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FACULTAD DE MEDICINA, U.N.A.M. MANUAL DE PRÁCTICAS MÉDICO CIRUJANO PRIMER AÑO BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA 2011-2012 FASCÍCULO I (1ª UNIDAD TEMÁTICA) DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR FACULTAD DE MEDICINA UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO CIUDAD UNIVERSITARIA, D.F., AGOSTO DE 2011.

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FACULTAD DE MEDICINA, U.N.A.M.

MANUAL DE

PRÁCTICAS MÉDICO CIRUJANO

PRIMER AÑO

BIOLOGÍA CELULAR E

HISTOLOGÍA MÉDICA

2011-2012

FASCÍCULO I (1ª UNIDAD TEMÁTICA) DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

FACULTAD DE MEDICINA UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO CIUDAD UNIVERSITARIA, D.F., AGOSTO DE 2011.

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DIRECTORIO DE LA FACULTAD DE MEDICINA

DIRECTORIO DE LA FACULTAD DE MEDICINA

Dr. Enrique Graue Wiechers Director

Dra. Rosalinda Guevara Guzmán Secretaria General

Dr. Pelayo Vilar Puig Jefe de la División de Estudios de Posgrado

Dr. Guillermo Robles Díaz Jefe de la División de Investigación

Dr. Melchor Sánchez Mendiola Secretario de Educación Médica

Dra. Irene Durante Montiel Secretaria del Consejo Técnico

Dr. Leobardo Ruiz Pérez Secretario de Enseñanza Clínica, Internado y Servicio Social

Dr. Ricardo Valdivieso Calderón Secretario de Servicios Escolares

Lic. Graciela Zúñiga González Secretaria Administrativa

Lic. Raúl A. Aguilar Tamayo Secretario Jurídico y de Control Administrativo

Dra. Teresa Fortoul van der Goes Coordinadora de Ciencias Básicas

Dra. María Eugenia Ponce de León Coordinadora de Planes de Estudio

Dr. Arturo Ruíz Ruisánchez Coordinador de Servicios a la Comunidad

DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

DIRECTORIO DEL DEPARTAMENTO

Dr. Andrés E. Castell Rodríguez Jefe del Departamento

Dr. Enrique A. Sampedro Carrillo Coordinador de Enseñanza

Dr. Armando Pérez Torres Coordinador de Investigación

Dr. Cesar E. Montalvo Arenas Responsable de Recursos Docentes

Biol. Armando Zepeda Rodríguez Responsable de la Unidad de Microscopía Electrónica

Dr. José de Jesús Abad Moreno Decano del Departamento

Lic. Eleodoro Guzmán Tapia Unidad Administrativa

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EDITORES DEL MANUAL

DR. ANDRÉS ELIÚ CASTELL RODRÍGUEZ Jefe del Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

Jefe del Laboratorio de Inmunoterapia Experimental, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

MIGUEL ALEJANDRO LECUONA RODRÍGUEZ Coordinador de Instructores, Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

DR. ENRIQUE SAMPEDRO CARRILLO Coordinador de Enseñanza Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Adscrito al Servicio de Patología del Hospital Regional Lic. Adolfo López Mateos, ISSSTE.

AUTORES DE LAS PRÁCTICAS PAOLO ALBERTI MINUTTI Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

MAYRA EUGENIA AVILÉS RAMÍREZ Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

LORENA BASAVE CARREÓN Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

FRANCISCO CALDERÓN MONTER Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

GIANCARLO HERNÁN CRISTERNA TARRASA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

ADEMIR ALFREDO ESPÍNDOLA SILVA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

MARÍA FERNANDA GOLZARRI MILLOTTE Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

RUY GÓMEZ OCADIZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

ALEJANDRA GUERRERO ÁLVAREZ Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

JOSÉ ANTONIO LARA BECERRA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

MIGUEL ALEJANDRO LECUONA RODRÍGUEZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

LUIS JESÚS LEYVA RESENDIZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

IVÓN MEDINA TORRES Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

VÍCTOR OSVALDO MENDOZA GARCÍA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

ANA IVETTE MONDRAGÓN PINEDA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

ARIANA NAVA GARDUÑO Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

DIEGO NEACH DE LA VEGA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

CARLOS OCHOA GARCÍA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

HILDEGARD ALEJANDRA PEÑA SALGUERO Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

LAURA SANDOVAL MOSQUEDA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

MAYDELI SANTAMARÍA PIEDRA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

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REVISORES DE LAS PRÁCTICAS

DR. JOSÉ DE JESÚS ABAD MORENO Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Decano del Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. DAFNE THAMARA AYALA DÁVILA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Residente de Anatomía Patológica, Hospital General de México, S.S.

DR. FERNANDO CANO GARCÍA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM DR. ANDRÉS ELIÚ CASTELL RODRÍGUEZ Jefe del Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Jefe del Laboratorio de Inmunoterapia Experimental, Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. MARÍA ISABEL GARCÍA PELÁEZ Profesora de Biología Celular e Histología Médica y Embriología Humana. Facultad de Medicina, UNAM.

Jefa del Laboratorio de Biología del Desarrollo y Teratogénesis. Facultad de Medicina, UNAM.

Profesora de Embriología, Escuela de Ciencias de la Salud, Universidad Panamericana.

DRA. TANIA ROCÍO GARIBAY HUARTE Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Especialista en Anatomía Patológica, Hospital General de México, S.S.

Médico Residente de Neuropatología, Hospital General de México, S.S.

DR. CARLOS FRANCISCO HERNÁNDEZ MATA Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM DR. MANUEL MILLÁN HERNÁNDEZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Responsable de la Unidad de Capacitación Docente, Secretaría de Educación Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor de Neuroanatomía, Escuela Superior de Medicina, IPN.

DR. MIGUEL ÁNGEL HERRERA ENRÍQUEZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesor Asociado del Laboratorio de Inmunoterapia Experimental, Facultad de Medicina, UNAM.

DR. CESAR EDUARDO MONTALVO ARENAS Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Responsable de la Unidad de Recursos de Docentes, Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM.

