Upload
others
View
1
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
LIETUVOS VETERINARIJOS AKADEMIJA
VETERINARIJOS FAKULTETAS
BIOLOGINöS CHEMIJOS KATEDRA
Guoda Giedraityt÷
MIKROORGANIZMŲ SĄVEIKOS YPATUMAI PORTUGALIŠKŲ FERMENTINIŲ SŪRIŲ BRANDINIMO METU
Magistro darbas
Darbo vadovas:
e.doc.p. dr. Aldona Baltušnikien÷
Kaunas, 2010
2
LIETUVOS VETERINARIJOS AKADEMIJA
VETERINARIJOS FAKULTETAS
BIOLOGINöS CHEMIJOS KATEDRA
Magistro darbas atliktas 2008-2010 metais Lietuvos veterinarijos akademijos Biologin÷s
chemijos katedroje, Portugalijoje, mikrobiologijos laboratorijoje, Katalikiškajame universitete,
chemijos laboratorijoje, Lisabonos universitete ir Idanha a Nova sūrių fabriko laboratorijoje.
Magistro darbą paruoš÷: Guoda Giedraityt÷ _________________
Magistro darbo vadovas: e. doc. p. dr. Aldona Baltušnikien÷
( LVA Biologin÷s chemijos katedra) _________________
Recenzentas (ai):
(Vardas, pavardė) (parašas)
(parašas)
3
SANTRAUKA
Mikroorganizmų sąveikos ypatumai portugališkų fermentinių sūrių brandinimo metu
Buvo tirti Sera da Estrella, Serpa ir jiems analogiški tradiciniai portugališki sūriai,
pienarūgšt÷s bakterijos, jų išskiriamos antimikrobin÷s medžiagos. Tyrimai atlikti Portugalijoje,
Porto miesto Katalikiškame Biotechnologijos Universitete, Idanha a Nova kaimelyje, sūrių
fabrike, ir Lisabonos mieste, Lisabonos Universitete. Atliktos Serpa ir Serra da estrela sūrių
chemin÷, mikrobiologin÷ ir juslin÷ analiz÷s. Idanha a Nova sūrių fabrike iš 116 pienarūgščių
bakterijų (PRB) išskirtos 4 bakterijos, su stipriausiu antimikrobiniu poveikiu 4 pasirinktiems
kontroliniams patogenams: Serratia sp., S. aureus, E. coli, L. inoccua. PRB buvo identifikuotos.
Didžiausią slopinantį poveikį Seratia sp., L. inoccua, E. coli ir S. aureus veiklai tur÷jo
Lactobacillus brevis ir Lactobacillus curvatus. Buvo stebimas PRB 7013, identifikuotos kaip
Lactobacillus brevis, antimikrobinis veikimas in vivo. Lisabonos Universitete tirta PRB išskirtų
bakterijų antimikrobin÷ medžiaga: jos atsparumas karščiui, kokią įtaką jos veikimui daro
fermentai, buvo atlikta aukšto patikimumo skysčių chromatografijos analiz÷, leidžianti daryti
prielaidą, kad bent viena iš 4 PRB sintetina bakteriociną.
Mikrobiologinio tyrimo metu nustatyta, kad visą sūrių nokimo laikotarpį, dominavo
abiejuose produktuose pienarūgšt÷s bakterijos. Tai patvirtina faktą, jok pienarūgšt÷s bakterijos
yra linkusios būti dominuojančiomis.
Pasteb÷ta, kad galutinis produktas priklauso nuo mikroorganizmų veiklos. Serra da
Estrela sūryje vystęsi mikroorganizmai suformavo lengvą, švelnų aromatą su įdomiu pikantišku
skoniu. Tuo tarpu Serpa sūryje veikę mikroorganizmai suformavo stipresnio kvapo ir aštresnio
skonio sūrį.
Reikšminiai žodžiai: mikrobiota, pienarūgšt÷s bakterijos (PRB), koliformin÷s
bakterijos (Serratia sp., E. coli), Pseudomonas spp., S. aureus, L. inoccua, bakteriocinai.
4
SUMMARY
Peculiarity interaction between microorganisms due to Portuguese fermented cheeses ripening time
There were investigated Serpa, Serra da Estrela and analogical Portuguese cheeses.
Researches have been done in Porto Catholic Biotechnological University, in a cheese factory -
Idanha a Nova village, at the University of Lisbon.
Serpa and Serra da Estrela cheeses were investigated by doing chemical, microbiological
and sensory analyses. There were isolated 116 lactic acid bacteria (LAB) strains in a cheese
factory of Idanha a Nova and selected 4 LAB strains with the best inhibitory activity against 4
control pathogens: Serratia sp., S. aureus, E. coli and L. inoccua. LAB strains were identified as
Lactobacillus brevis and Lactobacillus curvatus. The antimicrobial compound`s heat, enzym
resistance and HPLC analyses have been done.
The amount of microorganism intensity at different stages of cheeses ripeness has
been observed and there were established that lactic acid bacterias were dominated due to all
maturating time. The amount of Enterobacteriaceae, Pseudomonas spp., Staphylococus spp.
decreased while cheeses maturing time.
The technology of cheese making is responsible for the final product as well as the
activity of microorganisms in it.
Key words: Lactic acid bacteria (LAB), Enterobacteriaceae (Serratia sp., E. coli),
Pseudomonas sp., S. aureus, L. inoccua.
5
TURINYS
ĮVADAS..............................................................................................................................1 1. LITERATŪROS APŽVALGA...................................................................................3 1.1 Pienarūgščių bakterijų charakteristika…………………………………………….3 1.2 Pienarūgščių bakterijų reikšm÷ sūrių gamyboje…………………………………..4 1.3 Pienarūgščių bakterijų antibakterinis pritaikymas………………………………..5
1.4 Bakteriocinų apžvalga…………………………………………………………….....6 1.5 Bakteriocinų klasifikacija...........................................................................................6 1.5.1 I bakteriocinų kategorija…………………………………………………………..7 1.5.2 II bakteriocinų kategorija.........................................................................................7 1.5.3 III bakteriocinų kategorija........................................................................................8 1.5.4 IV bakteriocinų kategorija.......................................................................................8 1.5.5 Gram - neigiamų bakterijų išskiriami bakteriocinai................................................8 1.6 Bakteriocinų chemin÷s ir fizikin÷s savyb÷s…………………………………….…..9 1.7 Bakteriocinų veikimo būdas ………………………………………………………..9
2. TYRIMŲ METODAI IR SĄLYGOS.......................................................................12 2.1 Tyrimų vykdymo vieta……………………………………………………………..12 2.2 Tyrimų objektai.........................................................................................................12 2.3 Serra da Estrela ir Serpa sūrių gamybos technologija………………………...…12 2.4 Tyrimų metodai……………………………………………………………….…….12 2.4.1 Chemin÷ analiz÷ – rūgštingumo nustatymas…………………………….…….…12 2.4.1.1 Sūrio titruojamojo rūgštingumo nustatymas…………………………….….……13 2.4.1.2 Sūrio aktyviojo rūgštingumo (pH) nustatymas……………………………..……13 2.4.2 Juslin÷ analiz÷ …………………………………………………………….….….13
2.4.3 Mikrobiologin÷ analiz÷…………………………………………………………..15
2.4.4 Antibakterinio pienarūgščių bakterijų poveikio nustatymas………………..……16
2.4.4.1 Aukšto patikimumo atrankos analiz÷ tik÷tinam antimikrobiniam poveikiui
nustatyti…………………………………………………………………..………16
2.4.4.2 “Medaus korio” mikrol÷kštel÷s paruošimas tyrimui……………………..………17
2.4.4.3 Antimikrobinio poveikio nustatymas Petri l÷kštel÷se……………………………17
2.4.4.4 Bakteriocino aktyvumo ir prigimties tyrimai…………………………………….18
6
2.4.4.5 Antimikrobin÷s medžiagos išskyrimas ir apibūdinimas…………………………18
2.4.4.6 Aukšto efektyvumo skysčių chromatografija (HPLC tyrimas)…………………18
2.4.4.7 Pienarūgščių bakterijų su ryškiausiu antimikrobiniu poveikiu identifikavimas…18
2.4.4.8 Apsauginis pienarūgščių bakterijų poveikis in vivo………...……………………19
3. DARBO REZULTATAI…………………...……………………………………….20
3.1 Portugališkų Serpa ir Serra da Estrela sūrių mikrobiologin÷ analiz÷ ………….20
3.2 Juslin÷ Serra da Estrela ir Serpa sūrių analiz÷……………………….…………..21
3.3 Aukšto patikimumo atrankos analiz÷……………………………………………..24
3.4 Antimikrobinio pienarūgščių bakterijų intensyvumo nustatymas Petri
l÷kštel÷se……………………………………………………………………………..27
3.5 Aktyvumo ir prigimties tyrimai................................................................................30
3.6 Antimikrobin÷s medžiagos išskyrimas ir apibūdinimas…………………………32
3.7 Tyrimas aukšto efektyvumo skysčių chromatografija (HPLC
tyrimas)……………………………………………………………………………...33
3.8 Pienarūgščių bakterijų su ryškiausiu antimikrobiniu poveikiu
identifikavimas…………………………………………………………..………….35
3.9 Apsauginis pienarūgščių bakterijų poveikis sūryje…………………..…………..35
4. REZULTATŲ APTARIMAS………………………………………….…………..39
4.1 Portugališkų Serpa ir Serra da Estela sųrių mikrobiologinio tyrimo
aptarimas…................................................................................................................39
4.2 Pienarūgščių bakterijų sintetinmos antimikrobin÷s medžiagos apibūdinimas…40
5. IŠVADOS…................................................................................................................42
LITERATŪROS SĄRAŠAS………………………………………………………..….43
7
ĮVADAS
Sūris - tai maisto produktas gaminamas iš karvių, ožkų bei avių sutraukinto pieno -
varšk÷s. Nors pieno sutraukinimo procesai išaiškinti tik dvidešimto amžiaus pradžioje, tačiau
pieną ir iš jo pagamintus pieno produktus žmon÷s vartojo nuo seno (Gudonis, 1997).
Fermentiniai sūriai yra labai vertingi pieno produktai, turintys lengvai virškinamų
baltymų, riebalų, įvairių mineralinių medžiagų ir vitaminų. Jie plačiai paplitę įvairiose šalyse su
savitomis gamybos technologijomis ir įvairiu asortimentu (Masteikien÷, 2006).
Fermentiniai sūriai gaunami, traukinant pieną didelį proteolitinį aktyvumą turinčiais
fermentais (šliužo fermentu ar jo pakaitalais) ir dedant pienarūgščių bakterijų raugo, o kai kuriais
atvejais ir propionrūgščių, gleivių bakterijų, pel÷sinių grybų (Masteikien÷, 2006).
Sūrių gamyboje mikrobiologiniai procesai vaidina vieną svarbiausių vaidmenų. Čia
išskirtin÷s yra pienarūgšt÷s bakterijos. Sūrių gamybos technologijos proceso metu jos dauginasi
ir tampa pagrindine subrandintų sūrių mikrobiota (Masteikien÷, 2006). Pienarūgščių bakterijų
grup÷ susideda iš 13 Gram – teigiamų bakterijų genčių: Carnobacterium, Enterococcus,
Lactococcus, Lactobacillus, Lactosphaera, Leuconostoc, Oenococcus, Pediococcus,
Paralactobacillus, Streptococcus, Teragenococcus, Vagococcus, Weissella (Jay, Loessner,
Golden, 2001).
Pienarūgšt÷s yra sporų nesudarančios anaerobin÷s bakterijos ir gali būti rutulin÷s ar
lazdelin÷s formos. Fermentuodamos produkte esančius angliavandenius, jos kaip pagrindinį
galutinį produktą gamina pieno rūgštį (Jay, Loessner, Golden, 2001). Kai kurios iš šių bakterijų
yra homofermentin÷s – pagamina daugiau kaip 85 % pieno rūgšties, o kitos heterofermentin÷s –
tik apie 50 % pieno rūgšties, gana didelį kiekį etanolio, šiek tiek acto rūgšties ir CO2.
Pienarūgšt÷s bakterijos turi fermentus β-galaktozidazę, glikolazes ir laktodehidrogenazę (LDH),
kurios iš laktoz÷s gamina pieno rūgštį. Pieno rūgštis žmogaus organizme atlieka tokias naudingas
funkcijas kaip:
a) pagerina pieno baltymų virškinamumą,
b) gerina kalcio, geležies ir fosforo pasisavinimą,
c) stimuliuoja skrandžio sulčių sekreciją
(http://www.fao.org/docrep/x0560e/x0560e10.htm).
Nepaisant pieno produktų naudingumo žmogaus mityboje, svarbu žinoti kokie
patogeniški mikroorganizmai gali daugintis pieno produktuose ir sukelti nepageidautinas ligas:
8
salmoneliozę, stafilokokines maisto toksikoinfekcijas, listeriozę, bruceliozę, juodligę,
tuberkuliozę, Q karštinę, kampilobakteriozę, erkinį encefalitą, enterohemoraginius kolitus ir kitas
(Jay, Loessner, Golden, 2001 ). Enterobacteriaceae šeimai priklausančių genčių nariai yra
įvardijami kaip patogeniškiausi ir dažniausiai sutinkami mikroorganizmai klinikin÷je
mikrobiologijoje. Šios gram-neigiamos lazdel÷s paprastai siejamos su virškinamojo trakto
infekcijomis, bet jos taip pat yra paplitusios ir aplinkoje, kaip normali mikroflora. Ši
Enterobacteriaceae šeima apima Enterobacter, Escherichia coli, Klebsiella, Morganella,
Proteus, Providencia, Salmonella, Serratia, Shigella, Yersinia, Edwardsiella ir Citrobacter
gentis. Visos šios šeimos nar÷s yra gliukoz÷s fermentuotojos ir azoto mažintojos
(http://www.merck.com/mmhe/sec17/ch190/ch190h.html).
Kiekviename žingsnyje žmogus susiduria su mus supančia mikropasaulio veikla.
