9

TINJAUAN PUSTAKA

Anestesi

Istilah anestesi dimunculkan pertama kali oleh dokter Oliver Wendell Holmes

(1809-1894) berkebangsaan Amerika, diturunkan dari dua kata Yunani : An berarti

tidak, dan Aesthesis berarti rasa atau sensasi nyeri. Secara harfiah berarti ketiadaan

rasa atau sensasi nyeri. Dalam arti yang lebih luas, anestesi berarti suatu keadaan

hilangnya rasa terhadap suatu rangsangan. Pemberian anestetikum dilakukan untuk

mengurangi dan menghilangkan rasa nyeri baik disertai atau tanpa disertai hilangnya

kesadaran. Seringkali anestesi dibutuhkan pada tindakan yang berkaitan dengan

pembedahan. Anestetikum yang diberikan pada hewan akan membuat hewan tidak

peka terhadap rasa nyeri sehingga hewan menjadi tenang, dengan demikian tindakan

diagnostik, terapeutik, atau pembedahan dapat dilaksanakan lebih aman dan lancar

(Tranquilli et al. 2007; Miller 2010).

Perjalanan waktu sepanjang sejarah menunjukkan bahwa anestesi pada hewan

digunakan untuk menghilangkan rasa dan sensasi terhadap suatu rangsangan yang

merugikan (nyeri), menginduksi relaksasi otot, dan terutama untuk membantu

melakukan diagnosis atau proses pembedahan yang aman. Alasan lain penggunaan

anestesi pada hewan adalah untuk melakukan pengendalian hewan (restraint),

keperluan penelitian biomedis, pengamanan pemindahan (transportasi) hewan liar,

pemotongan hewan yang humanis, dan untuk melakukan ruda paksa (euthanasia).

Secara umum tujuan pemberian anestetikum pada hewan adalah mengurangi atau

menghilangkan rasa nyeri dengan meminimalkan kerusakan organ tubuh dan

membuat hewan tidak terlalu banyak bergerak. Semua tujuan anestesi dapat dicapai

dengan pemberian obat anestetikum secara tunggal maupun dalam bentuk balanced

anesthesia, yaitu mengkombinasikan beberapa agen anestetikum maupun dengan

agen preanestetikum (McKelvey dan Hollingshead 2003; Tranquilli et al. 2007).

10

Preanestesi

Preanestesi adalah pemberian zat kimia sebelum tindakan anestesi umum

dengan tujuan utama menenangkan pasien, menghasilkan induksi anestesi yang halus,

mengurangi dosis anestetikum, mengurangi atau menghilangkan efek samping

anestetikum, dan mengurangi nyeri selama operasi maupun pasca operasi (Debuf

1991; McKelvey dan Hollingshead 2003). Pemilihan preanestetikum

dipertimbangkan sesuai dengan spesies, status fisik pasien, derajat pengendalian,

jenis operasi, dan kesulitan dalam pemberian anestetikum (Booth dan Branson 1995).

Preanestetikum yang paling umum digunakan pada hewan adalah atropine,

acepromazin, xylazine, diazepam, midazolam, dan opioid atau narkotik. Atropine

digunakan untuk mengurangi salivasi, peristaltik dan mengurangi bradikardia akibat

anestesi. Acepromazin digunakan sebagai penenang atau tranquilizer. Xylazine,

medetomidin, diazepam, dan midazolam digunakan sebagai agen sedatif dan

merelaksasi otot. Opioid atau narkotik digunakan untuk mengurangi rasa sakit, seperti

disajikan pada Gambar 1.

Gambar 1. Klasifikasi agen preanestesi yang digunakan pada anestesi umum

(Sumber: Warren 1983; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Klasifikasi Anestesi

Keadaan teranestesi dapat dihasilkan secara kimia dengan obat-obatan dan

secara fisik melalui penekanan sensori pada syaraf. Obat-obatan anestetika umumnya

diklasifikasikan berdasarkan rute penggunaannya, yaitu: 1). Topikal misalnya melalui

Tranquilizer : Promazin, Acepromazin, Chlorpromazin, Xylazine, Diazepam, Midazolam, Lorazepam, Madetomidin.

Pelemas otot (Muscle paralyzer): Xylazine, Diazepam, Midazolam, Medetomidin, Lorazepam, Curare.

Antikolinergik : Atropine, Scopolamine, Aminopentamid, Glikopirolat.

Narkotik : Morpin, Apomorpin, Meperidin, Oksimorpin, Etorpin, Nalorpin.

Agen Dissosiatif : Penciklidine, Ketamine, Tiletamine.

Preanestesi

11

kutaneus atau membrana mukosa; 2). Injeksi seperti intravena, subkutan,

intramuskular, dan intraperitoneal; 3). Gastrointestinal secara oral atau rektal; dan 4).

Respirasi atau inhalasi melalui saluran nafas (Tranquilli et al. 2007).

Anestetetikum juga dapat diklasifikasikan berdasarkan daerah atau luasan

pada tubuh yang dipengaruhinya, yaitu : 1). Anestesi lokal, terbatas pada tempat

penggunaan dengan pemberian secara topikal, spray, salep atau tetes, dan infiltrasi.

2). Anestesi regional, mempengaruhi pada daerah atau regio tertentu dengan

pemberian secara perineural, epidural, dan intratekal atau subaraknoid. 3). Anestesi

umum, mempengaruhi seluruh sistem tubuh secara umum dengan pemberian secara

injeksi, inhalasi, atau gabungan (balanced anaesthesia) (Adams 2001; McKelvey dan

Hollingshead 2003).

Anestesi Lokal

Anestetikum lokal adalah suatu bahan kimia yang mampu menghambat

konduksi syaraf perifer tanpa menimbulkan kerusakan permanen pada syaraf

tersebut. Mekanisme kerja anestetikum lokal dengan cara menghambat (blok) saluran

ion sodium (Na) pada syaraf perifer, konduksi atau aksi potensial pada syaraf

terhambat sehingga respon nyeri secara lokal hilang. Anestetikum lokal mencegah

proses depolarisasi membran syaraf secara lokal melalui penghambatan saluran ion

Na, sehingga membran akson tidak dapat bereaksi dengan neurotransmitter

acetilkolin dan membran akan tetap dalam keadaan semipermiabel serta tidak terjadi

perubahan potensial. Keadaan tersebut menyebabkan aliran inpuls yang melewati

syaraf berhenti, sehingga semua rangsangan tidak sampai ke SSP. Sifat hambatan

syaraf umumnya bersifat lokal, selektif, dan tergantung pada dosis atau jumlah obat

yang diberikan (Tranquilli et al. 2007; Miller 2010).

Sifat sifat yang harus dimiliki oleh obat anestetikum lokal adalah poten,

artinya efektif dalam dosis rendah, daya penetrasinya baik, mula kerjanya cepat, masa

kerjanya lama, toksisitas sistemik rendah, tidak mengiritasi jaringan, pengaruhnya

reversibel, dan mudah dikeluarkan dari tubuh (Adams 2001; Tranquilli et al. 2007).

12

Penggunaan anestetikum lokal bisa dilakukan dengan meneteskan pada

permukaan daerah yang akan dianestesi (surface aflication), dengan melakukan

injeksi secara sub-kutan pada daerah yang akan dianestesi (subdermal, intradermal),

serta dengan melakukan pemblokiran pada daerah tertentu (field block anestesi).

Anestetikum yang sering digunakan sebagai anestetikum lokal adalah procaine HCI

2% - 4%, Lidocaine 0,5 - 2%, Lidocaine 4%, Tetracaine, bupivacaine 0,25% atau

0,5%, Dibucain, Pehacaine, Lidonest, dan Chlor buthanol dengan dosis pemberian

secukupnya (Quantum statis, QS). Lidocaine dan bupivacaine dapat diencerkan

dengan larutan salin (bukan air) untuk menurunkan konsentrasinya. Bupivacaine

mempunyai onset lebih lambat (20 menit) dan durasi lebih panjang (6 jam)

dibandingkan lidocaine (onset lebih cepat dan durasi 1-2 jam) (Adams 2001; Sudisma

2006; Tranquilli et al. 2007).

Anestesi Regional

Anestesi regional adalah tindakan menghilangnya nyeri yang dilakukan

dengan cara menyuntikkan anestetikum lokal pada lokasi syaraf yang menginervasi

regio atau daerah tertentu sehingga menyebabkan hambatan konduksi inpuls yang

reversibel. Anestetikum regional dapat menghilangkan rasa nyeri pada suatu daerah

atau regio tertentu secera reversibel tanpa disertai hilangnya kesadaran. Mekanisme

kerja dan jenis anestetikum yang digunakan sama dengan anestetikum lokal, tetapi

daerah atau luasan pada tubuh yang dipengaruhi adalah daerah atau regio tertentu.

Anestesi regional dibedakan berdasarkan rute pemberiannya, yaitu secara epidural,

spinal atau intrathekal atau subaraknoid, dan blok pleksus brakhialis (Adams 2001;

McKelvey dan Hollingshead 2003).

Anestesi epidural dihasilkan dengan cara menginjeksikan anestetikum lokal

diantara duramater dan periosteum dari canalis spinalis (epidural space).

Anestetikum tidak langsung mengenai medula spinalis, sehingga efek anestesi terjadi

setelah 15-20 menit pemberian. Anestesi epidural menghambat sensasi dan kontrol

motorik daerah abdominal, pelvis, ekor, dan kaki belakang. Anestesi ini biasanya

digunakan untuk laparotomi, amputasi ekor, urethrostomi, pembedahan cesar,

13

pembedahan daerah pelvis, dan amputasi daeran kaki belakang. Pada hewan kecil

dilakukan antara tulang lumbar terakhir dan tulang sakral 1. Sedangkan pada hewan

besar dilakukan antara tulang coccigia 1 dan 2. Anestetikum yang digunakan sama

dengan anestetikum lokal, seperti lidocaine 2%, bupivacain 0,5%, ropivacain 0,75%

atau mepivacaine 2% dengan dosis pemberian 1ml/5kg BB. Lidocain menghasilkan

durasi sekitar 1-2 jam dan bupivacain sekitar 6 jam (McKelvey dan Hollingshead

2003).

Spinal atau intrathekal atau subaraknoid anestesi sama dengan anestesi

epidural tetapi dilakukan melalui duramater dan subaraknoid dimana jarum

menembus duramater dan subaraknoid sehingga anestetikum masuk ke dalam dan

langsung mengenai syaraf spinal, menghasilkan anestesi yang segera dan lebih

cepat. Anestesi ini mengakibatkan resiko berontak dan rasa sakit yang memerlukan

kesembuhan lebih lama. Anestetikum yang digunakan sama dengan anestetikum

lokal. Sedangkan blok pleksus brakhialis adalah anestesi regional dengan cara

menyuntikkan anestetikum lokal di daerah perjalanan fleksus brakhialis yang

menginervasi daerah kaki depan (Adams 2001; McKelvey dan Hollingshead 2003;

Sudisma 2006; Tranquilli et al. 2007).

Anestesi Umum

Anestesi umum adalah keadaan hilangnya nyeri di seluruh tubuh dan

hilangnya kesadaran yang bersifat sementara yang dihasilkan melalui penekanan

sistem syaraf pusat karena adanya induksi secara farmakologi atau penekanan

sensori pada syaraf. Agen anestesi umum bekerja dengan cara menekan sistem

syaraf pusat (SSP) secara reversibel (Adams 2001). Anestesi umum merupakan

kondisi yang dikendalikan dengan ketidaksadaran reversibel dan diperoleh melalui

penggunaan obat-obatan secara injeksi dan atau inhalasi yang ditandai dengan

hilangnya respon rasa nyeri (analgesia), hilangnya ingatan (amnesia), hilangnya

respon terhadap rangsangan atau refleks dan hilangnya gerak spontan (immobility),

serta hilangnya kesadaran (unconsciousness) (McKelvey dan Hollingshead 2003).

14

Mekanisme kerja anestesi umum pada tingkat seluler belum diketahui secara

pasti, tetapi dapat dihipotetiskan mempengaruhi sistem otak karena hilangnya

kesadaran, mempengaruhi batang otak karena hilangnya kemampuan bergerak, dan

mempengaruhi kortek serebral karena terjadi perubahan listrik pada otak. Anestesi

umum akan melewati beberapa tahapan dan tahapan tersebut tergantung pada dosis

yang digunakan. Tahapan teranestesi umum secara ideal dimulai dari keadaan terjaga

atau sadar kemudian terjadi kelemahan dan mengantuk (sedasi), hilangnya respon

nyeri (analgesia), tidak bergerak dan relaksasi (immobility), tidak sadar

(unconsciousness), koma, dan kematian atau dosis berlebih (Tranquilli et al. 2007;

Miller 2010).

Anestesi umum yang baik dan ideal harus memenuhi kriteria : tiga komponen

anestesi atau trias anestesi (sedasi, analgesi, dan relaksasi), penekanan refleks,

ketidaksadaran, aman untuk sistem vital (sirkulasi dan respirasi), mudah

diaplikasikan dan ekonomis. Dengan demikian, tujuan utama dilakukan anestesi

umum adalah upaya untuk menciptakan kondisi sedasi, analgesi, relaksasi, dan

penekanan refleks yang optimal dan adekuat untuk dilakukan tindakan dan prosedur

diagnostik atau pembedahan tanpa menimbulkan gangguan hemodinamik,

respiratorik, dan metabolik yang dapat mengancam (Wolfensohn dan Lloyd 2000;

Adams 2001; Tranquilli et al. 2007; Miller 2010).

Agen anestesi umum dapat digunakan melalui injeksi, inhalasi, atau melalui

gabungan secara injeksi dan inhalasi. Anestetikum dapat digabungkan atau

dikombinasikan antara beberapa anestetikum atau dengan zat lain sebagai

preanestetikum dalam sebuah teknik yang disebut balanced anesthesia untuk

mendapatkan efek anestesi yang diinginkan dengan efek samping minimal.

