Producción de post-larvas de Litopenaues

vannamei en diferentes estrategias de alimentación en sistemas de biofloc y

aguas claras

Alessandro Pereira Cardozo

Universidade Federal do Rio Grande

Es posible hacer larvicultura conmínimo recambio de agua?

•Sí

Calidad del agua en la Larvicultura

• Mantenimiento de la calidad de agua

• Altas tasas de renovación

• Larvas sensibles a compuestos tóxicos

• Generación de efluentes

• Posible introducción de patógenos

De dónde surgió la idea de trabajar sin renovación de agua

en la larvicultura?

Problema!

Salinidad

Cúal es la opción?

•Evaporar el agua?

Mas .......•Sal artificial!

➢MICROALGAS

✓ Mantenimiento de la calidad del agua(Thompson et al. 2002).

✓ Primera alimentación

✓ %PB

✓ Bajo contenido de fibras

✓ Digestibilidad (Chaetoceros 94%)(Jaime & Ceballos et al. 2006).

➢ En Sistemas de Bioflocs...

✓ SST en exceso generan colapso en la fotosíntesis (Godoy et al. 2012).

➢ El uso de la dextrosa puede mantener densidades elevadas de microalgas,

mismo en sistemas de bioflóculos

✓ Conteos y reposición diário (Godoy et al. 2012).

✓ Son eliminadas con la renovación de agua (FAO 2004).

➢ En Sistemas Tradicionales...

➢ Dextrosa x Melaza

✓ Estudios realizados después de PL15

Sistemas tradicionales de cultivo: PL1- PL15 Renovación de agua

~100%dia (FAO 2004)

➢ SISTEMAS DE BIOFLOCULOS

✓ Ofrece mayor bioseguridad

✓ Limita recambios de agua

Fonte: Banco de dados EMA

PL’s: Interacciones com el biofilm (biopelícula).

✓ Camarones adultos: Consumo de alimento proveniente de los bioflóculos(Burford et al. 2004)

➢BIOFILM OU BIOPELÍCULA

✓ Consórcio de microrganismos colonizando substrato sumergido

✓ Alimento (Thompson et al., 2002; Moss & Moss 2004, Ballester 2003,

2007; Abreu et al., 2007)

✓ Nitrificación (Bratvold & Browdy 2001; Moss & Moss 2004)

➢METODOLOGÍA

➢TB

Fertilización Orgánica

➢TC

Renovación de agua

Thalassiosira weissflogii (2x104 cél/mL)

✓ EXP. I: PL1-PL15

✓ EXP. II: PL16-PL30

75 PL’s/L

**n.d. No detectado

➢ RESULTADOS

Parámetros Físico-químicos de calidad del agua

Exp I

TC TB TC TB

Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07

Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98

pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b

Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7

Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b

Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b

Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2

Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b

Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**

Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73

Exp II

ba

Exp I

TC TB TC TB

Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07

Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98

pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b

Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7

Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b

Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b

Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2

Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b

Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**

Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73

Exp II Exp I

TC TB TC TB

Temperatura (oC) 30,5±0,22 30,66±0,81 30±1,05 30±1,07

Oxigênio (mg/L) 5,49±1,72 a 5,17±1,46 b 5,08±0,82 4,87±0,98

pH 8±0,01 7,92±0,11 7,97±0,059 a 7,92±0,086 b

Alcalinidade (CaCO3) 188,33±9,3 175,83±13,93 175±9,35 163±5,7

Salinidade 31,66±1,03 31,83±1,17 29±1,2 a 31±1,7b

Sólidos em suspensão (mg/L) 735,62±443,92 1080,75±643,2 806,33±145,35a 1252,66±361,76b

