BAB IPENDAHULUANA. Latar BelakangEkotoksikologi merupakan sebuah
cabang ilmu dari toksikologi, yaitu bidang ilmu yang mempelajari
mengenai racun yang ada di lingkungan (Idris, 2013). Rudolph (1991)
dalam Suryani et al. (2014) menyatakan bahwa ekotoksikologi
merupakan ilmu yang mempelajari efek dari senyawa-senyawa kimia
terhadap populasi dan ekosistemnya, baik secara langsung maupun
tidak langsung. Lebih lanjut dijelaskan bahwa penelitian mengenai
ekotoksikologi menitikberatkan pada perubahan struktur dan fungsi
ekosistem oleh senyawa kimia lingkungan, yang mengakibatkan efek
yang berbahaya bagi organisme. Zat toksik dapat terdedah di
lingkungan perairan, darat, maupun udara. Ilmu yang mempelajari
mengenai zat toksik yang ada di lingkungan perairan disebut
ekotoksikologi perairan. Berbagai jenis racun tersebut berbeda-beda
sesuai dengan jenis dan senyawa-senyawa kimia pembentuknya.Salah
satu zat toksik adalah tembakau rokok. Tembakau yang dikandung
dalam rokok diyakini berdampak negatif terhadap kesehatan perokok
disamping itu sisa rokok yang dibuang akan terbawa ke perairan yang
dapat berdampak pencemaran. Wigand (2006) menyatakan bahwa daun
tembakau mengandung lebih dari 3000 bahan kimia organik dan
anorganik seperti asam-asam organik, alkohol, aldehida, keton,
quinon, basa dan alkaloid, alken dan alkyen, asam amino,
karbohidrat, esterester, senyawa N-heterosiklik, fenol, sterol,
terpen beroksigen, isoprene dan senyawa-lainnya. Selanjutnya
Micevska et al. (2006) menyatakan bahwa kandungan utama yang
beracun pada tembakau adalah nikotin dan etilfenol. Nikotin pada
daun tembakau kadarnya bervariasi dari 0,2 % sampai 5,0 % dari
berat kering tembakau. Bagian tembakau setelah dikurangi kandungan
air dan nikotin adalah TAR (Total Aerosol Residu) yang mengandung
karbon aromatis polisiklik, dalam bentuk padat berwarna coklat yang
jumlahnya meningkat pada rokok yang sudah dihisap sampai pendek
(Relicardo, 1988).Tembakau rokok merupakan sampah domestik yang
penyebarannya sangat luas melalui buangan sisa rokok. Sisa rokok
ataupun abu tembakau sangat mudah terbawa ke perairan sehingga
sangat potensial meracuni organisme air. Seckar et al. (2008)
menyatakan nikotin yang dibuang ke lingkungan selanjutnya akan
berada terutama di perairan (93 %), berikutnya berada di tanah
(4%), di udara (3%) dan di sediment (0,4%). USEPA (2010)
memperkirakan 65 % sungai di Amerika tercemar oleh puntung rokok.
Meningkatnya jumlah perokok di Indonesia dikhawatirkan dapat
menjadi sumber polutan yang dapat mengganggu kualitas hidup di
perairan. Untuk mengetahui tingkat toksisitas tembakau rokok
terhadap ikan telah dilakukan uji biologi pada medium statis
terhadap ikan Gatul (Poecilla sp.). Untuk mengetahui tingkat
toksisitas tembakau rokok terhadap ikan maka dilakukan uji biologi
pada medium statis terhadap ikan Gatul. Ikan merupakan organisme
perairan yang sangat sensitif terhadap pencemaran pestisida.
Tercemarnya ikan oleh pestisida terutama disebabkan oleh masuknya
bahan aktif pestisida ke dalam media pemeliharaan (air) yang
diserap oleh tubuh, insang dan terbawa bersama makanan. Tekanan
lingkungan pada media hidup ikan dapat mengakibatkan kemampuan ikan
menjadi resisten terhadap tekanan tersebut melalui adaptasi
fisiologis dan ketidaksanggupan menyesuaikan diri dan berakibat
pada kematian. Masuknya pestisida dalam insang melalui kontak
langsung, karena letaknya yang ada di luar.Secara umum bahan
pencemar baik secara langsung maupun tidak langsung akan
mempengaruhi proses fisiologi dalam tubuh dan pertumbuhan biota
air. Ikan yang terkena kepekatan subletal dari jenis pestisida
memperlihatkan perubahan dalam aksi fisiologis, pertumbuhan,
kegagalan dalam perkembangbiakan dan pengaruh lainnya bahkan
kematian.
B. Rumusan MasalahBerdasarkan latar belakang diatas, maka
rumusan masalah pada penelitian ini adalah apakah pemberian ekstrak
tembakau rokok berpengaruh terhadap ikan gatul?
C. TujuanTujuan dari praktikum ini adalah untuk mengetahui
pengaruh pemberian konsentrasi tembakau rokok terhadap kematian
(mortalitas) ikan gatul (Poecilia sp.) dalam skala
laboratorium.