Anestetika umum inhalasi yang sering digunakan pada hewan adalah halotan,

isofluran, sevofluran, desfluran, dietil eter, nitrous oksida dan xenon. Anestetika

umum yang diberikan secara injeksi meliputi barbiturat (tiopental, metoheksital, dan

pentobarbital), cyclohexamin (ketamine, tiletamin), etomidat, dan propofol

(McKelvey dan Hollingshead 2003; Garcia et al. 2010).

15

Anestesi umum inhalasi merupakan salah satu metode anestesi umum yang

dilakukan dengan cara memberikan agen anestesi yang berupa gas dan atau cairan

yang mudah menguap melalui alat anestesi langsung ke udara inspirasi. Mekanisme

kerja anestesi umum inhalasi sangat rumit dan sampai saat ini masih merupakan

misteri, karena pemberian anestetikum inhalasi melalui pernapasan menuju organ

sasaran yang jauh adalah suatu hal yang unik. Hiperventilasi akan menaikkan ambilan

anestetikum dalam alveolus dan hipoventilasi akan menurunkan ambilan alveolus.

Kelarutan zat inhalasi dalam darah adalah faktor utama yang penting dalam

menentukan induksi dan pemulihan anestesi inhalasi. Induksi dan pemulihan akan

berlangsung cepat pada zat yang tidak larut dan lambat pada zat yang larut. Kadar

alveolus minimal atau minimum alveolar cencentration (MAC) adalah kadar minimal

zat anestesi dalam alveolus pada tekanan satu atmosfir yang diperlukan untuk

mencegah gerakan pada 50% pasien yang dilakukan rangsangan insisi standar.

Immobilisasi tercapai pada 95% pasien apabila kadar anestetikum dinaikkan di atas

30% nilai MAC. Dalam keadaan seimbang, tekanan parsial anestetikum dalam alveoli

sama dengan tekanan zat dalam darah dan otak tempat kerja anestetikum (Latief et al.

2007; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Anestetika umum inhalasi yang pertama kali dikenal dan digunakan untuk

membantu pembedahan adalah N2O. Kemudian menyusul, eter, kloroform, etil

klorida, halotan, metoksifluran, enfluran, isofluran, desfluran, sevofluran, dan xenon.

Anestetika umum inhalasi yang umum digunakan saat ini adalah N2

Nitrous oxide (N

O, halotan,

enfluran, isofluran, desfluran, sevofluran, dan xenon. Obat obat anestesi yang lain

ditinggalkan, karena efek sampingnya yang tidak dikehendaki. Misalnya, eter mudah

terbakar dan meledak, menyebabkan sekresi bronkus berlebihan, mual dan muntah,

kerusakan hati, dan baunya yang sangat merangsang. Kloroform menyebabkan

aritmia dan kerusakan hati. Metoksifluran menyebabkan kerusakan hati, toksik

terhadap ginjal, dan mudah terbakar (Latief et al. 2007; McKelvey dan Hollingshead

2003; Tranquilli et al. 2007).

2O) atau dinitrogen monoksida adalah anestesi inhalasi yang

diperoleh dengan cara memanaskan amonium nitrat (NH4NO3) sampai 240oC. Gas

16

ini bersifat anestetikum lemah, tetapi analgesianya kuat, sehingga jarang digunakan

secara tunggal. Anestetikum yang sering dikombinasikan dengan N2O adalah

halotan. Pada akhir anestesi setelah N2O dihentikan, akan cepat keluar mengisi

alveoli, sehingga terjadi pengenceran oksigen dan terjadi hipoksia difusi. Mengatasi

hipoksia difusi, biasanya diberikan 100% oksigen selama 5 – 10 menit. Potensi N2O

digunakan pada hewan tidak baik, karena mempunyai MAC yang tinggi. MAC N2

Halotan sering digunakan sebagai induksi anestesi dikombinasikan dengan

N

O

pada manusia mendekati 100%, tetapi pada anjing hampir 200% dan kucing

mendekati 250% (Latief et al. 2007; McKelvey dan Hollingshead 2003).

2

Desfluran adalah halogenasi eter yang rumus bangun dan efek klinisnya mirip

dengan isofluran. Desfluran sangat mudah menguap dibandingkan anestetikum

lainnya, sehingga perlu menggunakan vaporizer khusus. Potensi desfluran sangat

rendah (MAC 6,0%), bersifat simpatomimetik, menyebabkan takikardia dan

O, karena halotan adalah analgesik lemah tetapi sifat anestesinya kuat sehingga

kombinasi keduanya sangat ideal. Pemeliharaan anestesi dengan halotan biasanya

digunakan dosis 1-2% pada napas spontan atau dosis 0,5-1% pada napas terkendali,

dan dapat disesuaikan dengan respon klinis pasien. Nilai MAC halotan adalah

moderat, potensinya berada diantara metoksifluran dan isofluran, yaitu 0,3 – 0,75%.

Halotan mempunyai tekanan uap yang tinggi, sehingga memerlukan ketelitian

penggunaan vaporizer yang lebih tinggi. Penggunaan vaporizer yang memiliki tingkat

ketelitian kurang, dapat menyebabkan konsentrasi halotan mencapai 30%, padahal

konsentrasi normal halotan yang diperlukan untuk anestesi adalah 1-2%, sehingga

penggunaan halotan memerlukan vaporizer khusus. Halotan menyebabkan

vasodilatasi cerebral, meningkatkan aliran darah pada otak yang sulit dikendalikan.

Kelebihan dosis halotan menyebabkan depresi napas, menurunkan tonus simpatik,

terjadi hipotensi, bradikardi, vasodilatasi perifer, depresi vasomotor, dan depresi

miokardium. Halotan dimetabolisme 20% di hati secara oksidatif menjadi komponen

bromin, klorin, dan asam trikloro asetat. Halotan menyebabkan gangguan hati dan

pasca pemberian sering menyebabkan pasien meninggal (Latief et al. 2007;

McKelvey dan Hollingshead 2003).

17

hipertensi. Pengaruh depresi nafasnya sama dengan isofluran dan merangsang jalan

napas atas sehingga tidak dapat digunakan sebagai induksi anestesi.

Isofluran merupakan halogenasi eter dan secara kimia sangat mirip dengan

metoksifluran dan sevofluran. Rentang keamanan isofluran lebih lebar dibandingkan

halotan dan metoksifluran, sehingga sangat umum digunakan pada hewan terutama

anjing dan kuda walaupun dengan harga yang lebih mahal. Penggunaaan isofluran

pada dosis anestesi atau subanestesi menurunkan metabolisme otak terhadap oksigen,

tetapi akan meningkatkan aliran darah di otak dan tekanan intrakranial, sehingga

menjadi pilihan pada pembedahan otak. Pengaruh terhadap jantung dan curah jantung

(cardiac output) sangat minimal, sehingga dapat digunakan pada pasien dengan

kelainan jantung. Potensi isofluran lebih kecil dibandingkan halotan karena

mempunyai nilai MAC lebih tinggi dibandingkan halotan. Pemeliharaan anestesi

dengan isofluran biasanya digunakan konsentrasi 1,5 – 2,5 % isofluran dalam oksigen

(Latief et al. 2007; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Anestesi umum injeksi merupakan metode anestesi umum yang dilakukan

dengan cara menyuntikkan agen anestesi langsung melalui muskulus atau pembuluh

darah vena. Anestesi injeksi biasanya digunakan untuk induksi pada hewan kecil

maupun pada hewan besar dan dapat juga digunakan untuk pemeliharaan anestesi.

Anestetika injeksi yang baik memiliki sifat-sifat tidak mengiritasi jaringan, tidak

menimbulkan rasa nyeri pada saat diinjeksikan, cepat diabsorsi, waktu induksi,

durasi, dan masa pulih dari anestesi berjalan mulus, tidak ada tremor otot, memiliki

indeks terapeutik tinggi, tidak bersifat toksik, mempunyai pengaruh minimal terhadap

organ tubuh terutama saluran pernapasan dan kardiovaskular, cepat dimetabolisme,

tidak bersifat akumulatif, dapat dikombinasikan dengan obat lain seperti relaksan

otot, analgesik, dan sudah diketahui antidotanya. Beberapa anestetika injeksi yang

sering digunakan pada hewan adalah golongan barbiturat seperti thiopental sodium,

methoheksital, dan pentobarbital. Golongan lainnya yang juga sering digunakan pada

hewan adalah golongan cycloheksamin (ketamine dan tiletamin), etomidat, dan

propofol. (Brander et all. 1991; McKelvey dan Hollingshead 2003).

18

Semua golongan barbiturat untuk keperluan anestesi berada dalam bentuk

garam sodium dan dilarutkan dalam air menjadi larutan 2,5 atau 5%. Tiga klas

golongan barbiturat yang digunakan pada hewan adalah ultrashort-acting

barbiturates (metoheksital), short-acting barbiturates (tiopental), dan intermediate-

acting barbiturates (pentobarbital). Sedangkan long-acting barbiturates

(penobarbital) biasanya digunakan untuk sedatip dan antikonvulsi, bukan untuk

anestesi. Barbiturat menimbulkan sedasi, hipnosis, dan depresi pernafasan tergantung

dosis dan kecepatan pemberian serta pengaruh analgesia yang ditimbulkan sedikit.

Efek utama golongan barbiturat adalah depresi pusat pernafasan, depresi pusat

vasomotor, dan miokardium sehingga menurunkan curah jantung dan tekanan darah.

Etomidat berbentuk kristal putih, dapat larut dalam air, etanol, dan propilin

glikol. Etomidat adalah sedatif hipnotik imidazol yang biasanya digunakan sebagai

induksi anestesi pada anjing dan kucing. Kombinasi anestetikum dengan etomidat

menghasilkan relaksasi otot yang baik tetapi tidak menghasilkan analgesia dan

durasinya sangat singkat seperti propofol, karena metabolisme etomidat sangat cepat.

Etomidat mempunyai pengaruh yang minimal terhadap fungsi kardiovaskuler seperti

denyut jantung, curah jantung, dan tekanan darah. Etomidat dapat diberikan secara

infusi dengan kecepatan dosis 50 -150 µ/kg/menit.

Ketamine adalah anestetikum umum injeksi golongan nonbarbiturat, termasuk

golongan phenilsycloheksamin. Ketamine mempunyai efek analgesia yang sangat

kuat akan tetapi efek sedasi dan hipnotiknya kurang (tidur ringan). Ketamine

meningkatkan tekanan darah sistol maupun diastol kira kira 20- 25%, karena adanya

aktivitas syaraf simpatik meningkat dan depresi baroreseptor. Pemberian anestetikum

ketamine secara tunggal dosis 10-15 mg/kg berat badan secara intra muskular pada

anjing menimbulkan kekejangan otot dan hipersalivasi serta durasi kerja anestesi

yang sangat pendek. Mengatasi kerugian penggunaan anestetikum ketamine secara

tunggal, ketamine sering dikombinasikan dengan obat lain sebagai preanestesi.

Propofol adalah anestesi umum injeksi turunan alkil penol (2,6-

diisopropylphenol), mempunyai pH netral, dan dapat diberikan dalam bentuk emulsi

minyak dalam air. Walaupun propofol memperlihatkan warna putih seperti susu,

19

sangat aman diberikan secara intravena dan dapat diberikan secara berulang-ulang

atau sebagai alternatif dapat diberikan secara infusi terus-menerus. Propofol

mempunyai efek analgesia yang sangat ringan akan tetapi efek sedasi dan

hipnotiknya sangat kuat. Efek samping penggunaaan propofol adalah hipotensi,

apnea, dan rasa sakit pada tempat suntikan. Efek samping utama yang sangat

dihindari dari propofol adalah penekanan sistem respirasi. Efek samping tersebut

sangat berkaitan dengan dosis dan kecepatan penyuntikannya, keuntungan

penggunaan propofol akan diperoleh dengan cara mengkombinasikan dengan agen

anestetikum lain untuk menurunkan dosis dan meminimalkan pengaruh buruk yang

ditimbulkan (Stawicki 2007).

Tahapan Anestesi Umum

Tahapan anestesi sangat penting untuk diketahui terutama dalam

menentukan tahapan terbaik untuk melakukan pembedahan, memelihara tahapan

tersebut sampai batas waktu tertentu, dan mencegah terjadinya kelebihan dosis

anestetikum. Tahapan anestesi dapat dibagi dalam beberapa langkah, yaitu:

preanestesi, induksi, pemeliharaan, dan pemulihan (McKelvey dan Hollingshead

2003).

Tahap preanestesi merupakan tahapan yang dilakukan segera sebelum

dilakukan anestesi, dimana data tentang pasien dikumpulkan, pasien dipuasakan,

serta dilakukan pemberian preanestetikum. Induksi adalah proses dimana hewan akan

melewati tahap sadar yang normal atau conscious menuju tahap tidak sadar atau

unconscious. Agen induksi dapat diberikan secara injeksi atau inhalasi. Apabila agen

induksi diberikan secara injeksi maka akan diikuti dengan intubasi endotracheal tube

untuk pemberian anestetikum inhalasi atau gas menggunakan mesin anestesi. Waktu

minimum periode induksi biasanya 10 menit apabila diberikan secara intramuskular

(IM) dan sekitar 20 menit apabila diberikan secara subkutan (SC). Tahap induksi

ditandai dengan gerakan tidak terkoordinasi, gelisah dan diikuti dengan relaksasi

yang cepat serta kehilangan kesadaran. Idealnya, keadaan gelisah dan tidak tenang

dihindarkan pada tahap induksi, karena menyebabkan terjadinya aritmia jantung.

20

Preanestesi dan induksi anestesi dapat diberikan secara bersamaan, seperti pemberian

acepromazin, atropine, dan ketamine dicampur dalam satu alat suntik dan diberikan

secara intravena (IV) pada anjing. (Adams 2001; McKelvey dan Hollingshead 2003;

Tranquilli et al. 2007).