Jefe del Laboratorio de Técnicas Histológicas para Microscopía Fotónica. Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. HELIA DEL CARMEN NAVARRO MADARIAGA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Especialista en Anestesiología y Medicina Familiar.

DR. OMAR PÉREZ ENRÍQUEZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM

DR. HÉCTOR PIEDRA RODRÍGUEZ Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. MARÍA MARCELA RAMÍREZ ESCOTO Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

DR. ENRIQUE AGUSTÍN SAMPEDRO CARRILLO Coordinador de Enseñanza Departamento de Biología Celular y Tisular, Facultad de Medicina, UNAM

Profesor de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Adscrito al Servicio de Patología del Hospital Regional Lic. Adolfo López Mateos, ISSSTE.

DRA. MARTHA LUZ USTARROZ CANO Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Profesora Asociada del Laboratorio de Biología del Desarrollo y Teratogénesis. Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. ILIANA VÁZQUEZ ESTRADA Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

DRA. MARÍA ADELITA VIZCAÍNO VILLALOBOS Profesora de Biología Celular e Histología Médica, Facultad de Medicina, UNAM.

Médico Residente de Anatomía Patológica, Hospital General de México, S.S.

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ÍNDICE DE PRÁCTICAS

1ª UNIDAD TEMÁTICA

1. USO ADECUADO DEL MICROSCOPIO FOTÓNICO

2. TÉCNICA HISTOLÓGICA

3. BIOLOGÍA CELULAR I. ORGANELOS CELULARES

4. BIOLOGÍA CELULAR II. NÚCLEO CELULAR

5. BIOLOGÍA CELULAR III. INCLUSIONES Y PIGMENTOS

6. TEJIDO EPITELIAL

7. TEJIDO CONJUNTIVO

8. TEJIDO ADIPOSO

9. TEJIDO CARTILAGINOSO

10. TEJIDO ÓSEO I. HUESO COMPACTO

11. TEJIDO ÓSEO II. OSIFICACIÓN

12. TEJIDO MUSCULAR

13. TEJIDO NERVIOSO

14. OJO

15. OÍDO

2ª UNIDAD TEMÁTICA

16. SISTEMA LINFOHEMATOPOYÉTICO. FROTIS SANGUÍNEO

17. SISTEMA LINFOIDE I. ÓRGANOS NO ENCAPSULADOS

18. SISTEMA LINFOIDE II. ÓRGANOS ENCAPSULADOS

19. SISTEMA CARDIOVASCULAR I. CORAZÓN Y SISTEMA DE CONDUCCIÓN CARDIACA

20. SISTEMA CARDIOVASCULAR II. VASOS SANGUÍNEOS

21. SISTEMA RESPIRATORIO

22. SISTEMA TEGUMENTARIO

23. SISTEMA ENDOCRINO

24. SISTEMA DIGESTIVO I. CAVIDAD ORAL

25. SISTEMA DIGESTIVO II. CONDUCTO ALIMENTARIO

26. SISTEMA DIGESTIVO III. GLÁNDULAS DIGESTIVAS

27. SISTEMA URINARIO I. RIÑÓN

28. SISTEMA URINARIO II. VÍAS URINARIAS

29. SISTEMA REPRODUCTOR FEMENINO I. OVARIO Y TUBA

30. SISTEMA REPRODUCTOR FEMENINO II. ÚTERO, CUELLO UTERINO Y VAGINA

31. SISTEMA REPRODUCTOR FEMENINO III. GLÁNDULA MAMARIA

32. SISTEMA REPRODUCTOR MASCULINO I. TESTÍCULO Y CORDÓN ESPERMÁTICO

33. SISTEMA REPRODUCTOR MASCULINO II. VESÍCULAS SEMINALES, PRÓSTATA Y PENE

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

MANUAL DE PRÁCTICAS

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÓLOGO Dr. Enrique Sampedro Carrillo

Ha pasado ya un año en el proceso de transición del Plan de Estudios anterior hacia uno nuevo que gradualmente se va

dirigiendo hacia el sistema de competencias. Durante este período se han realizado numerosos estudios y cursos, en

general en la Facultad de Medicina y en particular en el Departamento de Biología Celular y Tisular. No cabe duda que

esta transición tiene aún muchos pendientes. Nuestro Departamento debe irse adaptando gradualmente a estos

cambios.

Bajo la supervisión del Dr. Andrés E. Castell Rodríguez, el equipo de trabajo de la Coordinación de Enseñanza, ha

revisado cuidadosamente los contenidos del Manual de Prácticas de Biología Celular e Histología Médica con lo que se

han modificado varios aspectos del mismo. Posiblemente uno de los rubros generales más importantes, ha consistido en

la reducción en el número de actividades obligatorias, así como en el de las laminillas a revisar.

A pesar de los cambios mencionados que el amable lector podrá identificar, la estrategia general de la obra se ha

mantenido.

Una de las habilidades que debe adquirir un alumno egresado de un curso de Histología, es la capacidad de manejar un

sistema ordenado de observación con un microscopio. La repetición constante de un procedimiento en que se debe

partir de lo general a lo particular, de observar detalles, integrarlos en un esquema mental, discriminar lo relevante de lo

irrelevante, encontrar la ruta de búsqueda de una estructura o detalle morfológico, etcétera; constituye una excelente

herramienta mental que facilitará sin duda al futuro médico, la aplicación de dichas conductas al estudio de un paciente.

Entre otras muchas razones, es por esto que la observación de laminillas en el microscopio debe ser una conducta

prácticamente obligada en nuestro curso. Durante el año pasado pudimos apreciar un notable incremento en las horas

empleadas en la observación microscópica en todos los grupos de nuestra asignatura. Esperamos que esta tendencia se

mantenga.

El Manual que aquí se presenta plantea al educando prácticas en tres tiempos.

1. La primera sección contiene preguntas relativas al marco teórico de la actividad; así por ejemplo, si el tema es

epitelios, en esta parte el alumno encontrará preguntas sobre los conceptos que consideramos más relevantes

para comprender mejor la actividad de observación. Las respuestas a estas preguntas se deberán entregar al

equipo docente para evaluación.

