38
Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

  • Upload
    jeslyn

  • View
    60

  • Download
    1

Embed Size (px)

DESCRIPTION

Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška. +. +. +. +. +. +. -. -. -. -. +. +. +. +. -. -. -. -. -. -. suma dipólů. 1 dipól. I . t. Na net =. F. Obecná elektrofyziologie tkání. - PowerPoint PPT Presentation

Citation preview

Page 1: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Bioelektrické jevy a jejich měření

5. přednáška

Page 2: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Obecná elektrofyziologie tkáníObecná elektrofyziologie tkání

Tkáň = soubor buněk stejného embryonálního původu sdružené k tomu, aby plnily nějakou funkci; tkáň může obsahovat všechny buňky typově stejné, nebo i více různých typů. Nositelem specializované funkce bývá jeden typ buněk, další typy (často i morfologicky a funkčně poněkud odlišné) tuto funkci podporují.

A) Tkáň tvořená apolárními buňkami umístěním obvodu nenaměříme žádný potenciálový rozdíl, dokonce ani tehdy, jsou-li buňky náhodně polarizované a oscilující (vektorový součin je = 0)

B) Tkáň složená z buněk tvořících dipóly umístěním obvodu naměříme v různých místech určitý potenciálový rozdíl, ať už tkáň tvořená dipóly umístěnými v sérii nebo paralelně

+

-

+

-

+

-

+

-

+

-

+

-

1 dipól

+ - + - + - + -

suma dipólů

Typická polarizovaná tkáň = žabí kůže. Žába má schopnost aktivně transportovat Na+: je to hlavní extracelulární kation a ve sladké vodě je ho málo, žába by o něj přicházela. Kolik Na+ (gramionů iontů) projde přes membránu za nějaký čas (napěťový zámek a měření toků iontů!):

Nanet = I . t

F

Page 3: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elementární schéma reabsorpce NaCl v Henleově kličce myši. Čárkované čáry představují pasivní pohyb iontů ve směru jejich elektrochemického gradientu. Vm, membránový potenciál.

Z Am J Physiol Renal Physiol. 2002 May;282(5):F866-76.

Schéma hlavních iontových transportérů v buňkách alveolárního epitelu I (červeně) a

II (žlutě) typu

Kredit: http://journal.frontiersin.org/Journal/10.3389/fphys.2012.00146/full#sthash.QI3y2JB5.dpuf

Page 4: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrický potenciálový rozdíl lze zaznamenat i v apolární tkáni, pokud je část buněk poškozena. Mezi poškozenou a intaktní částí tkáně je potenciálový rozdíl díky difusním potenciálům. Z poškozené buňky/buněk se uvolňují ionty, mění se jejich extracelulární koncentrace, difundují extracelulárním prostředím...

+

-

+

-

Polarizace tkání a schopnost buněk aktivně transportovat ionty např. z apikální strany buňky na bazální má značný fyziologický význam. Klasika = střevo... ale např. pro normální vývoj plic:buňky výstelek dýchacích cest plodu secernují chloridy, s nimiž je „tažena“ do dýchacích cest i voda. Několik dní po narození tento transport vody do cest dýchacích výrazně klesá, už před porodem a těsně po něm plicní epitel naopak tekutinu absorbuje, aby mohlo docházet k výměně dýchacích plynů.

Za tuto změnu je velkou měrou odpovědný aktivní transport Na+ přes plicní epitel. Roste hladina mRNA pro epiteliální Na+ IKs a pro Na+/K+ ATPAsu aj.

apikálnístrana

bazolaterální strana

-agonista

Všechny měkké tkáně obsahují dlouhé řetězce proteinů jako kolagen, elastin či keratin – molekuly s pravidelnou strukturou opakujících se podjednotek. Tkáně jako ligamenta, fascie, šlachy obsahují denzní plošné (-sheets) sítě těchto proteinů, zejména kolagenu. Chrupavky se skládají z kolagenu a proteoglykanů, kost je v podstatě kalcifikovaná kolagenní struktura. Všechny tyto útvary mají společné to, že pokud jsou vystaveny mechanickému stresu (komprese, natažení, zkroucení aj.), vznikají na jejich vnitřních i vnějších površích piezoelektrické náboje a potenciály. Např. na kosti vystavená torzi naměříme povrchový potenciál 10-150 mV (podle míry deformace). Takto vyvolaný povrchový náboj trvá po celou dobu podnětu a může se synchronně měnit s kolísáním daného podnětu.

Page 5: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Polarizované mohou být i tkáně vůči sobě navzájem.

