iradiasi 100 kGy); S.2 150 (Samurai 2 iradiasi 150 kGy; SEM

(Standar Error Mean); ADF (Acid Detergent Fiber); NDF (Neutral

Detergent Fiber).

31

Jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 50 kGy dan 100 kGy memiliki

kandungan bahan organik tertinggi sebesar 87,95%. Sedangkan jerami sorgum

non iradiasi memiliki kandungan bahan organik terkecil yaitu 87,71%. Jerami

sorgum yang diiradiasi dengan dosis 150 kGy cenderung mengalami peningkatan

sebesar 0,15% dibanding jerami sorgum non iradiasi. Hal ini sesuai dengan

penelitian Wahyono dan Firsoni (2016) bahwa iradiasi tidak mempengaruhi

kandungan bahan kering dan organik dari jerami.

Perbedaan kandungan protein yang nyata (P<0,05) terdapat pada jerami

sorgum semua perlakuan kecuali jerami sorgum iradiasi 50 kGy (Lampiran 8).

Kadar protein kasar tertinggi terdapat pada jerami sorgum yang diiradiasi dengan

dosis 150 kGy yaitu sebesar 9,78% sementara untuk jerami sorgum non iradiasi

sebesar 8,66%.

Kadar protein untuk jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy

dan 50 kGy cenderung mengalami penurunan sebesar 0,72% dan 0,43%

dibandingkan jerami non iradiasi. Hal ini membuktikan bahwa bahwa iradiasi

sinar gamma tidak mempengaruhi kandungan bahan kering, bahan organik tetapi

berpengaruh terhadap kandungan protein dari jerami sorgum. Dalam penelitian

yang dilakukan Shawrang et al. (2012) menyatakan bahwa iradiasi elektron beam

tidak mempengaruhi kandungan protein kasar, ekstrak eter, dan juga abu dari

jerami tebu sehingga hasil dari penelitan ini lebih baik karena meningkatkan

kandungan protein kasar pada jerami sorgum.

Peningkatan protein kasar dapat dikaitkan dengan berkurangnya beberapa

komponen BK, terutama karbohidrat mudah larut. Karbohidrat terlarut diubah

32

menjadi protein pada masa perkecambahan. Berikut reaksi respirasi pada sel

tumbuhan

C6H12O6 + O2 → 6CO2 + H2O + energi

Energi yang dihasilkan akan digunakan tanaman dalam melakukan

proses-proses pembentukan unsur nutrisi tanaman seperti penyerapan N dalam

penyusunan protein untuk peningkatan kadar protein (Li et al., 2006). Berikut

reaksi pembentukan protein melalui penyerapan N oleh benih

Proses pembentukan asam amino

(Sumber: Kamal, 1994)

Pada umumnya nitrogen diambil oleh tanaman dalam bentuk Amonium

(NH4+) dan Nitrat (NO3

-), tapi Nitrat yang terserap segera terreduksi menjadi

ammonium melalui enzim yag mengandung molibdenium. Ion-ion Amonium dan

beberapa karbohidrat mengalami sintesis dalam daun dan diubah menjadi asam

amino yang akan membentuk protein, terutama terjadi dalam daun hijauan yang

berklorofil (Syarief, 1985). Ammonium yang terbentuk digunakan untuk proses

aminasi langsung dari α- Ketoglutarat menjadi glutamat. Selanjutnya glutamat

33

dapat langsung mengalami aminasi lebih lanjut dan menghasilkan glutamin

(Kamal, 1994). Asam amino yang terbentuk akan disintesis tanaman untuk

sintesis protein tubuhnya.

Nilai tertinggi pada kandungan NDF dihasilkan oleh jerami sorgum yang

diiradiasi dengan dosis 50 kGy yaitu sebesar 82,13%. Hal ini menunjukkan bahwa

jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 50 kGy mengalami kenaikan sebesar

3,14% dibandingkan kandungan NDF jerami sorgum non iradiasi sebesar 78,99%.

Sementara untuk jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy (78,45%)

mengalami penurunan sebesar 0,54% dibanding jerami sorgum non iradiasi dan

jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 150 kGy (78,61%) cenderung

mengalami penurunan sebesar 0,38%. Berdasarkan analisa statistik, terdapat

perbedaan yang nyata (P<0,05) antara jerami sorgum non iradiasi, jerami sorgum

yang diiradiasi dengan dosis 50 kGy dan 150 kGy dan tidak terdapat perbedaan

yang nyata untuk jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy (Lampiran

6).

Kandungan ADF tertinggi pada jerami non iradiasi yaitu sebesar 50,34%

sementara untuk jerami sorgum yang diiradiasi gamma dengan dosis 50 kGy, 100

kGy dan 150 kGy berturut-turut sebesar 48,25%, 48,35%, dan 45,89% cenderung

mengalami penurunan kandungan ADF berturut-turut sebesar 2,09%; 1,99%; dan

4,45%. Berdasarkan analisa statistik, terlihat perbedaan yang nyata (P<0,05)

antara jerami non iradiasi dan jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 150

kGy (Lampiran 7). Untuk jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy

dan 50 kGy tidak terlihat perbedaan yang nyata diantara keduanya.

34

Hal ini sesuai dengan pernyataan Shawrang et al. (2012) bahwa iradiasi bisa

menurunkan kandungan NDF dan ADF sesuai dosis yang digunakan. Makin besar

dosis iradiasi makin turun pula kandungan serat dalam bahan. Flachowsky et al.

(1990) juga menjelaskan bahwa kandungan ADF dan NDF pada tumbuhan bisa

diturunkan dengan iradiasi antara 100-2000 kGy. Penurunan kadar NDF dan ADF

disebabkan oleh iradiasi gamma dimana iradiasi tersebut bisa memotong beberapa

ikatan lignohemiselulosa dan lignoselulosa (Wahyono and Firsoni, 2016).

Banchordhevakul (2002) menyatakan bahwa kadar NDF dan ADF menurun

setelah diiradiasi dan juga mengubah degradasi dari selulosa dan hemiselulosa

menjadi bahan yang mudah larut. Penurunan kadar NDF dan ADF jerami sorgum

karena adanya depolimerisasi dan delignifikasi seiring dengan meningkatnya

dosis iradiasi (Sandev and Karaivanov, 1972).

Kandungan NDF dan ADF yang rendah pada bahan pakan menandakan

bahwa serat kasarnya rendah. Akan tetapi, kandungan serat kasar yang rendah

juga tidak baik untuk hewan ternak karena serat kasar juga diperlukan sebagai

sumber energi sehingga kandungan ADF dan NDF harus optimal (Anas et al.,

2010).

4.2. Degradasi Bahan Kering (DBK) dan Degradasi Bahan Organik (DBO)

Jerami Sorgum

4.2.1. Degradasi Bahan Kering Jerami Sorgum

Pengujian sampel jerami sorgum dengan masing-masing perlakuan

dilanjutkan dengan pengujian in sacco untuk mengetahui tingkat

degradabilitasnya. Dari grafik dibawah dapat diketahui bahwa nilai degradasi

bahan kering (Gambar 10) mengalami kenaikan seiring lamanya waktu inkubasi.

35

Gambar 10. Grafik Presentase Degradasi Bahan Kering Jerami Sorgum

Berdasarkan gambar diatas, tidak terdapat perbedaan yang terlalu besar

antara jerami sorgum non iradiasi dengan jerami sorgum yang diiradiasi dengan

dosis 50,100, dan 150 kGy. Berdasakan uji statistik, tidak terdapat perbedaan

yang nyata pula (Lampiran 29). Jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100

kGy (54,02%) mempunyai nilai degradasi bahan kering yang lebih tinggi

dibanding jerami non iradiasi yaitu sebesar 40,98% setelah waktu inkubasi selama

72 jam. Nilai degradasi untuk jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 50 kGy

dan jerami sorgum iradiasi 150 kGy berturut – turut sebesar 46,26% dan 52,45%.

Iradiasi sinar gamma pada dosis 100 kGy lebih efektif untuk meningkatkan

Degradasi bahan kering pada jerami sorgum samurai 2 dibanding dengan jerami

sorgum yang diiradiasi dengan dosis 50 kGy dan 150 kGy.

Mehrez (1977) menyatakan bahwa semakin lama waktu inkubasi maka

degradasi pakan oleh mikoba rumen semakin tinggi. Meningkatnya degradasi

pakan karena substrat pakan berkurang sehingga aktivitas mikroba di dalam

rumen meningkat seiring dengan meningkatnya waktu inkubasi (Zulkanain et al.,

2014). Sementara penyebab menurunnya nilai degradasi adalah media inkubasi

0

10

20

30

40

50

60

0 12 24 48 72

DB

K (

%)

Waktu Inkubasi (Jam)

S.2 0

S.2 50

S.2 100

S.2 150

36

yang tidak terjaga pada saat pergantian sampel pakan sehingga mempengaruhi

kondisi lingkungan mikroba selulotik karena adanya pengaruh oksigen (Gizzi et

al., 1998).

