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“Análisis comparativo de la eficacia de los tratamientos aplicados por baño para el control de Caligus rogercresseyi (Boxshall & Bravo, 2000) en cuatro centros de cultivo de la X Región”
FELIPE NICOLÁS KAUAK MARTABID
Puerto Montt – Chile
2016
Tesis para Optar al Título de Ingeniería en Acuicultura
Profesor Patrocinante: Dra. Sandra Bravo S.
Instituto de Acuicultura
1
Índice de Contenidos
RESUMEN ....................................................................................................................................................... 3
ABSTRACT ....................................................................................................................................................... 4
1. - INTRODUCCIÓN ........................................................................................................................................ 5
1.1. - Antecedentes .................................................................................................................................... 7
1.1.1. - Hospederos ................................................................................................................................ 7
1.1.2.- Distribución Geográfica ............................................................................................................... 8
1.1.3.- Biología de Caligus rogercresseyi ................................................................................................ 8
1.1.4.- Infestación .................................................................................................................................10
1.1.5.- Control ......................................................................................................................................12
1.1.6.- Manejo integrado del parásito .................................................................................................13
2. - HIPÓTESIS ...............................................................................................................................................16
3. - OBJETIVOS ............................................................................................................................................16
3.1.- Objetivo General: ............................................................................................................................16
3.2.- Objetivos específicos. ......................................................................................................................16
4. - METODOLOGÍA ......................................................................................................................................17
4.1.- Área de estudio: ...............................................................................................................................17
4.2.- Condiciones Ambientales y características de los centros de cultivo .............................................18
4.3.- Monitoreo de Caligus: ......................................................................................................................20
4.4.- Tratamientos por baño: ...................................................................................................................23
4.5.- Análisis de datos ..............................................................................................................................27
4.6.- Análisis estadístico ...........................................................................................................................28
5. – RESULTADOS..........................................................................................................................................29
5.1.- Comparación entre las eficacias del producto farmacéutico deltametrina en las jaulas analizadas
de los centros A, B, C, D, en juveniles y adultos. ......................................................................................40
5.2.- Comparación entre las eficacias del producto farmacéutico azametifos en las jaulas analizadas de
los centros A, B, C, D, en juveniles y adultos. ...........................................................................................42
2
5.3.- Comparación entre las eficacias de ambos productos farmacéuticos, en un centro y estadío de
desarrollo en las jaulas analizadas. ..........................................................................................................44
5.4.- Análisis de las eficacias de ambos productos Deltametrina y Azametifos, basado en la ubicación
de las jaulas (Externas y Centrales) en Juveniles y Adultos. ....................................................................45
..................................................................................................................................................................45
..................................................................................................................................................................45
5.5.- Relación de las eficacias de los productos farmaceuticos azametifos y deltametrina con factores
ambientales, geográficos y productivos...................................................................................................46
6. - DISCUSIÓN ..............................................................................................................................................51
7. - CONCLUSIÓN ..........................................................................................................................................57
8. - REFERENCIAS ..........................................................................................................................................59
3
RESUMEN
Un estudio epidemiológico se llevó a cabo en el periodo Julio- Agosto del 2014 con
el objetivo de evaluar las eficacias de los tratamientos aplicados por baños para el
control del ectoparásito Caligus rogercresseyi, con los productos farmacológicos
azametifos y deltametrina, ampliamente utilizados en Chile, en una de las especies
salmonidea susceptibles cultivada en Chile, Salmon del Atlántico (Salmo salar). El
estudio se desarrolló en cuatro centros de cultivo ubicados en la localidad de
Quellón X región de Chile, con el objetivo de comparar las eficacias de ambos
productos y relacionar los factores que inciden en ellas. Se encontraron diferencias
significativas en las eficacias de ambos productos en todos los centros estudiados.
Los factores más relevantes en las eficacias fueron los geográficos y productivos en
las variables profundidad y antifouling.
4
ABSTRACT
An epidemiological study was carried out in the period July-August 2014 aiming to
identify the factors which affected the efficacy of the bathreatments to control the
ectoparasit Caligus rogercresseyi with the pharmacological products widely used in
Chile, azametiphos and deltametrin, in one of the susceptible salmon species reared in
Chile, Atlantic salmon (Salmo salar). The study was conducted in four farms located in
Quellón X region of Chile, in order to compare the efficacies of both products and relate
the factors affecting them. Significant differences in the efficacy of both products in all
studied farms were found. The most significant factors were geographics and
productives with depth and antifouling variables.
.
5
1. - INTRODUCCIÓN
La industria del salmón en Chile comenzó a fines de los años 1970s, y desde 1992 es
el segundo mayor productor en el mundo después de Noruega. El éxito de esta
actividad se debe a las características geográficas del sur de Chile y al efecto de la
corriente de Humboldt, la que transporta aguas frías de sur a norte a lo largo de las
costas Chilenas, pero tiene poco impacto en el mar interior. Esto explica en parte las
temperaturas de aguas marinas que en invierno raramente disminuyen bajo los 9°C y
en verano pueden alcanzar los 18°C. El sistema local de corrientes es fuertemente
influenciado por las mareas las que pueden alcanzar hasta 7 metros. La dirección
predominante de las corrientes superficiales es de norte a sur.
Los centros de cultivo de salmones están localizados principalmente en zonas
protegidas, con una profundidad alrededor de 50 metros. La velocidad de las corrientes
generalmente varían entre los 10 a 20 cm/ s a 5 metros de profundidad (instituto
tecnológico del salmón, 2007).
Las infestaciones por piojo de mar en salmones cultivados en Chile fueron reportadas
por primera vez en 1981 (Reyes y Bravo, 1983), convirtiéndose en un problema poco
después de los inicios de la industria. Sin embargo, cuando los primeros salmónidos
fueron introducidos en Chile estaban libres de parásitos metazoos por lo que se ha
sugerido que el origen de la infestación por Caligus sería la fauna de peces nativos
incluyendo Maclovinus eleginops y Odonthestes regia (Carvajal et al. 1998, González
y Carvajal, 1994).
6
La familia Caligidae posee 27 géneros que reúnen cerca de 400 especies. Todos ellos
viven en agua salada, y regularmente se les encuentra parasitando peces teleósteos
(Kabata, 2003). Actualmente, y desde 1997, Caligus rogercresseyi se ha convertido en
el parásito más problemático en salmones cultivados en las aguas marinas de Chile
debido a los serios efectos económicos que causan a la industria del salmón. Después
del brote de la anemia infecciosa del salmón registrado en la X Región el 2007, la
industria del salmón se ha expandido hacia el sur, a la XI región, y hoy en día
C.rogercresseyi es también la amenaza más seria para la industria del salmón en esta
región.
Se han identificado una variedad de factores ambientales y biológicos, en prácticas del
manejo del cultivo que pueden afectar la abundancia e impacto del piojo de salmón
(Pike & Wadsworth 1999, Rae 2002, Johnson et al. 2004, Bravo et al. 2008). Estos
factores y prácticas de cultivo han sido utilizados para desarrollar estrategias de manejo
para el control de piojo de salmón en los centros de cultivo (Jhonson et al. 2004, Bravo
et al. 2008). Los resultados obtenidos a través de un año de monitoreo entre septiembre
de 2007 y agosto de 2008 en un centro situado en el Archipiélago de Las Guaitecas en
la XI Región (44 ° S; 74 ° W) mostraron una disminución en la eficacia de los
tratamientos con benzoato de emamectina y deltametrina en el control de C.
rogercresseyi (Bravo et al. 2010). Los fracasos de los tratamientos se asociaron con la
pérdida de la sensibilidad registrado para C. rogercresseyi al benzoato de emamectina
en la Región X como ya se ha mencionado anteriormente. Lo anterior fue atribuido a la
falta de medidas de coordinación en la aplicación de tratamientos con los centros
vecinos compartiendo la misma área en ese período. Anteriormente se ha mencionado
7
que tanto los factores ambientales (temperatura, salinidad), factores geográficos
(profundidad, nivel de exposición), y factores de manejo afectan la eficacia de los
tratamientos antiparasitarios, y también el ciclo de vida y desarrollo de Caligus
rogercresseyi. En el presente estudio se analizan las eficacias de los tratamientos por
baño con azametifos y deltametrina para el control del piojo del salmón, en cuatro
centros de cultivo. Se analizan los distintos factores presentes en los tratamientos por
baño y determinan cuáles de ellos pueden influir en los resultados de eficacia
registrados.