Jak zjistit, že se v ptačím vejci vyvíjí embryo? Embryo má vůči žloutku a bílku pozitivní náboj, a protože je lehčí než jeho okolní prostředí, plave při povrchu skořápky. Lze naměřit indukovaný náboj i přes skořápku, která má vysoký odpor: následným otočením skořápky o 180° lze získat superponovanou hodnotu tohoto potenciálu, který se průběhu vývoje zárodku mění.

++ +

++

+

- - -

Př. torze kosti: Při působení síly na kost lze měřit v různých místech na jejím povrchu potenciálové rozdíly, navozené změnou v distribuci jejího povrchového náboje. Torzí vyvolaný povrchový náboj trvá po celou dobu podnětu a může se synchronně měnit s kolísáním daného podnětu. Každá jednotlivá ohýbaná molekula přispívá k celkovému potenciálovému rozdílu v různých místech (příspěvky povrchových nábojů molekul se sčítají). Stlačené konkávní povrchy generují záporné potenciálové rozdíly, stlačené konvexní povrchy potenciálové rozdíly kladné. Změny povrchového náboje se měří nejčastěji v pC/cm2.

Ve šlachách vyvolá tah navozený svalovou kontrakcí a zkrácením svalu mezi jeho šlachou a úponem do fascie nebo na kost paralelní (iso)plochy povrchového náboje, orientované v podélné ose šlachy. Podobně lze měřit změny povrchového náboje ve fasciích aj.

pote

nciá

l (m

V)

čas (s)Relaxace tkáně po mechanickém stresu. Stres se projevil změnou elektrického potenciálu (měřeno z vnitřku) a změnou elektrochemockého potenciálu celé tkáně.

Distribuce elektrického potenciálu uvnitř tkáně v různých časech od aplikovaného tlaku 0,3 MPa. Tkáň byla stlačována v komůrce směrem seshora.

Page 6: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Tkáně jako vodiče mají oblasti s různou vodivostí. Distribuci elektrického náboje není snadné vypočítat.

Podélný řez lidským stehnem, na němž jsou umístěny dvě povrchové elektrody (A,K). Q,H a G, svalová tkáň; F, tuk; H, kyčel; B, stehenní kost; K, koleno. Ekvipotenciály jsou od sebe vzdáleny 4 V.

Šíření akčního potenciálu v m. rectus femoris stimulovaného bifázickými pulsy (30, 80V, 25 Hz).

Page 7: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

I I

V

tok proudu nízké i vysoké

frekvence

většinou vysoké

frekvence

Lze měřit nejen povrchový náboj, potenciály, proudy a jejich změny jako primární výstupní data, častá jsou v případě tkání tzv. impedanční měření, tedy měření dielektrických vlastností dané tkáně. Provádějí se zpravidla tak, že do tkáně je zaváděn slabý proud o různých frekvencích. Nejlepší výsledky se samozřejmě dosahují přímým kontaktem s tkání, ale i tehdy je třeba brát v potaz vliv okolních tkání, které mohou značně přispívat „parazitickou“ informací. U impedančních měření je tedy velmi přesně polohovat elektrody a brát v potaz velikost a tvar těla nebo jeho relevantní části.Proud si vždy „vybírá“ cestu nejmenšího odporu. Máme-li dobré vodivé médium, vedou i tkáně dobře tkáně s vysokým obsahem vody jsou nejlepší vodiče.

Tkáň odpovídá na průchod elektrického proudu různými typy odpovědí. Mezi nejdůležitější patří odpovědi teplotní, chemické a systémové.

Teplotní odpovědi zahrnují

• vzrůst teploty v proud vedoucích tkáních a následnou disipaci tepla z tkáně• vyšší elektrický odpor tkáně způsobený vzrůstem teploty• proudy stimulující nervy a svaly mají malý teplotní efekt, neboť průměrný tok proudu je velmi malý• ohřev tkání je vyšší při vyšších frekvencích proudůSystémové odpovědi zahrnují

• kontrakce svalů (stimulace 60/s!)• změny ve vnímání bolestivých podnětů

Chemické odpovědi zahrnují

• na plus pólu: acidické reakce způsobující koagulaci proteinů a tvrdnutí tkáně• na minus pólu: alkalické reakce způsobují zkapalňování proteinů a měknutí tkání

Page 8: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Kapacitní odpor kůže XC

• f = 50 Hz, R těla ~ 2000 Ω

• f = 1 kHz, XC =1/6 R

• f = 10 kHz, XC = 1/60 R

Odpor kůže

• proměnný, cca 3x vyšší než tkání

• při napětí do U= 50 V je R > 10 kΩ

• s rostoucím napětím R klesá: při U= 220 V je R = 5 kΩ

Rozdíly mezi suchou a vlhkou kůží:

• ve vlhku R= 1kΩ ve vodě R= 500 Ω

• suchá kůže U= 220 V ρk= 105 Ω I= 2,2 mA

• vlhká kůže U= 220 V ρk= 1,5 Ω I= 146,7 mA S zvyšováním frekvence proudu

nad 50 Hz dochází ke ztrátě kapacitních vlastností membrán:

tzv. Cole-Cole křivka

Vysoké frekvence mohou procházet buňkami díky malému kapacitnímu odporu membrán.