D. ManfaatManfaat dari penelitian yang dilakukan adalah sebagai
berikut:1. Berdasarkan penelitian yang dilakukan dapat memberikan
informasi mengenai pengaruh perbedaan konsentrasi ekstrak tembakau
rokok terhadap kematian (mortalitas) ikan gatul (Poecilia sp.)
dalam skala laboratorium2. Berdasarkan penelitian yang dilakukan
dapat mengasah keterampilan mahasiswa dalam penelitian bidang
ekotoksikologi khususnya masalah pencemaran air3. Berdasarkan
penelitian yang dilakukan dapat memberikan acuan tentang buangan/
limbah ekstrak tembakau rokok yang masih dapat ditolerir oleh
organisme perairan, khususnya ikan gatul
E. BatasanAdapun batasan penelitian adalah sebagai berikut:1.
Pengamatan mortalitas ikan gatul(Poecilia sp.) dilakukan sampai 6
hari dan diamati setiap 24 jam sekali2. Ikan gatul yang dipakai
untuk uji adalah ikan fase juvenil3. Sebelum melakukan uji yang
sesungguhnya, dilakukan uji pendahuluan terlebih dahulu untuk
menentukan konsentrasi ekstrak tembakau rokok yang dipakai dalam
uji sesungguhnya
BAB IIKAJIAN PUSTAKA
A. Ikan Gatul (Poecilia sp.)Sistematika ikan Gatul (Poecilia
sp.) menurut Axelrod dan Schultz (1993) adalah sebagai berikut
:Filum: ChordataSubfilum: CraniataSuperkelas: GnatastomataKelas:
OsteichthyesSubkelas: ActinopterygiiSuperordo: TeleosteiOrdo:
CyprinodontoideiSubordo: PoecilioideaFamili: PoecilidaeGenus:
PoeciliaSpesies:Poecilia sp.Ikan Gatul memiliki habitat asli di
perairan dangkal, sungai, parit dan danau. Ikan Gatul berasal dari
daerah utara Amazon yaitu Trinidad, Barbados, Venezzuela, Gunaya,
dan Brazil. Ikan Gatul juga dapat hidup di perairan payau (Nelson,
1984 dalam Ukhroy, 2008). Ikan Gatul termasuk famili Poecilidae
yang mudah berkembangbiak. Ikan Gatul merupakan jenis ikan yang
bersifat ovovivipar yaitu telur yang dibuahi sperma secara
internal, embrio disimpan, dan terus berkembangbiak hingga
terbentuk anak. Embrio mendapatkan makanan dari kuning telur tanpa
adanya pemindahan makanan dari induk menuju embrio (Jollie, 1964
dalam Ukhroy, 2008).Ikan Gatul mampu menyimpan sperma dalam jangka
waktu yang lama di dalam oviduk. Kemampuan ikan Gatul dalam
melahirkan termasuk tinggi namun bervariasi tergantung pada umur
dan strain ikan. Pada umumnya induk betina mampu menghasilkan anak
sebanyak 30-80 ekor namun ada juga yang sampai ratusan ekor dalam 1
kali perkawinan (Fernando dan Phang, 1985 dalam Ukhroy, 2008).
Calon induk yang baik biasanya minimal telah berumur 4-6 bulan
dengan perbandingan jantan dan betina 1: 2. Induk betina dipilih
yang berukuran besar dan berwarna cemerlang. Sedangkan induk jantan
yang digunakan memiliki ciri-ciri berwarna cerah dan ekornya
mengembang lebar (Zairin, 2002). Ikan Gatul memiliki beberapa tahap
dalam siklus hidupnya yaitu tahap larva, tahap juvenil, tahap
dewasa, dan masa pertumbuhan maksimum. Setelah larva dilahirkan 3-4
minggu maka gonopodium (modifikasi sirip anal) pada ikan jantan
telah berkembang. Kemampuan berkembangbiak ikan Gatul sudah sejak 3
minggu setelah ikan dilahirkan maka ikan Gatul termasuk ke dalam
ikan yang cepat berkembangbiak. Sekali melakukan perkawinan dapat
beranak sampai 3 kali dengan jarak kelahiran 1 bulan kemudian dapat
dikawinkan lagi selama masih dalam kondisi produktif. Masa juvenil
ikan berlangsung sampai ikan berumur 2 bulan ditandai dengan sirip
ekor mulai melebar dan warna tubuh terlihat jelas. Saat ikan
berumur 3-4 bulan merupakan masa paling aktif dan penampakan warna
paling indah. Masa pertumbuhan maksimum dicapai pada saat ikan
berumur lebih dari 6 bulan. Setelah melewati masa pertumbuhan
maksium maka terjadi penurunan penampilan, sirip mulai robek, dan
gerakan melambat (Iwasaki, 1989 dalam Ukhroy, 2008).B. Rokok 1.