1.1. - Antecedentes
1.1.1. - Hospederos
Un amplio rango de peces incluyendo Eleginops maclovinus, Odonthestes regia y
Paralichtys microps son hospederos naturales de C.rogercresseyi (Reyes & Bravo,
1983b, Carvajal et al. 1998). Estas especies son encontradas frecuentemente en
lugares cercanos a las jaulas de salmones de cultivo, atraídos por el alimento no
consumido por los salmones.
De las especies de salmones cultivados en balsas-jaulas en Chile, los hospederos más
susceptibles son el salmón del Atlántico (Salmo salar), y la trucha arcoíris
(Oncorhynchus mykiss) donde en brotes severos el nivel de infestación ha alcanzado
hasta 200 parásitos por pez (Bravo ,2003). En contraste, el salmón coho (Oncorhynchis
kisutch) ha demostrado ser resistente a este parásito. (Gonzales et al. 2000, Pino-
Marambio et al. 2007).
8
Los copepoditos de C.rogercresseyi muestran clara preferencia por el mucus producido
por el salmón del Atlántico y la trucha arcoíris, opuestamente al mucus producido por el
salmón coho (Pino-Marambio et al. 2007). Estudios demuestran que el salmón coho
puede ser parasitado por copepoditos de C.rogercreseyi y que se pueden desarrollar
las etapas juveniles. Sin embargo, C.rogercreseyi es incapaz de alcanzar la etapa de
adulto en salmón coho (Gonzales et al. 2000).
1.1.2.- Distribución Geográfica
Caligus rogercresseyi está ampliamente distribuido en la X Región y también esparcido
en la XI Región de Chile. C. rogercresseyi también ha sido registrado frecuentemente
en la trucha marrón (Salmo trutta) en el sur de argentina desde 1998 (Bravo et al. 2006)
y en tilapia en el norte del Perú (Bravo et al. 2011).
1.1.3.- Biología de Caligus rogercresseyi
El ciclo de vida de C.rogercresseyi está compuesto de ocho etapas de desarrollo
(Fig.1), dos etapas plantónicas nauplius I y II, una etapa infestiva copepodito, cuatro
etapas chalimus y una etapa adulto, sin diferencias en tamaño entre el macho y la
hembra, alcanzando una longitud promedio de alrededor de los 5 mm. En contraste a
las especies Lepeophtheirus salmonis (Krøyer, 1837), no existen etapas de pre-adulto.
9
Figura 1. Ciclo de vida de Caligus rogercresseyi
La cantidad de tiempo que toma a un piojo desarrollarse depende en gran medida de la
temperatura. Bajo condiciones de laboratorio el ciclo de vida de C.rogercresseyi es
completado en 45 días cuando la temperatura del agua es de 10°C, 32 días a 12°C y
26 días a 15°C (Gonzáles & Carvajal, 2003). En la X Región, la temperatura del agua
más baja en invierno es alrededor de los 9°C y alcanza un promedio de 15°C en
verano.
La fecundidad promedio de esta especie al parasitar salmones es de 45±16 huevos por
saco, con un rango de 9–130 huevos/hembra, presentando variabilidad entre ambientes
estuarinos y salobres. La eclosión de los huevos ocurre entre los 2 y 5 días después de
la aparición de los primeros huevos en los sacos ovígeros de las hembras, la cual
puede presentar hasta 11 oviposiciones (Bravo et al. 2009).
10
Este parásito se alimenta principalmente de mucus y tejidos de las zonas vecinas al
halo de fijación (Valenzuela, 2009). Para alimentarse utilizan los artejos bucales
denominados mandíbulas, maxilas y maxilipedos, los que presentan espinas
modificadas como ganchos capaces de cortar y manipular los tejidos que
posteriormente son succionados por el cono oral.
Las Corrientes marinas locales (Bron et al. 1991), la temperatura y salinidad (Heuch et
al. 2000, Bricknell et al. 2006) e intensidad de luz (Genna et al. 2005) han demostrado
afectar a la sobrevivencia y asentamiento de los copepoditos de piojo de salmón,
controlando los tiempos y estados de desarrollo del ectoparásito.
1.1.4.- Infestación
Ambas etapas de desarrollo, chalimus y adulto causan daños severos en la piel del
hospedador y constituye una mayor amenaza para la salud de los peces cultivados en
aguas marinas chilenas. Los peces infestados presentan un factor de condición bajo,
hemorragias, petequias y abrasiones en la superficie el cuerpo (Figura 2), causando
inmunodepresión en el hospedador. Estas actúan como vectores de entrada para otros
patógenos. Caligus rogercresseyi produce un incremento en la susceptibilidad del
hospedador frente a otras enfermedades como la necrosis pancreática infecciosa
(IPN), enfermedad bacteriana del riñón (BKD), síndrome rickettsial salmonídeo (SRS).
Al severo brote de la anemia infecciosa del salmon (ISA) reportado en 2007, se le
atribuye ser consecuencia de las infestaciones severas por Caligus (Bravo et al. 2008)
Las infestaciones de piojo de mar resultan también en pérdidas económicas debido a
11
los costos asociados a tratamientos, estrategias de manejo, bajo crecimiento, y perdida
de la calidad en la cosecha. (Carvajal et al. 1998).
Figura 2. Lesiones en la piel causadas por el parasito Caligus rogercresseyi
Además de las lesiones externas que pueda causar el piojo del salmón algunos autores
mencionan otros daños graves en el hospedador tales como, aumento de los niveles
plasmáticos de cortisol, aumento de los niveles de glucosa, un índice de bazo somático
reducido y aumento del número de eritrocitos y linfocitos en la sangre, la actividad
lizozomatica se ve reducida, y la producción de radicales de oxígeno por los leucocitos
en la sangre se ve aumentada, efectos negativos en el sistema homeostático. (Ruane et
al. 1999, Brauner et al. 2012).
12
1.1.5.- Control
Desde el primer reporte confirmado de piojo de mar en Chile, varios productos
medicinales han sido usados para intentar mantener el parasito bajo control. Así como
en el hemisferio norte se usaron inicialmente tratamientos aplicados por baño seguidos
por tratamientos orales. Metrifonato (nevugon tm) fue el primer producto usado para el
control de piojo de mar entre los años 1981 y 1985. El Metrifonato fue reemplazado
posteriormente por diclorvos (nuvantm) entre 1995 al 2000. Las Ivermectinas
administradas en la alimentación fueron introducidas a Chile a finales de los 1980’s, y
fue usado para el control de Caligus hasta el 2003 (Bravo, 2010).
El Benzoato de emamectina fue el mayor compuesto usado en el periodo 2000-2007,
hasta que se reportaron evidencias de resistencia del parásito a los químicos (Bravo et
al. 2008). Debido a la disminución en la eficacia del benzoato de emamectina en los
tratamientos de C. rogergresseyi, el piretroide deltametrina fue permitido ser usado en
septiembre del 2007, para el control del parasito. El inhibidor de síntesis de quitina
diflubenzuron fue introducido en Chile en el 2008. En el periodo de septiembre-febrero
del 2007 el peróxido de hidrogeno fue sólo un tratamiento alternativo para el piojo de
mar. (Bavo, 2010).
El desarrollo de resistencia de los copépodos ectoparásitos de la familia Caligidae ha
sido bien documentada a través de los años; Los fracasos de los tratamientos con
piretroides se han informado en Noruega , Escocia e Irlanda ( Sevatdal y Horsberg,
2003, Sevatdal et al. 2005) , y también en Chile (Helgesen et al. 2014), Los fracasos
en el tratamiento con benzoato de emamectina han sido reportados en Chile, Irlanda ,
13
Escocia, canadá y Noruega (Stone et al. 2000, Bravo et al. 2008, Lees et al. 2008,
Horsberg 2012, Westcott et al. 2010 ).