Shahbazi et al. (2008) melaporkan bahwa iradiasi pada alfalfa hay bisa

meningkatkan degradasi bahan kering dibandingkan alfalfa hay non iradiasi

setelah waktu inkubasi selama 96 jam sebesar 9,3%. Hal yang sama juga

dilaporkan Wahyono et al. (2017) yang menyatakan bahwa sorgum samurai 1

yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy mulai mengalami peningkatan

dibandingkan dengan dosis 50 kGy setelah 24 jam inkubasi sebesr 7,63%.

Iradiasi sinar gamma pada jerami sorgum dapat memutuskan ikatan

lignohemiselulosa dan lignoselulosa sehingga meningkatkan nilai degradasi

bahan kering pada jerami sorgum. Proses ini meningkatkan rasio dari

lignoselulosa menjadi serat kasar sehingga nilai degradasinya juga semakin tinggi

(Wahyono et al., 2017). Shawrang et al. (2011) menyatakan bahwa iradiasi

termasuk metode fisik yang bisa digunakan untuk meningkatkan kandungan

nutrisi dan kecernaan karena adanya efek pada ikatan lignoselulosa.

Iradiasi sinar gamma bisa merusak lignoselulosa pada produk sisa

pertanian menjadi molekul yang lebih kecil. Sehingga fragmen dari lignin dan

monomer karbohidrat bisa lepas melalui pori-pori pada kantong nilon (Kortei and

Wiafe-Kwagnan, 2014; Wahyono et al., 2017). Saini et al. (2015) juga

menyatakan bahwa iradiasi sinar gamma bisa menganggu ikatatan lignoselulosa

yang kompleks untuk membuka ikatan polimernya. Pektin, selulosa dan pati bisa

didegradasi dengan memecah ikatan glikosidiknya sehingga bisa meningkatkan

kecernaan pakan ternak (Orozco et al., 2012).

37

Faktor internal yang mempengaruhi degradasi nutrien secara in sacco

antara lain berupa konsentrasi NH3, VFA, pH, dan laju partikel pakan keluar dari

rumen (Rahmadi et al., 2010). Menurut Frannzolin dan Aves (2010), indikator

proses degradasi dan sintesis protein oleh mikoba rumen adalah kadar NH3.

Degradasi bahan kering (DBK) merupakan representasi optimalnya kondisi

fermentasi rumen. Lingkungan yang mendukung mikroba berfungsi secara

optimal adalah NH3, pH, TVFA yang optimal (Haryanto, 2009).

4.2.2. Degradasi Bahan Organik Jerami Sorgum

Degradasi bahan organik jerami sorgum disajikan pada Gambar 11. Secara

keseluruhan, iradiasi yang dilakukan pada jerami sorgum mampu meningkatkan

nilai degradasi dari bahan organik. Berdasarkan uji statistik, tidak ada perbedaan

yang nyata antara jerami sorgum yang diiradiasi maupun non iradiasi (Lampiran

35). Jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy sebesar 56,29%

memiliki nilai degradasi tertinggi daripada jerami sorgum non iradiasi sebesar

44,46% setelah diinkubasi selama 72 jam. Nilai degradasi bahan organik untuk

jerami sorgum iradiasi 50 kGy dan jerami sorgum iradiasi 150 kGy berturut –

turut sebesar 48,98% dan 55,26%. Tingginya Nilai degradasi bahan organik

jerami sorgum iradiasi 100 kGy tersebut sesuai dengan nilai degradasi bahan

keringnya.

38

Gambar 11. Grafik Presentase Degradasi Bahan Organik Jerami Sorgum

Penurunan degradasi bahan organik diduga karena kemampuan mikroba

dalam menerima nutrisi melebihi batas maksimal sehingga menyebabkan

tejadinya penurunan aktivitas mikroba. Mikroba sendiri mendegradasi bahan

kering dan organik terutama karbohidrat sebagai sumber karbon dan energi (Dewi

et al., 2012). Laju degradasi bahan organik berhubungan erat dengan degradasi

bahan kering karena sebagian bahan kering terdiri atas bahan organik (Sutardi,

1980). Wahyono et al. (2017) menyatakan bahwa degradasi dari jerami sorgum

Samurai 1 yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy mulai mengalami peningkatan

pada saat waktu inkubasi 72 jam. Dosis iradiasi gamma 100 kGy lebih efektif

untuk meningkatkan degradasi bahan organik pada jerami sorgum Samurai 1. Hal

ini juga dilaporkan oleh Tang et al, (2012) bahwa iradiasi bisa meningkatkan

degradasi bahan organik pada jerami padi yang berarti iradiasi gamma mampu

merubah fraksi serat dari jerami padi.

Jerami padi mengandung 33% selulosa, 18% hemiselulosa dan 15% lignin

(Ramesh and Singh, 1993). Lignoselulosa merupakan biomassa yang terdiri dari

selulosa, hemiselulosa, dan lignin (Sudiyani dan Muryanto, 2012). Selulosa dan

0

10

20

30

40

50

60

0 12 24 48 72

DB

O (

%)


S.2 0

S.2 50

S.2 100

S.2 150

39

hemiselulosa adalah bagian dari polimer gula yang mempunyai struktur yang

komplek. Sedangkan lignin merupakan polimer non kabohidrat yang sulit untuk

dihidrolisis. Pretreatment pada sampel seperti iradiasi gamma dapat membuka

ikatan lignoselulosa dengan merusak sebagian polimer penyusunnya,

melemahkan ikatan hetero antara lignin dan hemiselulosa, dan mengurangi

kristalinitas dari selulosa (Gambar 12). Hasilnya ukuran pori meningkat juga

permukaan dari selulosa dan hemiselulosa bisa terbuka sehingga memudahkan

pemecahan menjadi gula monomer dengan proses enzimatik atau kimia (Kumar et

al., 2009 ; Saini et al., 2015).

Gambar 12. Efek dari Preatreatment pada lignoselulosa (Kumar et al., 2009)

Iradiasi bisa menyebabkan rusaknya ikatan lignoselulosa karena adanya

energi. Energi yang dibawa oleh radiasi gamma berpindah ke komponen biomassa

karena tumbukan dari radiasi dengan atom yang ada di biomassa. Kemudian

sebagian energi diserap oleh atom karbon, hidrogen dan oksigen pada polimer

biomassa. Tumbukan yang terjadi menghasilkan elektron yang menyebabkan

biomassa mengalami ionisasi. Struktur biomassa kemudian melemahkan ikatan

cross-linking dan terjadi pemotongan pada polimer lignoselulosa menjadi polimer

penyusunnya yaitu selobiosa (Khan et al., 2006). Degradasi dinding sel tanaman

40

juga telah dilaporkan mampu meningkatkan degradabilitas dari bahan organik

contohnya pada jerami padi (Betiku et al., 2009 ; Tang et al., 2012).

Residu glukosa dan selulosa mempunyai ikatan hidrogen inter dan

intramolekuler. Ikatan tersebut stabil, panjang, dan berikatan di selulosa secara

paralel. Iradiasi gamma mempengaruhi ikatan ini dan membuat ikatan vander-

walls melemah. Hasilnya adalah terjadi degradasi selulosa dan peningkatan

degradasi dari dinding sel. Dengan memecah ikatan hidrogen maka membuat

radikal bebas dan sejumlah sel selulosa terpisah seiring dengan meningkatnya

dosis iradiasi. Iradiasi juga menyebabkan formasi dari karbonil di selulosa dengan

adanya oksigen yang membantu pemutusan selulosa (Muto et al ., 1995; Seaman

et al ., 1952; Krassig, 1993).

4.3. Hasil Fermentasi Rumen

Hasil fermentasi rumen yang diamati dalam penelitian kali ini meliputi pH,

NH3, dan juga TVFA yang dihasilkan setelah 0, 12, 24, 48 dan 72 jam inkubasi,

yang disajikan dalam masing-masing Gambar 7, 8 dan 9

4.3.1. pH

Perubahan derajat keasamaan (pH) selama 0, 12, 24, 48 dan 72 jam waktu

inkubasi secara in sacco dari masing-masing perlakuan berkisar antara 6-7.

Pengamatan pada masing-masing perlakuan menunjukkan nilai pH mengalami

peningkatan pada waktu inkubasi 24 jam. Nilai pH untuk jerami sorgum non

iradiasi tertinggi pada waktu inkubasi 48 jam sebesar 6,44 dan tertinggi pada

waktu inkubasi 24 jam sebesar 7,17. Nilai pH untuk jerami sorgum iradiasi 50

kGy tertinggi pada waktu inkubasi 24 jam yaitu 7,54 dan pH terendah pada waktu

inkubasi 12 jam yaitu 6,29. Nilai pH untuk jerami sorgum iradiasi 100 kGy

41

0.00

1.00

2.00

3.00

4.00

5.00

6.00

7.00

8.00

0 12 24 48 72

pH


S.2 0

S.2 50

S.2 100

S.2 150

tertinggi pada waku inkubasi 24 jam yaitu 7,44 dan terendah pada waktu inkubasi

48 jam yaitu sebesar 6,97. Nilai pH tertinggi untuk jerami sorgum iradiasi 150

kGy yaitu pada waktu inkubasi 72 jam sebesar 7,26 dan terendah pada waktu

inkubasi 12 jam sebesar 6,69 (Gambar 13).