Pengertian RokokRokok adalah salah satu zat adiktif yang bila
digunakan mengakibatkan bahaya bagi kesehatan individu dan
masyarakat. Menurut Trim (2006) pengertian rokok adalah silinder
dari kertas yang berukuran panjang sekitar 120 milimeter dengan
diameter 10 milimeter yang berisi daun-daun tembakau yang telah
dicacah. Selain itu, ada juga yang menyebutkan bahwa rokok adalah
hasil olahan tembakau terbungkus termasuk cerutu atau bahan lainnya
yang dihasilkan dari tanamam Nicotiana tabacum, Nicotiana rustica
dan spesies lainnya atau sintesisnya yang mengandung nikotin dan
tar dengan atau tanpa bahan tambahan (Hans Tendra, 2003).
2. Bahan Baku Pembuatan RokokRokok terbuat dari tembakau yang
diperoleh dari tanaman Nicotiana tabacum L. Tembakau dipergunakan
sebagai bahan untuk sigaret, cerutu, tembakau untuk pipa serta
pemakaian oral. Di Indonesia, tembakau ditambah cengkeh dan
bahan-bahan lain dicampur untuk dibuat rokok kretek. Selain kretek,
tembakau juga dapat digunakan sebagai rokok linting, rokok putih,
cerutu, rokok pipa, dan tembakau tanpa asap (chewing tobacco atau
tembako kunyah). Tembakau merupakan penyebab eksogen kanker yang
paling sering terjadi, terutamanya kanker paru yaitu kira-kira 90%
daripada kanker paru disebabkan oleh konsumsi tembakau. Tembakau
mengandung antara 2000-4000 bahan kimia. Daun tembakau yang telah
dipanen kemudian dikeringkan dan diolah menjadi rokok dengan
tambahan bahan-bahan tertentu seperti cengkeh. Biasanya rokok
dibuat dalam bentuk batangan dengan kertas pelapis. Rokok digunakan
dengan cara dibakar dan dihisap asapnya. Orang menikmati rokok
untuk menghangatkan badan dan untuk menikmati rasa tembakau yang
khas. Di balik nikmatnya rokok tersebut ternyata tersimpan bahaya
yang tidak disadari oleh para perokok. Merokok merupakan sebuah
kebiasaan yang dapat memberikan kenikmatan bagi si perokok, namun
di lain pihak dapat menimbulkan dampak buruk baik bagi si perokok
itu sendiri maupun orang-orang disekitarnya. Pada awalnya
kebanyakan orang menghisap tembakau dengan menggunakan pipa.
Masyarakat Timur (Estern societies) menggunakn air untuk mengurangi
asap tembakau sebelum diinhalasi. Tembakau yang dikunyah (chewing
tobacco) merupakan salah satu cara konsumsi yang jarang
dilakukan.
3. Bahan-Bahan Kimia dalam Rokok1. TarTar adalah zat berwarna
coklat berisi berbagai jenis hidrokarbon aromatik polisiklik, amin
aromatik dan N-nitrosamine. Tar yang dihasilkan asap rokok akan
menimbulkan iritasi pada saluran napas, menyebabkan bronchitis,
kanker nasofaring dan kanker paru. Tar mempunyai bahan kimia yang
beracun yang bisa menyebabkan kerusakan pada sel paru-paru dan
menyebabkan kanker (Sitepoe, 2000).2. NikotinNikotin adalah bahan
alkaloid toksik yang merupakan senyawa amin tersier, bersifat basa
lemah dengan pH 8,0. Pada pH fisiologis, sebanyak 31% nikotin
berbentuk bukan ion dan dapat melalui membran sel. Asap rokok pada
umumnya bersifat asam (pH 5,5). Pada pH ini nikotin berada dalam
bentuk ion dan tidak dapat melewati membran secara cepat sehingga
di mukosa pipih hanya terjadi sedikit absorpsi nikotin dari asap
rokok. Pada perokok yang menggunakan pipa, cerutu dan berbagai
macam sigaret Eropa, asap rokok bersifat basa dengan pH 8,5 dan
nikotin pada umumnya tidak dalam bentuk ion dan dapat diabsorpsi
dengan baik melalui mulut. Nikotin bersifat adiktif sehingga bisa
menyebabkan seseorang menghisap rokok secara terus-menerus. Sebagai
contoh, seseorang yang menghisap rokok sebanyak sepuluh kali isapan
dan menghabiskan 20 batang rokok sehari, berarti jumlah isapan
rokok per tahun mencapai 70.000 kali. Nikotin bersifat toksis
terhadap jaringan saraf juga menyebabkan tekanan darah sistolik dan
diastolik. Denyut jantung bertambah, kontraksi otot jantung seperti
dipaksa, pemakaian oksigen bertambah, aliran darah pada pembuluh
darah koroner bertambah dan vasokontriksi pembuluh darah perifer.
Nikotin meningkatkan kadar gula darah, kadar asam lemak bebas,
kolestrol LDL dan meningkatkan agresi sel pembekuan darah 3. Karbon
MonoksidaRokok juga mengandung gas karbon monoksida (CO) yang bisa
membuat berkurangnya kemampuan darah untuk membawa oksigen. Gas ini
bersifat toksis yang bertentangan dengan gas oksigen dalam
transport hemoglobin. Karbon monoksida (CO) adalah gas beracun yang
mempunyai afinitas kuat terhadap hemoglobin pada sel darah merah,
ikatan CO dengan haemoglobin akan membuat haemoglobin tidak bisa
melepaskan ikatan CO dan sebagai akibatnya fungsi haemoglobin
sebagai pengangkut oksigen berkurang, sehingga membentuk karboksi
hemoglobin mencapai tingkat tertentu akan dapat menyebabkan
kematian4. Timah HitamTimah hitam (Pb) yang dihasilkan oleh
sebatang rokok sebanyak 0,5 mg. Sebungkus rokok (isi 20 batang)
yang habis dihisap dalam satu hari akan menghasilkan 10 ug.