2. La segunda sección describe los detalles de la actividad práctica propiamente. Por ejemplo: ¿qué campos

microscópicos se deberán analizar?, ¿qué tinción se ha usado? ¿con qué aumentos? Se cuenta con un espacio en

el que el educando anotará sus impresiones y comentarios sobre cada una de las observaciones. Y por último, se

ha agregado un espacio para que se realicen dibujos de los campos que el propio alumno elija como

representativos. El acto de dibujar detalles morfológicos implica la capacidad de comprender y aprender

patrones estructurales que faciliten la posibilidad de diferenciar lo normal de lo anormal. No se trata de

convertirse en un artista – aunque algunos alumnos llegan a serlo – se trata de valorar la percepción mayor o

menor de detalles que resultan básicos para un buen histodiagnóstico.

3. La tercera sección contiene preguntas y/o sugerencias de temas para que los alumnos revisen en sus casas,

después de la actividad práctica. Se incluye una correlación morfofisiológica – integración horizontal – y una

correlación clínica – integración vertical – La integración de aspectos morfológicos con funcionales resulta

esencial para que nuestros educandos comprendan que la separación entre forma y función es meramente

conceptual. En la naturaleza, estos aspectos se encuentran estrechamente entrelazados. La integración con

aspectos relativos a la práctica médica entre otras muchas ventajas, permite a los educandos apreciar las

aplicaciones que pueden tener sus conocimientos de ciencias básicas en el quehacer de un médico general y de

un médico especialista.

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El cumplimiento cabal de los planteamientos en los tres tiempos de cada práctica, exigirá a nuestros alumnos distintas

actividades manuales y mentales, que se relacionan estrechamente con las competencias que nos atañen, de acuerdo con

lo establecido en el Programa Académico de la Carrera de Médico Cirujano.

Nuestros queridos alumnos deben tener claro que en el caso que decidan estudiar una especialidad médica, con el fin de

ejercerla legalmente, deberán presentar un examen aplicado por Cuerpos Colegiados que se conocen como Consejos

de Especialidad. En la mayor parte de estos exámenes, se aplican a los alumnos preguntas relacionadas con histología e

histopatología. Así, resulta que el conocimiento que se obtiene con la práctica de observación con un microscopio, no

sólo es útil para el histólogo o para el patólogo. La requiere el ginecólogo, el oncólogo, el gastroenterólogo, el

dermatólogo, el neurólogo y el neurocirujano, el pediatra y un largo etcétera de especialistas médicos.

Si por otro lado, nuestro querido alumno llegara a decidirse por la investigación científica de tiempo completo, debe

tener claro que forzosamente deberá trabajar con muestras biológicas con células y tejidos; y que en la mayor parte de

los casos, los estudios de índole bioquímico que desarrolle, deberán contar con el correlativo morfológico (a nivel de

microscopia fotónica y/o electrónica) con el fin de ser aceptados por los evaluadores de distintos comités científicos,

tanto de congresos como de publicaciones nacionales e internacionales.

La idea básica NO es formar histólogos. Nuestra meta, es formar Médicos de Excelencia que tengan un sólido

conocimiento sobre histología médica, habilidades desarrolladas en el histodiagnóstico ante una imagen impresa o

digital y ante un microscopio; además de actitudes de servicio, inquisitivas, de organización e integración, que le

permitirán desarrollar una práctica profesional en el campo de la Medicina, con mucho superior.

Esperamos que las modificaciones a esta obra, permitan un mejor desarrollo de las capacidades declarativas, de habilidad

y actitudinales (competencias) en nuestros alumnos y profesores.

Dr. Enrique Sampedro Carrillo

Coordinador de Enseñanza

Departamento de Biología Celular y Tisular

Agosto de 2011.

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

MANUAL DE PRÁCTICAS

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

10 PASOS BÁSICOS PARA REALIZAR UNA BUENA

PRÁCTICA EN EL AULA-LABORATORIO Dr. Andrés Castell Rodríguez, Dr. Manuel Millán Hernández, Miguel Lecuona Rodríguez

A continuación se enlistan los 10 pasos necesarios a seguir para la realización de las prácticas en el aula-

laboratorio en la asignatura de Biología Celular e Histología Médica:

PASO 1. Preparar el espacio físico para el uso del microscopio.

PASO 2. Preparar el material de trabajo para la realización de la práctica.

PASO 3. Revisar que el microscopio esté en condiciones aptas para el trabajo*

PASO 4. Solicitar la preparación histológica al responsable de sección.

PASO 5. Realizar la práctica indicada.

PASO 6. Regresar la preparación histológica al responsable de sección**

PASO 7. Revisar que el microscopio se deje en condiciones aptas para que pueda ser utilizado por otros

compañeros***

PASO 8. Limpiar el área donde se realizó la práctica.

PASO 9. Solicitar la revisión de la realización de la práctica.

PASO 10. Guardar la práctica en el portafolio de trabajo.

*Si el microscopio no está en condiciones aptas para su uso (limpieza y funcionalidad) se deberá reportar

inmediatamente a los profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.

**Los pasos 4, 5 y 6 se realizarán el número de veces que sea necesario hasta cumplir los objetivos de la práctica y con

la observación del total de preparaciones histológicas asignadas en cada una de ellas.

***Si el microscopio no se deja en condiciones aptas para su uso posterior, se deberá reportar inmediatamente a los

profesores responsables de la práctica en el aula-laboratorio.

