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UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES
ZARAGOZA
LABORATORIO DE MICROBIOLOGÍA GENERAL II
PARASITOLOGÍA
PRÁCTICA NO. 4: “HEMOPARÁSITOS”
GRUPO:2752
EQUIPO: 4
HERNÁNDEZ ÁVILA MÓNICA MONSERRAT ROMERO MARTÍNEZ MARCO ANTONIO
SANTANA ESLAVA YATZIRI SOTO ALCANTAR MARÍA DE LOS ÁNGELES
OBJETIVO Aprender a realizar técnicas hematológicas para
determinar parásitos presentes en la sangre. Adquirir el conocimiento de las técnicas que se
utilizan actualmente para determinar parásitos en sangre.
Familiarizarse con el manejo de muestras sanguíneas para su análisis posterior.
¿QUÉ ES UN HEMOPARÁSITO? En general, este término
incluye todos aquellos
organismos (parásitos,
protozoos, helmintos) que
viven en la sangre de su
huésped.
Entre los que
frecuentemente
encontramos: Trypanosoma
cruzi, Plasmodium sp,
Microfilarias.
HEMOPARÁSITOS EN MÉXICO
PARÁSITOS AGENTE FORMAS INFECTIVAS
PARA EL HOMBRE
MECANISMO DE INFECCIÓN
Malaria Plasmodium sp Esporozoitos Picadura del mosquito Anopheles hembra/ transmisión
congénita
Leishmaniosis Leishmania sp Promastigotes Picadura de flebótomos
Enfermedad de chagas
Trypanosoma cruzi
Tripomastigotes Deyecciones de Triatóminos/transmisi
ón congénita
Filariosis Wuchereria bancrofti/
Brugia malayi
Larva filariforme metacíclica
Picadura de dípteros hematófagos
Oncocercosis Onchocerca volvulus
Microfiliarias Picadura de simulido
PALUDISMO
Transmitido por el
mosquito Anopheles
hembra (Huésped
definitivo).
Se caracteriza por
episodios febriles
típicos de acuerdo a
la especie de
Plasmodium.
P. malariae P. falciparum
P. vivax P. ovale
Plasmodium que parasitan al humano.
LEISHMANIASIS• Es transmitida por la picadura de las
moscas de la familia Psychodidae y
subfamilia Phlebotominae, (Huéspedes
intermediarios) afecta a piel, mucosa y
vísceras.
• Algunos agentes causantes de
leishmaniasis son:
Leishmania mexicana (daño cutáneo)
Leishmania brasiliensis (daño muco-
cutáneo)
TRIPANOSOMIASIS
Enfermedad de hombres y animales
principalmente hay 2 tipos:
Mal de chagas:
Es causada por Trypanosoma cruzi, se
transmite por Triatoma infestans
(Huésped Intermediario). Se presenta
en tres fases, aguda, intermedia y
crónica donde resulta mortal.
Enfermedad del sueño (África):
Es causada por Trypanosoma brucei,
se transmite por medio del vector
Glossina sp.
MICROFILARIAS
Nematodos largos delgados, transmitidas por artrópodos.
Se alojan en sistema linfático y tejido subcutáneo y conectivo profundo.
Hombre:• Wuchereria bancrofti• Brugia malayi
Brugia malayi
Wuchereria bancrofti
TÉCNICAS HEMATOLÓGICAS
FUNDAMENTO Varias especies parasitarias pueden ser halladas en la sangre
de los seres humanos en algún estadio de sus ciclos vitales.
Casi en la totalidad de los casos, el parásito se identifica sobre
la base de sus características morfológicas si ha sido
preparado de manera adecuada para su estudio microscópico.
TOMA DE MUESTRA Y SITIO DE PUNCIÓN
Los frotis deben prepararse con muestra de sangre anticoagulada lo antes posible después de la recolección.
La exposición prolongada al anticoagulante puede distorsionar la morfología de los ezquizontes maduro y de gametocitos.