Selanjutnya hewan akan memasuki tahap pemeliharaan status teranestesi.

Pada tahap pemeliharaan ini, status teranestesi akan terjaga selama masa tertentu dan

pada tahap inilah pembedahan atau prosedur medis dapat dilakukan. Tahap

pemeliharaan dapat dilihat dari tanda-tanda hilangnya rasa sakit atau analgesia,

relaksasi otot rangka, berhenti bergerak, dilanjutkan dengan hilangnya refleks

palpebral, spingter ani longgar, serta respirasi dan kardiovaskuler tertekan secara

ringan. Begitu mulai memasuki tahap pemeliharaan, respirasi kembali teratur dan

gerakan tanpa sengaja anggota tubuh berhenti. Bola mata akan bergerak menuju

ventral, pupil mengalami konstriksi, dan respon pupil sangat ringan. Refleks menelan

sangat tertekan sehingga endotracheal tube sangat mudah dimasukkan, refleks

palpebral mulai hilang, dan kesadaran mulai hilang. Anestesi semakin dalam

sehingga sangat nyata menekan sirkulasi dan respirasi. Pada anjing dan kucing,

kecepatan respirasi kurang dari 12 kali per menit dan respirasi semakin dangkal.

Denyut jantung sangan rendah dan pulsus sangat menurun karena terjadi penurunan

seluruh tekanan darah. Nilai CRT akan meningkat menjadi 2 atau 3 detik. Semua

refleks tertekan secara total dan terjadi relaksasi otot secara sempurna serta refleks

rahang bawah sangat kendor. Apabila anestesi dilanjutkan lebih dalam, pasien akan

menunjukkan respirasi dan kardiovaskuler lebih tertekan dan pada keadaan dosis

anestetikum berlebih akan menyebabkan respirasi dan jantung berhenti. Dengan

demikian, pada tahap pemeliharaan sangat diperlukan pemantauan dan pengawasan

status teranestesi terhadap sistim kardiovaskuler dan respirasi (McKelvey dan

Hollingshead 2003; Tranquilli et al. 2007 ).

Ketika tahap pemeliharaan berakhir, hewan memasuki tahap pemulihan yang

menunjukkan konsentrasi anestetikum di dalam otak mulai menurun. Metode atau

mekanisme bagaimana anestetikum dikeluarkan dari otak dan sistem sirkulasi adalah

bervariasi tergantung pada anestetikum yang digunakan. Sebagian besar anestetikum

21

injeksi dikeluarkan dari darah melalui hati dan dimetabolisme oleh enzim di hati dan

metabolitnya dikeluarkan melalui sistem urinari. Pada hewan kucing, ketamine tidak

mengalami metabolisme dan dikeluarkan langsung tanpa perubahan melalui ginjal.

Kadar anestetikum golongan tiobarbiturat di dalam otak dapat dengan cepat menurun

karena dengan cepat disebarkan ke jaringan terutama otot dan lemak, sehingga hewan

akan sadar dan terbangun dengan cepat mendahului ekskresi anestetikum dari dalam

tubuh hewan. Anestetikum golongan inhalasi akan dikeluarkan dari tubuh pasien

melalui sistem respirasi, molekul anestetikum akan keluar dari otak memasuki

peredaran darah, alveoli paru-paru, dan akhirnya dikeluarkan melalui nafas. Tanda

tanda adanya aktivitas refleks, ketegangan otot, sensitivitas terhadap nyeri pada

periode pemulihan dinyatakan sebagai kesadaran kembali (McKelvey dan

Hollingshead 2003).

Durasi atau lama waktu kerja anestetikum dan kualitas anestesi dapat dilihat

dari pengamatan perubahan fisiologis selama stadium teranestesi. Dikenal dua waktu

induksi pada durasi anestesi. Waktu induksi 1 adalah waktu antara anestetikum

diinjeksikan sampai keadaan hewan tidak dapat berdiri. Waktu induksi 2 adalah

waktu antara anestetikum diinjeksikan sampai keadaan hewan tidak ada refleks pedal

atau hewan sudah tidak merasakan sakit (stadium operasi). Durasi adalah waktu

ketika hewan memasuki stadium operasi sampai hewan sadar kembali dan merasakan

sakit jika daerah disekitar bantalan jari ditekan. Waktu siuman atau recovery adalah

waktu antara ketika hewan memiliki kemampuan merasakan nyeri bila syaraf

disekitar jari kaki ditekan atau mengeluarkan suara sampai hewan memiliki

kemampuan untuk duduk sternal, berdiri atau jalan (Moens dan Fargetton 1990;

Verstegen dan Petcho 1993; McKelvey dan Hollingshead 2003).

McKelvey dan Hollingshead (2003) dan Tranquilli et al. (2007) menyatakan

bahwa untuk memonitor anestesi dilakukan pengamatan tahap-tahap anestesi umum.

Kualitas status teranestesi dapat dilihat dari perubahan fisiologis sebagai tanda

kedalaman anestesi, seperti disajikan pada Tabel 1.

22

Tabel 1 Tahapan dan indikasi status teranestesi oleh anestetikum umum

Fase/Tahapan Indikator

I

II

III Plane 1

III Plane 2

III Plane 3

III Plane 4

IV

Tingkah laku

Tidak terkontrol

Eksitasi: kuat, bersuara, anggora gerak, mengunyahternganga.

Teranestesi

Teranestesi

Teranestesi

Teranestesi

Hampir mati

Respirasi Normal, cepat 20-30x/mnt

Tidak teratur, tertahan atau hiper-ventilasi

Teratur: 12-20x/mnt

Teratur, dangkal: 12-16x/mnt

Dangkal: <12x/mnt

Putus-putus (ada berhenti)

Apnea (berhenti)

Fungsi Kardio-vaskuler

Tetap denyut jantung meningkat

Pulse kuat, denyut jantung >90x/mnt

denyut jantung >90x/mnt

Denyut jantung 60-90/mnt, CRT meningkat, Pulse lemah

Denyut jantung <60x/mnt, CRT lama, membran pucat.

Kollap

Respon bedah/ insisi

Kuat Kuat Ada respon dengan gerakan

Denyut jantung dan respirasi meningkat

Tidak ada Tidak ada Tidak ada

Kedalaman anestesi

Tidak teranestesi

Tidak teranestesi

Dangkal Sedang Dalam Over dosis Mati

Posisi Bola mata

Tengah Tengah, tidak tetap

Tengah, rotasi, tidak tetap

Sering rotasi di ventral

Ditengah, rotasi di ventral

Tengah Tengah

Ukuran Pupil

Normal Mungkin berdilatasi

Normal Dilatasi ringan

Dilatasi sedang

Dilatasi lebar

Dilatasi lebar

Respon Pupil

(+) (+) (+) Lambat Sangat lambat, (-).

(-) (-)

Kejangan Otot

Baik Baik Baik Relaksasi Sangat menurun

Lembek Lembek

Refleks

Ada Ada, mungkin berlebih

Ringan, hilang

Ada (patella, telinga, palpebral, kornea), yang lain hilang

Semua minimal, hilang

Tidak ada Tidak ada

Stadiun 1 atau stadium analgesi adalah stadium awal anestesi yang terjadi

segera setelah dilakukan anestesi secara inhalasi atau injeksi. Hewan pada stadium ini

masih sadar tetapi kehilangan orientasi dan menurunnya sensitifitas terhadap rasa

23

nyeri. Respirasi dan denyut jantung masih normal atau meningkat, dan semua refleks

masih ada; Stadium 2 atau stadium delirium atau eksitasi adalah stadium yang

dimulai dari hilangnya kesadaran. Semua refleks masih ada dan bisa muncul

berlebihan. Hewan masih dapat mengunyah, menelan, dan mulut umumnya

menganga. Kondisi pupil yang dilatasi tetapi akan berkontriksi apabila ada

rangsangan sinar. Stadium ini berjalan cepat dan bahkan akan terlewati apabila

diberikan preanestesi yang baik. Stadium 2 akan berakhir apabila hewan

menunjukkan tanda relaksasi otot, respirasi menurun, dan terjadi penurunan refleks;

Stadium 3 atau stadium pembedahan adalah stadium melakukan tindakan bedah dan

dibagi menjadi empat plane, yaitu plane 1 atau anestesi ringan, plane 2 atau anestesi

pembedahan, plane 3 atau anestesi dalam, dan plane 4 atau paralisa; dan Stadium 4

atau stadium terminal (stadium kelebihan dosis).

Sejarah dan Mekanisme Kerja Anestesi Umum

Anestetikum pertama kali ditemukan adalah eter oleh William Thomas Green

Morton pada tahun 1846. Morton memperagakan penggunaan dietil eter untuk

menghilangkan kesadaran dan rasa nyeri pada pasien yang sedang ditangani untuk

pembedahan tumor rahang di Massachusetts General Hospital Boston pada tanggal

16 Oktober 1846 dan berhasil tanpa memperlihatkan gejala kesakitan. Dengan

ditemukannya eter sebagai anestetikum tahun 1846, pembedahan dapat dilakukan

tanpa siksaan dan bebas rasa nyeri sehingga mendorong berkembangnya ilmu bedah

dengan pesat. Kemudian muncul teori mekanisme kerja anestesi oleh Vonbibra dan

Harles tahun 1847 yang menjelaskan bahwa anestetikum bekerja karena larut pada

lipid di otak. Dikemudian hari dipertanyakan kembali oleh karena tidak semua bahan

yang larut pada lemak dapat digunakan sebagai anestetikum. Selanjutnya oleh Hans

Meyer pada tahun 1899 dan Charles Overton tahun 1901 memperkenalkan teori

“Meyer-Overton”. Teori ini menyatakan bahwa potensi anestesi berhubungan dengan

kelarutan bahan anestetikum pada lemak. Anestetikum akan larut pada lipid dan

merusak struktur lipid membran syaraf . Dengan demikian, makin mudah suatu bahan

anestetikum larut dalam lemak, makin kuat daya anestesinya. Namun hal ini hanya

24

berlaku untuk anestetikum inhalasi cair atau volatil sedangkan pada anestetikum

parenteral seperti pentotal pernyataan di atas tidak berlaku. Hipotesis Vonbibra dan

Harles tahun 1847 dan Meyer-Overton tahun 1901 dimentahkan dengan munculnya

hipotesis protein membran yang mempengaruhi ion, bahwa membran sel syaraf

mengandung protein dan anestetikum akan terikat pada protein, selanjutnya akan

mempengaruhi saluran ion. (Mashour 2006; Pretto 2002; Miller 2010).

Dalam perkembangan selanjutnya, pemahaman teori saluran ion yang

dipengaruhi oleh neurostransmiter dan reseptor kini diterima sebagai teori mekanisme

kerja anestesi umum. Anestetikum akan bekerja mempengaruhi dua jenis reseptor

yaitu : 1. Reseptor γ amino butiric acid (GABA) terutama reseptor GABAA

Gamma-amino butiric acid merupakan neurotransmiter inhibitori utama di

otak, disintesis dari glutamat dengan bantuan enzim glutamic acid decarboxylase

(GAD), didegradasi oleh GABA-transaminase. Sekali dilepaskan, GABA berdifusi

menyeberangi celah sinap untuk berinteraksi dengan reseptornya sehingga

menimbulkan aksi penghambatan fungsi SSP. Neurotransmiter GABA lepas dari

ujung syaraf gabanergik, berikatan dengan reseptornya, membuka saluran ion Cl,

ion Cl masuk ke dalam sel, terjadi hiperpolarisasi sel syaraf , terjadi efek

penghambatan transmisi syaraf , dan depresi SSP. Reseptor GABA sebagi tempat

terikatnya GABA terdiri dari dua jenis, yaitu ionotropik (GABA

yang

merupakan reseptor inhibitori, dan 2. Reseptor Glutamat yang merupakan reseptor

eksitatori kususnya pada sub tipe N-methyl D-aspartat (NMDA) (Rudolph dan

Antkowiak 2004; Cameron 2006; Garcia et al. 2010 ) .

A) dan metabotropik

(GABAB). Reseptor GABAA terletak di postsinaptik dan cukup penting karena

merupakan tempat aksi obat-obat benzodiazepin dan golongan barbiturat. Reseptor

GABAA terdiri dari lima subtipe (pentamer) 2α, 2ß, dan 1γ, masing masing subtipe

mempunyai N-terminal binding site, terdiri dari 450 asam amino, dan mempunyai 4-

transmembran (TM) saluran ion. Sampai saat ini telah diketahui ada 19 reseptor

subunit GABAA, yaitu lebih dari 85% konsentrasinya dalam bentuk kombinasi

α1ß2γ2, α2ß3γ2, dan α3ß1 -3γ2. Reseptor GABAA adalah reseptor komfleks yang

memiliki beberapa tempat aksi obat, seperti benzodiazepin (BZ), GABA, barbiturat,

25

dan neurosteroid (Gambar 2) (Rudolph dan Antkowiak 2004; Cameron 2006; Garcia

et al. 2010; Miller 2010) .

Gambar 2. Reseptor GABAA

terdiri dari lima subtipe (pentamer) 2α, 2ß, dan 1γ, m asing masing subtipe mempunyai N-terminal binding site, terdiri dari 450 asam amino, 4-transmembran (TM) sebagai saluran ion dan tempat terikatnya anestetika (Sumber: Cameron J Weir 2006; Miller 2010) .

Glutamat merupakan asam amino yang termasuk neurotransmiter eksitatori

dan berperan penting dalam fungsi sistem syaraf pusat. Reseptor glutamat yang

teridentifikasi secara farmakologi terdiri dari subtipe reseptor N-methyl D-aspartat

(NMDA), 5-hydroxy tryptamine (5HT), dan amino hydroxy methyl

isoxazolepropionate (AMPA). Aktivasi reseptor NMDA akan meningkatkan Ca+ dan

Na+ intrasel dan memicu aksi potensial. Terikatnya neurostransmiter glutamat pada

reseptor NMDA, menyebabkan aliran ion Ca+ dan NA+ ke dalam sel, ion Ca+

intracellular akan meningkat, terjadi depolarisasi, menyebabkan eksitatori, dan

memicu konvulsi (Gambar 3) (Cameron 2006; Garcia et al. 2010).

