Journal of Pharmacy and Science Vol. 3, No.2, (Juli 2018

Journal of Pharmacy and Science

Vol. 3, No.2, (Juli 2018), P-ISSN : 2527-6328, E-ISSN : 2549-3558



Journal of Pharmacy and Science Jurnal Ilmiah Ilmu Farmasi dan Sains (Kimia, Biologi, Fisika)

Volume 3, Nomor 2, Juli 2018

Journal of Pharmacy and Science yang diterbitkan sejak 2016 berisi kumpulan artikel

yang telah ditelaah dari hasil penelitian dan studi kepustakaan berbasis pengetahuan dan

terkait dengan bidang farmasi, biologi, kimia, dan kesehatan. Artikel berasal dari penulis

yang berafiliasi dengan perguruan tinggi, badan penelitian dan pengembangan, lembaga

penelitian non-departemen (LPND) atau lembaga lain yang memiliki aktifitas dalam

riset, ilmu pengetahuan dan teknologi. Setiap naskah yang diterima redaksi Journal of

Pharmacy and Science akan ditelaah oleh penelaah ahli dan anggota redaksi. Journal of

Pharmacy and Science terbit 2 kali dalam setahun, pada bulan Juli dan Januari.

Alamat Redaksi:

AKADEMI FARMASI SURABAYA

Jl. Ketintang Madya 81 Surabaya Telp. (031) 828 0996

Email: [email protected]

Dicetak dan diterbitkan oleh PENERBIT GRANITI

Perum Kota Baru Driyorejo, Jl. Granit Kumala 1/12, Gresik, Jatim 61177

Telp : 081357827429, email : [email protected].

Kesalahan penulisan (isi) diluar tanggung jawab percetakan

mailto:[email protected]




DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI

Penanggung Jawab : Abd. Syakur, M. Pd.

Pimpinan Redaksi : Prasetyo Handrianto, S.Si., M.Si.

Ketua Penyunting : Ratih Kusuma Wardani, S.Si., M.Si.

Anggota Penyunting : Djamilah Arifiyana, S.Si., M.Si.

Umarudin, S.Si., M.Si

Editor/Layout : M.A. Hanny Ferry Fernanda, S.Farm., Apt.

Dewi Setiowati, A.Md.

Rosita Dwi Chrisnandari, S.Si., M.Si.

Rahmad Aji Prasetya, S.Farm., Apt.

Nuria Reni, S.Pd., M.Pd.

Kesekretariatan : Suci Reza Syafira, SE.I.

Penelaah Ahli : Dr. Sulfahri, M.Si.

(Universitas Hasanudin Makasar)

Dr. Agus Muji Santoso, M.Si

(Universias PGRI Kediri)

Fitriana Ikhtia Rinawati, M.Kes.

(Universitas Islam Lamongan)

Anita Purnamayanti, M.Farm-Klin., Apt.

(Universitas Surabaya)

Emsal Yanuar, M.Si.

(Universitas Teknologi Sumbawa)

Cicik Herlina Yulianti, S.T., M.Si.

(Akademi Farmasi Surabaya)

Ilil Maidatuz Zulfa, S.Farm., M.Si., Apt.


Vika Ayu Devianti, S.Si., M.Si.


Tamara Gusti Ebtavanny, S.Farm., M.Farm., Apt.


Surahmaidah, S.Si., M.T.


Tri Puji Lestari, S.Si., M.Si.


Damaranie Dipahayu, S.Farm., M.Farm., Apt.


Galuh Gondo Kusumo, S.Farm., M.Farm., Apt..


Intan Kurnia Permatasari, S.E., Ak., M.A


Dra. Endang Martiniani, S.Si., M.Pharm., Apt.

(RSUD Dr, Soetomo Surabaya)

Hilya Nur Imtihani, S.Farm., M.Farm., Apt.




6

Halaman Kosong



7

DAFTAR ISI

Jurnal Ilmiah Ilmu Farmasi dan Sains (Kimia, Biologi, Fisika) ............................................................................ 4

DEWAN REDAKSI JURNAL PHARMASCI ..................................................................................................... 5

DAFTAR ISI ....................................................................................................................................................... 7

Pengaruh konsentrasi Bawang Merah (Allium Cepa) Dan Temu Kunci (Boesenbergia rotunda) Sebagai

Pengawet Alami Terhadap Mutu Mutu Biologi Ikan Kembung (Rastrellinger sp.) dan Ikan Tuna (Thunnus sp.) . 9

Galuh Ratmana Hanum1*), Syahrul Ardiansyah1*), Zamhariroh1, Sintya Rarah Anglania1, ................. 9

Aktivitas Antibakteri Daun Pepaya (Carica Papaya) Menggunakan Pelarut Etanol Terhadap Bakteri Bacillus

subtilis ............................................................................................................................................................. 113

Tri Puji Lestari Sudarwati 1*) ................................................................................................................ 113

Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas Dan Kadar Air Pada Minyak Goreng Yang Digunakan Oleh Pedagang

Gorengan Di Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya .......................................................................... 157

Ika Fitri Ulfindrayani1*), Qurrota A’yuni2) .......................................................................................... 157

Analisis Kandungan Kimia Daun Dan Batang Sembukan (Paederia Foetida) Dengan Menggunakan 2 Pelarut

Yang Berbeda .................................................................................................................................................... 23

Surahmaida1*), Prasetyo Handrianto1 .................................................................................................... 23

Karakteristik Fisika Masker Gel Peel Off dan Krim Wajah dengan Kandungan Ekstrak Kulit Buah Kakao

( Theobroma cacao, L.) Sebagai Antioksidan Topikal ........................................................................................ 48

Damaranie Dipahayu1*) ........................................................................................................................... 48

Efektivitas Daya Hambat Ekstrak Etanol 96% Bonggol Nanas (Ananas Comosus L) Terhadap Pertumbuhan

Bakteri Staphylococcus Aureus .......................................................................................................................... 32

Umarudin1*), Rinda Yunia Sari2, Ballighul Fal2, Syukrianto1 ................................................................ 32

Pembuatan Pupuk Organik Cair Limbah Kulit Nanas Dengan Enceng Gondok Pada Tanaman Tomat

(Lycopersicon Esculentum L.) Dan Tanaman Cabai (Capsicum Annuum L.)Aureus .......................................... 37

Intan Ayu Kusuma Pramushinta 1 .......................................................................................................... 37

Induksi Kalus Piper retrofractum Vahl. dengan Zat Pengatur Tumbuh Auksin dan Sitokinin ............................ 41

Junairiah1*), Dewi Amelia Sofiana1), Yosephine Sri Wulan Manuhara1), Surahmaida2) ...................... 41

Validasi Metode Analisis Formaldehid Pada Tisu Basah.................................................................................... 47

Dwi Wahyuniati1*), Cicik Herlina Yulianti2, Mercyska Suryandari2 .................................................... 47

Hospitalisasi Pasien Skizofrenia di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya ............................................................. 51

Fitria Dewi Yunitasari1, Ilil Maidatuz Zulfa1*) ....................................................................................... 51



Halaman Kosong



9

Artikel Penelitian

Pengaruh konsentrasi Bawang Merah (Allium Cepa) Dan Temu Kunci

(Boesenbergia rotunda) Sebagai Pengawet Alami Terhadap Mutu

Mutu Biologi Ikan Kembung (Rastrellinger sp.) dan Ikan Tuna

(Thunnus sp.)

Galuh Ratmana Hanum1*), Syahrul Ardiansyah1*), Zamhariroh1, Sintya Rarah Anglania1,

1Prodi Teknologi Laboratorium Medis, Universitas Muhammadiyah Sidoarjo, Jl. Mojopahit 666 B, Sidoarjo,

Jawa Timur, Indonesia

*)E-mail : [email protected],

[email protected]

ABSTRAK

Makanan merupakan sumber energi yang berperan penting untuk kelangsungan hidup manusia, salah satunya ikan.

Omega 3 dan 6 banyak terdapat pada ikan. Penelitian untuk mengetahui pengaruh konsentrasi bawang merah

(Allium cepa) dan temu kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet alami terhadap mutu mutu biologi ikan

kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.). Rancangan percobaan dari penelitian ini dengan

menggunakan model faktorial yaitu konsentrasi bawang merah (Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia

rotunda). Hasil dari penelitian ini bahwa Konsentrasi bawang merah (Allium cepa) dan temu kunci (Boesenbergia

rotunda) sebagai pengawet alami berpengaruh terhadap mutu biologi ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan

tuna (Thunnus sp.).

Kata kunci: Jumlah koloni, Konsentrasi bawang merah, Konsentrasi temu kunci.

ABSTRACT

Food is an important energy for human life, one of them is fish. Omega 3 and 6 are widely available in fish. The

purpose of this Research is to know the content of spanish onion (Allium cepa) and fingerroot (Boesenbergia

rotunda) as the preservative of fish and tuna fish (Thunnus sp.). The Design of this research by using factorial

mode that is concentration of spanish onion (Allium Cepa) and fingerroot (Boesenbergia rotunda). The results of

this research are spanish onion concentration (Allium cepa) and fingerroot (Boesenbergia rotunda) as

preservative of fish and tuna fish(Thunnus sp.).

Key Words: count of colony, concentration of spanish onion, concentration of fingerroot.

1. PENDAHULUAN

Makanan merupakan sumber energi yang

berperan penting untuk kelangsungan hidup manusia.

Sumber makanan dapat diperoleh dari hewan dan

tumbuhan. Salah satu sumber makanan dari hewan

yaitu ikan. Ikan merupakan sumber makanan yang

banyak mengandung protein, vitamin, lemak serta

mineral yang baik untuk tubuh. Berdasarkan

habitatnya, ikan dapat hidup di laut dan di air tawar

[6].

Ikan kembung (Rastrelliger sp) termasuk ikan

pelagis yang banyak hidup di laut Jawa dan paling

banyak dikonsumsi oleh masyarakat karena harganya

yang relatif murah, banyak mengandung omega 3 dan

omega 6 [15].

Kandungan protein ikan tuna (Thunnus sp.)

antara 22,6-26,2 per 100 gram daging sedangkan

kandungan lemak antara 0,2-2,7 per 100 gram daging.

Selain protein dan lemak ikan tuna (Thunnus sp.)

mengandung beberapa mineral seperti kalsium, fosfor,

besi. Vitamin yang terdapat pada ikan tuna (Thunnus

sp.) antara lain vitamin A dan vitamin B [10].

Aktivitas mikroorganisme merupakan salah satu

penyebab kerusakan pada ikan[4]. Enzim yang

terdapat pada ikan yang telah mati akan mulai aktif

memecah daging ikan menjadi substansi yang

sederhana dan mikroorganisme yang terdapat dalam

perut, insang dan kulit akan berkembangbiak dengan

cepat sehingga menyebabkan pembusukan dan

menimbulkan bau yang tidak sedap [7].

Ikan cepat sekali membusuk. Hal ini disebabkan

oleh aktivitas mikroorganisme yang terdapat pada

ikan. Sehingga produsen melakukan berbagai cara

supaya ikan tetap terlihat segar dengan cara

pengawetan. Pengawetan yang biasa dilakukan yaitu

dengan cara memasukkan ikan ke dalam box yang

berisi es, tetapi ada juga produsen yang mengawetkan





10

ikan dengan menggunakan formalin. Pengawetan

pada ikan yang sering dilakukan yaitu dengan

penambahan es balok supaya ikan terlihat tetap segar

[2].

Menurut Rahayu (2015), kandungan senyawa

kimia pada kulit bawang merah yaitu flavonoid,

polifenol, saponin, terpenoid dan alkaloid [20].

Bawang merah (Allium cepa) mengandung senyawa

allisin, alliin, allil propil disulfida, asam fenolat, asam

fumarat, asam kaprilat, dihidroalin, floroglusin,

fosfor, fitoserol, flavonol, flavonoid, pektin, saponin,

triopropanal sulfoksida, propil disulfida, sikloaliin dan

sterol [16].

Temu kunci (Boesenbergia rotunda) tumbuh

dibawah permukaan tanah. Temu kunci rasanya manis

getir dan aromanya khas menyegarkan, bisa dijadikan

bumbu sayur bening dan minuman instan [12].

Kandungan kimia yang terdapat dalam tanaman temu

kunci yaitu minyak atsiri yang terdiri dari kamfer,

sineol, d-borneol, zingebierin, kurkumin, zedoarin,

metil sinamat, hidromirsen, damar, zat pati, saponin,

flavonoid, pinostrolerin, dan alipinetin [22].

Penelitian untuk mengetahui pengaruh

konsentrasi bawang merah ((Allium cepa) dan temu

kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet alami

terhadap mutu biologi ikan kembung (Rastrellinger

sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.).

2. MATERI

Perhitungan secara tidak langsung telah banyak

dilakukan dengan cara mengencerkan biakan beberapa

kali dan ditumbuhkan pada media. Perhitungan secara

tidak langsung hanya menghitung sel-sel yang hidup

dan sangat peka. Keuntungan lain perhitungan secara

tidak langsung adalah dapat mengetahui jenis

mikroorganisme dengan mengamati bentuk koloni

yang tumbuh dan kemungkinan dapat mengisolasi tipe

koloni yang dominan untuk identifikasi taksonomi.

Uji Total Plate Count (TPC) ini dilakukan untuk

mengurangi kerugian yang dihasilkan pada uji

reduktase. Semua tahapan pada uji TPC dilakukan

dengan cara aseptik. Uji TPC dapat diterima secara

internasional. Pengujian TPC dilakukan dengan cara

menumbuhkan bakteri dalam susu yang telah

diencerkan. Pengenceran dilakukan di dalam larutan

peptone di cawan Petri. Media tumbuh berupa plate

count dan diinkubasi dengan suhu 37°C selama 24

jam. Jumlah koloni bakteri yang dapat dihitung adalah

30-300 koloni (Susilorini, 2006).

3. METODE PENELITIAN

Sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan

ikan tuna (Thunnus sp.) dididapatkan dari pasar

tradisional yaitu PPI (Pusat Pelelangan Ikan), Pasar

Delegan dan Pasar Campurejo di Kecamatan Panceng

Kabupaten Gresik. Sampel ikan kembung

(Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus sp.)

dipotong dengan ukuran 4 cm x 4 cm x 2 cm dan

direndam selama 3 hari.

Membuat larutan bawang merah konsentrasi

10%, 20%, 30%, 40% dan 50% dengan menyiapkan

bawang merah sebanyak ± 2 kg, memotong dadu

bawang merah menggunakan pisau, menimbang

bawang merah sebanyak 100 gram, 200 gram, 300

gram, 400 gram dan 500 gram.Membuat larutan

bawang merah dengan konsentrasi 10% dengan

memasukkan 100 gram bawang merah dan

menambahkan aquades sebanyak 500 mL ke dalam

blender, kemudian dihaluskan dan disaring

menggunakan kain putih bersih, memasukkan

kedalam labu ukur 1000 mL dan menambahkan

aquades hingga tanda batas pada labu ukur.

Mengulangi pembuatan larutan bawang merah dengan

konsentrasi 20%, 30%, 40% dan 50% (Mukaromah,

2016).

Temu kunci sebanyak ± 2 kg, dipotong dengan

dirajang menggunakan pisau, kemudian ditimbang

sebanyak 100 gram, 200 gram, 300 gram, 400 gram,

dan 500 gram untuk membuat larutan temu kunci

dengan konsentrasi 10-50%. Pembuatan larutan temu

kunci 10% dilakukan dengan mengambil 100 gram

temu kunci kemudian ditambahkan aquades sebanyak

500 mL dan diblender. Setelah itu disaring dengan

kain putih. Filtrat yang diperoleh diencerkan menjadi

1000 mL. Langkah di atas diulangi untuk pembuatan

larutan temu kunci dengan konsentrasi 20%, 30%,

40%, dan 50% dengan berat temu kunci sesuai yang

sudah ditimbang untuk tiap konsentrasi [18].

Analisa mutu biologi dengan menggunakan

metode Total Plate Count. Tujuan dari analisa

mikrobiologi adalah untuk menghitung jumlah bakteri

yang terdapat pada sampel. Menimbang media NA

(Nutrient Agar) sebanyak 28 gram, kemudian

dilarutkkan dengan aquades sebanyak 1.400 mL.

Larutan dipanaskan hingga larut sempurna, kemudian

pH media diatur hingga normal (pH 7,0). Setelah itu,

disterilkan dengan autoclave selama 15 menit pada

suhu 121°C.

Analisa total bakteri (Total Plate Count) dengan

metode Pour Plate dilakukan dengan pengenceran.

Pengenceran dilakukan dengan menghaluskan sampel

ikan kembung dlam larutan pengencer NaCl



11

dengan perbandingan 1:9. Menyiapkan larutan

pengencer NaCl 90 mL untuk pengenceran 10-1dan

dimasukkan pada erlenmeyer, sedangkan untuk

pengenceran 10-2, 10-3, 10-4, 10-5 masing-masing

sebanyak 9 mL NaCl dan masukkan pada tabung

reaksi. Kemudian semua larutan pengencer disterilkan

dengan menggunakan autoclave pada suhu 121°C

selama 15 menit.

Sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan

ikan tuna (Thunnus sp.) yang telah halus ditimbang

sebanyak 10 g kemudian dimasukkan kedalam 90 mL

NaCl steril dan dihomogenkan. Diambil senamyak 1

mL dari pengenceran 10-1 dan dicampurkan dengan 9

mL larutan pengencer dan dihomogenkan sehingga

diperoleh pengenceran 10-2. Prosedur ini diulang

hingga pengenceran 10-3, 10-4, 10-5. Masing-masing

pengenceran diambil 1 mL dan dipindahkan kedalam

cawan petri steril (masing-masing cawan petri diberi

label). Menuangkan media Nutrient Agar kedalam

cawan petri yang telah berisi inokulum sebanyak ±15

ml lalu digoyangkan hingga merata. Kemudian

didinginkan selam 15-20 menit hingga agar membeku

lalu diinkubasi selama 24 jam pada suhu 37°C

diinkubator [11].

4. HASIL DAN PEMBAHASAN

Berdasarkan uji laboratorium yang dilakukan

di laboratorium Bakteriologi Teknologi Laboratorium

Medis Universitas Muhammadiyah Sidoarjo terhadap

sejumlah sampel ikan kembung (Rastrellinger sp.) dan

ikan tuna (Thunnus sp.). Nilai TPC ikan tuna (Thunnus

sp.) pada konsentrasi 10% mengalami kenaikan pada

pengenceran 10-2 tetapi nilai TPC pada ikan tuna

(Thunnus sp.) pada konsentrasi 20%, 30%, 40% dan

50% tidak mengalami kenaikan. Pada penelitian Afl

ial et al. (2006) terjadi peningkatan jumlah bakteri

pada ikan sardin yang mencapai lebih dari log 7 cfu/g

selama penyimpanan 25 jam pada suhu 30°C. Waktu

penyimpanan, suhu penyimpanan dan pH yang

optimum merupakan faktor pertumbuhan mikroba

[21].

Konsentrasi ekstrak bawang merah (Allium

Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia rotunda)

mempengaruhi pertumbuhan mikroba pada daging

ikan. Mekanisme kerja antibakteri ekstrak bawang

merah (Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia

rotunda) dapat menghambat sintesis asam nukleat dan

fungsi membran dan penyebaran koloni [8].

Gambar 1. Grafik Nilai TPC Ikan Tuna (Thunnus

sp)

Nilai TPC ikan kembung (Rastrellinger sp.)

pada konsentrasi 10%, 20%, 30% dan 40%

mengalami kenaikan pada pengenceran 10-2 namun

pada pengenceran 10-3 sampai 10-5 mengalami

penurunan. Sedangkan pada konsentrasi 50% nilai

TPC mengalami penurunan. Menurut Hidayati (2005),

Nilai TPC yang berbeda-beda dapat dipengaruhi suhu

dan lama penyimpanan sehingga mempengaruhi

kandungan protein dan jumlah koloni pada ikan.

Penurunan nilai TPC pada ikan kembung

(Rastrellinger sp.) karena ikan kembung

(Rastrellinger sp.) menyerapan ekstrak bawang merah

(Allium Cepa) dan temu kunci (Boesenbergia

rotunda) dengan sempurna sehingga dapat

menghambat pertumbuhan bakteri. Bakteri

akantumbuh baik pada kondisi basa dan pH optimum

untukpertumbuhanbakteriadalah antara 7,0 - 7,5 dan

suhu optimum pertumbuhan 37°C (Supardi dan

Sukamto, 1999).

Gambar 2. Grafik Nilai TPC Ikan Kembung

(Rastrellinger sp.)

25

0 1 01 1 1 0 02

0 0 0 00 1 0 0 00 0 0 0 00

5

10

1 2 3 4 5

Has

il T

PC

Pengenceran 10-n

Nilai TPC Ikan Tuna (Thunnus sp.)

10% 20% 30% 40% 50%

1

2

0

1

2

0

1 1 1

0

1

0

2

1

0

1

2

1 1

0

2

1

0

1 1

0

1

2

3

1 2 3 4 5

Has

il TP

C

Pengenceran 10-n

Nilai TPC Ikan Kembung (Rastrellinger sp.)

10% 20% 30% 40% 50%



12

5. KESIMPULAN

Konsentrasi bawang merah (Allium cepa) dan

temu kunci (Boesenbergia rotunda) sebagai pengawet

alami berpengaruh terhadap mutu biologi ikan

kembung (Rastrellinger sp.) dan ikan tuna (Thunnus

sp.).

6. SARAN

Penelitian lebih lanjut menghitung kadar

proksimat pada produk atau hasil perikanan yang

beredar dipasararan.

DAFTAR PUSTAKA

1. Abdullah MIB. Physicochemical profi ling and detection

of phenolic constituents with antioxidant and

antibacterial activities of Myristica fragrans houtt.

[thesis]. NSF, 46 p.; 2009.

2. Adawyah, R. Pengolahan dan Pengawetan Ikan. Jakarta:

Bumi Aksara; 2007.

3. Aflial MA, Daoudi H, Jdaini S, Asehraou A, Bouali A.

Study of the histamine production in a red fl esh fi

sh (Sardina pilchardus) and a white fl esh fi sh

(Dicentrarchus punctatus). Turkish Journal of

Fisheries and Aquatic Sciences 6: 43-48; 2006.

4.Afrianti, L.H. Teknologi Pengawetan Pangan. Bandung:

Alfabeta; 2014.

5.Andayani, Triana. Minyak Atsiri Daun Sirih Merah (Piper

Crocatum) Sebagai Pengawet Alami Pada Ikan Teri

(Stolephorus indicus). Jurnal Bioproses Komoditas

Tropis 2; 2014.

6. Anjarsari, B. Pangan Hewani (Fisiologi Pasca Mortem

dan Teknologi) hlm. 98-99. Yogyakarta: Graha

Ilmu; 2010.

7. Ariyani, F., Murtini, J.T., Indriati, N., Dwiyitno, dan

Yenni, Y. Penggunaan Glyroxyl Untuk

Menghambat Penurunan Mutu Ikan Mas (Cyprinus

carpio) Segar. Jurnal Perikanan. 2007: Vol.IX(1).

8. Cushnie TPT, Lamb AJ. Antimicrobial activity of fl

avonoids. International Journal of Antimicrobials

Agents. 2005: 26:343-356.

9. Damayanti, Evina. Efektivitas Kunyit (Curcuma Longa

Linn.) Sebagai Pereduksi Formalin Pada Udang

Putih (Penaeus merguiensis) Penyimpanan Suhu

Dingin. Jurnal Pengolahan dan Bioteknologi Hasil

Perikanan 3. 2014.

10. Dewi, S.R. Teknik Pengolahan Ikan Tuna (Thunnus sp.)

Beku di PT. Tridaya Eramina Bahari, Muara Baru

Ujung, Jakarta Utara (Skripsi). Surabaya:

Universitas Airlangga; 2015.

11. Fardiaz, S. Analisis Mikrobiologi Pangan. Jakarta: PT

Raja Grafindon Persada; 1993.

12. Harmanto, N. Jus Herbal Segar dan Menyehatkan.

Jakarta: PT Elex Media Komputindo; 2007.

13. Hidayati L. Pengaruh Suhu dan Lama Penyimpanan

dalam Penyimpanan Freezer Lemari Es Terhadap

Kandungan Protein dan Jumlah Total Koloni Bakteri

Ikan Bandeng (Chanos chanos). [Tesis]. Malang:

Universitas Muhammadiyah; 2005.

14. Hirai I, Okuno M, Katsuma R, Arita N, Tachibana M,

Yamamoto Y. Characterisation of anti-

Staphylococcus aureus activity of quercetin.

International Journal of Food Scince and

Technology. 2010: 45(6): 1250-1254.

15. Irmawan, S. Status Perikanan Ikan Kembung di

Kabupaten Barru. Laporan Penelitian. Fakultas

Perikanan dan Ilmu Kelautan. Malang: Universitas

Brawijaya; 2009.

16. Jaelani. Khasiat Bawang Merah. Yogyakarta: Kanisius;

2007.

17. Mukaromah, L. Pengaruh Perendaman Daun Salam

(Syzygium polyanthum.) Terhadap Penurunan Kadar

Formalin Pada Tahu (Karya Tulis Ilmiah).

Surabaya: Politeknik Kesehatan Surabaya; 2016.

18. Mukaromah, L. Pengaruh Perendaman Daun Salam

(Syzygium polyanthum.) Terhadap Penurunan Kadar

Formalin Pada Tahu (Karya Tulis Ilmiah).

Surabaya: Politeknik Kesehatan Surabaya; 2016.

19. Prasetiawan, Nanda Radithia. Penghambatan

Pembentukan Histamin Pada Daging Ikan Tongkol

(Euthynnus Affi Nis) Oleh Quercetin Selama

Penyimpanan. JPHPI 16; 2013.

20. Rahayu, S., Kurniasih, N., dan Amalia, V. Ekstraksi dan

Identifikasi Senyawa Flavonoid dari Limbah Kulit

Bawang Merah sebagai Antioksidan Alami. Jurnal

al Kimia. 2015: Vol. 2 No. 1.

21. Sanchez-Zapata E, Amensour M, Oliver R, Fuentes-

Zaragoza E, Navarro C, FernandezLopez J, Sendra

E, Sayas E, Perez-Alvarez JA. Quality

characteristics of dark muscle from yellowfi n tuna

Th unnus albacores to its potential application in

food industry. Food and Nutrition Sciences. 2011: 2:

22-30.

22. Saparinto, C. dan Diana H. Bahan Tambahan Pangan.

Yogyakarta: Kanisius; 2006.

23. Supardi, I. dan Sukamto. Mikrobiologi dalam Pengolahan

dan Keamanan Pangan. Bandung: Alumni; 1999.

24. Susilorini, Tri Eko, Manik Eirry Sawitri. Produk Olahan

Susu. Jakarta : Penebar Swadaya; 2006.



