JURNAL EKOTOK

8/17/2019 JURNAL EKOTOK

1/38

JURNAL

PRAKTIKUM EKOTOKSIKOLOGI PERAIRAN

Oleh :

Nama : Carissa Paresky Arisagy

NIM : 12 / 334991 / PN / 12981

Prodi : Manajemen Sumberdaya Perikanan

Asisten Laporan : Riyan Dwi Putra

LABORATORIUM EKOLOGI PERAIRAN

JURUSAN PERIKANAN

FAKULTAS PERTANIAN

UNIVERSITAS GADJAH MADA

YOGYAKARTA

2014


2/38

UJI TOKSISITAS INSEKTISIDA TERHADAP IKAN NILA (Oreochromis nil oticus )

Carissa Paresky Arisagy

12 / 334991 / PN / 12981

Manajemen Sumberdaya Perikanan

Intisari

Perairan terbuka merupakan lingkungan yang seringkali menjadi tempat pembuangan akhir

bahan-bahan pencemar yang dapat berasal dari limbah rumah tangga, industri, pertanian

maupun kegiatan manusia lainnya. Salah satu bahan pencemar yang sering dimanfaatkan

oleh manusia adalah insektisida (pembasmi serangga). Untuk mengantisipasi dampak

negatif dari bahan pencemar tersebut perlu diketahui nilai toksisitas insektisida terhadap

ikan air tawar melalui uji toksisitas. Uji toksisitas digunakan untuk mengevaluasi

konsentrasi bahan-bahan kimia dan lamanya waktu pemaparan yang dibutuhkan untukmenghasilkan suatu efek. Praktikum ekotoksikologi yang dilaksanakan pada tanggal 29

September – 3 Oktober 2014 di Laboratorium Ekologi Perairan bertujuan untuk

mempelajari salah satu cara mengukur daya racun (toksisitas) suatu bahan pencemar,

mempelajari penentuan toksisitas suatu bahan kimia atau bahan pencemar terhadap hewan

air, dan mempelajari pengaruh suatu bahan kimia atau bahan pencemar terhadap kualitas

air. Praktikum ini dilakukan dengan menggunakan dua perlakuan yaitu aerasi dan non

aerasi dengan bahan toksik berupa transfluthrin dengan hewan uji berupa ikan nila. Selain

itu diukur juga parameter fisik, kimia, dan biologi lingkungan berupa suhu, kandungan

oksigen terlarut, CO2 bebas, alkalinitas, pH, gerak operkulum, escape reflex, dan

mortalitas. Nilai LC50 – 96 jam pada perlakuan aerasi tidak dapat ditentukan dan pada

perlakuan non aerasi sebesar 29,297 ppm. Nilai LC50-72 jam ikan nila (Oreochromis

niloticus) non aerasi adalah 3,943. Toksisitas transfluthrin pada perlakuan non aerasi lebih

toksik dibandingkan pada perlakuan aerasi.

Kata kunci : ikan nila, kualitas air, mortalitas, toksisitas, transfluthrin

PENDAHULUAN

Perairan terbuka merupakan lingkungan yang seringkali menjadi tempat

pembuangan akhir bahan-bahan pencemar yang dapat berasal dari limbah rumah tangga,

industri, pertanian maupun kegiatan manusia lainnya. Salah satu bahan pencemar yang

sering dimanfaatkan oleh manusia adalah insektisida (pembasmi serangga). Berdasarkan

data dari Depkes (1994), disebutkan bahwa penggunaan insektisida di seluruh Indonesia

saat ini mencapai 55,42 %. Penggunaan insektisida baik di bidang pertanian maupun non

pertanian sebenarnya merupakan upaya untuk mengontrol hama, namun apabila

penggunaannya tidak benar maka hanya sebagian kecil dari insektisida yang dipaparkan ke

lingkungan berpengaruh terhadap organisme sasaran, sementara sisanya hanya akan

mengkontaminasi lingkungan. Insektisida yang disemprotkan dan mengendap dalam tanah


3/38

dapat terbawa oleh air hujan atau aliran permukaan sampai ke badan air penerima seperti

sungai, danau, dan lain sebagainya. Adanya residu insektisida dalam air tersebut lambat

laun akan terakumulasi dan dapat menimbulkan pengaruh merugikan pada organisme

akuatik, khususnya ikan. Memperhatikan dan menyadari dampak penggunaan insektisida

tersebut terhadap lingkungan perairan, maka dirasa perlu untuk mengetahui dan memahami

lebih lanjut tentang uji toksisitas insektisida terhadap ikan air tawar, khususnya ikan nila

(Oreochromis niloticus) melalui praktikum ekotoksikologi perairan.

Ikan nila merupakan spesies ikan tropis yang lebih suka hidup di air dangkal

(Trewavas, 1983). Secara morfologi ikan nila memiliki bentuk tubuh pipih, sisik besar dan

kasar, kepala relatif kecil, garis linea lateralis terputus dan terbagi dua, yaitu bagian atas

dan bawah memiliki lima buah sirip. Arie (1999) menyatakan bahwa habitat yang ideal

untuk ikan Nila (Oreochromis niloticus), adalah perairan tawar yang memiliki suhu antara

14oC – 38

oC, atau suhu optimal 25

oC – 30

oC. Ikan ini mampu hidup dengan kisaran

salinitas (kadar garam) 0 - 15‰. Nila dapat tumbuh dan berkembang dengan baik pada

lingkungan perairan dengan kadar Dissolved Oxygen (DO) antara 2,0 - 2,5 mg/l. Secara

umum nilai pH air pada budidaya ikan nila antara 5 sampai 10 tetapi nilai pH optimum

adalah berkisar 6 – 9 (Popma, 1999). Ikan nila merupakan ikan omnivora yang sangat

menyenangi pakan alami berupa rotifera, Daphnia sp., benthos, perifiton dan fitoplankton,

disamping itu, bisa juga diberi pakan seperti pellet, dan dedak. Ikan ini dapat melakukan

pemijahan sepanjang tahun dan mulai memijah pada umur 6-8 bulan. Seekor induk betina

ukuran 200-400 gram dapat menghasilkan larva 500-1000 ekor (Rochdianto, 2009).

Berdasar hasil survei, hampir semua insektisida rumah tangga menggunakan bahan

aktif dari golongan piretroid sintetik. Insektisida golongan piretroid menjadi pilihan karena

kerjanya cepat melumpuhkan serangga sasaran selain itu juga bersifat repellent (Sigit dan

Hadi, 2006). Sifat sintetik piretroid tidak mudah menguap (volatilitas rendah) dan potensiinsektisidanya tinggi. Kesuksesan lain piretroid adalah efikasinya tinggi dengan dosis yang

rendah serta daya bunuhnya cepat (Pemba dan Kadangwe, 2012). Piretroid sintetik saat ini

telah banyak diproduksi. Piretroid generasi pertama adalah d-alletrin. Sedangkan termasuk

piretroid generasi kedua adalah d-fenotrin, kemudian generasi ketiga adalah sifenotrin dan

permetrin, dan sisanya (imiprotrin, transflutrin, praletrin, metoflutrin, sipermetrin, siflutrin,

dan deltametrin) adalah piretroid generasi keempat (Sigit dan Hadi, 2006). Hal yang

membedakan tiap bahan aktif insektisida adalah toksisitas terhadap organisme target,

maupun organisme lain. Toksisitas sangat berkaitan dengan dosis, yang biasanya


4/38

dinyatakan dengan lethal dose (LD50) atau lethal concentration (LC50), yaitu jumlah

racun per unit berat badan yang akan menyebabkan kematian sebanyak 50% dari total

populasi hewan uji (Matsumura, 1975). Semakin kecil dosis yang diperlukan untuk

membunuh maka semakin toksik insektisida tersebut. Berdasarkan toksisitasnya insektisida

digolongkan menjadi golongan IA (sangat berbahaya sekali), IB (sangat berbahaya), II

(berbahaya), III (cukup berbahaya), dan golongan IIIU (tidak berbahaya jika digunakan

secara normal) (Sigit dan Hadi, 2006).

Tabel 1. Penggolongan bahan aktif insektisida berdasar toksisitasnya (Becker et al.,2010).

Bahan Aktif Golongan Insektisida Tingkat Toksisitas

Sipermetrin Piretroid IIIUImiprotin Piretroid III

Tranflutrin Piretroid IIIU

Pralletrin Piretroid III

Sifenotrin Piretroid II

D-alletrin Piretroid III

Permetrin Piretroid II

Propoksur Karbamat II

Siflutrin Piretroid II

D-fenotrin Piretroid IIIU

Metoflutrin Piretroid IIIU

DEET Piretroid IIIU

Deltametrin Piretroid II

Adapun tujuan dilakukannya praktikum ekotoksikologi perairan mengenai uji

toksisitas bahan pencemar terhadap ikan air tawar yakni untuk mempelajari salah satu cara

mengukur daya racun (toksisitas) suatu bahan pencemar. Di samping itu, praktikum inidilakukan untuk mempelajari penentuan toksisitas suatu bahan kimia atau bahan pencemar

terhadap hewan air. Selanjutnya, praktikum ini juga bertujuan untuk mempelajari pengaruh

suatu bahan kimia ataubahan pencemar terhadap kualitas air.


5/38

METODOLOGI

Praktikum ekotoksikologi perairan acara uji toksisitas bahan pencemar terhadap

ikan air tawar ini dilakukan pada hari Senin hingga Jumat, tanggal 29 September sampai

dengan 3 Oktober 2014, tepatnya pada pukul 14.00 WIB hingga pukul 16.00 WIB.

Adapaun tempat pelaksanaan praktikum berada di Laboratorium Ekologi Perairan Jurusan

Perikanan, Fakultas Pertanian, Universitas Gadjah Mada. Praktikum ini dilaksanakan

dengan prinsip mengamati hewan uji yang hidup di dalam air yang telah diberi pencemar

selama 96 jam untuk mendapatkan nilai LC50 dengan analisis regresi linier dan pengukuran

parameter lingkungan. Adapun parameter lingkungan yang diamati meliputi parameter

fisik, kimia, dan biologi.

Alat yang digunakan dalam praktikum antara lain akuarium, aerator, ember, selang

air, termometer, pipet tetes, erlenmeyer, pH meter, botol oksigen, kertas label, pipet ukur,

kempot, gelas ukur, hand counter, dan alat tulis. Sementara bahan yang digunakan terdiri

dari ikan uji, bahan pencemar, serta bahan-bahan yang digunakan dalam pengukuran

kualitas air seperti MnSO4, H2SO4 pekat, 1/80 N Na2S2O3, 1/44 N NaOH, 1/50 N H2SO4,

indicator amilum, indikator MO, reagen oksigen, indicator phenolpthelein, dan aqudest.