Reseptor GABAA Komfleks

BZ = Bezodiazepin ETOH = Etanol (alkohol) GABA = γ amino butiric acid

di luar sel

di dalam sel

26

Gambar 3. Skema reseptor N-methyl D-aspartat (NMDA) komfleks (Sumber: Uwe Rudolph dan Bernd Antkowiak 2004; Miller 2010) .

Reseptor GABA dan Glutamat adalah reseptor yang sebagaian besar terletak

pada otak khususnya di hipotalamus yang merupakan target kerja anestetikum, yaitu

di daerah tuberomammilary nucleous (TMN). Anestetikum umum akan

terkonsentrasi untuk meningkatkan aktivitas reseptor GABAA (Cameron 2006;

Mashour 2006; Pretto 2002; Miller 2010). Konsentrasi rendah isofluran, enfluran,

halotan, dan propofol mempengaruhi GABA dan induksi Cl-, pada dosis tinggi akan

secara langsung mempengaruhi reseptor GABAA

Secara seluler, anestetika bekerja pada sel neuron melalui interaksi dengan

kanal ion. Membran protein akan diaktivasi oleh rangsangan kimia atau karena

adanya perubahan sebagai sinyal pada membran sel. Dengan adanya sinyal, terjadi

aktivasi membran protein, kanal ion akan mempengaruhi elektrik neuron, terjadi

perpindahan ion pada permukaan membran sel sehingga terjadi perubahan kondisi di

dalam sel yang sangat negatif atau sangat positif. Kondisi di dalam sel yang sangat

negatif menyebabkan hiperpolarisasi sel sehingga terjadi inhibitori, sedangkan

kondisi yang sangat positif menyebabkan depolarisasi sel sehingga terjadi kondisi

menjadi terbuka (Henschel et al.

2008).

Skema subtipe reseptor N-methyl D-aspartat (NMDA)

ekstraseluler

Sitoplasma

27

eksitatori. Pada umumnya, anestesi umum bekerja dengan cara memperkuat (+)

sinyal inhibitori atau menghambat (-) sinyal eksitatori. Secara klinis, anestetikum

mempengaruhi fungsi kanal ion lebih dari satu pada sistem syaraf dan hal ini

berdampak pada aktivitas neuron dengan drajat berbeda dan daerah berbeda, seperti

disajikan pada Gambar 4 (Cameron 2006; Garcia et al. 2010).

Gambar 4 Anestesi umum bekerja dengan cara mempengaruhi aktivitas transmitter-gate ion channel dengan cara meningkatkan (+) sinyal inhibitori dan/atau menghambat (-) sinyal eksitatori neurotransmiter. GABA= γ amino butiric acid, NMDA= N-methyl D-aspartat, 5HT3 = 5-hydroxy tryptamine, AMPA = amino hydroxy methyl isoxazolepropionate. (sumber: Cameron J Weir 2006).

Anestetika umum yang sering digunakan saat ini sebagai induksi dan

pemeliharaan anestesi ada lima jenis anestetika inhalasi dan lima jenis anestetika

injeksi intravena. Anestetika inhalasi yaitu N2O, isofluran, sevofluran, desfluran, dan

xenon. Anestetika intravena yaitu propofol, etomidat, ketamine, metoheksital, dan

tiopental. Ketamine, N2O, dan xenon bekerja dengan cara menghambat reseptor

glutamat dengan pengaruh yang sangat kuat menghambat reseptor subtipe NMDA

dan berpengaruh sangat lemah pada reseptor lain seperti reseptor GABAA. Anestetika

sisanya bekerja pada reseptor GABAA dengan pengaruh utama meningkatkan fungsi

reseptor GABAA dan berpengaruh juga pada kanal ion lainnya seperti reseptor glisin,

Anestesi Umum

Inhibitori Eksitatori

28

reseptor nikotin, reseptor 5HT3, reseptor glutamat, dan pompa ion kalium. Reseptor

GABAA adalah reseptor inhibitori neurotransmiter yang sebagian besar terletak di

SSP (Garcia et al. 2010). Dengan demikian anestetikum secara umum bertindak

sebagai sinyal yang akan merangsang reseptor GABAA

Anestetika umum injeksi, selain ketamine, bekerja meningkatkan pengaruh

reseptor GABA

, menyebabkan hiperpolarisasi

(inhibitori), mengganggu proses fisiologi dan menimbulkan perubahan klinis seperti

hipnosis, depresi refleks spinal, dan amnesia (Cameron 2006; Garcia et al. 2010).

A pada otak khususnya subtipe ß3 menyebabkan kehilangan

kesadaran dan subtipe ß2 (50% pada SSP) menyebabkan sedasi. Sedangkan

anestetikum ketamine, anestetika gas, N2O, Xenon dan sejenisnya bekerja sedikit

atau lemah pada reseptor GABAA atau Glisin, tetapi sangat kuat menghambat pada

reseptor glutamat subtipe NMDA sehingga akan menutup aliran Ca2+

Reseptor GABA

dan membuka

saluran ion K yang menyebabkan terjadinya analgesik kuat (Miller 2010).

A adalah reseptor yang ditemukan di SSP dan reseptor inilah

merupakan target anestesi. Anestetika umum meningkatkan kerja GABA dan

menginduksi saluran ion Cl. Pada dosis tinggi, anestetika dapat langsung

mengaktivasi reseptor GABAA, tanpa GABA. Sedangkan anestetika apolar seperti

xenon atau cyclopropan mempunyai pengaruh yang sedikit atau tidak berpengaruh

pada reseptor GABAA. Pengaruh fungsional anestetika pada reseptor GABAA

Franks (2008) dan Miller (2010) menerangkan bahwa anestetikum volatil

bekerja pada reseptor GABA

sangat

tergantung pada komposisi reseptor subunitnya, yaitu subunit α, β, atau subunit γ

(Franks 2008; Miller 2010).

A subunit α pada transmembran (TM)2 dan TM3

bagian protein Ser270 (αS270). Propofol sebagai anestetikum intravena bekerja pada

reseptor GABAA subunit ß TM2 dan TM3 bagian N265 (ßN265). Sedangkan

anestetika isofluran dan halotan mempunyai ikatan anestetik pada TM1, TM2, TM3,

dan TM4 bagian M159 yang sangat mempengaruhi tranduksi sinyal. Sedangkan

isofluran dan xenon lebih banyak menghambat reseptor melalui kompetisi dengan

glisin ( Gambar 5).

29

Mascia et al. (2000) menyebutkan bahwa alkohol dan anestetika

mempengaruhi reseptor glisin dan reseptor GABAA melalui asam amino pada TM2

dan TM3 dari α subunit, yaitu pada reseptor glisin pada S267, A288, dan Ser270

sedangkan pada reseptor GABAA subunit β pada S270, A291, Asn 265, dan Met286.

Propofol mirip dengan propanethiol bekerja pada reseptor Glisin TM2 α1 (S267C),

pada reseptor GABAA

TM2 α2 (S270C) ß1, pada TM3 α1 (A288C), pada TM3 α2

(A291C)ß1, pada TM2 β2 (Tyr445). Asam amino pada TM2 adalah tempat terikatnya

anestetika dan alkohol (Gambar 5) (Mascia et al. 2000; Franks 2008; Miller 2010).

Gambar 5. Anestetika volatil (isofluran) bekerja pada reseptor GABAA dan anestetika intravena (propofol) bekerja pada reseptor GABA

subunit α A

(Sumber : Miller 2010). subunit β.

Tinjauan Anestetikum Umum

Ketamine HCl

Ketamine HCl adalah anestetikum golongan phencyclidine (PCP) dengan

rumus 2-(0-chlorophenyl)-2-(methylamino)-cyclohexanone hydrochloride, golongan

nonbarbiturat, dan termasuk dissosiatif anestesi, yaitu pada dosis rendah sebagai

preanestesi dan pada dosis lebih tinggi sebagai anestesi umum. Ketamine HCl

merupakan larutan tidak berwarna, stabil pada suhu kamar dan mempunyai tingkat

keamanan lebar (Gambar 6) (Sulistia 1987; Adams 2001).

30

Gambar 6 Struktur kimia ketamine HCl

Ketamine HCl mempunyai sifat menghilangkan rasa sakit yang kuat serta

reaksi anestesinya tidak menyebabkan ngantuk (Pathak et al.1982; Kul et al. 2001).

Ketamine menghasilkan pengaruh anestesi melalui mekanisme yang bekerja pada

reseptor N methyl D aspartate (NMDA). Ketamine diklasifikasikan sebagai antagonis

reseptor NMDA, pada daerah tempat kerja PCP. Afinitas ketamine sangat tinggi pada

reseptor NMDA, sehingga menghasilkan pengaruh analgesik yang sangat kuat

(Stawicki 2007). Sebagai antagonis NMDA, ketamine menghambat refleks nosiseptik

spinal, yaitu menghambat konduksi rasa nyeri ke talamus dan daerah kortek.

Penghambatan reseptor NMDA dengan dosis ketamine yang rendah akan

menghasilkan pengaruh analgesik yang baik (Intelisano et al. 2008). Ketamine juga

menyebabkan gangguan fungsi pada beberapa tempat di otak seperti pada talamus

dan kortek serebral menjadi tertekan. Ketamine juga memperpanjang kerja GABA

(gamma amino butyric acid), suatu neurotransmiter penghambat di otak dengan cara

menghambat pengikatannya di ujung syaraf (Cullen 1997). Reseptor GABA dapat

merubah permiabilitas ion Cl-

Adams (2001) menyebutkan bahwa aktivitas ketamine dapat secara langsung

menstimulasi pusat adrenergik dan secara tidak langsung menghambat pengambilan

(uptake) catecholamine terutama norepineprin. Ketamine dapat mengubah aktivitas

dan dapat menyebabkan pelepasan norepineprin pada

syaraf simpatik (Adams 2001; Rudolph dan Antkoeiak 2004). Pengaruh klinis yang

ditimbulkan ketamine sangat bervariasi seperti : analgesia, anestesi, halusinasi,

neurotoksisitas, hipertensi arterial, dan bronkodilatasi. Ketamine juga menimbulkan

agitasi (kehilangan orientasi, gelisah, dan menangis) yang sering disebut penomena

emergence delirium (Stawicki 2007).

31

listrik jantung dengan memperpanjang interval PR dan QT, tetapi tidak

mempengaruhi bentuk gelombang EKG. Ketamine juga dapat menghambat efferen

vagal (vagolitik) melalui aktivitas pada syaraf pusat. Terhadap sistem

kardiovaskuler, ketamine menyebabkan peningkatan tekanan darah, peningkatan

denyut jantung, peningkatan cardiac output, peningkatan tekanan vena (Cullen 1997),

peningkatan tekanan arteri, temperatur tubuh, dan peningkatan tekanan intraokuler

(Haskin 1989).

Pemberian anestetikum ketamine secara tunggal dosis 10-15 mg/kg berat badan

secara intra muskular pada anjing menimbulkan kekejangan otot dan hipersalivasi

serta durasi kerja anestesi yang sangat pendek. Mengatasi kerugian penggunaan

anestetikum ketamine secara tunggal, ketamine sering dikombinasikan dengan obat

lain sebagai preanestesi, misalnya sedatif tranquuilizer golongan penotiazin seperti

acepromazin atau clorpromazin, sedatif hipnotik golongan α2-adrenoceptor seperti

xylazine, dan golongan benzodiazepin seperti diazepam atau midazolam yang

diberikan secara IM atau IV (Bishop 1996). Penggunaan kombinasi xylazine 2

mg/kgBB lima menit kemudian diikuti dengan ketamine 20 mg/kgBB, menyebabkan

menurunnya denyut jantung, tekanan darah arteri dan respirasi (Kul et al. 2001).

Waktu anestesi yang dihasilkan oleh kombinasi anestesi xylazine (2 mg/kgBB) dan

ketamine (15 mg/kgBB) dalam satu spuit secara intamuskular pada anjing lokal

sekitar 45 menit (Sudisma et al. 2001). Pemberian xylazine secara tunggal pada

anjing akan menyebabkan muntah dan penurunan denyut jantung beberapa menit

setelah pemberian xylazine (Bishop 1996).

Propofol

Propofol dapat digunakan secara tunggal pada prosedur anestesi yang singkat

atau untuk induksi sebelum intubasi dan anestesi inhalasi. Propofol mempunyai pH

netral dan dapat diberikan dalam bentuk emulsi minyak dalam air dengan konsentrasi

10 mg/ml. Walaupun propofol memperlihatkan warna putih seperti susu, sangat aman

diberikan secara intravena. Propofol adalah turunan alkil penol (2,6-

diisopropylphenol), seperti pada Gambar 7 (McKelvey dan Hollingshead 2003).

32

2,6-diisopropylphenol (C12H18O)

Gambar 7 Struktur kimia propofol

Propofol termasuk agen anestetikum intravena short acting hypnotic. Propofol

menghasilkan pengaruh anestesi melalui mekanisme yang bekerja pada reseptor

GABAA (Intelisano et al. 2008). Propofol memperbesar pengaruh GABA yang

mempunyai fungsi menghambat aksi (inhibitory) sistem syaraf pusat, meningkatkan

konduksi Cl-

Propofol mempunyai molekul mirip alkohol, molekulnya akan bekerja dan

berikatan pada reseptor GABA

yang menyebabkan hiperpolarisasi sehingga tingkat rangsangan sel

(excitability) menurunkan, menyebabkan sedasi dan relaksasi (Mihic dan Harris

1997; Intelisano et al. 2008).