Gambar 13. Grafik hubungan pH dengan waktu inkubasi

Pada waktu inkubasi ke 0, 12, 48, dan 72 jam, nilai pH cenderung netral.

Imanda et al. (2016) menyatakan bahwa kisaran pH nomal untuk mikroba cairan

rumen berkisar antara 5,5 – 7,5. Kondisi pH yang normal akan membuat populasi

dan kinerja mikroba di dalam rumen menjadi lebih baik. Fluktuasi pH cairan

rumen juga dipengaruhi oleh sifat cepat lambatnya pakan dikonsumsi maupun

jumlah substrat yang terdegradasi dalam rumen. Komposisi kimia pakan terutama

kandungan protein kasar dapat dimanfaatkan oleh mikroba untuk penyedia energi

bagi pertumbuhan dan perkembangan mikroba dalam rumen. Pemberian pakan

berserat dan temperatur rumen yang konstan meningkatkan sekresi saliva (Usman,

2013). Selain suplai saliva sebagai buffer, pengontrolan pH netral pada rumen

diduga karena pengaruh dari mikroba rumen sebagai pengguna laktat dan

42

protozoa yang terus berjalan pada beberapa saat setelah pergantian sampel pakan

(Suharyono et al., 2015; Krishna, 2013).

Peningkatan nilai pH berkaitan dengan produksi TVFA pada jerami

sorgum Samurai 2, di mana ion H+ yang dihasilkan dari siklus pembentukan

asam-asam lemak asetat dan butirat terbang dan akan menurunkan pH di dalam

rumen. Berikut reaksi pelepasan ion H+ oleh asam asetat dan butirat di dalam

rumen

CH3COOH CH3COO- + H

+ (Pelepasan ion H

+ oleh asam asetat)

C3H7COOH C3H7COO- + H

+ (Pelepasan ion H

+ oleh asam butirat)

Kerley et al. (1987) yang menyatakan bahwa meningkatnya VFA di dalam

rumen menyebabkan pH cairan rumen turun. Nilai pH yang lebih rendah akan

berpengaruh terhadap ekosistem mikroba terutama populasi bakteri selulolitik

(Russel dan Wilson 1996). Pertumbuhan bakteri selulolitik akan meningkatkan

kecernaan serat yang berpengaruh positif pada konsumsi dan kecernaan pakan

(Wahyono et al., 2014). Nilai pH pada penelitian ini berpengaruh terhadap

kecernaan bahan kering dan bahan organik, di mana pH yang semakin meningkat

juga meningkatkan kecernaan bahan kering dan organik karena ekosistem

mikroba terutama populasi bakteri selulolitik tetap terjaga.

4.3.2. Konsentrasi NH3

Konsentrasi NH3 yang diperoleh pada penelitian ini disajikan dalam grafik

pada Gambar 14. Jerami sorgum yang diiradiasi gamma dengan dosis masing-

masing 100 kGy dan 150 kGy menghasilkan konsentrasi NH3 yang lebih tinggi

dibanding yang lainnya. Pada uji statistik terdapat perbedaan yang nyata antara

jerami sorgum iradiasi dan non iradiasi (Lampiran 16).

43

Gambar 14. Grafik hubungan NH3 dengan waktu inkubasi

Konsentrasi NH3 tertinggi pada jerami sorgum non iradiasi pada waktu

inkubasi 48 jam sebesar 1,48 mg/100 ml dan terendah pada waktu inkubasi 12 jam

sebesar 0,75 mg/100 ml. Konsentrasi NH3 tertinggi pada jerami sorgum iradiasi

50 kGy pada waktu inkubasi 12 jam sebesar 3,83 mg/100 ml dan terendah pada

waktu inkubasi 48 jam sebesar 1,49 mg/100 ml. Konsentrasi NH3 tertinggi pada

jerami sorgum iradiasi 100 kGy pada waktu inkubasi 48 jam sebesar 7,19 mg/100

ml dan terendah pada waktu inkubasi 72 jam sebesar 3,92 mg/100 ml. Konsentrasi

NH3 tertinggi pada jerami sorgum iradiasi 150 kGy pada waktu inkubasi 12 jam

sebesar 6,35 mg/100 ml dan terendah pada waktu inkubasi 24 jam sebesar 5,60

mg/100 ml. Konsentrasi NH3 pada jerami sorgum iradiasi 100 dan 150 kGy rata-

rata masih memenuhi standar yang dibutuhkan. Sementara untuk jerami sorgum

non iradiasi dan radiasi 50 kGy belum memenuhi standar optimal konsentrasi NH3

untuk fermentasi mikroba dalam kultur sistem tertutup yaitu 5 mg/100 ml

(Wanapat dan Rowlison, 2007).

0.00

1.00

2.00

3.00

4.00

5.00

6.00

7.00

8.00

0 12 24 48 72

N-N

H3 (

mg/1

00 m

l)


S.2 0

S.2 50

S.2 100

S.2 150

44

Ketersediaan protein pada pakan akan didegradasi mikroba rumen menjadi

NH3, peptida dan asam amino (Suharyono et al., 2015). Konsentrasi NH3 di dalam

rumen berhubungan dengan komposisi kimia pakan dan pH cairan rumen. pH

antara 5,5-7,0 dengan temperatur 41oC merupakan lingkungan yang sesuai untuk

aktivitas protease yang dihasilkan mikroba proteolitik (Usman, 2013; Michael dan

Robert, 1986). Pengaruh pH terhadap produksi NH3 karena aktivitas mikroba

rumen dipengaruhi oleh pH yang berpengaruh terhadap produk fermentasi seperti

VFA dan NH3 (Kumar et al., 2012). Semakin tinggi pH semakin tinggi pula kadar

NH3. Akan tetapi hasil dari penelitian ini tidak sesuai karena proses degradasi

protein yang lebih lambat daripada proses pembentukan protein mikroba sehingga

amonia tidak terakumulasi di dalam rumen selain itu pH melebihi 7,3

mempercepat penyerapan NH3.

Mikroba rumen akan merombak asam–asam amino hasil hidrolisis protein

menjadi amoniak untuk menyusun tubuhnya (Gambar 3). Anggraeny et al. (2015)

melaporkan NH3 merupakan prekusor protein mikroba, sehingga makin tinggi

kadar NH3 di rumen maka kemungkinan makin banyak protein mikroba yang

terbentuk sebagai sumber protein tubuh. Selain aktivitas mikroba, jumlah protein

ransum merupakan salah satu faktor yang mempengaruhi produksi NH3

(McDonald et al., 2002). Hal tersebut sesuai yang dilaporkan pada penelitian ini

di mana produksi NH3 meningkat seiring dengan meningkatnya nilai protein

kasar.

45

4.3.3. Produksi TVFA

Produksi Total Volatile Fatty Acid (TVFA) selama fermentasi in sacco

ditampilkan pada Gambar 15. Secara keseluruhan nilai TVFA yang didapat dalam

penelitian ini berkisar antara 76,61 mM – 174,41 mM. Pada uji statistik terdapat

perbedaan yang nyata antara jerami sorgum iradiasi dengan non iradiasi

(Lampiran 21).

Gambar 15. Grafik hubungan TVFA dengan waktu inkubasi

Konsentrasi TVFA dari masing-masing perlakuan cenderung mengalami

penurunan pada waktu inkubasi 24 jam (Gambar 13). Konsentasi TVFA tertinggi

pada jerami sorgum non iradiasi pada waktu inkubasi 48 jam sebesar 148,33 mM

dan terendah pada waktu inkubasi 72 jam sebesar 107,58 mM. Konsentasi TVFA

tertinggi pada jerami sorgum iradiasi 50 kGy pada waktu inkubasi 48 jam sebesar

129,58 mM dan terendah pda waktu inkubasi 24 jam sebesar 76,61 mM.

Konsentasi TVFA tertinggi pada jerami sorgum iradiasi 100 kGy pada wkatu

inkubasi 48 jam sebesar 138,55 mM dan terendah pada waktu inkubasi 24 jam

sebesar 114,1. Konsentasi TVFA tertinggi pada jerami sorgum iradiasi 150kGy

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200

0 12 24 48 72

TV

FA

(m

M)


S.2 0

S.2 50

S.2 100

S.2 150

46

pada waktu inkubasi 24 jam sebesar 114,1 mM dan terendah pada waktu inkubasi

72 jam sebesar 101,06 mM.Secara garis besar, konsentrasi rata-rata TVFA dari

masing-masing perlakuan masih memenuhi standar konsentrasi yang ditetapkan

yaitu 70-130 mM (France, 1993).

Tingginya TVFA pada penelitian ini, tidak dihasilkan hanya dari

fermentasi karbohidrat, tetapi fermentasi protein juga menghasilkan asam amino

yang mengalami deaminasi dan menghasilkan senyawa asam lemak seperti asam

isobutirat dari valin, asam valerat dari prolin, 2-metil butirat dari isoleusin dan 3-

metil butirat dari leusin (Kamal, 1994).