Es preferible la recolección de muestra de sangre capilar.
¿QUÉ ES UN FROTIS?
Es la extensión de una gota de sangre sobre un
portaobjetos, al cual se le aplica una tinción para
ser analizado posteriormente.
En la mayoría de los laboratorios los colorantes
más empleados para la tinción hematológica se
basan en el de Romanowsky constituido
fundamentalmente con la mezcla de eosina
(ácido) y azul de metileno (básico).
GOTA FINA Se forma con sangre esparcida, una capa de tal manera que
el espesor disminuya hacia el borde, donde los eritrocitos no se superponen .
Su utilidad es principalmente en la identificación definitiva de especies de plasmodios y otros parásitos intraeritrocitos y para estudiar detalles de los hematíes y de los parásitos en la sangre.
Al prepararlas hay que tener cuidado que la cola este esparcida en forma regular, no presente espacios vacios, rayas u otro artefacto de técnica.
GOTA GRUESA
Consta de una capa gruesa de eritrocitos lisados.
Estos frotis contienen una concentración 30X de
elementos parasitarios cuando se compara con una
área igual de una de gota fina.
Es útil para el diagnostico rápido de las parasitemias,
pero no sirve para estudios anatómicos finos.
Por lo tanto, tiene una utilidad particular para la
detención de los parásitos del paludismo.
La sangre debe obtenerse por punción(por lo general
la parte lateral de la falange terminal de un dedo, en
los lactantes, el lobulo de la oreja o el talón) dejar que
fluya libremente.
Se limpia con alcohol al 70% y se seca con gasa limpia.
XENODIAGNÓSTICO
Se emplea fundamentalmente para diagnosticar la enfermedad de chagas.
El xenodiagnóstico, uno de los métodos que se aplica durante la etapa crónica de la enfermedad y cuyo resultado final en algunas ocasiones se consigue después de los 90 días.
Consiste en colocar en la espalda o en el antebrazo del paciente al transmisor sano. Al alimentarse estos de la sangre del paciente se llevan los tripanosomas que se multiplicarán activamente en el aparato digestivo del insecto. De esta manera, las posibilidades de encontrar los hemoflagelados aumenta de forma importante.
TINCIÓN DE WRIGHT Y DE GIEMSA
TINCIÓN DE WRIGTH Las estructuras con carácter ácido tales como los ácidos
nucleicos o las proteínas ácidas son afines por compuestos
básicos como lo es el azul de metileno. Por el contrario las
estructuras de carácter básico tales como la hemoglobina
y otras proteínas básicas son afines a la eosina por lo que a
la vista estas estructuras tendrán un color rojo-rosado.
TINCIÓN DE GIEMSA Es una modificación de la coloración de Romanowsky,
resulta de la combinación de eosina y azul de metileno en una misma solución.
Es la tinción más confiable y preferida para identificar parásitos en la sangre (en lo frotis de gota fina o gruesa), como en el caso de la malaria (Plasmodium sp) y la tripanosomiasis (Trypanosoma cruzi).
Contiene: Polvo de Giemsa (es una mezcla de azul
de metileno, eosina y varios azures) Glicerina Fosfato de sodio dibásico anhidro Fosfato de sodio monobásico
Fundamento: se basa en la distinta afinidad que demuestran las células y sus componentes a los distintos colorantes incluidos en el colorante de Giemsa.
Resultados:
-Los núcleos se tiñen de violeta
-El citoplasma se tiñe de color rosa
TÉCNICA DE ELISA
TÉCNICA DE ELISA(ENZYME-LINKED IMMUNOSORBENT ASSAY)
La técnica de ELISA es un
ensayo inmunoenzimático
ampliamente empleado en el
área médica para la
cuantificación de moléculas,
especialmente de aquellas que
experimentan cambios en
diferentes estados como
pueden ser infecciones por
bacterias, virus, hongos o
parásitos o fases activas de
enfermedades autoinmunes.