Sementara ambang batas bahaya timah hitam yang masuk ke dalam tubuh
adalah 20 ug per hari. Bisa dibayangkan, bila seorang perokok berat
menghisap rata-rata 2 bungkus rokok per hari, berapa banyak zat
berbahaya ini masuk ke dalam tubuh
C. Interaksi Toksik Toksisitas didefinisikan sebagai segala hal
yang memiliki efek berbahaya dari zat kimia atau obat pada
organisme target. Uji toksisitas terdiri atas uji toksisitas akut
(Amiria, 2008). 1. Uji Toksisitas AkutBertujuan untuk menetapkan
potensi toksisitas akut (LD50), menilai gejala klinis, spektrum
efek toksik, dan mekanisme kematian. Untuk uji toksisitas akut
perlu dilakukan pada sekurang-kurangnya satu spesies hewan coba,
biasanya spesies pengerat, yaitu mencit atau tikus, baik dewasa
maupun muda, dan mencakup kedua jenis kelamin. Perlakuan berupa
pemberian obat pada masing-masing hewan coba dengan dosis tunggal.
Terkait dengan upaya mendapatkan dosis letal pada uji LD50,
pemberian obat dilakuakn dengan besar dosis bertingkat dengan
kelipatan tetap (Amiria, 2008).Setelah mendapatkan perlakuan berupa
pemberian obat dosis tunggal maka dilakuakn pengamatan secara
intensif, cermat, dengan frekuensi dan selama jangka waktu tertentu
yaitu 7-14 hari, bahkan dapat lebih lama antara lain dalam
kaitannya dengan pemulihan gejala toksik (Amiria, 2008).Di samping
terjadinya kematian hewan uji, dalam pengamatan perlu diperhatikan
timbulnya gejala-gejala, terutama yang terkait dengan fungsi organ
tubuh yang tergolong cukup vital antara lain: hati, ginjal dan
hemopoetik. Setiap hewan uji yang mati perlu diautopsi, untuk
pemeriksaan organ tubuh secara makroskopik maupun mikroskopik,
untuk mengungkapkan kerusakan struktur organ yang dapat menjelaskan
gejala gangguan fungsinya. Hewan uji yang bertahan hidup sampai
batas akhir masa pengamatan, perlu diautopsi. Hewan coba yang
menunjukkan gejala efek toksik namun tidak mati, bermanfaat untuk
diamati terjadi atau tidaknya efek pemulihan (Amiria, 2008).2. Uji
Toksisitas SubkronikUji toksisitas subkronik terdiri atas:a.
Pemberian zat kimia uji secara berganda (dosis harian) b. Durasi 3
bulan untuk Dua spesies uji (biasa tikus dan anjing)c. Evaluasi: 1)
Seluruh hewan ditimbang seminggu sekali2) Pemeriksaan badan lengkap
seminggu sekali3) Uji kimia darah, analisis air kencing, uji
hematologi, dan uji fungsi dikerjakan atas seluruh hewan yang
sakit4) Seluruh hewan dapat mengalami bedah mayat lengkap yang
menyangkut histologi seluruh organ (Wirasuta, 2011).3. Uji
toksisitas kronisUji toksisitas kronis adalah dimana zat uji
diberikan selama sebagian besar masa hidup hewan uji, yang memiliki
kriteria:a. Durasi 2 - 7 th bergantung pada spesiesb. Spesies
dipilih dari hasil uji subkronis sebelumnya, studi farmakodinamik
atas beberapa spesies hewan, mungkin dapat juga pada manusia dengan
dosis tunggal yangmemungkinkan sebagai uji coba, jika tidak
digunakan dua spesies hewan yang telah ditentukan tadi.c. Minimum
dua peringkat dosisd. Evaluasi:1) Seluruh hewan ditimbang seminggu
sekali2) Pemeriksaan badan lengkap seminggu sekali3) Uji kimia
darah, analisis air kencins, pemeriksaan hematologi dan uji fungsi
atas seluruh hewan pada interval 3 sampai 6 bulan dan atas seluruh
hewan yang sakit atau abnormal4) Seluruh hewan dapat mengalami
bedah mayat lengkap yang menyangkut histologi dari seluruh
organ(Wirasuta, 2011).4. Uji toksisitas khususUji toksisitas khusus
terdiri atas:a. Uji potensi menentukan potensiasi zat uji bila
dicampur dengan zat lainb. Uji teratogenik: uji toksisitas untuk
menentukan efek atas janin (fetus) pada hewan buntingc. Uji
reproduksi: menentukan efek atas kemampuan reproduksi hewan ujid.