Rendahnya konsentrasi TVFA dipengaruhi oleh konsentrasi NH3 yang

rendah pula selama inkubasi. Menurut Wahyono (2015), konsentrasi NH3 yang

rendah akan berdampak pada menurunnya laju degradasi sumber C pada pakan

untuk membentuk TVFA. Fermentasi oleh mikroorganisme rumen dimulai dari

mencerna substrat yang mudah dicerna seperti nutrisi karbohidrat yang akan

memproduksi TVFA dengan cepat. Perubahan kadar TVFA yang sempat menurun

menandakan bahwa kadar populasi mikroba rumen juga semakin menurun selama

masa inkubasi. Produksi TVFA yang tinggi pada jerami sorgum non iradiasi dan

jerami sorgum yang diiradiasi dengan dosis 100 kGy menandakan bahwa jerami

tersebut mengandung karbohidrat dan fraksi serat yang mudah larut dibanding

jerami sorgum dengan perlakuan iradiasi 50 kGy dan 150 kGy. Caroo et al.

(2009) menyatakan bahwa pakan yang mengandung fraksi karbohidrat mudah

larut yang lebih tinggi akan menghasilkan TVFA yang tinggi pula. Iradiasi

gamma efektif meningkatkan produksi TVFA karena berhubungan dengan

penurunan fraksi NDF dan ADF yang disebabkan aktivitas enzim mikroba pada

47

kecernaan selulosa dan hemiselulosa (Wahyono and Firsoni, 2016). Serat NDF

dan ADF di dalamnya terdapat selulosa dan hemiselulosa akan diubah oleh

bakteri selulotik menjadi asam-asam lemak terbang berupa asetat, propionat,

butirat dan gas CH4 serta CO2 (Gambar 2) (McDonald et al., 2002). Menurut

Chantakoun dan Wanapat (2012), kerbau yang diberi pakan dominan hijauan akan

menghasilkan produk fermentasi rumen berupa asam asetat dan butirat yang

tinggi. Sedangkan pemberian pakan dengan kandungan karbohidrat mudah larut

akan menghasilkan asam propionat yang tinggi meskipun didominasi asam asetat.

Produksi TVFA berupa asetat, butirat dan propionat digunakan sebagai

sumber energi bagi ternak. Penyerapan VFA oleh ternak dipengaruhi salah

satunya oleh panjang rantai karbon (C) dari VFA, rantai karbon (C) yang semakin

panjang maka akan lebih mudah diserap di dinding rumen (Chuzaemi, 2012).

Penggunaan asetat, butirat dan propionat sebagai sumber energi memiliki nilai

energi berupa ATP yang berbeda-beda. Perbedaan tersebut menjadi salah satu

alasan mengapa pemanfaatan beberapa fraksi asam lemak lebih penting dan

dibutuhkan dari yang lainnya. Asam propionat memiliki jumlah ATP sebanyak 36

ATP untuk 1 mol asam propionat, asam butirat menghasilkan 26 ATP dan asam

asetat menghasilkan 12 ATP (Kamal, 1994). Selain itu proporsi asam asetat pada

fermentasi karbohidrat kurang diharapkan, karena selama proses pembentukan

asetat banyak dilepaskan H2 (Moss et al., 2000; Li et al., 2014).

Peningkatan jumlah VFA menunjukkan mudah atau tidaknya pakan

tersebut difermentasi oleh mikroba rumen (Indriani et al., 2013). Produksi VFA di

dalam cairan rumen dapat digunakan sebagai tolak ukur fermentabilitas pakan

(Hartati, 1998). Sementara dalam penelitiannya, Prihartini et al., (2007)

48

menyatakan bahwa tingginya fraksi serat yang mudah larut di dalam ransum akan

meningkatkan aktivitas amiolitik sehingga menurunkan mikroba selulolitik dan

akhirnya menurunkan degradasi serat.

49

BAB V

KESIMPULAN DAN SARAN

5.1. Kesimpulan

1. Iradiasi sinar gamma pada dosis 150 kGy mampu meningkatkan kandungan

nutrisi jerami sorgum Samurai 2 yaitu Protein Kasar sebesar 1,12% dan

menurunkan kadar Neutral Detergent Fiber (NDF) sebesar 2,38% dan Acid

Detergent Fiber (ADF) sebesar 4,45%.

2. Iradiasi sinar gamma 100 kGy meningkatkan nilai Degradasi Bahan Kering

dan Degradasi Bahan Organik pada jerami sorgum Samurai 2 sebesar

13,04% dan 10,8% juga menghasilkan kadar NH3 dan TVFA yang lebih

besar dan pH yang memenuhi standar setelah waktu inkubasi 72 Jam.

5.2. Saran

Perlu adanya penelitian lanjutan seperti degradasi ADF dan NDF untuk

mengetahui proses degradasi fraksi serat pada jerami sorgum dan uji kadar

seulosa untuk mendukung data pemutusan ikatan lignoselulosa dan

lignohemiselulosa pada jerami sorgum setelah perlakuan iradiasi gamma.

50

DAFTAR PUSTAKA Akhirany, N. 2011. Silase Ikan untuk Pakan Ternak. UPTD-PSP3 Dinas

Peternakan Provinsi Sulawesi. Makassar.

Al- Masri, M.R. And M. Zarkawi. 1994. Effect Of Gamma Irradiation On Cell-

Wall Constituents Of Some Agricultural Residues. Radiat Phys Chem.

44(1):661-663.

Amrullah, LK. 2004. Nutrisi Ayam Boiler Cetakan III. Bogor: lembaga Setu

Gunungbudi.

Anas, S Dan Andy. 2010. Kandungan NDF Dan ADF Silase Campuran Jerami

Jagung (Zea Mays) Dengan Beberapa Level Daun Gamal (Grilicidia

Maculata). Agrisistem. 6(2):6-10

Anggraeny YN, Soetanto H, Kusmartono, Hartutik. 2015. Sinkronisasi Suplai

Protein dan Energi dalam Rumen untuk Meningkatkan Efisiensi Pakan

Berkualitas Rendah. WARTAZOA. 25(3):107-116.

AOAC. 1990. Official Method Of Analysis. Association Of Official Analytical

Chemists. Maryland.


Chemists. Maryland.


Chemists. Maryland

Apik. “Pencernaan Ruminansia Vs Non-Ruminansia”. 12 Januari 2016.

Http://Apikdewefppundip2011.Wordpress.Com/2012/04/05/Pencernaanr

uminansiavs-Non-Ruminansia.Html.

Arora, S.P. 1989. Pencernaan Mikroba Pada Ruminansia. Edisi Indonesia.

Penerbit Gajah Mada University Press. Yogyakarta

Arora, S. P. 1995. Pencernaan Mikroba Pada Hewan Ruminansia. Penerjemah :

R. Muwarni. Gajah Mada University Press, Yogyakarta.

Arroyo D. 2000. Gasification Of Lignin From Rice Straw. University Of Puerto

Rico. Mayaguez Campus National Renewable Energy Laboratory

Golden, Colorado.

Badan Standarisasi Nasional. 1992. Cara Uji Makanan dan Minuman. SNI 01-

2891-1992.

http://apikdewefppundip2011.wordpress.com/2012/04/05/Pencernaanruminansiavs-Non-Ruminansia.Html

http://apikdewefppundip2011.wordpress.com/2012/04/05/Pencernaanruminansiavs-Non-Ruminansia.Html

51

Banchorndhevakul S. 2002. Effect of urea and urea-gamma treatments on

cellulose degradation of Thai rice strawand corn stalk. Radiat Phys

Chem. 64:417–422.

Betiku, E, O. A. Adetunji, T. V. Ojumu, B. O. Solomon. 2009. A Comparative

study of the hydrolysis of gamma irradiated lignocelluloses. Braz J Chem

Eng. 26(2):251–255

Blummel, M., Makkar, H.P.S, Becker, K. 1997. The In Vitro Gas Production: A

Technique Revisited. J Anim Physiol Anim Nutr.77:24–34

Carro MD, Vanilla MJ, Martıń-Garcıá AI, Molina-Alcaide E. 2009. Comparison

of microbial fermentation of high- and low-forage diets in Rustic, single-

flow continuous-culture, fermenters, and sheep rumen. Animal. 3(4):527–

534

Chanthakhoun V, Wanapat M. 2012. The in vitro gas production and ruminal

fermentation of various feeds using rumen liquor from swamp buffalo

and cattle. Asian J Anim Vete Adv.7(1):54-60.

Chuzaemi, S. 2012. Fisiologi Nutrisi Ruminansia. Universitas Brawijaya Press.

Malang

Crampton dan Harris.1969. Pengaruh Kualitas Ransum Terhadap Mutu Karkas

Domba Persilangan. IPPTP. Medan: Balai Pengkajian Tekhnologi

Pertanian Gedung Johor.

Dehority, B.A. 2004. Rumen Microbiology. Nottingham University Press,

Nottingham.