13

Artikel Penelitian

Aktivitas Antibakteri Daun Pepaya (Carica Papaya) Menggunakan

Pelarut Etanol Terhadap Bakteri Bacillus subtilis Tri Puji Lestari Sudarwati 1*)

1 Bidang Ilmu Mikrobiologi, Akademi Farmasi Surabaya

*)Email: [email protected]

ABSTRAK

Daun pepaya banyak digunakan masyarakat sebagai obat tradisional. Daun pepaya mengandung senyawa

antibakteri seperti tannin, alkaloid, flavonoid, terpenoid, saponin dan alkaloid karpain. Bakteri Bacillus subtilis

merupakan bakteri yang mengontaminasi makanan dan dapat menyebabkan infeksi gastroenteritis. Tujuan

penelitian untuk mengetahui kemampuan ekstrak daun pepaya (Carica papaya L) dalam menghambat

pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis. Jenis penelitian ini adalah eksperimen laboratorium. Uji daya hambat

menggunakan metode difusi kertas cakram. Variabel penelitian yaitu konsentrasi ekstrak daun pepaya 20 µg/mL,

40 µg/mL, 60 µg/mL, 80 µg/mL, 100 µg/mL dan zona hambat pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis. Hasil

penelitian ini didapatkan ekstrak daun papaya (Carica papaya L) dapat menghambat pertumbuhan bakteri Bacillus

subtilis pada konsentrasi 20% sampai 100% dengan rata – rata diameter zona hambat 8,1 mm sampai dengan 8,6

mm dengan kategori sedang. Hal ini menunjukkan bahwa ekstrak daun pepaya (Carica papaya L) mempunyai

pengaruh terhadap pertumbuhan bakteri Bacillus subtilis.

Kata kunci: Daun Pepaya,Etanol, Bacillus subtilis.

ABSTRACT

Papaya leaves are common to use as a traditional medicine for society. Papaya leaves contain of anti-bacteria

compound, such as tannins, alkaloids, flavonoids, terpenoids, saponins, and karpain alkaloids. Bacillus subtilis is

a bacteria that contaminates food and can cause gastroenteritis infection. The purpose of this observation is to

find out the ability of papaya leaves extract towards the obstruction of Bacillus subtilis bacteria. The observer

conducts a laboratory experiment. To conduct obstruction power test, the observer uses disc paper diffusion

method. The observation variable measures the papaya leaves extract concentration in 20 µg/mL, 40 µg/mL, 60

µg/mL, 80 µg/mL, 100 µg/mL and the obstruction zone growth of Bacillus subtilis bacteria. Hence, the result

shows that papaya leaves (Carica papaya L) extract successfully obstruct the growth of Bacillus subtilis bacteria

in a concentration range 20 % to 100 % with the diameter zone average 8,1 mm to 8,6 mm in a medium category.

Thus, it shows that papaya leaves (Carica papaya L) extract significantly influence the growth of Bacillus subtilis

bacteria.

Key Words: Papaya leaves, Ethanol, Bacillus subtilis bacteria.

1. PENDAHULUAN

Eksplorasi bahan alam sebagai bahan obat

utamanya sebagai anti bakteri banyak dilakukan

mengingat bahwa dengan perkembangan populasi

bakteri yang resisten, maka antibiotik yang

pernah efektif untuk mengobati penyakit-

penyakit tertentu kehilangan nilai

kemoterapeutiknya. Sejalan dengan hal tersebut,

bahwa adanya kebutuhan yang terus-menerus

untuk mengembangkan obat-obat baru dan

berbeda untuk menggantikan obat-obat yang telah

menjadi tidak efektif. Penggunaan tanaman obat

dipercaya masyarakat memiliki khasiat dan telah

digunakan secara turun – menurun berdasarkan

pengalaman. Setiap bagian tanaman yang

digunakan sebagai pengobatan seperti akar,

batang, dan daun.

Salah satu bagian dari tanaman yang

digunakan sebagai pengobatan yakni daun

papaya. Daun papaya digunakan sebagai

pengobatan tradisional karena tanaman ini

memiliki kandungan kimia yaitu, alkaloid,

saponin, dan flavonoid pada daun, akar dan kulit

batangnya, pada daun dan akarnya mengandung

polifenol, serta mengandung saponin pada bijinya

[2]. Identifikasi senyawa kimia flavonoid dengan

metode HPLC (High Performance Liquid

Chromatoraphy) pada column ke 18 juga

ditemukan walaupun dalam jumlah yang sedikit.

Adanya kandungan senyawa kimia pada daun

papaya ini dapat digunakan sebagai anti bakteri

misalnya bakteri Bacillus subtilllis.

Bakteri Bacillus subtillis ini merupakan

bakteri gram Gram positif , yang termasuk dalam

organisme saprofit yang sering terdapat dalam tanah,

air, udara dan pada tumbuh – tumbuhan.



14


Bahan yang digunakan adalah serbuk daun

papaya (Carica papaya), etanol, NA (Nutrien Agar),

Biakan murni Bacillus subtillis yang diperoleh dari

Laboratorium Mikrobiologi Universitas Airlangga

Surabaya. Alat yang digunakan dalam penelitian ini

meliputi soxhlet, evaporator, timbangan analitik,

oven, inkubator, autoclave, kertas cakram jangka

sorong, dan alat-alat gelas.

Cara Kerja Daun pepaya (Carica papaya) yang digunakan

adalah daun pepaya yang berwarna hijau tua kemudian

dicuci untuk memisahkan kotoran – kotoran yang

menempel pada daun. Kemudian dilakukan

perajangan simplisia dan pengeringan simplisia

dibawah sinar matahari dan ditutupi kain berwarna

hitam. Pengeringan dilakukan dengan membolak –

balik simplisia hingga kering merata. Kemudian

simplisia yang telah kering diserbuk menggunakan

blender. Sampel kering daun pepaya sebanyak 10 g

diekstraksi dengan metode maserasi menggunakan

pelarut etanol 100 mL selama 5 hari didalam wadah

toples gelap. Diaduk setiap hari dengan jam yang

dapat menyebabkan meningitis, endokarditis, dan

infeksi mata. Bakteri ini membentuk formasi

endospora yang membuat ia mampu bertahan lama

dilingkungan [5]. Bakteri Bacillus subtillis

menyebabkan penyakit pada manusia dengan sistem

imun terganggu, misalnya gastroenteritis akut dan

meningitis [4].

Kandungan antibakteri (papain dan karpain)

yang terdapat pada daun papaya dapat digunakan

sebagai anti jerawat dalam penggunaan sebagai

produk kosmetik,, serta sifat bakteriostatik yang

dimiliki ekstrak daun papaya terhadap bakteri

Eschericia coli, Salmonella thypi dan beberapa jenis

bakteri yang lain. Penelitian ini bertujuan untuk

mengetahui pengaruh ekstrak daun papaya (Carica

papaya) menggunakan pelarut etanol terhadap zona

hambat bakteri Bacillus subtillis. sama, selama ± 15

menit. Setelah 5 hari ekstrak disaring dengan

menggunakan corong dan kain flanel. Hasil maserasi

tersebut diuapkan menggunakan alat evaporator pada

suhu 40ºC untuk memisahkan pelarut etanol sampai

memperoleh ekstrak kental. Hasil ekstraksi

dimasukkan dalam botol kaca steril. Pada pengujian

antibakteri digunakan media NA (Nutrient Agar) yang

di buat sesuai dengan komposisi yang diperlukan.

Pada penelitian ini menggunakan ketras cakram

karena metode yang digunakan adalah metode kertas

cakram atau disc diffusion. Biakan murni Bacillus

subtillis yang di peroleh dari Universitas Airlangga

Surabaya diperbarui selama dalam waktu 24 jam.

Hasil ekstraksi Daun pepaya (Carica papaya) di

encerkan dengan pengenceran 5 konsentrasi yaitu 20

µg/ml, 40 µg/ml, 60 µg/ml, 80 µg/ml, 100 µg/ml. Dan

dilakukan pengulangan 6 kali.Pengamatan dan

pengukuran diameter zona bening yang terbentuk di

sekitar cakram dilakukan setelah 24jam menggunakan

jangka sorong. Penelitian dilakukan di Laboratorium

Mikrobiologi Akademi Farmasi Surabaya.


Berdasarkan tabel Uji Aktivitas Ektsrak Daun

Papaya (Carica papaya) menggunakan pelarut etanol

terhadap zona hambat bakteri Bacillus subtillis terlihat

bahwa ektsrak daun papaya (Carica papaya) pada

konsentrasi berbeda dan masing-masing dilakukan 6

kali pengulangan menghasilkan diameter rata-rata

zona hambat yang sama terhadap bakteri Bacillus

subtillis. Pada hasil uji pengaruh ekstrak daun papaya

(Carica papaya) menggunakan pelarut etanol

terhadap zona hambat bakteri Bacillus subtillis

konsentrasi 20µg/ml sampai 100µg/ml masuk dalam

kategori zona hambat sedang dalam menghambat

pertumbuhan bakteri Bacillus subtillis. Hal ini

dipengaruhi oleh adanya senyawa-senyawa pada daun

papaya (Carica papaya). Adapun senyawa yang

terdapat pada daun papaya (Carica papaya)

diantaranya adalah tannin, alkaloid, flavonoid,

terpenoid, dan saponin yang bersifat sebagai anti

bakteri [8]. Senyawa antibakteri saponin yang

memiliki kemampuan membentuk busa yang tahan

lama sewaktu mengekstrasi tumbuhan atau

memekatkan tumbuhan [9]. Saponin memliki aktivitas

antimikroba melalui mekanisme kebocoran protein

dan enzim – enzim dari sel bakteri [9]. Senyawa

saponin berdasarkan daya kerjanya bersifat

bakteriostatik yaitu dengan menghambat pertumbuhan

bakteri. Senyawa tersebut dalam menghambat

pertumbuhan bakteri dengan cara merusak struktur

dinding sel setelah terbentuk atau mengubahnya

setelah terbentuk, dan permeabilitas sel bakterinya

dirusak. Maka terjadi kebocoran nutrisi didalam sel

sehingga dapat mengakibatkan terhambatnya

pertumbuhan sel atau matinya sel [7]. Flavonoid yang

dapat mendenaturasi dan mengkoagulasi protein serta

merusak membran dinding sel, sehingga dapat

digunakan sebagai anti bakteri [3,6]. Terbentuknya

zona hambat dapat dilihat dari zona bening yang

terbentuk pada sekitar kertas cakram. Terbentuknya

zona bening di sekitar



15

kertas cakram di pengaruhi karena senyawa tanin

mempunyai mekanisme kerja terhadap bakteri adalah

menghambat enzim reverse transkriptase dan DNA

topoisomerase sehingga sel bakteri tidak dapat

terbentuk [6]. Tannin memiliki aktifitas antibakteri

yang berhubungan dengan kemampuannya untuk

menginaktifkan adhesin sel mikroba juga

menginaktifkan enzim, dan menggangu transport

protein pada pada lapisan dalam sel [3]. Menurut Sari

dan Sari (2011), tanin juga mempunyai target pada

polipeptida dinding sel sehingga pembentukan

dinding sel menjadi kurang sempurna. Hal ini

menyebabkan sel bakteri menjadi lisis karena tekanan

osmotik maupun fisik sehingga sel bakteri akan mati.

Selain itu, menurut Akiyama et al. 2001, kompleksasi

dari ion besi dengan tanin dapat menjelaskan toksisitas

tanin [1]. Mikroorganisme yang tumbuh di bawah

kondisi aerobik membutuhkan zat besi untuk berbagai

fungsi, termasuk reduksi dari prekursor ribonukleotida

DNA. Hal ini disebabkan oleh kapasitas pengikat besi

yang kuat oleh tanin.. Respon uji daya hambat daun

papaya (Carica papaya) terhadap bakteri Bacillus

subtillis menujukkan jika pada konsentrasi

60µg/ml,80µg/ml dan 100µg/ml masuk kategori zona

hambat sedang dalam menghambat pertumbuhan

bakteri Bacillus subtillis.

Tabel 1. Hasil pengukuran diameter zona hambat bakteri Bacillus subtilis pada konsentrasi tertentu

Replikasi kontrol

negative

(-)

Luas Zona Hambat

20 µg/mL 40 µg/mL 60

µg/mL

80 µg/mL 100 µg/mL

1 - 8,2 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,1 mm

2 - 8,1 mm 8,5 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,4 mm

3 - 8,3 mm 8,1 mm 8,3 mm 8,5 mm 8,5 mm

4 - 8,1 mm 8,7 mm 8,6 mm 8,7 mm 8,9 mm

5 - 8,1 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,3 mm 8,7 mm

6 - 8,0 mm 8,3 mm 8,2 mm 8,5 mm 8,8 mm

Rata - rata - 8,1 mm 8,3 mm 8,4 mm 8,4 mm 8,6 mm

Kategori Tidak aktif Sedang Sedang Sedang Sedang Sedang

4. KESIMPULAN

Ekstrak etanol daun pepaya berpengaruh terhadap

zona hambat bakteri Bacillus subtilis dengan kategori

yang dihasilkan pada konsentrasi 20 µg/mL adalah 8,1

mm, konsentrasi 40 µg/mL adalah 8,3 mm, kosentrasi

60 µg/mL adalah 8,4 mm, konsentrasi 80 µg/mL

adalah 8,4 mm, dan konsentrasi 100 µg/mL adalah 8,6

mm. Pada semua konsentrasi dikategorikan sebagai

kategori sedang dalam menghambat bakteri Bacillus

subtilis.

5. UCAPAN TERIMA KASIH

Kepada Seluruh Keluarga Besar Mikrobiologi

Akademi Farmasi Surabaya.


Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah

manapun.

7. KONFLIK KEPENTINGAN

Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat potensi

konflik kepentingan dengan penelitian, kepenulisan

(authorship), dan atau publikasi artikel ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Akiyama, H., K. Fujii., O. Yamasaki., T. Oono., dan K.

Iwatsuki. Antibacterial Action of Several Tannin

against Staphylococcus aureus. Journal of

Antimicrobial Chemotherapy. 2001: 48: 487 – 491.

2. Astuti.D.S. Efek Ekstrak Etanol 70% daun Pepaya

(Carica papaya,L) Terhadap Aktifitas AST & ALT

pada Tikus Galur Wistar Setelah Pemberian Obat

Tuberkulosis (Isoniazide dan Rifampisin). 2009.

[Diakses pada tanggal 20 Oktober 2017]. Tersedia

dari : Santidaswety. files. wordpress.com/skripsi-

santi-dwi-astuti11051968-a.pdf..

3. Cowan, M.M. Plant Products as Antimicrobial Agents.

Clinical Microbiology Reviews. 1999: 12: 564 – 582.

4. Jawetz,M dan Adelberg’s. Mikrobiologi Kedokteran,

Edisi 23, diterjemahkan oleh Mudihargi,E.,

Kuntamah, Wasito, E.B., Mertaningsih,N.M.,

Huriwati,H. Dkk. Jakarta : Penerbit Buku Kedokteran

ECG; 2005.

5. Lolowang,M. 2014. Pola Bakteri Aerob Penyebab

Konjungtivis Pada Penderita Rawat Jalan di Balai

Kesehatan Masyarakat Kota Manado [Diakses pada

tanggal 20 November 2017]. Tersedia dari: jurnal e-

biomedik,2014-ejournal.unsrat.ac.id.pdf..

6. Nuria, M.C., A. Faizatun., dan Sumantri. Uji Antibakteri

Ekstrak Etanol Daun Jarak Pagar ( Jatropha cuircas L)

terhadap Bakteri Staphylococcus aureus ATCC

25923, Escherichia coli ATCC 25922, dan Salmonella



16

typhi ATCC 1408. Jurnal Ilmu – ilmu Pertanian. 2009:

5: 26 – 37.

7. Pelezar,J.R dan Michael,J. Dasar – dasar Mikrobiologi 2.

Jakarta: Penerbit Universitas Indonesia (UI Press);

1988.

8. Tuntun,M. Uji Efektivitas Daun Pepaya (Carica

papaya,L) Terhadap Pertumbuhan Bakteri

Escherichia coli Dan Staphylococcus aureus. Jurnal

Kesehatan. 2016 :Volume VII, Nomor 3, November

2017,hlm 497-502.

9. Yasni,S. Teknologi Pengolahan dan Pemanfaatan Produk

Ekstrak Rempah. Bogor: PT.Penerbit IPB Pess; 2013.



17

Artikel Penelitian

Penentuan Kadar Asam Lemak Bebas Dan Kadar Air Pada Minyak

Goreng Yang Digunakan Oleh Pedagang Gorengan Di Jalan

Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya Ika Fitri Ulfindrayani1*), Qurrota A’yuni2)

1Jurusan Teknik Elektro, Universitas Teknologi Surabaya 2Jurusan Teknik Kimia, Universitas Nahdhatul Ulama Sidoarjo

*)E-mail: [email protected].

ABSTRAK

Kebutuhan minyak goreng sawit di Indonesia terus meningkat dari tahun ke tahun. Kebutuhan terbesar

didominasi oleh penggunaan minyak goreng sawit sebagai media untuk menggoreng makanan yang salah

satunya yaitu jajanan goreng (gorengan). Mayoritas pedagang gorengan tidak memperhatikan kualitas dari

minyak goreng yang digunakan. Banyak pedagang gorengan membeli minyak goreng bekas (jelantah) demi

mendapatkan keuntungan yang besar. Pada minyak jelantah mengandung asam lemak bebas akibat pemanasan

berkala yang berbahaya bagi tubuh. Oleh karena itu, pada penelitian ini dilakukan pengujian kualitas minyak

goreng melalui dua parameter yaitu kadar asam lemak bebas dan kadar air. Hal ini bertujuan untuk mengetahui

kualitas minyak goreng yang digunakan oleh para pedagang gorengan. Sampel minyak goreng didapatkan dari

pedagang gorengan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya. Terdapat 7 pedagang

gorengan yang menjual gorengannya dengan harga sekitar Rp. 1.000 – Rp 2.000. Metode yang digunakan yaitu

metode titrasi alkalimetri dan metode gravimeteri. Hasil analisa kadar asam lemak bebas dan kadar air

menunjukkan bahwa dari 7 sampel terdapat 4 sampel minyak goreng yang tidak layak dikonsumsi karena tidak

sesuai dengan syarat mutu minyak goreng SNI 01-3741-2002.

Kata kunci: Asam Lemak Bebas, Kadar Air, Minyak Goreng, Pedagang Gorengan.

ABSTRACT

The requirement of palm cooking oil in Indonesia increase from year to year. It was dominated by the use

of palm cooking oil as a medium to fry. Fried food on street seller was one of foods that need oil in frying

process. Many street fried food seller did not pay attention to the quality of cooking oil that used to fry. Waste

cooking oil was the good choice for street fried food seller in order to get big profits. Waste cooking oil contains

of free fatty acids due to periodic warming that is harmful to the body. It was important for us to know the

quality of cooking oil which we used. Therefore, in this research, we did test the quality of cooking oil which

used street fried food seller. Free fatty acid and water content were two parameters that can describe the

quality of cooking oil. The samples of cooking oil were obtained from street fried food seller along Jalan

Manyar Sabrangan, Mulyorejo, Surabaya. There are 7 street seller that selling fried food with price of about

Rp. 1.000 - Rp 2.000. Alkalimetry titration and gravimetery method were used to determine free fatty acid and

water content of samples. The result showed there are 4 samples of cooking oil that was not worthy to be

consumed because not in accordance with requirement of cooking oil quality of SNI 01-3741-2002.

Key Words: Free Fatty Acid, Water Content, Cooking Oil, Street Fried Food Seller.

1. PENDAHULUAN

Salah satu kebutuhan pokok di Indonesia yang

terus meningkat kebutuhan setiap tahunnya adalah

minyak goreng sawit. Dari tahun 2012 hingga 2017

kebutuhan minyak goreng sawit meningkat dari

1.832.555 ton hingga 2.462.068 ton [2]. Minyak

goreng sawit ini banyak digunakan oleh masyarakat

untuk mengolah makanan. Makanan yang tidak lepas

dari kebutuhannya terhadap minyak goreng adalah

jajanan goreng (gorengan). Konsumsi gorengan di

masyarakat yang terus meningkat menjadikan daya

tarik bagi para pedagang untuk berjualan gorengan.

Penggunaan minyak goreng pada makanan

sangat erat kaitannya dengan kesehatan. Namun hal

ini kurang diperhatikan oleh masyarakat terutama

pedagang gorengan yang hanya berorientasi pada

keuntungan sehingga tidak memperhatikan kualitas

dari minyak goreng yang digunakan berjualan.

Banyak penjual gorengan yang memanfaatkan minyak

goreng bekas pakai (jelantah) untuk digunakan

berdagang dengan alasan utama yaitu penghematan

biaya. Ditinjau dari komposisi kimianya minyak

jelantah mengandung senyawa-senyawa yang bersifat




18

karsinogenik [6]. Adanya senyawa karsinogenik

tersebut disebabkan oleh proses penggorengan dengan

suhu tinggi yang dilakukan berulang-ulang dengan

minyak yang sama.

Kualitas minyak goreng dapat diketahui

dengan pengujian parameter kimia dan fisika. Uji

kimia dapat diketahui dari komponen-komponen

kimia yang terdapat pada minyak goreng yaitu kadar

asam lemak bebas, bilangan peroksida, bilangan iod

dan bilangan penyabunan. Sedangkan uji fisika dapat

diketahui dari kadar air, berat jenis, titik leleh dan

indeks bias minyak [6]. Pada Tabel 1 dapat dilihat

syarat mutu minyak goreng yang layak dikonsumsi

menurut Standar Nasional Indonesia (SNI) 01-3741-

2002.

Tabel 1. Syarat Mutu Minyak Goreng Layak

Konsumsi Menurut SNI 01-3741-2002

Kriteria Uji Satuan Standar Mutu

Bau - Tidak Berbau

Rasa - Normal

Warna -

Putih Kuning

Pucat - Kuning

Kadar Air %b/b 0,01-0,30

Kadar Asam

Lemak

Bebas

%b/b Maks 0,30

Bilangan

Asam

mg KOH/g Maks 0,60

Bilangan

Peroksida

Mg O2/100 g Maks 1,00

Pada tahun 2015, Nurhasnawati, H. dkk. [9] telah

melakukan pengujian kadar asam lemak bebas dan

bilangan peroksida pada minyak jelantah. Hasil yang

didapatkan dari penelitian tersebut yakni tingginya

kadar asam lemak bebas dan bilangan peroksida yang

terdapat pada minyak jelantah. Lempang, I. R. dkk. [8]

juga melakukan uji kualitas minyak goreng di Manado

yang meliputi kadar asam lemak bebas dan kadar air.

Hasil yang didapatkan menunjukkan bahwa minyak

goreng curah (pada umumnya minyak jelantah)

memiliki kadar asam lemak bebas yang tinggi yaitu

0,50% dan kadar air 0,25%. Dari penelitian-penelitian

tersebut dapat diketahui bahwa kadar asam lemak

bebas, bilangan perkosida dan kadar air yang terdapat

pada minyak jelantah yang dianalisa tidak sesuai

dengan syarat mutu minyak layak konsumsi menurut

SNI 01-3741-2002. Hasil yang tidak sesuai dengan

standar tersebut menunjukkan bahwa minyak tersebut

tidak layak untuk dikonsumsi.

Salah satu senyawa membahayakan

kesehatan yang terdapat pada minyak jelantah adalah

asam lemak bebas. Asam lemak bebas tersebut

dihasilkan dari proses hidrolisis (pemecahan minyak

oleh air) yang terjadi selama penggorengan [5]. Asam

lemak bebas banyak mengandung asam lemak jenuh

yang berantai panjang. Konsumsi asam lemak bebas

dalam jumlah banyak dapat meningkatkan kadar Low

Density Lipoprotein (LDL) dalam darah. Tingginya

LDL ini dapat menyebabkan penyakit jantung. Selain

itu, pada penelitian yang dilakukan oleh Oeije, A. A.

dkk. pada tahun 2007 [10] menunjukkan bahwa

pemberian minyak jelantah pada mencit dapat

menimbulkan kerusakan dan peradangan hati.

Rahayu, A. dkk. juga melaporkan bahwa minyak

jelantah dengan frekuensi penggorengan tinggi dapat

mempengaruhi nekrosis sel hati. Hal ini dikarenakan

asam lemak bebas yang terbentuk mempengaruhi

mekanisme metabolisme glukosa hati.

Oleh karena beberapa hal tersebut, maka

pada penelitian ini dilakukan penentuan kadar asam

lemak bebas dan kadar air yang terdapat pada minyak

goreng yang digunakan oleh para pedagang penjual

gorengan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan,

Mulyorejo, Surabaya, Indonesia. Hal ini bertujuan

untuk mengetahui kualitas minyak goreng yang

digunakan oleh pedagang penjual gorengan di

sepanjang Jalan Manyar Sabrangan, Mulyorejo,

Surabaya, Indonesia. Penelitian ini diharapkan dapat

meningkatkan kesadaran masyarakat akan pentingnya

mengetahui kualitas dan nilai gizi makanan yang ada

di sekitarnya.


Penelitian ini dilakukan melalui tiga tahap.

Tahap yang pertama yaitu pembuatan larutan NaOH

0,013 N yang akan digunakan sebagai titran.

Selanjutnya, diikuti tahap kedua yaitu standarisasi

larutan NaOH 0,013 N. Tahap yang terakhir

merupakan tahap uji kualitas sampel minyak goreng

jelantah yang meliputi uji kadar asam lemak bebas dan

uji kadar air.

2.1. Alat dan Bahan

Peralatan yang digunakan pada penelitian ini

adalah neraca timbang, pemanas (hot plate), oven,

buret, erlenmeyer 250 mL, labu ukur 500 mL, gelas

beaker 250 mL, botol timbang, pengaduk kaca, pipet

volume, pipet tetes dan tempat sampel.



19

Bahan-bahan yang digunakan pada penelitian

ini adalah NaOH, indikator Phenolphthalein, etanol

dan aquades.

2.2. Pembuatan Larutan NaOH 0,013 N

Sejumlah padatan NaOH yang telah dihitung

secara stokiometri ditimbang dan dimasukkan

kedalam labu ukur 250 mL. Selanjutnya padatan

NaOH ditambahkan aquades hingga volume mencapai

tanda batas. Kemudian larutan NaOH distandarisasi

dengan asam kuat. Larutan NaOH yang dihasilkan

digunakan sebagai titran pada penentuan kadar asam

lemak bebas yang terdapat dalam sampel minyak

goreng.

2.3. Analisa Kadar Asam Lemak Bebas

Penentuan kadar asam lemak bebas dilakukan

sesuai dengan metode yang telah dilakukan oleh

Rukunudin dkk. [13] dan Rahkadima dkk. [11],

sampel minyak goreng ditimbang sebanyak 2,82 gram

dan diletakkan ke dalam erlenmeyer 250 mL.

Kemudian sampel dilarutkan dalam etanol sebanyak 5

mL pada suhu 50°C. Sampel yang telah larut

sempurna ditambahkan 3 tetes phenolphthalein

sebagai indikator. Selanjutnya, sampel tersebut

dititrasi dengan larutan NaOH 0,013 N.