Debido a las altas cargas parasitarias de Caligus rogercresseyi durante el año 2011 en
Chile, se implementó una nueva regulación en mayo del 2012 la cual exigía que el 25%
de la biomasa debía ser cosechada cuando la abundancia excedía los nueve piojos
adultos por pez, durante tres semanas en un periodo de seis semanas (sernapesca
2012). Los tratamientos con piretroides (deltametrina y cyphermetrina) fueron aplicados
cada dos semanas en los centros de cultivo más infectados para mantener una carga
parasitaria reducida. Como consecuencia la industria del salmón utilizó 874 litros de
piretroide (ingrediente activo) en el 2012 lo cual era un 129% más alto que en el año
anterior, incrementándose de 0,622 a 1,087 ml/ton de salmón en 2011 y 2012
respectivamente. Sin embargo, se encontró que hubo un desarrollo de resistencia en
C.rogercresseyi a los piretroides desde el 2008 (Bravo 2010, Helgesen et al. 2014).por
lo que se autorizó el uso del organosfosforado azametifos para el control del piojo de
mar en Chile en el año 2013, lo cual redujo en un 17,8 % la cantidad de piretroides
usados en el año 2013. (Bravo et al 2014).
1.1.6.- Manejo integrado del parásito
Los programas nacionales para el control del piojo de mar han sido establecidos en
diferentes países (Heuch et al. 2005, 0’Donohoe et al. 2005, Bron et al. 1993)
enfocados en rutinas de conteo de piojo de mar en todos los centros de cultivo, rutinas
14
de tratamientos medicinales, periodos de descanso sanitario entre ciclos productivos y
desparasitación sincronizada entre las áreas geográficas.
En Chile, desde 2008 ha habido un programa de monitoreo exigido por el gobierno dos
veces por semana para ayudar en el control de este ectoparásito (Bravo 2003,
Hamilton-West et al. 2012). Este programa se utiliza para la detección precoz de las
infecciones de piojos de mar y para la implementación y seguimiento de las estrategias
de control en los centros de cultivo. Con el tiempo el programa ha sufrido
modificaciones acorde con la situación sanitaria del momento.
Actualmente, el Programa sanitario especifico de vigilancia y control de Caligidosis
establece un manejo integrado de la Caligidosis, que tiene por objetivo su detección
temprana, la disminución de las cargas parasitarias y el control sobre su diseminación.
Los objetivos específicos de este programa son 1) Determinar la presencia y
abundancia de Caligus rogercresseyi, en el tiempo y el espacio, en base al riesgo de
infestación de los centros por especie y zona de cultivo.2) Proteger a la población en
riesgo a través de la implementación de acciones oportunas ante la detección de
centros de alta diseminación. En el programa se estipulan tres clasificaciones para los
centros de cultivo:
Centros de Alta Vigilancia: Centro de cultivo con las especies Salmon Atlántico o Trucha
arcoíris, ubicado en alguna de las agrupaciones de concesiones de las Regiones X y XI.
Centro de Baja Vigilancia: Centro cultivado con las especies Salmon coho o Salmon
chinook, ubicado en cualquiera de las agrupaciones de concesiones. - Centro cultivado
con S. Atlántico o T. arcoíris, ubicado en alguna de las agrupaciones de concesiones de
15
la Región de Magallanes. - Centro de cultivo ubicado en agua de mar o salobre en la
región de los Ríos.
Centro de Alta Diseminación (CAD): Centro de cultivo que presenta una carga
promedio, después de la ventana de tratamiento ≥ 3 Hembras Ovígeras, de acuerdo a
la última modificación realizada (Resolución Exenta N°13 del Servicio Nacional de
Pesca y Acuicultura).
En caso de que un centro se considere centro CAD, debe aplicarse un tratamiento
antiparasitario utilizando un mismo producto en un máximo de tres tratamientos,
posteriormente debe realizarse una rotación de producto. Para los tratamientos existen
ventanas de baño que deben respetarse. En la Región de los Lagos es entre 7 y 10
días, en la Región de Aysén entre 8 y 12 días, de tal manera que se realicen en forma
coordinada y se lleve un registro de ello (Sernapesca, 2015).
16
2. - HIPÓTESIS
La eficacia de los baños de inmersión con deltametrina y azametifos para el control de
Caligus rogercresseyi es afectada por factores ambientales, geográficos y
productivos.
3. - OBJETIVOS
3.1.- Objetivo General:
Determinar los factores que inciden en la eficacia de los tratamientos aplicados
por baños para el control de Caligus rogercresseyi.
3.2.- Objetivos específicos.
1) Evaluar las eficacia de los tratamientos con azametifos y deltametrina para el control
de Caligus rogercresseyi, en los centros de cultivo estudiados.
2) Relacionar los factores ambientales y geográficos sobre la eficacia de los
tratamiento con azametifos y deltametrina para el control de Caligus rogercresseyi.
3) Relacionar factores productivos de cada centro con la eficacia de los baños con
azametifos y deltametrina para el control de Caligus rogercresseyi.
17
4. - METODOLOGÍA
Este estudio se desarrolló entre Julio y Agosto del año 2014. En este período, se
realizaron tratamientos antiparasitarios por baños coordinados en cuatro centros de
cultivo de salmonídeos (Centro A, Centro B, Centro C, Centro D) para el control del
ectoparásito C. rogercresseyi utilizando dos productos con ingrediente activo
diferentes, piretroides y organofosforados divididos en dos fases, primero con
Deltametrina durante las ventanas de baño autorizadas para el uso de dicho producto
(06-07-2014 hasta 14-07-2014, y 20-07-2014 hasta 28-07-2014), y la segunda fase con
azametifos durante la ventana de baño posterior autorizada para ese producto (05-08-
2014 hasta 13-08-2014, y 19-08-2014 hasta 27-08-2014), de tal manera que se pudiera
realizar la comparación correspondiente en el análisis.
4.1.- Área de estudio:
El servicio nacional de pesca y acuicultura ha definido 17 áreas de concesiones de
acuicultura (ACS) para la X región. Los cuatro centros de cultivo en este estudio están
localizados en la ACS 12A en donde existe un total de 13 concesiones vecinas.
18
4.2.- Condiciones Ambientales y características de los centros de cultivo
CENTRO A: Centro con doce meses de operación y se compone de dos módulos los
cuales poseen catorce jaulas cuadradas de 30 x 30 x 17 m. Las redes de las jaulas
estaban impregnadas con pintura antifouling al aplicar los tratamientos antiparasitarios.
La profundidad del sector es de 28 metros y el viento predominante es Norte-Norte
Oeste.
CENTRO B: Centro con dieciocho meses de operación y se compone de un módulo el
cual posee dieciséis jaulas cuadradas de 30 x 30 x 17 m. Las redes de las jaulas
estaban impregnadas con pintura antifouling al aplicar los tratamientos antiparasitarios.
La profundidad del sector es de 35 metros y el viento predominante es Oeste.
Figura 3: Acs 12 A, fuente sernapesca
Figura 4: centros de cultivo A,B,C,D en los cuales se realizaron los tratamientos de baño, emplazados en la Acs 12A.
19
CENTRO C: Centro con dieciocho meses de operación y se compone de un módulo el
cual posee veintiocho jaulas cuadradas de 30 x 30 x 17 m. Las redes de las jaulas no
estaban impregnadas con pintura antifouling al aplicar los tratamientos antiparasitarios.
La profundidad del sector es de 50 metros y el viento predominante es Sur-Sur Oeste.
CENTRO D: Centro con veintiún meses de operación y se compone de dos módulos, el
primero más cercano a la costa posee catorce jaulas cuadradas de 30 x 30 x 17 m. Y el
segundo posee 10 jaulas cuadradas de 30 x 30 x 17 m. Las redes de las jaulas en
ambos módulos estaban impregnadas con pintura antifouling al aplicar los tratamientos
antiparasitarios. La profundidad del sector es de 25 metros y el viento predominante es
Norte Oeste.
Tabla 1: Parámetros ambientales registrados en los cuatro centros de cultivo estudiados, emplazados en la ACS 12-A
Tabla 2: Composición y parámetros productivos de los centros de cultivo estudiados, el peso hace referencia al primer baño.