FUNDAMENTO DE LA TÉCNICA DE ELISA
Se basa en el uso de antígenos o anticuerpos marcados
con una enzima.
Al estar uno de los componentes marcado con una
enzima e insolubilizado sobre un soporte, será fácilmente
revelada mediante la adición de un substrato especifico
que cuando actúa la enzima producirá un color
observable a simple vista o cuantificable mediante el uso
de un espectrofotómetro
TIPOS DE ELISA
Anticuerpos marcados:
•ELISA Directo o
ELISA sándwich.
Antígeno marcado:
ELISA Indirecto
•ELISA competitivo
ELISA "SANDWICH“ DIRECTO
1) Un anticuerpo monoclonal o policlonal anti antígeno suele estar ya unido a la placa.
2) Se incuba con la muestra problema. 3) Se añade el conjugado. 4) Por último el sustrato.
Un anticuerpo primario (monoclonal o policlonal) se une a las paredes de la fase solida. Se añade la muestra que se sospecha que contienen el antígeno, hay una reacción antígeno-anticuerpo. A continuación, un anticuerpo secundario ligado a una enzima que es capaz de reaccionar con el antígeno se añade. Cuando un sustrato incoloro se añade, un color se desarrolla, indica la presencia de antígeno
Todos los pasos van precedidos de incubaciones y lavados.
ELISA INDIRECTO
1)El 2 se pega a la placa
2)Se añade el suero problema.
3)Posteriormente, el conjugado.
4)Por último, el sustrato
Todos los pasos van precedidos de incubaciones y lavados.
LOS ELEMENTOS QUE SE USAN EN LA
TÉCNICA DE ELISA SON:
1. Fase solida.
2. Etapas de lavado.
3. Muestra a ensayar.
4. Antígeno.
5. Conjugado (métodos de
Nakane o el de Avrameas).
6. Sustrato y cromógeno.
MÉTODO Utilizar las laminillas obtenidas en la práctica número tres y
teñirlas con las técnicas de Giemsa y/o Wright. *Los tiempo señalados para realizar las tinciones serán
modificados de acuerdo a la madurez de los colorantes.
TINCIÓN DE WRIGHT
No es necesario fijar el frotis
Colocar el portaobjetos en la canastilla para tinción y sumérjir en el recipiente que contiene el colorante de Wright sumergiendo por completo la canastilla.
Después de cinco minutos escurrir la canastilla para eliminar los restos decolorante y sumerjir la canastilla en solución amortiguador (amortiguador de fosfatos o agua destilada).
Después de cinco minutos enjuagar con agua de la llave.
Deje secar y leer al microscopio, enseco débil 10X, seco fuerte 40X y a inmersión 100X.
TINCIÓN DE GIEMSA
En un frotis delgado es necesaria la fijación con metanol.
Colocar los portaobjetos en canastillas para tinción y sumérjir en un recipiente con metanol durante veinte minutos.
Dejar secar el frotis al aire.
Colocar la canastilla en el recipiente que contiene colorante de giemsa durante 10 minutos.
Sacar y dejar secar la preparación ylavar con solución amortiguador(unas gotas del colorante en aguadestilada) por 5 minutos.
Si se llega a sobre teñir repetir el lavado
Secar y leer al microscopio a secodébil 10X, seco fuerte 40X e inmersión 100X.
*Es importante marcar los portaobjetos antes de realizar las tinciones, paraidentificar las diferentes preparaciones.Se recomienda el uso de lápiz con punta de diamante.*Para las improntas realizadas repita el proceso de esta tinción.
REFERENCIAS Ash L, Orihel T. Atlas de parasitología humana. 5ª ed.
Buenos Aires: Médica Panamericana, 2011.
Becerril M, Romero R. Parasitología médica de las moléculas
a la enfermedad. México: McGraw-Hill Interamericana,
2007.
Siachoque H. Inmunología diagnóstico e interpretación de
las pruebas de laboratorio. Bogotá: Centro Editorial
Universidad del Rosario, 2006.