Genotipos de nochebuenasiafemor.inifap.gob.mx/.../genotipos-de-nochebuena-2013.pdfInstituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias Progreso No. 5, Barrio de

SECRETARÍA DE AGRICULTURA, GANADERÍA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y ALIMENTACIÓNINSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRÍCOLAS Y PECUARIAS

CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL PACÍFICO SURCAMPO EXPERIMENTAL ZACATEPEC

AGOSTO DE 2013

Folleto Técnico No.72 ISBN: 978-607-37-0043-6Folleto Técnico No.72 ISBN: 978-607-37-0043-6Folleto Técnico No.72 ISBN: 978-607-37-0043-6Folleto Técnico No.72 ISBN: 978-607-37-0043-6Folleto Técnico No.72 ISBN: 978-607-37-0043-6

Genotipos de nochebuenaobtenidos por hibridación

Jaime Canul KuFaustino García Pérez

Felipe de Jesús Osuna CanizalezSergio Ramírez Rojas

Irán Alia TejacalJorge Miguel Paulino Vázquez Alvarado

Elio Campos BravoBlanca Portas Fernández

Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y PecuariasProgreso No. 5, Barrio de Santa CatarinaDelegación Coyoacán,México, D.F. C.P. 04010Teléfono (55)38718700

Genotipos de nochebuena obtenidos por hibridaciónGenotipos de nochebuena obtenidos por hibridaciónGenotipos de nochebuena obtenidos por hibridaciónGenotipos de nochebuena obtenidos por hibridaciónGenotipos de nochebuena obtenidos por hibridación

ISBN 978-607-37-0043-6978-607-37-0043-6978-607-37-0043-6978-607-37-0043-6978-607-37-0043-6

Primera Edición 2013

No está permitida la reproducción total o parcial de esta publicación, ni latransmisión de ninguna forma o por cualquier medio, ya sea electrónico,mecánico, fotocopia, por registro u otros métodos, sin permiso previo y porescrito de la Institución.

Página

Introducción 1

Estructura floral 2

Fenología de la floración 3

Mejoramiento mediante hibridación 4

Metodología 6

Emasculación 6

Polinización 7

Obtención de esquejes y varetas 8

Registro y medición de caracteres 10

Resultados 11

Genotipo Zacatepec 3 13









Conclusiones 41

Literatura citada 43

CONTENIDO

1

Introducción

El estado de Morelos se identifica por la explotación de un grannúmero de especies de plantas ornamentales. Es difícil determinarcuántas especies se cultivan por cada vivero en la entidad. Lanochebuena es originaria del estado de Morelos y es una de lasespecies ornamentales que lo distingue, la cual se asocia a la fiestade navidad y la ubican en el plano nacional, con base en el volumende producción con aproximadamente seis millones de plantaterminada y el ingreso que genera por la venta de esa cantidad deplanta en una temporada.

Durante el periodo de venta de nochebuena es común el ir yvenir de los consumidores a los centros de producción, puntos deventa y comercializadoras, ya que todavía existe la costumbre de ir aescoger diferentes presentaciones que se ofertan para cumplir losvariados gustos. Cada año se ofertan una amplia variedad en coloresde brácteas que van desde los rojos, rosados, amarillos, variegados yotras variantes. Cabe señalar que en el mercado predominan lasvariedades con brácteas de color rojo, con aproximadamente 90%(Galindo-García et al., 2012).

En esta publicación se presentan los avances obtenidos enmejoramiento genético de nochebuena por el GrupoInterdisciplinario del Programa de Investigación en PlantasOrnamentales del INIFAP, a través del Campo ExperimentalZacatepec. Se indica la forma de cómo hacer hibridación, así como lasventajas que ofrece. Enseguida se describen los materiales queforman el grupo de genotipos que son factibles de ser liberados amediano plazo, después de realizar las pruebas de estabilidadambiental.