Dewi, N.K. Mukodiningsih, S. dan Sutrisno, C.I. 2012. Pengaruh fermentasi

kombinasi jerami padi dan jerami jagung dengan aras isi rumen kerbau

terhadap kecernaan bahan kering dan bahan organik secara in vitro.Anim

Agricult J. 1(2):134-140.

Direktorat Jenderal Perkebunan. 1996. Sorgum Manis Komoditi Harapan Di

Propinsi Kawasan Timur Indonesia. Risalah Simposium Prospek

Tanaman Sorgum Untuk Pengembangan Agroindustri, 17−18 Januari

1995. Edisi Khusus Balai Penelitian Tanaman Kacangkacangan Dan

Umbi-Umbian 4:6− 12.

Eun Js, Ka Beauchemin, Sh Hong, And Mw Bauer. 2006. Exogenous Enzymes

Added To Untreated Or Ammoniated Rice Straw; Effect On In Vitro

Fermentation Characteristic And Degradability. J Anim Sci Tech.131(1-

2):86‐101.

Farkas, J. 2006. Irradiation For Better Foods. Trends Food Sci Tech.17(4):148-

152.

52

Flachowsky, G., Bar, M., Zuber, S., Tiroke, K. 1990. Cell wall content and rumen

dry matter disappearance of γ-irradiated wood by-products. Biol

Wastes.34(3):181-189.

Frannzolin, R., Alves T.C. 2010. The Ruminal Physiology in Buffalo Compared

with Cattle. Proceeding 9th Wold Buffalo Congress: Buenos Aires (AR).

General Laboratory Procedure. 1966. Department of Dairy Sciences, Madison:

University of Wisconsin.

Gizzi, G., Zanchi, R. dan Sciaraffia, F. 1998. Comparison of microbiological and

fermentation parameters obtained with an improved rumen in vitro

technique with those obtained in vivo. Anim Feed Sci Tech.73(3-4):291–

305.

Haris, L E. 1970. Nutrition Research Techniques for Domestic and Wild

Animals. An International Record System and Procedure for Analyzing

Samples.

Hartati, E. 1998. Suplementasi Minyak Lemuru dan Seng Ke Dalam Ransum yang

Mengandung Silase Pod Kakao dan Urea untuk Memacu Pertumbuhan

Sapi Holstein Jantan. Disertasi. Program Pasca Sarjana. Institut Pertanian

Bogor, Bogor

Haryanto, B. 2009. Inovasi teknologi pakan ternak dalam sistem

integrasitanaman-ternak bebas limbah mendukung upaya peningkatan

produksi daging. PIP.2(3):163-176.

Hermayanti, Yeni,G.Eli . 2006. Modul Analisa Proksimat. Padang: SMAK 3

Padang.

Hidayah, N. 2011. “Mikrobiologi In Vitro”. 12 Januari 2016.

Http://Www.Scribd.Com/2011/ 01/LaporanMikrobio.Html.

Ikmalia. 2008. Analisa Profil Protein Isolatescherichia Colis1 Hasil Iradiasi

Sinar Gamma. Skripsi. Universitas Islam Negeri Syarif Hidayatullah.

Jakarta.

Indriani N, Sutardi TR, Suparwi. 2013. Fermentasi Limbah Soun dengan

Menggunakan Aspergillus niger Ditinjau dari Kadar Volatile Fatty Acid

(VFA) Total dan Amoniak (NH3) Secara In Vitro. Jurnal Ilmu Peternakan.

1(3):804–812.

Ismail, R. “Kecernaan In Vitro”. 13 Februari 2016.

Http://Rismanismail2.Wordpress.Com/ 2011/05/22/Nilai-Kecernaan-

Part- 4/More-310.

53

Ismartoyo. 2011. Ilmu Nutrisi Ruminansia. Makassar: Universitas Hasanuddin.

Kamal M. 1994. Nutrisi Ternak 1. Yogyakarta (ID): Fakultas Peternakan,

Universitas Gadjah Mada.

Kerley MS, Fahey GSJR, Berger, Merchen NR. 1987. Effects of Treating Wheat

Straw With pH Regulated Solution Alkaline Hydrogen Peroxideon

Nutrient Digestion by Sheep. J Dairy Sci.70(5):2078–2084.

Khan, F S. R. Ahmad, E. Kronfli. 2006. 𝛾-radiation induced changes in the

physical and chemical properties of lignocellulose

Biomacromolecules.7(8):2303–2309.

Kortei, N.K, M. Wiafe-Kwagyan. 2014. Evaluating the effect of gamma radiation

on eight different agro-lignocellulose waste materials for the production

of oyster mushrooms (Pleurotus eous (Berk.) Sacc. strain P-31).

Croatian J Food Tech Biotech Nutr. 9(3-4):83–90

Koten, B.B., R. Djoko Soetrisno, Nono Ngadiyono, Bambang Suwignyo. 2012.

Produksi Tanaman Sorgum (Sorghum Bicolor (L.) Moench) Varietas

Lokal Rote Sebagai Hijauan Pakan Ruminansia Pada Umur Panen Dan

Dosis Pupuk Urea Yang Berbeda. Buletin Peternakan. 3:150-155

Krause, K.M., Combs, D. K. 2003. Effects of forage particle size, forage source,

and grain fermentability on performance and ruminal pH in midlactation

cows. J Dairy Sci. 86(4):1382–1397.

Krassig, H.A. 1993. Celullose Structure, Accessibility and Reactivity.

Swittzerland: Gordon and Breach Scientific Publishers.

Krishna. N.H. 2013. Produksi Gas Metandan Pola Fermentasi Rumen Domba

Lokal yang Diberi Pakan Komplit Mengandung Indigofera sp. Dan

Limbah Tauge Menggunakan RUSITEC.Tesis. Bogor. Institut Pertanian

Bogor.

Kumar, P D. M. Barrett, M. J. Delwiche, P. Stroeve. 2009. Methods for

pretreatment of lignocellulosic biomass for efficient hydrolysis and

biofuel production. Ind Eng Chem Res. 48(8):3713–3729.

Kumar MK, Kalyani P, Mahendar M, Lakshmi DN. 2012. Effect of Palm Press

Fibre and Sheanut Cake Based Complete Diet on Rumen Fermentation

Pattern in Graded Murrah Buffalo Calves. Int J Sci Res Pub. 2(9):1-6.

Kurniawati, Arisma. 2009. Evaluasi Suplementasi Ekstrak Lerak (Sapindus

Rarak) Terhadap Populasi Protozoa, Bakteri Dan Karteristik Fermentasi

Rumen Sapi Peranakan Ongole Secara In Vitro. Skripsi. Fakultas

Perternakan Institut Pertanian Bogor.

54

Li R, Guo PM, Baum S, Grando S, Ceccarelli. 2006. Evaluation of Chlorophyll

Content and Fluorescence Parameters as Indicators of Drought Tolerance

in Barley. Agr Sci China. 5(10):751-757.

Li XX, Durmic Z, Liu SM, McSweeney CS, Vercoe PE. 2014. Eremophila Glabra

Reduces Methane Production and Methanogen Populations When

Fermented in A Rusitec. J Anaerobe. 29:100–107.

Lehninger, A. L. 1982. Dasar-Dasar Biokimia. Penerjemah: M. Thenawidjaja.

Jakarta Erlangga,

Mcdonald, P. R., A. Edwards, J. F. D. Greenhalg, C. A. Morgan. 2002. Animal

Nutrition 6th Edition. Longman Scientific And Technical Co. Published

In The United States With John Willey And Sons Inc, New York.

Mehrez, A. Z., Orskov, E.R. McDonald, I. 1977. Rate of rumen fermentation in

relation to amoniak concentration. British J Nutr. 3(38):437-443.

Michael, A.C, B.H. Robert. 1986. Proteolytic activity of the ruminal bacterium

Butyrivibrio fibrisolvens. Departement of Animal Science. University of

Illinois, Urbana.

Murtidjo.1987.Pedoman Beternak Ayam Broiler. Yogyakarta: Kanisius

Muto, N.K.Takahashi, H. Yamazaki.1995. Effect of electron beam irradiation on

characteristics of paper. Tappi J. 49(7):1086-1097

Moss AR, Jouany JP, Newbold J. 2000. Methane Production by Ruminants: Its

Contribution to Global Warming. Ann Zootechnie. 49(3):231-253.

Naik PK, Swain BK, Singh NP. 2015. Production and Utilization of Hydroponic

Fodder. Indian J Anim Nutr.32(1):1-9.

Neil, A., Campbell, Jane, B., Reece, Martha, R., Taylor, Eric, J. dan Simon. 2006.

Biology concepts & connections. California: Comming Publishing

Company.

OISAT. 2011. Sorghum. Pan Germany Pestizid Aktions-Netzwerk E.V. Pan

Germany.

Oktaviani, S. 2012. Kandungan Adf Dan Ndf Jerami Padi Yang Direndam Air

Laut Dengan Lama Perendaman Berbeda. Skripsi. Fakultas Peternakan.

Universitas Hasanuddin. Makassar.

Orozco, R.Z, P. B. Hernández, N. F. Ram´ırez, G. R. Morales, J. S. Luna, A. J. C.