20
4.3.- Monitoreo de Caligus:
El criterio que se empleó para la selección de las jaulas tuvo estricta relación con la
corriente local del sector. Una vez que se consultó al personal encargado de cada
centro de cultivo por la dinámica de la corriente se seleccionaron entre cuatro y seis
jaulas dependiendo de la disponibilidad del centro para realizar los conteos de caligus
previos y posteriores a los tratamientos y así calcular la eficacia. Las jaulas que se
seleccionaron con mayor prioridad para realizar el estudio fueron aquellas que
estuvieran más cercanas a la corriente, puesto que al ser un medio de transporte para
el piojo del salmón (Bravo, 2010, Costello, 2006), la mayor cantidad de C. rogercresseyi
debiese estar hospedado en los peces de dichas jaulas, luego se seleccionaron las
jaulas de extremo o cabecera y por último las centrales del módulo.
Veinte peces fueron muestreados por cada jaula seleccionadas en los cuatro centros de
cultivo. El conteo de peces fue realizado por un servicio externo a las empresas y
certificados como monitoreadores de caligus por Sernapesca.
Los peces fueron atrapados con una red de tipo cubo o con una red de cosecha cuando
las condiciones fueron desfavorables mientras eran alimentados para ser atraídos a la
red, se anestesiaron individualmente con benzocaína (10% en etanol, 1 ml L-1), y fueron
analizados macroscópicamente. Los piojos fueron clasificados de acuerdo al género y
estado de desarrollo, Hembra ovígera, Hembra sin saco, Macho, Juvenil o Chalimus. Al
término de cada recuento de parásitos en los peces seleccionados de cada jaula, se
procedido a contar los parásitos dispuestos en la batea de muestreo para incluir en la
muestra los piojos que se soltaron de los peces en el proceso.
21
CENTRO A: El muestreo de caligus se realizó en seis jaulas (tres en cada módulo). El
primero, previo al baño realizado con deltametrina se hizo en la fecha 15-07-2014,
mientras que el conteo posterior fue el día 24-07-2014. Debido a las malas condiciones
climáticas presentadas en el conteo posterior al baño, las cuales se mantuvieron por
varias semanas, sólo se pudieron muestrear cuatro jaulas, lo cual se tendrá en
consideración para el análisis de datos.
En el conteo pre-tratamiento realizado con azametifos se hizo en la fecha 10-08-2014,
mientras que el conteo post-tratamiento fue el día 22-08-2014, en ambos se
muestrearon las 6 jaulas estipuladas en un principio.
Figura 5: Monitoreo de caligus en el centro
22
CENTRO B: El muestreo de caligus se realizó en cuatro jaulas. El primero, previo al
baño realizado con deltametrina se hizo en la fecha 15-07-2014, mientras que el conteo
posterior fue el día 25-07-2014.
En el conteo pre-tratamiento realizado con azametifos se hizo en la fecha 11-08-2014,
mientras que el conteo post-tratamiento fue el día 22-08-2014, en ambas fechas se
muestrearon las jaulas estipuladas en un principio.
CENTRO C: El muestreo de caligus se realizó en cuatro jaulas, el primero, previo al
baño realizado con deltametrina se hizo en la fecha 21-07-2014, mientras que el conteo
posterior fue el día 26-07-2014.
En el conteo pre-tratamiento realizado con azametifos se hizo en la fecha 09-08-2014,
mientras que el conteo post-tratamiento fue el día 14-08-2014, en ambas fechas se
muestrearon las jaulas estipuladas en un principio.
CENTRO D: El muestreo de caligus se realizó en seis jaulas (tres en cada módulo). El
primero, previo al baño realizado con deltametrina se llevó a cabo en la fecha 24-07-
2014, mientras que el conteo posterior fue el día 28-07-2014. Debido a las malas
condiciones climáticas presentadas en el conteo post-tratamiento, las cuales se
mantuvieron por varias semanas, al igual que en el centro A, solo se pudieron
muestrear cuatro jaulas, lo cual se tendrá en consideración para el análisis de datos.
En el conteo pre-tratamiento realizado con azametifos se hizo en la fecha 10-08-2014,
mientras que el conteo post-tratamiento fue el día 24-08-2014, en ambas fechas se
muestrearon las jaulas estipuladas en un principio.
23
4.4.- Tratamientos por baño:
Los baños por inmersión para el tratamiento de caligus con ambos productos se
realizaron en un orden que coincidiera con la dirección de la corriente principal, es
decir, Primero el Centro A, Luego Centro B, Centro C, y finalmente Centro D (ver
imagen 6). Para todos los baños se utilizó una lona cerrada dispuesta desde fuera hacia
adentro de la jaula a una profundidad de cuatro metros, y su instalación tomo un tiempo
aproximado de 15 minutos. La cantidad de deltametrina utilizada para los baños fue de
una concentración de 0.2 mg/m3, la cual fue administrada dentro de la lona con un
equipo de difusión con un tiempo de aplicación de 8 minutos aproximadamente, estos
tratamientos duraron 30 minutos por jaula y luego se soltó la lona. Por otro lado en los
baños realizados con azametifos se utilizó una cantidad de producto de 0,2 ppm (50%
I.A.), con un tiempo de aplicación de producto de aproximadamente 15 minutos aprox. y
una duración de tratamiento de 45 minutos aprox.
24
Figura 6: Dinámica de la corriente en los centros de cultivo estudiados. Flecha naranja: corriente principal del sector, afecta al centro A.; Flechas amarillas, corrientes que afectan al centro B.; Flecha verde, corriente que afecta al centro C.; Flechas celestes, corriente que afecta al centro D.)
Figura 7: Lona de tratamiento de baño asegurada (cerrada) en la jaula mientras se realiza el tratamiento
25
CENTRO A: El baño por inmersión con deltametrina se realizó el 17-07-2014, fecha en
que el número de peces de la especie salmón del Atlántico en el centro era de
1.326.690 con un peso promedio de 1814,9 gr., registrándose una temperatura de 10°C
y una salinidad de 33 psu. Posteriormente, en la fecha del 11-08-2014 se realizó el
baño con azametifos, en que el número de peces en el centro era de 1.320.998 con un
peso promedio de 2029,3 gr., registrándose una temperatura de 10°C y una salinidad
de 33 psu.
Durante el año 2014 los tratamientos antiparasitarios para el control de C. rogercresseyi
previos al presente estudio en el centro A, fueron realizados con los productos
cipermetrina, azametifos y deltametrina. (Datos no se muestran).
Figura 8: Contenedor de solución de producto químico para el tratamiento antiparasitario
Figura 9: tanques de oxígeno para oxigenar las jaulas durante el baño.
26
CENTRO B: El baño por inmersión con deltametrina se realizó el 21-07-2014, fecha en
que el número de peces de la especie salmón del Atlántico en el centro era de 747.154
con un peso promedio de 2432,2 gr., registrándose una temperatura de 9,7°C y una
salinidad de 33 psu. Posteriormente en la fecha del 14-08-2014 se realizó el baño con
azametifos, en que el número de peces en el centro era de 742.911 con un peso
promedio de 2691,8 gr., registrándose una temperatura de 9,7°C y una salinidad de 33
psu.
Durante el año 2014 los tratamientos antiparasitarios para el control de C. rogercresseyi
previos al presente estudio en el centro A, fueron realizados con los productos
Diflubenzuron, cipermetrina, azametifos y deltametrina. (Datos no se muestran).
CENTRO C: El baño por inmersión con deltametrina se realizó el 23-07-2014, fecha en
que el número de peces de la especie salmón del Atlántico en el centro era de
1.006.209 con un peso promedio de 1887,3 gr., registrándose una temperatura de
10,2°C y una salinidad de 33 psu. Posteriormente en la fecha del 12-08-2014 se realizó
el baño con azametifos, en que el número de peces en el centro era de 999.606 con un
peso promedio de 2154,1 gr., registrándose una temperatura de 10,2°C y una salinidad
de 33 psu.