Genotipos de nochebuenaobtenidos por hibridación

2

Estructura floral

Las flores del género Euphorbia crecen en una estructura enforma de copa denominada ciatio, los dos últimos entrenudos de laplanta no se alargan y las tres hojas superiores se convierten en hojasde transición o brácteas (hojas modificadas), al centro emerge unaúnica flor estaminada, raramente hermafrodita. Los botones de lasaxilas de estas tres hojas comienzan a crecer formando tres ramas,en cada una de las cuales se forma otro ciatio con brácteas, en éstecomienzan a salir en una primera etapa sólo las flores estaminadas, aun costado tienen una glándula de color amarillo, conocida comonectario. En una segunda etapa emergen flores hermafroditas quese distribuyen en la periferia del ciatio y en el centro de ésta sale unovario con seis carpelos fusionados en pares (Figura 1).

De acuerdo con lo anterior en la nochebuena existen dos tiposde flores: unisexuales y hermafroditas (Figura 2); éstas últimas sonlas de mayor importancia para el mejoramiento genético de estaespecie.

Figura 1. Inflorescencia de nochebuena cultivada en Zacatepec, Mor.

3

Figura 2. Tipos de flores en nochebuena.

Fenología de la floración

La diferenciación floral de nochebuena se inicia cuando sepresenta un periodo continuo de oscuridad de aproximadamente 12horas con 20 minutos, esto en el hemisferio norte ocurre encondiciones naturales del 5 de octubre hasta el 10 de marzo (Ecke etal., 2004). La temperatura óptima para su inicio varía de acuerdo conel cultivar, pero la mayoría comienzan en un intervalo de 16 a 22 °C. Lainiciación floral empieza cuando se presentan temperaturas nocturnasde hasta 28 °C, siempre y cuando el periodo de oscuridad sea de 15horas (Shanks, 2004).

Floreshermafroditas

Floresunisexuales

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La primera etapa de la floración es cuando la flor recibe elestímulo del acortamiento de las horas luz del día. La primera señalde un cambio físico del meristemo dentro del brote apical comienzade cinco a siete días después de la duración del día crítico oaproximadamente del 20 de septiembre al 1 de octubre en lascondiciones de las zonas productoras de nochebuena en México.

Después del inicio de la floración, el desarrollo de la flor ocurrecomo un proceso continuo; desde los cambios microscópicos en elpunto de crecimiento hasta la expresión total de la planta, incluyendolas brácteas coloreadas que soportan el ciatio. Cada grupo de ciatiova precedido de un conjunto de brácteas.

El tiempo requerido para el desarrollo total de la flor dependede la variedad, la duración del día y la temperatura, ya que afectan eldesarrollo de la flor (Mejía y Espinosa, 2003).

De manera general, la nochebuena inicia su floración ypigmentación de brácteas de forma visual entre la cuarta y quintasemana de días cortos (Kannangara y Hansson, 1998). Según Weiss yShillo (1988), la pigmentación de brácteas inicia después deaproximadamente 35 días cortos que son paralelos al desarrollo deinflorescencias. Estudios específicos determinaron que el tiempo defloración puede ser predicho cuando se conoce la temperaturapromedio e intensidad lumínica diaria, así como la densidad deplantación (Snipen et al., 1999).

Mejoramiento mediante hibridación

La nochebuena es una especie originaria de México (Lee, 2000)y por ende tiene un alto potencial genético, lo cual no se haaprovechado en nuestro país para generar nuevas variedades (Canulet al., 2010a,b). La hibridación aprovecha los efectos no aditivos delos genes en las poblaciones de especies cultivadas. Esto se traduceen vigor híbrido, que es la ganancia exuberante en vigor que seobserva en la generación resultante como resultado de cruzar dosgenotipos contrastantes (Márquez, 1985). Los híbridos se usanampliamente en plantas cultivadas, debido a que se explota la

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heterosis y se logran combinaciones que dan origen a nuevasvariantes con características fenotípicas superiores.

En especies ornamentales el uso de plantas híbridas va enaumento. Los híbridos ofrecen múltiples ventajas tales como altarespuesta a la aplicación de nutrimentos y mejoran la aparienciageneral de la planta (Kempe y Gils, 2011), esto es importante dadoque en ornamentales lo que se vende es la estética.

Por lo anterior expuesto, es importante impulsar la creación devariedades e híbridos y por consiguiente el registro de los mismos.Actualmente, Alemania es el país líder en la producción de híbridosde especies ornamentales (Patrocíneo et al., 2009).