Kadar asam lemak bebas (%) yang terdapat pada

sampel minyak goreng dapat dihitung melalui rumus :

% Asam Lemak Bebas

(ALB)=mL NaOH × Normalitas NaOH × BM ALB

gram sampel × 1000 × 100%

2.4. Analisa Kadar Air

Analisa kadar air dalam sampel minyak goreng

dilakukan dengan metode gravimetri [3]. Sampel

minyak goreng ditimbang sebanyak 2 gram dan

diletakkan di dalam cawan porselen yang telah

diketahui beratnya. Kemudian, cawan porselen yang

telah berisi sampel minyak goreng di panaskan dalam

oven pada suhu 100°C sampai berat minyak konstan.

Setelah proses pemanasan, cawan porselen ditimbang

kembali untuk mengetahui berat air yang berkurang

selama proses pemanasan.

Kadar air (%) dari sampel minyak goreng yang

dianalisa dapat dihitung dengan rumus sebagai

berikut.

% Kadar Air= m1 (gram)- m2 (gram)

m0 (gram)×100%


Pada penelitian ini sampel minyak goreng

diambil dari pedagang jajanan (gorengan) yang

berjualan di sepanjang Jalan Manyar Sabrangan,

Mulyorejo, Surabaya. Pengambilan sampel

didasarkan pada harga gorengan yang dijual yakni

sekitar Rp. 1.000 – Rp. 2.000. Sejumlah 7 sampel

minyak goreng yang diambil dari beberapa pedagang

gorengan memiliki karakteristik yang berbeda-beda

terutama warna dari sampel. Perbedaan warna dapat

mewakili kualitas dari minyak goreng tersebut.

Menurut SNI 01-3741-2002 warna minyak goreng

yang sesuai dengan syarat mutu minyak goreng adalah

kuning pucat hingga kuning. Semakin gelap warna

dari minyak menunjukkan bahwa kualitas dari minyak

goreng tersebut telah berubah. Meskipun demikian,

warna tidak dapat dijadikan sebagai tolok ukur baik

atau tidaknya kualitas dari minyak goreng tersebut.

Dari Gambar 1 dapat diamati perbedaan warna dari

sampel minyak goreng yang diambil.

Gambar 1. Perbedaan Warna Sampel Minyak

Goreng Pedagang Gorengan

Pada penelitian ini, kualitas sampel minyak goreng

ditentukan melalui analisa kadar asam lemak bebas

dan kadar air yang terdapat dalam sampel minyak

goreng. Penentuan kadar asam lemak bebas dilakukan

melalui metode titrasi alkalimetri [3]. Analisa kadar

asam lemak bebas dilakukan sebanyak 3 kali (triplo)

pada semua sampel minyak goreng. Sebelum

dilakukan titrasi, sampel minyak goreng dilarutkan

terlebih dahulu ke dalam etanol. Titran yang

digunakan yaitu NaOH yang berperan menetralkan

asam lemak bebas yang terdapat dalam sampel minyak

goreng [12]. Phenolphthalein yang ditambahkan

berperan sebagai indikator untuk mengetahui kapan

titrasi dihentikan. Perubahan warna dari

phenolphthalein dari bening menjadi merah muda

menunjukkan bahwa semua asam lemak bebas dalam

sampel minyak goreng telah bereaksi sempurna

dengan NaOH. Proses titrasi dilakukan sebanyak 3

kali replikasi (triplo) dengan tujuan agar diperoleh

hasil yang akurat dan meminimalkan kesalahan

selama titrasi yang meliputi kebersihan peralatan

titrasi dan faktor human error. Hasil dari analisa kadar

asam lemak bebas dalam sampel



20

minyak goreng tersebut disajikan pada Tabel 2 di

bawah ini.

Tabel 2. Hasil Penentuan Kadar Asam Lemak

Bebas Dalam Sampel Minyak Goreng

Keterangan: M = Memenuhi syarat untuk dikonsumsi

TM = Tidak memenuhi syarat untuk

dikonsumsi

Pada Tabel 2 dapat diamati bahwa dari ketujuh

sampel terdapat 4 sampel yang mengandung asam

lemak bebas yang melebihi syarat mutu minyak

goreng, dimana berdasarkan SNI 01-3741-2002 kadar

maksimum asam lemak bebas yang layak dikonsumsi

sebesar 0,30%. Sampel minyak goreng yang memiliki

kadar asam lemak bebas lebih dari 0,30% yaitu sampel

2, 3, 4 dan 6. Hal ini menunjukkan bahwa sampel

tersebut tidak layak untuk dikonsumsi. Adanya asam

lemak bebas berlebih dapat disebabkan karena reaksi

hidrolisis dari trigliserida yang terdapat pada minyak

goreng selama proses penggorengan. Reaksi hidrolisis

minyak dapat menghasilkan asam lemak bebas dan

gliserol [4]. Reaksi hidrolisis dari minyak dapat dilihat

pada Gambar 2.

Gambar 2. Skema Reaksi Hidrolisis Minyak

Sampel 2, 3, 4 dan 6 merupakan sampel yang

tidak layak untuk dikonsumsi masyarakat. Hal ini

dikarenakan sampel tersebut memiliki kadar asam

lemak bebas yang tinggi. Asam lemak bebas yang

tinggi dapat mengakibatkan meningkatnya

konsentrasi kolestrol dalam tubuh. Tingginya

kolestrol dalam tubuh memicu penumpukan lemak

dalam pembuluh darah yang selanjutnya akan

mengakibatkan tersumbatnya pembuluh darah [6].

Penentuan kadar air dalam sampel minyak

goreng dilakukan dengan metode gravimetri [3].

Prinsip dari metode gravimetri tersebut yaitu

mengetahui jumlah air yang ada dalam sampel dengan

menimbang berat awal sampel sebelum dipanaskan

dan setelah dipanaskan. Kadar air yang dianalisa

adalah air yang terikat secara fisik dalam sampel

minyak goreng sehingga dapat dipisahkan dari minyak

dengan cara pemanasan pada oven dengan suhu

100°C-105°C [6]. Pada penelitian ini analisa

penentuan kadar air juga dilakukan sebanyak 3 kali

replikasi (triplo) untuk mendapatkan hasil yang

akurat. Hasil penentuan kadar air dalam sampel

minyak goreng dapat dilihat pada Tabel 3.

Tabel 3. Hasil Penentuan Kadar Air Dalam

Sampel Minyak Goreng

Sampel Minyak

Goreng Kadar Air (%) Keterangan

1 0,176 M

2 0,274 M

3 0,521 TM

4 0,376 TM

5 0,188 M

6 0,412 TM

7 0,186 M

Keterangan: M = Memenuhi syarat untuk

dikonsumsi

TM = Tidak memenuhi syarat untuk

dikonsumsi

Hasil tersebut menunjukkan bahwa sampel yang

memiliki kadar air yang tidak memenuhi syarat mutu

minyak goreng sesuai dengan SNI 01-3741-2002

adalah sampel 3, 4 dan 6. Sampel tersebut juga

tergolong sampel yang memiliki kadar asam lemak

bebas yang tinggi. Hal ini dapat dikarenakan kadar air

yang tinggi dapat memicu terbentuknya asam lemak

bebas dalam minyak. Pada Gambar 2 dapat dilihat

bahwa reaksi pembentukan asam lemak bebas pada

minyak melibatkan air (H2O) sebagai reaktannya

sehingga dapat disimpulkan semakin tinggi kadar air

maka semakin tinggi pula kadar asam lemak bebas

dalam minyak [7]. Gambar 3 menunjukkan korelasi

antara kadar asam lemak bebas dan kadar air dalam

sampel minyak goreng yang dianalisa pada

penelititian ini.

Sampel Minyak

Goreng

Kadar Asam Lemak

Bebas (%) Keterangan

1 0,205 M

2 0,310 TM

3 0,465 TM

4 0,333 TM

5 0,202 M

6 0,347 TM

7 0,225 M



21

Gambar 3. Korelasi Antara Kadar Asam

Lemak Bebas dan Kadar Air Dalam Sampel

Minyak Goreng

Kadar asam lemak bebas dan kadar air yang

terdapat pada sampel 2, 3, 4 dan 6 yang relatif tinggi

dapat disebabkan karena beberapa faktor. Salah satu

faktor utama penyebabnya yaitu penggunaan minyak

goreng berulang sehingga minyak mengalami

pemanasan berkali-kali dan dapat mempercepat

pembentukan asam lemak bebas. Pemanasan berkala

pada minyak goreng juga menyebabkan warna dari

minyak goreng berubah menjadi lebih gelap. Hal ini

dapat dilihat pada Gambar 1 bahwa sampel minyak

goreng yang memiliki warna lebih gelap cenderung

memiliki kadar asam lemak bebas dan kadar air yang

tinggi. Meskipun demikian, warna tidak dapat

dijadikan sebagai tolok ukur kualitas dari minyak

goreng.

Faktor lain yang tidak kalah penting yakni bahan

makanan yang digoreng dan penyimpanan minyak.

Semakin tinggi kadar air dari makanan yang digoreng

maka semakin tinggi pula kadar air yang terdapat

dalam minyak. Salah satu contoh makanan yang

mengandung kadar air tinggi yaitu tahu. Mayoritas

besar komposisi dari gorengan yang banyak dijual

adalah tahu. Dengan adanya penelitian ini masyarakat

diharapkan dapat mengetahui bagaimana ciri-ciri fisik

dari minyak goreng yang tidak layak konsumsi.

4. KESIMPULAN

Dari hasil penelitian ini, dapat diambil

kesimpulan bahwa sampel minyak goreng 2, 3, 4 dan

6 tergolong sampel minyak goreng yang tidak layak

untuk dikonsumsi dan berbahaya bagi kesehatan. Hal

ini dikarenakan sampel tersebut memiliki kadar asam

lemak bebas dan kadar air yang melebihi dari syarat

mutu minyak goreng layak konsumsi yang ditentukan

oleh SNI 01-3741-2002. Sedangkan sampel minyak

goreng 1, 5 dan 7 tergolong sampel minyak goreng

yang masih layak untuk dikonsumsi karena masih

memenuhi syarat mutu minyak goreng layak

konsumsi yang ditentukan oleh SNI 01-3741-2002.


Penulis mengucapkan terima kasih kepada para

Dosen Teknik Kimia Universitas Teknologi Surabaya

dan Universitas Nahdlatul Ulama Sidoarjo selaku

rekan yang bersedia memberikan kritik dan saran

selama kegiatan penelitian ini.

6. PENDANAAN


manapun.


Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat

potensi konflik kepentingan dengan penelitian,

kepenulisan (authorship), dan atau publikasi artikel

ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Aji R, Husamah, Nugroho AD. Studi frekuensi penggorengan dari minyak jelantah bermerek dan

tidak bermerek terhadap nekrosis sel hati. Malang :

Universitas Muhammadiyah Malang; 2008

2. Buletin Konsumsi Pangan Semester 2 [diunduh 10 Juli 2018]. Tersedia dari :

http://epublikasi.setjen.pertanian.go.id/epublikasi/b

uletin/konsumsi/2017/Buletin_Konsumsi_Pangan_

Semester_2_2017/files/assets/basic-html/page54.html

3. Day, Underwood. Kimia Analisis Kuantitatif. Jakarta:

Erlangga; 1997.

4. Hart, H. Kimia Organik Edisi 11. Jakarta: Erlangga; 2004.

5. Kalapathy, U. and Proctor, A. A New Method for Free

Fatty Acid Reduction in Frying Oil Using Silicate

Films Produced from Rice Hull Ash, JAOCS; 2000.

6. Ketaren S,. Minyak dan Lemak Pangan. Jakarta : UI

Press.; 2008.

7. Kulkarni, M. G. and Dalai, A. K. Waste Cooking Oil-An

Economical Source for Biodiesel: A Review, Ind.

Eng. Chem. Res. 2006.

8. Lempang, I. R., Fatimawali dan Pelealu, N. C. Uji

Kualitas Minyak Goreng Curah dan Minyak Goreng

Kemasan di Manado. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2016:

(4) : 155-161.

9. Nurhasnawati, H., Supriningrum, R. dan Caesariana, N.

Penetapan Kadar Asam Lemak Bebas dan Bilangan

Peroksida Pada Minyak Goreng Yang Digunakan

Pedagang Gorengan di Jl. A. W. Shajranie Samarinda. Jurnal Ilmiah Manuntung. 2015: 1(1) :

25-30W. Shajranie Samarinda. Jurnal Ilmiah

Manuntung. 2015: 1(1) : 25-30.



22

10. Oeije AA, Lukita AW, Achmad S, Tohardi A.

Gambaran anatomi mikroskopik dan kadar melondialdehida pada hati mencit setelah pemberian

minyak kelapa sawit bekas menggoreng. Jurnal

Kedokteran Maranatha. 2008: 7(1): 15-25.

11. Rahkadima, Y.T. dan A’yuni, Q. Transesterifikasi

Minyak Dedak Padi Secara In-Situ Dengan Bantuan

Gelombang Mikro. Journal of Research and

Technology. 2017:3(2) : 54-62.

12. Rahkadima, Y.T. dan A’yuni, Q. Produksi Biodiesel

Dari Dedak Padi Menggunakan Metode In Situ dengan Bantuan Microwave. Seminar Nasional

Sains & Teknologi II. Malang: Universitas

Brawijaya. 2017.

13. Rukunudin, I.H., White, P.J., Bern, C.J., Bailey, T.B. A

modified Method for Determining Free Fatty Acids

from Small Soybean Oil Sample Sizes. Journal of

the American Oil Chemists' Society. 1998: 75 (5).

.



23

Artikel Penelitian

Analisis Kandungan Kimia Daun Dan Batang Sembukan (Paederia

Foetida) Dengan Menggunakan 2 Pelarut Yang Berbeda Surahmaida1*), Prasetyo Handrianto1

1Akademi Farmasi Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Tanaman sembukan (Paederia foetida) atau yang lebih kita kenal dengan daun kentut merupakan tanaman yang

biasanya digunakan oleh masyarakat sebagai obat diare atau obat kembung. Kandungan senyawa metabolit

sekunder tanaman sembukan perlu dikaji lebih lanjut untuk penemuan bahan obat baru. Tujuan dari penelitian

adalah untuk menganalisis kandungan senyawa metabolit sekunder yang terdapat pada daun dan batang sembukan

dengan metode maserasi yang direndam ke dalam pelarut etanol 96% dan metanol selama 5 hari. Ekstrak etanol

dan ekstrak metanol pada masing-masing daun dan batang kemudian dianalisis dengan menggunakan reagen kimia

untuk mengidentifikasi senyawa alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid. Hasil skrining fitokimia menunjukkan

bahwa pada ekstrak etanol dan metanol batang sembukan mengandung alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.

Sedangkan pada ekstrak etanol dan metanol daun sembukan mengandung alkaloid, tanin dan flavonoid.

Selanjutnya senyawa metabolit sekunder tersebut dianalisis aktivitas biologisnya.

Kata kunci: Analisis senyawa metabolit sekunder, ekstrak etanol dan metanol daun dan batang sembukan

(Paederia foetida), maserasi

ABSTRACT

Paederia foetida or more familiar with fart leaves is a plant that is usually used by the community as a drug or

bloated diarrhea. The content of the secondary metabolite compound of the Paederia foetida plant needs to be

studied further for the discovery of new drug ingredients. The purpose of this research is to analyze the content of

secondary metabolite compounds found on leaves and stems with a maseration method soaked in 96% ethanol

solvent and methanol for 5 days. The ethanol extract and methanol extract on each leaf and stem were then

analyzed using chemical reagents to identify the alkaloid compounds, saponins, tanins and flavonoids. The results

of phytochemical screening showed that in the ethanol extract and methanol the stem of the Paederia foetida

contained alkaloids, saponins, tanins and flavonoids. While on ethanol extract and methanol leaves Paederia

foetida contains alkaloids, tanins and flavonoids. Furthermore, the secondary metabolite compounds are analyzed

biological activity.

Keywords: Analysis of secondary metabolite compounds, ethanol extract and methanol leaves and stirring stem

(Paederia foetida), maceration

1. PENDAHULUAN

Meskipun obat-obatan modern tersedia, tanaman

obat mempertahankan citra mereka untuk alasan

historis dan budaya. Tanaman obat berperan dalam

menjaga kesehatan masyarakat [1]. Indonesia

merupakan salah satu negara dimana masyarakatnya

banyak memanfaatkan bahan alam dari tumbuhan

untuk menangani masalah kesehatan.

Suku kopi-kopian (Rubiaceae) merupakan salah

satu yang terbesar di kelas Magnoliopsida, dan

menempati urutan keempat dalam keragaman spesies

di antara Angiosperm [2]., yang memiliki 637 genus

dan 13 ribu spesies [3,4]. Suku Rubiaceae

menghasilkan banyak senyawa metabolit bioaktif dan

memiliki potensi farmakologi yang besar [5].. Salah

satu tanaman Rubiaceae yang banyak dimanfaatkan

sebagai obat adalah tanaman sembukan (Paederia

foetida).

Sembukan (Paederia foetida) berasal dari Asia

Timur dan sekarang menjadi tanaman hias di seluruh

dunia. Keterangan nama foetida menandakan bahwa

tumbuhan tersebut berbau busuk. Umumnya,

masyarakat menyebut sembukan dengan nama “daun

kentut”. Bau busuk dari sembukan ini keluar bila

digosokkan di antara telapak tangan, dimakan, dan

tercium saat sore hari [6]. Tanaman ini dimanfaatkan

masyarakat sebagai bahan makanan (botok), lalapan,

obat diare, mengatasi maag, detoksifikasi (penawar

racun), meningkatkan produksi sel darah putih, obat

cacing, pereda kejang dan lain-lain [6,7].



24

Hal ini dikarenakan adanya kandungan senyawa

metabolit sekunder pada sembukan seperti flavonoid,

terpenoid, paedorolone, β-sitosterol, friedelin,

campesterol dan senyawa aktif lainnya [8].

Gambar 1. Sembukan (Paederia foetida) [8]

Banyak penelitian ilmiah yang menunjukkan

sembukan memiliki potensi besar di bidang kesehatan,

seperti [9] dan [10], yang menyatakan bahwa tanaman

sembukan berfungsi sebagai anti oksidan karena

mengandung senyawa fenolik yang sangat tinggi.

Namun, masih belum ada penelitian tentang analisis

kandungan senyawa metabolit sekunder pada tanaman

sembukan, khususnya pada dentang tanaman obat

merupakan daun dan batang sembukan.

Berdasarkan latar belakang di atas, maka tujuan

dari penelitian ini adalah melakukan skrining

fitokimia daun dan batang sembukan dengan

menggunakan dua pelarut yang berbeda, yaitu etanol

96% dan metanol untuk mengetahui kandungan

senyawa alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.


Tanaman sembukan yang digunakan dalam

penelitian ini diambil di Kabupaten Sumenep,

Madura.

2.1. Alat

Adapun alat-alat yang digunakan dalam

penelitian ini adalah blender, ayakan, toples untuk

maserasi, corong, beker glas, labu ukur, pengaduk,

tabung reaksi, pipet, spatula.

2.2. Bahan

Sedangkan bahan yang digunakan adalah daun

dan batang sembukan, kertas saring Whatman No. 1,

aluminium foil, kapas lemak, pereaksi Mayer,

pereaksi Wagner, pereaksi Danderdroff, serbuk Mg,

HCl 2N, larutan besi (III) klorida 10%.

2.3. CaraKerja

2.3.1. Pengambilan Sampel

1 kg sampel tanaman sembukan dicuci bersih

dengan air kran yang mengalir, kemudian dipilah

antara daun dan batangnya. Kemudian

dikeringanginkan. Setelah kering, masing-masing

daun dan batang diblender dan diayak sehingga

menjadi serbuk halus [11].

2.3.2. Proses Ekstraksi

Proses ekstraksi dilakukan dengan metode

maserasi. Masing-masing 10 gram serbuk halus daun

sembukan direndam ke dalam 100 ml pelarut etanol

96% dan 100 ml pelarut metanol selama 5 hari sambil

sesekali diaduk. Kemudian dilakukan penyaringan,

dimaserasi kembali dengan jumlah pelarut dan hari

yang sama, dan dimaserasi lagi sampai ampas tidak

berwarna. Perlakuan yang sama untuk sampel batang

sembukan.

2.3.3 Skrining Fitokimia

Lalu dilakukan skrining fitokimia untuk

mengetahui adanya senyawa metabolit sekunder

alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid pada masing-

masing ekstrak etanol 96% dan metanol daun dan

batang sembukan. Identifikasi senyawa metabolit

sekunder ekstrak daun dan batang sembukan menurut

metode Harborne [11].

A. Alkaloid

Sampel ekstrak dilarutkan ke dalam 5 ml HCl

2N, dipanaskan selama 5 menit lalu disaring. Larutan

yang diperoleh kemudian dibagi ke dalam 4 tabung

reaksi. Tabung reaksi yang pertama ditambahkan

dengan 3 tetes HCl 2N yang berfungsi sebagai blanko.

Tabung kedua, ketiga dan keempat masing-masing

ditambahkan 3 tetes pereaksi Mayer, Wagner dan

Danderdroff. Hasil positif bila terjadi endapan warna

putih (Mayer), coklat (Wagner), dan jingga

(Danderdroff).

B. Saponin

2 ml sampel dilarutkan ke dalam ke dalam

aquades dan ditambahkan 10 tetes KOH pada tabung

reaksi. Lalu dipanaskan ke dalam penangas air pada

suhu 50 0C selama 5 menit. Dikocok selama 5 menit.

Terbentuknya busa setinggi 1 cm dan tetap stabil

selama 10 menit menunjukkan adanya senyawa

saponin.

C. Tanin

2 ml sampel direaksikan dengan larutan besi (III)

klorida 10%, dan hasil positif menunjukkan



25

adanya tanin bila terbentuk warna biru tua atau hijau

kehitaman.

D. Flavonoid

2 ml sampel dilarutkan ke dalam 2 ml metanol,

dan ditambahkan dengan sedikit serbuk Mg dan 5 tetes

HCl 2N. Terbentuknya warna merah atau jingga

menunjukkan adanya senyawa flavonoid.


Tujuan dari pencucian sampel dengan air kran

yang mengalir untuk membersihkan segala kotoran

(debris) yang menempel. Lalu dilakukan pengeringan

untuk menghilangkan kadar air dalam sampel. Setelah

kering, kemudian sampel daun dan batang diblender

untuk memperoleh serbuk halus. Menurut [11], serbuk

halus yang akan digunakan dalam proses ekstraksi

dapat memperluas kontak antara pelarut dengan

sampel, sehingga pelarut lebih mudah menarik

senyawa yang terkandung dalam sampel tersebut.

Selanjutnya, serbuk halus yang didapat dilakukan

proses ekstraksi dengan metode maserasi.

Proses ekstraksi dilakukan dengan metode

maserasi karena prosesnya mudah dan sederhana.

Maserasi merupakan proses dimana sampel direndam

ke dalam pelarut tertentu dan dapat diatur waktu lama

perendamannya. Selama proses perendaman,

dilakukan pengadukan secara kontinu. Tujuannya

untuk mencegah memadatnya serbuk sampel dalam

pelarut, karena bila terjadi pemadatan maka pelarut

akan sulit untuk menembus dan menarik senyawa-

senyawa yang ada pada sampel tersebut. Pelarut yang

digunakan untuk mengektrak daun dan batang

sembukan adalah pelarut etanol 96% dan metanol.

Etanol 96% dan metanol merupakan pelarut universal

yang bersifat polar dapat melarutkan sebagian besar

golongan senyawa [11]. Menurut [12], metanol dapat

menarik alkaloid, steroid, saponin dan flavonoid.

Skrining fitokimia dilakukan untuk mengetahui

kandungan senyawa yang terdapat dalam ekstrak

tanaman [11]. Dalam skrining fitokimia, digunakan

reagen kimia untuk mengetahui senyawa alkaloid,

saponin, tanin dan alkaloid berdasarkan terbentuknya

warna pada sampel setelah diberi reagen uji. Adapun

hasil skrining fitokimia daun dan batang sembukan

dapat dilihat pada Tabel 1 berikut.

Tabel 1. Hasil skrining fitokimia ekstrak daun

dan batang sembukan pada 2 pelarut yang

berbeda

Masing-masing ekstrak etanol dan metanol pada

daun sembukan mengandung alkaloid, tanin dan

flavonoid, tapi tidak mengandung saponin karena

tidak terbentuknya busa saat pengujian fitokimia.

Namun mengandung pada batang mengandung

alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid. Dari hasil

tersebut, kemudian masing-masing senyawa metabolit

sekunder yang telah teridentifikasi dianalisis aktivitas

biologisnya.

Umumnya senyawa metabolit sekunder yang

terdapat dalam tanaman yaitu alkaloid, flavonoid,

steroid, saponin, terpenoid dan tanin [11]. Di bidang

farmakologi, senyawa metabolit sekunder banyak

dimanfaatkan sebagai bahan obat [13] seperti

antioksidan, antibiotik, antikanker, antiserangga [14],

agen antitumor, feromon, agen immunomodulasi,

serta merangsang pertumbuhan hewan dan tumbuhan

[15].

Senyawa metabolit sekunder alkaloid

mengandung nitrogen dan bersifat basa. Alkaloid

mempunyai efek farmakologis, diantaranya sebagai

pemicu sistem saraf, anti bakteri dan anti jamur,

mengobati penyakit jantung, menaikkan tekanan

darah dan lain-lain [16,17]. Alkaloid ini rasanya pahit

dan tidak berwarna. Fungsi lain dari alkaloid yaitu

sebagai pelindung tanaman dari serangga dan

herbivora [18].

Saponin berfungsi sebagai antibakteri, yang

bekerja dengan menurunkan tegangan permukaan

dinding sel bakteri sehingga permeabilitas membran

sel bakteri menjadi rusak dan akhirnya terjadi

kematian sel [19]. Saponin digunakan sebagai

deterjen, pestisida dan antimoluska [20].

Tanin berfungsi sebagai antimikroba [21].

Aktivitas biologi lain dari tanin yaitu sebagai

antioksidan, pencegah diare dan sebagai astringen

[22].

Flavonoid adalah golongan senyawa fenol yang

dihasilkan oleh tanaman. Fungsi dari flavonoid yaitu

sebagai antioksidan alami [23] untuk menangkal

radikal bebas [24] dan bersifat racun bagi organisme

lain dimana flavonoid akan mengganggu fungsi dari

protein sel sehingga pembelahan sel menjadi

terganggu [25]. Selain itu, senyawa ini berfungsi



26

untuk menarik serangga dan menyebarkan biji [18].

Aktivitas biologis flavonoid yang lainnya adalah

sebagai anti untuk mencegah pembekuan darah, anti

peradangan pada pembuluh darah, anti peradangan,

antivirus, antitumor dan mencegah terjadinya

pengeroposan tulang [26].

4. KESIMPULAN

Pada ekstrak etanol dan metanol daun sembukan

mengandung alkaloid, tanin dan flavonoid. Sedangkan

pada ekstrak etanol dan metanol batang sembukan

mengandung alkaloid, saponin, tanin dan flavonoid.