Adapun ikan uji yang digunakan dalam praktikum ini adalah ikan nila (Oreochromis

niloticus). Sementara bahan pencemar yang digunakan adalah insektisida (pembasmi

nyamuk) yang mengandung senyawa transfluthrin.

Nilai LC50 diperoleh melalui uji pendahuluan yakni dengan melakukan

pemeliharaan ikan selama 96 jam dalam 24 buah akuarium, di mana dua belas buah

diantaranya diberi perlakuan aerasi dan sisanya non aerasi. Pada tiap-tiap akuarium diisi

dengan 10 ekor ikan dengan ukuran fingerling . Kemudian pada masing-masing akuarium

diberi bahan pencemar berupa insektisida yang mengandung senyawa transfluthrin, dengan

konsentrasi 0 ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm, dan 1 ppm. Lalu data yangdiperoleh diolah melalui analisis regresi linier sederhana. Regresi linier sederhana

digunakan untuk mendapatkan hubungan matematis dalam bentuk suatu persamaan antara

variabel tak bebas tunggal dengan variabel bebas tunggal. Regersi linier sederhana hanya

memiliki satu peubah X yang dihubungkan dengan satu peubah tidak bebas Y. Bentuk

umum dari persamaan regresi linier untuk populasi adalah Y = a + bx , dimana Y =

variabel tak bebas, x = variabel bebas, a = parameter intercep, b = kemiringan garis regresi

(Kurniawan, 2008). Pada uji toksisitas insektisida terhadap ikan nila (Oreochromis

niloticus) ini, parameter lingkungan yang diamati meliputi parameter fisika yang


6/38

mencakup pengukuran suhu air, parameter kimia yang mencakup pengukuran alkalinitas,

DO, CO2, dan pH, serta parameter biologi yang mencakup pengamatan gerakan

operculum, escape reflex dan mortalitas. Pada parameter fisika, pengukuran suhu air

dilakukan dengan menggunakan termometer. Sementara pada parameter kimia seperti DO

diukur dengan metode Winkler, CO2 bebas dan alkalinitas diukur dengan metode

Alkalimetri, dan pH diukur menggunakan pH meter. Kemudian pada parameter biologi

seperti gerakan operculum, escape reflex dan mortalitas dilakukan pengamatan dan

penghitungan dengan bantuan hand counter. Pengukuran dan pengamatan parameter fisika

dan biologi tersebut dilakukan setiap 24 jam sekali sementara parameter kimia diukur

setiap 48 jam sekali.

HASIL DAN PEMBAHASAN

Pada praktikum ekotoksikologi acara uji toksisitas bahan pencemar terhadap ikan

air tawar ini mengunakan ikan nila (Oreochromis niloticus) sebagai objek pengamatan

dengan bahan pencemar berupa insektisida (pembasmi nyamuk) yang mengandung

senyawa toksik transfluthrin. Transflutrin merupakan senyawa yang mempunyai daya

melumpuhkan yang cepat pada nyamuk, lalat, dan lipas pada konsentrasi yang rendah.

Transflutrin bersifat mudah menguap sehingga sangat cocok untuk formulasi dengan

sistem penguapan seperti lingkaran anti nyamuk, mat, dan aerosol. Produk transflutrin

yaitu baygon, raid (Hadi dan Sigit, 2006).

Praktikum ekotoksikologi perairan tentang uji toksisitas bahan pencemar terhadap

ikan air tawar dilakukan dengan mengukur tingkat kematian ikan serta parameter fisik,

kimia, dan biologi. Parameter fisik meliputi suhu, parameter biologi meliputi gerak

operkulum dan escape reflex, parameter kimia meliputi dissolved oxygen (DO), CO2 bebas,

pH, dan alkalinitas. Praktikum ini dibagi menjadi dua perlakuan, yaitu aerasi dan non

aerasi.

A. Aerasi

Tabel 2. Hasil pengamatan parameter fisik dan biologi (aerasi).

JamKonsentrasi

(ppm)

Parameter Fisik Parameter Biologi

Suhu (0) GO ER

0

0 27,75 132 4.5

0,2 27,75 111.5 40,4 27,75 139 5


7/38

0,6 27,75 86 5

0,8 27,75 99.5 4

1,0 28,25 117 4

24

0 27 114.5 2

0,2 26,25 100 2

0,4 26,75 105 2

0,6 26,5 92 2

0,8 26,5 91 2

1,0 26,75 83 2

48

0 26,25 91 2.5

0,2 26,5 98.5 2.5

0,4 26 88.5 3

0,6 26 88 1.5

0,8 26,25 104 2

1,0 26,75 112.5 2

72

0 26,5 101.5 2.5

0,2 26,25 88 3

0,4 26,5 96.5 3.5

0,6 26,25 80.5 2.5

0,8 26,25 79 2.5

1,0 27 87 1.5

96

0 26,25 92 1.5

0,2 26,5 87 2.50,4 26 102 2.5

0,6 26 100.5 3

0,8 26,25 82 2.5

1,0 26,5 97 1

Suhu air merupakan kodisi keadaan temperatur yang menunjukkan situasi air pada

suatu wilayah atau daerah perairan. Suhu air merupakan faktor penting dalam lingkungan

perairan. Suhu air dapat mempengaruhi besarnya kadar O2 terlarut dalam suatu perairan,

semakin tinggi suhu periran maka kadar O2 terlarutnya akan rendah, begitu pula

sebaliknya. Hal ini disebabkan pada suhu yang tinggi organisme akan melakukan

metabolisme yang tinggi pula sehingga organisme tersebut membutuhkan Oksigen yang

lebih untuk beraktivitas, sebagai sumber energi. Menurut Effendi (1998), Kenaikan suhu

air dapat menyebabkan kehidupan ikan dan hewan air lainnya terganggu .Air memiliki

beberapa sifat termal yang unik, sehingga perubahan suhu dalam air berjalan lebihlambat

dari pada udara. Selanjutnya Soetjipta (1992) menambahkan bahwa walaupun suhu kurang


8/38

mudah berubah di dalam air daripada di udara, namun suhu merupakan faktor pembatas

utama, oleh karena itu mahluk akuatik sering memiliki toleransi yang sempit.

Berdasarkan hasil pengamatan parameter fisik pada akuarium yang diberi perlakuan

aerasi yang teramati baik pada jam ke-0, ke-24, ke-48, ke-72, maupun ke-96 jam tidak

tampak adanya perbedaan yang signifikan. Dengan konsentrasi yang berbeda suhu air yang

terukur relatif konstan dan tidak menunjukan rentang kenaikan maupun penurunan suhu air

yang jauh. Pada pengukuran 0 jam berkisar antara 27,75oC - 28,25

oC, pada pengukuran 24

jam berkisar antara 26,25o C – 27oC, pada pengukuran 48 jam berkisar antara 26oC –

26,75oC, pada 72 jam berkisar antara 26,25oC dan 27oC, serta pada pengukuran 96 jam

berkisar antara 26 dan 26,5oC. Suhu air pada masing-masing konsentrasi dalam kurun

waktu 96 jam selalu dalam kisaran optimal, yakni berkisar antara 26 oC - 27,75 oC, dimana

menurut Arie (1999), suhu optimal ikan Nila (Oreochromis niloticus) berkisar antara 25oC

– 30oC. Berdasarkan keadaan tersebut, maka dapat diartikan suhu air masih berada dalam

kisaran yang layak untuk ikan hidup. Nilai fluktuasi suhu air ini tidak terlalu besar

dikarenakan praktikum uji toksisitas ini dilakukan di dalam ruang laboratorium sehingga

cenderung mengikuti suhu ruang dan tidak dipengaruhi faktor luar seperti sinar matahari.

Menurut Hynes (1970), semakin tinggi suhu air maka toksisitas insektisida di dalam air

akan semakin meningkat pula. Dengan demikian, semakin tinggi suhu maka akan semakin

berpengaruh negatif terhadap metabolisme ikan, bahkan dapat berakibat pada kematian.

Keberadaan insektisida dalam suatu badan air dapat merusak insang dan organ

pernafasan ikan Kerusakan insang dan organ pernafasan ikan ini menyebabkan toleransi

ikan terhadap badan air yang kandungan oksigen terlarutnya rendah menjadi menurun.

Berkurangnya kemampuan insang dalam mengikat oksigen tampak pada meningkatnya

frekuensi gerakan operkulum pada ikan. Gerakan Operkulum merupakan gerakan

operkulum ikan yang diukur selama 1 menit. Berdasarkan hasil pengamatan dari jam ke-0,ke-24, ke-48, ke-72, hingga ke-96 jam frekuensi gerakan operkulum ikan uji pada

perlakuan aerasi berkisar 79 hingga 132 kali/menit. Frekuensi gerakan operkulum ikan uji

pada perlakuan aerasi ini terlihat sangat fluktuatif. Pada akuarium kontrol dengan

konsentrasi transfluthrin 0 ppm, saat pengamatan jam ke 0 diperoleh data gerakan

operculum ikan uji mencapai 132 kali/menit dan cenderung menurun hingga jam ke 96

yaitu menjadi 92 kali/menit. Pada konsentrasi 0,2 ppm frekuensi gerakan operculum ikan

nila tercatat 111,5 kali/menit saat jam ke 0 dan semakin menurun hingga jam ke 96

mencapai 87 kali/menit. Pada konsentrasi 0,4 ppm diperoleh gerakan operculum yang


9/38

cenderung fluktuatif, dimana pada jam ke-0 mencapai 139 kali/menit dan mengalami

penurunan pada jam ke 72 dimana frekuensi gerakannya hanya 88 kali/menit dan kembali

meningkat sampai pengukuran 96 jam menjadi 102 kali/menit. Keadaan fluktuatif tersebut

juga tampak pada ikan nila dalam air uji dengan konsentrasi tranfluthrin 0,6 ; 0,8 ; dan 1,0

ppm, dimana pada jam ke 0 hingga 72 cenderung mengalami penurunan kemudian

meningkat hingga pengamatan 96 jam.