En un programa de cruzamientos, cuando se emplea el métodode hibridación, se necesita un control eficiente durante el procesode polinización, para evitar la llegada de polen no deseado, (Kempey Gils, 2011). Así mismo, es fundamental realizar una buena elecciónde progenitores, los cuales deben presentar una serie decaracterísticas fenotípicas según la demanda de los consumidores(Canul et al., 2012a).

En nochebuena, se debe manejar el porte de la planta paramantener una relación 2:1 entre altura de la planta y altura de lamaceta con la finalidad de que sea atractiva tanto visual como estética.Además, esta relación y de fenotipo compacto permite que ocupenmenor espacio durante la producción y el transporte, por ejemplopara una planta con 30 cm la altura ideal de la maceta sería de 15 cm.

La distribución de la nochebuena en diferentes hábitats deMéxico ha permitido la diferenciación fenotípica, que sobresale porsu capacidad de adaptación y resistencia a factores ambientalesespecíficos (Trejo et al., 2012). Desde esta perspectiva, la presenciade una amplia variabilidad fenotípica y genotípica (Montoya, 2011;Galindo, 2012) y de variantes naturales, ofrece la oportunidad paracrear nuevos genotipos con la arquitectura de plantas que demandeel mercado.

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La nochebuena es una especie ornamental termo-fotosensitiva,ya que su producción depende esencialmente de las condiciones detemperatura, humedad relativa y horas oscuridad para que se dépigmentación de las brácteas, que es la parte comercial, condicionesque deben ser consideradas como factores importantes durante lageneración de híbridos y variedades.

Resulta necesario generar y ofrecer genotipos de origenmexicano con nuevas características en color, tamaño y forma debráctea, así como larga vida en contenedor, lo cual permitirá alproductor ofrecer plantas de esta especie de mejor calidad y lograruna mayor rentabilidad del cultivo; además tendrá la oportunidadde diversificar su producción y ampliar las áreas de cultivo de lanochebuena (Canul et al., 2012a).

Metodología

El presente trabajo de investigación se realizó durante el ciclode cultivo 2012 en el Campo Experimental Zacatepec del INIFAP, elcual se ubica a 18° 39´ 16´´ de Latitud Norte y 99° 11´ 54´´ de LongitudOeste con una altitud de 910 msnm.

El proceso de cruzamiento en plantas de nochebuena en elCampo Experimental Zacatepec se inició en 2010 y continúa hasta lafecha; es decir, se ha adquirido destreza durante los últimos tresaños, por lo que se cuenta con la metodología apropiada para realizarsu mejoramiento genético por el método de hibridación. Para llevara cabo este minucioso trabajo, primero se generaron conocimientossobre el método de emasculación, periodo de receptividad de losestigmas, viabilidad de polen y el momento oportuno para realizar lapolinización.

Emasculación

A través de minuciosas observaciones se determinó que bajolas condiciones ambientales del Campo Experimental Zacatepec losestigmas permanecen receptivos desde las 9 hasta las 13 horas, porlo que se dispone de un amplio margen de receptividad para realizar

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los cruzamientos. Otro aspecto importante a considerar consiste enque la emasculación tiene que ser de manera parcial; es decir, sedejan parte de las brácteas con la finalidad de proteger a la estructurafemenina, ya que es muy delicada, y solamente se eliminan las floresmasculinas (Figura 3) (Campos et al., 2012).

Polinización

En cambio, el polen es delicado y se deseca rápidamente por elcalor, para lo cual es fundamental considerar las condicionesambientales de temperatura y humedad, los mejores resultados dela polinización se obtienen cuando esta actividad se realiza alrededorde las 11 de la mañana (Figura 3) (Campos et al., 2012).

Figura 3. Proceso de emasculación (izquierda) y polinización (derecha)en nochebuena.

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Progenitores femeninos Progenitores masculinos

Oaxaca 14 “Freedom Red”

Oaxaca 10 “Prestige”

Morelos 17

Morelos 13

Puebla 9

Guerrero 5

Guerrero 11

Cuadro 1. Progenitores utilizados en los cruzamientos de nochebuenaen Zacatepec, Mor.

Figura 4. Progenitores masculinos y femeninos utilizados en elmejoramiento genético de nochebuena.

