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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE CIENCIAS MÉDICAS
CARRERA DE LABORATORIO CLÍNICO E HISTOTECNOLÓGICO
PREVALENCIA DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS METICILINO RESISTENTE EN
PORTADORES NASALES DEL PERSONAL DE SALUD DE LAS ÁREAS: UNIDAD DE
CUIDADOS INTENSIVOS, NEONATOLOGÍA, QUIRÓFANOS Y EL ANEXO DE
TRAUMATOLOGÍA DEL HOSPITAL CARLOS ANDRADE MARÍN, DE OCTUBRE A
DICIEMBRE 2015
Trabajo de Fin de Carrera previo a la obtención del Título de Licenciada
en Laboratorio Clínico e Histotecnológico
AUTORA: Vaca Córdova Stephany Denisse
TUTOR: Dr. Marcelo Hernan Chiriboga Urquizo
QUITO, ABRIL 2016
ii
Dedicatoria
Las palabras simplemente son reflejo del corazón.
Esta etapa que culminó se la quiero dedicar a tres personas muy especiales en
mi vida que se encuentran junto a Dios, dos de ellas fueron mi motivación desde el
inicio de mi vida y lo son cada día y la última fue y seguirá siendo ese pedazo de cielo
quien será mi motor para llegar más lejos y dedicarles mis sueños cumplidos
De igual manera quiero extender mi agradecimiento a mis maestros, no sólo
universitarios, sino también del Hospital Carlos Andrade Marín, quienes me han
enseñado a luchar y no darme vencida.
iii
Agradecimiento.
Como no comenzar estas palabras agradeciendo en primer lugar al ser que
siempre me ha bendecido desde que era niña, ese ser que a pesar de mis errores jamás
me ha dado la espalda, Dios, quien me ha sabido levantar y guiar por el mejor camino.
De igual manera quiero agradecer a las personas que más he querido y a
quienes les debo lo que soy y a donde llegue, a quienes a pesar de la distancia y el
tiempo jamás me dejaron sola y siempre estuvieron junto a mí en cada momento.
Mis padres René y Marlene, quienes son mi orgullo y la más grande alegría
que Dios me brindó
También quiero agradecer de una manera muy infinita a mi familia Cindy,
Daniela y Nayeli quienes durante toda esta etapa que acaba de culminar estuvieron
dándome sus hombros y motivándome siempre a seguir adelante, a quienes no les
importó la hora ni el día y estuvieron ahí apoyándome.
iv
Autorización de la autoría intelectual.
Yo, Vaca Córdova Stephany Denisse, en calidad de autora del Trabajo de
Investigación o Tesis realizada sobre: “PREVALENCIA DE STAPHYLOCOCCUS
AUREUS METICILINO RESISTENTE EN PORTADORES NASALES DEL
PERSONAL DE SALUD DE LAS ÁREAS: UNIDAD DE CUIDADOS
INTENSIVOS, NEONATOLOGÍA, QUIRÓFANOS Y EL ANEXO DE
TRAUMATOLOGÍA DEL HOSPITAL CARLOS ANDRADE MARÍN, DURANTE
OCTUBRE 2015 A DICIEMBRE 2015”, por la presente autorizo a la UNIVERSIDAD
CENTRAL DEL ECUADOR, hacer uso de todos los contenidos que me pertenecen o
de parte de los que contiene esta obra, con fines estrictamente académicos o de
investigación.
Los derechos que como autora me corresponden, con excepción de la presente
autorización, seguirán vigentes a mi favor, de conformidad con lo establecido en los
artículos 5, 6, 8, 19 y demás pertinentes de la Ley de Propiedad Intelectual y su
Reglamento.
Quito, 29 de Enero de 2016
Vaca Córdova Stephany Denisse.
CI. 1723528996.
Telf: 0984405966
E-mail: [email protected]
v
INFORME DE APROBACIÓN DEL TUTOR
En mi carácter de Tutor del Trabajo de Grado, presentado por la señorita Vaca Córdova
Stephany Denisse para optar el Título o Grado de Licenciada en Laboratorio Clínico e
Histotecnológico cuyo título es de “PREVALENCIA DE STAPHYLOCOCCUS AUREUS
METICILINO RESISTENTE EN PORTADORES NASALES DEL PERSONAL DE
SALUD DE LAS ÁREAS: UNIDAD DE CUIDADOS INTENSIVOS,
NEONATOLOGÍA, QUIRÓFANOS Y EL ANEXO DE TRAUMATOLOGÍA DEL
HOSPITAL CARLOS ANDRADE MARÍN, DURANTE OCTUBRE 2015 A
DICIEMBRE 2015”. Considero que dicho Trabajo reune los requisitos y méritos
suficientes para ser sometido a la presentación pública y evaluación por parte del jurado
examinador que se designe.
En la ciudad de Quito a los 04 dìas del mes de Enero de 2016
Firma
Marcelo Chiriboga
C.I Nº 1703915726
vii
Índice de Contenidos
CAPÍTULO I: El problema
1.1Planteamiento del problema………………………………………...3
1.2Hipótesis……………………………………………………………..4
1.3 Objetivos………………………………………………….……...…4
1.3.1 General………………………………………………………5
1.3.2 Específicos………..……………………………….................5
1.4 Justificación………………………………………………………...6
1.5 Limitaciones de la investigación…………………………………...7
CAPÍTULO II: Marco teórico
Antecedentes……………………………………………………………8
Staphylococcus…………………………………………………………9
Taxonomía…………………………………...........................................9
Staphylococcus aureus…………………………………………………11
Definición…………………………………………………………........11
Morfología……………………………………………….......................12
Metabolismo………………………………………….…………….......13
Hábitat…………………………………………….…………….…14
Epidemiología……………………………………………………...16
Staphylococcus aureus meticilino resistente……………….….….……18
Resistencia a meticilina u oxacilina
Diagnóstico……..……………………………………………………….22
Fase pre analítica…………………………………...........................24
Fase analítica………………………………………………………..25
Cultivo microbiológico……………………….…………………………25
Antibiograma………………………………………………………..…....28
viii
CAPÍTULO III: Metodología
3.1 Diseño de la investigación…………………………………………30
3.2 Población y muestra.………………………………………………31
3.3 Operacionalización de las variables……………………………….33
3.4 Técnicas e Instrumentos de recolección de datos…………………34
3.5Técnicas para el procesamiento de datos y análisis de resutados….34
3.6 Discusión………………………………………………………….35
CAPÍTULO IV: Presentación de análisis y Resultados
4.1 Resultados…………………………………………………………37
4.3 Conclusiones………………………………………………………47
4.4 Recomendaciones…………………………………………………47
CAPÍTULO V: Propuesta
Bibliografía……………………………………………………………51
ix
Lista de Anexos
1. Anexo 1: Protocolo de Hisopado Nasal…………………………58
2. Anexo 2: Encuesta………………………………………….……59
x
Lista de Tablas
Contenido Pág
1. Tabla 1…………………………………………………………...44
Distribución del personal de Salud del área de Neonatología del Hospital Carlos
Andrade Marín, según el cargo que desempeñan
2. Tabla 2. ………………………………………………………….45
Distribución del personal de Salud del área de Cuidados Intensivos del Hospital
Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeñan
3. Tabla 3…..………………………………………………………46
Distribución del personal de Salud del área del Anexo de Traumatología del
Hospital Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeña
4. Tabla 4……………………………………………………………47
Distribución del personal de Salud del área de Quirófano del Hospital Carlos
Andrade Marín, según el cargo que desempeñan
5. Tabla 5. …………………………………………………………..48
Distribución de los 191 trabajadores de salud según pruebas de identificación del
Staphylococcus aureus
6. Tabla 6. ……………….…………………………………………50
Distribución de los 44 Cultivos positivos para Staphylococcus aureus en Agar
Muller Hilton
7. Tabla 7.………………………………………………………….51
Distribución del personal de Salud de las áreas Neonatología, Unidad de Cuidados
Intensivos, Anexo de Traumatología y de Quirófano del Hospital Carlos Andrade
Marín, según el germen encontrado
8. Tabla 8. …………………………………………………………52
Distribución del porcentaje de Staphylococcus aureus meticilino resistente del
personal de Salud de las áreas Neonatología, Unidad de Cuidados Intensivos,
Anexo de Traumatología y de Quirófano del Hospital Carlos Andrade Marín, según
el cargo que desempeña
xi
Tema: “Prevalencia de staphylococcus aureus meticilino resistente en portadores nasales
del personal de salud de las áreas: unidad de cuidados intensivos, neonatología, quirófanos
y el anexo de traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín, de Octubre a Diciembre
2015”
AUTORA: Vaca Córdova Stephany Denisse
TUTOR: Dr. Marcelo Hernan Chiriboga Urquizo
RESUMEN
Dicho trabajo corresponde a un proyecto de investigación en donde se habla de la
importancia que genera conocer sobre el Staphylococcus aureus meticilino
resistente, teniendo como objetivo principal establecer la prevalencia de en
portadores nasales dentro del personal de salud de cuatro áreas del Hospital Carlos
Andrade Marín (Unidad de Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el
Anexo de traumatología), Para el estudio se utilizó un diseño observacional
transversal de nivel descriptivo. Se contó con la participación de 191 personas, a
quienes previo consentimiento informado y mediante una encuesta se les realizó
una toma de hisopado nasal, cuya muestra posteriormente fue cultivada y procesada
en el Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín, De los 191
participantes se obtuvieron 44 cultivos positivos para Staphylococcus aureus, de los
cuales 24 es decir el 56% de éstos fueron meticilino resistente, dando como
resultado una prevalencia del 12,5% de portadores nasales de Staphylococcus
aureus meticilino resistente en las áreas investigadas. La prevalencia encontrada en
dicho estudio, es similar a otros estudios realizados a nivel local como internacional,
en donde se ha evidenciado que el personal que con mayor frecuencia es portador de
Staphylococcus aureus meticilino resistente son las profesionales en enfermería,
corroborando dicha evidencia con el estudio realizado en el Hospital Carlos
Andrade Marín.