Senyawa metabolit sekunder alkaloid, saponin, tanin

dan flavonoid memiliki potensi lain untuk

dikembangkan sebagai bahan obat baru baik di bidang

kesehatan maupun di bidang yang lainnya untuk

kesejahteraan manusia.


Penulis mengucapkan terima kasih kepada

Akademi Farmasi Surabaya dan semua pihak yang

telah memberikan dukungan dan fasilitas sehingga

penulis dapat menyelesaikan artikel ini.

6. PENDANAAN


manapun.





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. Khusbu C, Anar P, Mayuree P, Carol M, Roshni S,

Subodh A. Paederia foetida Linn. As a potential medicinal plant: A Review. 2010;3(12)3135-

3137.

2. Mabberley DJ. The Plant-book: A Portable Dictionary of the Vascular Plants Utilizing Kubitzki’s The

Families and Genera of Vascular Plants (1990-).

Conqruist’s An Integrated System of Classification of Flowering Plants (1981), and

Current Botanical Literature, Arranged Largely

on the Principles of Editions 1-6 (1896/97-1931)

of Willis’s A Dictionary of the Flowering Plants and Ferns Edisi ke-2. UK: Cambridge University

Press Cambridge; 1997.

3. Pereira CG, Meireles MAA. Supercritical fluid

extraction of bioactive compounds: Fundamentals, applications and economic

perspectives. Food Bioprocess Tech. 2010;3:340-

372.

4. Mongrand S, Badoc A, Patouille B, Lacomblez C,

Chavent M, Bessoule JJ. Chemotaxonomy of the

Rubiaceae family based on leaf fatty acid

composition. Phytochemistry. 2005;66:549-559.

5. Martins D, Nunez CV. Secondary Metabolites from Rubiaceae Species. Molecules. 2015;20:13422-

13495.

6. Nurcahyanti ADR, Wandra J. Kurang Sedap Namun Berkhasiat Hebat. BioS-Majalah Ilmiah Semi

popular. 2012;5(2):44-47.

7. RSUA (Rumah Sakit Universitas Airlangga). Tanaman Kentutan Si Penawar Racun. 2013; diakses

tanggal 15 Juli 2018.

8. Patel DK. Paederia Foetida Linn.: A Potential

Climbing Medicinal Herb in Central India. International Journal of Environmental Sciences

& Natural Resources. 2017;6(5):01-07.

9. Osman H, Rahim AA, Norhafizah MI, Bakhir NM. Antioxidant activity and phenolic content of

Paederia foetida and Syzygium aqueum.

Molecules. 2009;14:970-978.

10. Nosalova GN, Mokry J, Ather A, Khan. Antitussive

Activity of the Ethanolic Extract of Paederia

foetida (Rubiaceae family) in Non-Anaesthetized

Cats. Acta Veterinaria Brno. 2007;76:27-33.

11. Harborne JB. Phytochemical methods: A Guide to

Modern Techniques of Plant Analysis Edisi ke-5.

London: Chapman and Hall Ltd; 1998.

12. Thompson EB. Drug Bioscreening America. Graceway

Publishing Company Inc. 1985.

13. Kumari P, Kumari C, Singh PS. Phytochemical Screening of Selected Medicinal Plants for

Secondary Metabolites.

Int.J.Life.Scie.Scienti.Res. 2017;3(4):1151-1157.

14. Saifudin A. Senyawa alam metabolit sekunder:Teori, konsep, dan teknik pemurnian. Yogyakarta;2014.

15. Nofiani R. Artikel ulas balik: Urgensi dan mekanisme

biosintesis metabolit sekunder mikroba laut. Jurnal Natur Indonesia. 2008;10(2):120-125.

16. Lumbanraja LB. Skrining Fitokimia dan Uji Efek

Antiinflamasi ekstrak etanol daun lempuyang (Sonchus arvenis L.) terhadap radang pada tikus.

Medan: Universitas Sumatera Utara; 2009.



27

17. Robinson T. Kandungan organik tumbuhan tinggi.

Terjemahan: Koensoemardiyah. Semarang: IKIP Press; 1995.

18. Croteau R, Kutchan TM, Lewis NG. Natural products

(secondary metabolites). Biochemistry &

Molecular Biology of Plants. 2000;24:1250-

1318.

19. Madduluri S, Rao KB, Sitaram B. In vitro evaluation of

antibacterial activity of five indigenous plants extracts against five bacteria pathogens of

humans. International Journal of Pharmacy and

Pharmaceutical Sciences. 2013;5(4):679-684.

20. Shi J, Arunasalam D, Yeung D, Kakuda Y, Mittal G,

Jiang Y. Saponins from edible legumes:

Chemistry, processing and health benefits. J.

Med. Food. 2004;7:67-78.

21. Sudira IW, Merdana I, Wibawa I. Uji daya hambat

ekstrak daun kedondong (Lannea grandis Engl)

terhadap pertumbuhan bakteri Erwinia

carotovora. Buletin Veteriner Udayana. 2011;3(1):45-50.

22. Desmiaty Y, Ratih H, Dewi MA, Agustin R. Penentuan

Jumlah Tanin Total pada Daun Jati Belanda

(Guazuma ulmifolia Lamk.) dan Daun Sambang Darah (Excocaria bicolor Hassk.) Secara

Kolorimetri dengan Pereaksi Biru Prusia.

Ortocarpus. 2008;8:106-109.

23. Saija A, Scalese M, Lanza M, Marzullo D, Bonina F,

Castelli F. Flavonoids as antioxidant agents: importance of their interaction with

biomembranes. Free Radic. Biol & Med.

1995;19(4):481-486.

24. Ningsih W. Evaluasi senyawa fenolik (asam ferulat dan

asam p-Kumarat) pada biji, kecambah, dan tempe

kacang tunggak (Vigna unguiculata) (skripsi).

Bogor: Institut pertanian Bogor; 2007.

25. Sirikantaramas S, Yamazaki M, Saito. Mechanisms of

resistance to self-produced toxic secondary

metabolites in plants. Phytochem. Rev.

2008;7:467-477.

26. Simanjuntak K. Peran antioksidan flavonoid dalam

meningkatkan kesehatan. Bina Widya.

2012;23(3):135-140.



28

Artikel Penelitian

Karakteristik Fisika Masker Gel Peel Off dan Krim Wajah dengan

Kandungan Ekstrak Kulit Buah Kakao ( Theobroma cacao, L.)

Sebagai Antioksidan Topikal Damaranie Dipahayu1*)

1Bidang Ilmu Teknologi Farmasi, Akademi Farmasi Surabaya *) Email: [email protected].

ABSTRAK

Kulit buah kakao adalah salah satu sumber antioksidan alami. Ekstrak etanol kulit buah kakao memiliki

nilai IC50 sebesar 0.08 mg/ml. Kulit buah kakao mengandung 37 % katekin, 4%antosianin dan 58 %

proantosianidin. Antioksian topikal dalam kosmetika contohnya masker gel peel off dan krim. Formula Kosmetika

yang baik adalah yang memiliki karakteristik dan stabilitas yang baik.

Studi ini bertujuan untuk memperoleh data dari pengaruh kombinasi HPMC dan PVA = FM

1:FM2:FM3:FM4= (2:12); (4:12): (2:16); (4:16) terhadap daya sebar dan waktu mengering dari sediaan masker

gel. Selain itu juga untuk mengetahui pengeruh kecepatan pengadukan 750 rpm dan 1500 rpm terhadap penyebaran

dan ukuran globul dari krim antioksidan.

Hasil dari penelitian ini menunjukkan baik HPMC dan PVA tidak memiliki pengaruh terhadap daya sebar

dan konsentrasi HPMC lebih tinggi akan mempengaruhi waktu mengering dari masker gel peel off selama masa

simpan 28 hari. Hasil penelitian ini juga menunjukkan terdapat perbedaan daya sebar dan ukuran globul pada

metode pengadukan 750 rpm namun tidak pada pengadukan 1500 rpm pada krim wajah antioksidan selama masa

simpan 28 hari.

Kata Kunci: Kulit buah cacao, karakteristik fisik, masker gel peel off , krim antioksidan.

ABSTRACT

Cocoa rind (Theobroma cacao L.) is a natural resourches of antioxidant. Half percent (0.5 %) Ethanolic

extract of Cacao rind (Theobroma cacao L.) has 50 IC value as a 0,08 mg/ mL. Cocoa rind containing 37 %

cathecin, 4 % anthocyanins and 58 % proanthocyanidins. Antioxidant topical in cosmetics such as peel off gel

mask and cream. A good cosmetics formulation gives a good characteristic and stability.

The study aims to provide data on the effect of HPMC - PVA combination = FM 1:FM2:FM3:FM4= (2:12);

(4:12): (2:16); (4:16) to the power spread and drying time of the peel off gel mask. In addition, this study gives

data of stirring speed at 750 rpm and 1500 rpm = FC1:FC2 that influence spreading and globul size of antioxidant

cream.

This study finds that during the storage period of 28 days the difference of HPMC and PVA has no affect on

the power spread but it affects the drying time, the greater concentration of HPMC can rapidly dry the gel mask

when applied to the skin surface. The study also finds that during the storage period of 28 days, there was a

significant difference in power spread and particle size at 750 rpm stirring and no significant difference in 1500

rpm.

Key Words: Cocoa rind extract, physic characteristic, peel off gel mask, antioxidant cream.

1. PENDAHULUAN

Tubuh senantiasa terpapar oksidasi baik

oksidasi yang berasal dari dalam tubuh yaitu dari

proses alami tubuh contoh respirasi mitokondria dan

oksidasi dari luar tubuh akbibat paparan asap rokok,

polusi udara dan radiasi sinar UV matahari. Oksidasi

dalam tubuh sebenarnya bisa diredam oleh

antioksidan yang terdapat dalam tubuh secara alami

seperti gluthathione (GSH) dan uric acid serta

beberapa vitamin essential yang dikonsumsi. Keadaan

oksidasi tubuh melebihi kapasitas antioksidan

menyebabkan keadaan yang dinamakan stress

oksidatif. Bila tubuh mengalami stress maka kondisi

berbahaya akan terjadi antara lain artherosclerosis,

kanker kulit dan penuaan dini baik untuk organ sel

dalam tubuh maupun luar tubuh contohnya kulit [2].

Untuk melindungi kulit baik kulit tubuh

maupun kulit wajah dari stress oksidatif dapat

dilakukan pemakaian produk yang mengandung

antioksidan yang langsung diaplikasikan pada kulit

yang biasa disebut antioksidan topikal [3,4].

Senyawa antioksidan alami yang sering ada

pada produk antioksidan topikal adalah polifenol.

Salah satu sumber polifenol yang berlimpah dari

Indonesia adalah dari kulit buah cacao ( Theobroma




29

cacao L). Kulit buah kakao kaya akan komponen

senyawa fenolik antara lain katekin, epikatekin,

proantosianidin, asam fenolat, flavonoid. (Ekstrak

etanol 70 % kulit buah kakao memiliki aktivitas

peredaman radikal bebas metode DPPH sebesar nilai

IC50 = 0.48 mg/ mL [5]. Sedangkan konsentrasi 0.5 %

ekstrak aseton : air kulit buah kakao memiliki nilai IC

50 = 0.08 mg/mL.

Produk antioksidan topikal untuk kulit wajah

masuk dalam ranah kosmetika. Salah satu contoh

kosmetika antioksidan adalah masker gel (tipe peel

off) dan krim antioksidan.

Masker gel tipe peel off yang mengandung

antioksidan dirasa tepat. Karena penggunaan gel pada

kulit akan membantu penyerapan polifenol ke dalam

kulit. Pemakaian masker gel tipe peel off dirasa cukup

praktis dengan beberapa kelebihan yaitu membantu

mengencangkan dan menyegarkan kulit. Efek

antioksidan dapat bekerja maksimal ketika pemakaian

masker gel tipe peel off dapat dengan mudah

menyebar ke permukaan kulit disamping itu syarat

masker gel peel off yang aseptabel adalah waktu

mengering antara 15- 30 menit[6]. Bahan HPMC dan

PVA merupakan salah satu bahan utama yang

menentukan karakteristik gel termasuk kapasitas sebar

dan waktu mengering dari sediaan gel.

Selain masker gel, antioksidan topikal dapat

pula ada dalam krim wajah, penggunaan krim

antioksidan menjadi alternatif karena disamping

sediaan krim tipe minyak dalam air (m/a) nyaman

untuk digunakan juga lebih praktis. Kestabilan bentuk

sediaan krim menjadi penting karena merupakan

sediaan dispersi kasar yang terdiri dari fase minyak

dan air dengan kecenderungan mudah memisah.

Kecenderungan krim memisah dapat diamati dari

ukuran globul. Salah satu faktor yang mempengaruhi

ukuran globul adalah kecepatan pengadukan dari

formula krim tersebut [1].

Melihat latar belakang tersebut maka

diperlukan suatu penelitian tentang pengaruh gelling

agent yaitu HPMC dan PVA terhadap karakteristik

daya sebar dan waktu mengering dari masker gel peel

off dan pengaruh kecepatan pengadukan terhadap daya

sebar dan ukuran globul krim wajah antioksidan.


2.1 Preparasi Ekstrak Kulit Buah Kakao

( Theobroma cacao L)

Buah coklat yang sudah berumur 6 bulan,

dipetik dan dibiarkan selama 5 hari untuk

memudahkan dilepas biji nya. Daging buah coklat

tersebut dikeringkan secara diangin-anginkan hingga

kering kemudian diblender. Selanjutnya serbuk kering

kulit buah kakao tersebut dimaserasi dengan etanol 70

% dengan perbandingan 2:1. Maserat yang didapatkan

dikentalkan menjadi ekstrak kental melalui

rotavapour.

Formulasi Masker Gel

Formula Masker Gel yang digunakan adalah

sebagai berikut :

Tabel 1. Formulasi Masker Gel

Nama Bahan Konsentrasi (%)

FM1 FM2 FM3 FM4

Ekstrak kulit

buah kakao

0.5 0.5 0.5 0.5

HPMC 2 4 2 4

PVA 12 12 16 16

Gliserin 5 5 5 5

Propilenglikol 5 5 5 5

Nipagin 0.2 0.2 0.2 0.2

Aquadest ad 100 100 100 100

PVA dikembangkan ke dalam aquadest panas

suhu 80 0C hingga mengembang kemudian HPMC

dikembangkan ke dalam aquadest. Nipagin dilarutkan

ke dalam propilenglikol hingga larut. Larutan Nipagin

tersebut ditambahkan ke dalam HPMC yang telah

mengembang lalu diaduk hingga homogen kemudian

ditambahkan gliserin ke dalamnya dan diaduk hingga

homogen. Selanjutnya ditambahkan campuran HPMC

tersebut ke dalam PVA sedikit demi sedikit sambil

diaduk.

Ekstrak kulit buah kakao diencerkan dengan

sebagaian aquadest dan ditambahkan ke dalam massa

gel dengan terus diaduk perlahan hingga homogen

[6,7].

2.2 Uji Daya Sebar Masker Gel Peel Off

Sebanyak masing- masing formula masker gel

tersebut ditimbang sebanyak 500 g diletakkan di atas

plate kaca yang telah dilengkapi dengan skala

kemudian ditutup dengan plate kaca yang telah

ditimbang sebelumnya lalu ditunggu 1 menit dan

diukur diameter penyebarannya. Selanjutnya secara

bertahap diberi beban 50 gram hingga 200 setiap

penambahan beban diukur diameter penyebaran.

2.3 Uji Waktu Mengering Masker Gel Peel Off

Masing- masing formula dioleskan pada pada

kulit lengan dengan area yang berbeda, seluas



30

7 cm x 7 cm. Dihitung dengan stopwatch waktu yang

diperlukan masker tersebut untuk mengering dan siap

dikelupas

Formulasi Krim M/A

Formula Krim m/a yang digunakan adalah

sebagai berikut :

Tabel 2. Formula Krim m/a

Nama Bahan Kecepatan

Pengadukan

750 rpm

Kecepatan

Pengadukan

1500 rpm

Formula 1

Konsentrasi

(%)

Formula 2

Konsentrasi

(%)

Ekstrak kulit

buah kakao

0.5 0.5

Setil alkohol 4 4

Gliserin 15 15

TEA 2 2

Asam Stearat 6 6

Nipagin 0.2 0.2

Nipasol 0.02 0.02

Oleum Rosea 2 tetes 2 tetes

Aquadest ad 100 100

Fase minyak yang terdiri dari setil alcohol,

asam stearat dan nipasol dilebur di atas penangas air

pada suhu 70 0C hingga melebur dan diaduk sampai

homogen. Fase aquadest yang terdiri dari gliserin,

TEA, nipagin dan sebagian aquadest dipanaskan

dengan suhu 70 0C. Fase minyak di atas hot plate

dengan magnetic stirrer ditambahkan fase minyak

sedikit demi sedikit. Setelah suhu turun hingga 35 0C,

ditambahkan ektrak kulit buah kakao yang telah

dilarutkan dengan aquadest hingga homogen [8].

2.4 Uji Daya Sebar Krim M/A

Sebanyak masing- masing formula masker gel

tersebut ditimbang sebanyak 500 g diletakkan di atas

plate kaca yang telah dilengkapi dengan skala

kemudian ditutup dengan plate kaca yang telah

ditimbang sebelumnya lalu ditunggu 1 menit dan

diukur diameter penyebarannya. Selanjutnya secara

bertahap diberi beban 50 gram hingga 200 setiap

penambahan beban diukur diameter penyebaran [3].

2.5 Uji Ukuran Globul

Cuplikan kedua krim masing- masing diukur

ukuran globulnya dengan mikroskop optic dengan

perbesaran 100 x. Globul yang diukur sebanyak 300

partikel. Perhitungan ukuran globul dihitung dengan

rumus edmundson dengan penyesuaian skala :

[∑ 𝒏 𝒅𝒑+𝒇

∑ 𝒏 𝒅𝒇]

𝟏𝒑

n = banyaknya partikel dalam kisaran ukurand

d = satu dari garis tengah ekivalen

p = indeks aritmatik = 1

f = indeks frekuensi

3. HASIL PEMBAHASAN

Ektrak kental kulit buah kakao yang dihasilkan

adalah sebesar 10.9 % rendemen. Ekstrak kental yang

dihasilkan sebanyak 0.5 % masing masing

diformulasikan menjadi masker gel peel off dan krim

wajah m/a.

Hasil pengujian daya sebar krim wajah m/a

antioksidan adalah sebagai berikut :

Tabel 3. Hasil pengujian daya sebar krim

wajah m/a antioksidan

Formula Harga Slope ( . 10-3 )

Hari ke 1 Hari ke 28

FM 1 5.82 7.5

FM 2 4 4.04

FM 3 3.92 3.64

FM 4 4.2 3.7

Dari perhitungan statistik data tersebut diatas,

didapatkan hasil bahwa antara FM1 – FM4 tidak ada

perbedaan daya sebar masker gel peel off selama masa

simpan 28 hari. Perbedaan konsentrasi baik HPMC

dan PVA sebagai gelling agent tidak mempengaruhi

daya sebar sediaan masker gel peel off.

Hasil uji waktu mengering masker gel peel off

adalah sebagai berikut :

Tabel 4. Hasil uji waktu mongering masker

gel peel off

Formula Menit


FM1 17.7 25.3

FM2 18 19.3

FM3 20.7 23.7

FM4 15 17

Dari perhitungan statistik data tersebut diatas

didapatkan hasil bahwa antara FM1 dengan FM3 yaitu

HPMC pada 2% dengan kombinasi PVA 12 dan 16 %

tidak ada perbedaan waktu mengering selama masa

simpan 28 hari. Sedangkan antara FM2 dan FM 4 yaitu

pada konsentrasi HMPC yang lebih besar yaitu 4%

dengan kombinasi PVA 12% dan 16 % menyebabkan

perbedaan waktu mengering masker gel peel off

selama masa simpan 28 hari. Dari data ini dapat

diketahui bahwa dengan adanya konsentrasi HPMC

yang lebih tinggi pada kombinasi HPMC-PVA

menyebabkan perbedaan waktu mengering. Hal ini

dikarenakan pemakaian HPMC pada pada konsentrasi

lebih dari 2 % akan meningkatkan viskositas sediaan

gel sehingga akan meningkatkan daya lekat masker

gel tersebut. Bila masker gel



31

melekat secara merata pada kulit maka efek kerja

bahan PVA untuk dapat mengering dan meninggalkan

lapisan tipis akan lebih baik.

Hasil pengujian daya sebar krim wajah m/a

antioksidan adalah sebagai berikut :

Tabel 5. Hasil pengujian daya sebar krim

wajah m/a antioksidan

Formula Harga Slope ( . 10-3 )


FC1 5.8 5.6 6.6 4.2 3.6 3.8

FC2 7.2 8.2 8.8 6.6 7.6 8.4

Hasil perhitungan statistik data tersebut diatas

didapatkan data bahwa terdapat perbedaan daya sebar

krim wajah antioksidan m/a dengan metode

pengadungan 750 rpm ( FC1) selama masa simpan 28

hari dan tidak ada perbedaan daya sebar selama masa

simpan 28 hari untuk metode pengadukan 1500 rpm

(FC2) sehingga dapat disimpulkan metode

pengadukan 1500 rpm akan menghasilkan daya sebar

yang lebih stabil.

Hasil uji ukuran globul tersaji pada tabel

dibawah ini:

Tabel 5. Hasil uji ukuran globul

Hasil perhitungan statistik data tersebut diatas

didapatkan data bahwa terdapat perbedaan ukuran

globul krim wajah antioksidan m/a dengan metode

pengadungan 750 rpm ( FC1) selama masa simpan 28

hari dan tidak ada perbedaan ukuran globul selama

masa simpan 28 hari untuk metode pengadukan 1500

rpm (FC2), hal ini menunjukkan dengan metode

pengadukan 1500 rpm akan menghasilkan ukuran

globul yang lebih kecil dan seragam yang bisa

menghasilkan sediaan krim yang lebih stabil yaitu

tidak mudah pecah [9].

4. KESIMPULAN

1. Kombinasi gelling agent HPMC-PVA tidak

mempengaruhi karakteristik daya sebar

formula masker gel peel off ekstrak buah coklat

(Theobroma cacao L.) selama masa simpan 28

hari.

2. Konsentrasi gelling agent HPMC lebih tinggi

pada formula masker gel peel off ekstrak buah

coklat (Theobroma cacao L.) mempengaruhi

karakteristik waktu mengering selama masa

simpan 28 hari.

3. Metode pengadukan pada formulasi krim

wajah m/a ekstrak buah coklat (Theobroma

cacao L.) tidak memberikan pengaruh

terhadap karakteristik daya sebar krim selama

masa simpan 28 hari.

4. Metode pengadukan pada formulasi krim

wajah m/a ekstrak buah coklat (Theobroma

cacao L.) memberikan pengaruh terhadap

karakteristik ukuran globul krim selama masa

simpan 28 hari.

DAFTAR PUSTAKA

1. Allen, V, Loyd. J., Ansel, C, Howard. Pharmaceutical

Dosage Form and Drug Delivery System. Philadhelpia: Wolters Kluwer, p: 316-322; 2014..

2. Barel, O, Andre.,Paye, Marc., Maibach,I, Howard.

Handbook Of Cosmetic And Science Technology

3rd. Informa Healthcare USA,Inc., p : 323-324; 2009.

3. Dipahayu, Damaranie., Soerartri, Widji., Agil,

Mangestuti. Formulasi Krim Antioksidan Ekstrak

Etanol Daun Ubi Jalar Ungu (Ipomoea batatas L)

Sebagai Anti Aging [Thesis]. Surabaya:

Universitas Airlangga Surabaya; 2014..

4. Poljsak, B., Dahmane,R. Free Radicals and Extrinsic

Skin Aging. Dermatol Research and Practic; 2012..

5. Sartini, Djide, Natsir, M., & Alam, G. Ekstraksi

Komponen Bioaktif Dari Limbah Kulit Buah

Kakao Dan Pengaruhnya Terhadap Aktivitas Antioksidan Dan Antimikroba. Journal of

Traditional Medicine, 2011: 14.

6. Kurniawati, Ajeng. Analisa Hubungan Variasi

HPMC-PVA dan Stabilitas Fisik Formula Masker Hawah Peel Off Ektrak Etanol 70 % Kulit Buah

Kakao [KTI ]. Surabaya: Akademi Farmasi

Surabaya; 2016.

7. Mutiara, Restianti, Priani, Sani, Ega, Mulyani, Dina. Uji Aktivitas Antioksidan Ekstrak Kulit Batang

Kayu Manis( Cinnamommun burmani) dan

Formulasinya dalam Bentuk Sediaan Masker Gel

Peel Off. Proceeding Penelitian SpeSIA Unisba. Bandung; 2015.

8. Yunita, Puput. Pengaruh Kecepatan Pengadukan

Terhadap Stabilitas Fisik Krim Antioksidan

Ektrak Kulit Buah Kakao ( Theobroma cacao,L.) [KTI]. Surabaya: Akademi Farmasi Surabaya;

2017.

9. Sinko, Patrick, J. Martin Farmasi Fisik dan Ilmu

Farmasetika. Jakarta: EGC; 2002.

10. Yusuf, Anna, L., Nurwaliah, E., Harun, Nurhidayati.

Uji Efektivitas Gel Ekstrak Etanol Daun Kelor

(Moringa oleifera L.) Sebagai Antijamur

Malassezia furfur. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2017: 5(2): p: 62-67.

Formula Ukuran Globul (μm)


FC1 0.76 0.73 0.73 1.12 1.08 1.09

FC2 0.55 0.55 0.56 0.58 0.62 0.59



32

Artikel Penelitian

Efektivitas Daya Hambat Ekstrak Etanol 96% Bonggol Nanas

(Ananas Comosus L) Terhadap Pertumbuhan Bakteri Staphylococcus

Aureus

MikM Umarudin1*), Rinda Yunia Sari2, Ballighul Fal2, Syukrianto1 1Akademi Farmasi Surabaya

2 Institut Ilmu Kesehatan Bhakti Wiyata Kediri *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Bonggol belum dimanfaatkan secara optimal, padahal bagian bonggol mengandung beberapa

komponen aktif salah satunya adalah enzim bromelin. Ezim bromelin bersifat sebagai antibakteri. Tujuan

penelitian ini untuk mengetahui efektivitas daya hambat ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L)

terhadap perumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Penelitian ini merupakan penelitian eksperimental

menggunakan desain post-test only control group design. Ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L)

dilaukan ekstra dengan metode maserasi Bakteri Staphycoccus aureus diambil dari media Manitol salt agar. Hasil

penelitian ini menunjukkan ekstrak bonggol nanas pada konsentrasi 50%-100% dengan diulang sebanyak 3

replikasi memiliki daya hambat terhadap pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Berdasarkan uji One-Way

ANOVA dengan taraf kepercayaan 95% menunjukkan terdapat perbedaan yang bermakna (p<0,05) antara

berbagai konsentrasi, sehingga dilanjutkan dengan uji LSD untuk mengetahui adanya perbedaan pada masing-

masing perlakuan. Hasil uji LSD menunjukkan bahwa kosentrasi 50% berbeda nyata dengan konsentrasi 70%,

80%, 90% dan 100%, sedangkan control positif tidak berbeda nyata dengan konsentrasi 50% dan 60%. Kesimpulan

penelitian ini bahwa ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus L) berpengaruh positif dalam

menghambat dan membunuh bakteri Staphylococcus aureus dan konsentrasi paling optimal pada 70%.