Durante el año 2014 los tratamientos antiparasitarios para el control de C. rogercresseyi
previos al presente estudio en el centro A, fueron realizados con los productos
cipermetrina, azametifos y deltametrina. (Datos no se muestran).
27
CENTRO D: El baño por inmersión con deltametrina se realizó el 26-07-2014, fecha en
que el número de peces de la especie salmón del Atlántico en el centro era de
1.152.004 con un peso promedio de 2564,6 gr., registrándose una temperatura de
9,8°C y una salinidad de 33 psu. Posteriormente en la fecha del 21-08-2014 se realizó
el baño con azametifos, en que el número de peces en el centro era de 1.141.540 con
un peso promedio de 2804 gr., registrándose una temperatura de 9,8°C y una salinidad
de 33 psu.
Durante el año 2014 los tratamientos antiparasitarios para el control de C. rogercresseyi
previos al presente estudio en el centro A, fueron realizados con los productos
cipermetrina, azametifos y deltametrina. (Datos no se muestran).
4.5.- Análisis de datos
Para el cálculo de las abundancias de los parásitos y las eficacias de los tratamientos
se utilizó el software Microsoft ® Office Excel ® 2010, y se aplicaron las siguientes
formulas:
Abundancia promedio =
Eficacia =
28
4.6.- Análisis estadístico
Se realizaron pruebas de normalidad con los datos de las eficacias de los productos
farmacéuticos deltametrina y azametifos en adultos y juveniles obtenidas de las
muestras, mediante la prueba de normalidad Shapiro-Wilk, sin embargo, los datos no se
ajustaron a una distribución normal.
Las pruebas no paramétricas que se llevaron a cabo fueron:
a) Kruskall Wallis.
b) Mann Whitney.
c) Correlación de Spearman.
Todas las pruebas se realizaron mediante el uso del software SPSS ® versión 15.0
para Windows de IBM ® Corp.
En todos los análisis de datos, las muestras se agruparon en dos variables; Adultos
totales, que comprende hembras ovijeras, hembras sin sacos y machos. Y juveniles
incluyendo Chalimus I, II, III y IV.
29
5. - RESULTADOS
CENTRO A: En el tratamiento con deltametrina la abundancia pre-tratamiento de
Caligus rogercresseyi fue 2,34 para juveniles, mientras que la abundancia post-
tratamiento aumentó a 3,24 (Grafico 1). En los adultos, la abundancia pre-tratamiento
fue 8,33 y la abundancia post-tratamiento disminuyó a 3,33 (Grafico 2).
En el muestreo pre-tratamiento con azametifos la abundancia de juveniles registrada
fue de 2,26 y post-tratamiento la abundancia para el mismo estadío disminuyó a 0,81
(Grafico 1), mientras que para los adultos se registró una abundancia pre-tratamiento
de 7,40 y la abundancia post-tratamiento disminuyó a 0,02 (Grafico 2).
Grafico 1: Abundancia promedio de juveniles registrada en el centro A, pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
30
En el centro A la eficacia del tratamiento con deltametrina fue -12,40 % para juveniles,
y para los adultos la eficacia fue 53,41 % (Grafico 3). En el tratamiento con azametifos
la eficacia fue 64,21 % para juveniles y en los adultos la eficacia fue 99,68 % (Grafico
3). En juveniles y adultos la eficacia de azametifos en el centro A fue mayor que la
eficacia con deltametrina.
Grafico 2: Abundancia promedio de adultos registrada en el centro A pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
Grafico 3: Eficacia (%) de juveniles y adultos obtenida en el centro A con deltametrina y azametifos.
31
CENTRO B: En el tratamiento con deltametrina la abundancia pre-tratamiento de
Caligus rogercresseyi fue 7,13 para los juveniles, mientras que la abundancia post-
tratamiento de juveniles aumentó a 12,57 (Grafico 4). En los adultos, la abundancia pre-
tratamiento con deltametrina fue 2,87 y la abundancia post-tratamiento aumentó a 6,02
(Grafico 5).
En el muestreo pre-tratamiento con azametifos la abundancia de juveniles registrada
fue 12,99 y post-tratamiento la abundancia para el mismo estadío disminuyó a 4,73
(Grafico 4), mientras que para los adultos se registró una abundancia pre-tratamiento
de 22,96 y la abundancia post-tratamiento disminuyó a 0,25 (Grafico 5).
Tabla 4: Eficacias (%) del tratamiento con azametifos obtenida por jaula analizada en el Centro A.
Tabla 3: Eficacias (%) del tratamiento con deltametrina obtenida por jaula analizada en el Centro A.
32
Grafico 4: Abundancia promedio de juveniles registrada en el centro B pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
Grafico 5: Abundancia promedio de adultos registrada en el centro B pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
33
En el centro B la eficacia del tratamiento con deltametrina fue -76,29 % para juveniles,
y para los adultos la eficacia fue de -109,95 % (Grafico 6). En el tratamiento con
azametifos la eficacia fue 63,61 % para juveniles y en los adultos la eficacia fue de
98,91 % (Grafico 6). En juveniles y adultos la eficacia de azametifos en el centro A fue
mayor que la eficacia con deltametrina.
Tabla 5: Eficacias (%) del tratamiento con deltametrina obtenida por jaula analizada en el Centro B.
Tabla 6: Eficacias (%) del tratamiento con azametifos obtenida por jaula analizada en el Centro B.
Grafico 6: Eficacia (%) de juveniles y adultos obtenida en el centro A con deltametrina y azametifos.
34
CENTRO C: En el tratamiento con deltametrina la abundancia pre-tratamiento de
Caligus rogercresseyi fue 10,37 para los juveniles, mientras que la abundancia post-
tratamiento disminuyó a 7,75 (Grafico 7). En los adultos, la abundancia pre-tratamiento
con deltametrina fue 15,35 y la abundancia post-tratamiento disminuyó a 9,50 (Grafico
8).
En el muestreo pre-tratamiento con azametifos la abundancia de juveniles registrada
fue 3,81 (Grafico 7) y post-tratamiento la abundancia para el mismo estadío aumentó a
6,38, mientras que para los adultos se registró una abundancia pre-tratamiento de
22,46 y la abundancia post-tratamiento disminuyó a 0,43 (Grafico 8).
Grafico 7: Abundancia promedio de juveniles registrada en el centro C pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
35
En el centro C la eficacia del tratamiento con deltametrina fue 25,25 % para juveniles,
y para los adultos la eficacia fue 38,09 % (Grafico 9). En el tratamiento con azametifos
la eficacia fue -67,5 % para juveniles y en los adultos la eficacia fue 98,02 % (Grafico 9).
La eficacia de azametifos en juveniles fue menor que deltametrina. Por el contrario, la
eficacia de azametifos en adultos fue mayor que deltametrina.
Grafico 8: Abundancia promedio de adultos registrada en el centro C pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
Grafico 9: Eficacia (%) de juveniles y adultos obtenida en el centro A con deltametrina y azametifos.
36
CENTRO D: En el tratamiento con deltametrina la abundancia pre-tratamiento de
Caligus rogercresseyi fue 4,65 para los juveniles, mientras que la abundancia post-
tratamiento de juveniles disminuyó a 1,03 (Grafico 10). En los adultos, la abundancia
pre-tratamiento con deltametrina fue 4,18 y la abundancia post tratamiento disminuyó a
1,00 (Grafico 11).
En el muestreo pre-tratamieno con azametifos la abundancia de juveniles registrada fue
2,62 y la abundancia post tratamiento del mismo estadío disminuyó a 1,81 (Grafico 10),
mientras que para los adultos se registró una abundancia pre-tratamiento de 10,12 y la
abundancia post-tratamiento disminuyó a 0,06 (Grafico 11).
Tabla 7: Eficacias (%) del tratamiento con deltametrina obtenida por jaula analizada en el Centro C.
Tabla 8: Eficacias (%) del tratamiento con azametifos obtenida por jaula analizada en el Centro C.
37
Grafico 10: Abundancia promedio de juveniles registrada en el centro D pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
Grafico 11: Abundancia promedio de adultos registrada en el centro D pre y post-tratamiento con deltametrina y azametifos.