Palabras claves: Staphylococcus aureus meticilino resistente.
xii
Topic: “Mericilin resistance staphylococcus aureus prevalence in nasal carriers of
health personnel in intensive care unit, neonatal, operating room and trauma annex
of Carlos Andrade Marín hospital during de October to December 2015”
AUTHOR: Vaca Córdova Stephany Denisse
TUTOR: Dr. Marcelo Hernan Chiriboga Urquizo
ABSTRACT
This work corresponds to a research project The purpose of this work is to develop
a research on the current state of nasal carriers of health perso, in which speaks
about the importance that generates know about meticilin- resistant Staphylococcus
aureus in nasal carriers of health personnel in four areas of Carlos Andrade Marín
Hospital (Intensive Care Unit, Neonatal, Operating Room and Trauma Annex), For
this work it was used a cross-sectional observational study design it was used
descriptive level. It was attended by 191 people, who prior informed consent and a
survey underwent taking nasal swab, the sample was subsequently grown and
processed in the Laboratory of Microbiology of the Carlos Andrade Marín Hospital,
under the established protocols. Of the 191 participants 44 positive cultures for
Staphylococcus aureus were obtained, of which 24 (56%) of these were methicillin
resistant, resulting in a 12.5% , prevalence of nasal carriage of methicillin-resistant
Staphylococcus aureus in the areas investigated .
The prevalence found in this study is similar to other studies conducted locally and
internationally, where it has been demonstrated that personnel more frequently
carries methicillin-resistant Staphylococcus aureus are nurse practitioners, such
evidence corroborating the study held at the Carlos Andrade Marín Hospital.
Keywords: meticilin resistant Staphylococcus aureus,
I CERTIFY that the above and foreing is true and correct translation of the original
document in spanish
1
INTRODUCCIÓN.
Las enfermedades nosocomiales a lo largo de la historia han llegado a ser
un problema de Salud Pública de alto impacto, las muertes que cada año han
aumentado gracias a éstas, han generado gran preocupación dentro del margen
médico, económico y social de un país, puesto que las mismas no sólo afectan al
estado de salud del paciente atendido, sino también al manejo del mismo.
Muchas de éstas enfermedades, actualmente han sido atribuidas a los
cuidados sanitarios que tiene el personal de salud que atiende a los pacientes.
En un estudio realizado en la Universidad de Málaga en el año 2013, a
pacientes con enfermedades nosocomiales, se observó que existe un incremento
en la resistencia antimicrobiana, en donde las bacteremias estaban lideradas por
los microorganismos gram positivos (57%), donde se evidenció que uno de los
principales causantes de dichas bacteremias es el Staphylococcus aureus, que en
su variedad de meticilino resistente representa el 25% de las infecciones en áreas
críticas de hospitales de alta complejidad asistencial. (Benitez Diaz, 2011).
Motivo por el cual las infecciones causadas por el Staphylococcus aureus
meticilino resistente generan una gran preocupación, ya que, la mayoría de ellas
son contraídas a nivel hospitalario, que agregándole un estado de salud poco
adecuado y la multirresistencia bacteriana, han ocasionado que éste patógeno se
convierta en una amenaza en los centros de salud.
Un estudio realizado en la Universidad de Perú demostró que la
prevalencia de portadores del Staphylococcus aureus meticilino resistente, se
encontraba en un 7,3% afectando con mayor frecuencia al personal de enfermería
(Montalvo & Huaroto, 2011).
Dentro del país se han realizado investigaciones para conocer la
prevalencia de portadores de Staphylococcus aureus meticilino resistente, en
donde se han encontrado resultados preocupantes, motivo por el cual es de mucha
importancia estar al tanto del número de portadores nasales de Staphylococcus
2
aureus meticilino resistente su prevalencia de en el personal de salud de cuatro
áreas críticas del Hospital Carlos Andrade Marín.
Ésta investigación realizada en el Hospital Carlos Andrade Marín, no solo
aportará datos sobre la prevalencia de portadores nasales que trabajan en dicha
casa de salud, sino que también será de mucha ayuda para implementar planes y
contrarrestar de una manera más óptima la posible infección en los pacientes a
nivel hospitalario, beneficiando al estado económico, social y de salud dentro del
hospital.
3
CAPÍTULO I
EL PROBLEMA.
1.1 Planteamiento del problema.
En el Hospital Carlos Andrade Marín, según un informe técnico realizado
en el 2014, existe un alto índice de mortalidad en el Hospital, en donde las
septicemias generan gran preocupación a nivel hospitalario, ya que, las mismas
representan el 1,1% de muertes por cada 100,000 habitantes.
Dichas septicemias en su mayoría se encuentran determinadas por el
Staphylococcus aureus que en su variedad meticilinoresistente ha ocasionado una
preocupación alarmante por evitar su diseminación.
El Staphylococcus aureusa pesar de que forma parte de la flora normal de
la piel y las mucosas de individuos sanos, se presenta como uno de los patógenos
hospitalarios más importantes ya, que su prevalencia puede alcanzar valores que
oscilan entre el 40-60% del total de infecciones nosocomiales. (Huang, 2013).
La transmisión puede ocurrir de manera involuntaria debido a la falta de
síntomas entre los portadores, es por eso que a nivel mundial desde hace algunos
años se han implementado políticas de identificación temprana y control
inmediato en los mismos.
A nivel nacional en el año 2010 se realizó una investigación en el Hospital
de las Fuerzas Armadas en donde se encontró una prevalencia del 12% de
presencia del Staphylococcus aureus meticilino resistente en el personal de salud
que labora en dicha casa de salud.(Cimera & Perez, 2010).
Motivo por el cual es importante conocer si el número de portadores
nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente, en el personal que labora
en áreas críticas como son Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y
Anexo de Traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín, es elevado y si la
4
prevalencia de los mismos en dichas áreas críticas podría ser un factor de
transmisión hacia los pacientes atendidos.
5
1.2 Hipótesis.
Laprevalencia de portadores nasales de Staphylococcus aureus meticilino
resistente en las áreas de Unidad de Cuidados Intensivos, Neonatología,
Quirófanos y el Anexo de Traumatología del personal que trabaja en el Hospital
Carlos Andrade Marín es elevada.
1.3 Objetivo general.
Determinar la prevalencia de portadores nasales de Staphylococcus aureus
meticilino resistente en el personal de salud de las áreas de Unidad de Cuidados
Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el Anexo de Traumatología del Hospital
Carlos Andrade Marín a través del Cultivo Microbiológico de muestras de
hisopado nasal.
1.4. Objetivos específicos.
Caracterizar a la población del personal de salud según el servicio
en el que trabaja y el tipo de cargo que desempeña.
Identificar el número de portadores nasales deStaphylococcus
aureus meticilino resistente mediante el cultivo microbiológico del hisopado
nasal.
Determinar la prevalencia de portadores nasales de dicha bacteria
en las áreas: Unidad de Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el
Anexo de Traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín.
6
1.6 Justificación.
El Staphylococcus aureus es uno de los patógenos de mayor importancia
médica genera ya que al ser meticilinoresistente, ha llegado a ser un agente difícil
de eliminar.
En las áreas hospitalarias genera preocupación sobre cuál es la principal
aparición de dicha bacteria en los pacientes.
Estudios realizados en diversos países han demostrado que determinadas
áreas hospitalarias poseen mayor número de pacientes colonizados por el
Staphylococcus aureus meticilino resistente, así se menciona que en el área de
Cuidado Intensivos existe una prevalencia del 17,6% de pacientes afectados,
mientras que el área de atención a neonatos se ha encontrado una prevalencia del
15% de pacientes afectados(Montalvo & Huaroto, 2009).
Esto genera preocupación puesto que dicha bacteria es la causante de
provocar el 50% de las sepsis severas en las unidades de salud.(Alvarez & Elsa,
2013).
La identificación temprana de portadores nasales de Staphylococcus
aureus meticilino resistente en el personal de salud de las áreas de Unidad de
Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el Anexo de Traumatología del
Hospital Carlos Andrade Marín es de suma importancia, ya que esto permitirá
identificarlos, evaluar su prevalencia dentro de cada área y generar la
implementación progresiva de medidas precautelares y de control de la
transmisión en el Hospital a mediano plazo.
Conocer en qué área anteriormente mencionadas existe mayor prevalencia
de portadores, permite beneficiar a la comunidad y a los pacientes, brindando
datos locales que guiarán en el control de dicha infección y contrarrestando el
riesgo de contaminación del personal de salud hacia los pacientes, motivo por el
7
cual se ha elaborado esta investigación previa a la obtención del Título de
Licenciada en Laboratorio Clínico e Histotecnológico.
1.6 Limitaciones de la investigación.
Falta de aprobación del consentimiento informado por parte de los
participantes.
Personal de salud incluido en el estudio, quienes no cumplan con
las condiciones adecuadas para la toma de muestra.
Falta de colaboración de los participantes.
Número de participantes insuficientes.
8
CAPÍTULO II.
MARCO TEÓRICO.
Antecedentes.