Page 9: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Účinky střídavého proudu na 60 Hz

1 mA téměř nevnímáme

16 mA maximální hodnota proudu, při níž člověk nezůstane v obvodu, je schopen se pustit (can grasp and let-go; průměrně 5 mA, rozsah 9-30 mA)

20 mA paralýza dechových svalů – možný fatální kontakt

100 mA práh pro komorové fibrilace

2 A srdeční zástava, poškození vnitřních orgánů

Účinky stejnosměrného proudu

do 300 mA chybí let-go fenomén

150 mA po dobu 2 s práh pro komorové fibrilace

500 mA pod 0,2 s práh pro komorové fibrilace

Účinky napětí

500 V vnější vrstva kůže praská, vyšší vstup proudu do organismu

20 kV elektroporace (poškození buněčných membrán) při aplikaci vysokých napětí na úsek kůže; u dětí při 120 V a např. konci vodiče v ústech

Eplasty: Vol. 9 e.44, 2009

Page 10: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

relativní permitivita

sval

vodivost

tuk

frekvence (Hz)

Krev- obsahuje značné množství vody a iontů- jeden z nejlepších vodičů z biologických tkání

Sval (kosterní)- obsahuje 75% vody- jeho vodivost závisí na tocích iontů při kontrakci- nejlepší vodivost má v longitudinálním směru

Tuk- obsahuje 14% vody- velmi špatný vodič

Kůže- různý obsah vody - u savců považována za izolant- příprava kůže před aplikací stimulu

Svalová šlacha- obsahuje málo vody- velmi špatný vodič

Periferní nervy- vodivost 6x vyšší než u svalu- myelinové pochvy jsou velmi špatný vodič

Kost- obsahuje 5% vody- nejhorší vodič z biologických tkání

Srovnání některých tkání podle jejich vodivosti

0,2430,239-0,3320,3000,288100 kHz

0,2220,238-0,2560,2850,27610 kHz

0,1960,1950,2300,2540,21650 Hz

KrkNohaRuka TrupHlavaCelé těloFrekvence

Vodivost v S/m celého těla a některých jeho částí.

Page 11: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 12: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 13: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 14: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 15: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 16: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

rohovka

prsní tuk

krev

kost

Srovnání některých tkání podle jejich vodivosti

Page 17: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Rostlinné buňky vnímají svou polohu v tkáni a jsou schopny na základě vnějších podnětů (externích gradientů, zejména teploty, světelné intenzity, pH a gradientu elektrického potenciálu) tuto polohu vyhodnotit a případně změnit – např. přesměrovat růst jiným směrem. Model: buňky hnědých řas (Fucus sp., Pelvetia sp.) uvolňujících gamety bez buněčné stěny do moře.

Polarizace zygoty hnědé řasy (Fucus sp.)

Nepolarizovaná zygota

světlo

zastíněná půlka

plasmatická

membrána

jádro

polarizace

ztráta polarizace

zafixování polarizace

vtok Ca2+ via Ca2+ IKs

výtok Ca2+

tok iontů

pučící rhizoidaktinová filamenta

budování buněčné

stěny

dělení buňky

sekrece látek pro stavbu buněčné

stěny

Labilní osa polarizace Polarizovaná zygota Embryo

- gamety zprvu apolární, osa polarizace se formuje během několika hodin od oplodnění vlivem unilaterálního světelného podnětu- změnou směru osvětlení se může měnit i osa polarizace, fixuje se 10-14 hodin po oplodněn- vzniká polarizovaná jednobuněčná zygota s rhizoidním a stélkovým pólem- zygota se dále dělí a vznikají polarizované buňky: rhizoidní a stélková

Po osvitu zygoty se začnou na povrchu buňky redistribuovat Ca2+ IKs a buňkou začnou protékat transcelulární vápníkové proudy v řádu asi 100 pA. Tyto proudy mění i membránový potenciál a ovlivňují např. distribuci membránových proteinů či polarizaci aktinového cytoskeletu. V rostoucích rhizoidech Fucusů vzniká Ca2+ gradient v rozmezí 100 nM Ca2+ na bázi až 450 nM na vrcholku rhizodu.

Page 18: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Tento vápníkový gradient může být velmi důležitý pro skládání aktinových vláken nebo pro uvolňování transportních váčků vypučených z Golgiho aparátu.

Transportní váčky vypučené z Golgiho aparátu přenášejí součásti budoucí/tvořené buněčné stěny. Proto je třeba je zanést tam, kde tkáň roste. Směr transportu je určen gradientem vápenatých iontů.