Mikroorganizmai įtakoja ne tik geruosius ar bloguosius procesus žmogaus organizme, gamtoje,
bet yra ir labai svarbus veiksnys daugelio produktų gamyboje. Besivystantys mikroorganizmai
fermentiniuose sūriuose lemia ne tik jų tinkamumą vartoti, bet ir skonį bei aromatą.
Mikroorganizmai, dalyvaujantys į sūrių brandinime, gamina įvairius lakius komponentus, kurie
suteikia būdingą aromatą ir skonį – tai nulemia tokią sūrių įvairovę.
Darbo tikslai ir uždaviniai. Mūsų tyrimų tikslas - nustatyti mikroorganizmų sąveikos
ypatumus portugališkų fermentinių sūrių brandinimo metu. Tikslui pasiekti buvo numatyti šie
uždaviniai:
• Steb÷ti besivystančių mikroorganizmų kaitą Serra da Estrela ir Serpa
portugališkuose sūriuose.
• Atlikti juslinę sūrių analizę įvairiais sūrių subrendimo tarpsniais.
• Nustatyti, kokią įtaką mikroorganizmai daro sūrio kokybei.
• Išskirti pienarūgštes bakterijas, stipriausiai įtakojusias Seratia sp., L. inoccua,
E. coli ir S. aureus veiklą.
• Tirti, kokia chemin÷ medžiaga baktericidiškai ar bakteriostatiškai veik÷
patogenų veiklą.
9
1. LITERATŪROS APŽVALGA
1.1 Pienarūgščių bakterijų charakteristika
Pienarūgšt÷s bakterijos (PRB) yra vienos iš geriausiai žinomų ir ištyrin÷tų antagonistinių
mikrobų. PRB yra gram-teigiami, sporų nesudarantys, katalaz÷s - neigiamos reakcijos
mikroorganizmai. Jos yra anaerobin÷s, tačiau toleruoja deguonį, rūgštį ir sukelia rūgimą. Pieno
rūgštis yra pagrindin÷ galutin÷ angliavandenių fermentacijos metu išskirta medžiaga. Pieno
rūgštį gaminančios bakterijos apima Lactobacillus, Bifidobacterium gentis, Enterococcus
feacalis, Enterococcus feacium, Lactococcus lactis, Streptococcus cricetus, Leuconostoc
mesenteroides, Pediococcus acidilactici, Sporolactobacillus inulinus, Streptococcus
thermophilus ir kitas. Visos išvardintos rūšys išskyria baltymines medžiagas, vadinamas
bakteriocinais. Pastaruoju metu bakteriocinai naudojami pieno, m÷sos ir kitų produktų gamyboje.
Pieno rūgštį gaminančios bakterijos maisto gaminime atlieka ne tik apsauginę funkciją, jų veikla
suteikia maistui išskirtinį kvapą, skonį bei konsistenciją (Line ir kt., 2008).
Skirtingose terp÷se, pvz., tokiose kaip žarnynas, pienarūgšt÷s bakterijos (PRB) gamina įvairių
antimikrobinių medžiagų: organines rūgštis, bakteriocinus ir t.t. PRB, tinkamu kiekiu
pasiskirsčiusios organizme ir teigiamai veikiančios šeimininką, priskiriamos probiotikams
(Sigrid ir kt., 2006). Probiotikais vadinami gyvi mikroorganizmai, kurių tam tikras kiekis
organizme yra naudingas sveikatai. Jie tapo svarbiausia tema PRB tyrin÷jime per pastaruosius 10
m. Tipiškais probiotikais galima įvardinti Lactobacillus ir Bifidobacterium gentis. Naudingas
probiotikų poveikis pagrįstas tuo, kad šie mikroorganizmai apima tokių patogenų slopinimą, kaip
Salmonella spp., Shigella spp., Pseudomonas spp. ir Helicobacter spp. Be to, buvo pasteb÷tas
kitas teigiamas probiotikų poveikis organizmui: maž÷ja laktoz÷s netoleravimas, slopina alergines
ligas, stiprina imuninę sistemą, pasireiškia priešv÷žinis poveikis ir veikia kaip prevencin÷
priemon÷ prieš uždegimines žarnų ligas (Zoumpopoulou ir kt., 2008). Pasteb÷ta, kad probiotikai
teigiamai įtakoja sveikatą, tačiau mažai žinoma, kas lemia pager÷jusią savijautą. Probiotikų
veikimas priklauso nuo pačio probiotiko paderm÷s ir aplinkos sąlygų. Jų veikimas priklauso nuo
pagaminamos antimikrobin÷s medžiagos, konkuravimo d÷l maisto medžiagų, konkurencin÷s
sąveikos su patogenais ir sukeltos imunin÷s sistemos moduliacijos (Todorov ir kt., 2005; Albano
ir kt., 2007).
10
1.2 Pienarūgščių bakterijų reikšm÷ sūrių gamyboje
Pienarūgšt÷s bakterijos sūrių gamyboje atlieka šias funkcijas:
• Keičia pagrindinius pieno komponentus (pieno cukrų, baltymus, riebalus) į
junginius, lemiančius skonines ir aromatines sūrių savybes, jų maistinę ir
biologinę vertę;
• Skatina šliužo ir kt. pieną traukinančių fermentų veiklą ir sutraukos sinerezę, nes
perstumia pH reikšmę į sritį, kurioje šliužo fermentas geriausiai veikia;
• Dalyvauja sūrio konsistencijos susidarymo ir išakijimo procesuose;
• Sudaro nepalankias sąlygas žalingai mikrobiotai vystytis (Albano ir kt., 2007).
Tuo pačiu skaidomi pieno riebalai, kurių hidroliz÷s produktai yra svarbūs sūrio skoniui,
aromatui ir konsistencijai susidaryti.
1890 m E. Freudenreichas nurod÷, kad sūrių brendimui pagrindinę reikšmę turi pieno
rūgšties bakterijos. Kiti autoriai kritikavo tokią mokslininko pažiūrą, nurodydami, kad pieno
rūgšties bakterijos neturi proteolizinių fermentų, kurie gal÷tų skaldyti baltymus. V÷liau buvo
nustatyta, kad pieno rūgšties bakterijos turi proteolizinių endofermentų, kurie, žuvus ląstelei,
išsiskiria į aplinką ir hidrolizuoja baltymus.
Nokinimo metu susidariusios laisvosios aminorūgštys suteikia sūriui būdingų juslinių
savybių. Be to, bakterijų fermentų veikiamos aminorūgštys kinta toliau ir sudaro įvairių junginių,
kurie taip pat turi nemažą įtaką sūrių kokybei. Ypač aktyviai aminorūgštis skaido endofermentai,
kurie išsiskyria autolizuojantis bakterijoms. Tiek pienarūgščių, tiek kitų mikroorganizmų
fermentų veikiamos aminorūgštys gali deaminintis, dekarboksilintis, dalyvauti peramininimo
reakcijose. Šių kitimų produktai – organin÷s rūgštys, amoniakas, aldehidai, ketonai, aminai –
svarbūs sūrių skonį ir aromatą formuojantys junginiai (Masteikien÷, 2006);
Daugelio sūrių ydų atsiradimo priežastis yra mikrobiologin÷s kilm÷s (Macedo, 1993).
Svarbiausi sūrių ydų suk÷l÷jai yra koliformin÷s, sviestarūgšt÷s, psichrotrofin÷s, proteolitin÷s
bakterijos, miel÷s ir pel÷siniai grybai. Didel÷ pašalinių mikroorganizmų dalis žūva pasterizuojant
pieną, tačiau jie gali patekti į sūrius antrinio užteršimo metu – nuo įrenginių, darbuotojų rankų ir
rūbų, vandens ir iš oro (Roseiro ir kt., 2003).
Psichrotrofin÷s bakterijos – tai daugiausia gram - neigiamos, porų nesudarančios lazdel÷s,
kurios vyrauja piene d÷l nepakankamos įrenginių švaros ir vandens patekimo į pieną.
11
Psichrotrofų išskiriami fermentai termostabilūs ir tod÷l gali tur÷ti įtakos sūrių kokybei. Šių
bakterijų augimas sūriuose, kaip ir kitų technologiškai žalingų mikroorganizmų (koliforminių,
sporinių anaerobinių), priklauso nuo pienarūgščio rūgimo aktyvumo, psichrotrofų, kaip ir
koliforminių bakterijų, randama mažiau (Rizzello ir kt., 2005).
Patekę į sūrius, pašaliniai mikroorganizmai dauginasi ir gali sukelti skonio ir kvapo,
konsistencijos ir išakijimo ydas (Tavaria ir kt., 1999). Sūriuose gali pasitaikyti ir patogeninių
bakterijų. Jos patenka į sūrius iš pieno, kai jis pasterizuojamas žemesn÷je kaip 74°C
temperatūroje. Be to, stafilokokai gali išlaikyti ir aukštą pasterizavimo temperatūrą. Tačiau
dauguma besporių patogeninių bakterijų ilgo nokinimo metu (kieti sūriai) žūva, o minkštuose
sūriuose neišsilaiko d÷l rūgštaus pH, nors pasitaiko Listeria monocytogenes bakterijų. Jas
sunaikinti galima kruopščiai dezinfekavus visus įrenginius (Masteikien÷, 2006).
1.3 Pienarūgščių bakterijų antibakterinis pritaikymas
Susidom÷jimas pienarūgšt÷mis bakterijomis auga, tiriamas jų geb÷jimas būti natūraliais
konservantais maisto pramon÷je. PRB medžiagų apykaitos metu išskiriamos antimikrobinį
aktyvumą turinčios medžiagos - organin÷s rūgštys (pieno r., acto r. ir pan.), vandenilio
peroksidas, antimikrobiniai fermentai, bakteriocinai, reuterinai ir kt. (Albano ir kt., 2007).
Dauguma PRB yra aktyvios prieš PRB ir kitas gram-teigiamas bakterijas. Bakterijų išskiriami
bakteriocinai dažnai yra aktyvesni prieš bakterijas, kurios yra genetiškai artimesn÷s bakteriociną
išskyrusiai padermei (Line ir kt., 2008, Ralph ir kt., 1995). Yra daugyb÷ straipsnių, kuriuose
teigiama, kad bakteriocinai gali būti aktyvūs ir prieš gram-teigiamas, ir prieš gram-neigiamas
bakterijas (Todorov ir kt., 2005; Oscariz, Pisabarro, 2001; Oh ir kt., 2000, Maldonado ir kt.,
2004).
Pastaraisiais metais buvo pagrįstas bakteriocinų, kaip bio-konservantų, naudojimas
maisto pramon÷je. Labai s÷kmingai buvo panaudoti tam tikri bakteriocinai įvairiame maiste L.
monocytogenes slopinimui, pvz. Nizinas - Kamemberto sūryje. Jis Listeria monocytogenes
sumažino 3x3 log grame, o paruoštose valgymui Cezario salotose 1x4 log ir panašiai. Daugelyje
straipsnių stebimas ženklus Listeria monocytogenes bakterijų sumaž÷jimas maiste, panaudojus
PRB išskiriamus bakteriocinus, tokius kaip: nizinas, pediocinas PA-1, lakticinas3147
(O`Sullivan ir kt., 2006). Bakteriocinais domimasi ir kaip farmaciniais preparatais. Šioje srityje
pagrindinis bakteriocinų panaudojimo privalumas gal÷tų būti jų saugumas organizmui (Sine´,
2007; http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC429093/?page=2).
12
1.4 Bakteriocinų apžvalga
Bakteriocinai yra ribosomose sintetinamos antimikrobin÷s baltymin÷s medžiagos,
gaminamos daugelio mikroorganizmų. Dauguma bakteriocinų yra mažos molekulin÷s mas÷s,
aktyvios katijonin÷s membranos komponentai. Jų peptidai formuoja membranose poras,
sukeldami ląstelių žūtį. Toks apsisaugojimo mechanizmas, kada ląstel÷s išskiria katijoninius
peptidus gynybos tikslams, yra aptiktas ir augaluose bei gyvūnuose. Įvairūs autoriai pateikia šiek
tiek skirtingas bakteriocinų klasifikacijas
(http://www.answers.com/topic/bacteriocin; http://en.wikipedia.org/wiki/Antimicrobial_peptides;
http://www.teagasc.ie/research/reports/dairyproduction/4207/eopr-4207.asp;
http://cmdr.ubc.ca/bobh/peptides.html).
Antagonistin÷ sąveika tarp konkuruojančių bakterijų pasteb÷ta jau 1877 metais, kuomet
Pasteras ir Joubertas atkreip÷ d÷mesį, kad kai kurios Escherichia coli atmainos trukdo augti
Bacillus anthracis abiejomis bakterijomis užkr÷stuose gyvūnuose, tačiau bakteriocinai pirmą
kartą buvo aptikti tik 1925 m. Andre Gratia pasteb÷jo, kad kai kurių virulentiškų E. coli štamų
veiklą stabdo viena antibakterin÷ medžiaga, kurią jis pavadino kolicinu V. V÷liau kolicinas V
buvo apibūdintas, kaip atspari karščiui baltymin÷ medžiaga. 1954 m. Piero Frederiko pasteb÷jo
bakteriocinų genetinio gyvavimo mechanizmą, panašų į ląstelių lytinį dauginimąsi. Reikšmingos
apsaugin÷s antimikrobin÷s peptidų savyb÷s pasireiškia d÷l juose esančios išskirtin÷s
aminorūgščių sekos. Daugelį bakteriocinų galime apibūdinti kaip mažos molekulin÷s mas÷s,
katijonines, hidrofobines, karščiui atsparias baltymines medžiagas. Visi jie yra koduoti
struktūrinių genų, kurie laisvas aminorūgštis ribosomose transliuoja į peptidus (Oscariz,
Pisabarro, 2001; Michaelidou ir kt., 1998).