Durante el siglo XX varias enfermedades se pronunciaron dentro de la
medicina, las cuales iban desde patologías conocidas hasta aquellas que eran
nuevas, hasta que enel año1880,concretamente en la ciudad escocesa
deAberdeen,en unos abscesos se encontraron unos microorganismos en forma de
racimos de uva, mismos que fueron denominados por el Médico cirujano escoces,
Sir Alexander Ogston, como Staphylococcus derivando el nombre de los términos
griegos staphile (racimo de uvas) y kokkus (frutilla). (Seija, 2013).
En 1941, las infecciones estafilocócicas eran erradicadas por penicilina,
pero un poco más tarde, en1945, Sprink Ferri,reportó una cepa de Staphylococcus
aureus resistente a la penicilina, misma que por la acción de una β-lactamasa, la
destruía (Gil, 2012).
Para1950, con la introducción de la penicilina y las sulfonamidas, los
estafilococos tomaron lugar como agentes de infección intrahospitalaria, siendo
así que para1959, año en que apareció la meticilina (una penicilina semisintética),
el 60% de las cepas ya eran resistentes a penicilina, en1961, Jevons hizo el primer
reporte de la existencia de un Staphylococcus aureusresistente a meticilina;
cuando ésta era una causa importante de infección nosocomial en Europa(Jevon,
2012).
Ya que el Staphylococcus aureus es uno de los agentes que lidera el listado
de patógenos que causan septicemia en pacientes atendidos en casas asistenciales
de alta complejidad, es necesario identificar si la portación asintomática del
patógeno entre el personal de salud de dichos hospitales se considera una causa
para la transmisión nosocomial de este agente.
9
En el Ecuador, existen algunos hospitales que brindan atención de alta
complejidad, entre ellos tenemos al Hospital Carlos Andrade Marín, en donde un
informe realizado en el 2014, identificó que la muerte causada por septicemia
dentro del hospital ocupaba uno de los diez primeros lugares.
Gracias a que el mismo es un hospital de tercer nivel y atiende problemas
de salud de todas las especialidades médicas, es necesario que se tenga claro si la
posible presencia de portadores nasales de Staphylococcus aureus meticilino
resistente genera un problema a nivel hospitalario, ya que se conoce que tanto
pacientes como el personal de salud son considerados como los principales
reservorios de este patógeno.
Staphylococcus.
Taxonomía.
Los Staphylococcus son bacterias pertenecientes a la familia
Micrococacceae, Gram positivos, en forma de cocos (redondos) agrupados en
parejas o en racimos de catalasa positivos.
Figura 1: Vista mircroscópica del Staphylococcus
Obtenido de:
http://virus.usal.es/web/demo_microali/enterotoxina/set.html
10
El género Staphylococcus posee alrededor de 30 especies, de las cuales las
más destacadas son Staphylococcus aureus, Staphylococcus saprophyticus y
Staphylococcus epidermidis.
De las tres especies anteriormente mencionadas la que más relevancia
médica tiene es el Staphylococcus aureus, ya que éste posee una alta incidencia
como agente de infección, tanto en la comunidad como a nivel hospitalario.
Es el primer agente de infecciones, desde superficiales como el forúnculo,
a profundas como osteomielitis, neumonía y endocarditis aguda.
A nivel nosocomial se destaca como primer agente de infección de heridas
operatorias y de prótesis.
Asímismo, el Staphylococcus aureus es capaz de causar cuadros tóxicos,
ya que posee una alta producción de potentes exotoxinas, ocasionando patologías
como intoxicación alimentaria, síndrome de piel escaldada y shock tóxico.
Además cabe destacar que gracias a la gran capacidad de adaptación y
supervivencia de esta bacteria, su aumento progresivo de resistencia a los
antimicrobianos, en especial en el medio hospitalario, plantea serios problemas
epidemiológicos y terapéuticos.
A través de los años se ha incrementado la tasa de morbilidad y mortalidad
a pesar del gran número de antibióticos disponibles que existen.
11
Staphylococcus aureus.
Figura 2: Microfotografía electrónica del Staphylococcus aureus.
Obtenido
de:https://es.wikipedia.org/wiki/Staphylococcus_aureus#/media/File:Staphylococcus_aureus_VISA_2.jpg
Definición.
Es una bacteria cocoide, fermentadora de glucosa, anaerobia facultativa,
ésto significa que puede crecer tanto en condiciones con oxígeno como carente de
éste, gram positiva.
La infección por Staphylococcus aureus es bastante común y de larga
historia pues es resistente a la penicilina, y esto la ha llevado a convertirse en un
reto para la comunidad médica.
Ésta es capaz de ocasionar una gran gama de enfermedades, que van desde
infecciones cutáneas y de las mucosas relativamente benignas, tales como
foliculitis1, forunculosis o conjuntivitis, hasta enfermedades de riesgo vital, como
celulitis, abscesos profundos, osteomielitis, meningitis, sepsis, endocarditis o
neumonía(Yanez, 2013).
1Es la inflamación de uno o más folículos pilosos y se puede presentar en cualquier parte de la piel.
12
Morfología.
El Staphylococcus aureus es un coco inmóvil, de 0.8 a 1 micrómetro de
diámetro, que se divide en tres planos para formar grupos de células irregulares
semejantes a racimos de uvas, a pesar de ser un microorganismo gram positivo, es
decir que toma una coloración azul oscura o violeta, sus células viejas se tiñen
como gramnegativos (pigmentación rojiza).
Se encuentra compuesto por una pared celular gruesa, misma que se
encuentra formada por una capa de peptidoglicanos2.
Su pared celular se caracteriza de poseer una proteína característica
llamada proteína A. ésta proteína tiene la habilidad de unirse a la porción
constante de las moléculas de inmunoglobulina G (IgG), y por lo tanto funciona
como factor de virulencia, ya que interfiere con la opsonización y la ingestión de
los microorganismos por los Polimorfonucleares, activando el complemento y
dando lugar a reacciones de hipersensibilidad inmediata y tardía.
Existe otro componente mayor en la pared celular, son los ácidos teicóicos,
que constituyen alrededor del 40% del peso de la pared.
Éstos ácidos son polímeros de glicerol fosfato, azúcares y algunas veces,
D-alanina, que actúan como mediadores de unión entre la bacteria y superficies
mucosas por medio de uniones específicas a la fibronectina.(Garcia, 2013).
La presencia de cápsula en dicha bacteria es variable pero es importante a
nivel patogénico, ya que tiene propiedades antifagocíticas.
Algunas cepas de Staphylococcus aureus se encuentran recubiertas por una
capa de polisacáridos externos denominada slime o capa mucoide.
Dicha cápsula o capa le confiere la capacidad de adherencia y actividad
antifagocítica a la bacteria.
2 Es un polisacárido compuesto que tiene como función proporcionar:
- Rigidez de la pared bacteriana.
- Resistencia osmótica.
- Atraer a los Polimorfo nucleares .
- Producción de anticuerpos opsonizantes .
13
Además el Staphylococcus aureus puede presentar en su superficie
receptores para el colágeno(Garcia, 2013).
En su membrana citoplasmática encontramos dos clases de proteínas:
o Proteína A: La cual se usa para realizar una prueba de aglutinación
en la identificación de Staphylococcus aureus y tiene la capacidad
de reconocer moléculas de la matriz extracelular(Murray, 2009).
o Coagulasa: Proteína la cual convierte el fibrinógeno en fibrina,
produciendo coagulación del plasma(Murray, 2009).
Ensu citoplasma se encuentran ubicados organelos los cuales le permiten
cumplir con sus funciones de digestión, respiración y fagocitosis.
Como característica propia de las bacterias por ser seres procariotas el
Staphylococcus aureus no posee membrana nuclear, misma que separa su material
genético del citoplasma sino que el mismo se encuentra distribuido por todo el
citoplasma.
Figura 3:Morfología de la pared celular del Staphylococcus aureus
Obtenido de: https://www.google.com.ec/search?q=morfolog%C3%ADa+del+estafilococo&source.jpg
14
Metabolismo.
El Staphylococcus aureus tiene un metabolismo de tipo fermentativo y
anaerobio facultativo, catalasa3 positivo y oxidasa
4 negativo, son capaces de
fermentar la glucosa sin producción de gases y producen acetil metil carbinol.
Su temperatura óptima de crecimiento va de 35 a 40 °C y el pH óptimo
oscila entre 7,0 y 7,5 aunque soportan pH mucho más extremos.
Poseen una enzima, denominada coagulasa, misma que los diferencia del
resto de las especies del género; ésta tiene la facultad de reaccionar con el
fibrinógeno dando lugar a un coágulo de fibrina.
Hábitat.
A pesar de que el Staphylococcus aureus posee numerosos factores de
virulencia, éste puede convivir con el huésped humano formando parte de su flora
normal sin causar ningún daño.
El Staphylococcus aureus se encuentra habitualmente a nivel de la
nasofaringe y de zonas húmedas tales como pliegues inguinales y axilas.
3 Esuna enzima que cataliza la descomposición del peróxido de hidrógeno en oxígeno y agua.
4 Es una enzima que cataliza la oxidación/reducción empleando oxígeno, en esta reacción el oxígeno se
reduce a agua o a peróxido de hidrógeno.
15
Figura 4: Epitelio normal de la cavidad nasal y de la nasofainge
Obtenido de: https://www.google.com.ec/search?q=morfolog%C3%ADa+del+estafilococo&source
La nasofaringe se encuentra situada por detrás de las fosas nasales y por
delante de la columna cervical superior; su límite superior es la base del cráneo y
su límite inferior es el velo del paladar o paladar blando, recubierta por epitelio de
tipo pseudoestratificado ciliado, tiene la función de comunicar el oído con la
faringe.