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

MANUAL DE PRÁCTICAS

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

1ª UNIDAD

TEMÁTICA

PRÁCTICAS: 1 A 15

No. PRÁCTICAS REALIZADA

1 Manejo y uso del Microscopio Fotónico

2 La Técnica Histológica

3 Biología Celular I. Organelos Celulares

4 Biología Celular II. Núcleo Celular

5 Biología Celular III. Inclusiones y Pigmentos

6 Tejido Epitelial

7 Tejido Conjuntivo

8 Tejido Adiposo

9 Tejido Cartilaginoso

10 Tejido Óseo I. Hueso Compacto

11 Tejido Óseo II. Osificación

12 Tejido Muscular

13 Tejido y Sistema Nervioso

14 Ojo

15 Oído

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 1 MANEJO Y USO DEL MICROSCOPIO FOTÓNICO

Miguel A. Lecuona Rodríguez, Alejandra Guerrero Álvarez, José Antonio Lara Becerra Revisor: Dr. José de Jesús Abad Moreno

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________

I. Objetivos: 1. Identificar los componentes del microscopio fotónico de campo claro. 2. Ejecutar los pasos para el buen uso del microscopio fotónico del aula-laboratorio.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Realice un esquema de un microscopio fotónico e indique en este los sistemas que lo componen y las partes de cada uno de estos:

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2. Calcule para cada objetivo de su microscopio el aumento total y su límite de resolución

3. Enliste el orden de los pasos que se deben seguir para lograr una buena observación de una preparación

histológica.

4. Complete el siguiente cuadro con los diferentes tipos de microscopios:

TIPO DE MICROSCOPIO CARACTERÍSTICAS

Campo Claro

Campo Obscuro

Contraste de Fases

Fluorescencia

Luz Polarizada

Interferencia de Nomarsky

Estereoscópico

Confocal

Electrónico de Transmisión

Electrónico de Barrido

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OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: LETRAS

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe la siguiente preparación histológica al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

a) Observe el sentido o dirección de la letra (inversión) b) Observe el campo microscópico aumentado c) Resolución. Notar espacios entre los trazos de tinta d) Notar los diferentes planos focales (utilizar el tornillo micrométrico)

IV. Correlación Clínica 1. Investigue en qué áreas de la medicina se utilizan los microscopios en la práctica cotidiana:

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 2 LA TÉCNICA HISTOLÓGICA

Miguel A. Lecuona Rodríguez, Alejandra Guerrero Álvarez, José Antonio Lara Becerra Revisor: Dr. José de Jesús Abad Moreno

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________ I. Objetivos:

1. Identificar las principales formas de obtención de la muestra. 2. Reconocer la importancia de la fijación 3. Identificar las principales tinciones

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Liste los pasos de la técnica histológica:

2. ¿Cuál es el fijador más utilizado en la práctica médica, a qué concentración y cantidad se utiliza, y cuál es su utilidad?

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OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe la siguiente preparación histológica al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: RIÑÓN FIJADO Y NO FIJADO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

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IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Complete el siguiente cuadro: Localice una imagen del Atlas Digital de Histología del Departamento, imprima y pegue en la columna correspondiente.

TINCIÓN IMAGEN ESTRUCTURAS Y COLORACIÓN

H y E

Tricrómico de Masson

PAS

Wright/Giemsa

Tricrómico de Gallego

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V. Correlación Clínica

1. Proporcione un ejemplo de casos de cada uno de los siguientes tipos de biopsias. a) Citología exfoliativa

b) Biopsia por aspirado con aguja fina (BAAF)

c) Biopsia por endoscopia

d) Aspirado por punción con aguja gruesa

e) Legrado

f) Corte

g) Sacabocado

2. Mencione en qué situaciones médicas se utiliza el corte por congelación:

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BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 3 BIOLOGÍA CELULAR I. ORGANELOS CELULARES

Mayra E. Avilés Ramírez, Miguel A. Lecuona Rodríguez Revisores: Dr. Andrés E. Castell Rodríguez, Dra. Iliana Vázquez Estrada, Dr. Héctor Piedra Rodríguez

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________ I. Objetivos:

1. El alumno identificará la estructura de cada organelo celular. 2. El alumno comprenderá las características funcionales de los organelos celulares. 3. El alumno conocerá las correlaciones clínicas más representativas de los organelos celulares.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Esquematice la estructura mitocondrial y completa el cuadro anotando las características principales de cada componente estructural:

2. ¿Cuál es la diferencia morfológica entre el retículo endoplásmico rugoso, liso y el aparato de Golgi?

3. ¿Qué es un polisoma? Esquematice cómo y con qué tipo de microscopia se puede observar.

Membrana mitocondrial

interna

Espacio Intermembrana

Membrana mitocondrial

externa

Matriz

MITOCONDRIA

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4. ¿A qué se denomina retículo sarcoplásmico y en qué tipo celular es común está denominación?

5. ¿Cómo se observa en una célula una imagen negativa de Golgi?

6. ¿Qué son los corpúsculos de Nissl?

7. Describa ¿Qué es un endosoma?

8. Mencione la diferencia entre un peroxisoma y un lisosoma:

9. Elabore un diagrama en dónde se muestre la constitución de un microtúbulo en un corte transversal y uno longitudinal:

10. Enliste nombres de algunos filamentos intermedios.

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DESCRIPCIÓN:

DESCRIPCIÓN:

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de micrografías electrónicas de organelos: A continuación localice una imagen del Atlas Digital de Histología, imprimala y péguela. Realice una breve descripción de los organelos con relación a su morfología y función.

RETÍCULO EDNOPLÁSMICO

APARATO DE GOLGI

MITOCONDRÍAS

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DESCRIPCIÓN:

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica

1. Elabore un mapa mental de la síntesis proteica y escriba una breve explicación.

CILIOS

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2. Realice un esquema en donde se represente el aparato de Golgi y el tránsito vesicular. Explique con sus propias palabras el esquema.

3. ¿Cómo participan los microtúbulos en el movimiento de orgánulos intacelulares?

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V. Correlación Clínica Investigue tres enfermedades relacionadas con alguna patología de los organelos celulares y realice la correlación histopatológica de una de ellas:

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 4 BIOLOGÍA CELULAR II. NÚCLEO CELULAR

Mayra E. Avilés Ramírez, Miguel A. Lecuona Rodríguez Revisores: Dr. Andrés E. Castell Rodríguez, Dra. Iliana Vázquez Estrada, Dr. Héctor Piedra Rodríguez

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:__________

I. Objetivos:

1. El alumno identificará las diferentes formas de núcleos celulares mediante la observación de preparaciones histológicas.