Antimikrobiniai peptidai, išskirti bakterijų, buvo sugrupuoti į kelias skirtingas klases,
atsižvelgiant į molekulinį dydį, peptidą išskiriantį organizmą, cheminę struktūrą ir jo veikimo
metodą. D÷l skirtingų klasifikacijų atsirado ir keletas skirtingų antimikrobinių peptidų
pavadinimų, tokių kaip: mikrocinai, kolicinai, bakteriocinai, lantibiotikai, tiolbiotikai,
cystibiotikai, kurie gali skirtingose klasifikacijose tur÷ti kitokį pavadinimą (Jack ir kt., 1996).
1.5 Bakteriocinų klasifikacija
Gram-teigiamų bakterijų išskiriamoms skirtingoms antimikrobin÷ms medžiagoms
sugrupuoti buvo panaudota keletas klasifikavimo kriterijų. Bakteriocinai buvo sugrupuoti į 4
13
grupes: 1 grupei priklauso antibiotikai su neįprastomis, po transliacijos pakeistomis,
aminorūgštimis, tokiomis kaip dehidroalaninas, dehidrobutirinas, lantioninas, ar β-metil-
lantioninas (lantibiotikai). 2 grup÷s antibiotikai (cystobiotikai) savo sud÷tyje turi nors vieną
disulfidinį (S-S) tiltelį – pagrindinį veiksnį, lemiantį jų veiklą. 3 grupei priklauso dariniai savo
struktūroje turintys vieną SH radikalą. Kad antibiotikai veiktų, jie tur÷tų būti redukuotoje
formoje (tiolbiotikai). 4 grupei priklauso antibiotikai be cisteino radikalo (Jack ir kt., 1995;
Abee, 1995).
Tikrasis cisteino radikalo poveikis bakteriocino aktyvumui n÷ra galutinai aiškus, tačiau
yra nustatyta, kad kuo daugiau disulfidinių tiltelių bakteriocinas turi, tuo platesnis jo veikimo
spektras (Oscariz, Pisabarro, 2001).
Daugiausia nagrin÷ti ir ištirti pienarūgščių bakterijų išskiriami bakteriocinai, d÷l jų
galimo panaudojimo kaip maisto biokonservantų ir d÷l vis dažn÷jančių maisto sukeltų infekcinių
ligų (Michaelidou ir kt., 1998).
Remiantis Klaenhammeriu, bakteriocinai gali būti skirstomi į 4 kategorijas, atsižvelgiant į
jų molekulinę masę, termostabilumą, jautrumą fermentams, po transliacijos pasikeitusias
aminorūgštis ir veikimo metodą (Oscariz, Pisabarro, 2001).
1.5.1 I bakteriocinų kategorija
Ši grup÷ susideda iš lantibiotikų ir gali būti padalinta į 2 pogrupius, atsižvelgiant į jų
struktūrą ir elementą, lemiantį jų aktyvumą.
Ia – maži katijoniniai peptidai esti sraigto formos, amfipatiniai, jų veikimas priklauso nuo
sukuriamo elektinio lauko tarp lastelių membranos taikinių ir bakteriocino. D÷l nenustatytos
sąveikos su ląstel÷mis taikiniais sudaro poras, sukurdami įtampą ląstelių membranose.
Ib – susideda iš anijoninių arba rutuliškos formos neutralių peptidų. Šio pogrupio
bakteriocinų molekulin÷ mas÷ apima ribas nuo 1,959 (duramicinas) iki 4,635 (didžiausias iki šiol
aprašytas lantibiotikas karnocinas UI49) (Maragkoudakis ir kt., 2009; Oscariz, Pisabarro, 2001).
1.5.2 II bakteriocinų kategorija
Šis tipas apima karščiui atsparius peptidus, sudarytus iš nemodifikuotų aminorūgščių,
kurių molekulin÷ mas÷ mažesn÷ už 10 kDa. Šios grup÷s bakteriocinai yra skirstomi į dar 3
pogrupius:
II a pogrupiui priklauso anti-listeriniai peptidai, tokie bakteriocinai kaip: pediocinas
AcH/PA1, mesentericinas Y 105, sakacinas A, sakacinas P ir karnobakteriocinas B2. Šie
14
komponentai yra baktericidiniai, nes jie sugriauna citoplazmos membranos vientisumą, sukelia
joninį disbalancą ir organinio fosfato pralaidumą, taip sukeldami ląstel÷s žūtį.
II b grupei priklauso poras formuojantys bakteriocinų kompleksai, kurie susideda iš 2
peptidų. Šie du peptidai gali veikti ir po vieną, tačiau jų kompleksas veikia sinergetiškai (pvz.:
enterocinas L50A ir L50B).
II c grupei priklauso 2 bakteriocinų tipai: antibiotikai su 1 ar 2 cisteino radikalais
(tiolbiotikai ir cystibiotikai) ir antibiotikai be cisteino (laktokocinas A ir acidocinas B) (Jack ir
kt., 1996; Oscariz, Pisabarro, 2001).
1.5.3 III bakteriocinų kategorija
Šiai klasei priklauso peptidiniai antibiotikai, kurie yra karščiui neatsparūs, jų molekulin÷
mas÷ yra didesn÷ nei 30 kDa. Daugelis jų yra gaminami Lactobacillus genties bakterijų. Šiai
bakteriocinų grupei priklauso helveticinas J sintetinamas L. helveticus 481 ir lacticinas B
gaminamas L. acidophilus (Gottlieb ir kt., 2008).
1.5.4 IV bakteriocinų kategorija
Šiai grupei priklauso glikoproteinai (laktocinas 27) arba lipoproteinai (lakstrepcinai),
kurių aktyvumas priklauso nuo nebaltymin÷s bakteriocino dalies, t.y. nuo prie baltymo
prisijungusių oligosacharidų ar lipidų (Oscariz, Pisabarro, 2001).
1.5.5 Gram-neigiamų bakterijų išskiriami bakteriocinai
Mokslininkai Kolter ir Moreno daugiausia dom÷josi bakteriocinais, išskiriamais iš gram-
neigiamų bakterijų. Kolicinai ir mikrocinai buvo lengvai apibūdinti d÷l mažos molekulin÷s
mas÷s, mikrocinai mažesni nei 10 kDa, o kolicinai vos didesni. Kolicinai ir mikrocinai yra
sintetinami Enterobacteriaceae šeimos bakterijų ir slopina, būtent, gram-neigiamų
mikroorganizmų veiklą. Pirmasis atrastas bakteriocinas - kolicinas yra apibr÷žiamas, kaip siauro
spektro antibiotikas, kurio bakteriocidinis aktyvumas atsiskleidžia, sąveikaujant su specifiniais
ląstelių membranose esančiais receptoriais. Kai kurie bakteriocinai yra labai saviti, nes jų sintez÷
yra kontroliuojama SOS-signalui pavaldaus mechanizmo, kuris įtraukia ir bakteriociną
išskyrusios ląstel÷s susinaikinimą. Mikrocinai turi daug panašumų su II kategorijos
bakteriocinais: jų molekulin÷ mas÷ mažesn÷ nei 10 kDa, jie sintetinami stacionariosios faz÷s
metu ir neturi nelaim÷s signalo. Turintys būdingiausius bruožus šios rūšies bakteriocinai yra 2:
kolicinas V, pats pirmasis aprašytas bakteriocinas, nes jo molekulin÷ mas÷ yra apie 6 kDa ir
15
mikrocinas C7, modifikuotas heptapeptidas, kuris yra laikomas mažiausiu iki šiol aprašytu
antibakteriniu peptide (Fahimdokht, 2008; Oscariz, Pisabarro, 2001; Charles M. ir kt., 2007).
1.6 Bakteriocinų chemin÷s ir fizikin÷s savyb÷s
Letalinei misijai įgyvendinti, I ir II kategorijoms priklausantys bakteriocinai turi atitikti 2
pagrindinius reikalavimus - būti katijoniniai ir stipriai hidrofobiniai. Dauguma mažos
molekulin÷s mas÷s bakteriocinų yra veiklūs gana plačiose terp÷s pH r÷muose (3.0-9.0) ir kurį
laiką gali nesuirti tokiose ekstremaliose pH reikšm÷se kaip pH 1.0 (acidocinas B) arba pH 11.0
(bavaricinas A). Pasteb÷ta, kad beveik visi bakteriocinai yra katijoniniai prie pH 7.0, kol kas tik
laktocinas S išimtinai buvo pasteb÷tas neutraliame pH, turintis -1 joninį krūvį. Dar vienas ryškus
mažos molekulin÷s mas÷s antimikrobinių peptidų bruožas yra jų atsparumas karščiui. Junginiai,
susidedantys iš monosulfidų ir disulfidų tarpmembraninių jungčių, padeda stabilizuoti baltymus
(entropinis efektas). Žvelgiant į bakteriocinų molekulinę sud÷tį, tarpmolekulinių tiltelių
efektyvumas priklauso nuo jų kiekio. Kuo didesnis jų skaičius bakteriocine, tuo didesnis peptido
stabilumas. Cintas ir kt. (Cintas ir kt., 1995) ištyr÷, kad dauguma supernatantinių bakteriocinų
struktūrų, sujungtų tokiais tilteliais, yra atsparios karščiui - net autoklavavimui (100-121ºC).
Žinoma, kai kurie bakteriocinai išskirti Lactobacillus genties (helveticinas J) buvo inaktyvuoti
10-15min pakaitinus 60-100ºC. Bakteriocinai gali būti nesunkiai atkurti ne vien iš klasikinių
bakterijų kultūrų, bet taip pat ir iš ryžių luobel÷s pelenų. Iš jų rūgštimi buvo išskirtas pediocinas
PA-1.
Daugiausia išstudijuotas bakteriocinas – nizinas, atrastas 1928 m. Jis gaminamas
Lactococcus lactis ir susideda iš 34 aminorūgščių, turi 5 lantionino tiltus. Nizino stabilumas labai
priklauso nuo pH ir temperatūros santykio. Prie pH 2.0 nizinas yra tirpus, antimikrobiškai
aktyvus ir termostabilus (išliko aktyvus 10 min kaitinant 100ºC temperatūroje). Tačiau nesunkiai
neutralizuojamas prie pH 7.0. D÷l nizino jautrumo virškinimo fermentams jo nebuvo galima
panaudoti klinikin÷je praktikoje, bet jis s÷kmingai pritaikytas kaip maisto konservantas (E-234)
(Barnby-Smith, 1992; Aly ir kt., 2006).
1.7 Bakteriocinų veikimo būdas
D÷l įvairios bakteriocinų chemin÷s struktūros jie paveikia skirtingas ląstelių būtinąsias
funkcijas (transkripciją, transliaciją, replikaciją ir ląstel÷s sienel÷s biosintezę), tačiau dauguma jų
veikia formuodami ląstelių membranose kanalus ar poras, taip sunaikindami ląsteles
(Benkerroum ir kt., 2000).
16
Nizinas (pagal Klaenhammerį priskiriamas grupei Ia) yra bakteriocinas, kurio veikimo
mechanizmas buvo geriausiai išnagrin÷tas. Šis katijoninis lantabiotikas siejasi elektrostatiškai su
neigiamo membranos krūvio fosfolipidais. Lizinas yra katijonin÷ aminorūgštis, dalyvaujanti šioje
elektrostatin÷je sąveikoje. Tarp hidrofobin÷s nizino dalies ir bakterijos membranos taikinio yra
sukuriamas nespecifinis joninis kanalas, kurio formavimui padeda aukštas transmembraninis
potencialas ir anijoninių lipidų buvimas, esant mažesniam kiekiui katijoninių. Porų formavimas
maž÷ja, esant dvivalenčiams katijonams (Mg2+ ar Ca2+), nes jie neutralizuoja fosfolipidų
neigiamą krūvį, sumažindami membranos nestabilumą. Nizino sukurtos poros membranoje
leidžia vykti pasyviai jonų difuzijai (K+ ir Mg2+), aminorūgščių (glutaminui, lizinui) ir ATP, bet
ne dideliems citoplazminiams proteinams, lengvai pasiduodantiems membranos paj÷gumo ir
protonų siurblio išeikvojimui, po ko įvyksta ląstel÷s žūtis (Oscariz, Pisabarro, 2001).
II a klas÷s bakteriocinų veikimo schema yra panaši į nizino. Šios klas÷s bakteriocinai yra
antilisteriniai, atsižvelgiant į YGNGV eil÷s tvarką aminorūgšties N-gale. Dabartin÷ šio
bakteriocino veikimo mechanizmo hipotez÷ yra jo elektrostatinis apvadas, sąveikaujantis su
ląstelių membranos taikiniais – receptorin÷m molekul÷m, nors, šių specifinių receptorių
svarbumas dar yra ginčytinas. Sp÷jami ląstelių receptoriai būtų reikalingi, atpažįstant peptide
esantį YGNGV antilisterinį motyvą (Ennahar ir kt., 2000).