A nivel del vestíbulo nasal anterior la adherencia parece estar mediada por
el contenido en ácidos teicóicos. Se estima que el índice de portación nasal en los
adultos es de alrededor del 20-30%.(Mandel, 2013).
El vestíbulo nasal constituye los primeros 1,5 cm de cavidad nasal, el
mismo se encuentra recubierto por pelos cuya función es captar polvo y agentes
extraños. En su parte posterior se ubica un epitelio estratificado plano mismo que
desaparece a nivel de las vibrisas.
Existen ocasiones en que éste equilibrio se puede romper. Desde las
narinas, los portadores pueden transferir bacterias a diferentes sectores de la piel,
16
aunque habitualmente existe resistencia a la colonización de la piel intacta(Mandel,
2013).
Expresado longitudinalmente, cerca del 30% de la población puede ser
portador permanente, el 50% portador intermitente y el 20% no es colonizado, es
por eso que la mayoría de los casos de infección nosocomial se adquieren a través
de la exposición a las manos de los trabajadores de la salud después de haber sido
transitoriamente colonizados con estafilococos de su propio depósito o por el
contacto con un paciente infectado.(Douglas, 2013).
Epidemiología.
Staphylococcus aureus es uno de los patógenos más importantes a nivel
mundial, dentro la medicina, se lo considera como una bacteria oportunista que
forma parte de la micro flora humana,en donde aproximadamente un tercio de la
población general es portadora de Staphylococcus aureusen sus fosas nasales, y la
colonización por estafilococos es un factor de riesgo conocido para infecciones
posteriores.
Poco después del nacimiento, los neonatos son colonizados por
Staphylococcus aureus, cuya colonización más frecuente es la mucosa nasal, datos
previos sugieren que la frecuencia de colonización por Staphylococcus aureus
meticilino resistente se encuentra entre el 1% y el 4% en niños y madres, ésta
colonización se ve facilitada ya que su epitelio posee células caliciformes
productoras de moco y la presencia de cilios en su superficie (Jimenez & Tedeschi,
2012).
17
Figura 5: Epitelio nasal (notese las células caliciformes productoras de moco y los cilios)
Obtenido de: http://www.fitonasal2act.es/como-funciona-la-nariz/la-mucosa-nasal/
Siendo ésta el principal reservorio que posee el hombre enfermo o el
portador, y que la colonización por estafilococos es un factor de riesgo conocido,
éste se encuentra ampliamente distribuido por todo el mundo, estimándose que
una de cada tres personas se hallan colonizadas, aunque no infectadas, por ella,
siendo considerado el ser humano como un reservorio natural de Staphylococcus
aureus el 30 al 50% de los adultos sanos se encuentran colonizados (Cortes &
Sergio, 2013).
Es más frecuente la colonización de dicho patógeno en el hospital,
especialmente en pacientes con hemodiálisis, diabéticos, pacientes con lesiones
cutáneas, pacientes infectados con VIH, pacientes ubicados en el área de Cuidados
Intensivos y adictos a las drogas.
El aumento de infecciones por Staphylococcus aureusmeticilino resistente,
constituye un problema de salud pública y se asocia con mayor morbilidad,
mortalidad, días de hospitalización y costo ya que causa aproximadamente
100.000 infecciones invasivas y aproximadamente 20.000 muertes por año en los
Estados Unidos.
El Journal of American Medical Association reportó que aproximadamente
el 85% de las infecciones invasivas ocasionadas por el Staphylococcus aureusen
su variedad, meticilino resistente se originaban en el entorno médico, puesto que
18
el mismo por el desconocimiento de una posible portación y el rol que
desempeñan las manos del personal de salud pueden ocasionar una transmisión
entre pacientes, entre personal paciente y del mismo paciente .
El CDC5 en una publicación del 2007 reportó que en el año 2005 más de
94,000 infecciones potencialmente mortales fueron registradas y casi 19,000
muertes en Estados Unidos fueron ocasionadas por el Staphylococcus aureus
meticilino resistente (Perez & Francisco, 2010).
En Latinoamérica Reyes publicó que la difusión del Staphylococcus
aureus meticilino resistente reporta una tasa de aislamiento de dicho patógeno
más elevada en Perú (62%) seguida de Colombia (45%) y Ecuador con el
(26%)(Reyes & Rincon, 2013).
Staphylococcus aureus meticilino resistente.
La resistencia a los antimicrobianos es un problema de salud pública
importante, que ha llegado a un punto crítico en muchos hospitales de todo el
mundo.
Por métodos estadísticos se ha demostrado que el uso exagerado e
inapropiado de los antibióticos ha provocado un cambio genético (mutación),
producido por azar y generalmente trasmitido por herencia y que aparece
espontáneamente en una población heterogénea
En 1942, un año después de la introducción y uso de la penicilina en la
práctica médica, Rammelkamp, comunica las primeras resistencias del
Staphylococcus aureus a ésta prometedora droga
5 Centros para el Control y prevención de enfermedades.
19
Éste microorganismo había tenido la capacidad de desarrollar la
producción de lactamasas6, mismas que descomponen el anillo lactámico de la
penicilina e impiden su unión con las proteínas de unión a la penicilina (PBP)7.
A finales de los años 40, más de la mitad de los Staphylococcus aureus,
aislados en hospitales de Inglaterra y EEUU eran resistentes a penicilina.
A partir de la década de los 50 comenzó a aumentar la tasa de resistencia a
este antibiótico, hasta que finalmente perdió su utilidad para el tratamiento de las
infecciones estafilocócicas.
La resistencia a la penicilina llevó al desarrollo de penicilinas
semisintéticas8, como la meticilina, resistentes a la acción de las lactamasas del
Staphylococcus aureus, para las que este microorganismo también desarrollaría
rápidamente mecanismos de resistencia.
El Staphylococcus aureus resistente a meticilina mejor conocido como
MRSA produce PBPs de baja afinidad por los lactámicos denominadas PBP29 o
PBP2a, mismos que mantienen activa la síntesis de la pared bacteriana en
presencia de estos antibióticos.
Resistencia a meticilina u oxacilina.
Ésta resistencia consiste en la producción de una nueva proteína fijadora
de penicilina (penicillin-binding protein) PBP, llamada PBP2a o PBP2’, no
6 Es unaenzima producida por algunas bacterias, responsable por la resistencia que éstas exhiben ante la
acción de antibióticos betalactámicos como las penicilinas, las cefalosporinas, monobactamicos y
carbapenémicos.
7 Son enzimas localizadas en la membrana bacteriana que están implicadas en la síntesis del peptidoglicano
de la pared celular.
8Son aquellas generadas mediante el aislamiento de un intermediario estable durante
una producción microbiológica industrial continuada por la modificación química o enzimática del compuesto
aislado
9Son enzimas que poseen una baja afinidad por los antibióticos beta-lactámicos como la meticilina y la
penicilina
20
presente en las cepas sensibles, está codificada por un gen llamado gen mecA10
,
que está presente en el cromosoma de todas las cepas de Staphylococcus aureus
resistentes a meticilina.
Los mec genes probablemente se originaron a partir de una especie
diferente de estafilococos. Aunque muchas cepas resistentes a la Meticilina
parecen ser descendientes de un número limitado de clones.
Ésta secuencia cuenta con dos genes reguladores:
Gen mecR1 o gen regulador de la señal
Gen mecl, que codifica la proteína represora de la transcripción del
gen mecA.
La transcripción se produce cuando el beta lactámico llega a la célula y se
une al receptor-dominio de unión a la penicilina de la membrana citoplasmática
codificado por el gen mecR1a, desencadenando una señal la cual induce a la
proteasa autocatalítica a unirse al mecl, el cual está bloqueando la región
operadoradora del mecA, siendo posible la expresión de PBP2a.
Figura 6: Representación gráfica de un fragmento de ADN de Staphylococcus aureus meticilino resistente
Obtenido de: http://diposit.ub.edu/dspace/bitstream/2445/42524/1/CBO_TESIS_DOCTORAL.pdf
Se han descrito otros genes de naturaleza cromosómica, que no están
comprendidos en el gen mec, pero que son escenciales en la expresión fenotípica
de la resistencia, son los genes “fem”(por factores esenciales para la resistencia a
10 El mecA gen permite a una bacteria ser resistente a antibióticos tales como la meticilina y penicilinita
21
la meticilina) y los genes “chr” (conllevan a la resistencia de alto nivel a la
meticilina).
La expresión de la resistencia a la meticilina es a menudo heterogénea, y el
porcentaje de una población bacteriana que expresa el fenotipo de resistencia varía
en función de las condiciones ambientales.
Por otro lado, la resistencia a un antibiótico puede ser adquirida por la
bacteria, esta se genera por mecanismos como pequeñas mutaciones (mutaciones
puntiformes, a veces únicas), o grandes mutaciones (Transposición o
translocación de grandes cadenas) de su material genético.
Otro mecanismo por el cual la bacteria puede adquirir resistencia es
mediante la adquisición o transmisión de genes de la resistencia intra o inter
especies. Este intercambio de información de material genético usualmente
extracromosómico se realiza mediante vehículos que trasladan el material de
bacteria a bacteria, llamados integrones, bacteriófagos o transposones11
.
Se han descrito otros mecanismos de resitencia, la cual no está mediada
por los genemecA, éstos son:
Hiperproducción de penicilasa: Son denominadas cepas BORSA, ya que
sintetizan una cantidad importante de beta lactamasa y no posee ni el gen mecA ni
PBP2a (Mc Dougal, 2012).
Producción de meticilinasa: Son capaces de hidrolizar la meticilina en
ausencia del gen mecA los genes responsables no están claramente especificados.