Kata kunci: Ekstrak etanol 96% bonggol nanas, bacitrasin, Staphylococcus aureus, zona hambat antibakteri

ABSTRACT

Pineaplle cobs have not been utilized optimally, whereas the cob section contains several active components one

of which is the enzyme bromelin. Bromelin is an antibacterial agent. The purpose of this research was to

determine the effectiveness of inhibitory of ethanol extract 96% pineapple cobs (Ananas comosus L) to

Staphylococcus aureus bacteria growth. This research is an experimental using post-test design only control

group design. Pineaplle cobs extract 96% by maceration method, Staphycoccus aureus bacteria taken from

Mantol salt agar medium. The results of this study showed the pineapple cobs extrac concentrations of 50% -

100% with replication as any 3 replications have an inhibitory to the growth of Staphylococcus aureus bacteria.

Based on One-Way ANOVA test with 95% confidence level there was a significant difference (p <0,05) between

various concentrations, so it was continued with LSD test to know the difference in each treatment. LSD test

results showed that 50% concentration was significantly different with concentrations of 70%, 80%, 90% and

100%, while the positive control did not differ significantly with concentrations of 50%. The conclusion of this

research is that pineapple cobs(Ananas comosus L) has positive effect in inhibitied and killing Staphylococcus

aureus bacteria and optimal concentration 70%.

Keywords: pineapple cobs etanol extract, bacitrasin, Staphylococcus aureus, zone of inhibition, antibacterial

1. PENDAHULUAN

Nanas merupakan salah satu bahan alam yang

digunakan sebagai obat tradisional. Salah satu limbah

tanaman nanas berupa bonggol yang belum

dimanfaatkan secara optimal, padahal bagian bonggol

mengandung beberapa komponen aktif salah satunya

adalah enzim bromelin.[2] Enzim bromelin lebih

banyak terdapat pada bagian bonggol nanas.

Senyawa yang terdapat dalam enzim bromelin

antara lain karbohidrat, glikoprotein, fosfat,

glukosida, peroksida, sellulase dan inhibitor

protease lainnya. Enzim bromelin ini secara ilmiah

terbukti mampu mengurangi dan memecah ikatan

glutanin-alanin dan arginin-alanin.[3,14]

Menurut Ali et all pemanfaatan enzim

bromelin dimanfaatkan sebagai antibitiotik,

antibakteri, antiinflamasi, antikoagulan, antitumor

dan antikanker.[2] Selain itu juga mengobati patologis. [10,13] Bromelain juga digunakan untuk relaksasi otot

dan untuk merangsang kontraksi otot.



33

Selain itu jug mencegah pembekuan darah, mencegah

kanker dan banyak kegunaan lainnya.[1]

Putri dan Andriani menyatakan bahwa ekstrak

kulit nanas (Ananas comosus) efektif dalam

menghambat maupun membunuh bakteri

Aggregatibacter actinomycetemcomitans pada

konsentrasi 6,25%.[16] Ahamed et all menyataan

bahwa ekstrak nanas mampu menghambat

pertumbuhan bakteri Streptococcus mutans dan

Enterococcus faecalis pada kosentrasi 1000 µl/ml.[1]

Staphylococcus aureus merupakan bakteri

yang sering dijumpai pada manusia Mikroba ini

ditemukan di hidung pada 30%-50% orang dewasa

sehat, di tinja sekitar 20% dan di kulit sekitar 5%-10%.

Staphyloccocus aureus juga merupakan bakteri

penyebab terjadinya abses dalam rongga mulut.[7]

Abses merupakan daerah jaringan dimana didalamnya

terbentuk nanah yang terbentuk sebagai usaha untuk

melawan aktivitas bakteri yang berbahaya yang

menyebabkan infeksi.[8] Oleh karena itu, perlu

dilakukan penelitian lanjut untuk mengetahui

efektivitas daya hambat ekstrak 96% bonggol nanas

(Ananas comosus L) terhadap pertumbuhan bakteri

Staphylococcus aureus.


Jenis penelitian ini adalah penelitian

eksperimen (true experiment desain) dengan

rancangan post test only control group design. Bahan-

bahan yang diperlukan dalam penelitian ini adalah

bonggol nanas diperoleh dari Kawasan Gunung Kelud

Kediri Jawa Timur, koloni bakteri Staphylococcus

aureus yang diperoleh dari Laboratorium Universitas

Airlangga, Mueller-Hinton Agar (Oxoid) sebagai

media uji efektifitas, NaCl fisiologis, aquades, pepton

10% (Oxoid), paper disc (Oxoid) dan antibiotika

basitrasin dalam bentuk kertas cakram tunggal.

Alat yang digunnakan pada penelitian ini

adalah jarum ose, labu spiritus, pengaduk

magnetik/stirer, laminar air flow, autoklaf, oven,

cawan petri, tabung reaksi, inkubator, vortex, serta alat

gelas lainnya (presisi dan non presisi), swab, petridish,

incubator, dan rotary evaporator.

2.1. Esktrak bonggol nanas (Ananas comosus L)

Buah nanas sebanyak 10 buah dikupas

kemudian diambil bonggolnya, dipotong, dicuci dan

tiriskan. Setelah ditiriskan kemudian di blender

sampai terbentuk serat kasar. Di timbang sebanyak

100 gram, kemudian dimasukkan dalam erlenmeyer

500 ml dan ditambahkan etanol 95% sebanyak 300 ml,

kemudian digoyang-goyangkan selama 1 jam untuk

mencapai kondiri homogen. Larutan tersebut

dimaserasi selama 24 jam pada suhu kamar. Setelah

24 jam, larutan dipisahkan dengan menggunakan

penyaring Buchner. Residu dilakukan maserasi ulang

sampai 3 kali. Hasil saringan 1-3 dicampur dan

dipekatkan dengan Rotary Vacum Evaporator

dengan suhu 50ºC sampai didapatkan ekstrak

kental dengan konsentrasi 100%.

2.2. Pembuatan Media Peremajaan, Suspensi, Dan

Pengujian Bakteri

Media Mueller Hinton Agar (MHA) ditimbang

sebanyak 6,8 gram dan dicampur dengan aquades

sebanyak 200 ml dalam tabung Erlenmeyer kemudian

panaskan sampe larut dan disterilkan dalam autoklaf

selama 15 menit pada suhu 121oC. Media Mueller

Hinton Agar (MHA) dituang ke dalam cawan petri

sebanyak 25 ml perpetri.

Koloni bakteri Staphylococcus aureus diambil

dengan jarum ose steril, lalu ditanamkan pada media

agar miring dengan cara menggores. Bakteri yang

telah digores pada media agar diinkubasi dalam

inkubator pada suhu 37oC selama 24 jam. Bakteri yang

telah diinkubasi diambi koloninya dari media agar

miring dengan menggunakan jarum ose steril

kemudian dimasukkan ke dalam media NaCl Broth

sampai kekeruhannya sama dengan standar

McFarland. Larutan standar McFarland 0,5 ekuivalen

dengan suspensi sel bakteri dengan konsentrasi 1,5 x

108 CFU/ml. Kekeruhan ini yang dipakai sebagai

standar suspensi bakteri uji.

2.3. Pengujian efektivitas ekstrak bonggol nanas

(Ananas comosus L) secara in vitro

Metode pengujian ini dengan metode

modifikasi Kirby-Bauer dengan menggunakan paper

disk. Pertama swab steril dicelupkan ke dalam

suspensi bakteri hingga basah. Swab steril diperas

dengan menekankan pada dinding tabung reaksi

bagian dalam, kemudian digores merata pada media

Mueller-Hinton Agar (Oxoid). Disk blank dicelupkan

ke dalam larutan ekstrak etanol 96% bonggol nanas

pada masing-masing konsentrasi (100%, 90%, 80%,

70%, 60%, dan 50%) yang telah ditentukan dan

kontrol positif menggunakan antibiotik bacitrasin.

Inkubasi dalam inkubator pada suhu 37oC

selama 24 jam. Zona hambat yang terbentuk disekitar

paper disk diukur diameter vertikal dan diameter

horizontalnya dalam satuan milimeter (mm)

menggunakan jangka sorong.

2.4 Analisa Data



34

Analisa adalah pengolahan data dan dianalisis

dengan teknik-teknik tertentu [15]. Penelitian ini

menyajikan data dengan cara melakukan kegiatan

percobaan (experiment), yang bertujuan untuk

mengetahui efektifitas ekstrak bonggol nanas (Ananas

comosus L) terhadap bakteri Staphylococcus aureus

yaitu dengan cara mengukur zona jernih disekitar disk.

Data yang diperoleh dianalisis dengan uji One-

way ANOVA dengan taraf kepercayaan 95%. Jika

terdapat perbedaan yang signifikan dilakukan dengan

uji lanjut LSD (Least Significance Different).[9,15]


Bakteri Staphylococcus aureus yang diberi

ekstrak etanol 96% bonggol nanas (Ananas comosus

L) dengan dosis dan waktu inkubasi selama 1 hari (24

jam) didapatkan rerata yang terlihat pada Tabel 1

dibawah ini.

Tabel 1. Hasil uji aktivitas ekstrak etanol 96%

bonggol nanas (Ananas comosus L)

terhadap pertumbuhan bakteri

Staphylococcus aureus

No Perlakuan Replikasi (mm) Rata-

rata

(mm)

1 2 3

1 50% 7 8 8 7.6

2 60 % 7 8 9 8

3 70 % 9 9 10 9.33

4 80 % 9 11 11 10.33

5 90 % 12 13 14 13

6 100% 14 14 16 14.67

7 Kontrol positif 10 10 10 10

Pada Tabel 3.1 terlihat bahwa zona hambat

terbesar terdapat pada konsentrasi 100% dan terendah

pada konsentrasi 50%, dilanjutkan dengan pengujian

ANOVA satu arah, menunjukkan bahwa pemberian

ekstrak bonggol nanas berpengaruh signifikan

terhadap zona hambat. Oleh karena itu perlu diuji

lanjut dengan uji LSD yang hasilnya terlihat pada

tabel 2 dibawah ini.

Tabel 2. Hasil uji lanjut LSD zona hambat pada

setiap konsentrasi ekstrak bonggol nanas.

Angka-angka yang diikuti

huruf yang

sama dalam

satu baris tidak menunjukkan

perbedaan

yang nyata

berdasarkan uji LSD pada

taraf

kepercayaan

95%

Berdasarkan hasil uji LSD konsentrasi paling

optimum adalah 70%, mampu menghambat bakteri

Staphylococcus aureus dengan daya hambat sebesar

9.33 mm. Semakin tinggi kosentrasi maka semakin

besar daya hambat. Hal ini dikarenakan perbedaan zat

aktif yang terkandung didalamnya. Semakin banyak

zat aktif yang terkandung didalam bonggol maka

semakin besar zona hambat yang terbentuk. [20] Hal ini

disebabkan semakin tinggi kadar senyawa bioaktif

maka umumnya bersifat bakterisida (mematikan

mikroba) dan kadar yang lebih rendah biasanya

hanya bersifat bakteriostatik (menghambat

pertumbuhan, bukan mematikan mikroba).

Ekstrak bonggol nanas mampu menghambat

pertumbuhan bakteri Staphylococcus aureus. Hal ini

menunjukkan bahwa berpengaruh positif dalam

menghambat dan membunuh bakteri Staphylococcus

aureus (bakterisid). Bakterisid adalah sifat antibiotik

yang dapat membunuh bakteri.[17] Efek penghambatan

pertumbuhan bakteri terjadi karena adanya reaksi

suatu senyawa kimia yang diduga merupakan

senyawa flavonoid jenis flavanon. Menurut Chusnie

& Lamb mekanisme kerja flavonoid yang

terkandung didalam ekstrak bonggol nanas sebagai

antibakteri dibagi menjadi tiga, yaitu menghambat

sintesis asam nukleat, menghambat fungsi membran

sel, dan menghambat

Konsentrasi Nilai

Tengah

50% 7.6b

60% 8b

70% 9.33c

80% 10.33c

90% 13d

100% 14.67d

Kontrol positif 10a



35

metabolisme energi. Mekanisme antibakteri

flavonoid dalam menghambat sintesis asam nukleat

adalah cincin A dan B yang memegang peran

penting dalam proses interkalasi atau ikatan

hidrogen dengan menumpuk basa pada asam

nukleat yang akan menghambat pembentukan DNA

dan RNA. Hal ini menyebabkan terjadinya

kerusakan permeabilitas dinding sel bakteri dan

lisosom. Kedua, mekanisme antibakteri flavonoid

dengan cara menghambat fungsi membran sel yaitu

dengan membentuk senyawa kompleks dengan

protein ekstraseluler sehingga akan merusak

membran sel diikuti dengan keluarnya senyawa

intraseluler. Ketiga, mekanisme antibakteri

flavonoid dengan cara menghambat metabolism

energi yaitu flavonoid menghambat sitokrom C

reduktase sehingga proses metabolisme dan

biosintesis makromolekul menjadi terhambat.[6]

Mekanisme kerja daya hambat ekstrak bonggol nanas

terhadap bakteri Staphylococcus aureus adalah enzim

bromelin yang merupakan suatu enzim proteolitik

yang berperan dalam pemecahan protein. Enzim

bromelin merupakan suatu enzim protease yang

mampu menghidrolisis ikatan peptida menjadi asam

amino. Konsentrasi bromelin yang terdapat pada

bonggol nanas lebih tinggi dibanding pada daging

buah nanas. Cara kerja enzim bromelin dalam

menghambat bakteri Staphylococcus aureus adalah

menurunkan tegangan permukaan bakteri dengan cara

menghidrolisis protein dan glikoprotein. [19] Penelitian

ini didukung oleh Bansode menyatakan bahwa jus

buah nanas memiliki potensi sebagai antimikroba.

Pada konsentrasi 100% jus nanas dapat menghambat

pertumbuhan E. coli (4 mm), Shigella sonnei (6 mm),

dan Salmonella para.B (4 mm), dan dengan

konsentrasi terendah 25% dapat menghambat

Salmonella para.B (1 mm).[5] Penelitian Ashik et all

membuktikan bahwa ekstrak nanas pada dosis 1000

µg/ml sebesar 23 mm pada bakteri Staphylococcus

aureus.[4] Manarainsong menyatakan bahwa ekstrak

kulit nanas terhadap Staphylococcus aureus sebesar

15,06 mm dan daging nanas sebesar 10,85 mm.[12]

Makalew menyatakan bahwa air perasan daging buah

nanas 100% mempunyai potensi efek antibakteri

terhadap bakteri Klebsiella pneumonia sebesar 1,76

mm.[11] Pada penelitian ini juga didapatkan bahwa

ekstrak bonggol nanas konsentrasi 70% merupakan

konsentrasi efektifdalam menghambat pertumbuhan

bakteri Staphylococcus aureus karena berbeda nyata

dengan 50% dan 60%.

4. KESIMPULAN

Kesimpulan penelitian ini adalah Ekstrak etanol

96% bonggol nanas pada konsentrasi 50, 60, 70, 80,

90, dan 100% secara signifikan berpengaruh positif

dalam menghambat dan membunuh bakteri


Pada penelitian ini didapatkan saran untuk

penelitian selanjutnya adalah: Dilakukan uji toksisitas

ekstrak etanol 96% bonggol nanas sebagai antibakteri

terhadap Staphylococcus aureus dan perlu dilakukan

penelitian uji antibakteri pada bakteri selain


5. UCAPAN TERIMAKASIH

-

6. PENDANAAN

“Penelitian ini tidak didanai oleh sumber hibah

manapun”.


“Seluruh penulis menyatakan tidak terdapat



ini”.

DAFTAR PUSTAKA

1. Ahamed, T, S., Priya, V, V., Gayatri, R., Geetha, R,

V. Evaluation of Anti Microbial Activity of

Pineapple Extract against Selected Oral

Pathogen. J. Pharm. Sci. & Res. 2016. 8 (6): 491-

492.

2. Ali A, Milala M A, Gulani I A. Antimicrobial

effects of crude bromelin extracted from

pineapple fruit (Ananas comosus (Linn.) Merr.) .

Advances in Biochemistry. 2015. 3(1): 27. 3. Anggraini D, Rahmides W, Malik M. Formulasi

sabun cair dari ekstrak batang nanas (Ananas

comosus. l ) untuk mengatasi jamur candida

albicans. Jurnal Penelitian Farmasi Indonesia. 2012.1(1): 30-3.

4. Ashik, A, A., Vishnu, P,V., Gayatri, V., Geetha, V.

Evaluation of Anti Microbial Activity of

Pineapple Extract Against Selected Microbes. Int. J. Pharm. Sci. Rev. Res. 2016. 39 (1): 277-278.

5. Bansode, D.S, Chavan, M. D. Evaluation of

antimicrobial activity and phytochemical

analysis of papaya and pineapple fruit juices

against selected enteric pathogens. Int J Pharm

Bio Sci. 2013;4(2):1179-81.

6. Cushnie, T.P.T., A.J. Lamb. Antimicrobial

Activity of Flavonoids. International Journal of

Antimicrobial Agents, 2005. 3 (26): 343-356



36

7. Elliott Tom, Warthington T, Osman H, Gill M.

Mikrobiologi Kedokteran & Infeksi Edisi 4. Jakarta: Kedokteran EGC. 2013.

8. Harty FJ, dan Ogston R. Kamus Kedokteran Gigi. .

Jakarta: EGC; 2012.

9. Hastono, S. P. Analisis Data Pada Bidang Kesehatan. Jakarta: PT Raja Grafindo Persada. 2012

10. Khosropanah H, Bazargani A, Ebrahimi H,

Eftekhar K, Emami Z &

Esmailzadeh.Assessing the Efferct of Pineapple Extract Alone and in Combination With

Vancomycin on Streptococcus sanguis.

Jundhishapur J Nat Pharm Prod. 2012. 7(4):

140-143. 11. Makalew, M.A.J., Nangoy, E., Wowor, P.M. Uji Efek

Antibakteri Air Perasan Daging Buah Nanas

(Ananas comosus (L)Merr) Terhadap Bakteri

Klebsiella pneumoniae. Jurnal e-Biomedik

(eBm). 2016. 4 (1): 1-6.

12. Manaroinsong, A., Abidjulu, J., Sigian,K.V. Uji Daya

Hambat Ekstrak Kulit Nanas (Ananas comosus L)

Terhadap Bakteri Staphylococcus aureus Secara

In Vitro. Jurnal Ilmiah Farmasi. 2015. 2 (2): 27-

33.

13. Margaertta, D,L., Chow, A., Dirgantara, Y., Djamil,

M.S., Sandra, F. Macerated-Pineapple Core

Crude Extract-derived Bromelain Has Low

Cytotoxic Effect in NIH-3T3 Fibroblast. The

Indonesian Biomedical Journal, 2015. 7 (2): 101-

106.

14. Nc, Praveen. In vitro evaluation of antibacterial

efficacy of pineapple extract (bromelin) on

periodontal pathogens. Journal of international

oral health. 2014. 6(5): 96-8. 15. Notoatmodjo. Metodologi Penelitian Kesehatan.

Jakarta: Rineka Cipta. 2012

16. Putri, R, D, Andriani, I. 2013. Daya Antibakteri

Ekstrak Kulit Buah Nanas (Ananas comosus)Terhadap Pertumbuhan Bakteri

Aggregatibacter actinomycetemcomitans. Jurnal

kedokteran Gigi Universitas Muhammadiyah

Yogyakarta. 2013. 1 (2): 1-9. 17. Prajitno, A. Uji Sensitifitas Flavonoid Rumput

Laut (Eucheuma Cottoni) Sebagai Bioaktif

Alami Terhadap Bakteri Vibrio Harveyi. Jurnal

Protein, 2007. 2 (15).

18. Putra AR. Formulasi Sampo Ekstrak Buah Nanas

Dengan Variasi Konsentrasi HPMC Sebagai

Pengental Dan Penstabil Busa (skripsi). Jakarta:

Fakultas Farmasi Universitas Pancasila; 2010.

19. Rakhmanda, Adi, P. Perbandingan Efek Antibakteri

Jus Nanas (Ananas comosus L.Merr) Pada

Berbagai Konsentrasi Terhadap Streptococcus)

Mutans. (Artikel Karya Tulis Ilmiah). Fakultas

Kedokteran Universitas Diponegoro Semarang.

2008.

20. Saqli A, Surjowardojo P, Sarwiyono.Daya hambat

ekstrak daun kersen (Muntingia calabura L.)

menggunakan pelarut air terhadap pertumbuhan

bakteri Streptococcus agalactiae penyebab

mastitis pada sapi perah dengan metode sumuran

(Skripsi). Malang: Universitas Brawijaya; 2014.



37

Artikel Penelitian

Pembuatan Pupuk Organik Cair Limbah Kulit Nanas Dengan Enceng

Gondok Pada Tanaman Tomat (Lycopersicon Esculentum L.) Dan

Tanaman Cabai (Capsicum Annuum L.)Aureus Intan Ayu Kusuma Pramushinta 1

1 Universitas PGRI Adi Buana Surabaya, Program Studi Biologi FMIPA

ABSTRAK

Pupuk organik cair adalah pupuk yang kandungan bahan kimia dapat memberikan hara yang sesuai dengan

kebutuhan tanaman pada tanah. Keunggulan dari pupuk organik cair adalah dapat menyehatkan lingkungan,

revitalisasi produktivitas tanah, menekan biaya, dan meningkatkan kualitas produk (Hadisuwito, 2012). Buah

nanas mengandung vitamin A dan C, kalsium, fosfor, magnesium, besi, natrium, kalium, dekstrosa, sukrosa (gula

tebu), dan enzim bromelain. Bromelain, berkhasiat anti radang. Berdasarkan kandungan nutriennya, ternyata kulit

buah nanas mengandung karbohidrat dan gula yang cukup tinggi. Menurut Wijana, dkk (1991) kulit nanas

mengandung 81,72% air; 20,87% serat kasar; 17,53% karbohidrat; 4,41% protein dan 13,65 % gula reduksi.

Mengingat kandungan karbohidrat, gula, dan protein yang cukup tinggi, maka kulit nanas memungkinkan untuk

dimanfaatkan sebagai bahan baku pembuatan pupuk melalui proses fermentasi. Dari hasil analisa kandungan eceng

gondok diperoleh bahan organik 78,47 %, C organik 21,23 %, N total 0,28 %, P total 0,0011 %, dan K total 0,016

%, sehingga eceng gondok bisa di manfaatkan sebagai pupuk organik, karena di dalam enceng gondok terpadat

unsur – unsur yang sangat dibutuhkan oleh tanaman. Dari hasil penelitian saya dengan pembuatan pupuk organik

cair menggunakan limbah kulit nanas dan enceng gondok dapat digunakan secara efektif sebagai pupuk dan dapat

diaplikasikan ke tanaman cabai dan tomat, yang terbukti dengan meningkatnya jumlah daun, tinggi tanaman, bobot

tanaman dan panjang akar.

Kata kunci: Pupuk organik cair, limbah nanas, enceng gondok, tanaman tomat cabai.

PENDAHULUAN

Pupuk organik adalah pupuk yang terbuat

dari bahan-bahan organik seperti sisa-sisa sayuran,

kotoran ternak dan sebagainya dan juga berasal dari

mahkluk hidup yang telah mati. Pembusukan dari

bahan-bahan organik dan mahkluk hidup yang telah

mati menyebabkan perubahan sifat fisik dari bentuk

sebelumnya. Berdasarkan bentuknya, pupuk organik

dibedakan menjadi dua, yaitu : pupuk cair dan pupuk

padat [6].

Buah nanas mengandung vitamin A dan C,

kalsium, fosfor, magnesium, besi, natrium, kalium,

dekstrosa, sukrosa (gula tebu), dan enzim bromelain.

Bromelain, berkhasiat anti radang. Berdasarkan

kandungan nutriennya, ternyata kulit buah nanas

mengandung karbohidrat dan gula yang cukup tinggi.

Menurut Wijana, dkk (1991) kulit nanas mengandung

81,72% air; 20,87% serat kasar; 17,53% karbohidrat;

4,41% protein dan 13,65 % gula reduksi. Mengingat

kandungan karbohidrat, gula, dan protein yang cukup

tinggi, maka kulit nanas memungkinkan untuk

dimanfaatkan sebagai bahan baku pembuatan pupuk

melalui proses fermentasi.Eceng gondok

(Eichhornia crassipes) merupakan gulma air yang

banyak dikenal orang. Penyebarannya yang sangat

cepat membuat eceng gondok menjadi sebuah

masalah baru perairan yang dapat mengganggu

ekosistem. Tumbuhan ini dapat berakar di dasar

perairan bila air tempat tumbuhnya dangkal dan eceng

gondok juga dapat tumbuh di tanah yang basah. Laju

pertumbuhan eceng gondok di perairan sangat cepat

dan tidak terkendali, hal ini dapat menimbulkan

banyak sekali kerugian yakni mengurangi

produktivitas badan air (mengambil ruang, mengambil

unsur hara yang juga dibutuhkan oleh ikan). Eceng

gondok tersebut berkembang lebih cepat terutama bila

kondisi lingkungannya sangat mendukung, seperti

airnya mengandung limbah. Walaupun eceng gondok

ternyata juga mempunyai beberapa manfaat Salah

satunya yaitu dengan cara memanfaatkan eceng

gondok sebagai bahan baku pembuatan pupuk organik

cair.

Dari hasil analisa kandungan eceng gondok

diperoleh bahan organik 78,47 %, C organik 21,23 %,

N total 0,28 %, P total 0,0011 %, dan K total 0,016 %,

sehingga eceng gondok bisa di manfaatkan sebagai

pupuk organik, karena di dalam enceng gondok



38

terpadat unsur – unsur yang sangat dibutuhkan oleh

tanaman.

2. METODE

2.1. Bahan Penelitian

Bahan yang digunakan dalam penelitian ini

adalah : Limbah kulit nanas yang dihaluskan sebanyak

6 kg, eceng gondok yang telah dihaluskan sebanyak 6

kg, EM4 (Effective microorganisme 4) sebanyak 1800

ml, air sumur, gula pasir 3,6 kg, kertas pH indikator

universal, benih tanaman tomat dan tanaman cabai

dengan label Cap Panah Merah yang dibeli di toko

Trubus.

2.2. Peralatan Penelitian

Alat yang digunakan dalam penelitian ini

meliputi : blender, timbangan, polybag ukuran 15x15

cm, gelas ukur berukuran 100ml, nampan (tray),

kertas label, ember plastik, sprayer ukuran 1 L.