Montoya. 2012. Gamma irradiation induced degradation of orange peels.

Energies. 5(8):3051– 3063

55

Prihartini I, Soebarinoto, S Chuzaemi, M Winugroho. 2011. Karakteristik Nutrisi

Dan Degradasi Jerami Padi Fermentasi Oleh Inokulum Lignolitik Tlid

Dan Bopr (Nutrient Characteristics And Fermented Rice Straw

Degradation By Lignolitic Tlid And Bopr Inoculums). Animal

Production. 11(1):1‐7

Purwantari T. 2008. Fermentabilitas in vitro dan produksi biomassa mikroba

fransum komplit yang mengandung jerami sorgum, konsentrat dengan

penambahan suplemen pakan. Skripsi. Bogor (ID): Fakultas Peternakan.

IPB.

Qadriyanti. 2014. Karakteristik Degradasi ADF Dan NDF Tiga Jenis Pakan

Yang Disuplementasi Daun Gamal Dalam Rumen Kambing Secara In

Sacco. Skripsi. Fakultas Peternakan Universitas Hasanuddin Makassar.

Qiu WH, Chen HZ. 2006. Structure, function and higher value application of

lignin. J Cellul Sci Tech. 14(1):52–9.

Ramesh, C. K., A. Singh. 1993. Lignocellulose biotechnology: current and future

prospects. Critical Reviews in Biotechnology. 13(2):151-172.

Saini, A. Neeraj K. Aggarwal A. S, Anita Y.2015. Prospects for Irradiation in

Cellulosic Ethanol Production. Biotechnol Res Int. 9(14):1-13

Sakinah, D. 2005. Kajian Suplementasi Probiotik Bermineral Terhadap Produksi

VFA,NH3, Dan Kecernaan Zat Makanan Pada Domba. Bogor. Skripsi.

Fakultas Peternakan.Institut Pertanian Bogor.

Sandev, S., Karaivanov, I. 1977. The composition and digestibility of irradiated

roughage treatment with gamma irradiation. Tierernahr. Fuetterung.

10:238-242.

Sari, R. P. S. 2009. Pembuatan Etanol Dari Nira Sorgum Dengan Proses

Fermentasi. Semarang. Universitas Diponegoro.

Seaman, J.F., M.A. Millet, E.J.Lowton.1952. Effect of high energy cathode rays

on celullose. Ind Eng Chem. 44(12):2848-2852

Shahbazi Hr, A.A Sadeghi P.Shawrang, G. Raisali.2008. Effects Of Gamma

Irradiation On Ruminal Dm And Ndf Degradation Kinetics Of Alfalfa

Hay. Pak J Biol Sci. 11(8):1165-1168

Shawrang, P, A.Majdabadi, A.A.Sadeghi.2012. changes in cell wall compositions

and degradation kinetics of electron beam-irradiated sugarcane baggase.

Turk J Vet Anim Sci. 36(5):527-532

Siddhuraju, P., H. P. S. Makkar, K. Becker. 2002. The Effect Of Ionising

Radiation On Antinutritional Factors And The Nutritional Value Of Plant

56

Materials With Reference To Human And Animal Food. Food

Chem.78(2):187-205

Sirappa, M.P. 2003. Prospek Pengembangan Sorgum Di Indonesia Sebagai

Komoditas Alternatif Untuk Pangan, Pakan, Dan Industri. Jurnal Litbang

Pertanian. 22(4):133-140

Steffen, K, M. Hofrichter, Hattaka.2000. Mineralization of 14

C-labelled synthetic

lignin and ligninolytic enzyme activities of litter-decomposing

basidiomycotous fungi. Application of. Microbiol Biotechnol. 54:819-

825

Steffen, K.T. 2003. Degradation of recalcitrant biopolymers and

polycyclicaromatic hydrocarbons by litter-decomposing basidiomycetous

fungi. Disertasi. Division of Microbiology Department of Applied

Chemistry and Microbiology Viikki Biocenter. University of Helsinki

Sudiyani, Muryanto. 2012. Production in Proceeding of the International

Conference on Sustainable Energy Engineering and Application Inna

Garuda Hotel. Yogyakarta

Suhartanto, B., Kustantinah, S. Padmowijoto. 2000. Degradasi In Sacco Bahan

Organik Dan Protein Kasar Empat Macam Bahan Pakan Diukur

Menggunakan Kantong Inra Dan Rowett Research Institute. Buletin

Peternakan. 24(2):82-93.

Suharyono, Shintia N.W.H, Teguh W.2015. Dinamika Hasil Fermentasi Rumen

Pada Konsentrat yang Mengandung Suplemen Pakan Baru (SPB) Rumen

Fermentation Dynamics of Concentrate Containing the New Feed

Supplement. Jurnal Ilmiah Aplikasi Isotop dan Radiasi. 11(2):99-112

Supardjo, 2010. Evaluasi Pakan Secara In Sacco. Fakultas Peternakan Universitas

Jambi

Sutardi, T. 1977. Ikhtisar Ruminologi. Bahan Kursus Peternakan Sapi Perah

Kayu Ambon Lembang. Direktorat Jendral Peternakan-Fao, Bandung.

Sutardi, T. 1980. Landasan Ilmu Nutrisi. Bogor. Fakultas Peternakan Institut

Pertanian Bogor.

Suyatno, Ferry.2010. Aplikasi Radiasi Dan Radioisotop Dalam Bidang

Kedokteran. Seminar Nasional VI Sdm Teknologi Nuklir Yogyakarta.

Syarief ES. 1985. Kesuburan dan Pemupukan Tanah Pertanian. Bandung:

Pustaka Buana.

57

Tang, E.X, K. Q.Wang, Z. H. Cong. 2012. Changes in chemical composition and

in vitro fermentation characters of rice straw due to gamma irradiation. J

Food Agric Environ. 10(2):459–462.

Tilman, A.D., Hartadi, H., Reksohadiprojo, S., Prawirokusumo, S., Lebdosokojo.

1998. Ilmu Makanan Ternak Dasar. Yogyakarta: Gadjah Mada

University Press.

Ulya, A. 2007. Kajian In Vitro Mikroba Rumen Berbagai Ternak Ruminansia

Dalam Proses Fermentasi Bungkil Biji Jarak Pagar (Jatropha Curcas

L.). Bogor. Skripsi. Fakultas Peternakan Institut Pertanian Bogor.

Usman, Y.2013. Pemberian Pakan Serat Sisa Tanaman Pertanian (Jerami Kacang

Tanah, Jerami Jagung, Pucuk Tebu) Terhadap Evolusi pH, N-NH3 dan

VFA Di dalam Rumen Sapi. Agripet. 13(2):1615-1630

Van Soest P. J. 1976. New Chemical Methods For Analysis Of Forages For The

Purpose Of Predicting Nutritive Value. Pref Ix Internasional Grassland

Cong.

Wahyono T, Dewi A A, Komang G, Wiryawan,Irawan Sugoro.2016. Pengujian

Ransum Kerbau Berbahan Baku Sorgum Sebagai Sumber Serat Secara In

Vitro Dan In Sacco In Vitro And In Sacco. Jurnal Ilmiah Aplikasi Isotop

Dan Radiasi .10(2):113-126

Wahyono, T. 2015. Evaluasi Fermentabilitas Ransum Kerbau Yang Mengandung

Sorgum Dengan Pendekatan In Sacco, In Vitro Dan Rusitec.Tesis.

Institut Pertanian Bogor. Bogor

Wahyono, T and Firsoni. 2016. The Changes of Nutrient Composition and In

Vitro Evaluation on Gamma Irradiated Sweet Sorghum Bagasse. A

Scientific J App Isot Radiat. 12(1):69-79

Wahyono, T, N. Lelananingtyas, Sihono. 2017. Effects of Gamma Irradiation on

Ruminal Degradation of Samurai 1 Sweet Sorghum Bagasse. Atom

Indonesia. 43(1):35-39

Wanapat, M. nd P. Rowlison.2007. Nutrition and feeding of swamp buffalo: feed

resources and rumen approach. Ital J Anim Sci. 6(2):67-73

Wati, N. E., Achmadi, J., Dan E. Pangestu. 2012. Degradasi Nutrien Bahan Pakan

Limbah Pertanian Dalam Rumen Kambing Secara In Sacco. J Anim

Agric. 1(1):485-498.

Widyobroto, B.P. 1996. Degradasi Protein Dalam Rumen Dan Kecernaan

Protein Dalam Intestinum. Yogyakarta. Fakultas Peternakan UGM

58

Yudi. 2008. Interaksi Radiasi Nuklir. Infonuklir.com News. Pusat Diseminasi

IPTEK Nuklir (PDIN). Jakarta.

Zulkarnain, D.R., Ismartoyo dan Harfiah. 2014. Karakteristik degradasi tiga jenis

pakan yang disuplementasi daun gamal (Gliricidia maculata) dalam

rumen kambing secara in sacco. Jurnal Internasional Teknik Pakan.

3(3):148-153.