38
Tabla 9: Eficacias (%) del tratamiento con deltametrina obtenida por jaula analizada en el Centro D.
Tabla 10: Eficacias (%) del tratamiento con azametifos obtenida por jaula analizada en el Centro D.
Grafico 12: Eficacia (%) de juveniles y adultos obtenida en el centro D con deltametrina y azametifos.
En el centro D la eficacia del tratamiento con deltametrina fue 70,34 % para juveniles, y para
los adultos la eficacia fue 76,59 % (Grafico 12).En el tratamiento con azametifos la eficacia
fue 30,91 % para juveniles y en los adultos la eficacia fue de 99,45 % (Grafico 12). La
eficacia en juveniles con deltametrina fue mayor que azametifos, por el contrario, en adultos,
la eficacia de azametifos fue mayor que la eficacia con deltametrina.
39
Tabla 11: Resumen de los resultados de los muestreos de Caligus rogercresseyi y tratamientos por baño con deltametrina y azametifos
40
5.1.- Comparación entre las eficacias del producto farmacéutico deltametrina en
las jaulas analizadas de los centros A, B, C, D, en juveniles y adultos.
De acuerdo a los resultados obtenidos en la prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis al comparar la eficacia del producto farmacéutico deltametrina en juveniles entre el centro A, B, C y D, se encontraron diferencias significativas con un valor P = 0,009. El gráfico 13 muestra que el centro B marca las mayores diferencias con eficacias negativas inferiores a -100%.
Grafico 13: Mediana de la eficacia del producto deltametrina en juveniles obtenidas en las jaulas analizadas de los centros A, B, C y D.
Eficacia con deltametrina en juveniles, en cuatro centros de cultivo
41
En la prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis realizada para comparar la eficacia del producto farmacéutico deltametrina en adultos entre los centros A, B, C y D, los resultados obtenidos muestran diferencias significativas entre los centros analizados con un valor P =0,004. El gráfico 14 muestra que el centro B marca las mayores diferencias con eficacias negativas inferiores a -100%.
Grafico 14: Mediana de la eficacia del producto deltametrina en Adultos obtenidas en las jaulas analizadas de los centros A, B, C y D.
Eficacia con deltametrina en adultos, en cuatro centros de cultivo
42
5.2.- Comparación entre las eficacias del producto farmacéutico azametifos en
las jaulas analizadas de los centros A, B, C, D, en juveniles y adultos.
De acuerdo a los resultados obtenidos en la prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis al comparar la eficacia del producto farmacéutico azametifos en juveniles entre el centro A, B, C y D, se encontraron diferencias significativas con un valor P = 0,002. El gráfico 15 muestra que el centro C marca las mayores diferencias con eficacias negativas inferiores a -100%.
Grafico 15: Mediana de la eficacia del producto azametifos en juveniles obtenidas en las jaulas analizadas de los centros A, B, C y D.
Eficacia con azametifos en juveniles, en cuatro centros de cultivo
43
En la prueba no paramétrica de Kruskal-Wallis realizada para comparar la eficacia del producto farmacéutico azametifos en adultos entre los centros A, B, C Y D, los resultados obtenidos muestran diferencias significativas entre los centros analizados con un valor P =0,038. El gráfico 16 muestra que el centro B marca las mayores diferencias de eficacias.
Grafico 16: Mediana de la eficacia del producto azametifos en adultos obtenidas en las jaulas analizadas de los centros A, B, C Y D.
Eficacia con azametifos en adultos, en cuatro centros de cultivo
44
5.3.- Comparación entre las eficacias de ambos productos farmacéuticos, en un
centro y estadío de desarrollo en las jaulas analizadas.
Se realizó una serie de pruebas no paramétricas de Mann-Whitney para comprobar las diferencias y significancia entre la eficacia de los productos farmacéuticos deltametrina con azametifos en un mismo centro de cultivo en juveniles y adultos (Tabla 12). En todas las pruebas realizadas se encontró significancia entre ambos productos en cada centro y estadío con un valor P inferior a 0,05.
Tabla 12: Resultados de la prueba no paramétrica de Mann-Whitney donde se comparan las eficacias de dos productos farmacéuticos, deltametrina y azametifos, en un mismo centro en juveniles y adultos.
CENTRO ESTADÍO VALOR-P
CENTRO A JUVENIL 0,01 CENTRO B JUVENIL 0,029 CENTRO C JUVENIL 0,029 CENTRO D - CENTRO A CENTRO B CENTRO C CENTRO D
JUVENIL -
ADULTO ADULTO ADULTO ADULTO
0,038 -
0,01 0,029 0,029 0,01
45
5.4.- Análisis de las eficacias de ambos productos Deltametrina y Azametifos,
basado en la ubicación de las jaulas (Externas y Centrales) en Juveniles y
Adultos.
Se realizó una serie de pruebas no paramétricas de Mann-Whitney para comprobar la significancia entre las eficacias en las jaulas externas y jaulas centrales de los productos farmacéuticos azametifos (Tabla 13) y deltametrina (Tabla 14) en juveniles y adultos en los centros A, B, C, y D. (Tabla 15). (Los promedios no fueron comparados).
Tabla 13: Eficacias del producto Azametifos agrupadas en jaulas extremas y jaulas centrales obtenidas en los centros A, B, C, D, en Juveniles y Adultos.
Tabla 14: Eficacias del producto Deltametrina agrupadas en jaulas extremas y jaulas centrales obtenidas en los centros A, B, C, D, en Juveniles y Adultos.
46
Centro Producto Estadío Valor P A Azametifos Juvenil 0,8 B azametifos Juvenil 0,5 C Azametifos Juvenil 0,5 D Azametifos Juvenil 0,4 - A Azametifos Adulto 0,8 B Azametifos Adulto 0,5 C Azametifos Adulto 0,5 D Azametifos Adulto 1 - A B C D - A B C D
Deltametrina Deltametrina Deltametrina Deltametrina
Deltametrina Deltametrina Deltametrina Deltametrina
Juvenil Juvenil Juvenil Juvenil
Adulto Adulto Adulto Adulto
0,5 1 1 1
0,5 1 1 0,5
5.5.- Relación de las eficacias de los productos farmacéuticos azametifos y
deltametrina con factores ambientales, geográficos y productivos.
Se realizó una correlación de Spearman para relacionar las eficacias de azametifos y deltametrina en juveniles y adultos con los factores ambientales, geográficos y productivos presentes en los centros de cultivo A, B, C y D, donde se incluyeron variables de temperatura, salinidad, profundidad, peso promedio, numero de jaulas, ubicación de las jaulas en el módulo, y uso de antifouling en las jaulas (Tabla 16). Se encontró una relación entre la eficacia de azametifos y deltametrina en adultos con la variable profundidad, y entre la eficacia de azametifos en ambos estadíos con la variable antifouling (Tabla 16) (Graficos 17, 18, 19 y 20).
Tabla 15: Resultados de prueba no paramétrica de Mann-Whitney para comprobar la significancia entre las eficacias en las jaulas externas y jaulas centrales de los productos farmacéuticos deltametrina y azametifos en juveniles y adultos en los centros A, B, C, y D. No se encontraron diferencias significativas de las eficacias entre jaulas extremas y centrales, ya sea, con azametifos o con deltametrina, en juveniles o adultos. No se encontraron diferencias significativas.