Uji mutagenice. Uji tumorgenisitas & karsinogenisitasf. Uji
iritasi atau sensitivitas pada kulit & matag. Uji
perilaku(Wirasuta, 2011).5. Asas Uji Biologi bagi ToksisitasAsas
uji biologi bagi toksisitas terdiri atas:a. Zat kimia harus kontak
dengan target sel/jaringan biologi untuk menimbulkan efekb.
Terdapat kisaran daerah antara NOEL (No Observed Effect Level)
dengan konsentrasi secara signifikan memberi efek atas segala
sistem biologic. Sel-sel biologi dlm berbagai macam spesies
memiliki fungsi serupa dan juga jalur metabolik yang serupa, pada
umumnya dengan cara serupa akan dipengaruhi oleh zat kimiad.
Perubahan kecil yg terjadi pada struktur suatu zat kimia mungkin
sangat mempengaruhi aksi biologi yang ditimbulkan (Wirasuta,
2011).
BAB IIIMETODE PENELITIANA. Desain PenelitianPenelitian ini
bersifat eksperimental untuk menguji toksisitas tembakau rokok
terhadap mortalitas ikan gatul (Poecilia sp.) fase juvenil melalui
perbedaan pemberian konsentrasi ekstrak tembakau rokok.B. Waktu dan
TempatPenelitian dilakukan pada Bulan April 2015 di Laboratorium
Ekologi Jurusan Biologi Universitas Negeri Malang. Uji pendahuluan
dilakukan selama 3x24 jam sampai mendapat Lc50, sedangkan uji
sesungguhnya dilakukan selama 6 hari.C. Variabel PenelitianVariabel
yang digunakan pada penelitian ini adalah.1. Variabel bebas:
konsentrasi tembakau rokok2. Variabel terikat: mortalitas ikan
gatul (Poecilia sp.)3. Variabel kontrol: fase ikan gatul (juvenil),
suhu air (suhu ruang 260C) dan volume air (2 Liter)D. Pembuatan
ekstrak tembakau rokok danAklimatisasi ikan GatulAlur berpikir/
Kerangka Konseptual
Pembuatan konsentrasi masing-masing 3 ulangan Yakni konsentrasi
50 ppm, 75 ppm, 100 ppm, 125 ppm dan 150 ppm
Pengambilan Data Analisis data dengan menggunakan uji anava
tunggal
Pembahasan
Kesimpulan
E. Alat dan Bahan
14
1. AlatAlat yang digunakan adalah:a. 15 buah toples plastikb. 2
buah saringan ikanc. 1 buah gelas ukur 1000 mld. 1 buah gelas ukur
100 mle. 1 buah pipet ukurf. Alat tulis g. Kertas label
2. BahanBahan yang digunakan adalah:a. 300 ekor ikan gatul
(Poecilia sp.) fase dewasa grafitb. Tembakau rokokc. Air krand. Air
kolam
F. Langkah KerjaPenelitian ini dilaksanakan pada beberapa tahap,
yaitu. 1. Pembuatan Ekstrak Tembakau Rokok :
Sampel tembakau rokok dipisahkan dari kertas pembungkus dan
filternya Sampel tembakau rokok ditimbang dengan ukuran 2 gram
Tembakau rokok dihaluskan dengan menggunakan mortar dan pistil
Tembakau rokok yang kurang lebih sudah halus dilarutkan dalam 2
liter air kran
2. Aklimatisasi Ikan GatulIkan gatul yang telah didapat
diletakkan pada akuarium besar yang telah berisi airkolam dengan
aerator selama 1 x 24 jam.
3. Uji toksisitas ekstrak tembakau rokok terhadap ikan gatul
Memasukkan konsentrasi air kolam pada satu toples sebanyak 0ppm
Larutan stok yang telah dibuat digunakan untuk membuat konsentrasi
50ppm, 100ppm, 150ppm dan 200ppm pada 4 toples. Setelah semua
konsentrasi siap, ikan gatul dalam akuarium dipindahkan ke
masing-masing toples dengan jumlah 10 ekor tiap toples Setiap
toples yang telah berisi ikan diberi label agar mudah dalam
pengambilan data Pengambilan data dilakukan selama 2x 24 jam atau
sekitar pukul 12.30 WIB selama 2 hari Pengambilan data yang
dilakukan menggunakan indikator jumlah ikan yang mati dan ikan yang
masih tersisa Ikan yang mati pada masing-masing toples diambil
dengan jaring dan dibuang agar tidak menimbulkan bau
4. Uji SesungguhnyaBerdasarkan hasil uji pendahuluan,
selanjutnya dilakukan uji sesungguhnya. Tahap yang dilakukan dalam
uji sesungguhnya adalah sebagai berikut:a. Memasukkan air sebanyak
2 liter pada masing-masing aquarium yang sudah dibersihkan
sebelumnyab. Menentukan konsentrasi untuk uji sesungguhnya
berdasarkan hasil Lc50 dari uji pendahuluan. Berdasarkan uji
pendahuluan, konsentrasi ekstrak tembakau rokok yang menyebabkan
50% mortalitas ikan uji (Lc50) adalah pada konsentrasi 100 ppm.