2.3. Rancangan Penelitian

Penelitian ini di laksanakan dengan metode

eksperimental di lapangan dengan metode rancangan

acak lengkap (RAL). Tujuan penelitian ini untuk

menyelidiki ada atau tidaknya hubungan sebab akibat

dengan cara memberikan perlakuan tertentu pada

beberapa kelompok eksperimental dan menyediakan

kontrol sebagai pembandingan. Rancangan dasarnya

adalah rancangan acak lengkap (RAL) dan diteruskan

dengan analisis statistik menggunakan ANOVA, dan

dilanjutkan dengan uji BNT (Beda Nyata Terkecil).

Tahap yang harus dilakukan yaitu pembuatan

pupuk organik cair kombinasi limbah kulit nanas dan

eceng gondok dengan penambahan air sebanyak 4

perlakuan yaitu :

1. 0% = 0 ml POC + 1000 ml air = 1L

2. 4% = 40 ml POC + 960 ml air = 1L

3. 8% = 80 ml POC + 920 ml air = 1L

4. 12% =120 ml POC + 880 ml air = 1L

Dalam mendapatkan data yang validitasnya

tinggi, oleh sebab itu diperlukan tiap perlakuan dalam

penelitian dilakukan secara acak (random). Hal ini

dilakukan agar dapat mengulangi subyektifitas bagi

peneliti. Penelitian ini menggunakan Rancangan Acak

Lengkap (RAL), yang terdiri dari 4 perlakuan dan 6

kali pengulangan.

Tabel 1. Hasil RAL

Perlakuan

Pupuk (%)

Ulangan

1 2 3 4 5 6

A0% B1 B4 C1 D4 C6 B6

B4% A1 B5 D6 C2 A5 A4

C8% D1 B2 A3 D3 A6 C3

D12% C5 C4 D2 D5 B3 A2

3. PROSEDUR PENELITIAN

3.1. Pembuatan Pupuk Organik Cair Kombinasi

Limbah Kulit Nanas dan Tumbuhan Eceng

Gondok

Pembuatan pupuk organik cair dimulai dengan

memasukkan 6 kg limbah kulit nanas dan 6 kg eceng

gondok yang telah dihaluskan, setelah itu campurkan

3,6 kg gula pasir, tambahkan EM4 1800 ml dan air

sebanyak 12L kedalam ember plastik, lalu diaduk rata

sehingga tercampur rata, lalu ditutup rapat dengan

pkastik dan didiamkan selama 4 minggu hingga

bahan-bahan tersebut terfermentasi dengan baik.

Setelah 4 minggu larutan tersebut ditandai dengan

terdapatnya tetes-tetes air ditutup wadah fermentasi,

larutan berbau, dan terdapat lapisan jamur putih

dipermukaan larutan maupun didinding wadah

tersebut, pupuk organik cair disaring sampai bersih

dan disimpan didalam botol tertutup.

3.2. Persiapan Benih

Benih yang digunakan adalah benih tanaman

tomat dan cabai dengan label Cap Panah Merah yang

diawali dengan merendam benih dengan air hangat

(350-400c) selama setengah jam untuk mencegah

penyakit tular benih dan memecah masa dormansi

(waktu istirahat) benih [1]. Perendaman pada biji juga

berfungsi sebagai penyeleksi biji yang bagus dan tidak

cacat dengan indikasi ketika direndam biji tidak

terapung. Setelah perendaman biji dikeringkan

kemudian ditebarkan di tempat persemaian.

3.3. Persemaian

Persemaian benih dengan metode campuran

yaitu metode dengan media semai yang terdiri dari

campuran tanah dan pupuk urea dengan perbandingan

2:2 yakni 2 kg tanah di tambahkan dengan 2 kg pupuk

urea lalu dimasukkan ke dalam nampan. Benih yang

telah direndam disemai dengan cara ditaburkan pada

baris-baris persemaian pada media tanah. Penyemaian

dilakukan selama 30 hari atau telah memiliki kurang

lebih 3 daun benar, batang kokoh serta perakaran

berkembang baik dan dispray air setiap pagi dan sore

hari.

3.4. Penanaman

Benih yang telah berkecambah atau bibit telah

berumur 30 HSS (hari setelah semai) dan bibit telah

berdaun kurang lebih 3 daun benar sudah dapat

dipindahkan ke polybag. Bibit dengan ciri yang baik

yaitu pertumbuhannya segar, telah memiliki kurang

lebih 3 helai daun benar, berwarna merah, tidak cacat

atau terkena hama penyakit. Media tanam dibuat



39

dengan campuran tanah, sekam matang, sekam bakar,

dan pupuk urea. Penanaman dilakukan pada sore hari

dengan tujuan menghindari terjadinya kematian

tanaman karena pengaruh suhu yang tinggi.

3.5. Pemeliharaan

Penyiraman dilakukan dengan air biasa

secukupnya setiap sore hari sebanyak 100 ml agar

tidak kekeringan atau terlalu lembab. Serta sanitasi

dilakukan setiap saat terhadap daun-daun yang

terserang penyakit dengan cara memetik daun yang

terserang. Apabila terdapat hama dibasmi dengan cara

mengambilnya secara langsung.

3.5. Pemupukan

Pupuk yang digunakan adalah pupuk organik

cair dari limbah kulit nanas dan tumbuhan eceng

gondok (Eichhornia crassipes). Pupuk diencerkan

dengan air sebelum diaplikasikan. Pengenceran pupuk

dilakukan sesuai dengan perlakuan yang akan diteliti,

yakni :

Pupuk organik cair kombinasi limbah kulit

nanas dan eceng gondok :

P0 : Kontrol

P1 : Perlakuan dengan kadar pengenceran 4%

40 ml POC + 960 ml air = 1L


80 ml POC + 920 ml air = 1L


120 ml POC + 880 ml air = 1L

Untuk pemberian pupuk organik cair

kombinasi limbah kulit nanas dan eceng gondok

dilakukan 1 minggu setelah semaian pindah polybag

sebanyak 100 ml/polybag dengan cara disiramkan

langsung pada tanah dalam polybag tersebut.

Pemberian pupuk selanjutnya dilakukan 1 minggu

sekali selama 30 hari atau 4 kali pemberian pupuk

organik cair hingga panen untuk dilakukan

pengukuran tinggi dan bobot pada tanaman tomat dan

cabai Untuk penyiraman dilakukan 1 hari sekali

dengan volume takaran air 100 ml/polybag. Pada

penyiraman dilakukan di waktu sore hari. Komposisi

media tanam dalam polybag berukuran 15x15 cm

dengan takaran 300 gr tanah, 300 gr pupuk urea, 100

gr sekam matang, dan 100 gr sekam mentah.


Pada penelitian ini dilakukan penanaman dari

benih biji tanaman cabai yang dilakukan selama 30

hari. Tanaman tomat dan cabai dilakukan dengan 4

perlakuan yang diantaranya dengan beberapa

konsentrasi 0%, 4%, 8%, 12%, dengan adanya

perlakuan ini dapat dilihat dengan mengukur tinggi

tanaman, jumlah daun, panjang akar dan bobot kering

pada tanaman cabai. Metode yang digunakan

rancangan acak lengkap (RAL) dengan 4 perlakuan

dan 6 kali ulangan serta dianalisis dengan

menggunakan ANOVA.

Gambar 1. Grafik Konsentrasi Tanaman

Cabai

Dari hasil Grafik tersebut dapat dilihat bahwa

pada tanaman cabai dengan semakin tinggi suatu

konsentrasi (0%, 4%, 8%, 12%) maka hasil yang

didapat juga semakin tinggi pada jumlah daun,

panjang akar dan bobot kering juga semakin tinggi

atau besar. Sehingga dapat disimpulkan bahwa

pembuatan pupuk organik cair menggunakan limbah

kulit nanas dan tumbuhan enceng gondok sangat

efektif dalam proses pertumbuhan pada tanaman

cabai.Dengan menggunakan pupuk tersebut sangat

efektif dan umumnya limbah kulit nanas dan

tumbuhan enceng gondok yang biasanya tidak

dimanfaatkan oleh masyarakat tetapi sebenarnya

memiliki keunggulan atau manfaat yang sangat besar

terhadap tumbuh kembang tanaman.

Dari hasil ANOVA pada Gambar tersebut

menunjukkan bahwa hasil pengukuran tinggi, jumlah

daun, panjang akar dan bobot pada tanaman cabai

berpengaruh secara signifikan (P<0,10) terhadap

pengujian pupuk cair limbah kulit nanas dan tanaman

enceng gondok. Tumbuh kembang tanaman cabai

mengalami kenaikan secara signifikan dengan

bertambahnya konsentrasi pupuk cair yang dibuat.

Pada penelitian ini dilakukan penanaman benih

biji tanaman tomat yang dilakukan selama 30 hari.

Tanaman tomat dan cabai dilakukan dengan 4

perlakuan yang diantaranya dengan beberapa

konsentrasi (0%, 4%, 8%, 12%), dengan adanya

perlakuan ini dapat dilihat dengan mengukur tinggi

tanaman, jumlah daun, panjang akar dan bobot kering

pada tanaman tomat. Metode yang digunakan


0

100

200

300

400

500

Tinggi Daun PanjangAkar

BobotKering

Tanaman Cabai

Series1

Series2

0 %

4 %

8 %

12%



40

dan 6 kali ulangan serta dianalisis dengan

menggunakan ANOVA.

Gambar 2. Grafik Konsentrasi Tanaman Tomat

5. KESIMPULAN

Pada penelitian ini dapat disimpulkan bahwa

pembuatan pupuk organik cair dengan menggunakan

limbah kulit nanas dan enceng gondok pada tanaman

tomat dan cabai hasil yang didapatkan dengan

menggunakan pupuk organik tersebut maka tanaman

cabai dan enceng gondok semakin tumbuh dengan

besar dapat dilihat dari tinggi tanaman, daun tanaman,

panjang akar, dan bobot kering tanaman semakin

besarnya konsentrasi maka hasil yang di dapatkan juga

semakin optimum.

6. SARAN

Pada penelitian ini dapat disarankan sebagai

berikut :

1. Pembuatan pupuk organik cair tersebut dapat

dimanfaatkan oleh petani agar dapat

meminimalisir biaya perawatan tanaman.

2. Melakukan pengaplikasian terhadap tanaman

lain dengan diharapkan hasil yang di dapatkan

maksimal.

DAFTAR PUSTAKA

1. AgroMedia, Redaksi. Kunci Sukses Memperbanyak

Tanaman. Jakarta Selatan : Agromedia Pustaka 2;

2007.

2. Aniek, S . Kerajinan Tangan Enceng Gondok. Jawa

Tengah: Balai Pengembangan Pendidikan Luar

Sekolah dan Pemuda (BPPLSP). 2003.

3. Astawan, M. Khasiat Warna Warni Makanan. Jakarta. PT.

Gramedia Pustaka Utama; 2008.

4. Cahyono, B. Budidaya Tanaman Nanas Secara Komersial.

Jakarta: Pustaka Mina; 2012.

5. Forth dalam Muhtar Ahmad. Penggunaan Tanaman

Enceng Gondok Sebagai Pre-Treatmen Pengolahan

Air Minum Pada Air Selokan Mataram. Tugas Akhir

Strata-1Teknik Lingkungan: [Tugas Akhir tidak

diterbitkan]. Yogyakarta: UII; 2008.

6. Hadisuwito,S. Membuat Pupuk Organik Cair: Jakarta

Selatan: PT.Agro Media Pustaka; 2012.

7. Hanum dan Chairani. Teknik Budidaya Tanaman

Hortikultura. Jakarta: Departemen Pendidikan

Nasional; 2008.

8. Indriani, Y. H. Membuat Kompos Secara Kilat. Jakarta:

Penebar Swadaya; 2007.

9. Lail, Nuzulul. Penggunaan Tanaman Enceng Gondok

(Eichornia Crassipes) Sebagai Pre Treatment

Pengolahan Air Minum Pada Air Selokan Mataram.

Tugas Akhir Strata-1 Teknik Lingkungan [Tugas

Akhir tidak diterbitkan]. 2008.

10. Lingga. P dan Marsono. Petunjuk penggunaan pupuk.

Jakarta: Penebar Swadaya; 2005.

11. Mahmud, Mien K dan Nils Aria Z. Tabel Komposisi

Pangan Indonesia (TKPI). Universitas Michigan. Elex

Media Komputindo; 2009.

12. Musnamar, E. I. Pupuk Organik. Jakarta: Penerbit

Swadaya; 2006.

13. Rudi, K. Tumbuhan Enceng Gondok. Jakarta : Agromedia

Pustaka; 2003.

14. Rutoto, Sabar. Pengantar Metedologi Penelitian. FKIP:

Universitas Muria Kudus; 2007.

15. Saparinto, C. 2013. Grow your own vegetables-panduan

praktis menanam 14 Sayuran Konsumsi Populer di

Pekarangan. Yogyakarta: Penebar Swadaya.

16. Setyorini, D. 2003. Persyaratan pupuk organik untuk

menunjang budidaya pertanian organik. Yogyakarta:

BPTP.

17. Tjitrosoepomo, G. 2007. Taksonomi Tumbuhan.

Yogyakarta : Gajah Mada University Press.

18. Yuwono, D., 2005. Kompos. Penebar Swadaya, Jakarta.

050

100150200250300350400450

Tinggi Daun PanjangAkar

Bobot Kering

Series1

Series2

Series3

Series4

0 %

4 %

8 %

12%

Tanaman Tomat

https://www.google.co.id/search?hl=id&tbo=p&tbm=bks&q=inauthor:%22Nils+Aria+Zulfianto%22&source=gbs_metadata_r&cad=5



41

Artikel Penelitian

Induksi Kalus Piper retrofractum Vahl. dengan Zat Pengatur Tumbuh

Auksin dan Sitokinin

Junairiah1*), Dewi Amelia Sofiana1), Yosephine Sri Wulan Manuhara1), Surahmaida2) 1Departemen Biologi, Fakultas Sains dan Teknologi, Universitas Airlangga

2Akademi Farmasi Surabaya *) E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Cabai Jawa (Piper retrofractum Vahl.) dikenal sebagai tanaman hias dan tanaman obat. Metabolit

sekunder pada tanaman ini adalah piperin, saponin, kavisin dan minyak atsiri. Metabolit sekunder tersebut dapat

diisolasi dari bahan tanaman atau kalus hasil kultur jaringan tanaman. Pada metode kultur jaringan tanaman untuk

menginduksi kalus diperlukan media dengan konsentrasi zat pengatur tumbuh yang tepat untuk mendapatkan hasil

yang optimal. Penelitian ini bertujuan untuk mengetahui pengaruh kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh

Naphthalene Acetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino Purin (BAP) yang paling baik untuk induksi kalus P.

retrofractum. Jenis penelitian ini adalah eksperimental laboratoris. Penelitian menggunakan rancangan acak

lengkap (RAL) dengan 17 perlakuan yang terdiri atas 16 perlakuan kombinasi zat pengatur tumbuh dan 1 perlakuan

kontrol, Setiap perlakuan terdiri atas 6 ulangan. Eksplan daun P. retrofractum ditumbuhkan pada medium

Murashige dan Skoog padat ditambah dengan zat pengatur tumbuh dengan konsentrasi masing-masing 0; 0,5; 1;

1,5; 2 mg/L. Data yang diperoleh berupa data kuantitatif dan kualitatif. Data kuantitatif meliputi lama waktu

induksi kalus, persentase eksplan membentuk kalus, berat segar kalus dan berat kering kalus, dianalisis secara

statistik dengan SPSS. Data kualitatif meliputi warna dan tekstur kalus. Hasil penelitian menunjukkan bahwa zat

pengatur tumbuh NAA dan BAP berpengaruh terhadap pertumbuhan eksplan daun P. retrofractum. Penambahan

kombinasi konsentrasi NAA 0,5 mg/L dan BAP 0,5 mg/L menunjukkan respon terbentuknya kalus paling cepat

yaitu 11,5 hari. Penambahan kombinasi konsentrasi NAA 1 mg/L dan BAP 0,5 mg/L menghasilkan berat segar

terbaik yaitu 70,6 mg, sedangkan pada kombinasi konsentrasi NAA 1 mg/L dan BAP 2 mg/L menghasilkan berat

kering terbaik yaitu 18 mg. Warna kalus adalah putih dan putih kecokelatan dengan tekstur friabel dan kompak.

Kata kunci: BAP, induksi kalus, NAA, Piper retrofractum Vahl.

ABSTRACT

Chili Java (Piper retrofractum Vahl.) is known as ornamental plants and medicinal plants. Secondary

metabolites in this plant are piperin, saponin, kavisin and essential oils. Secondary metabolites can be isolated

from plant material or callus from plant tissue culture. In plant tissue culture method to induce callus required

media with the growth regulator concentration to get optimal result. The aim of this research is to know the effect

of the combination of growth regulator of Naphthalene Acetic Acid (NAA) and 6-Benzyl Amino Purin (BAP) which

is best for the induction of P. retrofractum callus. The type of this study was laboratory experimental. The study

used a complete randomized design (RAL) with 17 treatments consisting of 16 treatment combinations of growth

regulators and 1 control treatment. Each treatment consisted of 6 replications. P. retrofractum leaf eksplan grown

on Murashige and Skoog solid medium coupled with growth regulator substances with respective concentrations

of 0; 0.5; 1; 1.5; 2 mg / L. The data obtained in the form of quantitative and qualitative data. Quantitative data

include duration of callus induction, percentage of callus form explants, fresh callus weight and dry weight of

callus, analyzed statistically with SPSS. Qualitative data include callus color and texture. The results showed that

NAA and BAP growth regulator effect on growth of P. retrofractum leaf eksplan. The addition of a combination

of NAA concentration of 0.5 mg / L and BAP 0.5 mg / L showed the fastest callus formation response of 11.5 days.

The combination of NAA concentration of 1 mg / L and BAP 0,5 mg / L resulted in the best fresh weight of 70.6

mg, while in combination NAA concentration 1 mg / L and BAP 2 mg / L yielded the best dry weight of 18 mg.

Callus color is white and white with a friable and compact texture.

Keywords:BAP, callus induction, NAA, Piper retrofractum Vahl

.



42

1. PENDAHULUAN

Piper retrofractum Vahl. merupakan salah satu

tanaman multifungsi yang dikenal sebagai tanaman

hias dan tanaman obat untuk berbagai penyakit.

Tanaman Piper retrofractum Vahl. memiliki berbagai

nama daerah yakni di Sumatera dikenal dengan nama:

Lada panjang, cabai jawa, cabai panjang, di Jawa

dikenal dengan nama: cabean, cabe areuy, cabe jawa,

cabe sula , cabi jamo, cabe onggu, cabe solah

(Madura) dan di Sulawesi dikenal dengan nama: cabia

(Makasar). Tanaman Piper retrofractum Vahl. banyak

dikenal dengan sebutan “cabai atau cabe” karena

memiliki buah berwarna merah dan benbentuk

panjang menyerupai cabai pada umumnya. Sejatinya

tanaman Piper retrofractum Vahl. bukan merupakan

family Solanaceae yang merupakan famili tanaman

cabai atau genus Capsicum, melainkan merupakan

tanaman dari famili Piperaceae atau sirih-sirihan [1].

Khasiat dari tanaman Piper retrofractum Vahl.

diantaranya dapat mengobati penyakit asma, kejang

perut, lemah syahwat, penyakit infeksi bakteri [2].

Penggunaan Piper retrofractum Vahl. dalam bentuk

simplisia termasuk dalam 10 besar bahan baku yang

diserap oleh industri obat tradisional, dan menempati

peringkat keenam, yaitu 9,5% dari total keseluruhan

simplisia [3]. Kebutuhan Piper retrofractum Vahl.

berdasarkan ragam penggunaan (khasiat obat) adalah

sekitar 47,73% [4]. Piper retrofractum Vahl.

merupakan salah satu dari 9 tanaman unggulan Badan

Pengawasan Obat dan Makanan dan dikelompokkan

sebagai tanaman berkhasiat afrodisiak [5]. Buah dari

tanaman Piper retrofractum Vahl. mengandung

senyawa metabolit sekunder antara lain alkaloid,

piperin, kavisin, piperidin, isobutildeka-trans-2-trans-

4-dienamida; saponin, polifenol, minyak atsiri, asam

palmitat, asam tetrahidropiperat, 1 undesilenil-3-4-

matilendioksibenzena, dan sesamin [6].

Senyawa metabolit sekunder pada tanaman

Piper retrofractum Vahl. dapat diisolasi dari bahan

tanaman atau kalus hasil kultur jaringan tanaman.

Isolasi metabolit sekunder dari kalus merupakan salah

satu alternatif metode karena dapat digunakan untuk

meningkatkan kandungan dari metabolit sekunder.

Pada metode kultur jaringan tanaman untuk

menginduksi kalus diperlukan media dengan

konsentrasi zat pengatur tumbuh yang tepat untuk

mendapatkan hasil yang optimal. Pada penelitian ini

dilakukan penelitian induksi kalus daun Piper

retrofractum Vahl. menggunakan zat pengatur

tumbuh Naphthalene Acetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl

Amino Purin (BAP).

Zat pengatur tumbuh NAA merupakan zat

pengatur tumbuh golongan auksin yang berperan

untuk merangsang pembesaran sel, sedangkan zat

pengatur tumbuh BAP merupakan zat pengatur

tumbuh dari golongan sitokinin yang berperan

merangsang pembelahan sel-sel tanaman.

Pada penelitian mengenai peran ZPT NAA dan

BAP terhadap induksi kalus daun sirsak dengan

menggunakan ZPT pada berbagai konsentrasi,

hasilnya mengungkapkan bahwa eksplan daun sirsak

(Annona muricata) yang diberi perlakuan kombinasi

NAA 3 mg/L dan BAP 1 mg/L memiliki rerata waktu

pembentukan kalus tercepat yakni terjadi pada hari ke-

7 setelah tanam. Pada perlakuan kombinasi NAA 2

mg/L dan BAP 2 mg/L memiliki rerata kecepatan

induksi kalus terjadi pada hari ke-8 setelah tanam [7].

Penggunaan zat pengatur tumbuh NAA yang

dikombinasikan dengan BAP pada tanaman Piper

retrofractum Vahl. belum dilakukan sehingga pada

penelitian ini akan dilakukan induksi kalus dengan

pemberian zat pengatur tumbuh NAA dan BAP

dengan berbagai konsentrasi.

1.1.Rumusan Masalah

Berdasarkan latar belakang diatas dapat

dirumuskan masalah sebagai berikut:

1. Apakah kombinasi konsentrasi zat pengatur

tumbuh NAA dan BAP berpengaruh terhadap

waktu induksi, persentase eksplan membentuk

kalus, berat segar dan berat kering kalus pada

kultur eksplan daun Piper retrofractum Vahl. ?

2. Bagaimanakah morfologi kalus pada kultur

eksplan daun Piper retrofractum Vahl. setelah

pemberian kombinasi zat pengatur tumbuh NAA

dan BAP?

1.2. Tujuan Penelitian

Penelitian ini dilasanakan bertujuan untuk:

1. Mengetahui kombinasi konsentrasi zat pengatur

tumbuh NAA dan BAP terhadap waktu induksi

dan persentase eksplan membentuk kalus.

2. Mengetahui pengaruh kombinasi konsentrasi zat

pengatur tumbuh NAA dan BAP terhadap

morfologi kalus pada kultur eksplan daun Piper

retrofractum Vahl.


Penelitian yang akan dilakukan bersifat

eksperimental laboratoris. Penelitian menggunakan




43

yang terdiri dari 16 perlakuan kombinasi zat pengatur

tumbuh dan 1 perlakuan kontrol, dilakukan 6 kali

pengulangan pada setiap perlakuan kontrol, dilakukan

6 kali pengulangan pada setiap perlakuan. Eksplan

daun Piper retrofractum Vahl. ditanam pada media

MS yang ditambahkan zat pengatur tumbuh

Naphthalene Asetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino

Purine (BAP). kombinasi zat pengatur tumbuh

Naphthalene Asetic Acid (NAA) dan 6-Benzyl Amino

Purine (BAP) dengan berbagai konsentrasi, masing-

masing konsentrasi yaitu 0; 0,5; 1; 1,5; 2 mg/L.

Penanaman eksplan dilakukan secara aseptis

dalam LAF (Laminar Air Flow). LAF yang akan

digunakan distrelisasi terlebih dahulu menggunakan

alkohol 70%. Seluruh bahan dan alat yang akan

digunakan untuk penanaman eksplan pada medium

kultur dimasukkan ke dalam LAF yang permukaannya

telah disemprot terlebih dahulu menggunakan alkohol

70%. Kemudian menyalakan lampu ultra violet

selama 15-20 menit, setelah 15-20 menit lampu ultra

violet dimatikan dan menyalakan blower serta lampu

TL.

Eksplan daun Piper retrofractum Vahl.

dicuci dengan detergen dan dibilas menggunakan air

bersih dengan tujuan agar kotoran yang menempel

pada permukaan eksplan daun hilang, kemudian

dibilas dengan air mengalir. Eksplan daun Piper

retrofractum Vahl. didalam LAF disterilkan dengan

chlorox 20% dan digoyang-goyang selama kurang

lebih 5 menit. Selanjutnya disterilisasi dengan aquades

steril sebanyak 3 kali.

Untuk induksi kalus, penanaman eksplan

daun Piper retrofractum Vahl. dilakukan dengan cara

memotong helaian daun dengan luas kurang lebih 1

𝑐𝑚2 dan bagian tepi daun dibuang. Selanjutnya,

potongan daun diletakkan ke dalam botol kultur yang

telah berisi media induksi kalus Murashige dan Skoog

(MS) dengan perlakuan zat pengatur tumbuh yang

berbeda. Kemudian botol kultur ditutup dengan

aluminium foil. Botol kultur yang telah berisi eksplan

daun ditumbuhkan dalam ruang inkubasi dengan suhu

20˚C-25˚C dengan penyinaran lampu TL 40 watt.

Semua proses harus dilakukan secara aseptis di dalam

LAF dengan bantuan blower dan api bunsen.

Data yang diperoleh dari penelitin ini berupa

data kualitatif dan data kuantitatif. Data kualitatif pada

penelitian ini berupa gambar, yakni morfologi dan

tekstur kalus yang akan dianalisis secara deskriptif.

Data kuantitatif yaitu waktu yang dibutuhkan untuk

induksi kalus, presentase terbentuknya kalus, berat

basah dan berat kering kalus yang akan dianalisis

secara statistik menggunakan program SPSS. Sebelum

elakukan uji statistik, semua data terlebih dahulu

dilakukan uji normalitas dengan uji Kolmogorov-

Smirnov dan selanjutnya dilakukan uji Test of

Homogenity of Variance agar dapat diketahui bahwa

data yang diperoleh merupakan data homogen. Setelah

dianalisis hasilnya data yang didapatkan tidak

homogen dan tidak berdistribusi normal, maka

kemudian dianalisis dengan uji non parametik yakni

uji Kruskal-Wallis yang bertujuan untuk mengetahui

apakah pengaruh pada tiap perlakuan secara signifikan

0,05. Dan selanjutnya akan dilakukan uji lanjutan

menggunakan uji Mann-Whitney untuk mengetahui

secara signifikan antar perlakuan [8].