Modificación de las PBPs: Son las cepas conocidas como MODSA,
poseen una resistencia baja a la oxacilina y no productoras de beta lactamasas,
esto puede ser precedido por una hiperexpresión de PBPs o la consecuencia de
11Elemento genético transponedle es una secuencia de ADN que puede moverse de manera autosuficiente a
diferentes partes del genoma de una célula. En este proceso, se pueden causar mutaciones y cambio en la
cantidad de ADN del genoma.
22
mutaciones genéticas que alteran la afinidad de la proteína final por el
antibiótico.(Sierra & Castro, 2012).
Diagnóstico.
Para realizar el diagnóstico del Staphylococcus aureus, se debe aislar la
bacteria a partir de distintas muestras clínicas como:
Secreción de heridas.
Abscesos .
Sangre en el caso de infecciones sistémicas.
Muestras nasales.
Muestras de productos .
Hisopados de material hospitalario.
A nivel hospitalario ésta es un agente altamente preocupante ya que la
resistencia antibiótica que posee genera problemas no solo a nivel de salud del
paciente sino en la atención de calidad que requiere.
Un principal reservorio de dicho agente como anteriormente se ha
mencionado son las cavidades nasales del personal de salud que laboran en
hospitales, es por ello que para identificar la presencia o no de dicho patógeno se
ha tomado como referencia el aislar a la bacteria a partir del hisopado nasal
El hisopado nasal es una técnica en la cual bajo un determinado protocolo
se pueden obtener muestras de diferentes patógenos, en este caso se va a obtener
una muestra de Staphylococcus aureus para investigar la presencia del mismo y si
existe o no resistencia en caso de encontrarse.
23
Figura 7: Muestra de hisopado nasal
Obtenido: http://www.ins.gob.pe/repositorioaps/0/4/jer/syr_doctecnic/Obtencion%20de%20muestras%20Sar
_Rub.pdf.
Para ello un protocolo adecuado del Hisopado nasal constituye un punto
muy importante dentro de una investigación ya que garantiza la idoneidad de los
resultados.
Varios protocolos han sido propuestos por parte de la Guía Española de
Microbiología y otras investigaciones realizadas, es así que se estandarizo un
protocolo para el hisopado nasal (anexo 1).
Todo procesamiento que se desarrolla en el Laboratorio se rige a
protocolos establecidos de manera específica en cada centro de salud, pero en
términos generales para un correcto procesamiento se lleva a cabo tres fases
importantes .
Fase pre analítica: En donde se identifican a los individuos y se
toman las muestras.
Fase analítica: Se procesan las muestras tomadas en la fase pre
analítica.
Fase post analítica: Consiste en la elaboración de resultados
24
Para identificar al Staphylococcus aureus meticilino resistente se
desarrollan estas tres fases anteriormente mencionadas.
Fase pre analítica.
En esta fase el investigador procede a obtener las muestras del patógeno a
partir de los pacientes a participar en la investigación.
Para ello antes de llevar acabo el protocolo de hisopado nasal es necesario
verificar si el participante cumple con las condiciones establecidas para la
investigación a realizar.
Una vez verificadas las condiciones se procede a realizar la toma de
muestra, para dicha toma se debe identificar los materiales necesarios y adecuados
para llevar acabo la misma, es así que para la investigación del Staphylococcus
aureus es necesario utilizar un hisopo estéril que sea de Rayón, ésta condición es
importante ya que el hisopo al ser estéril y de dicho material garantiza la
conservación de las bacterias
Luego de efectuar la toma de muestra debe ser transportada de igual
manera en un medio de transporte estéril y adecuado para así garantizar la
idoneidad de la muestra.
Figura 8: Hisopo de rayón y medio de transporte en gel.
Obtenido de:http://omgmesa5us.tumblr.com/
25
Una vez que la muestra llegue al lugar donde se va a analizar se procede a
efectuar
Fase analítica
Cultivo Microbiológico
Para identificar la presencia de Staphylococcus se realiza la siembra por
agotamiento de la muestra tomada en un medio de cultivo que posea las
características adecuadas para el desarrollo del agente, este medio debe estar
enriquecido de glucosa, sales, aminoácidos, tiamina y acido nicotínico,
generalmente se utiliza el Agar Sangre.
Figura 9: Estriado por el método de agotamiento
Obtenido de: http://microbiologia3bequipo5.blogspot.com/2014/10/tecnicas-y-metodos-de-estriado-en-caja.html
Figura 10: Agar sangre.
Obtenido de:http://www.laanunciataikerketa.com/trabajos/manoslimpias/medios.pdf
26
En medios suplementados, los estafilococos crecen bien en rangos de pH
de 4.8 a 9.4 y a temperaturas de 25 a 43 °C.(Meza, 2014).
Después de 24 horas de incubación a 37°C, se observan colonias de 1 a 3
mm de diámetro, lisas, levemente elevadas, de bordes enteros, levemente
convexas, cremosas y brillantes, que generalmente presentan un pigmento con un
color que puede ir desde el crema al amarillo, gracias a la producción de
carotenoides12
.
La producción de pigmento se ve favorecida si se incuban los cultivos por
24 a 48 horas adicionales a temperatura ambiente. Cuando crecen en agar sangre
ovina se puede observar una zona de β-hemólisis alrededor de las colonias.
(Mandel, 2013).
Figura 11: Staphylococcu aureus en agar sangre
Obtenido de:https://microbitos.wordpress.com/2011/08/03/staphylococcus-aureus-
epidermidis-saprophyticus/staphy-aureus/
12 CAROTENOIDES: Son pigmentos orgánicos que se ubican en la pared del estafilococo, los cuales le
proporcionan la resistencia a la acción inmunológica del ser humano y a la acción bactericida de los
antibióticos.(Preidt, 2013)
27
A las colonias más aisladas se les realiza la tinción de Gram en donde se
observan cocos gram positivos en racimo, adicional para identificar la especie de
estafilococo se realiza la siembra de un inóculo denso de la muestra en Agar sal
manitol13
.
Éste es un medio altamente selectivo debido a su alta concentración
salina, en donde el Staphylococcus aureus hidroliza el manitol acidificando el
medio y observando las colonias rodeadas de una zona amarilla brillante, el
tiempo de incubación oscila entre 18-24 horas a 35-37°C.
Figura 12: Agar sal Manitol
Obtenido de:http://www.labmedibac.com/wp-content/uploads/2015/04/AGAR-MANITOL-SALADO-MEDIBAC-LAB.pdf
Los resultados obtenidos en dicho agar se los interpreta.
Microorganismos Crecimiento Características de las
colonias
Staphylococcus aureus Excelente Amarilla
Staphylococcus epidermidis Bueno Rosada
13
Medio de cultivo selectivo y diferencial, utilizado para el aislamiento y diferenciación de estafilococos.
28
Figura 13: Staphylococcua aureus (izq) y Staphylococcus epidermidis (der) en agar sal manitol. Obtenido de: http://scienceblogs.com.br/meiodecultura/2010/01/o-tal-meio-de-cultura/
Una vez identificado al estafilococo se procede a investigar si el mismo es
resistente o no a la meticilina.
Dicha resistencia se la puede observar al realizar un antibiograma de las
colonias más aisladas en agar sangre.
Antibiograma.
Figura 14: Medio Muller Hinton
Obtenido de:http://emp.com.ge/culture-media/mueller-hinton-agar/
Dicha investigación se la realiza en Agar Muller Hinton, este es un medio
en el cual se identifica la sensibilidad a los antibióticos, contiene buena
29
reproducibilidad y sensibilidad, el contenido de inhibidores de sulfonamidas,
trimetoprima y tetraciclina es se bajó lo que garantiza un óptimo crecimiento.
Para llevar acabo dicho proceso se debe tomar una colonia aislada del
cultivo madre, para luego realizar una dilución de 0,5% dentro de la escala de
Mac Farlan, en donde se observa una ligera turbidez.
Con ayuda de un hisopo se realiza la inoculación de la dilución en dicho
agar en tres sentidos para así garantizar un crecimiento uniforme de la bacteria.
La incubación de dicho medio debe ser mínimo de 12 horas en donde se
medirán los halos de sensibilidad y resistencia para identificar si el estafilococo
identificado es resistente o no a las meticilina.
30
CAPITULO III.
METODOLOGÍA.
3.1 Diseño de la investigación.
En ésta investigación se utiliza un diseño “Observacional transversal de
nivel descriptivo”, ya que lo que se hace es observar los fenómenos tal como se
dan en su contexto natural, para después analizarlos.
Esta investigación es “observacional transversal” ya que se llevó a cabo
en un momento determinado y concreto de tiempo, en donde no se tuvo ninguna
intervención ni manipulación de variables.
Es de “nivel descriptivo” ya que se describen varios parámetros en una
circunstancia temporal.
Con ello en los resultados se podrá identificar y determinar la prevalencia
de portadores nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente en el
personal de salud de las áreas de Unidad de Cuidados Intensivos, Neonatología,
Quirófanos y el Anexo de Traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín en
un intervalo determinado del tiempo.
En dicho estudio el seguimiento adecuado de los procedimientos o pasos a
ejecutarse ayuda a que el mismo se desarrolle dentro de un margen adecuado.
Para dicha investigación como primer lugar se elaboró un documento en el
cual se dió a conocer por primera vez cual era el objetivo fundamental de la
misma y quienes intervendrán y se beneficiarán.
Bajo esa idea se procedió a repartir un consentimiento informado a las
personas que laboran en las áreas a estudiar (Unidad de Cuidados Intensivos,
Neonatología, Quirófanos y el Anexo de Traumatología del Hospital Carlos
31
Andrade Marín), para conocer quienes iban a formar parte de la investigación, y
así obtener la información primaria necesaria sobre cada participante a través de la
elaboración de una encuesta (anexo 2).