Pagal Klaenhammerio bakteriocinų klasifikavimą IIc pogrupis gali būti padalintas į dar 2
dalis, priklausomai nuo to, juose yra ar n÷ra tarpmolekulinių disulfido tiltelių. IIc pogrupio abiejų
dalių veikimas gali ženkliai skirtis. Laktokocinas A (šis bakteriocinas yra be cisteino radikalo)
veikia bakterijos membraną, formuodamas joje poras. Cereino 7/8 (cystibiotiko) aktyvumas
maž÷ja, kuomet jį supančios terp÷s osmosinis sl÷gis did÷ja. Kaip ir įprasta bakteriocinams, šis
taip pat veikia ląstel÷s membraną. Platus šių junginių veikimo spektras leidžia daryti prielaidą,
kad membranos išor÷je esantys specifiniai receptoriai n÷ra būtini. Visoje II c klas÷je yra
teigiamai įkrautos aminorūgštys. Triptofanas hidrofiliniame N-gale gali palengvinti neįprastą
sąveiką su neigiamai įkrautais fosfolipidais ląstelių membranos taikiniuose, be to, sulygina
tarpmembranines poras. Cereino 8 atveju 3 triptofano liekanos ir 1 lizino liekana lokalizuojasi
aštuntame amino rugšties N – gale ir skatina statybinę funkciją. Šis galas seka paskui stipriai
hidrofobinę C galo dalį, kuri gali dalyvauti formuojant transmembranines poras panašiu būdu,
kuriuo veikia Pediocinas PA1 (II a klas÷). Cystibiotikai priklausantys II c klasei (cereinas 7/8,
enterocinas B, karnobakteriocinas A ir divergicinas A) tur÷tų būti antrin÷s stukrūros, kuriai
17
būdinga ilga kilpa, užimanti beveik visą hidrofobinę dalį. Visose klas÷se pirmas cysteino
radikalas yra po teigiamai įkrautu lizino radikalu hidrofobinio ploto gale ir antrasis radikalas
trečioje paskutin÷s eil÷s pozicijoje. Disulfido tiltai, kurie būtini antibakteriniam bakteriocino
poveikiui, tur÷tų glaustis su proteino C galo dalimi, su kompaktiška hidrofobine struktūra,
praturtinta glicino radikalais, kurie yra stuktūriškai lankstūs. Toks lankstumas sudaro galimybę
molekul÷ms pereiti iš β formos į α formą, atsakingą už hidrofobiškumą aplinkai. Hidrofobin÷s
kilpos ilgio užtenka prasiskverbti pro citoplazmos membraną ir, susitelkus daugiau tokių kilpų,
padaryti mirtiną porą membranoje (Ennahar ir kt. 2000; Yanagida ir kt., 2005; Oscariz,
Pisabarro, 2001; Fayol-Messaoudi ir kt., 2005;Fahimdokht, 2008).
18
2. TYRIMŲ METODAI IR SĄLYGOS
2.1 Tyrimų vykdymo vieta
Tyrimai buvo atliekami Portugalijoje, Porto miesto Katalikiškojo Biotechnologijos
Universiteto mikrobiologijos laboratorijoje. Toliau tyrimas buvo tęsiamas Portugalijos Idanha a
Nova kaimelyje, sūrių fabrike, ir Lisabonos mieste, Lisabonos Universitete.
2.2 Tyrimų objektai
Tyrimų objektai: Sera da Estrella, Serpa ir jiems analogiški tradiciniai portugališki sūriai;
pienarūgšt÷s bakterijos, jų išskiriamos antimikrobin÷s medžiagos.
2.3 Serra da Estrela ir Serpa sūrių gamybos technologija
Serra da Estrela ir Serpa sūriai buvo tiriami nuo 1 iki 60
sunokimo dienos. Abiejų sūrių gaminimo technologija yra labai
panaši. Žalias avių pienas gamybos metu sutraukinamas Cynara
cardunculus L. (žr. 2.3.2 pav.) ekstraktu 30°C temperatūroje. Po
pieno koaguliacijos (nustatoma iš akies) jis yra supjaustomas
nevienodų formų gabalais, kurie perpilami į r÷tį, kad nuvarv÷tų
išrūgos. Galiausiai yra įtrinama druska abiejose sūrio pus÷se ir
sūris paliekamas 30-45 dienoms nokti be temperatūros ar dr÷gm÷s
kontrol÷s (žr 2.3.1 pav.). Brandinimo metu sūriai yra kasdien
apverčiami, o plaunami šiltu vandeniu kartą per savaitę.
2.4 Tyrimų metodai
2.4.1 Chemin÷ analiz÷ – rūgštingumo nustatymas
Rūgštingumas yra rodiklis, kuris priklauso nuo sūryje
esančių baltymų savybių, baltymų kiekio sūryje, sūrio rūgšties kiekio, sūryje esančių druskų
(rūgštinių ar šarminių) savybių ir jų kiekio. Rūgštingumas yra nustatomas titravimo bei
indikatorinių popier÷lių (ekspres) metodais ir matuojamas pH – metru. Naudojant titravimo ar
indikatorinių popier÷lių metodus, rūgštingumas išreiškiamas Ternerio laipsniais (°T) arba pieno
rūgšties procentais. Naudojant pH-metrą, nustatomas aktyvusis sūrio rūgštingumas. Jis parodo
vandenilio jonų koncentraciją sūryje ir išreiškiamas pH dydžiu.
2.3.2 pav. Cynara Cardunculus L.
2.3.1pav. Sūriai nokinimo metu
19
2.4.1.1 Sūrio titruojamojo rūgštingumo nustatymas
Metodo esm÷. Šiuo metodu nustatomas bendras sūrio
rūgštingumas. Natrio hidroksido tirpalu, naudojant indikatorių
fenolftaleiną, neutralizuojamos laisvosios rūgštys, rūgščiosios
druskos, laisvosios baltymų rūgštin÷s grup÷s ir sūryje ištirpęs CO2
(žr. 2.4.1.1 pav).
2.4.1.2 Sūrio aktyviojo rūgštingumo (pH) nustatymas
Sūrio aktyvusis rūgštingumas yra laisvųjų vandenilio
jonų koncentracija, išreikšta neigiamu logaritmu ir žymima pH
vienetais. Sūrio aktyvusis rūgštingumas matuojamas pH-metru
(žr. 2.4.1.2 pav.).
2.4.2 Juslin÷ analiz÷
Juslin÷ analiz÷ – tai produktų organoleptinių savybių
tyrimas jutimo organais. Juslin÷s analiz÷s laboratorija (žr. 2.4.2.1
pav.) turi atitikti bendruosius reikalavimus:
• Laboratorijai geriausiai tinka pastovaus ir
vienodo intensyvumo dienos apšvietimas.
• Pagalbin÷s vietos m÷giniams ruošti ir plauti
indams turi būti izoliuotos nuo vietos, kurioje atliekama juslin÷
analiz÷.
• M÷ginius analizei reikia pateikti šviesiuose
induose, kad nebūtų blaškomas vertintojų d÷mesys.
• Laboratorijoje turi būti prietaisai, rodantys
patalpos santykinę oro dr÷gmę ir temperatūrą.
Kiekvienas juslinio vertinimo dalyvis vadinamas
vertintoju (Gudonis, 2004).
Serra da Estrela ir Serpa sūrių juslin÷ analiz÷ buvo
atliekama pagal 2.4.2.2 pav. pavaizduota schemą.
2.4.1.1pav. Sūrio titruojamojo rūgštingumo nustatymas
2.4.1.2pav. Sūrio aktyviojo rūgštingumo nustatymas
2.4.2.1 pav. Juslin÷s analiz÷s laboratorijų pavyzdžiai
20
2.4.2.2 pav. Juslin÷s analiz÷s atlikimo schema Serra da Esrela ir Serpa sūriams
Vienuolikos atrinktų ir apmokytų vertintojų grup÷ atliko juslinę analizę. Vertintojai buvo
atrinkti, atsižvelgiant į jų juslinius geb÷jimus. Kandidatų atrankai buvo naudojami šie testai:
ageuzijos (nepilnai išvystytų skonio dirgiklių) nustatymo testas ir anosmijos (nepilnai išvystytų
uosl÷s dirgiklių) nustatymo testas. Dalyviai buvo apmokomi atlikti standartinį kvapų nustatymą
tam, kad jutimų organai priprastų prie pieno produktų juslinių savybių. Buvo paruoštas šešiolikos
įprastų pieno produktų kvapų sąrašas. Juslin÷s analiz÷s dalyviai per kelias nuoseklias sesijas
tur÷jo atlikti Serra da Estrela ir Serpa sūrių analizę. Šių regionų sūriai buvo pateikti nuo 1 iki 60-
tos subrendimo dienos iš dviejų pieninių. Susitelkę ties kvapų sąrašu, vertintojai tur÷jo
identifikuoti ir išmatuoti pagrindinius sūrių aromatus. Kiekvienas iš analizuotojų uost÷
pavyzdžius, išmatavo ir vertino skaičiais nuo 0 iki 7 . Čia 0 reiškia, kad toks aromatas visai
nejaučiamas, o 7 – labai stiprus kvapas.
Vertintojų atranka juslinei analizei atlikti
Jutimų lavinimas
Juslinių rodiklių sąrašo sudarymas
Juslin÷ analiz÷
Pieno produktų pavyzdžiai
21
2.4.3 Mikrobiologinis tyrimas
Buvo tirti portugališki Serpa ir Serra da Estrela sūriai jų
nokinimo metu. Brandinimo trukm÷ tęs÷si iki 60 dienų. Per šį
laikotarpį buvo stebimas mikroorganizmų vystymasis, kiekis ir
skirtumai abiejuose sūriuose. Atskirais brandinimo tarpsniais buvo
skaičiuojamas atskirų mikroorganizmų kiekis. Steb÷jome:
• Bendrą mikroorganizmų kiekį sūryje;
• Koliforminių bakterijų kiekį;
• Pieno rūgšties bakterijas: Lactobacillus spp.,
Lactococcus spp., Enterococcus spp. ir Leuconostoc spp.;
• Pseudomonas spp.;
• Staphylococcus spp.;
• Mieles ir pel÷sinius grybus.
1, 7, 15, 30, 45 ir 60 sunokimo dieną buvo paimti pasirinktų
Serra da Estrela ir Serpa sūrių pavyzdžiai. Pašalinama žiev÷, tada
atpjaunama plona riek÷ sūrio iš giliausių jo sluoksnių, po to iš
vidutinio gilumo ir, galiausiai, atriekiama sūrio skiltel÷, esanti
arčiausiai krašto. Visų šių trijų skiltelių bendra mas÷ tur÷tų būti apie
10 g. Jos įdedamos į vienkartinį plastikinį maišelį kartu su 2 % (w/v)
natrio citratu (90 g), kuris naudojamas, kaip ekstrahuojantis buferinis
tirpalas, ir 2 min homogenizuojamos Stomacher Lab-Blender 400 (žr.
2.4.3.1 pav.). Po to, pipete paimamas 1ml taip apdoroto sūrio ir dar 10 kartų praskiedžiamas
steriliame 0,1 % (w/v) peptoninio vandens tirpale. Tada skiedinys yra pas÷jamas ant keleto
skirtingų terpių (žr. 2.4.3.2 pav.): PCA – Plate Count Agar, mitybos terp÷ bendram
mikroorganizmų skaičiui nustatyti (pagal LST EN ISO 4833); VRTL – violetiškai raudonas
tulžies ir laktoz÷s agaras, mitybos terp÷ koliformin÷ms (Enterobacteriaceae) bakterijoms
nustatyti (pagal LST ISO 5541 – 1); RA – Rogoso agaras, parūgštintas ledine acto rūgštimi (96
%) iki pH 5,5. Ši mitybin÷ terp÷ skirta Lactobacillus spp. nustatyti; M17A – M17 agaras
Lactococcus spp. atpažinimui; Mayeux, Sandine ir Elliker Agaras (MSEA) – Leuconostoc spp.;
Kanaycine Azide Agar (KAAA) – Enterococcus spp.; Baird-Parker Agar (BPA), sumaišytas su
50 ml L-1 sterilaus kiaušinio trynio, skirtas Staphylococcus spp. augti; Potato Dextrose Agar
2.4.3.2pav. Petri l÷kštel÷s su įvairiom mitybos terp÷mis mikrobiologinei analizei atlikti
2.4.3.1pav. Stomacher Lab-Blender 400
22
(PDA), prarūgštintas 10 ml L-1 10 % (v/v) sterilia pieno rūgštimi, naudojamas miel÷ms ir
pel÷siniams grybams atpažinti; Pseudomonas Agar Base (PAB), sumaišytas su 10 ml L-1 CFC
priedais, naudojamas Pseudomonas spp. atpažinimui.
2.4.4 Antibakterinio pienarūgščių bakterijų poveikio nustatymas
Antibakteriniam PRB poveikiui nustatyti buvo pasirinkti 4 patogeniniai
mikroorganizmai: 2 gram - teigiami ir 2 gram – neigiami. Visi panaudoti mikroorganizmai buvo
išskirti iš avies ir ožkos pieno, išskyrus referencinius kamienus - Listeria inoccua ATCC 33090
ir Escherichia coli ATCC 8739. Išskirtos mikroorganizmų kultūros buvo užšaldytos
atitinkamame sultinyje, patalpintos į šaldiklį ir laikomos -20ºC temperatūroje. Paruoštos
naudojimui kultūros buvo laikomos 4ºC temperatūroje. Tyrin÷jimams buvo panaudotos lentel÷je
Nr. 2.1 pateiktos bakterijos:
2.1 lentel÷. Tyrimui naudotos indikatorinių mikroorganizmų kultūros
Mikroorganizmai Gauta iš
Serratia sp. “Lauko paderm÷” (iš avies pieno)
Staphylococcus aureus “Lauko paderm÷” (iš avies pieno)
Listeria inoccua Užpatentuotas ATCC 33090 šablonas
Escherichia coli Užpatentuotas ATCC 8739 šablonas
Buvo tiriamas šių tik÷tinų PRB veiksmingumas: Lactococcus spp., Lactobacillus spp. ir
Leuconostoc spp.
2.4.4.1 Aukšto patikimumo atrankos analiz÷ tik÷tinam antimikrobiniam poveikiui
nustatyti
Greitam antimikrobiniam min÷tų bakterijų poveikiui steb÷ti, buvo panaudoti
mikroorganizmai: Serratia spp., Staphylococcus aureus, Listeria inoccua ATCC 33090 ir E. coli
ATCC 8739. Tyrimai atlikti, naudojant aukšto patikimumo atrankos analizę (High Throughput
Screening Assay) Bioscreen C aparatu.
Pasirinkti tyrimui mikroorganizmai buvo auginami TSB (Tryptic Soy Broth) 30ºC temperatūroje
24 val., išskyrus Serratia spp., buvo inkubuojama 25ºC temperatūroje. Bakterijų kolonijos
skaičiuojamos CFC Pseudomonas Selective Agar – Serratia spp., Baird Parker Agar + RPF
priedu - Staphylococcus aureus, Oxoid Chromogenic Listeria Agar - Listeria inoccua
skaičiavimams ir Rapid E.coli Agar 2 - E.coli su būdingu dešimtainiu atskiedimu peptoniniame
23
vandenyje 0,1%. Pieno rūgšties bakterijų (PRB) Lactobacillus ir Leuconostoc gentys buvo
auginamos MRS sultinyje, o Lactococcus genčiai auginti panaudotas M17 sultinys. Abi terp÷s su
mikroorganizmais laikytos 30ºC temperatūros termostate 24 val. – 48 val. PRB kiekiui nustatyti
panaudoti MRS ir M17 agarai.