Perubahan lingkungan dapat mengakibatkan perubahan tingkah laku ikan nila

berupa, kehilangan orientasi lingkungan, fisiologi (pertumbuhan dan reproduksi, dan

biokimia serta terganggunya fungsi jaringan. Ikan nila terlihat hypersensitif dan mengalami

gangguan orientasi terhadap lingkungan dengan berenang kedasar dan permukaan air tidak

teratur, frekuensi gerakan operkulum semakin meningkat dan kadang gerakannya tidak

beraturan. Kondisi ini diduga bahwa ikan berusaha untuk mendapatkan oksigen dengan

memperbanyak volume air yang melewati insang (Zahri, 2008). Mekanisme meningkatnya

frekuensi gerakan operkulum ikan tersebut diawali dengan terhalangnya poses difusi

oksigen ke dalam insang mengakibatkan ikan kekurangan oksigen. Sebagai respon, ikan

akan meningkatkan frekuensi gerakan operkulum untuk memenuhi kekurangan oksigen

tersebut. Peningkatan frekuensi gerakan operkulum pada ikan dalam waktu lama dapat

menyebabkan kerusakan insang yang berdampak pada kematian (Heat, 1995) dan

melemahkan otot yang menggerakkan operkulum.

Parameter biologi lainnya yang diamati dalam uji toksisitas ini adalah escape reflex.

Escape reflex merupakan gerakan yang diamati setelah mengganggu ikan dengan cara

mengetuk bagian luar akuarium guna melihat kecekatan gerakan ikan dalam menanggapi

rangsang. Penilaian dilakukan berdasarkan pengamatan secara visual dengan skala 1-5.

Semakin tinggi nilai escape reflex berarti ikan tersebut berada dalam kondisi yang sehat.

Berdasarkan data pengamatan tersebut tampak bahwa escape reflect ikan nila mengalamifluktuasi dengan kecenderungan yang semakin menurun seiring dengan bertambahnya

lamanya jangka waktu paparan bahan pencemar. Adapun nilainya berkisar antara 4 – 5 saat

pengamatan 0 jam menjadi 1 – 3 saat pengamatan 96 jam. Penurunan tanggapan ikan nila

terhadap rangsangan tersebut dapat terjadi karena lamanya waktu paparan bahan toksik

(transfluthrin) terhadap ikan uji, yakni ikan nila (Oreochromis niloticus).


10/38

Tabel 3. Hasil pengamatan parameter kimia (aerasi)

JamKonsentrasi

(ppm)

Parameter Kimia

pHDO

(ppm)

CO2(ppm)

Alkalinitas

(ppm)

0

0 7,1 6,8 4,5 162,4

0,2 7,05 6,3 4 170,5

0,4 7,05 6,4 3 164

0,6 7,1 6,515 2,5 173

0,8 7,05 6,5 1,5 185

1,0 7,05 6,67 3,5 167

48

0 7,1 6,5 4 175,5

0,2 7 4,5 6,5 172

0,4 7,1 6,4 4 173

0,6 7,1 6,2 4 168,8

0,8 7,05 5,48 5 173,7

1,0 7,05 5,78 5 171,4

96

0 7,15 5,96 7 190

0,2 7,05 6,1 10 184

0,4 7,1 6,54 7 183

0,6 7,1 6,48 6 177

0,8 7,1 6,3 7 184

1,0 7,1 5,825 6 189

Parameter kimia yang diamati pada praktikum uji toksisitas insektisida terhadap

ikan nila (Oreochromis niloticus) ini meliputi pH, kandungan O2 terlarut, CO2 bebas, serta

alkalinitas. Menurut Purba (2006), pH merupakan parameter keasaman dari suatu larutan.

Derajat keasaman atau pH merupakan gambaran jumlah atau aktivitas ion hidrogen dalam

perairan. Secara umum nilai pH menggambarkan seberapa besar tingkat keasaman atau

kebasaan suatu perairan. Perairan dengan nilai pH = 7 adalah netral, pH < 7 dikatakan

kondisi perairan bersifat asam, sedangkan pH > 7 dikatakan kondisi perairan bersifat basa(Effendi, 1998). Berdasarkan hasil pengamatan pH selama 96 jam baik pada konsentrasi 0

ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm hingga 1 ppm menunjukan nilai pH yang relatif

stabil, yakni berkisar antara 7 hingga 7,15. Merujuk pada pernyataan Popma (1999), bahwa

pH air optimum untuk pemeliharaan ikan nila adalah berkisar antara 6-9, dengan demikian

kondisi air akuarium uji dapat dinyatakan layak dan baik.

Oksigen terlarut merupakan jumlah oksigen dalam mg yang terdapat dalam satu

liter air (ppt). Oksigen terlarut juga dapat diartikan sebagai kandungan gas Oksigen yang

terlarut dalam air. Oksigen terlarut dalam perairan merupakan faktor penting sebagai


11/38

pengatur metabolisme tubuh organisme untuk tumbuh dan berkembang biak. Sumber

Oksigen terlarut dalam air berasal dari difusi Oksigen yang terdapat di atmosfer, arus atau

aliran air melalui air hujan serta aktivitas fotosintesis oleh tumbuhan air dan fitoplankton

(Novotny and Olem, 1994). Akan tetapi, dalam praktikum ini kandungan DO air hanya

bersumber dari difusi oksigen atmosfer serta aerator. Nilai DO dalam jangka waktu 96 jam,

pada konsentrasi 0 ppm (kontrol) cenderung mengalami penurunan dari 6,8 ppm hingga

5,96 ppm. sementara pada konsentrasi bahan toksik (transfluthrin) 0,2 ppm, 0,6 ppm, 0,8

ppm dan 1 ppm cenderung fluktuatif dimana terjadi penurunan kandungan DO pada

pengamatan 48 jam. Meskipun demikian fluktuasi kandungan DO tersebut tidak begitu

besar, hal ini dapat terjadi karena adanya pengaruh aerasi pada akuarium uji. Menurut

Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan kandungan oksigen

minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya. Dengan demikian kondisi air akuarium uji

dengan perlakuan aerasi ini masih dapat dikatakan stabil, meskipun telah dicemari oleh

senyawa transfluthrin, sebab kandungan DO airnya masih stabil yakni berkisar antara 4,5

ppm – 6,8 ppm, dimana nilai tersebut lebih dari 3 ppm.

Karbondioksida bebas merupakan istilah untuk menunjukkan CO2 yang terlarut di

dalam air. Menurut Boyd (1982), CO2 bebas di perairan berasal dari hasil proses difusi

karbondioksida dari udara dan proses respirasi organisme akuatik. Konsentrasi CO2 bebas

12 mg/l dapat menyebabkan tekanan pada ikan, karena akan menghambat pernafasan dan

pertukaran gas. Kandungan CO2 dalam air yang aman tidak boleh melebihi 25 mg/l,

sedangkan konsentrasi CO2 lebih dari 100 mg/l akan menyebabkan semua organisme

akuatik mengalami kematian (Wardoyo, 1989). Berdasarkan tabel tersebut tampak bahwa

nilai CO2 bebas pada pengamatan 0 jam berkisar antara 1,5 – 4,5 ppm dan cenderung

mengalami peningkatan sampai pengamatan waktu 96 jam mencapai 6 – 10 ppm.

Peningkatan CO2 bebas tersebut dapat terjadi karena adanya akumulasi sisa hasil respirasiikan uji. Berdasarkan data yang diperoleh menunjukkan bahwa akuarium uji dengan

perlakuan aerasi masih layak dan baik untuk perkembangan ikan sebab nilainya masih

dalam batas aman dan optimal. Di mana menurut Odum (1993), kandungan CO2 bebas

yang optimal bagi biota perairan yaitu berkisar antara 6-20 ppm.

Alkalinitas merupakan suatu parameter kimia perairan yang menunjukkan jumlah

ion karbonat dan bikarbonat yang mengikat logam golongan alkali tanah pada perairan

tawar. Alkalinitas juga didefinisikan sebagai kapasitas penyangga (buffer capacity) yang

menetralkan perubahan pH perairan yang sering terjadi (Effendi,2003). Pembentuk


12/38

alkalnitas yang utama adalah bikarbonat, karbonat dan hidroksida (Irianto, 2005). Pada

pengukuran alkalinitas diperoleh nilai 162,4 – 185 ppm dan cenderung mengalami

kenaikan selama 96 jam menjadi 183 – 190 ppm. Menurut Odum (1993), ketinggian

alkalinitas sebaiknya tidak lebih dari 500 sehingga kisaran optimum bagi biota perairan

adalah 50-200 ppm. Dengan demikian kisaran alkalinitas pada uji toksisitas ini berada

dalam kondisi optimal. Pengamatan parameter kimia dilakukan untuk memastikan bahwa

mortalitas yang terjadi disebabkan oleh bahan kimia toksik yang diberikan, bukan akibat

dari kualitas kimia air. Dengan demikian terbukti bahwa kualitas air tidak mempengaruhi

mortalitas ikan, sebab pada parameter-parameter kualitas air menunjukan nilai yang masih

dalam batas optimal untuk hidup ikan nila.

Tabel 4. Hasil pengamatan parameter mortalitas (aerasi).

Konsentrasi

(ppm)Aerasi

Kematian (Ekor)

0 jam 24 jam 48 jam 72 jam 96 jam

0

Aerasi

0 0 0 0 0

0,2 0 0 0 0 0

0,4 0 0 0 0 0

0,6 0 0 0 0 0

0,8 0 0 0 0 0

1,0 0 0 0 0 0

Berdasarkan hasil pengamatan mortalitas ikan uji selama 96 jam, pada perlakuan

aerasi, baik pada konsentrasi transfluthrin 0 ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm

maupun 1 ppm tidak ada ikan yang mengalami kematian. Hal ini dikarenakan adanya

perlakuan aerasi, dimana dengan adanya perlakuan tersebut dapat menambah suplai

oksigen terlarut, sehingga kualitas air tetap terjaga. Seperti yang dijelaskan oleh Effendi

(2003), yakni fungsi utama aerasi adalah melarutkan oksigen ke dalam air untuk

meningkatkan kadar oksigen terlarut dalam air dan melepaskan kandungan gas-gas yang

terlarut dalam air, serta membantu pengadukan air. Dengan demikian adanya aerasi selain

dapat menjaga kestabilan pasokan oksigen dalam air juga dapat mengurangi zat-zat racun

selama proses difusi. Sehingga bahan kimia toksik berkurang dan dalam batas yang masih

bisa ditoleransi oleh ikan uji.