47
FACTORES VARIABLES CATEGORIAS (centro A,B,C,D)
PRODUCTO ESTADÍO COEFICIENTE DE CORRELACION
RHO DE SPEARMAN (VALOR-P)
Ambientales Geograficos
Temperatura Salinidad Profundidad
10°C (A*)
9,7°C (B*) 10,2°C (C*) 9,8°C (D*) 33 PSU (A*) 33PSU (B*) 33PSU (C*) 33PSU (D*) 28 Mt. (A*) 35 Mt. (B*) 50 Mt. (C*) 25 Mt. (D*)
Azametifos Deltametrina Azametifos Deltametrina Azametifos Deltametrina
Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto
-0,4 -0,12 0,35 0,21 ---- ---- ---- ---- -0,15 -0,57 -0,42 -0,64
0,07 0,6 0,18 0,41 ---- ---- ---- ---- 0,5 0,008 0,1 0,007
Tabla 16: Correlación de Spearman: Relación entre los factores y sus variables planteados en los objetivos con las eficacias obtenidas con ambos productos en cada centro en juveniles y adultos. Significancia obtenida en el factor geográfico, variable de profundidad en Adultos en ambos productos. (Adultos Azametifos, Rs=0,008; < p=0,05) (Adultos Deltametrina, Rs= 0,001; < P=0,05), factor productivo, variable antifouling en el producto azametifos en ambos estadíos (Juveniles aza, Rs= 0,001;< P=0,05), (Adultos Aza, Rs=0,018;< P=0,05)
48
Productivos
Peso promedio Numero de jaulas Ubicación de las Jaulas Antifouling
2029,30 (A* Aza) 2691,80 (B* Aza) 2154,10 (C* Aza) 2804,00 (D* Aza) 1814,90 (A* Delta) 2432,20 (B* Delta) 1887,30 (C* Delta) 2564,60 (D* Delta) 28 (A*) 16 (B*) 28 (C*) 24 (D*) Extremo Centro si (A*) si (B*) NO (C*) si (D*)
Azametifos Deltametrina Azametifos Deltametrina Azametifos Deltametrina Azametifos Deltametrina
Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto Juvenil Adulto
-0,34 -0,28 0,3 0,17 -0,25 0,1 0,31 0,32 -0,26 -0,13 0,19 -0,14 0,69 0,52 -1,15 0,21
0,13 0,9 0,25 0,53 0,28 0,6 0,23 0,21 0,24 0,58 0,46 0,60 0,001 0,018 0,56 0,41
*Referencia a cada centro (Centro A, centro B, Centro C, Centro D)
49
Grafico 17: Dispersión de datos de la eficacia (%) del producto azametifos en adultos, en función de la profundidad de los centros A, B, C Y D. (Tabla 2)
Grafico 18: Dispersión de datos de la eficacia (%) del producto Deltametrina en adultos, en función de la profundidad de los centros A, B, C Y D. (Tabla 2)
Eficacia con azametifos en adultos, relacionada a la profundidad de cada centro
Eficacia con deltametrina en adultos, relacionada a la profundidad de cada centro
50
Grafico 20: Dispersión de datos de la eficacia (%) del producto azametifos en Adultos, en función de los centros cuyas jaulas estaban impregnadas con pintura Antifouling durante los baños.
Grafico 19: Dispersión de datos de la eficacia (%) del producto azametifos en Juveniles, en función de los centros cuyas jaulas estaban impregnadas con pintura Antifouling durante los baños.
Eficacia con azametifos en juveniles, relacionada al uso de antifouling
Eficacia con azametifos en adultos, relacionada al uso de antifouling
51
6. - DISCUSIÓN
Los resultados obtenidos de los tratamientos por baño para el control de Caligus
rogercresseyi mostraron que las abundancias de juveniles y adultos no siempre
disminuyeron después de cada tratamiento con azametifos y deltametrina (Gáficos 1, 4,
5, y 7), por lo tanto se obtuvieron eficacias negativas en los juveniles del centro A
tratados con deltametrina (Gráfico 3), en los juveniles y adultos del centro B tratados
con deltametrina (Gráfico 6), y en los juveniles del centro C tratados con azametifos
(Gráfico 9). En los últimos años se ha registrado una pérdida de sensibilidad en el piojo
del salmón a los quimioterapéuticos (Bravo et al. 2008, Sevatdal y Horsberg 2003,
Sevatdal et al. 2005, Helgesen et al. 2014, Stone et al. 2000, Lees et al. 2008, Horsberg
2012, Wescott et al. 2010), lo cual podría explicar algunos de los resultados negativos
en las eficacias de los tratamientos por baño para el control de C. rogercresseyi.
Se encontraron diferencias significativas entre los centros bañados con deltametrina
en juveniles y adultos (Gráficos 13, y 14), y también hubo significancia entre los centros
bañados con azametifos en ambos estadíos (Gráficos 15 y 16) en este último caso ,a
pesar de que las eficacias totales de los centros en los adultos tratados con azametifos
fueron siempre sobre 98% (Tabla 11), en una de las jaulas analizadas perteneciente al
centro B se registró una eficacia del 75,5% (Tabla 7) que probablemente sea la
causante de dicha significancia.(P<0,05). Como las eficacias de cada producto por
separado presentaron diferencias significativas entre los centros, también se quiso
comprobar si hubieron diferencias significativas entre la eficacia de un producto y otro
52
en juveniles y adultos de los centros analizados donde se encontraron diferencias
significativas (P<0,05) (Tabla 12).
En general, se pudo apreciar una mayor eficacia en los centros tratados con azametifos
que en los centros donde se utilizó deltametrina. Marín et al. (2015), menciona que en
Chile existe una mayor reducción en la sensibilidad de Caligus rogercresseyi a los
piretroides que en azametifos.
También se pudo observar que ambos productos parecieran ser más efectivos en
adultos que en juveniles, lo cual también ha sido reportado por otros autores (Hart et
al.1997, Jimenez et al. 2013, Branson et al. 2000, Sevatdal et al. 2005, Whyte et al.
2014, Wootten et al. 1982), pero esto podría ser relativo y deberse a que en la etapa de
juvenil, C. rogercresseyi tiene un filamento frontal que le permite fijarse al pez durante
todo el período de muda ( Piasecki y MacKinnon 1993, Pike et al. 1993). Así, cuando el
chalimus murió aún estaba fijado al hospedero hasta que el filamento se rompió,
causando subestimación de los valores de eficacia cuando se realizaron los muestreos
post-tratamiento. (Bravo et al. 2014).
En la literatura ha sido bien descrito que los factores ambientales pueden afectar el
ciclo de vida de Caligus rogercresseyi. (Bron et al. 1991, Heuch et al. 2000, Bricknell et
al. 2006,Genna et al. 2005). Al realizar un análisis de correlación entre las variables de
los factores ambientales (temperatura y salinidad) estudiados y las eficacias, se
encontró que la temperatura no tuvo efectos significativos sobre las eficacias de
ninguno de los productos utilizados en los centros de cultivo (Tabla 16), esto concuerda
con los reportes de Yatabe et al. (2011), a pesar de que la temperatura ha sido citada
53
en varios estudios como un factor importante asociado al ciclo de vida del parásito
(Bravo, 2003; Mustafa et al., 2001; Tucker et al., 2000; Boxaspen, 1997; Tully, 1992;
Johnson and Albright, 1991).
Bravo et al. (2014) encontró una significancia de asociación entre la temperatura
(12°C) y la abundancia del piojo. La información existente sugiere que la temperatura y
las estaciones del año afectan el rendimiento reproductivo (Marín et al. 2015). Los
resultados obtenidos en este estudio con respecto a la temperatura pueden explicarse
debido a que esta se registró dentro de los rangos normales entre 9 y 10°C aprox. y en
un periodo de invierno lo cual provoca que el ciclo de vida de C.rogercresseyi se
complete en 45 días y no fuera suficiente para acelerar su progenie entre los conteos
previos y posteriores a los tratamientos, ya que con una temperatura de 12°C se ve
incrementada la fecundidad y se acorta el ciclo a 32 días, mientras que con 18°C se
reduce a 15 días. (Bravo et al. 2010).
La salinidad registrada en todos los centros y tratamientos por baño, fue de 33 ppt., por
lo que tampoco tuvo significancia en las eficacias (Tabla 20), es más, C. rogercresseyi
es susceptible a salinidades menores que 20 ppt. (Bravo et al, 2008).
La variable de profundidad que tenía cada centro (Tabla 2), se comparó con las
eficacias obtenidas de ambos productos en juveniles y adultos, en la cual se
encontraron altos niveles de significancia en la correlación entre la profundidad y la
eficacia de los productos deltametrina y azametifos en adultos solamente (Tabla 16),
(Gráficos 17 y 18). Esto concuerda con el estudio de Bravo et al. (2014) donde
menciona que la variable más importante que afecta a la abundancia del piojo de mar
54
es la geográfica en relación a los vientos, exposición del centro y profundidad, donde
las mayores cargas parasitarias se encontraron en aguas menos profundas.