PRB filtratas išgautas MRS ar M17 sultiniuose, per naktį auginant anksčiau nurodytas
PRB kultūras ir filtruojant jas steriliu “Filtropur S 0,2 µm membrane” filtru. Filtratas buvo
panaudotas aukšto patikimumo atrankos analizei, testuojant jį prieš pasirinktus patogeninius
mikroorganizmus. “Medaus korio” mikrol÷kštel÷s su paruoštomis tikrinimui mikroorganizmų-
filtratų kultūromis buvo inkubuojamos į Bioscreen C aparatą 24-48 val. 30ºC temperatūroje su
l÷kštelių pakratymu ir optinio tirštumo plačiabang÷s OD 450-580nm bangos nustatymu kas 30
min. Antimikrobinis filtratų poveikis buvo matomas d÷l skirtingo mikroorganizmų augimo
kontrolin÷je srityje ir srityje su filtratais. Kiekvienas bandymas buvo atliktas 3 kartus.
2.4.4.2 “Medaus korio” mikrol÷kštel÷s paruošimas tyrimui
Sterili “medaus korio” mikrol÷kštel÷ (žr. 2.4.4.2.1 pav.) su 100 duobučių buvo
paruošiama analizei steriliame laminariume, padalinus jį į 2 dalis, kad vienu metu būtų galima
tikrinti tuos pačius filtratus dviems patogenams. Į Bioscreen C aparatą d÷jome dvi “Medaus
korio” mikrol÷kšteles, kad vienos analiz÷s metu gal÷tume matyti pasirinktų PRB filtratų
aktyvumą visiems keturiems kontroliniams patogenams.
Tuo pat metu gal÷jome išsiaiškinti 10 filtratų aktyvumą
mikroorganizmams. Viena mikrol÷kštelių eil÷ buvo padalinama į 4
dalis. Buvo įpilama 50µl PRB filtrato į 200µl TSB terp÷je per naktį
užaugintų indikatorinių mikroorganizmų. Nuo viršaus į pirmas 3
duobutes įšvirkšdavome 250µl indikatorinių mikroorganizmų, kad
bendras jų kiekis būtų vienodas testuojamose ir kontrolin÷se
duobut÷se. Paskutin÷, 10-oji duobut÷, buvo paliekama, kaip kontrolin÷,
į ją įšvirkščiant 250µl strerilaus TSB.
2.4.4.3 Antimikrobinio poveikio nustatymas Petri l÷kštel÷se
Pienarūgšt÷s bakterijos, kurių filtratai pirmuoju bandymu parod÷ patogenus slopinantį
poveikį, buvo dar kartą tikrinamos kitu metodu. Bandymas buvo atliekamas Petri l÷kštel÷se (15
cm skersmens), pas÷jant 1ml patogeninio mikroorganizmo kultūros ir jį atskiedžiant 10 kartų su
Mueller-Hinton agaru. Terpei sustingus, joje padaromas atitinkamas skylučių kiekis į kurias
2.4.4.2.1 pav. „Medaus korio“ mikrol÷kštel÷
24
įšvirkščiamas filtratas ar kita pasirinkta testavimo medžiaga, kaip pvz,: pieno rūgštis pH 3.
Kultūros 30ºC temp. termostate buvo paliekamos augti 24 val. Pasibaigus inkubavimo laikui,
antimikrobinis poveikis buvo matuojamas skaidriu plotu apie padarytą agare skylę.
2.4.4.4 Bakteriocino aktyvumo ir prigimties tyrimai
Tam, kad įsitikintume, jog antimikrobinį poveikį sąlygojo baltymin÷ medžiaga, bandymai
buvo dar kartą pakartoti PRB filtratus paveikus fermentais: proteaze, papainu, tripsinu ir
chimotripsinu. Į 1ml filtrato įd÷jome 100µl proteazių. M÷gintuv÷lis buvo lengvai pavartomas ir
įdedamas į 70ºC temperatūros vonelę, kurioje laikomas 2 valandas. V÷liau tyrimai buvo
kartojami iš naujo ir stebimas antimikrobinio poveikio pasikeitimas.
PRB filtratai buvo veikiami ir karščiu: 121ºC temperatūroje 20 min autoklavuojami ir
atv÷sus v÷l buvo tiriamas filtrato antibakterinis poveikis mikroorganizmams.
2.4.4.5 Antimikrobin÷s medžiagos išskyrimas ir apibūdinimas
PRB filtratas, rodantis didžiausią antimikrobinį poveikį, buvo paveiktas butanu,
izobutanu bei eteriu, kad atskirti vandenyje tirpią ir netirpią organinę filtrato dalis. M÷gintuv÷liai
centrifuguojami, organin÷ dalis atskiriama nuo vandenin÷s dalies, tyrimai kartojami ir stebima,
kurioje dalyje yra antimikrobin÷ medžiaga. V÷liau buvo atliekami HPLC tyrimai su pasirinktu
filtratu, kurio antimikrobin÷ medžiaga buvo aptikta jo organin÷je dalyje.
2.4.4.6 Aukšto efektyvumo skysčių chromatografija (HPLC tyrimas)
HPLC tyrimai buvo atlikti su Skysčių chromatografu FinniganTM Surveyor® Plus
Modular LC System parengta su Purospher® STAR RP-18 kolon÷le iš Merck ir Xcalibur
programin÷s įrangos. Ekstraktai buvo analizuojami HPLC metodu, įšvirkščiant 25 µl ir naudojant
gradientą, sudarytą iš tirpalo A (0.1% tūrio dejonizuotas vanduo), tirpalo B (TFA praskiesta
1000 kartų dejonizuotu vandeniu) ir tirpalo C (metanolio). Tirpalų kiekio paskirstymas laike: 0
min 90% A, 10% B; 50 min 5% A, 80% B, 15% C.
2.4.4.7 Pienarūgščių bakterijų su ryškiausiu antimikrobiniu poveikiu
identifikavimas
Tos kultūros, kurių antimikrobinis poveikis patogenin÷ms bakterijoms buvo didžiausias,
buvo identifikuojamos panaudojus API 50 CH metodą. Patalpinamos termostate 37ºC
temperatūroje 48 valandoms. Atpažinimas atliekamas pagal spalvų intensyvumą tam tikrose
sunumeruotose duobut÷se.
25
2.4.4.8 Apsauginis pienarūgščių bakterijų poveikis in vivo
Atliekant bandymus su PRB in vivo, buvo gaminamas sūris, atsižvelgiant į tradicinio
portugališko sūrio gaminimo technologiją. Jam pagaminti buvo naudojami du kibirai
pasterizuoto avių pieno, į juos įpylus komercinio sūrių starterio mišinio rekomenduojamo tokio
tipo sūriams gaminti. Tada mišinys pašildomas iki 32ºC temperatūros. Į abu kibirus pieno
įpyl÷me po 1ml kiekvieno indikatorionio mikroorganizmo, kurie buvo auginami TSB: E. coli,
Staphylococcus aureus, Listeria inoccua ir Serratia spp. Aktyviausios pienarūgšt÷s bakterijos
veiksmingumui patikrinti, tokiame kolonizuotame patogeniniais mikroorganizmais sūryje, vieną
pieno kibirą papild÷me 1ml per naktį MRS terp÷je užauginta PRB 7013 kultūra. Abu kibirai
pieno buvo sutraukinti Cynara cardunculus L. ekstraktu ir pagal įprastą gaminimo technologiją
pagaminti 300g sūriai. Jie supresuoti ir po 2 valandų įtrinti druska bei patalpinti 8-11ºC
temperatūros 90-95% santykinio dr÷gnio kameroje. Po 13 dienų sūriai buvo perkelti į 12-14 ºC
temperatūros ir 85-90% dr÷gnumo kamerą, ten laikomi iki 30-tos sūrių brandinimo dienos.
M÷giniai tyrimams buvo imami 1, 7, 15, 30 ir 75-tą surių brandinimo dieną. Buvo nustatomas
sūrių pH pagal anksčiau aprašytą metodą pH-metru ir skaičiuojami mikroorganizmai abiejuose
sūriuose (kontroliniame ir su PRB 7013). Bakterijos buvo skaičiuojamos CFC Agare Serratia
spp. nustatyti, Baird Parker Agare + RPF priedu Staphylococcus aureus, OCLA Listeria inoccua,
Rapid E.coli Agaras 2 - E.coli ir MRS agaras Lactobacillus spp. bakterijoms suskaičiuoti.
26
3. DARBO REZULTATAI
3.1 Portugališkų Serpa ir Serra da Estrela sūrių mikrobiologinis tyrimas
Steb÷tas mikroorganizmų vystymasis, kiekis ir skirtumai Serpa ir Serra da Estrela
sūriuose atskirais brandinimo tarpsniais. 3.1.1 ir 3.1.2 paveiksl÷liuose pateiktos min÷tų sūrių
stebimos mikrobiotos dauginimosi dinamika.
Bendrai apžvelgus abiejų nokinamų sūrių mikroorganizmų vystymąsi, matome, jog
pienarūgšt÷s bakterijos buvo dominuojančios visą sūrio brandinimo periodą. Enterobacteriaceae
šeimos bakterijų, Staphylococcus spp. ir Pseudomonas spp. kiekiai, bręstant sūriui, maž÷jo,
išskyrus Staphylococcus spp. Serra da Estrela sūryje.
0
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
1 7 15 30 45 60
Laikotarpis dienomis
log(ksv/ml)
Bendras mikroorganizmų skaičius Enterobacteriaceae Lactobacillus
Lactococcus Enterococcus Leuconostoc
Pseudomonas Staphylococcus Miel÷s ir pel÷siniai grybai
3.1.1 pav. Serpa sūrio mikroorganizmų dauginimosi dinamika.
27
0
2
4
6
8
10
12
1 7 15 30 45 60
Laikotarpis dienomis
log (UFC/ml)
Bendras mikroorganizmų skaičius Enterobacteriaceae Lactobacillus
Lactococcus Enterococcus Leuconostoc
Pseudomonas Staphylococcus Miel÷s ir pel÷siniai grybai
3.1.2 pav. Serra da Estrela sūrio mikroorganizmų dauginimosi dinamika.
3.2 Juslin÷ Serra da Estrela ir Serpa sūrių analiz÷
Pasirinkti 16 skirtinų kvapų, kurie pavaizduoti 3.2.1 ir 3.2.2 paveiksl÷liuose, nustatyti Serra
da Estrela ir Serpa sūrių jusliniams rodikliams skirtingais nokinimo tarpsniais. Iš žemiau pateikto
paveiksl÷lio matome, kad Serra da Estrela sūris per visą nokimo laikotarpį savyje išlaik÷ visus
galimus kvapų variantus.
28
0
0,5
1
1,5
22,5
3
3,5
4Šviežias pienas, šviežia grietin÷
Virintas pienas
Jogurtas, kefyras, prarūgusi varšk÷
Žol÷s
G÷lių, f loros
Džiovintų vaisių
Alyvuogių aliejaus, alyvuogių
Avies, gyvulio odos, vilnos
Rūgšties
Sudusęs, gaižus, apkartęs
Muilo
Kepimo mielių
Purvinų kojų
Kūdikio v÷malų
V÷malų
Puv÷sių
1d 7d 15d 30d 45d 60d
3.2.1pav. Serra da Estrela sūrio juslin÷s analiz÷s diagrama
Šie kvapai buvo jaučiami skirtingo intensyvumo. Tai leidžia sugrupuoti sūrį į 2
brandinimo tarpsnius su jauno ir subrendusio sūrio kvapais.
• Sūryje nuo 0 iki 15 brandinimo dienos buvo juntami kvapai: šviežaus
pieno kvapas, virintas pienas. Aitriausiai jaut÷si parūgšt÷jusios varšk÷s, jogurto kvapai. Šiuos
kvapus būtų galima pavadinti jauno sūrio kvapais.
• Subrendusio sūrio kvapai buvo juntami nuo 30-tos iki 60-tos nokinimo
dienos t.y.: v÷malų, purvinų kojų, kultūrinių mielių, rūgšties kvapas, o intensyviausi šiuo periodu
buvo alyvuogių aliejaus, alyvuogių kvapai.
Serpa sūryje nokinimo metu buvo juntami visi aromatai, žinoma, skirtingo intensyvumo.
29
00,5
1
1,5
2
2,5
3
3,5
4Šviežias pienas, šviežia grietin÷
Virintas pienas
Jogurtas, kefyras, prarūgusi varšk÷
Žol÷s
G÷lių, floros
Džiovintų vaisių
Alyvuogių aliejaus, alyvuogių
Avies, gyvulio odos, vilnos
Rūgšties
Sudusęs, gaižus, apkartęs
Muilo
Kepimo mielių
Purvinų kojų
Kūdikio v÷malų
V÷malų
Puv÷sių
1d 7d 15d 30d 45d 60d
3.2.2pav. Serpa sūrio juslin÷ diagrama
Pagrindiniai įgyti aromatai buvo: alyvuogių aliejaus, prarūgusios varšk÷s, purvinų kojų ir
v÷malų. Ryškiausiai juntami kvapai per brandinimo periodą 0, 7, 15, 30, 45 ir 60 dienų buvo:
• 0 dienų. Visi galimi kvapai buvo gana silpnai juntami, ryškiausiai buvo juntamas
šviežio pieno kvapas.
• 7 dienų. Labai aiškiai buvo juntami rūgšties ir prarūgusios varšk÷s kvapai.
• 15 dienų. Visų kvapų ryškumas sumaž÷jo, tačiau puv÷sių, alyvuogių aliejaus ir
avies kvapai šiuo tarpsniu buvo juntami aiškiausiai.