13/38

Grafik 1. Parameter kimia 0 ppm (aerasi)

Grafik 2. Parameter kimia 0,2 ppm (aerasi)

0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,8 6,5 5,96

CO2 4,5 4 7

Alkalinitas 162,4 175,5 190

pH 7,1 7,1 7,15

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200

K o n s e n t r a s i ( p p m )

Parameter Kimia 0 ppm Aerasi

0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,3 4,5 6,1

CO2 4 6,5 10

Alkalinitas 170,5 172 184

pH 7,05 7 7,05

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200


Parameter Kimia 0,2 ppm Aerasi


14/38



0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,4 6,4 6,54

CO2 3 4 7

Alkalinitas 164 173 183

pH 7,05 7,1 7,1

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200



0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,515 6,2 6,48

CO2 2,5 4 6

Alkalinitas 173 168,8 177

pH 7,1 7,1 7,1

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180200




15/38


Grafik 6. Parameter kimia 1 ppm (aerasi)

Grafik-grafik tersebut menjelaskan menjelaskan tentang nilai parameter kimia

yang meliputi DO, CO2 bebas, alkalinitas, serta pH pada konsentrasi bahan toksik 0 ppm,0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm serta 1 ppm terhadap waktu paparan bahan toksik

0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,5 5,48 6,3

CO2 1,5 5 7


pH 7,05 7,05 7,1

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180

200



0 jam 48 jam 96 jam

DO 6,67 5,78 5,825CO2 3,5 5 6


pH 7,05 7,05 7,1

Mortalitas 0 0 0

0

20

40

60

80

100

120

140

160

180200


Parameter Kimia 1 ppm Aerasi


16/38

(transfluthrin), 0 jam, 48 jam dan 96 jam dengan perlakuan aerasi. Berdasarkan grafik 1.

yakni pada konsentrasi transfluthrin 0 ppm, tampak bahwa nilai kandungan oksigen terlarut

dari hari ke hari mengalami penurunan dari yang semula 6,8 ppm menjadi 5,96 ppm pada

hari keempat (96 jam). Penurunan tersebut dapat disebabkan oleh adanya konsumsi

oksigen dari ikan uji. Dalam hal ini, penurunan kadar O2 dalam air tersebut dapat

diminimalisir dengan perlakuan aerasi yang dapat menyuplai oksigen ke dalam air melalui

proses difusi sehingga dapat menjaga kestabilan kandungan oksigen terlarut dari awal

perlakuan. Berbeda dengan kandungan CO2 bebasnya yang cenderung fluktuatif, di mana

pada jangka waktu pemaparan 96 jam mengalami kenaikan yang cukup signifikan yakni

dari 4 ppm menjadi 7 ppm. Meskipun demikian, kandunagn CO2 bebas dalam akuarium

uji tersebut masih dalam kisaran normal, seperti yang diungkapkan oleh Odum (1993)

bahwa kandungan CO2 bebas yang optimal bagi biota perairan yaitu berkisar antara 6-20

ppm. Pada akuarium kontrol ini tampak nilai alkalinitasnya semakin meningkat dari jangka

paparan 0-96 jam. Nilai pH pada konsentrasi 0 ppm selama pemaparan senyawa toksik,

transfluthrin relatif konstan dan stabil, yakni sebesar 7,1-7,15. Sesuai dengan pernyataan

Lin (1995) yaitu kisaran pH yang optimal bagi kelangsungan hidup dan pertumbuhan ikan

nila adalah 6.5 – 8. Dengan demikian, pada akuarium dengan konsentrasi transfluthrin 0

ppm dapat dikatakan dalam kondisi yang baik sebagai tempat hidup ikan. Sehingga tidak

heran bila tidak ada ikan uji yang mengalami kematian pada akuarium kontrol ini.

Berdasarkan grafik 2. yakni pada konsentrasi insektisida 0,2 ppm mengalami

penurunan kandungan DO pada pengamatan 48 jam, yakni dari 6,3 ppm menjadi 4,5 ppm

kemudian meningkat kembali pada pengamatan 96 jam menjadi 6,1 ppm. Mengacu pada

pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan kandungan

oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya, dengan demikian dapat diartikan

bahwa pada konsentrasi bahan toksik sebesar 0,2 ppm, kandungan DO –

nya masih berada pada rentang optimal. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi transfluthrin 0,2 ppm ini

mengalami peningkatan dari hari ke hari, demikian pula pada kadar alkalinitas. Dimana,

nilai keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk pertumbuhan ikan. Nilai pH

pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,2 ppm ini juga tampak stabil dan

konstan, dengan nilai yang berkisar antara 7-7,05. Pada konsentrasi ini, baik dalam jangka

waktu pemaparan 48 jam maupun 96 tidak menunjukkan adanya kematian pada ikan. Hal

tersebut dapat disebabkan oleh adanya aerasi yang membantu menstabilkan lingkungan

melalui difusi maupun penguapan bahan toksik dari lingkungan perairan ke atmosfer.


17/38

Berdasarkan hasil pengukuran parameter kimia yang diperoleh menunjukkan bahwa

kualitas air dalam kondisi yang baik untuk hidup ikan dengan kandungan bahan toksik

yang relatif kecil dan masih bisa ditolerir oleh ikan uji, sehingga tidak ada mortalitas yang

terjadi.


kenaikan kandungan DO pada pengamatan 96 jam, dari 6,4 ppm menjadi 6,54 ppm. Nilai

tersebut menunjukkan bahwa kandungan DO – nya masih berada pada rentang optimal.

Kemudian kandungan CO2 bebas pada konsentrasi transfluthrin 0,4 ppm ini mengalami

peningkatan dari hari ke hari, demikian pula pada kadar alkalinitas. Dimana, nilai

keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk pertumbuhan ikan, yakni 3 ppm, 4

ppm, 7 ppm untuk CO2 dan 164 ppm, 173 ppm, 183 ppm untuk kandungan alkalinitas.

Sementara itu, nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,4 ppm ini juga

tampak stabil dan konstan, dengan nilai yang berkisar antara 7,05-7,1. Pada akuarium

dengan konsentrasi bahan toksik 0,4 ppm ini, baik dalam jangka waktu pemaparan 48 jam

maupun 96 tidak menunjukkan adanya kematian pada ikan. Hal tersebut dapat disebabkan

oleh adanya aerasi yang membantu menstabilkan lingkungan melalui difusi maupun

penguapan bahan toksik dari lingkungan perairan ke atmosfer. Berdasarkan hasil

pengukuran parameter kimia yang diperoleh menunjukkan bahwa kualitas air dalam

kondisi yang baik untuk hidup ikan dengan kandungan bahan toksik yang relatif kecil dan

masih bisa ditolerir oleh ikan uji, sehingga tidak ada mortalitas yang terjadi.


penurunan kandungan DO pada pengamatan 48 jam, yakni dari 6,515 ppm menjadi 6,2

ppm kemudian meningkat kembali pada pengamatan 96 jam menjadi 6,48 ppm. Mengacu

pada pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan kandungan

oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya, dengan demikian dapat diartikan bahwa pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik sebesar 0,6 ppm, kandungan DO –

nya masih berada pada rentang optimal. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi

transfluthrin 0,6 ppm ini mengalami peningkatan dari hari ke hari, demikian pula pada

kadar alkalinitas. Dimana, nilai keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk

pertumbuhan ikan. Nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,6 ppm ini

juga tampak stabil dan konstan, dengan nilai 7,1. Pada konsentrasi ini, baik dalam jangka

waktu pemaparan 48 jam maupun 96 tidak menunjukkan adanya kematian pada ikan. Hal

tersebut dapat disebabkan oleh adanya aerasi yang membantu menstabilkan lingkungan


18/38

melalui difusi maupun penguapan bahan toksik dari lingkungan perairan ke atmosfer.

Berdasarkan hasil pengukuran parameter kimia yang diperoleh menunjukkan bahwa

kualitas air dalam kondisi yang baik untuk hidup ikan dengan kandungan bahan toksik

yang relatif kecil dan masih bisa ditolerir oleh ikan uji, sehingga tidak ada mortalitas yang

terjadi.


penurunan kandungan DO pada pengamatan 48 jam, yakni dari 6,5 ppm menjadi 5,48 ppm

kemudian meningkat kembali pada pengamatan 96 jam menjadi 6,3 ppm. Pada akuarium

dengan konsentrasi bahan toksik sebesar 0,8 ppm ini, sesuai dengan pustaka kandungan

DO – nya masih berada pada rentang optimal. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi




juga tampak stabil dan konstan, dengan nilai berkisar antara 7,05 - 7,1. Pada konsentrasi

ini, baik dalam jangka waktu pemaparan 48 jam maupun 96 tidak menunjukkan adanya

kematian pada ikan. Hal tersebut dapat disebabkan oleh adanya aerasi yang membantu

menstabilkan lingkungan melalui difusi maupun penguapan bahan toksik dari lingkungan

perairan ke atmosfer. Berdasarkan hasil pengukuran parameter kimia yang diperoleh

menunjukkan bahwa kualitas air dalam kondisi yang baik untuk hidup ikan dengan

kandungan bahan toksik yang relatif kecil dan masih bisa ditolerir oleh ikan uji, sehingga

tidak ada mortalitas yang terjadi.

Berdasarkan grafik 6. yakni pada konsentrasi insektisida 1 ppm mengalami

penurunan kandungan DO pada pengamatan 48 jam, yakni dari 6,67 ppm menjadi 5,78

ppm kemudian meningkat kembali pada pengamatan 96 jam menjadi 5,825 ppm. Pada

akuarium dengan konsentrasi bahan toksik sebesar 1 ppm ini, sesuai dengan pustakakandungan DO – nya masih berada pada rentang optimal. Kandungan CO2 bebas pada

konsentrasi transfluthrin 1 ppm ini mengalami peningkatan dari hari ke hari, demikian pula

pada kadar alkalinitas. Dimana, nilai keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk

pertumbuhan ikan. Nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 1 ppm ini

juga tampak stabil dan konstan, dengan nilai berkisar antara 7,05 - 7,1. Pada konsentrasi

ini, baik dalam jangka waktu pemaparan 48 jam maupun 96 tidak menunjukkan adanya

kematian pada ikan. Hal tersebut dapat disebabkan oleh adanya aerasi yang membantu

menstabilkan lingkungan melalui difusi maupun penguapan bahan toksik dari lingkungan


19/38

perairan ke atmosfer. Berdasarkan hasil pengukuran parameter kimia yang diperoleh

menunjukkan bahwa kualitas air dalam kondisi yang baik untuk hidup ikan dengan

kandungan bahan toksik yang relatif kecil dan masih bisa ditolerir oleh ikan uji, sehingga

tidak ada mortalitas yang terjadi.

Grafik 7. Mortalitas vs konsentrasi (aerasi)

Berdasarkan hasil praktikum yang dilakukan tidk ditemukan kematian pada ikan

uji baik pada konsentrasi bahan toksik 0 ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm

maupun 1 ppm. Hal ini dapat berarti bahwa konsentrasi bahan toksik tersebut masih terlalu

kecil atau dengan kata lain masih dapat ditolerir oleh ikan nila uji. Hal tersebut juga

mungkin terjadi karena pengaruh aerasi yang membantu menstabilkan lingkungan melalui

difusi maupun penguapan bahan toksik dari lingkungan perairan ke atmosfer. Menurut

Hindarti (1997), adanya konsentrasi pencemar yang rendah belum dapat mematikan ikan,

atau hanya bersifat kronis karena hanya mempengaruhi fungsi fisiologis dan tingkah laku.