Obtención de varetas y esquejes

A principios del 2012, a partir del grupo de genotipos evaluadosse seleccionaron 108 plantas. Los criterios específicos de selecciónque se aplicaron fueron los siguientes: sanidad, apariencia general

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de planta; tamaño, color, y forma de las brácteas; así como altura deplanta y número de nudos principalmente (Canul et al., 2012a). Estasplantas con características sobresalientes de bráctea, porte de plantay sanidad funcionaron como planta madre; de la cual se obtuvieronvaretas y esquejes como material de propagación y obtención denuevas plantas.

El 31 de marzo del 2012 las 108 plantas madre F1 de nochebuena

seleccionadas se podaron a cuatro nudos, en relación a su base yhorcadura, con la finalidad de obtener varetas de 20 cm de longitud,las cuales se enraizaron individualmente en macetas de 8" (3.5 L)que contenía una mezcla de sustrato de ocochal, atocle y polvillo decoco en block ¾ Pelemix® en la proporción de 60:20:20 v/v (García etal., 2011).

El 14 de mayo, los días 7, 21 y 25 de junio, 3 y 11 de julio de 2012(Cuadro 2) se cortaron esquejes de aproximadamente 10 cm delongitud de las plantas madre F

1 y de las obtenidas por enraizamiento

de varetas; el corte se hizo por medio de una navaja delgada, filosa einoxidable, la cual fue previamente desinfetada con alcohol de 96°para evitar la propagación mecánica de enfermedades como virusdel mosaico del tabaco (TMV) (García et al., 2009), Sphacelomapoinsettia Jenk y Rhuele (roña o scab) (Ayala y Yañez, 2003) y delvirus del mosaico de la nochebuena (PnMV) (Ocampo et al., 2011).

Posteriormente, en la base de los esquejes cortados se lesimpregnó Radix® 1500 (ingrediente activo Ácido Indol-3-butírico) yse colocó un esqueje en cada maceta cuadrada de 2.5" o de terracotade 3" con la misma mezcla de sustrato 60:20:20 v/v. Las macetas conlos esquejes se acomodaron en un túnel con cubierta de plásticolechoso blanco con 50% de transmisividad y sobre ésta a una alturade 40 cm de manera horizontal se colocó una malla sombra con 80%de transmisividad.

El túnel contó con un sistema de nebulización accionado entrelas 10:00 y 18:00 hr con intervalos de 30 minutos durante 10 segundos,con la finalidad de mantener alta humedad relativa para quefavoreciera la turgencia de los esquejes y por ende la formación de

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raíces. El 11 de junio se colocó un sensor (data logger marca HOBOmodelo H08-003-02) programado para registrar cada hora latemperatura y la humedad relativa en el interior del túnel.

Los esquejes enraizaron a los 24 días en promedio después delestablecimiento en las macetas de 2.5" o de terracota de 3" (García etal., 2012), posteriormente se cambiaron a macetas más grandes, de8" y 6" (2.250 L) que contenían una mezcla de sustrato ocochal, atocle,polvillo de coco en block ¾ Pelemix® y lombricomposta de cachazaen proporción 48:16:16:20 v/v.

Un día antes de realizar el cambio a maceta más grande, de 8" y6", se dio un riego pesado al sustrato para que éstas conservaranhumedad al momento de realizar el cambio y se facilite hacer la cepapara colocar el cepellón. Posteriormente se les aplicó un riego.

El 20 de junio, en etapa de cuatro nudos se realizó la primerapoda; mientras que, la segunda se efectuó el día 24 de julio y la terceralos días 24 y 27 de agosto. Inmediatamente después de cada poda seaplicó caldo bordelés (sulfato de cobre pentahidratado y microcal) arazón de 1 g por L de agua. Para la poda se utilizaron navajas filosas,inoxidables y desinfectadas como se indicó anteriormente.

Registro y medición de caracteres

En la etapa fenológica de pigmentación de brácteas seidentificaron y seleccionaron los genotipos más sobresalientesaplicando los mismos criterios que en la selección de plantas madre.Con la finalidad de mostrar las características de cada genotipo setomaron fotografías con una cámara digital.