• 30 dienų. Labai stipriai juntamas alyvuogių aliejaus, alyvuogių kvapas.
• 45 dienų. Intensyviausias v÷malų kvapas.
• 60 dienų. Ryškiausias buvo alyvuogių aliejaus kvapas, aiškiai juntami ir
dvokiančių p÷dų bei v÷malų kvapai.
Nesubrendusiam Serpa sūriui yra būdingi prarūgusios varšk÷s, prarūgusio jogurto,
išrūgos, šviežio pieno, varšk÷s, grietin÷s, šviežio sviesto, kultūrinių mielių, kūdikio v÷malų,
30
puv÷sių kvapai; tuo tarpu kai subrendęs sūris pasižymi alyvuogių aliejaus, v÷malų ir purvinų
kojų kvapais.
3.3 Aukšto patikimumo atrankos analiz÷
Išskyr÷me 116 pieno rūgštį gaminančių bakterijų iš sūrio ir avies pieno naudojamo PDO
Beira Baixa sūriams gaminti. PRB filtratai buvo testuojami prieš indikatorinius mikrobus,
minimus 2.1 lentel÷je. N÷ viena iš numanomų išskirtų 49 Lactococcus spp. ar 18 numanomų
Leuconostoc spp.paderm÷s mikroorganizmų netur÷jo slopinančio poveikio tyrimui pasirinktiems
patogenams. Keturi iš numanomų Lactobacillus genties bakterijų pažym÷tų skaičiais 7013, 7014,
7015 ir 7043 paveik÷ gram – teigiamų (Listeria inoccua ir S.aureus) ir gram-neigiamų (E.coli ir
Serratia sp.) bakterijų veiklą (žr. 3.3.1 pav). Šių bakterijų filtrato aktyvumas buvo patikrintas ir
prieš Listeria monocytogenes, Pseudomonas aeruginosa, Lactobacillus brevis referencinį
kamieną ATCC 8287 ir Salmonella spp. Visų jų augimas buvo slopinamas, išskyrus, toks pat
išliko Lactobacillus brevis ATCC 8287 atveju.
3.3.1 pav. Procentinis skirtingų pinarūgščių bakterijų filtratų veikimas, slopinant
patogenų veiklą
%
31
3.3.1 pav. tęsinys. Procentinis skirtingų pienarūgščių bakterijų filtratų
veikimas, slopinant patogenų veiklą
Visų 4 PRB filtratų poveikis kontroliniams patogenams buvo panašus. Žemiau pateiktuose
paveiksl÷liuose (žr. 3.3.3, 3.3.4, 3.3.5, 3.3.6 pav.) galima steb÷ti, kad patogenų sustojusio
vystymosi faz÷ truko daugiau nei 100 valandų E. coli ir S. aureus bakterijoms, o Listeria inoccua
ir Serratia sp. bakterijoms ši faz÷ truko trumpiau. Akivaizdu, kad filtratuose esanti antimikrobin÷
medžiaga skirtingai veik÷ skirtingus patogenus, tačiau netur÷jo įtakos ar patogenas buvo gram-
teigiamas, ar gram-neigiamas. E. coli visuose filtratuose buvo paveikta bakteriocidiškai,
paveiksl÷lyje nesimato net užuominos apie galimą bakterijų augimą. Kiti patogenai, greičiausiai,
buvo paveikti bakteriostatiškai arba juos veikusios medžiagos koncentracija buvo per maža.
%
Lactobacillus spp.
sp.
32
3.3.3 pav. S. aureus vystymasis paveikus 7043 pienarūgščių bakterijų filtratu
3.3.4 pav. Serratia sp. vystymasis, paveikus 7043 pienarūgščių bakterijų filtratu
33
3.3.5 pav. L. inoccua vystymasis, paveikus 7013 pienarūgščių bakterijų filtratu
3.3.6 pav. E. coli vystymasis, paveikus 7015 pienarūgščių bakterijų filtratu
Iš pateiktų rezultatų grafikuose matome, kad pienarūgščių bakterijų filtratai 7013, 7014, 7015 ir 7043 tur÷jo slopinantį poveikį prieš E.coli, S.aureus, Serratia sp. ir Listeria inoccua.
3.4 Antimikrobinio pienarūgščių bakterijų intensyvumo nustatymas Petri l÷kštel÷se
PRB filtratai, kurie rod÷ didžiausią indikatorinių mikroorganizmų slopinimą, tiriant
Bioscreen C aparatu, buvo patikrinti Petri l÷kštel÷je, specialiai jautrumui antibiotikams tirti
34
skirtoje terp÷je - Mueller-Hinton agare. Visi 4 PRB filtratai tur÷jo švarią zoną apie agare išskobtą
skylutę, tačiau mūsų tiriamos antimikrobin÷s medžiagos paliktas apvadas apie skylutę, gal÷tų
būti suskirstytas į 2 zonas. Pirma zona, esanti arčiau išskobtos skylut÷s, buvo visiškai skaidri, bet
labai siaura, o antroji zona, šiek tiek apsinešusi bakterijomis, tačiau kur kas platesn÷ (žr. 3.4.1 ir
3.4.2pav.).
Pienarūgščių bakterijų 7013, 7014, 7015 ir 7043 filtratai, kuomet jų pH nuo 3.7 iki 3.9,
demonstruoja platų antimikrobinį veikimą, tačiau, pak÷lus pH iki 7, visas antimikrobinis
veikimas neutralizuojamas (žr. 3.1 lentel÷).
3.1 lentel÷ – Skaidraus apvado skersmuo (mm) Mueller-Hinton agare
PRB
filtratai
Indikatorinis
mikroorganizmas
1 m÷nesio
senumo
filtratai*
1 savait÷s
senumo
filtratai*
pH 7 Autoklavuotas
filtratas
L. inoccua 9 9 0 7 Serratia sp. 8 8 0 8 E. coli 8 7 0 6
7013
S.aureus 8 8 0 7 L. inoccua 10 9 0 9 Serratia sp. 9 8 0 8 E. coli 8 8 0 7
7014
S.aureus 8 8 0 7 L. inoccua 10 10 0 10 Serratia sp. 9 9 0 8 E. coli 8 8 0 7
7015
S.aureus 9 9 0 9 L. inoccua 10 9 0 9 Serratia sp. 9 7 0 7 E. coli 8 7 0 7
7043
S.aureus 8 8 0 8 (* laikyti 4ºC temperatūroje)
35
PRB filtratai yra antimikrobiškai veiksnūs, juos laikant 4ºC temperatūroje bent 1 m÷nesį,
ir lieka aktyvūs prieš visus indikatorinius patogenus. Visų PRB filtratų pH yra žemas, palyginus
su PRB filtratais neturinčiais antimikrobinio poveikio. Ištyr÷me ryšį tarp filtratų pH ir skaidrios
zonos skersmens agare. Iš gautų rezultatų matome, kad PRB filtratai yra aktyvūs tik tuomet, kai
jų pH žemesn÷ už 4, tačiau antimikrobinis aktyvumas, maž÷jant filtratų pH, nedid÷ja (žr. 3.4.3
pav.).
3.4.1 pav. Pienarūgščių bakterijų filtratais
veikiama Serratia spp. Viršuje kair÷je pus÷je:
1 m÷nesio senumo filtratai; Viršuje, dešin÷je
pus÷je: 1 savait÷s senumo filtratai ir MRS
sultinys sumažinus jo pH iki 3,5; Apačioje
kair÷je: neutralizuoti pienarūgščių bakterijų
filtratai pak÷lus pH iki 7 ir pieno rūgštis pH
3,5; Apačioje dešin÷je: autoklavuoti
pienarūgščių bakterijų filtratai.
3.4.2 pav. Pienarūgščių bakterijų filtratų
veikiama L. inoccua. Viršuje kair÷je: 1
m÷nesio senumo filtratai; Viršuje dešin÷je:
1 savait÷s senumo filtratai ir MRS sultinys
pH 3,5; Apačioje kair÷je: neutralizuoti
pienarūgščių bakterijų filtratai sumažinus
pH iki 7 ir pieno rūgštis pH 3,5; Apačioje
dešin÷je: autoklavuoti pienarūgščių
bakterijų filtratai.
36
3.4.3 pav. pH įtaka pienarūgščių bakterijų filtratams, slopinant indikatorinius mikroorganizmus
3.5 Aktyvumo ir prigimties tyrimai
Autoklavavus pienarūgščių bakterijų filtratus 20 min 121ºC temperatūroje, buvo
tikrinamas jų antimikrobinis veikimas Biocreen C aparate ir Petri l÷kštel÷se, matuojant skaidrią
zoną apie išskobtą skylutę. Tyrimas parod÷, kad mūsų antimikrobin÷ medžiaga yra atspari
karščiui.
3.5.1 pav. Paveiktų ir nepaveiktų karščiu pienarūgščių bakterijų filtratų antimikrobinis
aktyvumas
Atlikus dar vieną tyrimą su fermentais, iš gautų rezultatų paaišk÷jo, kad papainas
paveikia mūsų antimikrobinę medžiagą 7015 PRB filtrate (žr. 3.5.2 pav. ir 3.2 lentelę).
Poveikio
zona
(mm)
S. aureus zona (mm)
L. inoccua zona (mm)
E. coli zona (mm)
Serratia sp. zona (mm)
Vidurkis % S. aureus
37
Analogiški rezultatai gauti 7015 PRB filtratą veikiant tais pačiais fermentais, stebint Serratia sp.,
S. aureus ir L. inoccua veiklą.
3.5.2 pav. E. coli vystymasis paveikus 7015 pienarūgšt÷s bakterijos filtratą fermentais
Iš žemiau pateiktos lentel÷s duomenų matome, kad 7015 PRB filtratas, paveikus papainu,
visiškai prarado savo antibakterinį poveikį 3 patogenams. S. aureus išlaik÷ 15 mm skersmens
apsinešusią zoną apie agare išskobtą skylutę, tačiau skaidrios zonos nebuvo matyti. Tik÷tina, kad
S. aureus gal÷jo būti jautresnis organin÷ms rūgštims, kurios suk÷l÷ koncentrišką jo depresiją,
prasiskverbdamos į agarą.
Įprastas E. coli
augimas
38
3.2 lentel÷ Fermentų poveikis filtratų aktyvumui prieš kontrolinius mikroorganizmus
Chimo-tripsinas Papainas Proteazė Trypsinas
Mikroorganizmai
Tiriamas
PRB
filtratas skaidri
zona
apsinešusi
zona
skaidri
zona
apsinešusi
zona
skaidri
zona
apsinešusi
zona
skaidri
zona
apsinešusi
zona
Serratia sp. 7013 * 0 11 0 10 7 12 7 13
Serratia sp. 7014 8 15 6 15 7 13 8 14
Serratia sp. 7015* 8 16 0 0 8 16 8 15
Serratia sp. 7043 9 14 8 15 8 16 7 13
E. coli 7013 * 0 9 0 10 0 11 0 11
E. coli 7014 7 13 0 11 0 13 7 12
E. coli 7015 * 6 15 0 0 7 14 7 14
E. coli 7043 7 14 7 15 6 15 0 11
S. aureus 7013 * 15 16 10 8
S. aureus 7014 10 0 7 11
S. aureus 7015 * 13 0 15 11 11
S. aureus 7043 10 11 12 0
L. inoccua 7013 * 0 9 0 10 8 11 8 15
L. inoccua 7014 9 12 8 13 6 11 9 14
L. inoccua 7015 * 8 13 0 0 9 15 8 15
L. inoccua 7043 8 13 9 15 8 14 12 12
3.2 lentel÷je palikti neužpildyti langeliai vaizduoja situaciją, kada nebuvo galima
vizualiai tiksliai nustatyti skirtumo tarp dviejų patogenų slopinimą vaizduojančių zonų.
Pažym÷ta tik aiškiai matoma apsinešusi zona.
Žalia ir raudona žvaigždut÷mis pažym÷jau PRB, su kuriomis būtų įdomu toliau tęsti
bandymus.
3.6 Antimikrobin÷s medžiagos išskyrimas ir apibūdinimas
Šio bandymo tikslas - išsiaiškinti, kurioje filtrato dalyje yra antimikrobin÷ medžiaga.
Vandenin÷je ar organin÷je, t.y. tirpi ar netirpi vandenyje. Deja, šis bandymas nedav÷ norimų
rezultatų. Aptikome tik vandenyje tirpių organinių rūgščių tam tikrą poveikį patogenams.
Paveikus mūsų filtratą eteriu, butanu, izobutanu ir centrifugavimu atskyrus organinę ir vandeninę
dalis, neaptikome tik÷tino bakteriocino poveikio organin÷je dalyje.
39
3.3 lentel÷ PRB filtratų organin÷s ir vandenin÷s dalių aktyvumas
Izobutanas Eteris Butanas Mikroorganizmai
PRB filtratai
Organin÷ (o)/ vandenin÷ (w)
dalis Skaidri zona
Apsinešusi zona
Skaidri zona
Apsinešusi zona
Skaidri zona
Apsinešusi zona
Serratia sp. 7013 w 0 10 0 10 0 0
Serratia sp. 7013 o 0 0 0 0 0 0
Serratia sp. 7015 w 0 11 0 11 0 11
Serratia sp. 7015 o 0 0 0 0 0 0
E. coli 7013 w 0 9 0 9* 0 0
E. coli 7013 o 0 0 0 0 0 0
E. coli 7015 w 0 9* 0 10* 0 0
E. coli 7015 o 0 0 0 0 0 0
S. aureus 7013 w 0 0 0 0 0 0
S. aureus 7013 o 0 0 0 0 0 0
S. aureus 7015 w 0 0 0 0 0 0
S. aureus 7015 o 0 0 0 0 0 0
L. inoccua 7013 w 0 10 0 9* 0 9
L. inoccua 7013 o 0 0 0 10* 0 10
L. inoccua 7015 w 0 9* 0 10* 0 10*
L. inoccua 7015 o 0 0 0 0 0 8 O - organin÷ dalis; w – vandenin÷ dalis
3.7 Tyrimas aukšto efektyvumo skysčių chromatografija (HPLC tyrimas)
Atlikus bandymus aukšto efektyvumo skysčių chromatografu, pasteb÷jome, kad MRS
terp÷s pikai skiriasi nuo pikų, kuriuos demonstruoja 7015 PRB filtratas, turintis antimikrobinį
poveikį. Akivaizdu, kad besivystydamos MRS terp÷je pieno rūgšties bakterijos suvartoja tam
tikras maisto medžiagas ir sintetina naujas, jas apsaugančias medžiagas. MRS terp÷je, nuo 20 iki
26 min pastebimas vienas aiškus medžiagos pikas (pav. 3.7.1). Filtratas, su antibakteriniu
poveikiu (pav. 3.7.2), atlikus aukšto efektyvumo skysčių chromatografiją, tame pačiame laiko
tarpe rodo du pikus. Apie 22 min išryšk÷jęs pikas gali būti patogenus slopinančios medžiagos
pliūpsnis. Piko registracijos metu buvo surinkta medžiaga “x” ir pakartoti bandymai jos
veiksmingumui nustatyti. Medžiaga “x” patogenus veik÷ slopinančiai.