2. El alumno conocerá las variedades de localización del núcleo dentro de las células mediante la observación de preparaciones histológicas.

3. El alumno explicará los conceptos de: ADN, eucromatina, heterocromatina, núcleo de cara abierta 4. El alumno aprenderá las correlaciones funcionales y clínicas más relevantes del núcleo celular.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Enliste las diferentes localizaciones en las que se puede encontrar un núcleo dentro de la célula:

2. Enliste las diferentes formas de núcleo que existen dentro de las células:

3. ¿Qué diferencia hay entre la eucromatina y la heterocromatina?

4. ¿Qué es el corpúsculo de Barr y como se ve al microscopio fotónico de campo claro?

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OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: HIGADO CON H-E

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Realice un cuadro sinóptico donde indique los componentes de la envoltura nuclear:

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2.Realice un esquema con los pasos del empaquetamiento de la cromatina:

V. Correlación Clínica 1. Realice un mapa conceptual de apoptosis y algunas de las entidades clíncias en las que está involucrada

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 5 BIOLOGÍA CELULAR III. INCLUSIONES Y PIGMENTOS

Miguel A. Lecuona Rodríguez, Mayra E. Avilés Ramírez Revisores: Dr. Andrés E. Castell Rodríguez, Dra. Iliana Vázquez Estrada, Dr. Héctor Piedra Rodríguez

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:__________ I. Objetivos:

1. Identificar el concepto de inclusión citoplásmica. 2. Reconocer ejemplos de inclusiones citoplásmicas. 3. Enlistar ejemplos de pigmentos presentes en las células.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas: 1.- ¿Qué es una inclusión citoplásmica? 2.- ¿Cuáles son las inclusiones más comunes? 3.- Escriba algunos pigmentos presentes en las células. 4.- Complete el siguiente cuadro.

INCLUSIÓN/PIGMENTO CARACTERÍSTICAS TIPO CELULAR EN EL QUE ES MAS ABUNDANTE O FRECUENTE

Glucógeno

Lípidos

Lipofuscina

Hemosiderina

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OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

Cristales de Charcot-Böttcher

Cristales de Reinke

Melanina

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) HÍGADO CON Y SIN GLUCÓGENO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

28

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) GÁNGLIO LINFÁTICO INTRATRAQUEOBRONQUIAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) MIOCARDIO (LIPOFUCSINA)

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

29

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: D) MESENCEFALO (NEUROMELANINA)

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

30

IV. Correlación Clínica 1. Complete el siguiente cuadro:

Localice una imagen del Atlas Digital de Histología del Departamento, imprima y pegue en la columna correspondiente.

INCLUSIÓN IMAGEN ENFERMEDAD ASOCIADA

MELANINA

LIPOFUSCINA

GLUCÓGENO

31

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 6 TEJIDO EPITELIAL

Diego Neach De la Vega, Ruy Gómez Ocádiz. Revisor: Dr. César Eduardo Montalvo Arenas

NOMBRE: ______________________________________________________ GRUPO:_________________

CALIFICACIÓN:__________

I. Objetivos: 1. Describir el tipo de epitelio en cada estructura observada (simples o estratificados: planos, cúbicos o cilíndricos). 2. Identificar las características histológicas de cada epitelio (tipos celulares, forma y posición del núcleo,

especializaciones de membrana). 3. Mencionar la función que tiene cada epitelio observado (protección, absorción, secreción, transporte). 4. Realizar las correlaciones clínicas correspondientes.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Mencione brevemente las características generales del tejido epitelial.

2. Clasifique histológicamente los diferentes tipos de epitelio mencionando un ejemplo de cada uno.

3. Mencione brevemente las funciones epiteliales.

4. ¿Qué es un mesotelio y un endotelio?

5. ¿Cuál es la diferencia entre epitelio transicional y transición de epitelio? Mencione ejemplos de cada uno de ellos.

32

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) PIEL GRUESA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

33

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) ESÓFAGO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

34

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) INTESTINO DELGADO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

35

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: D) TRÁQUEA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

36

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: E) VESÍCULA BILIAR

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

37

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: F) PLEXOS COROIDES

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

38

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: G) VEJIGA URINARIA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

39

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: H) CUELLO UTERINO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

40

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica. 1.-Transición de epitelios: ¿en qué lugares se presenta y cuál es el cambio? 2.- ¿Cuáles son las modificaciones o características que hacen único al urotelio? V. Correlación Clínica 1.-En qué consiste la metaplasia y en qué situaciones se presenta; menciona 1 ejemplo. Realice un mapa conceptual con la correlación histopalógica de alguna de las siguientes entidades: 1.-Esófago de Barret. 2.-Diarrea por Cólera (Vibrio cholerae, sitio de acción de la toxina). 3.-Discinesia ciliar primaria (DCP); Síndrome de Kartagener. 4.- Pénfigo vulgar.

41

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 7 TEJIDO CONJUNTIVO

Francisco X. Calderón Monter, Víctor Osvaldo Mendoza García, Ma. Fernanda Uribe Solís Revisor: Dra. María Adelita Vizcaíno Villalobos

NOMBRE:______________________________________________________ GRUPO:__________

CALIFICACIÓN:__________

I. Objetivos: 1. Identificar las características histológicas básicas del tejido conjuntivo. 2. Observar en el microscopio fotónico la disposición general del tejido conjuntivo 3. Describir la histofisiología esencial del tejido conjuntivo. 4. Correlacionar la histofisiología del tejido conjuntivo mediante casos clínico-patológicos.

II. Actividad Previa: Realice la siguiente actividad antes de observar las preparaciones histológicas:

1. Complete el siguiente mapa conceptual.

42

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) CORDÓN UMBILICAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) PIEL CON GRANULOMA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y dé una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

43

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) TUMOR CUTÁNEO CON CÉLULAS PLASMÁTICAS

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: D) CORDÓN ESPERMÁTICO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: E) PIEL DELGADA O PIEL GRUESA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

44

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: F) AORTA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: G) HÍGADO O GANGLIO LINFÁTICO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: H) TENDÓN

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

45

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Complete la tabla acerca de la localización y características especiales de los siguientes tipos de colágena.