A pada membran sel syaraf pada otak khususnya

reseptor GABAA subtipe ß3 pada transmembran (TM)2 dan TM3 bagian N265

(ßN265) sehingga menyebabkan kehilangan kesadaran dan pada reseptor GABAA

subtipe ß2 (50% pada SSP) akan menyebabkan sedasi. Subtipe ß3 yang terdapat pada

reseptor GABAA merespon propofol dan etomidat sehingga terjadi depresi

respiratoris (Henschel et al. 2008). Propofol menghasilkan pengaruh menghilangkan

kesadaran dan pelemas otot yang baik, menyebabkan hipotensi arterial, bardikardi,

depresi respirasi terutama apabila diberikan secara cepat dengan dosis yang tinggi

(Franks 2008; Miler 2010; Stawicki 2007). Propofol menyebabkan vasodilatasi pada

vena dan arteri serta berakibat langsung penurunan tekanan darah dan menyebabkan

relaksasi pembuluh darah (Karsli et al. 1999). Penelitian pada manusia, propofol

menyebabkan rendahnya tekanan darah sistol (SAP) dan tekanan darah rata-rata

(MAP) tanpa menimbulkan pengaruh pada denyut jantung (Belo et al. 1994 dalam

Mohamadnia et al. 2008).

33

Efek samping propofol berhubungan dengan dosis penggunaan dan keuntungan

penggunaan propofol akan diperoleh dengan cara mengkombinasikan dengan agen

anestetikum lain untuk menurunkan dosis dan meminimalkan pengaruh buruk yang

ditimbulkan (Dzikiti et al. 2007). Efek samping penggunaaan propofol adalah

hipotensi, apnea, dan rasa sakit pada tempat suntikan (Stawicki 2007).

Propofol dapat dilarutkan dalam larutan salin (garam) atau dektrosa 5% dalam

air untuk digunakan pada anjing. Larutan tersebut lebih akurat dan dapat melindungi

efek samping terhadap respirasi dan kardiovaskular. Propofol tidak dianjurkan untuk

dilarutkan dalam konsentrasi yang kurang dari 0,2% (2mg/ml), karena tidak dapat

bercampur dengan pelarut atau agen lain. Tidak seperti cycloheksamin dan barbiturat,

propofol dapat diberikan secara berulang-ulang dan injeksi dapat diulang setiap 3-5

menit atau sesuai dengan kebutuhan yang disesuaikan dengan status pasien atau

sebagai alternatif dapat diberikan secara infus terus-menerus. Periode pemulihan

anestesi dengan propofol sangat cepat dan berjalan dengan lembut, walaupun

diberikan secara berulang-ulang. Pemulihan anestesi dengan propofol pada anjing

sekitar 20 menit (McKelvey dan Hollingshead 2003).

Dosis propofol yang dibutuhkan pasien dan durasi anestesinya tergantung dari

preanestetikum yang digunakan. Apabila digunakan dosis 6 mg/kg IV, onset

anestesinya kurang dari 60 detik dan durasinya sekitar 5-10 menit. Dosis propofol

yang kecil (0,2-0,4 mg/kg/menit) dapat diberikan pada pasien secara infusi terus-

menerus dengan pompa injeksi atau tetes IV. Propofol dapat digunakan pada anjing

dengan dosis pemberian 4mg/kg secara intravena (Bishop 1996). Penggunaan

propofol pada hewan kecil sebagai induksi digunakan dosis 3-8mg/kg secara

intravena, sedangkan sebagai pemeliharaan anestesi digunakan dosis 0,5-1mg/kg

diulang setiap 3-5 menit atau dapat diberikan secara infusi intravena 0,3-

0,5mg/kg/menit. Metode total intraveous anesthesia (TIVA) menggunakan propofol

digunakan secara luas pada pasien manusia yang ditangani diluar ruang operasi.

Propofol yang digunakan pada manusia mempunyai waktu pemulihan yang singkat,

kadang lebih cepat dari isofluran dan menyebabkan muntah dan mabuk pasca operasi.

34

Penggunaan propofol dengan metode TIVA juga dipercaya sebagai anestesi alternatif

untuk hewan kesayangan terutama anjing (Tsai et al. 2007).

Induksi anestesi pada anjing dengan propofol (4mg/kg) dan ketamine (2mg/kg)

secara intravena dalam satu spuit dilanjutkan dengan infusi intravena dengan propofol

(0,5mg/kg/menit) dan ketamine (0,2mg/kg/menit), menghasilkan anestesi dengan

hemodinamik yang stabil (Intelisano et al. 2008). Anestesi pada anjing dengan

kombinasi propofol (4mg/kg) dan ketamine (4mg/kg) secara intravena menghasilkan

anestesi yang aman dan dapat digunakan sebagai alternatif anestesi untuk prosedur

pembedahan yang panjang (Muhammad et al. 2009). Kombinasi propofol dengan

preanestetikum mempunyai rentang keamanan yang lebar pada anjing. Eksitasi dan

tremor otot jarang terjadi, oleh karena itu diperlukan preanestetikum seperti

acepromazin(0,1mg/kg IV), pentobarbital (2mg/kg), atau diazepam (0,3-0,5mg/kg

IV). Propofol sangat aman diberikan pada hewan dengan gangguan hati dan ginjal,

karena metabolisme propofol sangat cepat. Satu kekurangan propofol adalah

kelemahan untuk disimpan, karena mengandung minyak kedelai, lesithin, dan gliserol

sehingga akan mendukung pertumbuhan bakteri. Ampul dan botol harus disimpan

dengan aseptik dan tidak dianjurkan untuk digunakan setelah dibuka selama 12 jam

(McKelvey dan Hollingshead 2003; Tsai et al. 2007; BBraun 2009).

Xylazine

Xylazine adalah salah satu golongan alpha2-adrenoceptor stimulant atau alpha-

2 adrenergic receptor agonist. Alpha-2 agonist seperti xylazine dan medetomidin

adalah preanestetikum yang sering digunakan pada anjing dan kucing untuk

menghasilkan sedasi, analgesi, dan pelemas otot. Golongan alpha-2 agonist yang lain

seperti romifidin sering digunakan pada kuda, tetapi tidak direkomendasikan untuk

anjing dan kucing (Lemke 2004). Xylazine HCl mempunyai rumus kimia 2(2,6-

dimethylphenylamino)-4H-5,6-dihydro 1,3-thiazine hydrochloride, seperti disajikan

pada Gambar 8. (Booth et al. 1977; Brander et al. 1991; Bishop 1996).

35

N-(2,6-dimethylphenyl)-5,6-dihydro-4H-1,3-thiazin-2-amine (C12H16N2S)

Gambar 8 Struktur kimia xylazine HCl

Xylazine bekerja melalui mekanisme yang menghambat tonus simpatik

karena xylazine mengaktivasi reseptor postsinap α2-adrenoseptor sehingga

menyebabkan medriasis, relaksasi otot, penurunan denyut jantung, penurunan

peristaltik, relaksasi saluran cerna, dan sedasi. Aktivitas xylazine pada susunan syaraf

pusat adalah melalui aktivasi atau stimulasi reseptor α2-adrenoseptor, menyebabkan

penurunan pelepasan simpatis, mengurangi pengeluaran norepineprin dan dopamin.

Reseptor α2

Xylazine menghasilkan sedasi dan hipnotis yang dalam dan lama, dengan dosis

yang ditingkatkan mengakibatkan sedasi yang lebih dalam dan lama serta durasi

panjang (Hall and Clarke 1983). Xylazine diinjeksikan secara intramuskular

menyebabkan iritasi kecil pada daerah suntikan, tetapi tidak menyakitkan dan akan

hilang dalam waktu 24 –48 jam (Hall and Clarke 1983; Brander et al. 1991).

-adrenoseptor adalah reseptor yang mengatur penyimpanan dan atau

pelepasan dopamin dan norepineprin. Xylazine menyebabkan relaksasi otot melalui

penghambatan transmisi impuls intraneural pada susunan syaraf pusat dan dapat

menyebabkan muntah. Xylazine juga dapat menekan termoregulator (Adams 2001).

Xylazine menyebabkan tertekannya sistem syaraf pusat, bermula dari sedasi,

kemudian dengan dosis yang lebih tinggi menyebabkan hypnosis, tidak sadar dan

akhirnya keadaan teranestesi (Hall dan Clarke 1983). Pada sistem pernafasan,

xylazine menekan pusat pernafasan. Xylazine juga menyebabkan relaksasi otot yang

bagus melalui imbibisi transmisi intraneural impuls pada SSP. Penggunaan xylazine

pada anjing menghasilkan efek samping merangsang muntah tetapi dapat

mengosongkan lambung pada anjing diberi makan sebelum dianestesi.

36

Xylazine biasa digunakan pada kucing, anjing dan kuda sebagai agen sedatif

untuk keperluan pembedahan minor dan untuk menguasai hewan atau handling.

Penggunaaan xylazine dengan dosis yang lebih tinggi bukan saja untuk sedasi dan

analgesi, tetapi juga menghasilkan immobilisasi. Xylazine bisa digunakan sendiri

atau dikombinasikan dengan obat lain seperti benzodiazepin atau opioid untuk

menghasilkan sedasi. Xylazine juga dapat dikombinasikan dengan anestesi injeksi

seperti ketamine, tiopental, dan propofol atau anestesi inhalasi seperti halotan dan

isofluran untuk menghasilkan anestesi yang lebih baik (Lemke 2004). Xylazine

biasanya digunakan sebagai preanestesi, tetapi pada anjing akan menyebabkan

muntah sehingga bersifat kontra-indikasi untuk hewan yang menderita obstruksi

gastro-intestinal. Waktu induksi dari suatu agen anestesi bisa dikurangi sampai 50-

75% dengan pemberian preanestesi xylazine untuk menghindari overdosis (Bishop

1996).

Sebagai preanestesi pada kuda, xylazine dapat diikuti dengan tiopenton,

metoheksiton atau ketamine. Dengan anestetikum ketamine, penggunaan xylazine

adalah dosis 1,1 mg/kg berat badan secara intra muskular dan diikuti dengan

ketamine 2,2 mg/kg berat badan. Pada anjing, xylazine bisa digunakan secara sub-

kutan atau intra muskular dengan dosis 1-3 mg/kg berat badan (Bishop 1996).

Xylazine dapat digunakan sebagai preanestetikum pada anjing dengan dosis 0,25-

2mg/kg secara intramuskular dan dosis 0,2-0,5mg/kg secara intravena (McKelvey

dan Hollingshead 2003).

Midazolam

Midazolam adalah golongan short-acting benzodiazepin (Gambar 9) umumnya

digunakan pada manusia tetapi dapat digunakan pada anjing, kucing, babi, burung,

dan kuda. Midazolam stabil dalam larutan, sehingga dapat dikombinasikan dengan

ketamine atau ketamine-larutan salin untuk pemberian secara infus, diabsorbsi

dengan baik dan tidak mengiritasi jaringan bila diaplikasikan secara intramuskular

(Lumb dan Jones 1996).

37

Gambar 9 Struktur kimia midazolam

Midazolam merupakan golongan Imidazobenzodiazepin yang larut dalam air,

menghasilkan efek hipnotik, relaksasi otot dan lebih potensial daripada golongan

benzodiazepine lain seperti diazepam (Plumb 1991; Luna et al. 1992). Golongan

benzodiazepin memperkuat kerja GABA yang merupakan neurotransmiter inhibitori

utama pada otak, mampu menekan reflekss-refleks polisinaps dan berpengaruh

terhadap medulla spinalis (Brander et al. 1991). Midazolam bekerja pada reseptor

benzodiazepin dengan cara meningkatkan pengikatan GABA pada reseptor GABAA

Midazolam dimetabolisme di hati. Produk metabolit utama midazolam adalah

hidroksimidazolam yang diekresikan melalui hati sebanyak 40-50%,

,

sehingga menimbulkan penghambatan SSP (Stawicki 2007).

α -

hydroxymidazolam yang terbentuk akan segera terikat dengan asam glukoronat (tidak

aktif) dan 50-70% dosis midazolam yang diberikan kemudian dieliminasi melalui

ginjal. Waktu paruh eliminasi midazolam pada manusia 1,5-3 jam (Anonim 2002).

Midazolam mempunyai waktu paruh singkat dan aktivitas farmakologi yang rendah.

Waktu paruh midazolam dalam serum dan durasi midazolam pada manusia lebih

pendek dibandingkan penggunaan diazepam. Waktu paruh eliminasi midazolam pada

manusia lebih kurang 2 jam sedangkan diazepam mencapai 30 jam (Plumb 1991).

Midazolam diabsorbsi cepat dengan kesempurnaan absorbsi 91% pasca

injeksi intramuskular dan rentang bioavailabilitas 31-72% pada pemberian per-oral.

Onset pasca injeksi midazolam secara intravena sangat cepat karena midazolam

termasuk zat lipofilik tinggi. Reflekss akan berkurang pada 30-97 detik post

pemberian midazolam pada manusia. Obat ini memiliki ikatan kuat dengan protein

(94-97%) dan secara cepat menembus blood brain barrier (Plumb 1991). Menurut

38

Anonim (2002), ketersediaan hayati midazolam post injeksi intramuskular lebih dari

90% dan konsentrasi plasma maksimum pada manusia dicapai dalam 30 menit. Ikatan

protein plasma midazolam adalah 96-98%. Selain menembus blood brain barrier,

midazolam juga mampu menembus plasenta dan memasuki sirkulasi janin.