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1

0 jam 0 0 0 0 0 0

24 jam 0 0 0 0 0 0

48 jam 0 0 0 0 0 0

72 jam 0 0 0 0 0 0

96 jam 0 0 0 0 0 0

00,10,20,30,40,50,60,70,80,9

1

A x i s T i t l e

Mortalitas VS Konsentrasi (Aerasi)


20/38

Grafik 8. Mortalitas

Berdasarkan hasil grafik mortalitas tersebut diperoleh persamaan regresi y=0.

Nilai y pada persamaan tersebut merupakan variabel terikat yang menunjukkan angka

kematian hewan uji dalam jangka waktu 96 jam. variabel y bernilai 0 (nol) sebab pada

percobaan tersebut tidak terdapat ikan uji yang mengalami kematian. Pada uji toksisitas

insektisida dengan perlakuan aerasi ini tidak diperoleh nilai LC50-96 jam transfluthrin

terhadap ikan nila (Oreochromis niloticus). Hal itu disebabkan dalam kurun waktu 96 jam

pemaparan senyawa transfluthrin, tidak terdapat ikan nila yang mati. R 2 merupakan

koefisien determinasi yang menunjukkan seberapa besar variable x mempengaruhi variable

y. Dengan kondisi demikian, dapat diartikan bahwa variable x tidak mempengaruhi

variable y.

Sigit dan Hadi (2006) menjelaskan bahwa, berdasarkan toksisitasnya insektisida

dapat digolongkan menjadi golongan IA (sangat berbahaya sekali), IB (sangat berbahaya),

II (berbahaya), III (cukup berbahaya), dan golongan IIIU (tidak berbahaya jika digunakan

secara normal). Kemudian Becker et al. (2010) menambahkan, transfluthrin termasuk

insektisida golongan pyrethroids yang memiliki tingkat toksisitas IIIU. Denagan demikian

dapat diartikan bahwa senyawa trasfluthrin tergolong sebagai senyawa yang tidak

berbahaya selama penggunaannya dilakukan secara normal atau dengan kata lain tidak

berlebihan. Oleh karena itulah, pada uji toksisitas insektisida (transfluthrin) selama 96 jam

tidak terdapat ikan uji yang mati dan tidak diperoleh nilai LC50-96 jam.

y = 0

R² = #N/A

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

0 24 48 72 96

MORTALITAS

MORTALITAS

Linear

(MORTALITAS)


21/38

B. Non Aerasi

Tabel 5. Hasil pengamatan parameter fisik dan biologi (non aerasi).

Jam

Konsentrasi

(ppm)

Parameter Fisik Parameter Biologi

Suhu (0) GO ER

0

0 27,5 117 5

0,2 27,5 110,5 5

0,4 27,5 119,5 5

0,6 27,5 134,5 5

0,8 27,5 100,5 4,5

1,0 27,5 137,5 4,5

24

0 27 147 5

0,2 26,25 164,5 5

0,4 26 168 4,50,6 26,5 183,5 4

0,8 27 189,5 3,5

1,0 26,75 207 3,5

48

0 26,5 158 4,5

0,2 26,5 166,5 4,5

0,4 26,5 165 4

0,6 26,5 172 4

0,8 26,5 168 3,5

1,0 26,5 175 3,5

72

0 26,5 156,5 3,5

0,2 26 88 2

0,4 13 0 0

0,6 13 0 0

0,8 13,5 0 0

1,0 13 0 0

96

0 13 151,5 4

0,2 13 71,5 2,5

0,4 0 0 0

0,6 0 0 0

0,8 0 0 0

1,0 0 0 0

Berdasarkan hasil pengamatan parameter fisik pada akuarium yang diberi

perlakuan tanpa aerasi yang teramati baik pada jam ke-0, ke-24, hingga ke-48 tidak

tampak adanya perbedaan yang signifikan pada masing-masing konsentrasi bahan toksik,

dimana suhu airnya berkisar antara 26oC – 27,5oC. Pada pengamatan 0 jam hingga 48 jam,

suhu air masih berada dalam kisaran normal untuk pertumbuhan ikan nila, sesuai dengan


22/38

pernyataan Arie (1999) bahwa, suhu optimal ikan Nila (Oreochromis niloticus) berkisar

antara 25oC – 30oC. Pada pengamatan 72 jam, kondisi lingkungan perairan mulai buruk,

dimana dalam jangka waktu paparan 72 jam - 96 jam tersebut nilai suhunya pada masing-

masing konsentrasi mengalami penurunan yang signifikan, dimana nilai suhunya mencapai

13oC. Pada suhu di bawah 14oC atau lebih dari 38oC dapat menyebabkan pertumbuhan

ikan nila terganggu. Sedangkan suhu mematikan berada pada 6oC dan 42

oC. Berdasarkan

tabel tampak bahwa nilai suhu air tersebut semakin menurun seiring dengan meningkatnya

konsentrasi senyawa toksik.

Keberadaan insektisida dalam suatu badan air dapat merusak insang dan organ

pernafasan ikan Kerusakan insang dan organ pernafasan ikan ini menyebabkan toleransi

ikan terhadap badan air yang kandungan oksigen terlarutnya rendah menjadi menurun.

Berkurangnya kemampuan insang dalam mengikat oksigen tampak pada meningkatnya

frekuensi gerakan operkulum pada ikan. Gerakan Operkulum merupakan gerakan

operkulum ikan yang diukur selama 1 menit. Berdasarkan hasil pengamatan dari jam ke-0,

ke-24, ke-48, ke-72, hingga ke-96 jam frekuensi gerakan operkulum ikan uji pada

perlakuan tanpa aerasi berkisar 71,5 hingga 189,5 kali/menit. Frekuensi gerakan

operkulum ikan uji pada perlakuan tanpa aerasi ini terlihat sangat fluktuatif. Pada

akuarium kontrol dengan konsentrasi transfluthrin 0 ppm, saat pengamatan jam ke 0

diperoleh data gerakan operculum ikan uji mencapai 117 kali/menit dan cenderung

meningkat hingga jam ke 48 yaitu menjadi 158 kali/menit, kemudian mengalami

penurunan menjadi 151,5 kali/menit. Pada konsentrasi 0,2 ppm frekuensi gerakan

operculum ikan nila tercatat 110,5 kali/menit saat jam ke 0 dan semakin meningkat hingga

jam ke 48 yaitu menjadi 166,5 kali/menit, kemudian mengalami penurunan menjadi 71,5

kali/menit. Pada konsentrasi 0,4 ppm diperoleh frekuensi gerakan operculum yang

cenderung meningkat, dengan kisaran 119,5-165 kali/menit. Pada ikan nila dalam air ujidengan konsentrasi tranfluthrin 0,6 ppm, 0,8 ppm dan 1 ppm, nilai gerakan operkulumnya

cenderung fluktuatif dimana pada jam ke 0 hingga 24 mengalami peningkatan kemudian

menurun hingga pengamatan 48 jam. Perubahan lingkungan dapat mengakibatkan

perubahan tingkah laku ikan nila berupa, kehilangan orientasi lingkungan, fisiologi

(pertumbuhan dan reproduksi, dan biokimia serta terganggunya fungsi jaringan. Ikan nila

terlihat hypersensitif dan mengalami gangguan orientasi terhadap lingkungan dengan

berenang kedasar dan permukaan air tidak teratur, frekuensi gerakan operkulum semakin

meningkat dan kadang gerakannya tidak beraturan. Kondisi ini diduga bahwa ikan


23/38

berusaha untuk mendapatkan oksigen dengan memperbanyak volume air yang melewati

insang (Zahri, 2008). Mekanisme meningkatnya frekuensi gerakan operkulum ikan

tersebut diawali dengan terhalangnya poses difusi oksigen ke dalam insang mengakibatkan

ikan kekurangan oksigen. Sebagai respon, ikan akan meningkatkan frekuensi gerakan

operkulum untuk memenuhi kekurangan oksigen tersebut. Peningkatan frekuensi gerakan

operkulum pada ikan dalam waktu lama dapat menyebabkan kerusakan insang yang

berdampak pada kematian (Heat, 1995) dan melemahkan otot yang menggerakkan

operkulum.

Parameter biologi lainnya yang diamati dalam uji toksisitas ini adalah escape

reflex. Escape reflex merupakan gerakan yang diamati setelah mengganggu ikan dengan

cara mengetuk bagian luar akuarium guna melihat kecekatan gerakan ikan dalam

menanggapi rangsang. Penilaian dilakukan berdasarkan pengamatan secara visual dengan

skala 1-5. Semakin tinggi nilai escape reflex berarti ikan tersebut berada dalam kondisi

yang sehat. Berdasarkan data pengamatan tersebut tampak bahwa escape reflect ikan nila

mengalami fluktuasi dengan kecenderungan yang semakin menurun seiring dengan

bertambah lamanya jangka waktu paparan bahan pencemar. Dari tabel diatas dapat

diketahui escape reflect ikan nila pada masing-masing konsentrasi mengalami penurunan

seiring dengan bertambahnya waktu. Penurunan tanggapan ikan nila terhadap rangsangan

tersebut dapat terjadi karena lamanya waktu paparan bahan toksik (transfluthrin) terhadap

ikan uji, yakni ikan nila (Oreochromis niloticus).

Tabel 6. Hasil pengamatan parameter kimia (non aerasi).

JamKonsentrasi

(ppm)

Parameter Kimia

pHDO

(ppm)

CO2(ppm)

Alkalinitas

(ppm)

0

0 7,05 7,7 11,8 1660,2 7,05 7,7 10,3 172

0,4 7,1 8 7,8 170

0,6 7,1 8,6 8 172

0,8 7,1 7,7 8,5 176

1 7,1 7,4 8,9 177

48

0 7,1 2 13,6 164

0,2 7,1 2 11 173

0,4 7,1 2,8 11,7 173

0,6 7,1 1,85 13,4 176

0,8 7,1 2,1 12,1 179


24/38

1 7,1 1,7 10,5 181

96

0 7,05 1,95 11 77

0,2 3,5 1,75 0 0

0,4 0 0 0 0

0,6 0 0 0 0

0,8 0 0 0 0

1 0 0 0 0

Parameter kimia yang diamati pada praktikum uji toksisitas insektisida terhadap

ikan nila (Oreochromis niloticus) ini meliputi pH, kandungan O2 terlarut, CO2 bebas, serta

alkalinitas. Menurut Purba (2006), pH merupakan parameter keasaman dari suatu larutan.