TIPO DE COLÁGENA LOCALIZACIÓN

I

II

III

IV

V

V. Correlación Clínica 1. Caso clínico. Hombre de 17 años, quien hace cuatro meses sufrió una herida lineal penetrante de 3cm en el brazo derecho, sin recibir atención médica. Se presentó a consulta con aumento de volumen confinado a la cicatriz, no distensible, de consistencia firme y aspecto lustroso. El paciente tiene una cicatriz de tipo:

a) Queloide b) Hipertrófica c) Atrófica

Esta lesión se formó por:

a) Reducción en la síntesis de colágena b) Disminución en la degradación de la matriz extracelular c) Proliferación exagerada de fibroblastos

Son las enzimas responsables de la degradación de la matriz extracelular:

a) Catalasas b) Peroxidasas c) Metaloproteinasas

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA

DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 8 TEJIDO ADIPOSO

María Fernanda Golzarri Millotte, Paolo Alberti Minutti, Francisco X. Calderón Monter, María Fernanda Uribe Solís Revisor: Dra. Isabel García Peláez

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________

I. Objetivos: 4. El alumno identificará las diferencias morfológicas entre grasa parda y grasa blanca. 5. El alumno comprenderá las correlaciones morfo-funcionales del tejido adiposo. 6. El alumno conocerá las correlaciones clínicas (histopatológicas) más representativas del tejido adiposo.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Mencione dos tinciones específicas para observar tejido adiposo. 2. ¿Por qué no se observa el contenido de los adipocitos en la tinción de rutina con H-E?

3. Indique tres diferencias y tres semejanzas morfológicas entre adipocito unilocular y multilocular. 4. ¿Qué organelo confiere a la grasa parda su color característico?

47

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) RIÑON CON GRASA PARDA PERIRRENAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe la siguiente preparación histológica al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica Conteste las siguientes preguntas:

1. Mencione 3 funciones de la grasa blanca.

2. Explique cómo se activa la liberación de ghrelina y cuál es su función.

3. Los adipocitos en la vida adulta tienen la capacidad de sufrir: (hiperplasia / hipertrofia / ambas). (Explique su respuesta)

48

V. Correlación Clínica Realice un mapa conceptual con la correlación clínica de obesidad:

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 9 TEJIDO CARTILAGINOSO

María Fernanda Golzarri Millotte, Giancarlo Hernán Cristerna Tarrasa Revisor: Dr. Manuel Millán Hernández

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________ I. Objetivos:

1. El alumno describirá las características histológicas básicas del cartílago hialino, elástico y fibroso. 2. El alumno identificará en el microscopio las diferencias entre el cartílago hialino, elástico y fibroso. 3. El alumno realizará las correlaciones morfo-funcionales de cartílago hialino, elástico y fibroso. 4. El alumno realizará las correlaciones clínicas (histopatológicas) más representativas de cartílago hialino, elástico y

fibroso.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Complete el siguiente cuadro sinóptico.

TIPO DE CARTÍLAGO UBICACIÓN COMPONENTES DE LA MATRIZ EXTRACELULAR

PERICONDRIO (PRESENTE O AUSENTE)

HIALINO

ELÁSTICO

FIBROSO

2. ¿Cuál es el mecanismo por el que se nutren las células del tejido cartilaginoso?

50

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

3. ¿Qué característica tintorial tiene el cartílago hialino y por qué razón presenta esta coloración?

4. ¿Qué características morfológicas son particulares del cartílago fibroso?

5. Elabore una tabla comparativa mostrando las diferencias entre el crecimiento aposicional e intersticial

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe la siguiente preparación histológica al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) TRÁQUEA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

51

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica Enliste la principal función de los siguientes cartílagos:

1. Cartílago Hialino

2. Cartílago Elástico

3. Cartílago Fibroso

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) EPIGLOTIS

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) COLUMNA VERTEBRAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

52

V. Correlación Clínica

Realice un mapa conceptual de alguna de las siguientes patologías:

1. Gota 2. Condrosarcoma 3. Condroma

53

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA

DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 10 TEJIDO ÓSEO I. HUESO COMPACTO

Luis Jesús Leyva Reséndiz, Maydeli Santamaría Piedra, Ademir Alfredo Espíndola Silva Revisor: Dr. José de Jesús Abad Moreno

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:__________

I. Objetivos:

1. El alumno identificará los componentes del hueso compacto 2. El alumno identificará los canalículos y los conductos de Havers y Volkman 3. El alumno aplicará los conocimientos previos para comprender la correlación histofisiológica más

relevante de hueso compacto. 4. El alumno correlacionará lo aprendido con una entidad clínica de importancia de hueso compacto.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Realice un esquema de los componentes del hueso compacto

2. ¿Qué segmento de un hueso largo está constituida únicamente por hueso compacto?

54

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Complete el siguiente cuadro:

HORMONA CÉLULA BLANCO EFECTO EN EL HUESO EFECTO EN [ ] Ca++

SÉRICO

VITAMINA D

HORMONA

PARATIROIDEA

CALCITONINA

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) HUESO LIJADO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

55

V. Correlación Clínica 1. Complete el siguiente esquema

OSTEOPOROSIS

A ca

usa

Pro

voca

Oca

sion

a

Po

r tan

to

Disminución de la

densidad ósea

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DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 11 TEJIDO ÓSEO II. OSIFICACIÓN

Maydeli Santamaría Piedra, Ademir Alfredo Espíndola Silva, Luis Jesús Leyva Reséndiz Revisor: Dr. José de Jesús Abad Moreno

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________ I. Objetivos:

1. El alumno reconocerá las células del tejido óseo. 2. El alumno identificará las diferencias histológicas entre osificación intramembranosa y endocondral. 3. El alumno identificará las diferentes zonas del cartílago de crecimiento. 4. El alumno aplicará los conocimientos previos para comprender la correlación histofisiológica más representativa

del tejido óseo. 5. El alumno realizará las correlaciones clínicas más representativas del tejido óseo.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Complete la siguiente tabla.