40
RT: 0.00 - 115.00
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110Time (min)
-20000
-10000
0
10000
20000
30000
40000
50000
60000
70000
80000
90000
100000
110000
120000
130000
140000
150000
uA
U39.37
24.94
5.05
33.344.68
23.6926.305.78 45.31
46.8630.3720.70
19.9248.82
49.6416.11 55.7413.5556.418.81
62.26
63.71
65.77
NL:1.53E5Total Scan PDA 210909_01
3.7.1 pav Tiriama MRS terp÷
RT: 0.00 - 115.00
0 10 20 30 40 50 60 70 80 90 100 110Time (min)
0
20000
40000
60000
80000
100000
120000
140000
160000
180000
uA
U
39.62
22.33
25.08
18.08 33.52
26.416.77 14.53
42.3648.79
55.7456.57
62.1863.67
NL:1.88E5Total Scan PDA MRS210909_02
3.7.2 pav. Tiriamas 7015 pienarūgščių bakterijų filtratas, turintis antibakterinį poveikį
41
3.8 Pienarūgščių bakterijų su ryškiausiu antimikrobiniu poveikiu identifikavimas
Pienarūgšt÷s bakterijos 7013, 7014, 7015 ir 7043 buvo identifikuojami API 50 CHL
metodu. Nustatyta: 7013 – Lactobacillus brevis; 7014 - Lactobacillus curvatus (99,5%); 7015 –
Lactobacillus brevis; 7043 - Lactobacillus curvatus (99,9%).
3.9 Apsauginis pienarūgščių bakterijų poveikis sūryje
Pateiktuose paveiksl÷liuose (žr. 3.9.1, 3.9.2, 3.9.3, 3.9.4 ir 3.9.5 pav.) matome, kad buvo
pasirinktas neapgalvotai didelis patogeninių mikroorganizmų kiekis sūryje. Natūraliai esant
tokiam patogenų kiekiui sūryje, jis laikomas supuvusiu.
Apžvelgus visų patogenų vystymąsi iki 70-tos sūrių brandinimo dienos, matome, kad
geresni rezultatai gauti sūryje, kuriame panaudojome PRB 7013. Kontroliniame sūryje patogenų
kiekis taip pat maž÷jo, nes žymus Lactobacillus genties mikroorganizmų kiekis pateko iš
specialaus pieno raugo, kurį naudojome sūrių gaminime. Tokio starterio sud÷tyje yra
Lactobacillus delbrueckii ir Lactobacillus bulgaricus. Patogenų kiekis abiejų sūrių paviršiuje
nokstant buvo panašus. Tai galima paaiškinti tuo, kad po gaminimo sūriai yra įtrinami druska,
kuri yra labai geras konservantas. Sūriams nokstant, jų paviršiuje vandens kiekis yra mažesnis,
tod÷l patogenų vystymuisi ši terp÷ yra mažiau palanki.
Lactobacillus spp. kiekis did÷jo tiek kontroliniame, tiek sūryje su PRB 7013, tačiau,
pasiekus 70-tą brandinimo dieną, pastarajame sūryje Lactobasillus spp. kiekis buvo net 2 log
didesnis.
Iki 30-tos sūrių brandinimo dienos abiejuose sūriuose pH skyr÷si nedaug. Listeria
inoccua vystymosi diagramoje stebimas staigus populiacijos smukimas tik sūryje papildytame
PRB 7013 kultūra. Greičiausiai PRB 7013 gamina kažką, kas stipriai slopina patogenus ir tai
n÷ra tik organin÷s rūgštys. Nuo 7 iki 30-tos brandinimo dienos sūryje su 7013 PRB pH išsilaik÷
toks pats. Kaip tik šiomis dienomis įvyko ryškiausias L. inoccua bakterijos smukimas. Nuo 30-
tos iki 70-tos brandinimo dienos L. inoccua kiekis sūryje nebekito, kai tuo tarpu pH sūriuose
išsiskyr÷ labia aiškiai (žr. 3.9.6 pav.).
Iš gautų rezultatų matome, kad PRB 7013 baktericidiškai, t.y. žudančiai, veik÷ E.coli,
Listeria inoccua ir Serratia sp. patogenus, o S. aureus buvo paveiktas bateriostatiškai. Jo veikla
buvo slopinama (žr. 3.9.2 pav. 70d rezultatus), bet kiekis pakankamai nesumaž÷jo.
PRB 7013 gaminamos medžiagos, jautrios neutralioms pH sąlygoms, buvo įtrauktos į patogenus slopinantį mechanizmą sūrių brandinimo metu.
42
3.9.1 pav. E. coli vystymasis kontroliniame sūryje ir sūryje paveiktame pienarūgšte
bakterija 7013
3.9.2 pav. S. aureus vystymasis kontroliniame sūryje ir sūryje paveiktame pienarūgšte
bakterija 7013
Log
(ksv/ml)
Log
(ksv/ml)
43
3.9.3 pav. Serratia sp.vystymasis kontroliniame sūryje ir sūryje paveiktame pienarūgšte
bakterija 7013
3.9.4 pav. L. inoccua vystymasis kontroliniame sūryje ir sūryje paveiktame pienarūgšte
bakterija 7013
Log
(ksv/ml)
Log
(ksv/ml)
44
3.9.5 pav. Lactobacillus spp. vystymasis kontroliniame sūryje ir sūryje paveiktame
pienarūgšte bakterija 7013
3.9.6 pav. pH kontrolinio sūrio centre ir sūrio su 7013 pienarūgšte bakterija
Log
(ksv/ml)
pH
45
4. REZULTATŲ APTARIMAS
4.1 Portugališkų Serpa ir Serra da Estrela sūrių mikrobiologinio tyrimo
aptarimas
Pienarūgšt÷s bakterijos sudaro nepalankias sąlygas žalingai mikroflorai vystytis. Jos
išskiria organines rūgštis ir sumažina sūrio pH, konkuruoja d÷l laktoz÷s (Masteikien÷, 2006). D÷l
Staphylococcus spp. kiekio padid÷jimo nuo 45-tos brandinimo dienos Serra da Estrela sūryje
galima įtarti, jog jis buvo netinkamai laikomas ar prižiūrimas.
Normaliai augant pienarūgštei mikrobiotai, paprastai slopinama pašalinių, techniškai
kenksmingų, mikroorganizmų veikla ir sudaromos sąlygos normaliam biocheminiam nokimo
procesui.
Iš gautų duomenų matome, kad šviežias sūris yra puiki terp÷ vystytis įvairiai mikrobiotai.
Nors abiejų sūrių mikrobiologiniai rodikliai šiek tiek skiriasi, tačiau tiek viename, tiek kitame
šviežiame sūryje yra aukštas kiekis patogeninių bakterijų. Enterobacter genties bakterijos yra
priskiriamos natūraliai mikrobiotai piene. Nuo pieno kokyb÷s labai priklauso ir sūrio kokyb÷
(Tavaria, 1998). Koliformin÷s bakterijos ir Pseudomonas spp. yra techniškai žalingi
mikroorganizmai, o jų buvimas piene gali būti paaiškinamas skurdžiom sanitarin÷m sąlygom,
surenkant pieną (Bamforth, Ch, 2005).
Tokios bakterijos kaip Pseudomonas spp. ir Staphylococcus spp. yra užkrečiamos ir
pavojingos žmogaus organizmui. Tirtuose nesubrendusiuose sūriuose jų kiekis viršijo leistinas
ribas, tačiau, sūriams bręstant, kenksmingų mikrobų maž÷jo ir sūrį buvo galima vartoti. Šie
tradiciniai portugališki sūriai yra valgomi tik po 30-45 brandinimo dienų, o jų nokinimas gali
tęstis iki 180-tos dienos, kada pienarūgšt÷s bakterijos sudaro nepalankias sąlygas žalingai
mikrobiotai vystytis (Masteikien÷, 2006; Franco, 2007; Roseiro, Wilbey, Barbosa, 2003). Serra
da Estrela sūrio mikrobiologiniame tyrime pastebimas netik÷tas ir nenaudingas Staphylococcus
spp. populiacijos išaugimas nuo 45 d. iki 60 d. Tai gal÷tų būti sūrio apdorojimo klaidos (Franco,
2007). Visgi toks aukštas Staphylococcus spp. kiekis sūryje yra žalingas žmogaus sveikatai. Tokį
sūrį reikia brandinti ilgiau arba jis tur÷tų būti išbrokuojamas. Pienarūgšt÷s bakterijos yra patys
svarbiausi mikroorganizmai, bręstant sūriui (Tavaria ir kt., 1999). Buvo stebimos net 4 PRB
gentys, besidauginančios sūryje: Lactobacillus, Lactococcus, Enterococcus ir Leuconostoc.
Bręstančiame sūryje pasteb÷tas PRB sumaž÷jimas gal÷jo įvykti d÷l sumaž÷jusio laktoz÷s kiekio
46
ir susidariusių mažiau palankių sąlygų šių bakterijų augimui. Surauginus visą pieno cukrų, pieno
rūgšties bakterijos žūva. PRB bakterijos gali stimuliuoti ar slopinti viena kitos veiklą, tad
nepalankios sąlygos vystytis kuriai nors iš PRB gal÷jo susidaryti ir d÷l jų išskiriamų
bakteriocinų, kurie dažai būna aktyvūs prieš bakterijas, panašias į jį susintetinusį
mikroorganizmą. D÷l išbrokuotų pavyzdžių Serpa sūryje n÷ra pavaizduotas 60-tos dienos
Lactococcus sp. kiekis.
Kai kurios mielių ir pel÷sinių grybų rūšys yra svarbios ir naudingos sūrio gamyboje,
nes gamina malonaus aromato, suteikiančius pikantišką skonį, junginius. Kadangi mielių ir
pel÷sinių grybų kiekis Serpa sūryje did÷jo visą nokimo periodą, galima spręsti, jog ši mikrobiota
yra atspari pienarūgščių bakterijų išskiriamoms organin÷ms rūgštims ir sumaž÷jusiai terp÷s pH.
Pienarūgšt÷s bakterijos, skaldydamos laktozę, stimuliuoja mielių dauginimąsi. Miel÷s pagreitina
pienarūgščių bakterijų augimą savo gaminamais stimuliatoriais (Franco, 2007). Serra da Estrela
sūryje miel÷s ir pel÷siniai grybai prad÷jo sparčiai vystytis tik nuo 15-tos nokinimo dienos. Jie
išgyvena prisodrintoje oru vidutinio dr÷gnio aplinkoje. Kadangi pienarūgščių bakterijų
suformuota rūgšti tep÷s pH jiems neturi blogos įtakos, o pel÷siniai grybai aktyviai skaido ir
riebalus, tai išsiskiria įvairios lakiosios riebalų rūgštys, suteikiančios sūriams aštroką savitą skonį
ir aromatą (Masteikien÷, 2006; Dahl ir kt., 1999).
4.2 Pienarūgščių bakterijų sintetinamos antimikrobin÷s medžiagos
apibūdinimas
Remiantis daugeliu autorių (įrašytų literatūros sąraše) aprašytais metodais iš 116 pieno
rūgštį sintetinančių bakterijų išskyr÷me 4, labiausiai slopinusias Serratia sp., E. coli, S. aureus ir
L. inoccua veiklą. Bandymus pakartojus Petri l÷kštel÷se buvo pasteb÷tos 2, mikroorganizmų
veiklos slopinimą įrodančios, zonos. Platesnioji, apsinešusi zona, gal÷jo atsirasti d÷l PRB
gaminamų organinių rūgščių. Kadangi organinių rūgščių molekulin÷ mas÷ labai maža, jos gal÷jo
prasiskverbti agaru toliau ir taip suformuoti šiek tiek apsinešusį apvadą. Neatmetama galimyb÷,
kad tai įvyko d÷l mažos molekulin÷s mas÷s antimikrobinių peptidų (žr. 3.4.1 ir 3.4.2pav.).
Daugelio mokslininkų, tyrin÷jusių bakteriocinus, darbuose, Petri l÷kštel÷se antibiotinį veikimą
turintys bakteriocinai agare sudaro labia aiškią skaidrią zoną, apie padarytą skylutę, tačiau jie
savo antimikrobinę medžiagą labia stipriai koncentruoja, tod÷l nenuostabu, kad ir medžiagos
veikimas yra stipresnis.