Derajat keasaman atau pH merupakan gambaran jumlah atau aktivitas ion hidrogen dalam

perairan. Secara umum nilai pH menggambarkan seberapa besar tingkat keasaman atau

kebasaan suatu perairan. Perairan dengan nilai pH = 7 adalah netral, pH < 7 dikatakan

kondisi perairan bersifat asam, sedangkan pH > 7 dikatakan kondisi perairan bersifat basa

(Effendi, 1998). Berdasarkan hasil pengamatan pH selama 96 jam baik pada konsentrasi 0

ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm hingga 1 ppm menunjukan nilai pH yang kurang

stabil, dimana pada pengamatan 96 jam nilai pH mulai menyimpang, dimana nilainya

menunjukkan tingkat keasaman yang tinggi, yakni 3,5. Akan tetapi, pada pengamatan 0

jam hingga 48 jam kondisi pH relatif stabil, yakni berada dalam kisaran 7,05 – 7,1.

Merujuk pada pernyataan Popma (1999), bahwa pH air optimum untuk pemeliharaan ikan

nila adalah berkisar antara 6-9. Dengan demikian, dapat dikatakan bahwa kondisi akuarium

berada dalam kondisi yang kurang baik atau normal

Oksigen terlarut merupakan jumlah oksigen dalam mg yang terdapat dalam satu

liter air (ppt). Oksigen terlarut juga dapat diartikan sebagai kandungan gas Oksigen yang

terlarut dalam air. Oksigen terlarut dalam perairan merupakan faktor penting sebagai

pengatur metabolisme tubuh organisme untuk tumbuh dan berkembang biak. Sumber

Oksigen terlarut dalam air berasal dari difusi Oksigen yang terdapat di atmosfer, arus atau

aliran air melalui air hujan serta aktivitas fotosintesis oleh tumbuhan air dan fitoplankton

(Novotny and Olem, 1994). Akan tetapi, dalam praktikum ini kandungan DO air hanya

bersumber dari difusi oksigen atmosfer serta aerator. Nilai DO dalam jangka waktu 96 jam,

pada konsentrasi 0 ppm mengalami penurunan yang sangat signifikan dari 7,7 ppm, 2 ppm

hingga menjadi 1,95 ppm. Pada konsentrasi bahan toksik (transfluthrin) 0,2 ppm, 0,4 ppm,

0,6 ppm, 0,8 ppm dan 1 ppm juga mengalami penurunan yang sangat signifikan dengan

rentang perubahan yang sangat jauh yakni dengan nilai tertinggi 8,6 ppm menjadi 1,7 ppm.


25/38

Perubahan kandungan DO tersebut sangat besar dikarenakan pada akuarium uji tidak

diberikan pelakuan aerasi. Menurut Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan

dengan kandungan oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya. Dengan

demikian kondisi air akuarium uji dengan perlakuan aerasi ini cukup baik pada

pengamatan 0 jam, namun pada jangka waktu pemaparan bahan toksik 48 jam tidak dapat

dikatakan baik, sebab kandungan DO airnya sangat rendah yakni berkisar antara 2,8 ppm

– 1,7 ppm, dimana nilai tersebut masih kurang dari 3 ppm. Rendahnya nilai kandungan DO

tersebut diakibatkan adanya konsumsi oksigen oleh ikan uji, dimana adanya konsumsi

oksigen menurunkan kandungan DO sementara suplai O2 terlarut dalam akuarium uji tanpa

aerasi, yang memungkinkan hanya bersumber dari difusi O2 atmosfer ke badan air. Akan

tetapi pasokan O2 yang berasal dari atmosfer cenderung sedikit, sehingga dalam hal ini tak

mampu mencukupi kebutuhan O2 pada ikan.

Karbondioksida bebas merupakan istilah untuk menunjukkan CO2 yang terlarut di

dalam air. Menurut Boyd (1982), CO2 bebas di perairan berasal dari hasil proses difusi

karbondioksida dari udara dan proses respirasi organisme akuatik. Konsentrasi CO2 bebas

12 ppm dapat menyebabkan tekanan pada ikan, karena akan menghambat pernafasan dan

pertukaran gas. Kandungan CO2 dalam air yang aman tidak boleh melebihi 25 mg/l,

sedangkan konsentrasi CO2 lebih dari 100 mg/l akan menyebabkan semua organisme

akuatik mengalami kematian (Wardoyo, 1989). Berdasarkan tabel tersebut tampak bahwa

nilai CO2 bebas pada pengamatan 0 jam berkisar antara 7,8 – 11,8 ppm dan pada uji

toksisitas insektisida terhadap ikan nila tanpa aerasi ini, kandungan CO2 mengalami

fluktuasi dengan kecenderungan semakin menigkat. Peningkatan CO2 bebas tersebut dapat

terjadi karena adanya akumulasi sisa hasil respirasi ikan uji, terlebih lagi dalam uji ini

dilakukan tanpa perlakuan aerasi. Berdasarkan nilai kandungan CO2 yang diperoleh pada

akuarium uji dengan perlakuan non aerasi ini masih dapat dikategorikan layak dan baikuntuk pertumbuhan dan perkembangan ikan. Di mana menurut Odum (1993), kandungan

CO2 bebas yang optimal bagi biota perairan yaitu berkisar antara 6-20 ppm.

Alkalinitas merupakan suatu parameter kimia perairan yang menunjukkan jumlah

ion karbonat dan bikarbonat yang mengikat logam golongan alkali tanah pada perairan

tawar. Alkalinitas juga didefinisikan sebagai kapasitas penyangga (buffer capacity) yang

menetralkan perubahan pH perairan yang sering terjadi (Effendi,2003). Pembentuk

alkalnitas yang utama adalah bikarbonat, karbonat dan hidroksida (Irianto, 2005). Pada

pengukuran alkalinitas diperoleh nilai yang cenderung mengalami kenaikan dalam jangka


26/38

waktu pemaparan bahan toksik 48 jam, namun pada pengamatan 96 jam menurun drastis

mencapai angka 77 ppm dari sebelumnya yang nilainya mencapai >150 ppm. Akan tetapi

kisaran alkalinitas pada uji toksisitas tanpa aerasi ini masih berada dalam kondisi optimal,

sebab menurut Odum (1993), kisaran optimum alkalinitas bagi biota perairan adalah 50-

200 ppm. Pengamatan parameter kimia dilakukan untuk memastikan bahwa mortalitas

yang terjadi disebabkan oleh bahan kimia toksik yang diberikan, bukan akibat dari kualitas

kimia air. Alkalinitas tidak berhubungan langsung dengan CO2, tetapi dengan muatan yang

ada dalam molekul CO2 tersebut. Semakin tinggi CO2 nya, maka alkalinitasnya semakin

tinggi (Mulyanto, 2011).

Tabel 7. Hasil pengamatan parameter mortalitas (non aerasi)

Konsentrasi

(ppm)Aerasi

Kematian (Ekor)

0 jam 24 jam 48 jam 72 jam 96 jam

0

Non-Aerasi

0 0 0 1 0,5

0,2 0 0 0 5 0

0,4 0 0 0 10 0

0,6 0 0 0 10 0

0,8 0 0 0,5 9,5 0

1 0 0 0 10 0

Tabel tersebut menunjukkan rata-rata angka mortalitas (kematian) ikan uji dari

dua kali pengulangan setiap konsentrasi bahan toksikan dengan perlakuan non aerasi.

Terlihat bahwa saat pengamatan 0 – 24 jam pada masing-masing konsentrasi bahan toksik,

ikan uji belum ada yang mengalami kematian. Hal ini menunjukkan bahwa pada selang

waktu tersebut senyawa transfluthrin belum bersifat toksik, artinya belum memberikan

efek merugikan. Hal ini disebabkan ikan uji baru saja dimasukan pada air uji sehingga

jumlah bahan toksik yang mengalami kontak langsung dengan ikan uji belum banyak

terakumulasi dalam tubuh ikan uji. Namum, pada pengamatan 48 jam terjadi kematian ikan

uji sebanyak 1 ekor yakni pada konsentrasi bahan toksik 0,8 ppm dari dua kali

pengulangan untuk perlakuan yang sama. Ikan uji mulai menunjukkan angka mortalitas

yang besar saat pengamatan 72 jam. Pada konsentrasi bahan toksik 0 ppm ada 1 ekor ikan

uji yang mati, hal ini bukan disebabkan oleh faktor bahan toksik melainkan karena

buruknya kualitas air uji. Pada konsentrasi senyawa toksik transfluthrin 0,2 ppm ada 5 ekor

ikan yang mati, sedangkan pada konsentrasi bahan toksik 0,4 ppm, 0,6 ppm dan 1 ppm ada

10 ekor ikan yang terkena efek letal. Kemudian pada konsentrasi bahan toksik 0,8 ppm


27/38

terlihat angka mortalitas senilai 9,5. Berdasarkan hasil yang diperoleh terlihat bahwa efek

toksisitas akut bahan kimia toksik transfluthrin terhadap ikan uji yaitu nila terjadi pada

selang waktu 72 jam. Tingginya mortalitas pada jangka waktu pemaparan 72 jam dengan

perlakuan tanpa aerasi ini juga dipengaruhi oleh buruknya kualitas air. Berdasarkan tabel

tersebut terlihat pula bahwa semakin tinggi konsentrasi bahan toksikan angka mortalitas

cenderung meningkat.