CÉLULA CARACTERÍSTICAS MORFOLÓGICAS FUNCIÓN

OSTEOPROGENITORAS

OSTEOBLASTOS

OSTEOCLASTOS

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2. Complete el siguiente esquema

3. Complete el cuadro comparativo de los tipo de osificación poniendo sí o no según corresponda

OSIFICACIÓN INTRAMEMBRANOSA OSIFICACIÓN ENDOCRONDRAL

MOLDE DE CARTÍLAGO

HUESOS LARGOS

(EXTREMIDADES)

HUESOS CRÁNEO Y CARA

COLLARETE ÓSEO

58

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) CARA O FOSAS NASALES DE FETO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) CALOTA DE FETO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: D) TIBIA DE FETO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

59

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Esquematice el proceso de resorción ósea del osteoclasto.

V. Correlación Clínica

1. Explique de manera breve cómo se lleva a cabo el proceso de reparación de facturas, poniendo énfasis en cómo se forma el tejido de granulación, el callo interno y externo.

60

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 12 TEJIDO MUSCULAR

Ademir Alfredo Espíndola Silva, Francisco Calderón Monter, Luis Jesús Leyva Reséndiz, Ana Ivette Mondragón Pineda Revisor: Dr. Miguel Herrera Enríquez

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:__________ I. Objetivos:

1. El alumno identificará la localización y tinciones utilizadas en tejido muscular 2. El alumno será capaz de distinguir las características morfológicas y estructurales de cada variedad de tejido

muscular. 3. El alumno será capaz de relacionar la forma y estructura de las células del tejido muscular con su función tanto en

tejidos sanos, como en las principales entidades patológicas que afectan a este tejido.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas:

1. Complete el cuadro comparativo de los tres tipos de tejido muscular:

CARACTERISTICA MÚSCULO ESTRIADO

ESQUELÉTICO

MÚSCULO ESTRIADO

CARDIACO MÚSCULO LISO

Forma celular

Tamaño celular

Número, localización y forma nuclear

Organización del citoqesqueleto

(sarcomeras vs cuerpos densos)

Estructuras involucradas en la

disponibilidad de calcio durante la

contracción

Capacidad proliferativa

Variedades celulares específicas de

cada tipo de tejido muscular (huso

muscular, de conducción, endocrinas,

unitarias , multiunitarias)

Tejido conjuntivo asociado

61

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

2. Complete el siguiente cuadro.

LOCALIZACIÓN TIPO DE TEJIDO VOLUNTARIO O

INVOLUNTARIO

TIPO DE

NEUROTRANSMISOR

INVOLUCRADO

Lengua

Tercio superior de esófago

Tercio inferior de esófago

Miocardio

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) LENGUA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

62

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) MIOCARDIO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) INTESTINO DELGADO Ó URETER

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

63

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. .Describa el mecanismo de contracción muscular colocando todos los elementos estructurales que participan.

V. Correlación Clínica Conteste las siguientes preguntas: 1. ¿En la rigidez cadavérica (rigor mortis) que ocurre con los filamentos gruesos y delgados en el proceso de

disociación?

2. ¿En la miastenia gravis que alteraciones ocasionan los autoanticuerpos en los receptores de acetilcolina en

la célula muscular?

64

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 13 TEJIDO Y SISTEMA NERVIOSO

Mayra Eugenia Avilés Ramírez, Miguel Alejandro Lecuona Rodríguez Revisor: Dra. Tania Rocío Garibay Huarte

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________

I. Objetivos: 1. El alumno describirá las características morfológicas y funcionales de los principales tipos celulares del tejido

nervioso.

2. El alumno conocerá la constitución de la barrera hematoencefálica.

3. El alumno describirá los componentes del tejido conjuntivo del sistema nervioso.

4. El alumno conocerá las correlaciones clínicas más representativas del sistema nervioso.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de realizar la observación de preparaciones histológicas: 1. Complete el siguiente cuadro escribiendo lo que se le pide:

CÉLULA CARACTERÍSTICAS FUNCIÒN

Neurona del asta anterior

Neurona del asta posterior

Microglia

65

Astrocito protoplasmático

Astrocito fibroso

Oligodendrocito

Célula de Schwann

Célula Ependimaria

2. Describa cómo está compuesta la barrera hematoencefálica:

3. Mencione qué es el plexo coroideo, cuáles son sus características histológicas y cuál es su función.

66

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

4. Enliste las capas de la corteza cerebelosa, con una descripción de cada una de ellas.

CAPA DESCRIPCION

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) CORTEZA CEREBRAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

67

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) CEREBELO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

68

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: C) ASTROCITOS PROTOPLASMICOS, FIBROSOS Y PIES PERIVASCULARES

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: D) OLIGODENDROCITOS

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

69

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: E) MICROGLIA

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: F) MÉDULA ESPINAL

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

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OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: G) MESENCEFALO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: H) NERVIO ÓPTICO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

71

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: I) PLEXOS COROIDES

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: J) CORTE LONGITUDINAL Y TRANSVERSAL DE NERVIO PERIFERICO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

72

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: K) GANGLIO RAQUIDEO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: L) GANGLIO SIMPÁTICO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

73

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica. Responda las siguientes preguntas: 1. ¿Cuáles son los mecanismos de transporte axonal?

2. ¿Qué ventajas proporciona la mielina en la conducción de los impulsos?

V. Correlación Clínica A) Caso clínico. Mujer de 72 años de edad que fue llevada a la consulta por presentar confusión y olvidos cada vez más frecuentes

durante los últimos tres años. Refirió que se ha perdido varias veces en el último año dentro de su colonia al volver del

supermercado, y se encuentra preocupada por su seguridad. Tiene dificultad para recordar nombres y se ha vuelto poco

comunicativa y con ánimo depresivo.