Midazolam dapat digunakan secara sendiri sebagai tranquilizer atau

dikombinasikan dengan anestetikum umum untuk mencegah hipertonus otot dan

meningkatkan sedasi. Pada anjing, midazolam diinjeksikan intramuskular atau

intravena, walau pemberian intravena lebih sering digunakan untuk induksi anestesi

(Lumb dan Jones 1996). Midazolam digunakan sebagai preanestesi untuk mengurangi

kegelisahan sebelum prosedur pembedahan, sebagai sedatif, hipnotik, dan

menimbulkan amnesia (Stawicki 2007). Midazolam dapat mencegah hipertonus otot,

meningkatkan efek sedasi, menghasilkan efek hipnotik, dan lebih potensial

dibandingkan diazepam (Lumb dan Jones 1996; Muir et al. 2000).

Midazolam diindikasikan untuk sedasi preoperasi, amnesia, penanganan

seizures atau status epilepsi, sedasi dan amnesia untuk endoskopi, dan

dikombinasikan dengan agen anestesi lain sebagai anestesi umum (Stawicki 2007).

Efek samping penggunaan midazolam adalah hipotensi, bradikardi, depresi respirasi,

kerusakan fungsi motor, dan koma. Overdosis midazolam dapat ditangani dengan

pemberian flumazenil (Stawicki 2007).

Midazolam lebih baik dibandingkan dengan diazepam. Midazolam bersifat

stabil di dalam larutan sehingga dapat dikombinasikan dengan ketamine atau

ketamine-larutan saline untuk pemberian secara infus (Plumb 1991; Jacobson dan

Hartsfield 1993). Midazolam diabsorbsi dengan baik dan tidak mengiritasi jaringan

bila diaplikasikan intramuskular dan pengaruhnya akan muncul setelah tiga menit

penyuntikan (Lumb dan Jones 1996). Dosis midazolam yang dianjurkan pada anjing

100-200 microgram/kgBB intravena, intramuskular atau subkutan (Lumb dan Jones

1996; Bishop 1996). Midazolam digunakan sebagai preanestesi pada anjing dengan

dosis 0,1-0,2mg/kg (maksimal 10mg) secara intramuskular maupun intravena

(McKelvey dan Hollingshead 2003). Midazolam juga sering digunakan pada kucing

dan dikombinasikan dengan ketamine (0,2mg/kg midazolam dan 10mg/kg ketamine

39

IM). Penggunaan midazolam untuk preoperasi berkisar 0,066-0,22 mg/kgBB

intramuskular atau intravena (Plumb 1991; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Atropine

Atropine adalah prototipe agen menghambat muskarinik atau antimuskarinik

dan merupakan ekstrak alkaloid dari tumbuhan belladona yang termasuk famili

potato (Adams 2001). Atropine dan derivat alamiahnya adalah ester alkaloid

ammonium tersier asam tropat (Katzung 1992). Secara kimia, molekul atropine

terdiri dari dua komponen yang berikatan melalui ikatan ester. Komponen pertama

adalah tropine yang merupakan sebuah basa organik dan komponen kedua adalah

asam tropat (Gambar 10).

Gambar 10 Struktur kimia atropine

Atropine merupakan antimuskarinik, digunakan untuk mengurangi salivasi

dan sekresi bronkial dan melindungi serta mencegah kejadian aritmia disebabkan

prosedur atau sifat obat-obat anestesi. Sebagai preanestesi, atropine diindikasikan

pada anjing untuk mencegah sejumlah saliva yang dapat menghalangi jalan nafas.

Atropine dan hyoscin tidak direkombinasikan untuk preanestesi pada kuda karena

dapat menyebabkan eksitasi dan medriasis. Atropine mencegah efek samping

muskarinik dari antikolinesterase, yang digunakan untuk mengembalikan pengaruh

non-depolarisasi obat-obat neuromuskular blok. Atropine adalah obat yang paling

umum untuk digunakan sebagai antimuskarinik untuk pengobatan bradikardia.

Penggunaan atropine pada anjing adalah 30–100 mikrograms/Kg BB (Bishop 1996).

Dosis atropine sulfas sebagai preanestetikum 0,02-0,04 mg/kgBB intramuskular atau

subkutan (Plumb 1991). Atropine biasa digunakan sebagai preanestetik pada anjing

dengan dosis 0,02-0,04mg/kg secara subkutan, intramuskular, maupun secara

40

intravena (McKelvey dan Hollingshead 2003). Pemakaian atropine sulfas dosis tinggi

berakibat peningkatan frekuensi jantung dan tonus vagal perifer dan sentral. Kejadian

disarithmia jantung dan takhikardi pada pemberian atropine sulfas pernah dilaporkan

pada anjing (Lumb dan Jones 1996).

Perubahan Aspek Fisiologi dalam Anestesi

Pengamatan aspek fisiologi untuk pengawasan suatu anestesi dapat dikatakan

sempurna apabila seluruh perubahan aspek fisiologi dapat diamati, tetapi perubahan

aspek fisiologi pada sistem kardiovaskuler, respirasi dan suhu tubuh merupakan

parameter yang terpenting diamati selama periode anestesi (Adams 2001, Flecknell,

1987). Kunci efektifitas anestesi dan tingkat keamanan selama periode anestesi

adalah dilakukannya pengawasan dan pemantauan (monitoring) anestesi yang baik.

Pemeriksaan cepat dan seksama selama periode anestesi dilakukan terhadap

kedalaman anestesi, kardiovaskuler dan respirasi, oksigenasi, dan variabel yang lain,

seperti disajikan pada Tabel 2.

Tabel 2. Perubahan fisiologi yang diperiksa selama periode anestesi

• Respirasi : kecepatan, kedalaman, dan sifat (gerak kantong reservoir dan gerakan dada). • Warna membrana mukosa dan capillary refill time (CRT). • Denyut jantung • Pulsus : kecepatan dan kekuatan • Ketegangan rahang, posisi bola mata, dan aktivitas refleks palpebral. • Oksigenasi (kecepatan aliran dan tekanan) • Temperatur tubuh pasien

Sumber: McKelvey dan Hollingshead 2003

Tanda-tanda vital dan refleks harus diperiksa selama hewan teranestesi. Tanda

vital menunjukkan variabel yang mengindikasikan mekanisme respon keseimbangan

(homeostasis) hewan terhadap anestesi, seperti denyut jantung, kecepatan respirasi,

capillary refill time (CRT), dan temperatur. Tanda vital bagi pasien menandakan

kemampuan pasien untuk mempertahankan fungsi respirasi dan sirkulasi selama

teranestesi. Tanda vital dapat diamati dengan indera (sentuhan, pendengaran, atau

41

penglihatan) atau menggunakan alat seperti mesin EKG atau oximeter. Tanda vital

yang harus diperiksa selama teranestesi adalah denyut dan ritme jantung, pulsus,

CRT, warna membrana mukosa, kehilangan darah, kecepatan dan kedalaman

respirasi, dan temperatur. Tanda vital lain yang juga diperiksa adalah oksigenasi,

CO2

, EKG, dan tekanan darah. Sedangkan refleks adalah reaksi tidak sengaja dari

hewan terhadap rangsangan seperti ditusuk atau dipukul. Refleks memberikan

informasi terhadap kedalaman anestesi tetapi tidak berhubungan dengan keamanan

anestesi atau mekanisme homeostasis pasien (McKelvey dan Hollingshead 2003).

Sistem Kardiovaskeler

Sistem kardiovaskuler adalah suatu sistem dalam tubuh yang terdiri dari

jantung, pembuluh darah dan darah. Fungsi utama sistem kardiovaskuler adalah

sebagai sistem sirkulasi atau alat transport. Sirkulasi darah akan mengangkut

substansi penting untuk kesehatan dan kehidupan, seperti oksigen (O2) dan nutrisi

yang diperlukan oleh setiap sel dalam tubuh. Darah juga membawa karbondioksida

(CO2

Denyut jantung adalah hitungan berapa kali jantung berdenyut dalam satu

menit. Pengamatan frekuensi denyut jantung dapat menggambarkan kualitas fungsi

kardiovaskuler yang bertugas mengangkut O

) dan hasil sisa metabolisme tubuh dari tiap-tiap sel dan mengirimnya ke paru-

paru, hati, atau ginjal sebagai tempat untuk pengeluaran (Cunningham 2002). Jantung

berfungsi sebagai pompa yang melakukan tekanan terhadap darah untuk

menimbulkan tekanan yang diperlukan agar darah dapat mengalir ke jaringan.

Pembuluh darah berfungsi sebagai saluran untuk mengarahkan dan mendistribusikan

darah dari jantung ke semua bagian tubuh dan mengembalikan ke jantung (Sherwood

2001, Cunningham 2002).

2 dan nutrien ke seluruh jaringan tubuh,

membawa limbah metabolisme dan mempertahankan homeostasis seluler.

Pengamatan frekuensi denyut jantung dapat dihitung secara auskultasi dengan

mempergunakan stetoskop yang diletakkan tepat di atas apeks jantung di rongga dada

sebelah kiri, atau dapat pula dengan merasakan pulsus hewan pada pembuluh darah

arteri femoralis atau brachialis. Selain itu, pengukuran frekuensi denyut jantung

42

dapat juga dilakukan dengan elektrokardiogram (EKG) (Cunningham 2002, Nelson

2003).

Denyut jantung minimal yang masih aman pada anjing teranestesi adalah 60

kali/menit. Denyut jantung yang lebih rendah menandakan kedalaman anestesi yang

berlebihan atau ada gangguan. Denyut jantung yang umum pada hewan yang

teranestesi adalah 60-120 kali per menit (anjing sehat 60-180x/menit). Penurunan

denyut jantung pada kondisi teranestesi adalah normal, akibat adanya pengaruh

sebagian besar anestetikum yang dapat menekan denyut jantung dan fungsi

miokardiak. Hanya beberapa atestetika yang dapat meningkatkan denyut jantung

seperti atropine, ketamine, dan tiletamin (McKelvey dan Hollingshead 2003).

Selama dalam keadaan teranestesi, jantung dapat diamati dengan

elektrokardiograf untuk melihat gambaran elektrokardiogram. Elektrokardiogram

(EKG) adalah suatu rekaman keadaan yang menggambarkan konduksi listrik jantung.

Rekaman konduksi listrik jantung sangat umum digunakan secara klinis untuk

mendiagnosa disfungsi listrik jantung. Depolarisasi atrial, depolarisasi ventrikel, dan

repolarisasi ventrikel akan menyebabkan depleksi voltase yang khas dalam bentuk

gelombang pada elektrokardiogram. Alat elektrokardiograf dapat digunakan untuk

melihat gambaran elektrokardiogram dan denyut jantung (Cunningham 2002).

Jantung dibentuk oleh tiga jenis sel yang menyebabkan terjadinya eksitasi,

yaitu sel pacemaker sebagai sumber bioelektrik jantung dan secara dominan berada di

nodus SA (Sino-Atrial node), sel konduksi sebagai kawat penghubung arus

bioelektrik seperti nodus AV (Atrio-Ventricular node), berkas his atau serabut

purkinje, dan sel otot jantung (miokardium) yang berfungsi untuk kontraksi

(Cunningham 2002).

Jantung berdepolarisasi apabila terdapat dua buah kesatuan yang secara

fungsional terisolasi, yaitu atrium kanan dan kiri serta ventrikel kanan dan kiri yang

dijembatani oleh nodus AV. Jalur gelombang depolarisasi dimulai dari nodus SA

pada atrium kanan, kemudian menyeberangi atrium dari nodus SA ke atrium kiri.

Dinding atrium relatif tipis sehingga depolarisasi berjalan terus melalui endokardium

dan epikardium. Kecepatan depolarisasi ini dipengaruhi oleh rangsangan otonom,

43

suhu dan ukuran serabut miokardium. Gelombang depolarisasi menyebabkan atrium

berkontraksi dan darah akan mengalir ke ventrikel. Kemudian gelombang

depolarisasi mengalir melalui berkas his dan serabut purkinje yang menyebabkan

dinding ventrikel berkontraksi dan darah dapat dialirkan keluar ventrikel (Sherwood

2001, Karim dan Kebo 2002).

Gelombang EKG ditandai dengan satu seri defleksi atau gelombang, dengan

perjanjian bahwa suatu potensial positif menghasilkan defleksi ke atas dan suatu

potensial negatif menghasilkan defleksi ke bawah. Gelomgang P, menunjukkan

depolarisasi atrium atau kontraksi atrium. Gelombang untuk repolarisasi atrium tidak

terlihat pada EKG, karena tertutup oleh gelombang Q, R, dan S. Gelombang Q, R,

dan gelombang S, bersama-sama merupakan komplek QRS. Komplek QRS

menunjukkan depolarisasi ventrikel atau kontraksi ventrikel. Ketetapan pada komplek

QRS adalah setiap awal defleksi negatif ditunjukkan oleh Q, setiap defleksi positif

(dengan atau tanpa didahului oleh Q) ditunjukkan oleh R, dan setiap defleksi negatif

yang mengikuti R, ditunjukkan oleh S. Gelombang T menunjukkan repolarisasi

ventrikel. Walaupun depolarisasi dan repolarisasi adalah proses yang bertolak

belakang, gelombang T dan gelombang R biasanya menunjuk kearah yang sama,

yang menunjukkan bahwa penyebab aktivasi dan penurunan mengambil jalur yang

berbeda melalui miokardium. Interval PR atau PQ adalah waktu yang berlalu antara

permulaan eksitasi atrium dan permulaan eksitasi ventrikel atau penjumlahan dari

waktu depolarisasi atrium dan waktu perlambatan simpul AV. Interval QT bervariasi

dengan denyut jantung, segmen ini menunjukkan waktu yang diperlukan untuk

depolarisasi dan repolarisasi ventrikel atau jarak antara permulaan gelombang Q

sampai akhir gelombang T, sedangkan durasi QRS adalah waktu yang diperlukan

untuk depolarisasi atau kontraksi ventrikel, seperti disajikan pada Gambar 11

(Sherwood 2001; Karim dan Kebo 2002; Gay dan Rothenburger 2000).

44

Gambar 11 Diagram gambaran gelombang elektrokardiogram (EKG).