El proceso de desarrollo de la investigación partió desde la toma de
muestra a cada integrante que forma parte del personal de salud, procesamiento y
obtención de resultados de los mismos.
Con dichos resultados obtenidos se cuantificó la prevalencia de portadores
nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente en las áreas de Unidad de
Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el Anexo de Traumatología del
Hospital Carlos Andrade Marín mediante el empleo de una fórmula en donde se
toman como datos el número de casos para MRSA y el número total de muestras
analizadas.
Finalmente se explica bajo un proyecto de investigación la situación
analizada, es decir la información primaria y secundaria obtenida, datos,
resultados y conclusiones que los mismos generan.
3.2 Población y muestra.
El universo total a analizar es de 194 trabajadores de la Salud, quienes
están conformados por Médicos Clínicos, Médicos Cirujanos, Internos rotativos,
Enfermeras, Auxiliares de enfermería, Limpieza y Camilleros quienes forman
parte del personal de salud de las áreas de Unidad de Cuidados Intensivos,
Neonatología, Quirófanos y el Anexo de Traumatología del Hospital Carlos
Andrade Marín.
Para el estudio se contó con la participación de 191 participantes ya que 3
de ellos no quisieron participar en la investigación.
En la investigación se tomarán en cuenta a los 191 participantes, mismos
que se encuentran distribuidos por áreas y cargo que desempeñan
32
NEONATOLOGÍA
CUIDADOS INTENSIVOS
ANEXO DE TRAUMATOLOGÍA
QUIROFANO
33
3.3 Operacionalización de las variables.
Para dicha investigación se utilizarán variables dependiente e
independiente .
Es así que la variable independiente es la presencia del Staphylococcus
aureus, mientras que la variable dependiente va a ser el área donde trabaje y el
cargo que desempeña el participante.
Tipo de
Variable
Dependiente Independiente
- Área donde
trabaja
- Cargo que
desempeña
- Presencia del
Staphylococcus
aureus
Elaborado por: Stephany Vaca
Variables Dimensiones Indicadores Técnicas e Instrumentos
Servicio.
Área Crítica.
Cuidados. Intensivos.
Neonatología.
Quirófano.
Anexo de
Traumatología.
Encuesta.
Cargo que desempeña.
Personal
Medico.
Personal de
apoyo.
Médico Clínico.
Médico Cirujano.
Interno Rotativo.
Enfermera.
Auxiliar de Enfermería.
Camillero.
Limpieza.
Encuesta.
Elaborado por: Stephany Vaca
34
3.4 Técnicas e Instrumentos de recolección de datos.
En dicha investigación se utilizaron varias técnicas para la recolección de
información y datos tanto primarios como secundarios.
Para la recolección de datos primarios se realizó la aplicación de un
cuestionario o encuesta, la cual consta de preguntas cerradas, mismas que
brindaron información clara y comprensible de datos.
Se utilizaron además fuentes bibliográficas de confiabilidad como artículos
indexados en revistas internacionales calificadas, en donde los mismos se
conviertan en evidencia confiable y de sustento para la investigación.
De la misma manera la fundamentación teórica será tomada de libros,
artículos y publicaciones confiables de las cuales se extraerán párrafos, ideas
principales, mismos que ayudarán a construir el documento teórico de dicha
investigación el cual brindará al lector validez y confiabilidad.
3.5 Técnicas para el procesamiento de datos y análisis de
resultados.
La información obtenida fue recolectada a partir de las encuestas que se
repartieron a cada uno de los participantes que forman parte del personal de salud
de las áreas de Unidad de Cuidados Intensivos, Neonatología, Quirófanos y el
Anexo de Traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Ésta información se ingresó a una base de datos en una hoja electrónica de
Excel Windows 2010, misma que sirvió como base para el procesamiento de datos
y obtención de resultados finales de la investigación.
3.6 Discusión
En dicha investigación realizada en el Hospital Carlos Andrade Marín se
pudo identificar una frecuencia del 24% de portadores de Staphylococcus aureus,
35
quienes en un 56% son meticilino resistentes, pudiendo determinar una
prevalencia del 12,5% de portadores nasales del Staphylococcus aureus meticilino
resistente dentro de cuatro áreas críticas del hospital, resultado similar a otras
investigaciones realizadas en el país en años anteriores como es el caso del
Hospital Militar, cuya prevalencia en el año 2010 también fue del 12%,(Cimera &
Perez, 2010). Mientras que Espinoza y colaboradores encontraron en muestras de 87
trabajadores de la salud una prevalencia de Staphylococcus aureus de 11,6%,
concordando aún más con nuestro resultado obtenido en la investigación en donde
la prevalencia se mantiene similar.(Espinoza & Romero, 2011).
Sanabia y colaboradores en un estudio realizado en un hospital de
Paraguay se identificó que en 141 pacientes la prevalencia de portadores nasales
de Staphylococcus aureus es del 30%, en dicho estudio se observó que el número
de portadores se encontraba mayormente entre el personal médico, especialmente
entre las enfermeras, que concuerda con lo encontrado en el Hospital Carlos
Andrade Marín.(Sanabria & Laspina, 2013).
En otro estudio Davalos y Colaboradores llevaron a cabo una investigación
en el personal hospitalario de las Unidades de Cuidados Intensivos en donde se
incluyeron a 142 individuos, quienes presentaron una frecuencia del 42% para
Staphylococcus aureus meticilino resistente, variando de manera significativa con
nuestro resultado en donde la frecuencia de dicho patógeno en el servicio de
Cuidados Intensivos tiene un porcentaje del 13%.(Davalos, Santiago, & Bianco, 2008).
Cimera y colaboradores en un estudio realizado en el Hospital de Las
Fuerzas Armadas en el año 2010 se identificó una prevalencia del 12% de
personas que portan el Staphylococcus aureus, en donde el tiempo de trabajo
influye al igual que la edad avanzada del personal, concordando con nuestra
investigación en la cual también existe una prevalencia del 12% y en donde el tipo
de trabajo es un agente causal para la portación nasal del germen.(Cimera & Perez,
2010).
36
En diversas investigaciones se menciona que el Staphylococcus aureus
meticilino resistente se aísla con mayor frecuencia de las fosas nasales de las
personas, y que la presencia de MRSA es muy alarmante ya que el tratamiento de
la misma se dificulta, éste enunciado se corrobora al encontrar en ésta
investigación un resultad positivo en éste tipo de muestras.
Este hecho genera la necesidad de actuar de manera preventiva para evitar
que el carácter de portador genere una diseminación alta en las casas de salud, en
donde en la mayoría de veces la correcta aplicación y uso de la bioseguridad
reducen la ocurrencia de infecciones nosocomiales.
El estado de portador nasal al parecer juega un papel importante en la
epidemiología e infección causada por el Staphylococcus ya que la falta de
síntomas podría ser la causa de una transmisión y colonización del agente a nivel
hospitalario, puesto que el mismo se transmite de manera muy fácil entre
personas, llevando a pensar que las manos del personal de salud podrían ser un
foco importante de transmisión.
37
CAPITULO IV
PRESENTACIÓN Y ANÁLISIS DE
RESULTADOS.
4.1 Resultados.
Se obtuvo un total de 194 pacientes, de los cuales 191 participaron, a
quienes se les realizó la toma del hisopado nasal. Hubo una ausencia de 3
participantes.
Para la toma de muestra del hisopado nasal se utilizó un hisopo de Rayón y
un medio de transporte en gel llamado Stuart, éstos garantizan la conservación de
las bacterias de una mejor manera, hasta que los medios de transporte lleguen al
Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Una vez en el Laboratorio de Microbiología del hospital Carlos Andrade
Marín se procedió a realizar la siembra de las muestras en agar sangre el cual es
un medio enriquecido que garantiza el crecimiento delStaphylococcus aureus,
también se realizó la prueba en Agar sal manitol para la identificación del agente
en estudio, una vez identificado el microorganismo se procedió a realizar el
antibiograma en el medio de Muller Hilton para identificar su resistencia o
sensibilidad a la meticilina.
Dentro de la población estudiada se presentó una media de edad entre 40
años en donde el sexo más frecuente fue el Femenino, se identificaron bacterias
como Staphylococcus epidermidis en sus dos variedades sensible y resistente a la
meticilina.
También se identificó al Staphylococcus aureus sensible a la meticilina en
un 24%, en donde la resistencia del mismo patógeno a meticilina se encontraba en
un 56% del personal de salud.
Con estos datos obtenidos se pudo calcular la prevalencia de portadores
nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente a nivel de las cuatro áreas
38
críticas en donde se evidenció que ésta era elevada, ya que presenta un porcentaje
del 12,5 en donde 3 áreas (Neonatología, Cuidados Intensivos y Quirófano)
presentan un porcentaje elevado de prevalencia que oscila entre el 12,5 y 13,0%.
Tabla 1. Distribución del personal de Salud del área de Neonatología del
Hospital Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeñan
Fuente: Encuesta de la investigación.
Elaborado por:Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
Dentro del personal de Neonatología se encuentran 23 participantes,
quienes están conformados por Médicos Clínicos, Enfermeras, Auxiliares de
Enfermería y Camilleros, en donde el 48% que es el porcentaje más alto se
encuentra conformado por el personal de enfermería.