En el examen neurológico se encuentra confundida y orientada únicamente en persona, no en tiempo ni espacio. Puede evocar tres objetos luego de nombrarlos, pero no después de cinco minutos. No reconoce a su hija. Se realiza una TC de cráneo que muestra atrofia cerebral generalizada sin lesiones focales. El resto de sus exámenes de laboratorio, incluido el citológico de LCR, son normales.

Luego de dos años, su estado cognitivo ha decaído hasta requerir una enfermera durante todo el día y finalmente, fue llevada a un asilo para su cuidado. Su cuadro clínico se complicó por úlceras de decúbito recurrentes y múltiples episodios de neumonía; murió, luego de tres años de estar en el asilo, secundariamente a un cuadro severo de bronconeumonía. Se solicita autorización para realizar necropsia.

En la necropsia, el encéfalo pesa 925 gr. Presenta atrofia cortical cerebral generalizada, acompañada de pérdida importante de neuronas piramidales en el hipocampo. Con tinciones especiales se observan marañas neurofibrilares bien desarrolladas y placas neuríticas en el hipocampo y la neocorteza. Además, se identifican depósitos de amiloide en las paredes de múltiples vasos sanguíneos en las leptomeninges y el parénquima cerebral.

1. ¿Cuál es el diagnóstico presuntivo?

74

2. Realice la correlación histopatológica del padecimiento diagnosticado.

B) Explique brevemente en qué consiste alguna de las siguientes patologías usando un mapa conceptual: a) Neurocisticercosis b) Enfermedad Vascular Cerebral c) Astrocitoma d) Esclerosis múltiple

75

UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 14 OJO (GLOBO OCULAR)

Ademir Alfredo Espíndola Silva,Luis Jesús Leyva Reséndiz, Maydeli Santamaría Piedra Revisor: Dr. Manuel Millán Hernández

NOMBRE:__________________________________________________________ GRUPO:__________________

CALIFICACIÓN:___________

I. Objetivos: 1. El alumno reconocerá las estructuras básicas y compartimientos del globo ocular. 2. El alumno reconocerá las estructuras del párpado. 3. El alumno aplicará los conocimientos previos para comprender la correlación histofisiológica más relevante del

ojo y párpado. 4. El alumno correlacionará sus conocimientos con una entidad clínica de importancia del ojo y párpado.

II. Actividad Previa: Realice la siguiente actividad antes de observar las preparaciones histológicas:

1. Escriba las capas del globo ocular y las estructuras que integra cada una.

2. Escriba los compartimentos del ojo y sus límites.

76

3. Enliste las capas de la córnea.

4. Enliste las capas de la retina.

5. Describa los tipos de glándulas que posee el párpado, su localización y el tipo de secreción que producen.

77

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación observe las siguientes preparaciones histológicas al microscopio, realice los dibujos en los espacios correspondientes y de una breve descripción de los elementos característicos para cada uno de sus dibujos.

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) OJO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

78

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

OBJETIVO: ____________

AUMENTO TOTAL: ____________

DESCRIPCIÓN:

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: B) PARPADO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

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IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica 1. Enliste las estructuras que atraviesa el humor acuoso desde su formación hasta su absorción.

V. Correlación Clínica Elija una de las siguientes alteraciones y elabore un cuadro sinóptico con los siguientes apartados: epidemiología,

etiología, fisiopatología y cuadro clínico.

a) Presbicia b) Glaucoma c) Ametropía d) Úlcera corneal e) Orzuelo y chalazión

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UNAM. FACULTAD DE MEDICINA DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA

PRÁCTICA No. 15 OÍDO (ÓRGANO VESTIBULOCOCLEAR)

Ruy Gómez Ocádiz, Carlos Gabriel García Ochoa Revisor: Dr. Manuel Millán Hernández

NOMBRE:______________________________________________________ GRUPO:__________

CALIFICACIÓN:__________

I. Objetivos: 1. Describir la morfología microscópica de los elementos que conforman el oído interno. 2. Establecer la relación entre la estructura y la función de los elementos que conforman el oído interno. 3. Identificar la importancia del conocimiento de la histología del oído por medio de correlaciones clínicas.

II. Actividad Previa: Responda las siguientes preguntas antes de observar las preparaciones histológicas:

1. ¿Cuáles son los tres espacios que componen el laberinto óseo?

2. ¿Qué contiene el laberinto vestibular?

3. ¿Cuáles son las principales diferencias entre los dos tipos de células ciliadas presentes en el laberinto membranoso?

4. ¿Cuáles son los tres compartimentos paralelos que se observan en la cóclea y cuáles son sus límites?

5. ¿Sobre qué estructura descansa el órgano de Corti?

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DESCRIPCIÓN:

DESCRIPCIÓN:

III. Observación de preparaciones histológicas: A continuación tome una imagen del atlas digital y péguela en el sitio correspondiente y añada una breve descripción.

IV. Correlación Histofisiológica y Morfológica Responda las siguientes preguntas:

1. ¿Qué importancia tiene la diferencia en las concentraciones de electrólitos entre la endolinfa y la perilinfa?

2. ¿Qué función desempeñan las máculas del utrículo y del sáculo?

3. ¿Qué función desempeñan las cresta ampollares?

PREPARACIÓN HISTOLÓGICA: A) OÍDO

MÉTODO DE TINCIÓN EMPLEADO: __________________________________

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4. ¿Cómo se vincula el movimiento de los estereocilios con la transmisión de señales por la célula ciliada?

5. ¿Qué mecanismo le permite a la cóclea diferenciar sonidos con distintas frecuencias?

V. Correlación Clínica Elabore un mapa conceptual con la correlación clínica de alguna de las siguientes entidades:

a) Presbiacusia

b) Hipoacusia de conducción - otoesclerosis

c) Hipoacusia de percepción

d) Implante coclear

e) Vértigo

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DEPARTAMENTO DE BIOLOGÍA CELULAR Y TISULAR

FACULTAD DE MEDICINA, U.N.A.M. MANUAL DE PRÁCTICAS DE BIOLOGÍA CELULAR E HISTOLOGÍA MÉDICA 2011-2012

AGOSTO DE 2011