Grafik 9. Parameter kimia 0 ppm (non aerasi)

Grafik 10. Parameter kimia 0,2 ppm (non aerasi)

0 48 96

DO 7,7 2 1,95

CO2 11,8 13,6 11


pH 7,05 7,1 7,05

Mortalitas 0 0 0,5

020406080

100

120140160180


Parameter Kimia 0 ppm (non aerasi)

0 48 96

DO 7,7 2 1,75

CO2 10,3 11 0


pH 7,05 7,1 3,5

Mortalitas 0 0 0

020406080

100120140160180200


Parameter Kimia 0,2 ppm (non aerasi)


28/38



0 48 96

DO 8 2,8 0

CO2 7,8 11,7 0


pH 7,1 7,1 0

Mortalitas 0 0 0

020406080

100120140160180200



0 48 96

DO 8,6 1,85 0

CO2 8 13,4 0


pH 7,1 7,1 0

Mortalitas 0 0 0

020406080

100120140160180

200




29/38


Grafik 14. Parameter kimia 1 ppm (non aerasi)

Grafik 9 hingga 14 tersebut menjelaskan menjelaskan tentang nilai parameter

kimia yang meliputi DO, CO2 bebas, alkalinitas, serta pH pada konsentrasi bahan toksik 0 ppm, 0,2 ppm, 0,4 ppm, 0,6 ppm, 0,8 ppm serta 1 ppm terhadap waktu paparan bahan

0 48 96

DO 7,7 2,1 0

CO2 8,5 12,1 0Alkalinitas 176 179 0

pH 7,1 7,1 0

Mortalitas 0 0,5 0

020406080

100120140160180200



0 48 96

DO 7,4 1,7 0CO2 8,9 10,5 0


pH 7,1 7,1 0

Mortalitas 0 0 0

020406080

100120140160180200


Parameter Kimia 1 ppm (non aerasi)


30/38

toksik (transfluthrin), 0 jam, 48 jam dan 96 jam dengan perlakuan non aerasi. Berdasarkan

grafik 9. yakni pada konsentrasi transfluthrin 0 ppm, tampak bahwa nilai kandungan

oksigen terlarut dari hari ke hari mengalami penurunan yang sangat signifikan dari yang

semula 7,7 ppm menjadi 1,95 ppm pada hari keempat (96 jam). Penurunan tersebut dapat

disebabkan oleh adanya konsumsi oksigen dari ikan uji. Penurunan yang terjadi sangat

signifikan sebab pada uji toksisitas ini dilakukan tanpa aerasi, sehingga dalam akuarium uji

tidak terdapat suplai oksigen tetap, dimana oksigen terlarut hanya bersumber dari difusi

oksigen di atmosfer ke dalam badan air. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi 0 ppm

yang cenderung fluktuatif, di mana pada pengamatan 48 jam meningkat dari 11,8 ppm

menjadi 13,6 ppm, kemudian mengalami penurunan menjadi 11 ppm pada pengamatan 96

jam. Meskipun demikian, kandunagn CO2 bebas dalam akuarium uji tersebut masih dalam

kisaran normal, seperti yang diungkapkan oleh Odum (1993) bahwa kandungan CO2 bebas

yang optimal bagi biota perairan yaitu berkisar antara 6-20 ppm. Pada akuarium kontrol ini

tampak nilai alkalinitasnya semakin menurun dari jangka paparan 0-96 jam, namun masih

dalam batas yang aman bagi ikan uji. Nilai pH pada konsentrasi 0 ppm selama pemaparan

senyawa toksik, transfluthrin relatif konstan dan stabil, yakni sebesar 7,05 - 7,1. Sesuai

dengan pernyataan Lin (1995) yaitu kisaran pH yang optimal bagi kelangsungan hidup dan

pertumbuhan ikan nila adalah 6.5 – 8. Dengan demikian, pada akuarium dengan

konsentrasi transfluthrin 0 ppm dapat dikatakan dalam kondisi yang kurang baik sebagai

tempat hidup ikan sebab kandungan DO pada akuarium kontrol ini sangat sedikit sehingga

kurang mampu menunjang metabolisme ikan uji. Hal tersebut tampak dari adanya

kematian pada ikan uji pada pengamatan 96 jam.


penurunan kandungan DO yang sangat signifikan pada pengamatan 48 jam, yakni dari 7,7

ppm menjadi 2 ppm dan semakin menurun pada pengamatan 96 jam menjadi 1,75 ppm.Mengacu pada pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan

kandungan oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya, dengan demikian

akuarium uji pada konsentrasi bahan toksik sebesar 0,2 ppm, tidak layak sebagai habitat

ikan nila khususnya mulai pada jangka waktu paparan bahan toksik 48 jam. Kandungan

CO2 bebas pada konsentrasi trasfluthrin 0,2 ppm ini cenderung meningkat, dari 10,3 ppm

menjadi 11 ppm. Meskipun demikian, kandunagn CO2 bebas dalam akuarium uji tersebut

masih dalam kisaran normal, seperti yang diungkapkan oleh Odum (1993) bahwa

kandungan CO2 bebas yang optimal bagi biota perairan yaitu berkisar antara 6-20 ppm.


31/38

Kandungan alkalinitasnya pun cenderung stabil yakni bekisar antara 172-173 ppm. Namun

nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,2 ppm ini tampak kurang stabil,

dimana nilainya mengalami penurunan yang signifikan pada waktu pemaparan bahan

toksik 96 jam, yakni mencapai 3,5.


penurunan kandungan DO pada dari 8 ppm menjadi 2,8 ppm. Mengacu pada pernyataan

Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan kandungan oksigen

minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya, dengan demikian akuarium uji pada

konsentrasi bahan toksik sebesar 0,4 ppm dapat dikatakan tidak layak berdasarkan

kandungan DO – nya khususnya mulai pada jangka waktu paparan bahan toksik 48 jam.

Kemudian kandungan CO2 bebas pada konsentrasi transfluthrin 0,4 ppm ini mengalami

peningkatan dari hari ke hari, demikian pula pada kadar alkalinitas. Dimana, nilai

keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk pertumbuhan ikan, yakni 8 ppm, 13,4

ppm untuk CO2 dan 170 ppm dan 173 ppm untuk kandungan alkalinitas. Sementara itu,

nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,4 ppm ini juga tampak stabil

dan konstan, dengan nilai 7,1.


penurunan kandungan DO pada pengamatan 48 jam, yakni dari 8,6 ppm menjadi 1,85 ppm.

Mengacu pada pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan perairan dengan

kandungan oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya, dengan demikian

dapat diartikan bahwa pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik sebesar 0,6 ppm,

kandungan DO – nya tidak berada pada rentang optimal khususnya dimulai dari

pengamatan 48 jam hingga 96 jam. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi transfluthrin

0,6 ppm ini mengalami peningkatan dari hari ke hari, demikian pula pada kadar alkalinitas.

Dimana, nilai keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk pertumbuhan ikan. Nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 0,6 ppm ini juga tampak stabil

dan konstan, dengan nilai 7,1.


penurunan kandungan DO yang signifikan pada pengamatan 48 jam, yakni dari 7,4 ppm

menjadi 1,7 ppm. Mengacu pada pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila membutuhkan

perairan dengan kandungan oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan optimalnya,

dengan demikian dapat diartikan bahwa pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik

sebesar 0,8 ppm, kandungan DO – nya tidak berada pada rentang optimal khususnya


32/38

dimulai dari pengamatan 48 jam hingga 96 jam. Kandungan CO2 bebas pada konsentrasi




juga tampak stabil dan konstan, dengan nilai 7,1.

Berdasarkan grafik 6. yakni pada konsentrasi insektisida 1 ppm mengalami

penurunan kandungan DO yang sangat drastis pada pengamatan 48 jam, yakni dari 7,4

ppm menjadi 1,7 ppm. Mengacu pada pernyataan Kordi dan Ghufran (2010), nila

membutuhkan perairan dengan kandungan oksigen minimal 3 ppm untuk pertumbuhan

optimalnya, dengan demikian dapat diartikan bahwa pada akuarium dengan konsentrasi

bahan toksik sebesar 1 ppm, kandungan DO – nya tidak berada pada rentang optimal

khususnya dimulai dari pengamatan 48 jam hingga 96 jam. Kandungan CO2 bebas pada

konsentrasi transfluthrin 1 ppm ini mengalami peningkatan dari hari ke hari, demikian pula

pada kadar alkalinitas. Dimana, nilai keduanya masih berada pada kisaran optimum untuk

pertumbuhan ikan. Nilai pH pada akuarium dengan konsentrasi bahan toksik 1 ppm ini

juga tampak stabil dan konstan, dengan nilai 7,1.

Grafik 15. Mortalitas vs konsentrasi (non aerasi)

Grafik 15. menjelaskan hubungan antara kematian ikan uji dengan konsentrasi

bahan toksik selama 96 jam pengamatan. Berdasarkan grafik terlihat bahwa semakin tinggi

konsentrasi bahan toksik, angka mortalitas ikan uji cenderung meningkat. Berdasarkan

grafiktersebut tampak bahwa pada pengamatan 72 jam terjadi mortalitas yang tinggi pada

0 0,2 0,4 0,6 0,8 1

0 jam 0 0 0 0 0 0

24 jam 0 0 0 0 0 0

48 jam 0 0 0 0 0,5 0

72 jam 1 5 10 10 9,5 10

96 jam 0,5 0 0 0 0 0

02468

1012

A x i s T i t l e

Mortalitas VS Konsentrasi Non Aerasi


33/38

masing-masing konsentrasi. Pada konsentrasi bahan toksik 0 ppm terdapat saat

pengamatan 72 jam frekuensi mortalitasnya 1 dan saat pengamatan 96 jam frekuensi

mortalitasnya 0,5. Padahal akuarium uji tersebut tidak ada bahan toksik yang dimasukkan.

Hal ini menunjukkan mortalitas yang terjadi dipengaruhi oleh semakin menurunnya

kualitas air setelah beberapa hari pemeliharaan ikan tanpa pakan dan tanpa aerasi. Pada

konsentrasi bahan kimia toksik 0,2 ppm, frekuensi mortalitasnya 5 pada saat pengamatan

72 jam. Kemudian, di waktu yang sama, pada konsentrasi bahan toksik 0,4 ppm dan 0,6

ppm frekuensi mortalitasnya 10. Sedangkan pada konsentrasi bahan kimia toksik 0,8 ppm,

saat pengamatan 48 jam frekuensi mortalitasnya 0,5 dan saat pengamatan 72 jam frekuensi

mortalitasnya 9,5. Pada konsentrasi bahan kimia toksik 1 ppm, yakni pada saat pengamatan

72 jam frekuensi mortalitasnya 10. Besarnya nilai frekuensi mortalitas pada saat

pengamatan 72 jam menunjukkan bahwa pada waktu tersebut mulai timbul efek toksisitas

akut ikan nila terhadap bahan kimia toksik transfluthrin. Hal ini terjadi karena semakin

lama waktu pemaparan dengan toksikan maka pengaruhnya terhadap ikan semakin besar,

jika ikan tidak mampu beradaptasi maka ikan mati. Sedangkan, semakin besar konsentrasi

bahan kimia toksik maka semakin kuat pula efek toksik yang dapat mengganggu

kelangsungan hidup ikan uji. Oleh karena itu semakin tinggi konsentrasi bahan toksik nilai

mortalitas cenderung mengalami peningkatan.