39
Tabla 2. Distribución del personal de Salud del área de Cuidados
Intensivos del Hospital Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeñan
Fuente: Encuesta de la investigación. Elaborado por:Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
Dentro del personal de Cuidados Intensivos se encuentran 91 participantes
quienes están conformados por Médicos Clínicos, Médicos Cirujanos, Internos
Rotativos Enfermeras, Auxiliares de Enfermería, Limpieza y Camilleros, donde el
41%, que es el porcentaje más alto están las profesionales de enfermería.
40
Tabla 3. Distribución del personal de Salud del área del Anexo de
Traumatología del Hospital Carlos Andrade Marín, según el cargo que
desempeña.
Fuente: Encuesta de la investigación. Elaborado por:Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
Dentro del personal del área del Anexo de Traumatología se encuentran
21 participantes, quienes están conformados por Médicos Clínicos, Enfermeras,
Auxiliares de Enfermería, y Camilleros, en donde el 48% que es el porcentaje más
alto se encuentra conformado por el personal de enfermería.
41
Tabla 4. Distribución del personal de Salud del área de Quirófano del
Hospital Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeñan.
Fuente: Encuesta de la investigación. Elaborado por:Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
Dentro del personal del área Quirófano se encuentran 56 trabajadores de
la salud quienes están conformados por Médicos Cirujanos y Enfermeras en donde
existe un 50% conformado por enfermeras y un 50% conformado por Médicos
Cirujanos.
42
Tabla 5. Distribución de los 191 trabajadores de salud según pruebas de
identificación del Staphylococcus aureus.
Tipo de Prueba Número de
Positivos
Porcentaje
de positivos
Número de
Negativos
Porcentaje de
negativos
Desarrollo de Bacterias en agar sangre
182
95
9
5
Agar Sal manitol
44
24
138
76
TOTAL DEL PACIENTES ANALIZADOS: 191
Fuente: Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Elaborado por: Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
De los casos procesados en la investigación que fueron un total de 191
pacientes, hubo desarrollo de bacterias en cultivo agar sangre 182 cultivos,
mientras que en 9 de ellos no hubo desarrollo. Los 44 fueron positivos en el agar
Sal Manitol, lo cual confirma que el 24% de cultivos procesados fueron
Staphylococcus aureus positivos.
Tabla 6. Distribución de los 44 Cultivos positivos para Staphylococcus
aureus en Agar Muller Hilton.
Número Porcentaje
Meticilino Sensible 20 44
Meticilino Resistente 24 56
TOTAL DE CULTIVOS PROCESADOS: 44
Fuente: Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Elaborado por: Stephany Vaca.
43
Fuente: Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Elaborado por: Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
De los 44 cultivos positivos para Staphylococcus aureus procesados en la
investigación, 24 de ellos fueron positivos para la resistencia a meticilina, dando
como resultado que un 56% del total de cultivos positivos para Staphylococcus
aureus eran meticilino resistentes
44%
56%
Distribución de los 44 Cultivos positivos para Staphylococcus aureus en Agar Muller Hilton
MeticilinoSensibles
MeticilinoResistentes
44
Tabla 7. Distribución del personal de Salud de las áreas Neonatología,
Unidad de Cuidados Intensivos, Anexo de Traumatología y de Quirófano del
Hospital Carlos Andrade Marín, según el germen encontrado.
Germen identificado
Área de
Neonatología
Área de Cuidados
Intensivos
Área de
Quirófano
Área de Anexo de
Traumatología
Staphylococcus aureus
meticilino sensible
1 participante
4%
10 participantes
11%
7 participantes
13%
2 participantes
10%
Staphylococcus aureus
meticilino resistente
3 participantes
13%
12 participantes
13%
7 participantes
13%
2 participantes
10%
Staphylococcus
epidermidis meticilino
sensible
1 participante
4%
5 participantes
4%
8 participantes
14%
3 participantes
13%
Staphylococcus
epidermidis meticilino
resistente
18 participantes
79%
62 participantes
70%
27 participantes
47%
14 participantes
67%
Sin Desarrollo
1 participante
2%
7 participantes
13%
Total 23 participantes
23 participantes
procesados
91 participantes
89 participantes
procesados
56 participantes
49 participantes
procesados
21 participantes
21 participantes
procesados
Fuente: Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Elaborado por: Stephany Vaca.
45
ANÁLISIS:
Se identificó un porcentaje menor del 20% de portadores nasales de
Staphylococcus aureus meticilino resistente en las áreas de Neonatología,
Cuidados Intensivos, Quirófano y Anexo de Traumatología, teniendo en el área de
Anexo de Traumatología el porcentaje más bajo de portadores 10%.
Tabla 8. Distribución del porcentaje de Staphylococcus aureus
meticilino resistente del personal de Salud de las áreas Neonatología, Unidad
de Cuidados Intensivos, Anexo de Traumatología y de Quirófano del Hospital
Carlos Andrade Marín, según el cargo que desempeña.
Cargo Neonatología Cuidados
Intensivos
Anexo de
Traumatología
Quirófano
Médico Clínico 4 3 5 ----
Médico Cirujano ---- ---- ---- 4
Interno Rotativo ---- 1 ---- ----
Enfermera 9 9 4 9
Auxiliar de
enfermería
---- ---- ---- ----
Camillero ---- ---- ---- ----
Limpieza ---- ---- ---- ----
Fuente: Laboratorio de Microbiología del Hospital Carlos Andrade Marín.
Elaborado por: Stephany Vaca.
ANÁLISIS:
Se identificó que un 31% de portadores Staphylococcus aureus meticilino
resistente corresponde al personal de enfermería.
Con todos los datos anteriormente mencionados, se procedió a calcular la
prevalencia de portadores nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente
en cuatro áreas críticas del Hospital Carlos Andrade Marín bajo la siguiente
fórmula:
46
En donde
O: Es el número total de pacientes que portan el Staphylococcus aureus
meticilino resistente.
Pt: Es la población total del estudio.
Reemplazando los valores y multiplicando x 100 se obtuvo que la
prevalencia de portadores nasales de Staphylococcus aureus meticilino resistente
en las áreas de Neonatología, Cuidados Intensivos, Quirófano y Anexo de
Traumatología es del 12.5%.
Siendo el área de Anexo de Traumatología con el menor porcentaje de la
misma con un valor de 9,5%, frente al porcentaje de las otras tres áreas en donde
el porcentaje de cada una de ellas se encuentra en una media del 12.7%.
47
4.3 Conclusiones.
Al finalizar dicha investigación se puede llegar a plantear varias
conclusiones:
1. La prevalencia de portadores nasales del Staphylococcus aureus
meticilino resistente en personal de salud de las áreas de
Neonatología, Cuidados Intensivos, Quirófano y Anexo de
Traumatología es elevada (12,5%).
2. De las cuatro áreas analizadas se identificó que en tres de ellas la
prevalencia del Staphylococcus aureus meticilino resistente era del
13%, presentándose un mayor número de portadores con este
patógeno en el servicio de Cuidados Intensivos (12 portadores).
3. Los casos positivos del Staphylococcus aureus meticilino resistente
se encontraron en mayor cantidad en el personal de enfermería de
Neonatología, Anexo de Traumatología y Quirófano con una
prevalencia del 9%.
4.4 Recomendaciones.
1. Es necesario la elaboración de un manual que incluya bioseguridad
y ambiente.
2. Se debería efectuar mapeos bacteriológicos en forma periódica para
disminuir la presencia de portadores nasales de Staphylococcus
aureus meticilino resistente.
3. Se debe efectuar el seguimiento periódico del cumplimiento de las
normas de bioseguridad y ambiental, dentro del personal de salud
48
4. CAPÍTULO V.
PROPUESTA
49
50
CRONOGRAMA
MES SEPTIEMBRE OCTUBRE NOVIEMBRE DICIEMBRE ENERO
ACTIVIDAD Semana
10-11
Semana
14-18
Semana
21-25
Semana
28-30
Semana
01-04
Semana
07-11
Semana
14-18
Semana
21-25
Semana
01-02
Semana
05-09
Semana
12-16
Semana
19-23
Semana
26-30
Semana
01-06
Semana
09-13
Semana
16-20
Semana
23-27
Semana
04-08
Semana
11-15
Semana
18-22
Semana
25-29
Identificación del
problema
x
Recolección de datos x X
Elaboración previa del
anteproyecto
X
Elaboración final y
presentación del
anteproyecto
x
Aprobación del
anteproyecto
x
Toma de muestras X X X X X X x X x x x X
Procesamiento de
muestras
X X X X X X x x x x X X
Procesamiento de
resultados
x X
Elaboración del
documento final
X x X
Presentación de
documento final
X
51
BIBLIOGRAFÍA.
Bibliografía.
Alvarez, E., & Elsa, V. (2013). Deteccion de Staphylococcus aureus
meticilino resistente en una unidad de alto riesgo neonatal. Revista de
la Facultad de Farmacia.
1. Arispe, G. F. (2012). Sensibilidad y resistencia en el antibiograma del
Staphylococcus aureus en pacientes del Hospital Clinico Viedma.
Dialnet.
2. B.M. Diederen, J. K. (2010). The emergence of infections with
community-associated methicillin resistant Staphylococcus aureus.
Journal Infectology.
3. Benitez Diaz, R. (2011). Caracteristicas epidemiologicas y evolucion
de pacientes con bacteremia por Staphylococcus aureus ingresados en
un Hospital de Tercer Nivel. Revista Medica de España.
4. Caceres, M. (2011). Frecuencia de portadores nasales. Revista
Panamericana de Salud Publica .
5. Cimera, D., & Perez, F. (2010). Prevalencia de portadores nasales
asintomáticos de Staphylococcus aureus meticilino resitente. Revista
mexicana de Patología.
6. Cortes, D., & Sergio, F. (2013). Estafilococo dorado. Biología y
actualidad.