Amônia Total (mg/L) 2,45±3,04 2,21±2,25 1,32±1,64 1,74±2

Nitrito (mg/L) 0,048±0,075 a 0,07±0,095 b 0,021±0,03a 0,01±0,01b

Nitrato (mg/L) n.d n.d n.d n.d**

Fosfato (mg/L) 1,26±1,48 1,75±1,75 0,34±0,31 0,57±0,73

Exp II

**n.d. No detectado

Exp I

TC TB TC

Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36

Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0

Peso Inicial (mg) 0.5±0.1 0.5±0.1 10±2

Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5

Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98

Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a

Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55

Exp II

Desempeño de las pós-larvas

Exp I

TC TB TC TB

Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36 95,75±2,22

Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0 100±0

Peso Inicial (mg) 5±1 5±1 10±2 10±2

Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5 23±3

Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98 12,7±0,98

Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a 19,4±0,8b

Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55 11,62±2,17

Exp II Exp I

TC TB TC TB

Sobrevivência (%) 70,81±2,25a 88,76±5,8b 80,62±13,36 95,75±2,22

Teste stress (%) 98±4,47 100±0 100±0 100±0

Peso Inicial (mg) 5±1 5±1 10±2 10±2

Peso Final (mg) 9,4± 2,8 13±3 19±5 23±3

Comprimento Inicial (mm) 7±1,3 7±1,3 12,7±0,98 12,7±0,98

Comprimento Final (mm) 12,6±1,19 13,02±1 14,22±1,49 a 19,4±0,8b

Biomassa Final (g) 1,81±1,16 a 4,4±1,6 b 8,28±3,55 11,62±2,17

Exp II

Pontuação

0= Ruim 1=Bom 2=Excelente 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15

Opaco Trnslúcido

Transparente Palido Escuro

Ausente Reduzido Intenso

Presente Ausente

≠ 3:1 3:01

51-100% 1-50% 0%

51-100% 1-50% 0%

51-100% 26-50% 0-25%

0-25% 26-75% 76-100%

51-100% 1-50% 0%Presença de epibiontes

Pontuação Total

Média Final

Deformidades no corpo

Proporção Músculo:Intestino

Melanização no corpo

Necroses em apêndices

Deformidades hepatopâncreas

Preenchimento Hepatopâncreas

Data:________ Tanque:_________Tratamento:_______

Critérios avaliados

Número de PL's

Coloração abdominal

Coloração Hepatopâncreas

Peristaltismo intestinal

➢ Excelente

➢ Bueno

➢ Malo✓ Adaptado de Lopes et al. 2012

TC TB TC TB

Opacidade Abdominal 1,25±0,7a

1,9±0,11b 1,28±0,7 1,6±0,28

Cor do Hepatopâncreas 2±0 1,98±0,05 1,93±0,09 1,95±0,1

Peristaltismo Intestinal 1,78±0,09 1,83±0,15 1,65±0,25a

2±0b

Deforidades no corpo 1,75±0,17 1,85±0,19 1,7±0,11 1,9±0,11

Musculo:Intestino 1,25±0,68 1,6±0,43 1,7±0,25 1,95±0,1

Melanização no corpo 1,07±0,47a

1,55±0,24b 1,85±0,1 1,7±0,4

Necrose nos apêndices 1,55±0,52a

1,98±0,05b 1,68±0,09 1,85±0,24

Deformidades no Hepatopâncreas 1,97±0,05 1,98±0,05 1,7±0,09 1,95±0,1

Preeenchimento do Hepatopâncreas 1,95±0,05 2±0 2±0 2±0

Epibiontes 1,28±0,3 1,3±0,14 1,28±0,43 1,43±0,38

Score Total 16±1,58 17,95±0,52 16,8±1,22 18,31±0,72

Avaliação Final de Qualidade Bom Excelente Bom Excelente

Qualidade Pós-Larvas

Exp I Exp II

Análisis de la calidad de las pós-larvas

Figura 1- Hepatopáncreas de pós-larvas Exp I, onde (a) TC e (b) TB.

Lúm

Cél B

Lúm

Cél B

TC TB

Figura 2- Hepatopáncreas de pós-larvas Exp II, onde (a) TC e (b) TB.

Lúm

Cél B

Lúm

Cél B

TC TB

➢ CONCLUSION

➢PL’s producidas sin recambio de agua desde el primer dia como PL

presentan mejor condición nutricional, excelentes modelos de

calidad y desempeño.

CONTRIBUCIÓN DE LOS BIOFLÓCULOS EN PÓS-LARVAS

DE Litopenaeus vannamei DETERMINADA POR ISÓTOPOS

ESTABLES

✓ Verificar la incorporación de los bioflóculos en los tejidos de

pós-larvas de Litopenaeus vannamei y la influencia sobre la

calidad de las mismas.

➢OBJETIVO

➢ Incorporación de nutrientes de la dieta en los tejidos del consumidor (Gamboa-

Delgado et al., 2008)

➢ Perfil isotópico

✓ Estiman la contribución de diferentes fuentes para un indivíduo (Philips 2012).