Las características morfológicas más importantes observadas enel proceso de mejoramiento genético de nochebuena fueronregistradas en la etapa de tercer ciatio abierto. Se midieron la longituddel peciolo de hoja; ancho, longitud y forma de hoja, altura a la últimahoja de transición, diámetro del tallo, número de ramas, número deentrenudos, diámetro de bráctea, diámetro del ciatio, longitud del

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peciolo de bráctea, largo y ancho de bráctea. También se evaluaronlas características de luminosidad, cromaticidad y matiz del haz debrácteas mediante un espectrofotómetro X-Rite. Mientras que, losdatos de pigmentación y floración, se registraron durante el periododel 24 de octubre al 12 de diciembre.

Resultados

Se obtuvieron 1213 nuevas plantas provenientes de esquejesde la planta madre y varetas previamente cortadas de esta mismaplanta madre (Figura 5). El porcentaje promedio de enraizamientofue de 69.5% y se logró a los 24 días aproximadamente después decolocar el esqueje en las macetas cuadrada de 2.5" o de terracota de3" (García et al., 2012) (Cuadro 2).

Figura 5. Planta madre, planta proveniente de vareta, de esqueje y desemilla (de izquierda a derecha).

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Cuadro 2. Enraizamiento de esquejes de nochebuena obtenidas deplantas madres F1, de varetas F1 y progenie F1 clonal.

Fecha de corte No. de Días a Esquejes Porcentajede esquejes esquejes enraizamiento enraizados de

cortados enraizamiento

14/05/2012 104 24 76 73.1

/06/2012 216 24 51 23.6

21/06/2012 232 26 166 71.5

04/07/2012 237 22 154 65.0

789 24.0 447 58.3

14/05/2012 137 24 129 94.2

07/06/2012 72 24 50 69.4

21/06/2012 185 26 164 88.6

25/06/2012 333 25 143 42.9

11/07/2012 176 23 111 63.1

903 24.4 597 71.6

21/06/2012 22 26 17 77.3

03/07/2012 167 23 140 83.8

11/07/2012 16 23 12 75.0

205 24.0 169 78.7

Planta MadreF

1

F1 Vareta

Esquejes progenie F1 clonal

A continuación se describen las características relevantes denueve genotipos obtenidos por el método de hibridación. Los primerosiete genotipos se obtuvieron con “Prestige” como progenitor masculinoy los dos siguientes con “Freedom Red”. Mientras que, losprogenitores femeninos estuvieron constituidos por las colectasprovenientes de los estados de Morelos, Oaxaca, Guerrero y Puebla(Cuadro 1).

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Genotipo Zacatepec 3El genotipo Zacatepec 3 proviene del cruzamiento de una colecta

del estado de Guerrero con la variedad “Prestige”. Se caracteriza porpresentar el mayor número de ramas (Cuadro 3) y el mayor diámetrode ciatio (Cuadro 4). De los genotipos obtenidos con “Prestige” es elsegundo genotipo que exhibió menor altura y porte de planta, asícomo menores valores en número de nudos, diámetro de tallo,longitud de peciolo y largo de hoja (Cuadro 3 y Figura 6).

Caracteres Valores

Altura de planta (cm) 53.49Distancia de la hoja de transición al ciatio (cm) 3.14Diámetro del tallo (mm) 13.24Número de ramas 5.50Número de nudos 18.75Longitud de nudos (cm) 2.80Ancho de hoja (cm) 6.98Longitud de hoja (cm) 11.61Longitud del peciolo (cm) 3.28

Cuadro 3. Características vegetativas del genotipo Zacatepec 3.

Zacatepec 3 mostró el mayor diámetro de ciatio (Cuadro 4 yFigura 7) dentro del grupo de progenitores masculinos “Prestige”.

Cuadro 4. Características de bráctea del material Zacatepec 3.

Caracteres Valores

Longitud del peciolo de bráctea (cm) 1.64

Largo de bráctea (cm) 7.34

Ancho de bráctea (cm) 2.76

Amplitud de bráctea (cm) 26.75

Diámetro del ciatio (cm) 5.54

Luminosidad 35.74

Cromaticidad 53.00

Matiz 22.52

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Figura 6. Apariencia del genotipo avanzado de nochebuena Zacatepec 3.