Selain EKG, tekanan darah juga dapat mempengaruhi terjadinya gangguan

pada sistem kardiovaskuler. Tekanan darah arteri sangat dipengaruhi oleh cardiac

output dan tahanan total perifer, denyut jantung, serta stroke volume. Peningkatan

stroke volume atau cardiac output akan meningkatkan tekanan darah. Peningkatan

tahanan perifer juga akan mempengaruhi peningkatan tekanan darah. Jadi penurunan

denyut jantung, stroke volume atau tahanan perifer secara sendiri-sendiri atau

dikombinasikan akan menurunkan tekanan darah arteri (Muir et al. 2000;

Cunningham 2002 ). Nilai normal denyut jantung, elektrokardiogram, dan tekanan

darah arteri pada anjing disajikan pada Tabel 3.

Tabel 3. Kriteria elektrokardiogram (EKG) dan tekanan darah normal pada anjing

Parameter Kisaran Normal pada Anjing Denyut Jantung (denyut per menit) 70 – 160 Gelombang P (maximum)(detik dan mv) 0,04 dan 0,4 Interval PQ(detik) 0,06 – 0,13 Interval QRS(detik) 0,04 – 0,05 Gelombang R(mv) 3 Segmen ST(mv) 0,2 Gelombang T (maximum) 1/3 R Interval QT(detik) 0,15 – 0,25 Tekanan sistol/diastol (rata-rata)( mmHg) 100/65(90)-160/100(100)

Sumber : Nelson 2003

Denyut jantung, gambaran elektrokardiogram dan tekanan darah arteri adalah

parameter penting pada sistem kardiovaskuler yang harus diperhatikan sebelum dan

1= Durasi P 2= Interval PR 3= Durasi QRS 4= Interval QT

45

selama melakukan tindakan anestesi maupun pembedahan (Muir et al. 2000;

Cunningham 2002 ).

Capillary Refill Time (CRT)

Capillary refill time (CRT) adalah kecepatan kembalinya warna membrana

mukosa setelah dilakukan penekanan yang lembut dengan jari. Capillary refill time

menandakan adanya aliran darah pada jaringan. Penekanan pada membrana mukosa

akan menekan pembuluh darah kapiler dan menghambat aliran darah di daerah

tersebut, apabila penekanan dilepaskan kapiler akan terisi kembali oleh darah dengan

cepat dan warnanya akan kembali, menandakan bahwa jantung masih mampu untuk

menghasilkan tekanan darah yang cukup (McKelvey dan Hollingshead 2003).

Nilai CRT yang lama (lebih dari 2 detik) menandakan pengisian jaringan oleh

darah tidak optimal dan aliran darah ke jaringan menurun. Hal ini menandakan terjadi

penurunan tekanan darah akibat pemberian obat, hipotermia, gangguan jantung,

anestesi yang dalam, atau karena terjadi shock (Cunningham 2002; McKelvey dan

Hollingshead 2003).

Warna Membrana Mukosa

Lokasi yang paling mudah dilakukan untuk pemeriksaan warna membrana

mukosa adalah daerah gusi. Hewan yang mempunyai gusi berpigmen, di daerah lain

dapat dilakukan pemeriksaan seperti lidah, konjungtiva bawah, atau daerah

prepusium dan vulva. Warna membrana mukosa yang pucat menandakan kejadian

kehilangan darah atau anemia atau karena aliran darah yang lemah akibat hewan

terlalu lama dianestesi. Warna membrana mukosa yang ungu atau biru adalah kondisi

yang disebut sianosis, sebagai tanda berhentinya aliran darah atau kekurangan

oksigen pada jaringan. Sianosis pada hewan selama dianestesi menandakan terjadi

gangguan respirasi atau terjadi obstruksi saluran respirasi bagian atas dan hewan

harus segera diselamatkan (Cunningham 2002; McKelvey dan Hollingshead 2003).

46

Tekanan Darah

Tekanan darah dapat diukur secara kasar melalui palpasi pulsus, tetapi untuk

mendapatkan tekanan darah yang akurat harus dilakukan dengan alat pengukur

tekanan darah. Beberapa istilah yang digunakan untuk menentukan tekanan darah

adalah tekanan darah sistol (systolic arterial pressure, SAP), tekanan darah diastol

(diastolic arterial pressure, DAP), dan tekanan darah rata-rata (mean arterial

pressure, MAP). Systolic arterial pressure adalah tekanan darah tertinggi yang

dihasilkan karena kontraksi ventrikel yang memompa darah ke aorta dan arteri besar.

Diastolic arterial pressure adalah tekanan darah terendah yang merupakan tekanan

sisa pada saat jantung berada pada tahap istirahat atau relaksasi sebelum kontraksi

berikutnya. Mean arterial pressure adalah tekanan rata-rata siklus jantung dan

merupakan tekanan darah yang paling penting yang berhubungan dengan anestesi,

karena merupakan indikator paling baik untuk mengetahui aliran darah pada organ

dalam. Mean arterial pressure dapat diketahui secara langsung pada alat ukur atau

dengan menghitung menggunakan rumus sebagai berikut :

(SAP – DAP) MAP = DAP + 3

Nilai normal SAP pada anjing adalah sekitar 120 mmHg (90-160 mmHg) dan

nilai normal DAP adalah 80 mmHg (50-90 mmHg) sehingga dapat dikatakan bahwa

nilai normal SAP/DAP adalah 120/80. Sedangkan nilai MAP normal adalah 90-100

mmHg, pada hewan yang teranestesi adalah 70-90 mmHg (Cunningham 2002;

Nelson 2003; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Gambaran Darah

Pengamatan laboratoris yang diperlukan sebelum dan selama tindakan

anestesi adalah penghitungan sel darah lengkap (CBC, complete blood cell count).

Penghitungan sel darah lengkap terdiri dari penentuan PCV (packed cell volume), Hb

(hemoglobin), TPP (total plasma protein), dan evaluasi blood smear untuk sel darah

47

putih (WBC, white blood cell), sel darah merah (RBC, red blood cell), dan platelet.

Pengamatan tersebut bertujuan untuk melihat status hidrasi dan status hematologi

volume sel darah merah yang bersirkulasi. Dengan diketahui status hidrasi maka shok

dan anemia karena kehilangan banyak darah dapat dicegah sedini mungkin pada saat

operasi (Dodman et al. 1984; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Informasi yang diperoleh dari pemeriksaan PCV dan Hb menandakan

kemampuan darah untuk mengirim oksigen ke jaringan. Nilai PCV yang berada

diatas normal menandakan jumlah relatif sel darah merah meningkat yang terjadi

pada keadaan kehilangan cairan dan menyebabkan terjadinya dehidrasi. Tingginya

nilai PCV sangat penting diperhatikan, karena berhubungan dengan hemokonsentrasi

dan meningkatnya kekentalan darah, yang menyebabkan penurunan curah jantung.

Apabila nilai PCV rendah, menandakan terjadinya anemia yang disebabkan oleh

kehilangan darah, hemolisis, atau gangguan produksi sel darah merah, akhirnya akan

menyebabkan penurunan kapasitas penyediaan oksigen ke jaringan. Nilai PCV di

bawah 25% pada anjing menandakan bahwa oksigenasi pada jaringan tidak cukup,

terutama untuk jantung dan anestesi harus ditunda sampai terjadi perbaikan anemia.

Nilai TPP juga sangat penting seperti nilai PCV, karena peningkatan nilai TPP sama

dengan peningkatan nilai PCV yang menandakan adanya dehidrasi. Penurunan nilai

TPP menandakan terjadinya hipoproteinemia yang diakibatkan oleh gangguan ginjal,

hati, atau gastrointestinal. Sedangkan jumlah sel darah putih menandakan ada

tidaknya infeksi atau tingkat stres yang terjadi pada hewan. Kondisi terinfeksi dan

stres akan meningkatkan resiko anestesi. Tabel 4. menunjukkan nilai normal

gambaran darah anjing (Dodman et al. 1984; McKelvey dan Hollingshead 2003).

48

Tabel 4. Kriteria normal pemeriksaan darah pada anjing

(Sumber : Wolfensohn dan Lloyd 2000; McKelvey dan Hollingshead 2003; Foster 2009)

Parameter

Kisaran Referensi

untuk Anjing

Denyut Jantung (denyut per menit)

70-160

Hb (g/dl) 14-18

PCV (%) 35-54

Red Blood Cell Count (x106 5.6-8.7 /µl)

White Blood Cell Count (/µl) 6,000-17,000

Neutrophils(/µl) 3,000-12,000

Lymphocytes(/µl) 530-4,800

Monocytes(/µl) 100-1800

Eosinophils(/µl) 0-1,900

Basophils(/µl) <100

Platelets(/µl) 145-440

TPP (g/dl) 5,7-7,8

PaO2 91-97 (mmHg)

PaCO2 (mmHg) 30-43

Arterial pH 7,36-7,46

Sistem Respirasi

Respirasi merupakan faktor penting dalam ventilasi pulmonum, sehingga

udara alveoler diperbaharui oleh udara atmosfir. Terdapat dua mekanisme penting

dalam satu kali respirasi yaitu inspirasi dan ekspirasi. Inspirasi adalah udara atmosfir

masuk ke dalam saluran paru-paru dan ekspirasi adalah keluarnya udara alveoler dari

paru-paru dan saluran pernapasan (Lumb dan Jones 1984; Cunningham 2002). Nilai

normal gas respirasi dan gas di dalam darah anjing disajikan dalam Tabel 5.

49

Tabel 5. Tekanan gas respirasi dan gas darah normal pada anjing (mmHg) (Sumber : Muir 2000; Nelson 2003; McKelvey dan Hollingshead 2003)

Gas atsmosfer

(inspirasi) alveolar arteri Vena

O 160 2 102 100 40 CO 0,2 2 40 40 45 N 595 2 570 572 572

Kelembaban air 4,8 48 48 48 Total 760 760 760 705

End Tidal CO2(CO

2

alveolar – [5 s/d 10]) 35-46 mmHg (anjing)

Frekuensi Respirasi 15 (10 – 30) kali/menit (anjing)

Respirasi pada hewan akan mengambil udara atau gas inspirasi dalam jumlah

yang sama dengan yang dikeluarkan ekspirasi. Volume udara atau gas yang masuk

dan keluar saluran respirasi disebut volume tidal, sedangkan jumlah inspirasi atau

ekspirasi yang dilakukan setiap menitnya disebut frekuensi respirasi per menit

(respiratory rate). Volume tidal dan frekuensi respirasi akan menghasilkan volume

respirasi per menit (menute volume). Kedalaman respirasi akan mempengaruhi

ukuran volume tidal. Respirasi yang lebih dangkal akan menurunkan volume tidal

dan sebaliknya (Muir et al. 2000).

Pengamatan terhadap frekuensi respirasi dapat dilakukan dengan melekatkan

sebuah monitor pada katub ekhalasi pada sirkuit anestesi per inhalasi yang dapat

berdesis pada setiap kali ekhalasi. Metode lain yang dapat digunakan untuk

mengamati frekuensi respirasi adalah dengan memasukkan sebuah thermistor probe

ke dalam saluran pernapasan. Pengamatan frekuensi respirasi juga dapat dilakukan

dengan cara visual dengan memperhatikan gerakan inspirasi dan ekspirasi pada

tulang iga di bagian dada (Moens dan Fargetton 1990; Cunningham 2002; Nelson

2003).

Dalam keadaan normal, O2 diangkut ke dalam alveoli paru-paru dan CO2

diangkut dari alveoli paru-paru, sehingga komposisi udara di dalam alveoli paru-paru

dapat dipertahankan dalam konsentrasi yang konstan. Pertukaran gas di paru-paru

terjadi dengan melewati membran alveoli dan membran kapiler, yang tebalnya kira-

50

kira tidak lebih dari satu mikron, sehingga dapat berlangsung dengan cepat. Keadaan

udara di dalam pembuluh kapiler paru-paru dan di dalam alveoli paru-paru mendekati

seimbang, sehingga tekanan gas CO2 dan O2 di dalam darah relatif sama dengan

tekanan CO2 dan O2

di dalam alveoli paru-paru (Cunningham 2002).

Suhu Rektal

Suhu rektal adalah variabel fisiologis yang paling sederhana dan mudah untuk

diamati selama anestesi. Suhu rektal adalah parameter paling sederhana untuk diamati

perubahannya dengan menggunakan alat fisiograf. Panas dalam tubuh berasal dari

hasil metabolisme di dalam tubuh dan dari luar tubuh. Pada saat energi makanan

dicerna, panas akan dihasilklan dari keseluruhan tahap proses metabolisme di dalam

tubuh. Energi yang terdapat didalam makanan dirubah dalam bentuk panas, yang

disebarkan ke lingkungan dan dipancarkan keseluruh permukaan.

Hewan akan melawan panas dari lingkungan bila suhu disekitarnya lebih

besar dari suhu tubuh dan bila terpapar oleh radiasi panas. Hal yang sama juga terjadi

jika hewan terpapar sinar matahari langsung atau berada dekat dengan benda padat

yang lebih hangat dari pada suhu tubuhnya. Panas tubuh akan hilang menuju

lingkungan sekitar melalui pemancaran dari permukaan tubuh menuju objek yang

lebih dingin. Pemancaran panas terjadi melalui pergerakan udara atau air yang

menjadi lebih hangat oleh tubuh, melalui penguapan sekresi respirasi, keringat atau

saliva dan melalui penghantaran pada permukaan yang lebih dingin karena tubuh

hewan bersentuhan. Panas juga hilang melalui urin dan feses. Banyak sumber panas

dari metabolisme dalam tubuh, seperti hati, jantung, dan otot berada jauh dari kulit

sebagai tempat pelepasan atau kehilangan panas, sehingga diperlukan pemindahan

panas. Jaringan tubuh adalah penghantar panas yang tidak baik, sehingga panas

dipindahkan terutama oleh pergerakan di dalam sirkulasi. Jantung dan pembuluh

darah akan memegang peranan yang sangat penting untuk pemindahan panas di

dalam tubuh (Cunningham 2002).