7. Davalos, K., Santiago, B., & Bianco, H. (2008). Portación nasal de
Staphylococcus aureus en el personal hospitalario de Cuidados
Intensivos adultos. Scielo.
52
8. Douglas, F. (2013). Staphylococcus aureus Infecciones. Microiologia
medica.
9. Espinoza, C., & Romero, M. (2011). Portadores nasales de
Staphylococcus aureus en personal que labora en hospital de
Santander. Revista de la Universidad Industrial de Santander.
10. Estrella Cervantes-García, R. G.-G.-S. (2014). Características
generales del Staphylococcus. Revista Latiinoamericana de Patología
Clínica, 35.
11. Garcia, P. (2013). Microbiología medica.
12. Gil, M. (2012). Staphylococcus aureus: Microbiología y aspectos
moleculares de la resistencia a meticilina. Revista Chilena de
Infectología.
13. H., C. (2012). Methicilin Resistance in Sthaphylococci. Molecular
and Biochemical Basis and Clinical.
14. Huang, E. (2013). Staphylococcus Aureus meticilino resistente.
15. Indira, B. (2010). Sepsis: Definiciones y aspectos fisiopatologicos.
MEDICRITIC revista de Medicina Interna y Medicina Critica.
16. Jevon, F. (2012). «Methicillin-resistant Staphylococcus aureus at
Valencia City Hospital - Bacteriologic and Epidemiologic
Observations. Revista medica Española.
17. Jimenez, N., & Tedeschi, S. (2012). Colonización materna y neonatal
con S. Aureus. IntraMed.
18. L., Y. (2011). Sindrome de Sepsis. Tratado de Infectología . Editorial
Medica Panamericana.
19. Mandel, D. (2013). Principles and Practice of Infectious.
53
20. Martha, B. (2014). CARACTERÍSTICAS EPIDEMIOLÓGICAS,
CLÍNICAS Y MICROBIOLOGICAS DE LAS INFECCIONES POR
MRSA. Revista Medica de Patologia.
21. Mc Dougal, F. (2012). MRSA Ressitance. Revista de epidemiología .
22. Meza, M. E. (2014). Surgimiento y diseminación de Sthapylococcus
aureus meticilino resistente. Revista Mexicana de Salud Publica.
23. Montalvo, R., & Huaroto, L. (2009). Prevalencia de Staphylococcus
aureus meticilino resiste en pacientes del servicio de Cuidados
Intensivos del Hospital Nacional Dos de Mayo. Revista Peruana de
Epidemiologia.
24. Montalvo, R., & Huaroto, L. (2011). Prevalencia de portadores
nasales por Staphylococcus aureus meticilino resistente en personal
de. Revista Peruana de Epidemiología.
25. Murray, P. (2009). Microbiología Médica 6 Ed (6a edición).
26. Preidt, R. (2013). La "armadura dorada" del estafilococo. HealthDay.
27. Reinhart, K. (2013). Declaración Mundial sobre la Sepsis. Global
Sepsis Alliance.
28. Reyes, J., & Rincon, S. (2013). Dissemination of Meticilin-resistant
Staphylococcus aureus in Latin America. Revista Clinica de
Infectologia.
29. Sanabria, R., & Laspina, F. (2013). Portación nasal de Staphylococcus
aureus en el personal hospitalario. Scielo.
30. Sierra, H., & Castro, T. (2012). MRSA ressitance. Revista de
epidemiología.
31. SIlva, M. (2013). Diagnostico de Laboratorio. Laboratorio Practico.
54
32. Sonia Fosch1, C. Y. (2012). Portación nasal de Staphylococcus aureus
en individuos de la comunidad: factores epidemiológicos. Acta
bioquím. clín. latinoam.
33. Thompson, M. (2014). Diagnóstico molecular de sepsis. Revista
española de Medicina.
34. Yanez, E. (2013). Staphylococcus Auerus.
55
Anexo 1
PROTOCOLO PARA TOMA DE MUESTRAS DE
HISOPADO NASAL PARA IDENTIFICACION DE
STAPHYLOCOCCUS AUREUS METICILINO RESISTENTE.
Para realizar la toma de muestras para la identificación del
Staphylococcus aureus, debemos considerar algunos aspectos:
Bioseguridad.
Tanto del personal que va a realizar la toma como del paciente.
Contar con las condiciones adecuadas para la toma de la muestra.
Debemos contar con un espacio adecuado para la toma de muestra.
Debemos contar con protección personal correcta.
o Uniforme.
o Mandil.
o En el caso de las mujeres cabello recogido.
Debemos contar con material estéril.
o Guantes.
o Mascarillas.
o Hisopos de Rayón nuevos con su respectivo medio de transporte
(Stuart).
Transporte y conservación.
Contar con las condiciones adecuadas para el transporte y
conservación del material previa a la obtención de la muestra y
después de la obtención.
56
Previa a la Obtención .
El material a usar debe ser transportado hasta el sitio de la toma de
muestra en condiciones adecuadas, las cuales garanticen que el
material a usar está completamente estéril. Éstas condiciones
incluyen:
Traslado de los Hisopos de Rayón con su medio de transporte
respectivo (Stuart) estériles, debe ser en un recipiente adecuado en
donde los mismos se conserven a temperatura ambiente, y se traslade
el material de manera segura y ordenada, es decir fuera de posible
contaminación.
Traslado del material como guantes estériles, mascarillas, esferos,
lápiz dermográfico y otros debe ser dentro del mismo recipiente en un
área específica para éstos .
Después de la obtención
El material usado en la toma de muestra debe ser debidamente
transportado hasta la Unidad de Patología Clínica, Laboratorio de
Microbiología, bajo condiciones adecuadas.
Traslado de las muestras, previamente rotuladas de manera adecuada,
debe ser en el recipiente anteriormente mencionado, evitando
trasladarlas con frio, ya que el Staphylococcus aureus es una bacteria
anaerobia facultativa.
El recipiente debe contener espacios destinados o una gradilla para
colocar las muestras en orden y evitar que se contaminen al momento
del traslado .
57
Los medios de transporte
Deben llevar dentro de este el hisopo respectivo a cada medio (hisopo
de Rayón), para así disminuir posibles contaminaciones.
Deben estar correctamente cerrados es decir la tapa bien enroscada en
el tubo .
Deben estar bien rotulados (Nombre, apellido, edad, código).
TÉCNICA.
Una vez que llegamos al área de la toma de muestra, proceder
a preparar el material para la toma.
a. Retirar la tapa del recipiente en donde se trasladó el material
.
b. Colocar dicho material en una mesa o base fija de manera
ordenada, en donde todos los materiales a usar estén al alcance del
personal que va realizar la toma.
Identificar al personal de salud que va a formar parte del estudio y ver
si cumplen con las condiciones previas al hisopado nasal.
Los participantes que cumplen con éstas condiciones llenarán un
formato establecido en donde indicarán su nombre, apellido, edad,
servicio donde trabajan.
Una vez realizados éstos pasos se procede a realizar la toma de
muestra.
Toma de muestra.
1. Le pedimos al participante que tome asiento en una silla la cual tenga
una altura adecuada para realizar la toma.
2. Colocar en nuestras manos un par de guantes estériles, previo su
respectivo lavado (Para cada paciente se debe usar un par de guantes.)
58
3. Colocar sobre nuestro rostro la mascarilla .
4. Valorar si el paciente presenta desviación del tabique nasal para
iniciar la recogida de muestra.
5. Indicar al paciente que se suene la nariz, si es preciso.
6. Abrir el adhesivo de la funda donde están los hisopos y los medios de
transporte.
7. Inclinar ligeramente la cabeza del participante hacia atrás.
8. Una vez visualizada la narina y el espacio nasal, proceder a tomar el
hisopo (empacado en plástico) del sobre y abrir el paquete por el
extremo opuesto a la punta de algodón.
9. No tocar las puntas de algodón.
10. Con mucho cuidado introducir el borde superior del hisopo por la
narina hasta llegar a las canas desde el borde de la piel a la mucosa.
11. Realizar durante 15 segundos movimientos giratorios y retirar
cuidadosamente el hisopo.
12. Proceder a abrir el tubo con el medio de transporte y retirar la tapa.
13. Introducir el Hisopo en el medio de transporte y cerrar bien la tapa.
14. Colocar la muestra en el espacio destinado para la misma y trasladarla
a la Unidad de Patología Clínica.
Nota:De acuerdo a un reporte previo por Stensballe y cols.,
"El uso de hisopado nasal fue asociado a una disminución de 27-31%
de la sensibilidad comparado con hispadonasoFaringeo". Sin
embargo, es importante considerar su costo-efectividad. De acuerdo
al estudio la muestra de Hisopado Nasal parece ser más costo-
efectiva y de más fácil toma de muestra.
59
Anexo 2
Encuesta.
Nombre:
………………………………………………………..
Edad: ……......
1. ¿En qué área del Hospital Carlos Andrade Marín
labora?
a. Unidad de Cuidados Intensivos. …….
b. Neonatología. …….
c. Quirófano. …….
d. Anexo de Traumatología. …….
2. ¿En el área que usted Labora, que cargo desempeña?
a. Médico Clínico. …….
b. Médico Cirujano. …….
c. Enfermera. …….
d. Auxiliar de enfermería. …….
e. Otros. …………….
3. ¿Cuánto tiempo labora en dicha área?
………………………………………
4. ¿Utiliza barreras de Bioseguridad al menos guantes y
mascarilla en la atención delpaciente?
a. Si. …….
b. No. …….
5. ¿En los últimos 6 meses ha recibido algún curso de
Bioseguridad?
a. Si. …….
b. No. …….