Dari konsentrasi tersebut diambil 2 rentang konsentrasi ke atas dan
ke bawah, sehingga didapatkan hasil konsentrasi untuk uji
sesungguhnya adalah 50 ppm, 75 ppm, 100 ppm, 125 ppm, 150 ppm, dan
0 ppm sebagai kontrol.c. Membuat larutan ekstrak tembakau rokok
dengan konsentrasi yang telah ditentukan, dengan langkah-langkah
sebagai berikut:1) Membuat larutan induk dengan konsentrasi 1000
ppm. Caranya dengan menimbang 2000mg tembakau rokok lalu dilarutkan
dalam 2 liter air2) Membuat konsentrasi yang telah ditentukan
dengan melakukan pengenceran dari larutan induk, menggunakan
rumus:V1 . N1 = V2 . N2Keterangan:V1: volume yang dibutuhkan
(volume encer)N1: konsentrasi Rhodamin B yang dibutuhkan
(konsentrasi encer)V2: volume yang diambil untuk pengenceran
(volume pekat)N2: konsentrasi larutan induk (konsentrasi pekat)
Misalnya untuk membuat konsentrasi 50 ppm:V1 . N1= V2 . N22000 .
50 = V2. 1000V2= 100 mlJadi untuk membuat konsentrasi 50 ppm dengan
cara mengambil 100ml larutan induk lalu dilarutkan dalam air kolam
sampai 2 liter3) Membuat pengenceran untuk masing-masing
konsentrasi: Konsentrasi 50 ppm: Mengambil 100 ml larutan induk
lalu dilarutkan dalam air kolam sampai 2 liter Konsentrasi 75 ppm:
Mengambil 150 ml larutan induk lalu dilarutkan dalam air kolam
sampai 2 liter Konsentrasi 100 ppm: Mengambil 200 ml larutan induk
lalu dilarutkan dalam air kolam sampai 2 liter Konsentrasi 125 ppm:
Mengambil 250 ml larutan induk lalu dilarutkan dalam air kolam
sampai 2 liter Konsentrasi 150 ppm: Mengambil 300 ml larutan induk
lalu dilarutkan dalam air kolam sampai 2 literd. Memasukkan larutan
ekstrak tembakau rokok dengan konsentrasi yang telah ditentukan ke
dalam masing-masing toplese. Memasukkan ikan uji ke dalam toples
dengan kepadatan 10 ekor setiap toplesf. Melakukan pengamatan
mortalitas ikan gatul pada hari pertama sampai hari ke-6g. Setiap
perlakuan dilakukan sebanyak 3 kali ulangan
BAB IVDATA DAN ANALISA DATAA. Data Tabel 4.1 Data Pengamatan Uji
Pendahuluan Pengaruh Ekstrak Tembakau Rokok terhadap Mortalitas
Ikan Gatul (Poecila sp)Konsentrasi (ppm)Jumlah Ikan Gatul yang Mati
Hari Ke-Jumlah Ikan yang Tersisa (ekor)
12
0 0010
50019
100325
150550
200910
Data uji pendahuluan menunjukkan semakin tinggi konsentrasi
larutan pada perlakuan, maka akan semakin banyak jumlah ikan yang
mati. Sedangkan semakin rendah konsentrasi larutan yang diberikan
maka akan semakin sedikit jumlah ikan yang mati. Karena sudah
memperoleh Lc50 tepatnya pada konsentrasi 100 ppm. Jadi, pada uji
toksisitas lethal kami menggunakan konsentrasi 0 ppm, 50 ppm, 75
ppm, 100 ppm, 125 ppm dan 150 ppm.
Tabel 4.2 Data Pengamatan Mortalitas Ikan Gatul pada Uji
Toksisitas LethalUlangan Konsentrasi (ppm)Mortalitas Ikan Gatul (%)
Hari Ke-Jumlah total (%)
123456
I00000000
5010001010030
7510010001030
100101002010050
1250000102030
1501010100201060
II00000000
500010001020
750000000
1002000001030
125100100101040
150102010010050
III00000000
50101010001040
750001001020
100000001010
12510010020030
15003020001060
Grafik tersebut menunjukkan hubungan antara konsentrasi ektrak
tembakau rokok terhadap mortalitas ikan gatul (Poecilia sp) yang
ditunjukkan dalam persen (%). Mortalitas ikan terbanyak berada pada
konsentrasi 150 ppm. Hasil data yang diperoleh dari uji
sesungguhnya ini kemudian dianalisis dengan analisis varian (ANAVA)
tunggal dengan taraf signifikan 5%. Analisis tersebut berguna untuk
mengetahui ada tidaknya pengaruh pemberian ekstrak tembakau rokok
terhadap mortalitas ikan gatul. Jika F hitung lebih besar
dibandingkan dengan F table, maka dilanjutkan dengan uji lanjutan
yaitu dengan menggunakan uji BNT untuk mengetahui konsentrasi yang
paling berpengaruh terhadap mortalitas ikan gatul.