Grafik 16. LC50-72 jam (non aerasi)

y = 2,066x - 3,416

R² = 0,619

-2

-1

0

1

2

3

4

5

6

7

8

0 24 48 72

Mortalitas Non Aerasi 72 Jam

Mortalitas Non

Aerasi 72 Jam

Linear (MortalitasNon Aerasi 72 Jam)


34/38

Grafik 17. LC50-96 jam (non aerasi)

Berdasarkan Grafik LC50-72 jam pada perlakuan non aerasi diperoleh hasil analisis

regresi linier yaitu y = 2,066x + 3,416, dimana y merupakan variabel terikat yang

menunjukkan mortalitas hewan uji pada 72 jam. Nilai a merupakan titik potong sumbu Y

nilainya sebesar 3,416 dan b merupakan kemiringan garis regresi yang nilainya sebesar

2,066. Kemudian x merupakan konsentrasi transfluthrin. Berdasarkan hasil pengamatan,

tidak didapatkan LC50-72 jam transfluthrin ikan nila tanpa aerasi sebesar 3,943 ppm. Dari

grafik LC50-72 jam, tampak nilai R 2 sebesar 61,9%. Nilai R 2 tersebut, merupakan koefisien

determinasi yang menunjukkan seberapa besar variable x mempengaruhi variable y. Jadi,

diketahui bahwa konsentrasi mempengaruhi mortalitas sebesar 61,9% dan sisanya

dipengaruhi oleh faktor lain, seperti misalnya kualitas air dan lain sebagainya.

Berdasarkan Grafik LC50-96 jam pada perlakuan non aerasi diperoleh hasil analisis

regresi linier yaitu y = 0,716x + 0,716, dimana y merupakan variabel terikat yang

menunjukkan mortalitas hewan uji pada 96 jam. Nilai a merupakan titik potong sumbu Ynilainya sebesar 0,716 dan b merupakan kemiringan garis regresi yang nilainya sebesar

0,716. Kemudian x merupakan konsentrasi transfluthrin. Berdasarkan hasil pengamatan,

tidak didapatkan LC50-96 jam transfluthrin ikan nila tanpa aerasi sebesar 29,297 ppm. Nilai

tersebut jauh berbeda dengan nilai yang dikemukakan oleh Wiyono (2006), bahwa LC50-96

jam transfluthrin nilainya adalah sebesar 0.486 mg/l dengan batas atas sebesar 0.753mg/l

dan batas bawah sebesar 0.3118 mg/l. Dari grafik LC50-96 jam, tampak nilai R 2 sebesar

14%. Nilai R 2 tersebut, merupakan koefisien determinasi yang menunjukkan seberapa

besar variable x mempengaruhi variable y. Jadi, diketahui bahwa konsentrasi

y = 0,716x - 0,716R² = 0,140

0

1

2

3

4

5

6

7

8

0 24 48 72 96

Mortalitas Non Aerasi 96 jam

Mortalitas Non

Aerasi

Linear (Mortalitas

Non Aerasi)


35/38

mempengaruhi mortalitas sebesar 14% dan lainnya dipengaruhi oleh faktor lain, seperti

misalnya kualitas air dan lain sebagainya.

Pada praktikum ini menggunakan senyawa toksik yaitu transfluthrin. Transfluthrin

merupakan jenis toksik yang berasal dari turunan phyrothroid. Transfluthrin dianggap

sebagai salah satu jenis insektisida pirethroid yang cepat bertindak dengan persistensi

rendah. Sigit dan Hadi (2006) menjelaskan bahwa, berdasarkan toksisitasnya insektisida

dapat digolongkan menjadi golongan IA (sangat berbahaya sekali), IB (sangat berbahaya),

II (berbahaya), III (cukup berbahaya), dan golongan IIIU (tidak berbahaya jika digunakan

secara normal). Kemudian Becker et al. (2010) menambahkan, transfluthrin termasuk

insektisida golongan pyrethroids yang memiliki tingkat toksisitas IIIU. Dengan demikian

dapat diartikan bahwa senyawa trasfluthrin tergolong sebagai senyawa yang tidak

berbahaya selama penggunaannya dilakukan secara normal atau dengan kata lain tidak

berlebihan. Oleh karena itulah, pada uji toksisitas insektisida (transfluthrin) dengan

perlakuan aerasi selama 96 jam tidak terdapat ikan uji yang mati dan tidak diperoleh nilai

LC50-96 jam. Sementara pada perlakuan non aerasi terdapat banyak individu yang

mengalami kematian. Hal tersebut menunjukan bahwa tidak sepenuhnya kematian atau

mortalitas hewan uji dipengaruhi oleh adanya bahan pencemar, transfluthrin.

KESIMPULAN

Daya racun (toksisitas) dapat diukur dengan menggunakan uji toksisitas terhadap bahan

pencemar. Penentuan toksisitas suatu bahan kimia dapat dilakukan dengan penghitungan

LC50 senyawa toksin tersebut terhadap organisme akuatik. Pemberian transfluthrin dengan

konsentrasi tertentu ke dalam air dapat menyebabkan efek merugikan bagi ikan nila yang

terpapar langsung dengan senyawa tersebut. Pada perlakuan aerasi tidak menimbulkan

mortalitas sementara dengan perlakuan non aerasi menyebabkan mortalitas yang tinggi

pada jangka waktu paparan 72 jam. Dari hasil pengamatan, diketahui nilai LC50-72 jam ikan

nila (Oreochromis niloticus) non aerasi adalah 3,943 , kemudian LC50-96 jam pada non

aerasi sebesar 29,297 sedangkan LC50-96 jam pada perlakuan aerasi tidak dapat ditentukan.

SARAN

1.

Pada grafik parameter kimia tidak menggambarkan mortalitas dengan jelas, sebab datayang tercantum hanya setengah, sehingga tidak dapat di bahas dengan baik hubungan


36/38

parameter kimia dengan mortalitas. Alangkah baiknya apabila pengukuran parameter

kimia juga dilakukan 24 jam sekali agar benar-benar tampak pengaruhnya.

2.

Alangkah baiknya apabila jenis bahan pencemar yang digunakan pada praktikum

selanjutnya diganti, sebab bahan pencemar yang berasal dari senyawa yang

terkandung pada pembasmi nyamuk tersebut menurut saya efeknya sangat kecil sekali

terhadap lingkungan perairan karena penggunaannya yang tidak bersinggungan

langsung dengan lingkungan perairan.

DAFTAR PUSTAKA

Arie, U.1999. Pembenihan dan Pembesaran Nila Gift. Penebar Swadaya. Jakarta. 56 hlm.

Becker, N. et al. 2010. Mosquitoes and Their Control. Springer. Heidelberg.

Boyd, C.E. 1990. Water Quality in Ponds for Aquaculture. Birmingham Publishing Co.

Birmingham.

Depkes. 1994. Pedoman Pengendalian Pencemaran Udara Ambien yang Berhubungan

Dengan Kesehatan Masyarakat. Departemen Kesehatan RI. Jakarta.

Effendi, H. 1998. Telaah Kualitas Air bagi Pengelolaan Sumberdaya dan Lingkungan

Perairan. Institut Pertaninan Bogor Press. Bogor

Effendi, H. 2003. Telaah Kualitas Air bagi Pengelolaan Sumber Daya dan Lingkungan

Perairan. Cetakan Kelima. Kanisius. Yogjakarta.

Hadi, U.K. dan Sigit. 2006. Hama Pemukiman Indonesia. Fakultas Kedokteran Hewan

IPB. Bogor.

Heat, A.G. 1987. Water Pollution and Fish Physiology. Department of Biology, Virginia

Politechnic Institute and State University. C&C Press, Inc. Florida. USA.

Hindarti, D. 1997. Metode uji toksisitas Dalam : Metode Analisis Air Laut, Sedimen dan

Biota. Buku 2. Pusat Penelitian dan Pengembangan Oseanologi:160-168.

Hynes, H. B. N. 1970. The Ecology of Running Water. Univ. Toronto Press. Canada.

Irianto, A. 2005. Patologi Ikan Teleostei. Cetakan Pertama. Gadjah Mada University Press.

Yogyakarta.

Kordi dan K. M. Ghufran. 2010. Budidaya Ikan Nila di Kolam Terpal. ANDI. Yogyakarta.

Kurniawan, D. 2008. Hand Book Regresi Linier. Forum Statistika. Jakarta.

Matsumura, F. 1975. Toxicology of Insecticides. Plenum Press. New York.


37/38

Mulyanto. 2011. Gas-Gas Terlarut dalam Air Laut. FPIK-UB. Malang.

Novotny, V. dan Olem H. 1994. Water Quality: Prevention, Identification, and

Management of Diffuse Pollution. van Nostrand Reinhold. New York.

Odum, E.P. 1993. Dasar-Dasar Ekologi. Edisi ketiga . Gajah Mada University Press.

Jogjakarta. H. 134-162.

Pemba, D.and Kadangwe, C. 2012. "Mosquito Control Aerosols' Efficacy Based on

Pyrethroids Constituents", Insecticides - Advances in Integrated Pest Management.

Shanghai: InTech, pp. 601-610.

Popma, T dan Michael M. 1999. Tilapia Life History and Biology. SRAC Publication No

283.

Purba, M. 2006. Kimia I. Erlangga. Jakarta.

Rochdianto, A. 2009. Budidaya Ikan Nila. Tabanan. Dinas Perikanan dan Kelautan

Kabupaten Tabanan. Bali.

Sigit, S.H.and Hadi, U.K 2006. Hama Permukiman Indonesia (Pengenalan, Biologi dan

Pengendalian). Fakultas Kedokteran Hewan IPB. Bogor.

Soetjipta. 1992. Dasar-Dasar Ekologi Hewan. Gadjah Mada Press. Yogyakarta.

Trewavas, E., 1983. Tilapiine Fishes Of The Genera Sarotherodon, Oreochromis and

Danakilia. British Mus. Nat. Hist. London. 583 p.

Wardoyo, S.T.H. 1989. Kriteria Kualitas Air untuk Pertanian dan Perikanan. Makalah pada

Seminar Pengendalian Pencemaran Air. Dirjen Pengairan Departemen Pekerjaan

Umum. Bandung.

Wiyono, E. 2006. Uji toksisitas transfluthrin yang terkandung dalam pestisida terhadap

ikan nila (Oreochromis). Jurnal iptek : media komunikasi teknologi. LPPM Institut

Teknologi Adhi Tama. 9(2) : 73-84

Zahri, A. 2008. Pengaruh Alkyl Benzena Sulfonate (LAS) Terhadap Tingkat Mortalitasdan Kerusakan Stuktural Jaringan Insang pada Ikan Nila (O. niloticus L.). Program

Studi Teknologi Budidaya Perairan Politeknik Perikanan Negeri Tual. Maluku Utara.


38/38

LAMPIRAN

Documents

JURNAL EKOTOK