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Figura 7. Inflorescencia y brácteas del genotipo avanzado de nochebuenaZacatepec 3.

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Genotipo Zacatepec 5El genotipo Zacatepec 5 proviene del cruzamiento de una colecta

del estado de Guerrero con la variedad “Prestige”. La característicaprincipal de Zacatepec 5, dentro del grupo donde participó “Prestige”como donador de polen, consiste en que son plantas de medianaaltura, así como valores intermedios en longitud de peciolo y longitudde hoja (Cuadro 5 y Figura 8).


Caracteres Valores

Altura de planta (cm) 62.16

Distancia de la hoja de transición al ciatio (cm) 3.01

Diámetro del tallo (mm) 15.87

Número de ramas 5.40

Número de nudos 21.80

Longitud de nudos (cm) 2.86

Ancho de hoja (cm) 7.91

Longitud de hoja (cm) 13.86

Longitud del peciolo (cm) 4.11

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Otra característica de Zacatepec 5 es que presentó valoresintermedios en amplitud, largo y ancho de bráctea (Cuadro 6 y Figura 9).

Cuadro 6. Características de bráctea del genotipo Zacatepec 5.

Caracteres Valores






Luminosidad 37.01Cromaticidad 54.50

Matiz 22.80

Figura 9. Inflorescencia y brácteas del genotipo avanzado de nochebuenaZacatepec 5.

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Genotipo Zacatepec 10Zacatepec 10 se generó a partir del cruzamiento de una colecta

del estado de Morelos con la variedad “Prestige”. En el grupo demateriales en el cual “Prestige” fungió como progenitor masculino,Zacatepec 10 produjo el mayor número de nudos y también el mayorancho de hoja (Cuadro 7 y Figura 10).

Caracteres Valores



Caracteres Valores

Longitud del peciolo de bráctea (cm) 1.83Largo de bráctea (cm) 6.36Ancho de bráctea (cm) 2.32Amplitud de bráctea (cm) 25.55Diámetro del ciatio (cm) 4.65Luminosidad 35.68Cromaticidad 50.83Matiz 21.88

Zacatepec 10 es uno de los genotipos avanzados mássobresalientes, mostró buen crecimiento y desarrollo bajo lascondiciones ambientales de Zacatepec, Mor. Esto se evidenció alproducir el mayor tamaño de brácteas medido en longitud y anchura(Cuadro 8 y Figura 11).


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Figura 11. Inflorescencia y brácteas del genotipo avanzado denochebuena Zacatepec 10.

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Genotipo Zacatepec 20Zacatepec 20 resultó del cruzamiento realizado con una colecta

del estado de Morelos con la variedad “Prestige” como progenitormasculino. Dentro del grupo obtenido con “Prestige”, Zacatepec 20presentó crecimiento intermedio y desarrolló menor anchura de hoja(Cuadro 9 y Figura 12).

Caracteres Valores











Zacatepec 20 presentó los menores valores en luminosidad,cromaticidad y matiz (Cuadro 10 y Figura 13).

Caracteres Valores






Luminosidad 34.78

Cromaticidad 50.47

Matiz 22.17


23


24


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Caracteres Valores






Luminosidad 39.73

Cromaticidad 56.68

Matiz 23.22


Genotipo Zacatepec 23El genotipo Zacatepec 23 proviene del cruzamiento de una

colecta del estado de Oaxaca con la variedad “Prestige”. Se identificapor una mayor altura de planta y mayor distancia de la hoja detransición al ciatio, esta característica habría que mejorarlo dado quese demandan plantas compactas. También presentó la mayor distanciade nudo a nudo (Cuadro 11 y Figura 14).

Caracteres Valores











26


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También se identifica a Zacatepec 23 por exhibir la mayorlongitud de peciolo de la bráctea y el mayor ancho de bráctea. Además,presentó el mayor valor en cromaticidad (Cuadro 12 y Figura 15).

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En cuanto a la bráctea, Zacatepec 24 mostró mayor luminosidad,amplitud y longitud de bráctea, pero la menor longitud de peciolo(Cuadro 14 y Figura 17).