Pusat pengaturan seluruh informasi dari berbagai reseptor terjadi di anterior

hipotalamus. Informasi yang berasal dari reseptor temperatur pusat lebih besar

51

pengaruhnya dari pada informasi yang berasal dari reseptor kulit dan visceral,

sehingga peningkatan temperatur pusat 0,5o

Salah satu penyebab hilangnya panas tubuh pada hewan selama teranestesi

adalah penempatan hewan diatas meja operasi stainles steel dan ruangan operasi yang

menggunakan pendingin ruangan atau air-conditioning dengan pengaturan suhu yang

sangat rendah. Periode anestesi lama lebih dari 30 menit juga dapat menyebabkan

penurunan suhu tubuh (Warren 1983; Muir et al. 2000). Abnormalitas termoregulasi

yang menyebabkan penurunan suhu tubuh selama hewan teranestesi disebabkan oleh

kehilangan panas akibat produksi yang menurun, penekanan pada susunan syaraf

pusat, terjadi vasodilatasi, penurunan produksi panas oleh aktivitas otot, penyuntikan

cairan dengan suhu rendah, dan kapasitas tubuh yang terbuka terhadap kontak

lingkungan (Muir et al. 2000). Perubahan suhu pada hewan yang teranestesi masih

diperkenankan apabila masih berada pada batas-batas nilai normal. Suhu normal pada

anjing adalah 37,5-39,2

C menyebabkan tujuh kali lipat

peningkatan pada peredaran darah di kulit, penurunan temperatur pusat menyebabkan

vasokonstriksi dan menggigil. Pengaruh reseptor pusat adalah duapuluh kali lipat

lebih besar dari pada pengaruh reseptor perifer (Cunningham 2002; Nelson 2003).

o

C (McKelvey dan Hollingshead 2003).

Anjing

Anjing (Canis familiaris) telah didomestikasi selama ribuan tahun. Banyak

jenis (breeds) anjing yang telah dikenal. Jenis anjing yang umum digunakan untuk

kepentingan penelitian laboratorium adalah anjing jenis Beagle. Anjing Beagle sering

digunakan sebagai model untuk penyakit pada manusia, karena mempunyai anatomi

dan fisiologi yang mirip dengan manusia, ukuran tubuhnya baik dan ideal (berat

badan rata-rata 10-15kg), mempunyai watak atau sifat yang baik dan bersahabat

sehingga sangat cocok untuk penelitian yang memerlukan pengamatan sangat dekat.

Anjing Beagle adalah jenis anjing yang pintar, mudah menerima perintah, penurut,

serta cepat beradaptasi dengan lingkungan, manusia maupun sesama anjing

(Wolfensohn dan Lloyd 2000).

52

Anjing adalah hewan yang sangat suka berkelompok dalam suatu kawanan.

Anjing dapat dipelihara dalam sebuah kelompok atau berpasangan tetapi dengan

pemberian makanan yang cukup. Anjing sangat perlu bersosialisasi dengan manusia

atau anjing lain terutama pada saat umur masih muda 6 – 8 minggu, tetapi pada umur

14 minggu akan sulit untuk didekati. Sosial kontak bagi anjing sangat penting dan

harus dipertahankan untuk membuat anjing tetap bersifat bersahabat. Anjing dengan

sosialisasi baik akan lebih mudah ditangani (handle), tidak mudah stres, dan akan

mudah dapat memberikan prosedur perlakuan pada anjing. Anjing tergolong binatang

yang pintar dan mudah belajar sehingga sangat baik digunakan sebagai hewan

laboratorium. Anjing jantan umumnya lebih agresif dibandingkan betina, tetapi hal

ini tergantung pada jenis anjing. Anjing jenis Beagle lebih tenang, lebih penurut, dan

menerima perintah tambahan dengan lebih baik. Anjing mempunyai metode

komunikasi yang banyak dengan manusia atau sesama anjing, dan indera

penciumannya sangat penting. Anjing jantan akan memberi marka daerah kekuasaan

dengan urinasi (Wolfensohn dan Lloyd 2000; McKelvey dan Hollingshead 2003).

Anjing sangat adaptif dengan lingkungan, dapat menyesuaikan dengan suhu

lingkungan 15-24oC, dan pada suhu yang lebih rendah dapat beradaptasi apabila

dalam kelompok. Anak anjing baru lahir perlu beradaptasi pada suhu 30-32oC, pada

umur 5 hari dapat beradaptasi pada suhu 26-28oC, dan pada umur 4 minggu dengan

suhu 24o

C sudah cukup. Anjing sangat baik beradaptasi terhadap makanan dan sangat

jarang terjadi defisiensi. Anjing Beagle berat 13 kg memerlukan pakan sekitar 0,8kg

atau 0,25kg pakan kering per hari, air minum lebih kurang 1 liter per hari (70-

80ml/kg/hari). Dewasa kelamin pada anjing jantan dicapai pada umur 7-8 bulan dan

pada betina umur 8-14 bulan. Anjing dapat dikawinkan setelah umur 1-2 tahun dan

anjing betina dapat dikawinkan setelah hari ke 6-12 birahi, kehamilan biasanya

berkisar 59-68 hari atau rata-rata 63 hari. Jumlah anak yang dilahirkan rata-rata 1-12

ekor, dengan berat lahir rata-rata 250 gram. Masa hidup anjing jenis Beagle adalah 12

tahun, seperti disajikan pada Tabel 6. (Wolfensohn dan Lloyd 2000).

53

Tabel 6. Data fisiologi anjing

(Sumber : Wolfensohn dan Lloyd 2000; McKelvey dan Hollingshead 2003)

Parameter Kisaran nilai Referensi

Parameter Kisaran nilai Referensi

Data biologi :

Berat badan dewasa (kg) 10-15 Data Hematologi :

Pakan (g/kg) 18 RBC (x106/mm3 5,5-8,5 )

Air minum (ml) 1200 PCV (%) 37-55

Harapan hidup (th) 12 Hb (g/dl) 12-18

Suhu rektal (o 37,9-39,9 C) WBC (x103/mm3 6-17 )

Tekanan darah sistol (mmHg) 95-136 Neutrofil (%) 60-70

Tekanan darah diastol (mmHg) 43-66 Eosinofil (%) 2-10

Tekanan darah rata-rata (mmHg) 100 (<50)+ Basofil (% -

Volume darah (ml/kg) 76-107 Limfosit (%) 12-30

Respirasi (x/min) 22 (<4)+ Monosit (%) 3-10

Volume tidal (ml) 251-432 Platelet (x103/mm3 200-900 )

Denyut jantung (x/min)

70-160

(<40, >175)+

Data kimia :

Data Reproduksi : Protein serum (g/dl) 6-7,5

Pubertas (bln) 6-9 Albumin (g/dl) 3-4

Dewasa kelamin jantan (bln) 7-8 Globulin (g/dl) 2,4-3,7

Dewasa kelamin betina (bln) 8-14 Glukosa (g/dl) 54-99

Umur dikawinkan (th) 1-2 Blood Urea Nitrogen (mmol/l) 3,-7,5

Bunting (hr) 59-68(63) Kreatinin (µmol/l) <120

Jumlah anak 1-12(4-6) Total billirubin (µmol/l) <5

Berat lahir (gr) 250 Kolesterol (mmol/l) 4-7

Keterangan : += kritis

54

Klasifikasi Status Pasien

Klasifikasi status pasien pada prosedur anestesi telah ditetapkan oleh

American Society of Anesthesiologist (ASA), seperti disajikan pada Tabel 7.

Tabel 7. Klasifikasi status pasien pada prosedur anestesi (Sumber : Lumb dan Jones 1996; Muir et at. 2000; McKelvey dan Hollingshead 2003)

Katagori Kondisi fisik Contoh kondisi klinik

Klas I Resiko minimal

Hewan normal (sehat klinis) Tidak ada penyakit

Overiohisterektomi, kastrasi, operasi declawing, radiografi, hipdisplasia.

Klas II Resiko ringan, ada penyakit ringan

Hewan dengan gangguan atau penyakit sistem ik ringan, ada kemampuan kompensatoar, tidak ada gejala klinis penyakit.

Hewan neonatal atau geriatrik, obesitas, tumor kulit, hernia tanpa komplikasi, criptorchid, fraktura tanpa shok, diabetes ringan, penyakit jantung dengan kompensatoar, infeksi lokal, infestasi cacing jantung ringan.

Klas III Resiko sedang, ada penyakit yang pasti

Hewan dengan gangguan atau penyakit sistem ik sedang, terdapat gejala klinis ringan.

Anemia, anoreksia, dehidrasi sedang, penyakit ginjal ringan, murmur ringan jantung atau penyakit jantung, demam, hipovolemia sedang.

Kelas IV Resiko tinggi, Sangat berbahaya karena penyakit

Hewan dengan penyakit sistem ik berat tetapi dapat menjalani pengobatan atau gangguan alami yang berat

Dehidrasi berat, shok, uremia, toksemia, demam tinggi, anemia, penyakit jantung tidak terkompensasi, diabetes, gangguan ginjal dan pulmonum, serta kekurusan.

Klas V Resiko sangat berat atau parah

Pasien parah hampir mati, dengan atau tanpa operasi tidak ada harapan hidup dalam 24 jam.

Penyakit jantung, ginjal, hati, paru-paru, atau endokrin yang lanjut; Shok berat dengan disertai dehidrasi berat, luka kepala yang parah, trauma berat, emboli pulmonum, dan tumor maligan stadium akhir.

Evaluasi status pasien dan penentuan status pasien harus dilakukan sebelum

dilakukan anestesi dan pembedahan. Evaluasi meliputi pemeriksaan fisik, sejarah

pasien, dan hasil pemeriksaan tes laboratorium diagnosis. Secara umum, pasien

dengan klasifikasi klas I dan klas II sangat aman untuk dilakukan anestesi dengan

55

protokol dan teknik yang standar (Lumb dan Jones 1996; Muir et at. 2000; McKelvey

dan Hollingshead 2003).

Pada penelitian ini, hewan coba yang digunakan adalah anjing domestik

dengan kriteria memenuhi data fisiologis Tabel 6 dan klasifikasi status pasien Tabel

7.

Pemantauan Anestesi

Pemberian anestetikum yang kurang atau tidak mencukupi menyebabkan

pasien akan tetap merasakan nyeri, masih dalam keadaan sadar, masih adanya refleks

dan masih ada pergerakan. Apabila dosis anestetikum yang diberikan dalam keadaan

cukup atau berlebihan, mengancam terjadinya kematian. Guna mencegah dua

kejadian yang ekstrim tersebut, harus dilakukan pemantauan yang baik selama

teranestesi. Pemantauan dilakukan terhadap fungsi respirasi, fungsi sirkulasi, dan

temperatur tubuh serta tetap mempertahankan kedalaman anestesi (McKelvey dan

Hollingshead 2003).

Kedalaman anestesi tidak dapat diberikan batasan yang tegas seperti terjaga,

tertidur, maupun meninggal. Tetapi secara umum berdasarkan pengalaman, dapat

digambarkan bahwa anestesi mempunyai empat tahap (4 stages) dimana tahap 3

(tahap anestesi untuk pembedahan) dibagi dalam 4 plane. Sedangkan pada binatang

mempunyai banyak spesies, biasanya digunakan balanced anesthetic dengan

kombinasi beberapa obat sehingga tahap-tahap anestesi tidak menjadi jelas. Anestesi

pada hewan memerlukan pengawasan yang lebih sering dan lebih teliti untuk

mengetahui tercapainya kedalaman anestesi, sehingga kedalaman anestesi tetap dapat

diawasi serta dipertahankan, dan tidak berpengaruh buruk terhadap sistem vital.

Lebih dari satu tanda harus digunakan untuk mengetahui kedalaman anestesi, karena

kedalaman anestesi tidak dapat ditentukan hanya dari satu tanda saja. Selama

teranestesi harus tetap terjaga penyediaan oksigen yang cukup ke jaringan dan

terbuangnya karbondioksida hasil respirasi. Jumlah oksigen yang cukup menuju

jaringan sangat tergantung pada beberapa faktor seperti cardiac output, nilai saturasi

aoksigen, dan Hb (McKelvey dan Hollingshead 2003; Tranquilli et al. 2007).

56

Pada kondisi teranestesi, sistem fisiologi hewan akan mengalami penurunan

terutama cardiac output dan penurunan efisiensi paru-paru (saturasi arteri), sehingga

akan menyebabkan penurunan ketersediaaan O2

ke jaringan dan ditambah dengan

kondisi sakit dapat menyebabkan hipoksia serta kematian. Penggunaaan anestesi

harus tetap mempertahankan kedalaman anestesi tetapi tetap juga menjaga agar tidak

terjadi gangguan pada sistem kardiovaskuler dan respirasinya. Dua hal tersebut dapat

dijaga hanya dengan memperhatikan refleks dan mengawasi tanda-tanda vital hewan.

Refleks pedal, menjepit ekor dan telinga dapat digunakan untuk melihat bahwa

anestesi sudah dalam dan anestesi tahap pembedahan sudah tercapai, tetapi tidak

dapat digunakan untuk memantau bahwa anestesi terlalu dalam dan sudah

membahayakan. Pada keadaan tahap anestesi yang terlalu dalam, hewan dapat dalam

keadaan bahaya terhadap gagalnya respirasi dan kardiovaskuler. Tanda-tanda vital

pada aktivitas kardiovaskuler dan respirasi yang menunjukkan kegagalan atau

bahaya harus diamati dengan baik seperti mata terbuka, nafas sangat lambat dan

dangkal, nafas sangat dalam, warna membrana mukosa membiru, dan tekanan darah

yang sangat menurun (Wolfensohn dan Lloyd 2000; McKelvey dan Hollingshead

2003).