B. Analisis DataAnalisa data yang digunakan dalam percobaan ini
adalah ANAVA tunggal dengan taraf signifikan 5% untuk mengetahui
ada tidaknya pengaruh pemberian ekstrak tembakau rokok terhadap
mortalitas ikan gatul yang kemudian dilanjutkan dengan uji BNT,
jika terdapat pengaruhnya terhadap mortalitas ikan gatul.Tabel 4.3
Ringkasan ANAVA Pengaruh Pemberian Ekstrak Tembakau Rokok Terhadap
Mortalitas Ikan Gatul (Poecilia sp)SKdbJKKTFhitungF0,05
Perlakuan55383,331076,6713,363,11
Galat12966,6780,56
Total 176350373,52
Rujukan Fhitung (13,36) > F0,05 (3,11)Ho ditolak, H1
diterima.Jadi, pemberian ekstrak tembakau rokok berpengaruh
terhadap mortalitas ikan gatul (Poecilia sp).Anava signifikan,
sehingga dapat dilanjutkan pada Uji Beda Nyata Terkecil (BNT).
Uji BNTNilai BNT= t0,05 x = 2,179 x = 2,179 x 8,02786813 =
17,492
Tabel 4.4 Notasi BNTKonsentrasi (ppm)Total Rerata Notasi BNT
755016,67a
509030b
10010033,33b
12510033,33c
15017056,67c
Jadi, dapat disimpulkan bahwa:a. Macam konsentrasi (ppm) ekstrak
tembakau rokok berpengaruh terhadap mortalitas ikan gatul (Poecilia
sp).b. Konsentrasi 150 ppm menunjukkan rerata mortalitas ikan gatul
yang paling besar, tetapi tidak berbeda nyata dengan konsentrasi
125 ppm.
BAB VPEMBAHASANHasil uji pendahuluan didapatkan nilai ambang
atas 150 ppm dan ambang bawah 50 ppm. Selanjutnya konsentrasi
perlakuan pada uji lanjut diperoleh dari hasil penelitian
pendahuluan sejumlah lima deret konsentrasi yang nilainya terletak
antara konsentrasi ambang atas dan ambang bawah. Hasil
perhitungannya adalah sebagai berikut : A (50 ppm), B (75 ppm), C
(100 ppm), D (125 ppm), E (150 ppm) dan 0 ppm sebgai kontrol.
Persentase mortalitas ikan gatul tertinggi adalah pada perlakuan
dengan konsentrasi 150 ppm, kemudian diikuti pada konsentrasi 125
ppm, perlakuan konsentrasi 100 ppm, perlakuan konsentrasi 50 ppm
dan perlakuan konsentrasi 75 ppm. Dari hasil penelitian pada uji
pendahuluan menunjukkan bahwa ikan gatul (Poecilia sp) mempunyai
batas toleransi yang berbeda terhadap ekstrak daun tembakau rokok
yang diberikan. Pernyataan ini diperkuat oleh Connell dan Miller
(1995) bahwa semakin tinggi konsentrasi pestisida yang masuk ke
dalam perairan secara langsung maka akan mempengaruhi proses-proses
fisiologis pada ikan dan kondisi puncaknya dapat menyebabkan
kematian. Proses kematian ini diduga karena hewan mengambil
pestisida secara langsung melalui penelanan makanan, pengambilan
air melalui membran insang dan penyerapan langsung dari
sedimen.Pada uji toksisitas letal selama pengamatan secara visual
terhadap ikan terlihat bahwa ikan uji mengalami perubahan tingkah
laku. Pergerakan ikan pada setiap perlakuan tampak berbeda, hal ini
diduga bahwa dengan perbedaan pemberian konsentrasi ekstrak daun
tembakau rokok akan menimbulkan pengaruh terhadap perbedaan
pergerakan ikan. Hal ini sesuai dengan pernyataan Thomson (1971)
bahwa pestisida dapat memberikan pengaruh pada pola tingkah laku,
arah gerakan dan persepsi terhadap rangsangan. Pengamatan terhadap
tingkah laku ikan di atas juga sesuai dengan pernyataan Sudarmo
(1991) bahwa ikan yang terkena racun pestisida dapat diketahui
dengan gerakan hiperaktif, menggelepar, lumpuh kemudian mati.