Rerata lama waktu induksi kalus dan persentase

eksplan membentuk kalus Piper retrofractum Vahl.

terdapat pada Tabel 1.

Tabel 1. Lama waktu induksi kalus dan persentase

eksplan membentuk kalus daun Piper

retrofractum Vahl. Pada media MS dengan

berbagai macam kombinasi konsentrasi zat

pengatur tumbuh NAA dan BAP.

Kombinasi

Konsentras

i (mg/L)

Kode

Rerata

Lama

Waktu

Induksi

Kalus (hari)

Persentase

Eksplan

Membentu

k Kalus

(%) NA

A

BA

P

0,0 0,0 N0,0B0,

0

33,5±1,761h 100%

0,5 0,5 N0,5B0,

5 11,5±0,548a 100%

0,5 1,0 N0,5B1,

0

15,33±0,516d

100%

0,5 1,5 N0,5B1,

5

18,5±0,548f 100%

0,5 2,0 N0,5B2,

0

15,5±0,548de 100%

1,0 0,5 N1,0B0,

5

15±0,000cd 100%

1,0 1,0 N1,0B1,

0

14,17±0,983bc

100%

1,0 1,5 N1,0B1,

5

16,33±0,516e 100%

1,0 2,0 N1,0B2,

0

13,67±0,516b

100%

1,5 0,5 N1,5B0,

5

20,67±0,516g

100%

1,5 1,0 N1,5B1,

0

16,33±0,815e 100%



44

1,5 1,5 N1,5B1,5

16,5±1,643e 100%

1,5 2,0 N1,5B2,0

15,67±0,516de 100%

2,0 0,5 N2,0B0,5

18,67±0,516f 100%

2,0 1,0 N2,0B1,0

15±0,000cd 100%

2,0 1,5 N2,0B1,5

16,5±0,548e 100%

2,0 2,0 N2,0B2,0

15±0,000cd 100%

Keterangan: Angka rerata yang disertai notasi yang

berbeda menunjukkan perbedaan yang nyata pada derajat

signifikansi 0,05 berdasarkan uji Mann-Whitney.

Induksi kalus paling cepat yakni pada

perlakuan kombinasi konsentrasi NAA 0,5 mg/L dan

BAP 0,5 mg/L dengan rerata lama waktu induksi 11,5

hari, sedangkan induksi kalus paling lama yakni pada

perlakuan NAA 0,0 mg/L dan BAP 0,0 mg/L dengan

rerata lama waktu induksi 33,5 hari. Hasil dari

pengamatan enam minggu masa kultur menunjukkan

bahwa semua eksplan pada tiap perlakuan membentuk

kalus. Pada Tabel 1 menunjukkan bahwa semua

eksplan pada 17 macam perlakuan 100% membentuk

kalus.

Pembentukan kalus terjadi akibat adanya

perlukaan yang diberikan pada eksplan, sehingga sel-

sel pada eksplan akan memperbaiki sel-sel yang rusak

tersebut. Awalnya terjadi pembentangan dinding sel

dan penyerapan air sehingga sel akan membengkak

dan terjadi pembelahan sel. Rangsang luka tersebut

menyebabkan terjadinya kesetimbangan pada dinding

sel sehingga sebagian protoplas mengalir ke luar

dinding sel dan mulai terbentuk kalus [9].

Berdasarkan penelitian yang dilakukan pada

eksplan daun A. Annuna, waktu induksi kalus tercepat

adalah pada hari ke-15 dengan perlakuan yang sama

yakni BAP 0,5 mg/L dan NAA 0,5 mg/L [10]. Hal ini

membuktikan bahwa kombinasi antara auksin dan

sitokinin yang seimbang memberikan respon yang

lebih baik dibandingkan dengan perlakuan auksin dan

sitokinin secara tunggal pada induksi kalus. Zat

pengatur tumbuh NAA yang termasuk golongan

auksin berperan untuk memacu proses dediferensiasi

sel, menekan oragonogenesis serta menjaga

pertumbuhan kalus [11].

Media MS adalah media yang paling sesuai

untuk induksi kalus pada tanaman stroberi. Zat

pengatur tumbuh auksin yang paling efektif untuk

induksi kalus adalah NAA yang dikombinasikan

dengan BAP, frekuensi induksi kalus dipengaruhi oleh

konsentrasi BAP dan auksin [12]. Pada konsentrasi

rendah NAA telah terbukti paling efektif untuk

induksi kalus terlepas dari jenis eksplan yang dikultur.

Berat segar dan berat kering kalus terdapat pada Tabel

2.

Tabel 2. Berat segar dan berat kering kalus daun

Piper retrofractum Vahl. dengan kombinasi

konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA dan BAP

Kombinasi

konsentrasi

(mg/L) Kode Rerata

NAA BAP Berat segar (mg) Berat Kering (mg)

0,0 0,0 N0,0B0,0 1,70±0,40a 0,60±0,10a

0,5 0,5 N0,5B0,5 31,00±8,30abc 13,10±5,00cde

0,5 1,0 N0,5B1,0 48,40±54,50bcd 10,60±14,60bcde

0,5 1,5 N0,5B1,5 22,90±8,40ab 8,40±2,10abcd

0,5 2,0 N0,5B2,0 5,20±3,90a 2,70±2,00ab

1,0 0,5 N1,0B0,5 70,60±51,90d 15,20±9,80de

1,0 1,0 N1,0B1,0 36,40±48,10abcd 7,30±10,60abcd

1,0 1,5 N1,0B1,5 20,20±10,00ab 6,50±3,70abcd

1,0 2,0 N1,0B2,0 67,40±77,20cd 18,00±18,60e

1,5 0,5 N1,5B0,5 11,30±1,70ab 3,20±0,80ab

1,5 1,0 N1,5B1,0 14,20±3,70ab 5,40±2,90abc

1,5 1,5 N1,5B1,5 12,00±8,10ab 5,20±3,30abc

1,5 2,0 N1,5B2,0 37,60±25,30abcd 7,80±2,50abcd

2,0 0,5 N2,0B0,5 6,90±3,70a 2,80±1,40ab

2,0 1,0 N2,0B1,0 10,30±5,10ab 3,90±1,70abc

2,0 1,5 N2,0B1,5 9,80±2,70ab 3,70±2,70abc

2,0 2,0 N2,0B2,0 17,60±2,30ab 4,10±2,20abc

Keterangan: Angka rerata yang disertai notasi yang berbeda

menunjukkan perbedaan yang nyata pada derajat

signifikansi 0,05 berdasarkan uji Mann-Whit

Pada perlakuan dengan kombinasi

konsentrasi NAA 1,0 mg/L dan BAP 0,5 mg/L

menunjukkan nilai rerata berat segar tertinggi yaitu

70,60 mg, sedangkan pada perlakuan NAA 1,0 mg/L

dan BAP 2,0 mg/L menunjukkan berat kering tertinggi

yaitu 18,00 mg. Pada perlakuan NAA 0,0 mg/L dan

BAP 0,0 mg/L menunjukkan nilai rerata berat segar

terendah yaitu 1,70 mg dan juga menunjukkan nilai

rerata berat kering terendah yaitu 0,60 mg.

Berat segar yang tinggi disebabkan karena

kandungan air dalam kalus tinggi. Auksin dapat

merubah aktivitas enzim-enzim yang berperan dalam

sintesis komponen-komponen dinding sel dan

menyusunnya kembali dalam suatu matriks dinding

sel yang utuh sehingga akan berpengaruh terhadap

berat sel [13]. Auksin mendorong terjadinya elongasi

sel yang diikuti dengan pembesaran sel dan

meningkatnya berat segar. Peningkatan berat segar

terutama disebabkan oleh meningkatnya penyerapan

air oleh sel tersebut. [14].

Setiap sel mempunyai kepekaan sendiri

terhadap ZPT yang diberikan, selain itu waktu



45

pembelahan sel untuk memperbanyak diri tidak sama

karena siklus selnya akan selalu berbeda-beda.

Perbedaan laju pertumbuhan juga dipengaruhi oleh

kemampuan jaringan untuk menyerap zat-zat hara

yang tersedia, hal ini banyak dipengaruhi oleh aerasi

dan tekstur kalus. Kalus yang terlalu padat dan

kompak mempunyai kemampuan menyerap zat hara

lebih rendah daripada tekstur kalus yang tidak terlalu

padat [15].

Selain dipengaruhi oleh berat segar,

pertumbuhan kalus juga dipengaruhi oleh berat kering

kalus. Berat segar yang tinggi tidak selalu

menghasilkan berat kering yang tinggi pula.

Berdasarkan hasil penelitian ini berat segar tertinggi

terdapat pada kombinasi konsentrasi NAA 1,0 mg/L

dan BAP 0,5 mg/L, sedangkan hasil berat kering

tertinggi justru terdapat pada kombinasi konsentrasi

NAA 1,0 mg/L dan BAP 2,0 mg/L dengan rerata berat

kering 18,00 mg. Hal ini dikarenakan tiap sel memiliki

kemampuan absorbsi air yang berbeda. Kalus yang

memiliki berat segar yang tinggi terdapat sel-sel yang

mengandung banyak air karena berat segar masih

dipengaruhi oleh aktivitas metabolisme dan

lingkungan [16]. Berat kering jauh lebih kecil

disebabkan karena saat pengeringan air didalam sel

akan menguap habis sehingga berat kering yang

dihasilkan rendah [17].

Morfologi kalus daun Piper retrofractum

Vahl. dengan kombinasi NAA dan BAP minggu ke-6.

Eksplan daun P. retrofractum Vahl. yang diberikan

berbagai macam kombinasi konsentrasi zat pengatur

tumbuh NAA dan BAP memberikan respon yang

berbeda terhadap morfologi kalus yang terbentuk.

Warna kalus yang didapatkan pada penelitian ini

kebanyakan berwarna putih dan putih kecoklatan.

Kalus berwarna putih merupakan jaringan embrionik

yang belum mengandung kloroplas, tetapi memiliki

kandungan butir pati yang merupakan polisakarida

simpanan pada tumbuhan. Perubahan warna yang

terjadi pada kalus akibat adanya pigmen dan

dipengaruhi oleh nutrisi dan factor lingkungan seperti

cahaya [18]. Warna kalus putih kekuningan

merupakan warna kalus yang baik karena menandakan

sel kalus masih aktif membelah [19]. Kalus yang

berwarna cokelat disebabkan senyawa fenol yang

berada dalam kalus sudah mulai terbentuk [20].

Tekstur kalus merupakan salah satu penanda

yang dipergunakan untuk menilai pertumbuhan suatu

kalus. Hasil pengamatan menunjukan bahwa kalus

yang terbentuk pada semua perlakuan memiliki tekstur

yang friabel dan kompak. Kalus yang diperoleh dari

berbagai konsentrasi BAP dikombinasikan dengan

NAA berwarna putih dan abu-abu putih dengan tekstur

friabel sampai kompak [20]. Kalus dengan tekstur

friabel akan berkembang menjadi embrio somatik

[21].

Hasil dari penelitian menunjukkan bahwa

sebagian besar kalus bertekstur kompak, hanya

beberapa yang bertekstur remah. Tekstur kalus

dikatakan kompak apabila antara sel satu dengan sel

lainnya tidak mudah dipisahkan [22]. Tekstur kalus

yang kompak berhubungan dengan kandungan

sukrosa [23]. Sukrosa berfungsi sebagai bahan

pembentuk dinding sel yang terdiri dari rantai selulosa

yang sulit untuk diputuskan [24].

A B C

Gambar 1

(A). Kalus tumbuh pada bagian permukaan

eksplan dan sedikit pada bagian tepi, berwarna

putih dan bertekstur friabel pada medium MS

(kontrol); (B) Kalus tumbuh pada bagian tepi

eksplan dan bagian permukaan bawah eksplan,

berwarna kecokelatan, dan bertekstur kompak

pada medium MS, perlakuan NAA 0,5 mg/L dan

BAP 1,0 mg/L; (C) Kalus tumbuh pada bagian tepi

eksplan, berwarna kecokelatan, dan bertekstur

kompak pada medium MS dengan perlakuan NAA

1,5 mg/L dan BAP 0,5 mg/L.

4. KESIMPULAN

1. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA

dan BAP berpengaruh terhadap lama waktu

induksi kalus, persentase eksplan membentuk

kalus, berat segar, dan berat kering kalus Piper

retrofractum Vahl.

2. Kombinasi konsentrasi zat pengatur tumbuh NAA

dan BAP berpengaruh terhadap morfologi kalus

Piper retrofractum Vahl. Morfologi kalus yang

terbentuk bervariasi, mulai dari warna dan

teksturnya. Kalus yang terbentuk umumnya

berwarna putih dan putih kecoklatan.


-

6. PENDANAAN

-



46


-

DAFTAR PUSTAKA

1. Anonim., 2015. Cara Budidaya Tanaman Cabai Jawa. www.agroteknologi.web.id., Diakses pada

tanggal 30 November 2016 pukul 19.41 WIB.

2.Januwati, M. dan D.S. Effendi. Potensi Tanaman Cabe Jawa di Pekarangan dalam Menunjang

Perkembangan Tanaman Obat. Warta Tumbuhan

Obat Indonesia: 1992a:1(3):11-12.

3.Jamal, Y., P. Irawati, A. Fathoni, A. Agusta. Chemical

constituents and antibacterial effect of essential oil

of javaness pepper leaves (Piper retrofractum

Vahl.). Media Litbangkes: 2013: 23(2):65-72.

4.Kemala, S., E. Sudiarto., P. Rini., J.T. Yuhono, M.

Yusron, L. Mauludi, M. Raharjo, B. Waskito, dan

H. Nurhayati. Serapan, pasokan dan pemanfaatan tanaman obat di Indonesia. Laporan Teknis

Penelitian Tanaman Rempah dan Obat (II). hal.

187-247. 2003.

5.Sampurno.2003. Kebijakan pengembangan jamu/obat

tradisional/obat herbal Indonesia. Jakarta .

Makalah pada Seminar dan Pameran Nasional

POKJANAS TOI, 25-26 Maret 2003.

6. Badan POM RI. Acuan Sediaan Herbal. Jakarta. 2010:

Vol.5:132 hlm.

7.Puteri RF. Pengaruh Pemberian Berbagai Konsentrasi

NAA (Naphthalene Acetic Acid) dan BAP

(Benzyl Amino Purin) terhadap Induksi Kalus

Daun Sirsak (Annona muricata) secara In Vitro. Lentera Bio: 2014: Vol. 3 No. 3: 154-159.

8.Nazir, M., Metode Penelitian. Jakarta: Ghalia Indonesia;

1999.

9.Fowler, M.W. Commercial application and economic

aspects of mass plant cell culture, dari Mantell,

S.H., Smith, H. (ed.). London: Plant Biotechnology. Cambridge University Press, 3-

38; 1983.

10.Purnamaningsih, R., dan M. Ashrina. Pengaruh BAP dan NAA Terhadap Induksi Kalus dan

Kandungan Artemisin dari Artemisia annua.

Jurnal. Bogor: Badan Penelitian dan

Pengembangan Pertanian Bogor; 2011.

11.Rohmah DI. Pengaruh Berbagai Konsentrasi

2,4 D (Dichlorophenoxy Acetic Acid)

Terhadap Induksi dan Viabilitas Kalus Daun

dan Nodus Tanaman Stevia (Stevia rebaudiana

Bertoni) pada Medium New Phalaenopsis

(NP) secara in vitro(Skripsi) Universitas

Negeri Surabaya. 2014.

12.Mahmoud, O., Kosar, M., Regeneration and Histological of Plants Derived from Leaf explants in vitro

Culture of Strawberry. Journal . Agricultural

Biotechnology Research Institute of Iran. 2013.

13.Abidin, Z. Dasar-Dasar Pengetahuan Tentang

ZatPengatur Tumbuh. Bandung: Penerbit

Angkasa; 1990.

14.Wattimena, G. A. Zat Pengatur Tumbuh Tanaman.

Bogor : PAU-IPB; 1991.

15.Lakitan, B. Fisiologi Pertumbuhan dan Perkembangan Tanaman. Jakarta : PT. Raja Grafindo Persada;

1996.

16.Wardani DP, Solichatun, Setyawan AD, Pertumbuhan

dan produksi saponin kultur kalus Talinum paniculatum Gaertn, pada variasi penambahan

2,4-D dan kinetin. (Skripsi) Surakarta: UNS: 2004.

17.Sitompul MS, Guritno B, Analisis pertumbuhan tanaman.

Yogyakarta: UGM Press; 1995.

18. Evans, D.E., J.O.D. Coleman, and A. Kearns. “Plant Cell Culture”. New York: BIOS Scientific

Publisher; 2003.

19.Sorentina, M.S.M, Haliani, Muslimin, dan I.N. Suwastika. Induksi Kalus Bawang Merah (Allium

ascalonicum L.) Lokal Palu pada Medium MS

dengan Penambahan 2,4-D (2,4-Asam

Dikloropenoksi Asetat) dan Air Kelapa. Online Jurnal of Natural Science. 2013: Vol. 2, No. 2: 55-

63.

20.Teshome, S. and Feyissa, T. InVitro Callus Induction

and Shoot Regeneration from Leaf Explants of

Glinuslotoides (L.)—An Important Medicinal

Plant .American Journal of Plant Sciences. 2015:

6: 1329-1340.

21. Kasi, P.D., dan Sumaryono. Perkembangan kalus embriogenik sagu (Metroxylon sagu Rottb.) pada

tiga sistem kultur in vitro. Menara Perkebunan.

2008:Vol. 76, No. 1: 1-10.

22. Amien S, Ariyanti M, Arief M, Kurniawan D, Induksi

kalus dari daun nilam kultivar Lhoksemauwe,

Sidikalang, dan Tapaktuan dengan 2,4-D.

Zuriat, 2007: 18 (2): 245-248.

23. Leupin, Compact callus induction and plant regeneration

of a non-flowering vetiver from Java. Plant Cell,

Tissue and Organ Culture, 2000:62: 115–123.

24. Campbell NA, Reece JB, Mitchel LG. Biologi. Edisi

kelima jilid 2, Jakarta: Erlangga; 2003.

http://www.agroteknologi.web.id/



47

Artikel Pelitian

Validasi Metode Analisis Formaldehid Pada Tisu Basah

Dwi Wahyuniati1*), Cicik Herlina Yulianti2, Mercyska Suryandari2

1 Mahasiswa Akademi Farmasi Surabaya 2 Program Studi D3 Akademi Farmasi Surabaya

*) Email: [email protected]

ABSTRAK

Tisu basah merupakan istilah umum untuk menggambarkan sepotong bahan, umumnya ditambahkan dengan

komposisi cairan atau semi cair, dimaksudkan untuk membersihkan dan memberikan rasa lembut. Tisu basah

memiliki struktur berserat terdiri dari campuran serat selulosa pulp dan regenerasi, seperti rayon dan atau liosel,

dengan atau tanpa serat pengikat. Pada proses produksi, komponen-komponen yang sengaja ditambahkan pada

pembuatan tisu basah salah satunya adalah formaldehid sebagai penguat keadaan basah. Akan tetapi penggunaan

yang berlebihan dapat menyebabkan ruam pada kulit (dermatitis). Pada penelitian ini dilakukan validasi metode

analisis formaldehid pada tisu basah dengan menggunakan metode absorpsi uap SNI ISO 14184-2:2015 dengan

pereaksi nash menggunakan spektrofotometri UV-Vis. Sampel yang digunakan adalah tisu basah dari satu merek.

Validasi metode dilakukan untuk memastikan metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat diterapkan, diperoleh hasil

valid, dengan nilai R = 0,9993, yang mendekati nilai 1, menghasilkan persamaan regresi linier y = 0,0294x -

0,0317. Pengujian akurasi diperoleh rata-rata persen recovery sebesar 84,54%, 102,05%, dan 106,13%. Nilai RSD

sebesar 1,62%. Hasil nilai LOD sebesar 0,040, sedangkan hasil nilai LOQ sebesar 0,136. Hasil validasi terhadap

metode SNI ISO 14184 – 2 : 2015 dapat disimpulkan bahwa metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat digunakan

untuk menguji formaldehid pada tisu basah.

Kata kunci: Validasi, Tisu basah, Formaldehid, Pereaksi Nash, Spektrofotometri UV-Vis.

ABSTRACT

Wet wipes are the general terms to describe a piece of material, generally impregnated with a liquid or semi liquid

composition, intended to both cleaning and providing a smooth feeling. Wet wipes has fibrous structures consist

of a mixture of pulp and regenerated cellulose fibers, such as rayon and/or lyocell, with or without binding fibers.

In product process, one of components expressly added was formaldehyde as strengthener as wet condition. But,

excessive use of formaldehyde can cause skin rash (dermatitis). This study was aimed to Analysis Method

Validation of Formaldehyde of Wet Wipes used vapour absorption SNI ISO 14184-2:2015 method with Nash

Reagents by UV-Vis Spectrophotometry, and used vapour absorption method. The wet wipes sample used was

from one brand. Method validation was conducted to definite SNI ISO 14184-2:2015 method can be applied, the

result was valid, r value is 0,9993, the linear regression y = 0,0294x – 0,0317, accuracy percent recovery study

showed 84,54%, 102,05%, and 106,13%., Related standar deviation showed 1,62%, limit of detection was 0,040,

limit of quantitation was 0,136. The validation result of SNI ISO 14184-2:2015 method can be concluded that SNI

ISO 14184-2:2015 method can be applied to examine formaldehid on wet wipes.

Keywords: Wet wipes, Formaldehyde, Validation, Nash Reagent, UV-Vis Spectrophotometry.

1. PENDAHULUAN

Gaya hidup manusia saat ini yang menginginkan

semuanya serba instan menyebabkan tisu menjadi hal

yang sangat dibutuhkan belakangan ini. Berbeda pada

saat tahun 70-an, dimana saputangan masih menjadi

hal yang wajib dibawa saat bepergian. Saat ini banyak

orang menggunakan tisu, salah satunya yaitu tisu

basah. Tisu basah memiliki struktur berserat terdiri

dari campuran serat selulosa pulp dan regenerasi,

seperti rayon dan atau liosel, dengan atau tanpa serat

pengikat [2]. Berdasarkan [4], komponen-komponen

yang ditambahkan pada pembuatan tisu basah

digunakan zat kimia pada proses produksinya salah

satunya yakni, formalin, sebagai penguat keadaan

basah, dengan penggunaan sekitar 50 Kg per ton [2].

Telah diketahui sekitar 90% tetap berada dalam

produk akhir atau sekitar 45 Kg per ton. Ternyata

formaldehid pada tisu basah pengunaannya secara

terus menerus dapat menyebabkan terjadinya

dermatitis kontak alergika (radang kulit akibat kontak

dengan bahan yang memicu reaksi alergi pada kulit).

Paparan formaldehid dapat mengiritasi kulit, mata,

hidung, dan tenggorokan.

Dalam penelitian ini sebagai acuan metode

absorbsi untuk mengekstrak formaldehid yang paling




48

mendekati adalah SNI ISO 14184 – 2 : 2015 contoh

uji tekstil [5]. Agar metode validasi yang dipakai bisa

digunakan di laboratorium lain dengan kondisi alat

yang berbeda serta diperoleh hasil yang akurat, maka

diperlukan pembuktian metode analisis tersebut untuk

menguji formaldehid pada tisu basah, yaitu dengan

memvalidasi metode tersebut.

Validasi adalah suatu tindakan pembuktian

dengan cara yang sesuai bahwa tiap bahan, proses,

prosedur, kegiatan, sistem, perlengkapan, atau

mekanisme yang digunakan dalam produksi dan

pengawasan akan senantiasa mencapai hasil yang

diinginkan secara konsisten [5]. Parameter validasi

yang akan dilakukan antara lain; selektivitas,

linieritas, akurasi, presisi, limit deteksi (LOD) /

Kuantitasi (LOQ).


2.1. Alat:

Spektrofotometer ultraviolet–visibel (Genesys®) spit

beam, neraca analitik (Shimadzu®), alat-alat gelas

(Pyrex®), botol kaca, keranjang kasa kawat kecil,

inkubator (Memmert®), kompor listrik (Maspion®).

2.2. Bahan:

Formaldehid dengan kadar 37% b/v, tisu basah, asam

sulfat (H2SO4), ammonium asetat, asetil aseton, asam

asetat glasial, aquadest.

2.3. Metode:

1. Pembuatan dan Pembakuan Larutan Standar

Formaldehid

Dibuat dari larutan baku induk Formaldehid 1.500

ppm dari larutan Formaldehid pro analysis 37%

dengan pelarut aquades. Dilakukan pembakuan

larutan baku induk Formaldehid 1.500 ppm,

dengan cara dititrasi dengan asam sulfat (0,01

mol/l) menggunakan indikator timolftalein hingga

warna biru tepat hilang [5]. Hasil pembakuan

larutan standar Formaldehid diperoleh konsentrasi

sebenarnya, yaitu 1.609,92 ppm. Kemudian dibuat

larutan baku kerja sebanyak 5 konsentrasi, yaitu

5,63 ppm; 6,43 ppm; 8,04 ppm; 10,46 ppm; 12,07

ppm.

2. Pembuatan pereaksi asetil aseton (pereaksi Nash)

Larutkan 150 g ammonium asetat dalam 800 mL

air. Tambahkan 3 mL asam asetat glasial dan 2 mL

asetil aseton, pindahkan ke dalam labu ukur 1.000

mL dan encerkan dengan air hingga tepat tanda

batas. Simpan larutan dalam botol cokelat [5].

3. Preparasi Sampel

Sampel uji dipotong berukuran kecil dengan berat

1 gram ± 10 mg. Setelah itu diletakkan di atas

kawat kasa dan di masukkan dalam botol kaca

yang telah berisi 200 mL air, ditutup rapat dan

disimpan dalam inkubator (65 ± 1)º C selama 4

jam. Setelah proses inkubasi selesai, botol kaca

dikeluarkan dan didinginkan selama (30 ± 5)

menit, sampel uji dan keranjang dikeluarkan. Botol

kaca yang berisi larutan ditutup kembali dan

dikocok, untuk mencampurkan larutan yang

mengembun pada dinding botol kaca.

4. Validasi Metode Analisis

a. Penentuan panjang gelombang maksimum

Pengujian dilakukan dengan melakukan optimasi

pada panjang gelombang maksimum formaldehid.

Diketahui dari literatur, panjang gelombang

maksimum formaldehid dengan menggunakan

pereaksi Nash pada 412-415 nm [3]. Dilakukan

optimasi panjang gelombang pada salah satu

konsentrasi baku kerja, yaitu 8,04 ppm, dengan

cara dipipet 5 mL larutan baku kerja ini kedalam

tabung reaksi tertutup tambahkan pereaksi asetil

aseton (Nash) sebanyak 5 mL. tabung reaksi

tersebut dipanaskan diatas penangas air dengan

suhu (40 ± 2)° C selama (30 ± 5) menit, kemudian

didinginkan selama (30 ± 5) menit, lalu diukur

absorbansi pada panjang gelombang 400-600 nm

di spektrofotometer.

b. Selektivitas/Spesifisitas

Dengan cara membandingkan kurva (absorbansi

Vs panjang gelombang) dari larutan standar

formaldehid dengan konsentrasi 8,04 ppm, kurva

dari sampel dengan adisi formaldehid 8,04 ppm

dan kurva dari sampel tanpa adisi. Ketiga larutan

diukur pada panjang gelombang 400-600 nm.

c. Linieritas

Penentuan linieritas dilakukan dengan menguji

kelima larutan baku kerja formaldehid (5,63 ppm;

6,43 ppm; 8,04 ppm; 10,46 ppm; 12,07 ppm)

diamati panjang gelombang maksimal. Hasil

absorbansi yang diperoleh kemudian dianalisis

dengan membuat persamaan garis regresi linier

dan ditentukan koefisien korelasinya. Dari hasil

analisis tersebut, dapat ditentukan linieritasnya.