59

LAMPIRAN

Persiapan bahan

Sorgum Samurai 2 selama Jerami sorgum Samurai 2 yang telah

100 hari dipotong sebesar 2 mm dan diradiasi

Analisa kandungan nutrisi (Uji Proksimat)

Uji Neutral Detergent Fiber (NDF)

Uji protein kasar

Uji Acid Detergent Fiber (ADF)

Lampiran 1. Dokumentasi Kegiatan

60

Uji In Sacco

Hasil fermentasi rumen

Kantong nilon berisi sampel yang

siap dimasukkan ke dalam rumen

Proses pemasukkan sampel

ke dalam rumen

Cairan rumen untuk uji pH

Uji NH3

Uji TVFA Sampel yang telah dikeluarkan

dari rumen

61

Lampiran 2. Contoh perhitungan

1. Perhitungan kadar bahan kering dan bahan organik

% Kadar BK =

%Kadar Abu =

=

=

=

=

= 93% = 12,76%

%Kadar BO = 100-12,76%

= 87,24%

Keterangan :




d = berat cawan berisi sampel yang sudah jadi abu (g)

2. Perhitungan NDF

Sample b Sampel

segar

BK

sampel

Cawan

+Sampel

a C BK

S 0

kGy

49,574 0,525 93,408 50,064 0,491 49,959 0,385

49,561 0,524 93,307 50,050 0,489 49,946 0,386

49,683 0,525 93,132 50,171 0,489 50,072 0,390

%Kadar NDF =

=

=

Jenis

Sampel ulangan a b Sampel c

Kadar

Air D

S.2 1 32,209 33,210 1,000 33,144 6,617 32,323

0 kGy 2 36,573 37,575 1,002 37,507 6,744 36,687

3 33,000 34,001 1,001 33,917 8,344 33,114

62

= 78,41%

3. Perhitungan ADF

Sample b Sampel

segar

BK

sampel

Cwn+Sampel a c BK

S 0

kGy

49,826 0,523 93,408 50,315 0,489 50,067 0,240

48,972 0,525 93,307 49,461 0,490 49,226 0,254

49,675 0,523 93,132 50,162 0,487 49,919 0,244

%Kadar ADF =

=

=

= 49,14%

Keterangan :




4. Perhitungan NH3

Kadar NH3 (mg/100 ml) = N-HCl x volume titrasi HCl x BM NH3 x 100

= 0,014 x 0,09x17x 100

= 2,142

Jam Ulangan V. HCl

0 1 0,09

2 0,09

3 0,1

63

5. Perhitungan TVFA

TVFA (mM) = (a-b) x N HCl x (1000/5 mM)

= (5,3-3,45) x 0,489 x (1000/5 mM)

= 180,93

Keterangan :

a : volume HCl saat titrasi Blanko (ml)

b : volume titrasi sampel (ml)

N HCl: normalitas HCl

6. Perhitungan Degradasi Bahan Kering dan Organik 12 Jam

Massa sampel sebelum inkubasi (A) = (massa nilon+pemberat+sampel sebelum

diinkubasi)- (massa nilon+ pemberat)

= 8,46 g- 6,46g

= 2,00g

Massa sampel setelah inkubasi (B) = (massa nilon+pemberat+sampel setelah

diinkubasi)- (massa nilon+ pemberat)

= 7,92 g - 6,46 g

= 1, 46 g

Jam Ulangan V. HCl 0,05

0 1 3,45

2 3,95

3 3,15

Blanko 5,3

sa

mp

el

BK

N

KN

+ K

KN+

K+S

berat

sampel

dlm bk

KN+K

+S (60

C)

berat

sampel

kering

tidak

ter-

degrada

si (%)

degradasi

(%)

Jam

A

1,99 7,36 9,35 1,99 9,48 2,12 92,07 7,93 0

1,71 6,46 8,46 2,00 7,92 1,46 72,70 27,30 12

2,98 7,54 9,54 2,00 8,69 1,15 57,24 42,76 24

1,95 7,27 9,27 2,00 8,32 1,05 52,60 47,40 48

2,32 7,42 9,42 2,00 8,41 0,99 49,70 50,30 72

64

Kadar BK sebelum inkubasi = 92,76%

Massa BK sebelum inkubasi =

= 0,927 g

Kadar BK setelah inkubasi = 98,57%

Massa BK setelah inkubasi =

= 0,985 g

DBK (%) =

=( ) –( )

= 27,30% .

65

Lampiran 3. Hasil Analysis Of Varience Kandungan Nutrisi Jerami Sorgum

Lampiran 4. Hasil Uji Lanjut Duncan Peubah BK Pada Kandungan Nutrisi

Perlakuan N Subset for alpha

= 0.05

1

150 kGy 3 92,2253

100 kGy 3 92,7190

0 kGy 3 92,7650

50 kGy 3 92,9043

Sig. ,267

Lampiran 5. Hasil Uji Lanjut Duncan Peubah BO Pada Kandungan Nutrisi


= 0.05

1

0 kGy 3 87,7133

150 kGy 3 87,8577

50 kGy 3 87,9507

100 kGy 3 87,9517

Sig. ,371

Sum of Squares df Mean Square F Sig.

Bk

Between Groups ,789 3 ,263 ,610 ,627

Within Groups 3,447 8 ,431

Total 4,236 11

Bo

Between Groups ,114 3 ,038 ,449 ,725

Within Groups ,674 8 ,084 Total ,788 11

Ndf

Between Groups 47,452 3 15,817 12,821 ,002

Within Groups 9,870 8 1,234 Total 57,322 11

Adf

Between Groups 29,933 3 9,978 3,571 ,067

Within Groups 22,351 8 2,794 Total 52,284 11

LK

Between Groups ,001 3 ,000 4,400 ,042

Within Groups ,001 8 ,000 Total ,002 11

Pk

Between Groups 5,921 3 1,974 25,184 ,000

Within Groups ,627 8 ,078

Total 6,548 11

66

Lampiran 6. Hasil uji lanjut Duncan peubah NDF pada kandungan nutrisi

perlakuan N Subset for alpha = 0.05

1 2 3

150 kGy 3 76,6050

100 kGy 3 78,4483 78,4483

0 kGy 3 78,9903

50 kGy 3 82,1280

Sig. ,077 ,567 1,000

Lampiran 7. Hasil uji lanjut Duncan peubah ADF pada kandungan nutrisi


1 2

150 kGy 3 45,8857

50 kGy 3 48,2483 48,2483

100 kGy 3 48,3500 48,3500

0 kGy 3 50,3440

Sig. ,121 ,179

Lampiran 8. Hasil uji lanjut Duncan peubah PK pada kandungan nutrisi


1 2 3

100 kGy 3 7,9220

50 kGy 3 8,2297 8,2297

0 kGy 3 8,6550

150 kGy 3 9,7757

Sig. ,215 ,100 1,000

67

Lampiran 9. Hasil Analysis of Varience fermentasi cairan rumen

Sum of

Squares

df Mean Square F Sig.

ph_0_jam

Between

Groups ,000 3 ,000 ,000 1,000

Within

Groups ,022 8 ,003

Total ,022 11

ph_12_jam

Between

Groups 1,361 3 ,454 89,689 ,000

Within

Groups ,040 8 ,005

Total 1,401 11

ph_24_jam

Between

Groups ,409 3 ,136 3,076 ,091

Within

Groups ,354 8 ,044

Total ,763 11

ph_48_jam

Between

Groups ,466 3 ,155 16,872 ,001

Within

Groups ,074 8 ,009

Total ,539 11

ph_72_jam

Between

Groups ,233 3 ,078 20,337 ,000

Within

Groups ,031 8 ,004

Total ,264 11

68

Sum of

Squares


NH3_0_jam

Between

Groups ,000 3 ,000 ,000 1,000

Within

Groups ,052 8 ,007

Total ,052 11

NH3_12_jam

Between

Groups 58,486 3 19,495 13,626 ,002

Within

Groups 11,446 8 1,431

Total 69,933 11

NH3_24_jam

Between

Groups 50,771 3 16,924 46,256 ,000

Within

Groups 2,927 8 ,366

Total 53,697 11

NH3_48_jam

Between

Groups 79,517 3 26,506 312,077 ,000

Within

Groups ,679 8 ,085

Total 80,197 11

NH3_72_jam

Between

Groups 22,239 3 7,413 6,635 ,015

Within

Groups 8,938 8 1,117

Total 31,177 11

69

Sum of

Squares


TVFA_0_jam

Between

Groups ,000 3 ,000 ,000 1,000

Within

Groups 12498,058 8 1562,257

Total 12498,058 11

tvfa_12_jam

Between

Groups 914,638 3 304,879 3,558 ,067

Within

Groups 685,480 8 85,685

Total 1600,118 11

tvfa_24_jam

Between

Groups 5712,999 3 1904,333 6,826 ,013

Within

Groups 2231,796 8 278,975

Total 7944,795 11

tvfa_48_jam

Between

Groups 8454,920 3 2818,307 1,327 ,332

Within

Groups 16993,532 8 2124,192

Total 25448,452 11

tvfa_72_jam

Between

Groups 165,392 3 55,131 ,093 ,962

Within

Groups 4734,596 8 591,824

Total 4899,988 11

70

Lampiran 10. Hasil uji lanjut Duncan pH cairan rumen pada waktu inkubasi 0 jam

perlakuan N Subset for alpha

= 0.05

1

1 3 6,9900

2 3 6,9900

3 3 6,9900

4 3 6,9900

Sig. 1,000

Lampiran 11. Hasil uji lanjut Duncan pH cairan rumen pada waktu inkubasi 12

jam


1 2 3 4

2 3 6,2867

4 3 6,6867

1 3 6,8867

3 3 7,2167

Sig. 1,000 1,000 1,000 1,000


jam


1 2

4 3 7,0900

1 3 7,1700 7,1700

3 3 7,4400 7,4400

2 3 7,5367

Sig. ,086 ,075

71


jam


1 2 3

1 3 6,4433

2 3 6,6800

4 3 6,8367 6,8367

3 3 6,9733

Sig. 1,000 ,080 ,119


jam


1 2 3

1 3 6,8867

3 3 7,1133

2 3 7,1900 7,1900

4 3 7,2567

Sig. 1,000 ,167 ,223

Lampiran 15. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi NH3 pada waktu inkubasi 0 jam