Secara klinis hewan yang terkontaminsi racun memperlihatkan gejala
stress, ditandai dengan gerakan yang kurang stabil dan cenderung
berada di dasar. Hal ini merupakan salah satu cara memperkecil
proses biokimia dalam tubuh yang teracuni sehingga efek letal yang
terjadi lebih lambat. Sedangkan Alabaster dan Lloyd (1980)
menjelaskan bahwa penurunan pertumbuhan dalam media yang
terkontaminasi bahan pencemar disebabkan oleh 4 hal yaitu
menurunnya nafsu makan, peningkatan aktivitas ikan untuk
menghindari media yang terkontaminasi, peningkatan energi untuk
mengeluarkan racun dalam tubuh dan beradaptasi terhadap air media
yang terkontaminasi serta peningkatan pengeluaran energi untuk
memperbaiki sel tubuh yang rusak.Adanya perubahan tingkah laku dan
kematian pada ikan menunjukkan bahwa ekstrak daun tembakau rokok
yang mengandung bahan aktif nikotin dapat menimbulkan pengaruh
terhadap mortalitas ikan gatul. Munajat dan Budiana (2003)
menyatakan bahwa nikotin yang terkandung di dalam daun tembakau
bekerja secara racun kontak, perut dan pernafasan serta bersifat
sistemik. Wattimena dan Soebito (1990) dalam Taurusman (1997)
menyatakan bahwa nikotin yang terdapat dalam ekstrak daun tembakau
di dalam tubuh organisme akan menstimulir ganglion pada sistem
syaraf melalui depolarisasi membran pasca sinaps pada dosis yang
lebih tinggi dan pengaruh yang berlangsung lebih lama dapat
menghambat stimulus di ganglion karena depolarisasi yang
berkepanjangan. Akhirnya sistem koordinasi rangsangan dari organ
tubuh ke sistem syaraf pusat mengalami gangguan yang dapat
menyebabkan hilangnya keseimbangan tubuh, mati rasa dan gerakan
tubuh yang tidak terkontrol.Berdasarkan kriteria daya racun letal
pestisida dari Komisi Pestisida Departemen Pertanian (1983) ekstrak
daun tembakau merupakan pestisida yang tergolong berdaya racun
sedang. Kematian pada ikan ini diduga adanya pengaruh dari
pemberian ekstrak daun tembakau dengan konsentrasi yang melebihi
dari kemampuan ikan untuk mentolerir zat asing yang masuk ke dalam
tubuhnya. Thomson (1971) menyatakan bahwa besar kecilnya toksisitas
pestisida satu dengan yang lainnya berbeda-beda tergantung dari
bahan aktif yang terkandung, ukuran dan kondisi ikan uji, kualitas
media uji serta lamanya waktu terkontaminasi.
BAB VIPENUTUPA. KesimpulanKesimpulan dari laporan ini adalah
sebagai berikut:1. Perbedaan konsentrasi ekstrak tembakau rokok
memberikan pengaruh terhadap mortalitas ikan gatul (Poecilia sp).
2. Konsentrasi ekstrak tembakau rokok yang memiliki pengaruh paling
tinggi terhadap mortalitas ikan gatul yaitu pada konsentrasi 150
ppmB. SaranSaran dari kami dalam melakukan penelitian ini adalah
sebagai berikut:1. Hendaknya peneliti lebih memahami terlebih
dahulu bagaimana cara mengekstrak dengan baik bahan yang akan
digunakan untuk pengujian.2. Hendaknya peneliti lebih cermat dalam
membuat konsentrasi larutan.
DAFTAR PUSTAKA
Adamu, K.M. 2009. Sublethal Effects of Tobacco (Nicotiana
tobaccum) Leaf Dust on Enzymatic Activities of Hetero clarias.
Jordan J. Biol.Sci. 2(4):151-158.
Amiria, F.D. 2008. Uji Toksisitas, (Online), dalam
(lib.ui.ac.id/file?file=digital/126098-FAR.040-08-Uji%20toksisitas...pdf)
diakses 11 April 2015Axelrod HR dan LP Schultz. 1983. Aquarium
Fishes. mcGraw-Hill Book Company, Inc., New York. P. 655-656Connel,
Des W and Miller G.J. 1995. Kimia dan Ekotoksikologi Pencemaran. UI
Press, Jakarta, 520 hlm. (diterjemahkan oleh : Yanti Koestoer)
Hubert, J.J. 1980. Bioassay. Kenda L Hunt Publishing Company,
Toronto
Komisi Pestisida. 1983. Pedoman Umum Pengujian Laboratorium
Toksisitas Lethal Pestisida pada Ikan untuk Keperluan Pendaftaran.
Departemen Pertanian, Jakarta, 24 hlm
Munajat, A dan Budiana, N.S. 2003. Pestisida Nabati untuk
Penyakit Ikan. Penebar Swadaya, Jakarta, 87 hlm.
Sudarmo, S. 1991. Pestisida. Penerbit Kanisius, Yogyakarta, 130
hlm.
Taufik, I. 2004. Pengaruh Kronis Insektisida Klorfiripos Etil
terhadap Pertumbuhan dan Struktur Hati Ikan Nila. Jurnal Penelitian
Perikanan Indonesia, 10 : (1). hlm. 71 77 Thomson, R.C.M. 1971.
Pesticide and Freshwater Fauna. Academic Press, London and New
York.Ukhroy, N.U. 2008. Efektivitas Propolis terhadap Nisbah
Kelamin Ikan Guppy Poecilia Reticulata. Bogor: Departemen Budidaya
Perairan Fakultas Perikanan dan Ilmu Kelautan Institut Pertanian
Bogor
Wirasuta, I.M.A.G. 2011. Metode Pengujian Toksisitas, (Online),
dalam
(http://farmasi.unud.ac.id/ind/wp-content/uploads/Metode-Pengujian-Toksisitas.pdf)
diakses 11 April 2015
Zairin M. 2002. Sex reversal : Memproduksi Benih Ikan Jantan
atau Betina. Penebar Swadaya. Jakarta