Caracteres Valores


Genotipo Zacatepec 24Otro de los genotipos generados es el denominado Zacatepec

24, se originó del cruzamiento de una colecta del estado de Oaxacacon la variedad “Prestige”. Este genotipo presentó el mayor númerode nudos, pero la altura de planta fue mediana debido a que ladistancia de nudo a nudo fue intermedia y no influyó en el portefinal de la planta. Tuvo la menor ramificación dentro del grupo deprogenies con progenitor masculino “Prestige”, además se identificópor la menor distancia de la hoja de transición al ciatio. También secaracterizó por la mayor longitud de hoja y diámetro de tallo (Cuadro13 y Figura 16).

Caracteres Valores



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Genotipo Zacatepec 27El genotipo Zacatepec 27 es producto del cruzamiento de una

colecta del estado de Puebla con la variedad “Prestige”. En el grupode progenies derivados de “Prestige”, Zacatepec 27 fue el de menoraltura de planta y también el de menor distancia de nudo a nudo(Cuadro 15 y Figura 18).


Caracteres Valores


Otro aspecto que distinguió a Zacatepec 27 fue la menoramplitud de bráctea y menor diámetro de ciatio, pero con la mayorlongitud de peciolo de bráctea y valor de matiz (Cuadro 16 y Figura19).


Caracteres Valores


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Zacatepec 47 tuvo el menor tamaño de bractea y también lamenor amplitud (Cuadro 18 y Figura 21).

Caracteres Valores



Genotipo Zacatepec 47El genotipo Zacatepec 47 proviene del cruzamiento de una

colecta del estado de Oaxaca con la variedad “Freedom Red”.

Es importante señalar que en el grupo de materiales obtenidoscon “Freedom Red” como donador de polen, solamente seseleccionaron dos materiales sobresalientes, Zacatepec 47 yZacatepec 48.

Zacatepec 47 es un material compacto, mostró menor altura deplanta, número de ramas, número de nudos y longitud de nudo(Cuadro 17 y Figura 20).

Caracteres Valores



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Genotipo Zacatepec 48El genotipo denominado Zacatepec 48 fue producto del

cruzamiento de una colecta del estado de Oaxaca con la variedad“Freedom Red”. Mostró características de hoja muy similares aZacatepec 47, pero tuvo mayor altura de planta, lo superó en 2.99 cm(Cuadro 19 y Figura 22).


Caracteres Valores


En características de color Zacatepec 48 fue muy similar aZacatepec 47, pero el largo de bráctea fue mayor en 0.67 cm (Cuadro20 y Figura 23).

Caracteres Valores



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CONCLUSIONES

1. En el grupo de los nuevos genotipos descritosanteriormente, existen diferencias morfológicas muyimportantes, estos caracteres son indicativos de la ampliavariabilidad que existe en el germoplasma de nochebuena enMéxico.

2. Esta variabilidad genética constituye una granoportunidad para elegir y aprovechar aquellos genotipos queposeen caracteres morfológicos de interés para el consumidor.

3. Se recomienda que este germoplasma continúeutilizándose previa elección, como progenitores paraaprovechar los atributos particulares de cada uno.

4. De los nueve genotipos generados, destacan Zacatepec10 y Zacatepec 48, los cuales se sugiere sean validados enambientes contrastantes para la confirmación de suscaracterísticas morfológicas.

5. Una vez realizada la validación de ambos genotipos, sepueden aprovechar para ser cultivados a nivel comercial, ya quese caracterizan por su mayor tamaño de bráctea.

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LITERATURA CITADA

Ayala E., V. y Yáñez M., M. J. 2003. Etiología de la roña causadapor Sphaceloma poinsettiae Jenk & Ruehle ennochebuena (Euphorbia pulcherrima Willd. ex. Klotzsch)en Temoac, Morelos. In: Almaguer V. G.; Colinas L., T.;Flores M., A.; Mora A., R.; Vidal L., E.; González R., H.;Ayala S., C. y Mejía M., J. M. (eds). Memoria deResúmenes del X Congreso Nacional de la SociedadMexicana de Ciencias Hortícolas, IX Congreso Nacionaly II Internacional de la Asociación Mexicana deHorticultura Ornamental. 20 al 24 de octubre del 2003.Chapingo, Mex.

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