En cuanto a los factores productivos, al analizar la variable peso se realizó una
correlación entre los pesos promedios registrados en los peces de cada centro durante
los tratamientos y las eficacias, donde no se encontró una significancia en la relación de
ambas variables (Tabla 16). En otros estudios se ha relacionado la abundancia del
parasito con el tamaño y peso de los peces (Bravo et al. 2014, Heuch et al. 2003,
Tucker et al. 2002) y se han encontrado relaciones significativas. Sin embargo, a
diferencia de este estudio el tamaño y peso de los peces variaban considerablemente,
además, el periodo de investigación fue corto, lo que no permite realizar un análisis más
profundo en este aspecto.
Se evaluó la relación que podría tener el número de jaulas tratadas en cada centro con
las eficacias de ambos productos en juveniles y adultos (Tabla 16), ya que, se supuso
que a mayor número de jaulas mayor seria la cantidad de producto disperso en el
centro una vez retirada la lona de baño de las jaulas. Sin embargo, no se encontró
significancia en la relación entre el número de jaulas por centro y las eficacias.
El uso de antifouling también fue una variable que se evaluó dentro de los factores
productivos, se llevó a cabo una correlación entre el uso de antifouling y las eficacias de
los tratamientos con ambos productos. Se encontró una significancia en la relación del
uso de antifouling y las eficacias solamente en el tratamiento con azametifos en adultos
y juveniles, mientras que en el tratamiento con deltametrina no se encontró significancia
para ningún estadío.
55
También se analizó la ubicación de las jaulas en los módulos de los centros de cultivo
(Tablas 13 y 14), ya que, la dirección de las corrientes marinas que traen consigo
copepoditos al encontrarse con las primeras jaulas, estos se adhieren a los primeros
hospedadores disponibles (Bravo et al. 2010), esto también ha sido indicado por los
profesionales de los centros de cultivo antes de iniciar los monitoreos de Caligus. No se
encontró una significancia entre jaulas extremas o centrales en el análisis de
correlación con las eficacias (Tabla 16), pero cabe destacar que durante los muestreos
de Caligus rogercresseyi realizados por este autor se pudo apreciar claramente una
mayor cantidad de piojos tanto adultos como juveniles en los peces muestreados de las
jaulas extremas que fueron donde la corriente principal atravesaba en la mayoría de los
centros. Esto último también fue descrito por Bravo et al. (2014). También se realizó un
análisis para evaluar significancia de las diferencias entre las eficacias obtenidas en
jaulas externas y jaulas centrales, aunque no se encontraron diferencias significativas
(Tabla 15).
Ya se mencionó anteriormente en metodología que uno de los elementos más
importantes en la logística para llevar a cabo este estudio fue el comportamiento de las
corrientes en cada centro (Figura 6). El sistema de corrientes tiene gran efecto en una
amplia dispersión de los estadios nadadores en la décima X región (Kristoffersen et al.
2013, Molinet et al. 2011). De hecho las Corrientes y mareas son el principal
mecanismo de transporte de las etapas plantónicas del piojo de mar de sus fuentes de
origen (Asplin et al. 2014, Krkosek et al. 2010, Amundrud and Murray 2009, Penston et
al. 2008, Costello 2006, McKibben and Hay 2004). Existen numerosos estudios que
documentan una correlación positiva entre la abundancia de juveniles en un centro y el
56
número de hembras ovijeras en centros vecinos (McKibben & Hay 2004, Costello 2006,
Penston et al. 2008, Amundrud & Murray 2009, Krkosek et al. 2010, Molinet et al. 2011,
Kristoffersen et al. 2013). Sin dejar de lado los factores que ya se han descrito que
inciden en las eficacias, este autor considera que las corrientes locales que afectaron a
cada centro de cultivo tuvieron gran importancia en el desempeño de los
quimioterapéuticos utilizados, afectando en la reinfestación de piojos posterior a los
baños que puedan haber emanado de centros vecinos, o centros de acopio en plantas
de proceso cercanas. Por ejemplo el centro B fue el que tuvo los peores resultados en
cuanto a eficacias (Grafico 6), (Tablas 6, y 7), al ver la figura número 6 ilustrada en la
metodología se puede ver que el centro B es afectado por dos corrientes locales
principalmente (flechas amarillas imagen 6), donde podría recibir emisiones de piojos
desde el centro A, y el centro D, y en alguna medida del centro C. Por otro lado, el
centro D fue el que tuvo los mejores rendimientos de eficacias, esto podría explicarse
debido a que las corrientes que le afectan directamente (flechas celestes imagen 6) no
tienen contacto con los otros centros vecinos, si bien podría recibir emisiones desde el
centro B la corriente principal proveniente desde el centro A se encarga de transportar
los parásitos en otra dirección sin afectar directamente al centro D. El centro A también
tuvo un buen rendimiento en cuanto a las eficacias y esto podría deberse a que solo
hay una corriente que circula en este centro y en su origen no pasa por otros centros
de cultivo, por lo que este centro no recibe emisiones de ningún centro vecino, es más,
aquí se pudo registrar las abundancias más bajas pre-tratamiento de todo el estudio
(Gráficos 1, y 2), mientras que el centro B tuvo las cargas de parasito iniciales pre-
tratamiento más altas (Gráficos 4, y 5).
57
7. - CONCLUSIÓN
Es imperativo que los tratamientos se realicen en forma coordinada entre todos los
centros vecinos, ya ha sido fundamentado que las corrientes tienen un gran efecto en
los tratamientos y eficacias, por lo tanto la coordinación en los baños debe realizarse a
favor de la corriente para que los centros que ya han sido tratados no vuelvan a
reinfestarse, aunque no siempre será efectivo ya que en este estudio se realizó de esa
manera (Tabla 11), (Figura 6). Sin embargo, otros factores también afectaron a las
eficacias (uso de antifouling en las jaulas en la eficacia de azametifos en juveniles y
adultos con uso de antifouling, y profundidad en la eficacia de ambos productos,
deltametrina y azametifos, en adultos) pero es la forma óptimo en que se deben
realizar, ya que cada sitio donde se localizan centros de cultivo tienen
comportamientos diferentes debido al importante efecto que tienen las corrientes en la
diseminación del parásito, al mismo tiempo en que se realicen tratamientos coordinados
entre los centros, también deben incluirse los centros de acopio de las plantas de
proceso cercanas a los centros ya que estos actúan como reservorios y emisores de
parásitos, al no poder ser tratados con quimioterapéuticos por la normativa vigente se
puede utilizar un método alternativo no químico (peróxido de hidrogeno, laser, etc.).
Otro punto importante en los tratamientos es la operatividad que realice el personal del
centro de cultivo, el tiempo de llenado de la lona debe ser rápido, y también debe
instalarse a favor de la corriente para que esta se llene por completo y no queden
burbujas de agua dentro, así, la dispersión del producto quimio farmacéutico utilizado
para el baño será homogéneo y la eficacia tendrá un mejor rendimiento. Las jaulas
58
deberían estar impregnadas con pintura antifouling para evitar pérdidas de eficacia
como se ha visto en este estudio.
Existen otras variables que no se incluyeron en este análisis, pero en un estudio futuro
podrían complementarse, como el efecto que podrían tener los peces silvestres que
pasan cerca de los centros de cultivo siguiendo sus rutas migratorias y pueden ser
emisores o receptores de parásitos y así infestar a los centros de cultivo a su paso.
También es importante realizar una correlación entre la conectividad de los centros y el
grado de infestación, abundancia y eficacia que existe en cada uno al aplicar distintos
tratamientos.
El uso extensivo de los medicamentos se ha traducido en una vía inevitable hacia la
resistencia. Esto impone una gran amenaza para la salud de los peces y su bienestar,
el medio ambiente, la economía en la producción de salmónidos, y para la producción
de peces y organismos marinos en general. En resumen, estos parásitos representan
un obstáculo económico y biológico masivo para la industria acuícola en todos los
países productores de salmón.
59
8. - REFERENCIAS
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