47
Savo tyrimuose pasteb÷jau, kad PRB sintetinama antimikrobin÷ medžiaga praranda
veikimą pak÷lus terp÷s pH. Tai gali būti paaiškinama neutralizuojamomis bakterijų išskirtomis
rūgštimis, tod÷l ir nebelieka antimikrobinio veikimo. PRB išskiriamos rūgštys gali būti
panaudotos, saugantis nuo bakterin÷s populiacijos padid÷jimo ir nuo kitų bakterijų. Neseniai
buvo paskelbta, kad Lactobacillus helveticus 50P1 tuo pačiu metodu paveikia Escherichia coli
HB101 ir Pseudomonas aeuroginosa (Nikolova, D.ir kt., 2009). Tai rodo, kad toks nenustatytas
PRB filtratų veikimas prieš gram-teigiamas ir gram-neigiamas bakterijas gal÷tų priklausyti nuo
rūgščių. Jei antimikrobin÷ medžiaga būtų bakteriocinas, jis taip pat gal÷tų būti neutralizuojamas
pak÷lus terp÷s pH. Ne vieno autoriaus, tyrin÷jusio bakteriocinus, yra minima, kad kai kurių
bakteriocinų stabilumas labai priklauso nuo terp÷s pH, pvz. nizino.
Galima manyti, kad PRB filtratų žemas pH padidina jų slopinantį poveikį kontroliniams
patogenams d÷l jų jautrumo rūgštims. Iš daugyb÷s bandymų galima spręsti, kad ne pieno rūgštis
lemia tokį stiprų slopinantį patogenus poveikį. Atlikome bandymus su pieno rūgštimi, kurios pH
3,5 ir ji nerod÷ aiškaus žudančio poveikio mikrobams. Sumažinus MRS terp÷s pH, iki 3,5,
patogenai nebuvo slopinami.
Autoklavavus PRB filtratus 20 min 121°C temperatūroje pamat÷me, kad mūsų
antimikrobin÷ medžiaga yra atspari karščiui. Yra keliatas straipsnių, kuriuose minimas mažų
antimikrobinių peptidų atsparumas karščiui. Taip pat karščiui atsparios organin÷s rūgštys.
Paveikus PRB filtratus fermentais, pateb÷jome, kad papainas neutralizuoja antimikrobinį
veikimą. Papainas yra fermentas, veiksmingas terp÷je su žemu pH. Kadangi mūsų filtratų pH
buvo žemas, papainas galimai sukarp÷ tam tikrose vietose baltymin÷s medžiagos jungtis tarp
aminorūgščių, tod÷l antimikrobin÷ medžiaga prarado savo veikimą. Chimotripsinas, proteaz÷s ir
tripsinas nepaveik÷ filtrato. Gali būti, kad šių fermentų veikimui buvo nepalankios sąlygos d÷l
žemos terp÷s pH. Fermentai organinių rūgščių veikimui neturi įtakos.
Atlikus aukšto efektyvumo skysčių chromatografiją, buvo surinktas antimikrobin÷s
medžiagos pliūpsnis, kuris pasirod÷ apie 22min. Organinių rūgščių mažos molekulin÷s mas÷s
eliucija buvo tik÷tina iki 15 min, tad toks v÷lyvas medžiagos registravimas gal÷jo reikšti aptiktą
bakteriociną.
Kadangi išskirtoji medžiaga turi antibakterinių savybių, yra atspari karščiui, ją
neutralizuoja fermentas papainas, tod÷l manome, kad tai yra bakteriocinas.
48
5. IŠVADOS
1) Nustatyta, kad abiejuose tirtuose sūriuose visą brandinimo laikotarpį dominavo
pienarūgšt÷s bakterijos. Pseudomonas spp., Staphylococcus spp., koliformin÷s bakterijos
sūriui nokstant maž÷jo.
2) Buvo nustatyta, kad pienarūgšt÷s bakterijos yra svarbios ne tik d÷l skonio, aromato,
konsistencijos, bet ir sudaro nepalankias sąlygas vystytis patogeniniams
mikroorganizmams.
3) Didžiausią slopinantį poveikį Seratia sp., L. inoccua, E. coli ir S. aureus veiklai tur÷jo
Lactobacillus brevis ir Lactobacillus curvatus.
4) Bakteriocidiškai ir bakteriostatiškai patogenus veik÷ organin÷s rūgštys ir neidentifikuota
medžiaga „x“.
49
LITERATŪROS SĄRAŠAS
1. Abee T. Pore-forming bacteriocins of gram-positive bacteria and self-protection
mechanisms of producer organisms; 1995; FEMS Microbiol Lett 129:1-10
2. Albano H., Oliveira M., Aroso R., Cubero N., Hogg T., Teixeira P. Antimicrobial activity
of lactic acid bacteria isolated from “Alheiras” (traditional Portuguese fermented
sausages): In situ assays. Elsevier, Science direct, 2007; 76:796-800
3. Aly S., Ouattara Cheik A.T, Bassole Imael H. N, Alfred T. S., Ouattara Cheik A.T,
Bassole Imael H. N, Traore S. A.; Bacteriocins and lactic acid bacteria - a
minireview;African Journal Of Biotechnology Vol. 5 (9), Pp. 678-683, 2 May
4. Bamforth, Ch. W., 2005. Food fermentation and micro-organisms. Department of Food
Science and Technology, University of California, Davis, USA. 160-171p
5. Barnby-Smith F.M. Bacteriocins:applications in food preservation, Trends food science
technology, 1992, 3:133-137
6. Benkerroum N., Oubel H., Zhar M., Dlia S., Filali-Maltouf A. Isolation of a bacteriocin-
producing Lactococcus lactis subsp. Lactis and application to control Listeria
monocytogenes in Maroccan jben; Journal of Applied microbiology; 2000; 89:960-968
7. Charles M. A. P. F., Van Belkum M. J., Holzapfel1 W. H., G´ Alvez H. A. A.;
Diversityof enterococcal bacteriocins and theirgrouping in a new Classic cation scheme;
Federation of European Microbiological Societies published by Blackwell publishing
Ltd.; 2007; 31: 293–310
8. Cintas L.M., Rodriguez J.M., Fernandez M.F., Sletten K., Nes I.F., Hernandez P.E., Holo
H. Isolation and characterization of pediocin L50, a new bacteriocin from Pediococcus
acidilactici with a broad inhibitory spectrum. Appl Environ Microbiol; 1995, 61:2643-
2648)
9. Dahl, S. Relationships between flavour and microbiological profiles in Serra da Estrela
cheese throughout ripening. International Dairy Journal. 1999.
10. Ennahar S., Sashihara T., Sonomoto K., Ishizaki A.; Class II a bacteriocins: Biosynthesis,
structure and activity; FEMS Microbiology Reviews; 2000; 24:85-106
50
11. Fahimdokht Mokhtari ; Developing a test method for determining the effectiveness of
antimicrobial preservatives; Research Journal of Biological Sciences; 2008; 3(9):984-988
12. Fayol-Messaoudi D., Berger C. N., Coconnier-Polter M., Moal V. L., Servin A. L.; Ph-,
Lactic Acid-, and non-Lactic Acid-dependent activities of probiotic Lactobacilli against
Salmonella enteric, Serovar typhimurium; Applied and environmental microbiology,
2005; 71: 6008–6013
13. Franco, M. I., Relationships between sensory attributes and volatile compounds
constituents in an ovine Portuguese traditional cheese (Serra da Estrela cheese), 2007.
14. Freni K. Tavaria, F. Xavier Malcata. 1999. On the microbiology of Serra da Estrela
cheese: geographical and chronological considerations.
15. Gottlieb C.T., Thomsen L.E., Ingmer H., Mygind P.H., Kristensen H.H. ir Gram L.
Antimicrobials peptides effectively kill a broad spectrum of Listeria monocytogenes and
Staphylococcus aureus strains independently of orign, sub-type, or virulence factor
expression. MBC Microbiology, 2008, 8:205, 1-10
16. Gudonis A. Sūriai: klasifikavimas, savyb÷s, gamybos technologijos, 1997m 2, 64p
17. Gudonis A., 2004. Pieno ir pieno produktų juslin÷s savyb÷s, Kaunas.
18. http://cmdr.ubc.ca/bobh/peptides.html; Prieeiga per internetą žr. 2010m.
19. http://en.wikipedia.org/wiki/Antimicrobial_peptides; Prieeiga per internetą 2010m
geguž÷s 10d.
20. http://www.answers.com/topic/bacteriocin; Prieeiga per internetą, žr. 2010m.
21. http://www.fao.org/docrep/x0560e/x0560e10.htm; Prieeiga per internetą, 1998m.
22. http://www.merck.com/mmhe/sec17/ch190/ch190h.html; Prieiga per internetą, žr.2008m.
23. http://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC429093/?page=2; Prieeiga per internetą
žr. 2010m.
24. http://www.teagasc.ie/research/reports/dairyproduction/4207/eopr-4207.asp; Prieeiga per
internet, žr 2010m.
25. Jack R. W., Wan J., Gordon J., Harmark K., Davidson B. E., Hillier A. J., Wettenhall R.
E. H., Hickey M. W., Coventry M. J. Characterization of the chemical and antimicrobial
properties of piscicolin 126, a bacteriocin produced by Carnobacterium piscicola Jg126;
Applied and environmental microbiology, 1996; 62: 2897–2903
51
26. Jack R.W., Tagg J.R., Ray B. Bacteriocins of gram positive bacteria. 1995,Microbiol.
Rev. 59:171-200.
27. James M. Jay, Martin J. Loessner, David A. Golden. 2001. Modern food microbiology,
Springer.
28. Line J.E., Svetoch E.A., Eruslanov B.V., Perelygin V.V., Mitsevich E.V., Mitsevich I.P.,
Levchuk V.P., Svetoch O.E., Seal B.S., Siragusa G.R. ir Stern N.J. Isolation and
purification of Enterococin E-760 with broad antimicrobial activity agains gram-positive
and gram-negative bacteria. Antimicrobial agents and chemotherapy; 2008; 52:1094-
1100
29. Macedo A. C., Malcata F. X., Oliveira J. C.. 1993. The Technology, Chemistry and
Microbiology of Serra Cheese: A Review, Journal of Dairy Science.
30. Maldonado A., Jimenez-Diaz R., Ruiz-Barba J.L. Introduction of Plantaricin in
Lactobacillus plantarum NC8 after Coculture with specific gram-positive bacteria is
mediated by an autoinduction mechanism. Journal of Bacteriology; 2004; 186:1556-1564
31. Maragkoudakis P.A., Mountzouris K.C., Psyrras D., Cremonese S., Fisher J., Cantor
M.D., Tsakalidou E. Functional properties of novel protective lactic bacteria and
application in raw chicken meat against Listeria monocytogenes and Salmonella
enteritidis. Internationa journal od food microbiology. 2009; 130:219-226
32. Masteikien÷ R. R. 2006. Maisto produktų mikrobiologija, 2knyga, Technologija,
Kaunas. (112 – 140p)
33. Michaelidou A., Alichanidis E., Urlaub H., Polychroniadou A. ir Zerfiridis G. K.
Isolation and identification of some major water – soluble peptides in Feta cheese.
Journal of dairy science. 1998, 81:3109-3116
34. Nikolova D., Evstatieva Y., Georgieva R., Danova S., Savov V., Ilieva S., Dalev P.
Molecular taxonomic characterisation of probiotic strain Lactobacillus sp. 50P1,
Biotechnol. & Biotechnol. Eq; 2009; 23:779-782
35. O`Sullivan L., O`Connor E.B., Ross R.P., ir Hill C. Evaluation of live-culture-producing
lacticin 3147 as a treatment for the control of Listeria monocytogenes on the surface of
smear-ripened cheese; Journal of Applied Microbiology; 2006; 100:135-143
52
36. Oh S., Kim S. H., Worobo R. W. Characterization and Purification of a Bacteriocin
Produced by a potential probiotic culture, Lactobacillus acidophilus 30SC; Journal dairy
science 2000; 83:2747–2752
37. Oscariz J.C., Pisabarro A.G. Clasification and mode of action of membrane-active
bacteriocins produced by gram-positive bacteria. 2001, 4:13-19;
38. Ralph W. J., Tagg J. R., Bibek R.; Bacteriocins of gram-positive bacteria;
Microbiological reviews, 1995; 59:171–200
39. Rizzello C. G., Losito I., Gobbetti M., Carbonara T.,M. D. De Bari, Zambonin P. G.;
Antibacterial activities of peptides from the water-soluble extracts of italian cheese
varieties; American Dairy Science Association, 2005. 88:2348–2360.
40. Roseiro L. B., Wilbey R. A., Barbosa M. 2003. Serpa cheese: Technilogical,
Biochemical and microbiological characterisation of PDO ewe´s milk cheese coagulated
with Cynara cardunculus L., INRA, EDP Sciences,
41. Sigrid C.S. De Keersmaecker, Verhoeven T.L.A., Desair J., Marchal K., Vanderleyden J.
ir Nagy I. Stron antimicrobial activity of Lactobacillus rhamnossus GG against
Salmonella typhimurium is due to accumulation of lactic acid; Federation of European
Microbilogical Societies Published by Blackwell Publishing; 2006; 259:89-96.
42. Sine´Ad C. Corr, Yin Li, Christian U. Riedel, Paul W. O’Toole, Colin Hill, And Cormac
G. M. Gahan; Bacteriocin production as a mechanism for the antiinfective activity of
Lactobacillus salivarius ucc118; 2007 prieeiga per internetą
Www.Pnas.Org_Cgi_Doi_10.1073_Pnas.0700440104
43. Tavaria F. K., Malcata F. X.; 2000; P: 293-304. Microbiological Characterization of
Serra da Estrela Cheese throughout its Appellation d’Origine Protegee Region, Journal of
Food Protection.
44. Todorov S.D., Dicks L.M.T. Lactobacillus plantarum isolated from molasses produces
bacteriocins active against gram-negative bacteria. Enzyme and Mycrobial Technology
2005; 36: 318-326
45. Yanagida F., Chen Y., Shinohara T. Searching for bacteriocin-producing lactic acid
bacteria in soil; Journal of Applied microbiology; 2005; 52:21-28
46. Zoumpopoulou G., Foligne B., Christodoulou K., Grangette C., Pot B., Tsakalidou E.
Lactobacillus fermentum ACA-DC 179 displays probiotic potential in vitro and protects
53
against trinitrobenzene sulfonic acid (TNBS)-induced colitis and Salmonella infection in
murine models. International journal of food microbiology. 2008; 121:18-26