✓ Conociendo los valores isotópicos de las fuentes y consumidores, se utilizan

modelos de mezcla

➢METODOLOGIA

✓ PL1-PL30

✓ 83 PL’s/L

➢TB

Fertilización Orgánica

➢TC

Renovación de agua

➢ PL1-PL10:(4x/dia)

2x/dia1x/dia 1x/dia

➢ PL11-PL20(5x/dia)

1x/dia2x/dia 2x/dia

➢ PL21-PL30(5x/dia)

1x/dia4x/dia

➢Alimentación

➢ Chaetoceros muelleri

✓ 5 x 104 cél/mL

Tratamentos TC TB

Temperatura (0C) 27,8±1,14 28,13±1,33

Oxigênio (mg/L) 5,72±0,4 5,73±0,49

pH 8,05±0,24 8,04±0,23

Salinidade 30,16±0,98a

31,33±0,52b

Alcalinidade (mg/L como CaCO3) 248,75±2,5a

112,5±14,43b

Fosfato (mg/L) 0,99±0,6 1,93±1,21

Amônia (mg/L) 0,65±0,15 0,65±0,1

Nitrito (mg/L) 0,7±0,15a

1,34±0,3b

Nitrato (mg/L) 1,32±1,17 1,9±2

➢ RESULTADOS

PARÁMETROS FÍSICO-QUÍMICOS DE CALIDAD DEL AGUA

DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE LAS PÓS- LARVAS.

Tratamentos TC TB

Sobrevivência (%) 93.2±7.11 91.2±8.53

Peso Inicial (mg) 0.65±0.2 0.65±0.2

Peso Final(mg) 35±10 36±16

Comprimento Inicial (mm) 5.75±2.59 5.75±2.59

Comprimento Final(mm) 16.81±1.82 16.39±2.54

Biomassa Final (g) 3.16±0.7 3.14±0.44

Desempenho

Tratamentos TC TB

Cor do abdomen 1.9± 0.11 2±0

Cor do hepatopâncreas 2±0 2±0

Peristaltismo intestinal 2±0 2±0

Músulo: Intestino 2±0 2±0

Melanização no corpo 1.8±0.05a 1.93±0.12b

Necroses 1.9±0.11 1.93±0.12

Deformidades no hepatopâncreas 1.43±0.32 1.57±0.32

Preenchimento Hepatopâncreas 1±0 1.33±0.23

Epibiontes 1.17±0.29 1.3±0.17

Escore Final 15.2±0.26 16.06±0.58

Avaliação Final Bom Excelente

Qualidade das pós-larvas

ANÁLISIS DE CALIDAD DE LAS PÓS- LARVAS

A

C

PL40

TC Dia 30

➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES

A

S

F

C

TC Dia 10 TC Dia 20

A

F

C

PL40

AC

PL40

BFT

TB Dia 30

TB Dia 10

A

S

F

CBFT

TB Dia 20A

F

C

BFT

PL40

➢ Artemia sp.:

➢ Incorporación menor que las demás fuentes

✓ Esencial para las fases iniciales de vida.(Gamboa-Delgado & Le Vay (2009)

✓ Reducción de la oferta tiene efectos desconocidos

✓ Contribuyen a la mejor calidad de PL’s

✓ Fuente de nutrientes para de L. vannamei(Silva et al 2008, Burford et al 2004, Thompson et al. 2002, Ballester et al., 2003)

BIOFLOCS

➢ CONCLUSIONES

✓ Bioflocs:

✓ Viabilidad de lotes de excelente calidad

✓ Consumidos e incorporados en los tejidos de las PL’s

✓ Posibilidad de reducir la Artemia sp. como fuente esencial de

alimento.

✓ Dextrose viabiliza mantenimiento de microalgas durante el ciclo de

producción

PRODUCCIÓN DE POST-LARVAS DE Litopenaeus vannamei EN SISTEMAS

DE BIOFLOCS CON DIFERENTES REGÍMENES DE ALIMENTACIÓN

✓ Verificar la contribución de diferentes fuentes de alimento para

el crecimiento y condición nutricional de pós-larvas de Litopenaeus

vannamei cultivadas con bioflóculos y agua clara.

➢OBJETIVO

➢METODOLOGIA

➢RA: Balanceado +Artemia sp.