Kurva regresi tersebut dapat digunakan untuk

semua pengukuran larutan formaldehid dengan

konsentrasi yang berbeda-beda.

d. Akurasi

Dilakukan pada hasil ekstraksi sampel tisu basah

yang diadisi formaldehid dengan konsentrasi 5,63

ppm; 6,43 ppm; 8,04 ppm (masing-masing adisi

sampel dengan konsentrasi tersebut direplikasi

sebanyak 3 kali) menggunakan spektrofotometri

UV-Vis pada panjang gelombang maksimum.



49

Hasil pengukuran dibandingkan dengan kurva

baku yang telah dibuat dan digunakan untuk

menghitung persentase recovery.

Kadar kembalian = 𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖−𝑠𝑎𝑚𝑝𝑒𝑙 𝑛𝑜𝑛 𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖

𝑠𝑡𝑎𝑛𝑑𝑎𝑟 𝑦𝑔 𝑑𝑖𝑎𝑑𝑖𝑠𝑖𝑘𝑎𝑛 𝑥 100%

Hasil persentase recovery untuk keperluan analisis

dapat memenuhi syarat jika menunjukkan

persentase antara 80% - 110% [6].

e. Presisi

Pengujian presisi yang dilakukan adalah kategori

keterulangan (repeatability). Pengujian dilakukan

pada kosentrasi 6,43 ppm dengan 6 kali replikasi.

Selanjutnya diamati serapannya pada panjang

gelombang maksimum. Ketelitian ditentukan

sebagai simpangan baku (SD) dan % RSD.

Ketelitian untuk keperluan analisis dikatakan

cukup baik jika % RSD ≤ 7,3% [6].

f. LOD/LOQ

LOD (Limit of Detection) merupakan nilai konsentrasi

zat yang diukur pada saat metode/instrumen mulai

mendeteksi keberadaan zat tersebut tetapi belum bisa

dikuantifikasi secara tepat. Sedangkan yang dimaksud

LOQ (Limit of Quantitation) adalah nilai konsentrasi

terendah dari zat yang diukur pada saat

metode/instrumen dapat mendeteksi zat tersebut dengan

akurasi dan presisi yang baik. Uji LOD dan LOQ

Dilakukan pada pengukuran absorbansi blanko,

dilakukan sebanyak 10 kali pengukuran. Kemudian

dihitung nilai SD, LOD, dan LOQ.


Pada tahap awal validasi metode analisis

adalah memilih panjang gelombang maksimum

formaldehid. Pada pemilihan panjang gelombang

digunakan konsentrasi 8,04 ppm dengan mengujikan

pada beberapa panjang gelombang pada panjang

gelombang 400-600 nm. Dari hasil penelitian

didapatkan panjang gelombang maksimum terpilih

yang mempunyai absorban maksimal yaitu 413 nm.

Hasil optimasi panjang gelombang dilihat pada

gambar 1.

Gambar 1. Penentuan Panjang Gelombang

Formaldehid

Uji selektivitas diperoleh pada panjang

gelombang /413 nm karena tidak diganggu oleh

matriks sampel, 3 kurva yang diperoleh memiliki

profil sama, pada panjang gelombang 400 nm

absorbansi mulai naik dan absorbansi turun ketika di

panjang gelombang 415 nm, ketiga kurva memiliki

puncak sama ketika di panjang gelombang 412-

414nm. Sehingga selektivitas dinyatakan bahwa tidak

ada analit lain yang bereaksi dengan Nash pada

panjang gelombang 400nm-600nm, selain

formaldehid. Hasil uji selektivitas dapat dilihat pada

gambar 2.

Gambar 2. Uji selektivitas pada Panjang

Gelombang 400-600nm Uji linieritas antara konsentrasi formaldehid

dengan absorbansi dilakukan pada panjang gelombang

413 nm dengan menggunakan 5 baku kerja didapat

dari pengenceran baku induk formaldehid 1.609,92

ppm. sehingga ddidapatkan kurva linieritas dengan

nilai r = 0,9993, yang mendekati nilai 1, menghasilkan

persamaan y = 0,0294x - 0,0317, Sehingga dapat

ditarik kesimpulan bahwa metode yang digunakan

memberikan hasil yang linier.

Gambar 3 Kurva Linearitas Hubungan antara

Konsentrasi dengan Absorban

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

400 500 600

Ab

sorb

an

si

Panjang Gelombang (nm)

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

0,3

0,35

400 450 500 550 600

ab

sorb

an

si

Panjang Gelombang (nm)

8 ppm adisi non adisi

y = 0,0294x - 0,0317

R = 0,9993

0

0,05

0,1

0,15

0,2

0,25

0,3

0,35

Ab

sorb

an

si

Konsentrasi (ppm)



50

Uji akurasi didapatkan hasil yang memenuhi

persyaratan dari rentang persen recovery yaitu

84,54%, 102,05%, 106,13% antara 80-110%. Hasil uji

akurasi dapat dilihat pada tabel 4.

Tabel 4. Hasil Uji Akurasi Sampel Tisu Basah

Konsentrasi

(ppm)

Replikasi

Abs Kadar adisi

(ppm)

tanpa adisi

(ppm)

kadar sebenar

nya (ppm)

% recovery

5,63

1 0,299 11,24 6,45 4,79 85,07%

2 0,297 11,18 6,45 4,83 84,01%

3 0,298 11,21 6,45 4,76 84,54%

Rata-rata % recovery = 84,54%

6,43

1 0,351 13,01 6,45 6,56 102,13%

2 0,349 12,94 6,45 6,49 100,93%

3 0,353 13,08 6,45 6,63 103,11%


8,04

1 0,410 15,02 6,45 8,57 106,59%

2 0,408 14,95 6,45 8,50 105,72%

3 0,409 14,98 6,45 8,53 106,09%


Uji presisi didapatkan nilai RSD kurang dari

7,3%, yaitu 1,62%. Dari nilai persen recovery dan

nilai RSD dapat disimpulkan validasi metode analisis

formaldehid pada tisu basah yang digunakan

memberikan hasil yang akurat dan presisi. Hasil uji

presisi dapat dilihat pada tabel 5.

Tabel 5. Hasil Uji Presisi Sampel Tisu Basah

Replikasi

Absorbansi (X)

Rata-rata (Xi)

d(Xi-X)

d2 SD RSD

1 0,372 0,009 8,1 x 10-5

2 0,381 0 0

3 0,376 0,005 25 x 10-5

4 0,389 0,381 -0,008 6,4 x 10-5

0,006 1,618

5 0,383 -0,002 4 x 10-

6

6 0,385 -0,004 16 x 10-5

∑ d = 0

∑ d2= 19 x 10-4

Uji LOD dan LOQ pada penelitian ini

menggunakan larutan blanko yang direplikasi

sebanyak 10 kali. Hasil pengukuran LOD dan LOQ,

didapatkan nilai absorban uji dari 10 kali replikasi.

dilakukan perhitungan SD dari absorban didapat nilai

sebesar 0,0004. Nilai LOD sebesar 0,040 dan nilai

LOQ sebesar 0,136. Hasil LOD dan LOQ dapat dilihat

pada tabel 6.

Tabel 6. Hasil Uji LOD dan LOQ

4. KESIMPULAN

Metode SNI ISO 14184-2:2015 dapat

digunakan untuk menguji formaldehid pada tisu

basah.


Ucapan terimakasih disampaikan penulis

kepada pihak Akademi Farmasi Surabaya, atas semua

fasilitas sehingga penulis bisa menyelesaikan

penelitian ini dengan tepat waktu.

6. PENDANAAN


manapun.





ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. AOAC, Official Methods of Analysis of AOAC

International 8th Edition, Gaithersburg:

AOAC International, 2007.

2. G. d. Deckner, “Composition for wet wipes that

enchances the efficacy of cleansing while

being gentle to the skin,” dalam CENTER

HILL AVENUE, US, 2005.

3. Harmita, “Petunjuk Pelaksanaan Validasi

Metode dan Cara Perhitungannya,” Majalah

Ilmu Kefarmasian, pp. 117 - 135, 2004.

4. Kemenkes, Pedoman Bahan Berbahaya Pada

Produk Alat Kesehatan Dan Perbekalan

Kesehatan Rumah Tangga, Jakarta:

Kemenkes, 2012.

5. S. N. Indonesia, Cara Uji Kadar Formaldehida

yang dilepas (Metode Absorbsi Uap ),

Jakarta: Badan Standarisasi Nasional, 2015.

6. T. Nash, “The Colorimetric Estimation Of

Formaldehyde by Means of the Hantzsch

Reaction,” dalam Air Hygiene Laboratory,

London, 1953.



51

Artikel Penelitian

Hospitalisasi Pasien Skizofrenia di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya Fitria Dewi Yunitasari1, Ilil Maidatuz Zulfa1*)

1Bidang Ilmu Farmasi Klinik, Komunita, dan Manajemen, Akademi Farmasi Surabaya

*)E-mail: [email protected]

ABSTRAK

Skizofrenia merupakan gangguan atau kumpulan gangguan mental yang mempengaruhi pemikiran, persepsi, dan

perilaku sosial dan penyebabnya sebagian besar masih belum diketahui. Pengobatan farmakologis skizofrenia

menggunakan obat-obat golongan antipsikotik terutama dalam jangka waktu lima tahun setelah episode akut

pertama muncul. Penggunaan antipsikotik berpotensi menimbulkan kejadian hospitalisasi yang dapat menurunkan

kualitas hidup pasien terkait penurunan fungsi sosial pasien skizofrenia. Penelitian ini bertujuan menganalisis

potensi jenis kelamin dan jenis pengobatan antipsikotik sebagai faktor prediktor hospitalisasi pasien skizofrenia.

Analisis cross sectional jenis kelamin dan penggunaan antipsikotik dilakukan pada rekam medis pasien rawat inap

di Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya Bulan Oktober 2017 yang didiagnosis skizofrenia (ICD-10 F20). Faktor

prediktor hospitalisasi pasien dianalisis menggunakan uji Chi-square for goodness of fit yang membandingkan

perbedaan jumlah frekuensi antar kategori pada masing-masing faktor prediktor. Faktor jenis terapi antipsikotik

digolongkan menjadi tipikal, atipikal, dan kombinasi. Hasil menunjukan terdapat perbedaan jumlah pasien pada

tiga jenis terapi yang berbeda (p-value 0,000) dimana sebagian besar pasien yang dirawat dirumah sakit menerima

antipsikotik tipikal (47,41%). Perbandingan jenis kelamin tidak menunjukkan perbedaan yang signifikan pada

pasien yang dirawat. Dapat disimpulkan jenis antipsikotik tipikal kemungkinan dapat mempengaruhi kejadian

hospitalisasi pada pasien skizofrenia.

Kata kunci: Skizofrenia, antipsikotik tipikal, antipsikotik atipikal, hospitalisasi.

ABSTRACT

Schizophrenia is a mental disorder that affect thought, perception, and social behaviours. Most of causes of

schizophrenia are unknown. Pharmacological treatments of schizophrenia use antipsychotics especially during

five years after first acute episode observed. The use of antipsychotics potentially lead to hospitalization that can

affect to patients’ quality of life. This study was aimed to analyze the potential of gender and types of antipsychotic

treatments as predictor factors in hospitalization of schizophrenia patients. Cross sectional analysis in gender and

types of antipsycotics was conducted to medical records of inpatients at Rumah Sakit Jiwa Menur Surabaya

diagnozed with Schizophrenia (ICD-10 Code F20) in October 2017. Chi-square for goodness of fit test was used

to determine the difference amount of patients among different gender and different types of antipsychotics used

as predictor factors. Types of antipsychotics used was classified into three categories which were patients who

received typical antipsychotic, atypical antipsycotic and combination. The results showed that there was a

significant difference in amount of hospitalized patients who received typical antipsychotic, atypical antipsycotic

and combination (p-value 0,000) which most of hospitalized patients received atypical antipsychotics (47,41%).On

the other hand, the proportion of gender among hospitalized patients was found have no significant difference. In

conclusion, types of antipsychotics used might related to the hospitalization of schizophrenia patients.

Keywords: Schizophrenia, Typical antipsychotic, Atypical antipsychotic, Hospitalization.

1. PENDAHULUAN

Skizofrenia merupakan gangguan atau

kumpulan gangguan mental yang mempengaruhi

pemikiran, persepsi, dan perilaku sosial dan

penyebabnya sebagian besar masih belum diketahui

[1]. Gejala skizofrenia meliputi delusi, halusinasi,

serta gangguan bicara dan kognitif [2]. Beberapa studi

mengajukan gagasan bahwa skizofrenia dapat terkait

dengan abnormalitas pembentukan sel syaraf sejak

dalam kandungan atau karena kerusakan sel syaraf

yang bersifat degeneratif [3]. Prevalensi skizofrenia di

dunia dapat mencapai 21 juta jiwa sedangkan di

Indonesia menurut data Riset Kesehatan Dasar

(Riskesdas) tahun 2013 adalah mencapai 400.000

orang atau 1,7 tiap 1000 penduduk [4].

Pengobatan farmakologis skizofrenia

menggunakan obat-obat golongan antipsikotik

terutama dalam jangka waktu lima tahun setelah

episode akut pertama muncul. Terdapat dua macam

antiskizofren yaitu generasi pertama atau atipikal dan

generasi kedua atau tipikal. Antiskizofren tipikal

kecuali clozapin merupakan pilihan utama terapi

skizofrenia karena rendahnya resiko efek

ekstrapiramidal. Disisi lain, antipsikotik tipikal




52

berpotensi menimbulkan efek metabolik seperti

hiperlipidemia, diabetes melitus, dan efek pada

kardiovaskular [2]. Efek tersebut berpotensi

menimbulkan kejadian hospitalisasi yang dapat

menurunkan kualitas hidup pasien terkait penurunan

fungsi sosial mereka. Penelitian ini bertujuan

menganalisis potensi jenis kelamin dan jenis

pengobatan antipsikotik sebagai faktor prediktor

hospitalisasi pasien skizofrenia.


2.5. Jenis dan Kriteria Penelitian

Analisis cross sectional dilakukan pada rekam

medis pasien rawat inap di Rumah Sakit Jiwa Menur

Surabaya Bulan Oktober 2017 yang didiagnosis

skizofrenia (ICD-10 F20). Data yang diamati antara

lain usia, jenis kelamin, penggunaan antipsikotik serta

pengobatan non-antipsikotik pasien.

2.2 Analisis Data

Faktor prediktor hospitalisasi pasien (jenis

kelamin dan jenis terapi antipsikotik) dianalisis

menggunakan uji Chi-square for goodness of fit yang

membandingkan perbedaan jumlah frekuensi antar

kategori pada masing-masing faktor prediktor. Faktor

jenis terapi antipsikotik digolongkan menjadi tipikal,

atipikal, dan kombinasi. Signifikansi perbedaan

ditandai dengan nilai p-value <0,05.


Sebanyak 329 rekam medik dianalisis dalam

penelitian ini. Distribusi jenis kelamin dan usia pasien

terdapat pada Tabel 1.

Tabel 1. Distribusi Pasien

Jumlah Pasien

n=329

Persentase

Jenis Kelamin

Laki-laki Perempuan

205 124

62,31 37,69

Usia

16-25

26-35 36-45

46-55

56-65

>65

40

113 97

50

28

1

12,16

34,35 29,48

15,20

8,51

0,30

Tabel distribusi pasien menunjukkan bahwa

pasien skizofrenia berjenis kelamin laki-laki lebih

banyak mengalami hospitalisasi daripada perempuan

yaitu sebanyak 205 pasien (62,31%). Penelitian

sebelumnya menunjukkan bahwa laki-laki mengalami

resiko berkembangnya skizofrenia lebih tinggi sekitar

30-40% daripada perempuan [5]. Perempuan memiliki

estrogen yang menghambat pelepasan dopamin di

nuleus akumben. Peningkatan jumlah reseptor

dopamin di nukleus kaudatus, akumben dan putamen

merupakan penyebab terjadinya skizofrenia [6].

Selain itu, perempuan memiliki fungsi sosial yang

baik daripada laki-laki, sehingga menyebabkan laki-

laki cenderung mengalami skizofrenia [7]. Pada

perempuan memiliki perjalanan penyakit skizofrenia

yang lebih ringan dan lebih baik [1].

Usia pasien terbanyak pada penelitian adalah

26-35 tahun sebanyak 113 pasien (34,35%). Gejala

awal skizofrenia biasanya muncul pada usia remaja

akhir atau dewasa muda yaitu usia 15-25 tahun pada

laki-laki dan pada perempuan paling banyak terjadi di

usia 25-35 tahun. Peningkatan usia akan menyebabkan

berkurangnya produksi dopamin di dalam otak,

dimana kadar dopamin dalam otak berkaitan dengan

munculnya skizofrenia atau memburuknya perjalanan

penyakit [6].

Tabel 2. Distribusi Jenis Terapi Antipsikotik

Jumlah

Pasien

n=329

Presentase

(%)

Jenis Terapi

Antipsikotik

Tipikal

Atipikal

Kombinasi

156

72

101

47,41

21,89

30,70

Tabel 3. Distribusi Penggunaan Antipsikotik

Jumlah

Penggunaan

n=332

Presentase

(%)

Tipikal

Klorpromazin

Trifluoperazin

Haloperidol

Atipikal

Risperidon

Klozapin

Olanzapin Quetiapin

171

138

89

117

102

11 2

51,51

41,57

26,81

35,24

30,72

3,31 0,60

Pengobatan non-antipsikotik terbanyak yang

diresepkan adalah obat antiparkinson yaitu

triheksilfenidin sebanyak 81,15%. Efek samping



54

pseudoparkinson dialami oleh pasien yang mendapat

terapi antipsikotik tipikal sebanyak 15-36% dan lebih

sering timbul pada pasien berjenis kelamin perempuan

dan lanjut usia. Resiko pseudoparkinson lebih rendah

pada terapi antipsikotik atipikal dan meningkat pada

pemberian risperidon dosis tinggi [2].

Obat non-antispikotik lainnya yang diresepkan

yaitu obat antiepilepsi sebanyak 7,4% dan

antidepresan 4,04%. Antipsikotik yang memiliki

resiko kejang terbesar adalah klozapin dan

klorpromazin. Hal pertama yang direkomendasikan

ketika muncul kejang adalah menurunkan dosis terapi

dan terapi antikonvulsan tidak direkomendasikan [8].

Efek samping psikiatrik seperti delirium dan psikosis

dapat terjadi pada pemberian terapi antipsikotik tipikal

dosis tinggi atau kombinasi terapi yang bersifat

antikolenergik. Pada pasien lanjut usia akan

meningkatkan resiko konfusi kronis dan disorientasi

selama pemberian terapi antipsikotik [2].

Tabel 4. Distribusi Pengobatan Non-Antipsikotik

Jumlah

Penggunaan

n=297

Presentase

(%)

Antiparkinson Triheksilfenidin

Antiepilepsi

Divalproat

Karbamazepin

Antidepresan

Sertralin

Fluoksetin

Suplemen Vitamin B Kompleks

Asam Folat

Vitamin B6

Vitamin B1 Zat Besi

Antibiotik

Siprofloksasin

Ansiolitik Klobazam

241

17

5

7

5

7

5

3

1 1

1

1

81,15

5,72

1,68

2,36

1,68

2,36

1,68

1,01

0,34 0,34

0,34

0,34

Hasil penelitian menunjukkan bahwa kejadian

hospitalisasi pasien laki-laki dan perempuan tidak ada

perbedaan signifikan, sedangkan pada penggunaan

terapi antispikotik terdapat perbedaan signifikan yaitu

jenis terapi antipsikotik yang diberikan menjadi salah

satu penyebab terjadinya hospitalisasi pada pasien

skizofrenia.

Tabel 5. Faktor Prediktor Hospitalisasi Pasien

Jumlah

Pasien

n=329

Presentase

(%) p-value

Jenis Kelamin

Laki-laki

Perempuan

205

124

62,31

37,69 0,144

Jenis Terapi

Antipsikotik

Tipikal Atipikal

Kombinasi

156 72

101

47,41 21,89

30,70

0,000

Jenis terapi antipsikotik yang paling banyak

digunakan adalah jenis tipikal yaitu klorpromazin.

Antipsikotik tipikal bekerja dengan cara menghambat

reseptor dopamin. 60-65% reseptor dopamin untuk

menurukan gejala positif dan 77% penghambatan

reseptor dopamin berkaitan dengan sindrom

ektrapiramidal [8]. Penghambatann reseptor dopamin

oleh antipsikotik tipikal tidak hanya terjadi pada jalur

mesolimbik yang berfungsi sebagai pengaturan

memori, sikap, kesadaran, dan proses stimulus, tetapi

pemblokan reseptor dopamin juga terjadi pada jalur

nigrostriatal yang berfungsi sebagai pengatur sistem

gerak. Pemblokan dopamin pada jalur nigrostriatal

menyebabkan menurunnya jumlah dopamin, sehingga

dapat terjadi gejala ekstrapiramidal [7].

Selain itu, hipotensi merupakan efek samping

yang paling banyak muncul setelah gejala

ekstrapiramidal. Klorpromazin merupakan

antipsikotik yang mempunyai efek hipotensi paling

tinggi jika dibandingkan dengan antipsikotik tipikal

lainnya. Hipotensi yang terjadi akibat pemberian

antipsikotik adalah karena adanya penghambatan pada

reseptor α1. Reseptor α1 mempunyai peran dalam

kontraktilitas otot polos pada bebagai jaringan,

termasuk kontraktilitas pada otot jantung.

Penghambatan reseptor α1 pada otot polos jantung

menyebabkan menurunnya tekanan darah (hipotensi).

Efek samping ini dapat diatasi dengan cara

menganjurkan pasien tidak segera berdiri setelah

mengkonsumsi klorpromazin. Hampir semua pasien

skizofrenia dapat mentoleransi efek hipotensi yang

timbul akibat pemberian antipsikotik, namun jika

dalam waktu 2-3 bulan terapi pasien tidak dapat

mentoleransi efek hipotensi, maka sebaiknya

dilakukan penurunan dosis klorpromazin atau

digantikan dengan antipsikotik lain yang mempunyai

efek hipotensi rendah seperti haloperidol,

trifluperazin, dan risperidon [7].Efek

samping obat yang sangat mengganggu aktivitas dan

pekerjaan ini membuat pasien skizofrenia tidak



54

mengkonsumsi obat sesuai anjuran dokter dan

menyebabkan pasien mengalami kekambuhan [9].

Kekambuhanan menyebabkan timbulnya gejala

positif yang menonjol dan tidak dapat dikendalikan,

sehingga pasien harus menjalani hospitalisasi agar

gejala tersebut dapat dikendalikan dan tidak

membahayakan kondisi pasien dan orang di sekitar

pasien [10].

Terapi lini pertama pasien skizofrenia adalah

antipsikotik atipikal karena hampir tidak

menimbulkan efek ektrapirimidal [8]. Namun pada

penelitian ini antipsikotik tipikal lebih banyak

diberikan kepada pasien skizofrenia. Hal ini mungkin

disebabkan oleh harga antipsikotik atipikal lebih

mahal daripada antipsikotik tipikal, sehingga

diharapkan pasien skizofrenia mampu membeli obat

antipsikotik [7].

8. KESIMPULAN

Jenis antipsikotik tipikal kemungkinan dapat

mempengaruhi kejadian hospitalisasi pada pasien

skizofrenia yang disebabkan karena kondisi klinis

yang memburuk. Kondisi klinis yang memburuk bisa

disebabkan adanya efek samping obat yang sangat

mengganggu aktivitas dan pekerjaan pasien.


Ucapan terimakasih kami ucapkan sebesar-

besarnya pada seluruh personil Rumah Sakit Jiwa

Menur Surabaya yang telah memberikan

dukungannya dalam penelitian ini serta kepada

saudari Arista Puspita Dewi atas asistensinya dalam

pengambilan data.

10. PENDANAAN

Penelitian ini didanai oleh dana pribadi peneliti.




kepenulisan (authorships), dan atu publikasi artikel

ini.

DAFTAR PUSTAKA

1. World Health Organization. Schizophrenia and

public health. Geneva : Division of Mental Health and Prevention of Substance Abuse ;1998.

2. Patel KR, Cherian J, Gohil K, Atkinson D.

Schizophrenia : Overview and Treatment

Options.Pharmacy and Therapeutics. 2014:39(9): 638-45.

3. Pino O, Guilera G, Gomez-Benito J, Najas-Garcia A,

Rufian S, Rojo E. Neurodevelopment

orneurodegeneration: Review of theories of schizophrenia. Actas Esp Psiquiatr

.2014:42(4):185-95.

4. Badan Penelitian dan Pengembangan Kesehatan

Departemen Kesehatan, Republik Indonesia. Riset Kesehatan Dasar. Jakarta : Departemen

Kesehatan RI; 2013.

5. Messias E, Chen CY, Eaton WW. Epidemiology of

Scizophrenia: Review Findings and Myths. Psychiatr Clin North Am. 2007: 30(3): 323–38.

6. Fadilla, AR, Puspitasari RM. Evaluasi Ketepatan

Penggunaan Antipsikotik Pada Pasien

Skizofrenia Rawat Inap. Sainstech Farma . 2016: 9(1) : 42-6.

7. Julaeha, Ananda VD, Pradana DA. Gambaran Efek

Samping Antipsikotik pada Pasien Skizofrenia

pada Bangsal Rawat Inap di RS. Grhasia Yogyakarta. Farmasains. 2016: 3(1): 35-41.

8. Dipiro J, Talbert R, Yee G, Matzke G, Wells B, Posey

L. Pharmacotherapy: a pathophysiologic

approach Edisi ke-7. New York: The McGraw-Hill Companies Inc; 2008.

9. Amelia DR, Anwar Z. Relaps Pada Pasien

Skizofrenia. Jurnal Ilmiah Psikologi Terapan.

2013: 1(1): 53-65.

10. Novitayani, Sri. Karakteristik Pasien Skizofrenia dengan Riwayat

Rehospitalisasi. Idea Nursing Journal.2016.7(2): 23-9.

https://www.ncbi.nlm.nih.gov/entrez/eutils/elink.fcgi?dbfrom=pubmed&retmode=ref&cmd=prlinks&id=17720026

Documents

Journal of Pharmacy and Science Vol. 3, No.2, (Juli 2018