= 0.05

1

1 3 1,3067

2 3 1,3067

3 3 1,3067

4 3 1,3067

Sig. 1,000

72

Lampiran 16. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi NH3 pada waktu inkubasi 12

jam


1 2 3

1 3 ,7467

2 3 3,8267

3 3 5,8800 5,8800

4 3 6,3467

Sig. 1,000 ,069 ,646


jam


1 2

1 3 1,0267

2 3 1,9600

3 3 5,5067

4 3 5,6000

Sig. ,095 ,855

Lampiran 18. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi pada waktu inkubasi 48 jam

Perlakuan N Subset for alpha = 0.05

1 2 3

2 3 1,4933

1 3 1,5867

4 3 6,0667

3 3 7,1867

Sig. ,705 1,000 1,000

73


jam


1 2

1 3 1,4933

3 3 3,9200

2 3 4,1067

4 3 5,2267

Sig. 1,000 ,184

.

Lampiran 20. Hasil uji lanjut Duncan konsentrasi TVFA pada waktu inkubasi 0

jam


= 0.05

1

1 3 174,4100

2 3 174,4100

3 3 174,4100

4 3 174,4100

Sig. 1,000


jam


1 2

4 3 112,4700

1 3 112,4700

3 3 122,2500 122,2500

2 3 133,6600

Sig. ,250 ,170

74


jam


1 2

2 3 76,6100

4 3 114,1000

3 3 117,3600

1 3 136,9200

Sig. 1,000 ,147


jam


= 0.05

1

2 3 81,5000

4 3 105,9500

3 3 138,5500

1 3 148,3300

Sig. ,134


jam


= 0.05

1

2 3 101,0600

4 3 101,0600

3 3 107,5800

1 3 109,2100

Sig. ,708

75

Lampiran 25. Hasil Analysis Of Varience Degradasi bahan kering dan bahan

organik pada jerami sorgum

Sum of

Squares


dbk_0_jam

Between

Groups 17,948 3 5,983 3,242 ,060

Within

Groups 22,144 12 1,845

Total 40,092 15

dbk_12_j

am

Between

Groups 61,802 3 20,601 3,400 ,053

Within

Groups 72,712 12 6,059

Total 134,514 15

dbk_24_jam

Between

Groups 88,001 3 29,334 ,599 ,628

Within

Groups 587,772 12 48,981

Total 675,773 15

dbk_48_jam

Between

Groups 31,510 3 10,503 ,545 ,661

Within

Groups 231,392 12 19,283

Total 262,902 15

dbk_72_jam

Between

Groups 430,350 3 143,450 2,259 ,134

Within

Groups 761,993 12 63,499

Total 1192,343 15

76

Sum of

Squares


dbo_0_jam

Between

Groups 22,200 3 7,400 ,308 ,819

Within

Groups 288,220 12 24,018

Total 310,420 15

dbo_12_jam

Between

Groups 58,047 3 19,349 4,212 ,030

Within

Groups 55,130 12 4,594

Total 113,177 15

dbo_24_jam

Between

Groups 83,800 3 27,933 ,631 ,609

Within

Groups 531,186 12 44,266

Total 614,987 15

dbo_48_jam

Between

Groups 33,427 3 11,142 ,635 ,607

Within

Groups 210,699 12 17,558

Total 244,126 15

dbo_72_jam

Between

Groups 371,196 3 123,732 2,170 ,145

Within

Groups 684,280 12 57,023

Total 1055,476 15

77

Lampiran 26. Hasil uji lanjutan Duncan DBK pada waktu inkubasi 0 jam


1 2

4 4 1,8950

2 4 2,0497

1 4 2,1650

3 4 4,4725

Sig. ,794 1,000



1 2

4 4 18,5450

2 4 18,9768

3 4 20,2000 20,2000

1 4 23,5575

Sig. ,384 ,078



= 0.05

1

4 4 30,0925

2 4 32,1050

3 4 32,4750

1 4 36,5525

Sig. ,249



= 0.05

1

2 4 40,7400

4 4 42,5875

3 4 43,7800

1 4 44,4300

Sig. ,292

78



= 0.05

1

1 4 40,9750

2 4 46,2625

4 4 52,4450

3 4 54,0150

Lampiran 31. Hasil uji lanjutan Duncan DBO pada waktu inkubasi 0 jam


= 0.05

1

1 4 7,9325

3 4 9,1925

4 4 9,8250

2 4 11,2025

Sig. ,399



1 2

2 4 22,9225

3 4 24,1450

4 4 24,7250

1 4 28,0650

Sig. ,280 1,000



= 0.05

1

4 4 34,2300

2 4 35,5375

3 4 35,8125

1 4 40,2950

Sig. ,255

79



= 0.05

1

2 4 43,7350

4 4 45,9825

3 4 46,5575

1 4 47,7075

Sig. ,237



= 0.05

1

1 4 44,4550

2 4 48,9750

4 4 55,2625

3 4 56,2850

Sig. ,062

80

BIODATA MAHASISWA

IDENTITAS PRIBADI

Nama Lengkap : Widia Apriliani

Tempat Tanggal Lahir : Jakarta, 05 April 1996

NIM : 1113096000035

Anak ke : 1 dari 3 bersaudara

Alamat Rumah : Jl.Kesehatan gang Hj.Saanih no.8a RT 05 RW 011

Kelurahan Gedong Kecamatan Pasar Rebo, Jakarta Timur

Telp/HP. : 089679062477

Email : [email protected]

Hobby/ Keahlian (softskill) : Mengajar, menulis.

PENDIDIKAN FORMAL

Sekolah Dasar : SDN Gedong 012 Pagi Lulus tahun 2007

Sekolah Menengah Pertama : SMPN 223 Jakarta Lulus tahun 2010

SLTA/SMK : SMA N 2 Tegal Lulus tahun 2013

Perguruan Tinggi : UIN Syarif Hidayatullah Jakarta Masuk tahun 2013

PENDIDIKAN NON

FORMAL

Kursus/Pelatihan

1. Emergency Response Plan : No. Sertifikat 0290/ERPA/Protain/17

mailto:[email protected]

81

Awareness Training

2. Awareness Training for

HACCP

: No. Sertifikat AT-HACCP/12.2k16/RPT-BOG/2922


GMP

No. Sertifikat AT-GMP/12.2k16/RPT-BOG/2947


Food Safety Management

System Based on ISO

22000:2005

: No. Sertifikat AT-FSMS/12.2k16/RPT-BOG/2897

5. Sciencetech Skill

Organizational Training

(SSOT)

: No. Sertifikat -

PENGALAMAN

ORGANISASI

:

1. Himpunan Mahasiswa

Kimia

Jabatan Anggota Tahun 2013 sd 2014


Kimia

Jabatan Staff Departemen Sosial Tahun 2014 sd 2015


Kimia

Jabatan Sekretaris I Tahun 2015 sd 2016

PENGALAMAN KERJA :

1. Praktek Kerja Lapangan

(PKL)

: PT.Pertamina RU VI Balongan/2016

Judul PKL : Analisis Spesifikasi LPG Campuran tanki

42-T-403B PT. Pertamina (Persero) RU VI Balongan

2. Guru Privat dan Bimbel Bimbel GALAN/2015 – 2017

82

SEMINAR/LOKAKARYA

1. Seminar Nasional Biokimia Bulan/Tahun Mei/2014 Sertifikat Pemakalah ada

2. Seminar Kewirausahaan Bulan/Tahun April/ 2016 Sertifikat Pemakalah tidak ada

3. Seminar Kimia untuk

Indonesia

Bulan/Tahun Mei/ 2016 Sertifikat Pemakalah tidak ada

Documents

KANDUNGAN NUTRISI PAKAN TERNAK DAN …repository.uinjkt.ac.id/dspace/bitstream/123456789...kandungan nutrisi pakan ternak dan degradabilitas in sacco jerami sorgum (sorghum bicolor