➢R: balanceado

➢RM: Balanceado+ C. muelleri

➢RAM: Balanceado +Artemia sp.+ C. muelleri

✓ 75 PL’s/L

✓ Inóculo 5% BFT

DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE PÓS-LARVAS (Bioflocs)

Parâmetros R RAM RA RM

Tamanho inicial (mm) 5±0.5 5±0.5 5±0.5 5±0.5

Peso Inicial (mg) 0.51±0.4 0.51±0.4 0.51±0.4 0.51±0.4

Tamanho Final (mm) 20.14±0.5a 19.24±0.95ab 17.19±0.41b 19.05±1.58ab

Peso Final (mg) 41±8a 30±2b 20±4c 30±3ab

Sobrevivencia (%) 49.38±11.35a 92.86±4.95b 89.99±6.83b 77.38±13.76b

Biomassa Final (g) 13.72±0.7a 18.66±2.17b 14.19±2.09ab 16.96±3.34ab

DESEMPEÑO ZOOTÉCNICO DE LAS PL’s (Agua Clara)

Parâmetros R RAM RA RM

Tamanho inicial (mm) 5±0,5 5±0,5 5±0,5 5±0,5

Peso Inicial (mg) 0,51±0,4 0,51±0,4 0,51±0,4 0,51±0,4

Tamanho Final (mm) 17,67±0,73 18,81±3,15 18,33±1,37 18,1±0,92

Peso Final (mg) 20±8 30±18 30±5 30±9

Sobrevivência (%) 54,11±4,58a

90±6,81b

76,94±11,72bc

67,66±9,3ac

Biomassa final (g) 5,29±2,45a

16,87±7,57b

15,6±0,58b

13,2±2,2b

MORFOMETRIA DEL HEPATOPÁNCREAS (Bioflóculos)

(a)

R RAM

RA RM

➢ MORFOMETRIA DEL HEPATOPÁNCREAS (Agua clara)

R RAM

RA RM

➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES

Intervalo de contribuición (IC) de las diferentes fuentes alimenticias

Tratamentos Artemia sp. C. muelleri Flake 40J Biofilme Bioflocos

R N.A. N.A. 0-43% 0-57% 0-51% 0-57%

RAM 0-30% 0-33% 0-35% 8-42% 0-30% 0-45%

RA 0-27% N.A. 0-36% 17-50% 0-27% 0-50%

RM N.A. 0-35% 0-37% 4-64% 0-34% 2-57%

➢ ISÓTOPOS ESTÁBLES

INTERVALO DE CONTRIBUCIÓN (IC) DE LAS DIFERENTES FUENTES ALIMENTICIAS

*N.O. No Ofrecido

Tratamentos Artemia sp. C. muelleri Flake 40J Biofilme

R N.O N.O 1-43% 18-74% 5-55%

RA 0-38% N.O 0-50% 4-43% 13-47%

RM N.O 0-33% 0-41% 11-79% 2-50%

RAM 0-31% 0-35% 0-38% 6-41% 5-67%

➢CONCLUSIONES

✓ La substitución de Artemia sp. por C. muelleri puede ser realizada

en sistemas de bioflóculos

✓ C. muelleri ofrece nutrientes suficientes para el buen desempeño

de las PL’s

✓ Ofrecer solo alimento balanceado compromete el desempeño de

las PL’s aún en presencia de biofilm y bioflóculos

➢CONCLUSIONES

✓ La exclusión de Artemia sp. compromete la sobrevivencia

✓ En sistemas de agua clara la Artemia sp. no debe ser descartada,

ni substituída por C. muelleri.

✓ Alimento balanceado + Microalgas no garantizan um estado

nutricional adecuado en sistemas de agua clara

➢CONCLUSIONES FINALES

✓ La suspensión de los recambios de agua es benéfica para PL’s de

Litopenaeus vannamei desde PL1

➢ La producción en sistemas de bioflóculos garantiza:

✓ Excelente desempeño zootécnico y calidad

✓ Buena calidad del agua

✓ Ventajas en la substitución de Artemia sp. por C. muelleri

➢ Técnicas histológicas y de isótopos estábles permiten verificar la

influência que el alimento natural posee sobre el desempeño de

las PL’s desde la fase de PL1.

➢ Sin embargo, en sistemas tradicionales:

✓ La Artemia sp. no debe ser descartada o substituída

AGRADECIMENTOS

APOIADORES

FINANCIADORES

MUCHAS GRACIAS POR SU ATENCIÓN