Vlevo: pučící pylová zrnka různých rostlin vykazují gradient Ca2+, s nejvyšší koncentrací (asi 1 M) na růstovém vrcholku.

20 m

nižší vyšší

Ca2+ koncentrace

Lilium longiflorum

Nicotiana sylvestris

Tradescantia virginiana

Pučící pylová zrnka různých rostlin vykazují gradient Ca2+, s nejvyšší koncentrací (asi 1 M) na růstovém vrcholku (Fura 2).

Pokud zablokujeme tvorbu nových proteinů cykloheximidem, oddálíme vývoj rhizoidu, ale ne vznik a fixaci osy polarity embrya. Vznik polarity embrya není závislý na nových proteinech, ale na přeskupení proteinů už existujících.

(a) (b)

Transportní váčky oddělěné od Golgiho aparátu se hromadí na rhizoidním pólu zygoty (a) a v rhizoidní buňce embrya (b), ve směru růstu buňky (toluidinová modř).Aktinová filamenta jsou velmi dynamická a jejich tvorba z aktinových monomerů je vysoce regulovaná. Účastní se mj. transportu sekrečních váčků. Pokud zablokujeme tvorbu filament cytochalazinem B, nevznikne polarizace embrya a ustanou i transcelulární proudy.

Page 19: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Detekce nádorů v prsu pomocí mikrovlnného impedančního měření

Detekce nádorů v prsu pomocí mikrovlnných imepdančních měření se používá jako doplňková metoda k ultrazvuku, rentgenu (mammografii) či magnetické resonanci (MRI, magnetic resonance imaging). Mikrovlnné frekvence – 300 MHz až 30 GHz. Potenciálně dobře detekuje malé pevné nádory, je lacinější než např. MRI, detekuje jen nádory, ne benigní cysty a je citlivá.

Při mikrovlnných frekvencích lze interakci biologické tkáně s vybuzeným elektrickým (elektromagnetickým) polem popsat její celkovou permitivitou . Ta se skládá z dielektrické konstanty (“reálná“ složka) ´ a z tzv. faktoru ztrát ´´. Dielektrická konstanta určuje schopnost tkáně udržet energii elektrického pole, faktor ztrát nám říká, kolik z této energie se při expozici tkáně poli přemění v teplo a disipuje.

prsní tkáňvysílač

přijímače

prsní tkáň

nádor

vysílač

přijímače

Zdravá tkáň propouští mikrovlny úměrně své dielektrické konstantě. Ty jsou pak

zaznamenány přijímači.

Nádorová tkáň má jiné elektrické charakteristiky. Zatímco prsní tkáň propouští mikrovlny úměrně své dielektrické konstantě, od buněk nádoru se vlny částečně odrážejí a

jsou zachyceny anténou vysílače.

Page 20: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Modře, zeleně, bíle, fialově a žlutě jsou různé žlázy. 6 mm nádor je červená kulička. Zbytek prostoru je vyplněn prsním tukem. Vodivost tumoru byla 4 S/m, jeho dielektrická konstanta =50. Vodivost prsní tkáně byla 0,4 S/m, dielektrická konstanta =9. Tloušťka kůže byla 2mm, její vodivost 4 S/m a dielektrická konstanta =36.

Hemisférický model prsu o průměru 14 cm.bradavka

kůže

s nádorembez nádoru

čas (s)

Norm

aliz

ované n

apětíRozdílné odpovědi tkáně s nádorem a bez

nádoru.

Praxe: žena leží a má prsa ponořena v roztoku glycerinu ve vodě (tato směs má velmi malý faktor ztrát). Do nádrže s roztokem je umístěno 16 vysílačů s anténami, signály jsou měřeny 15 přijímači na 12 různých frekvencích celého užívaného pásma. Doba záznamu je asi 14 minut.

Page 21: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrické děje během dozrávání gamet a oplodnění

Gamety jsou buňky poměrně hojně vybavené iontovými kanály, schopné odpovídat na elektrické stimuly. Jako jeden z prvních studoval roli iontů ve fyziologii oocytu Edward Chambers (1946, role výměny Na+ a K+ během oplození ježovky). Na hvězdicích, ježovkách a žahavcích se také studovaly elektrofyziologické vlastnosti oocytární membrány.

Nezralé oocyty hvězdice exprimují 3 typy napěťově ovládaných IKs: dovnitř usměrňující Ca2+ IKs, rychlé přechodné K+ IKs a dovnitř usměrňující K+ IKs. Během dozrávání se mění amplitudy všech těchto proudů: vápníkový proud roste, oba proudy draslíkové se snižují. Klesá také vodivost membrány oocytu a dochází k lehké depolarizaci klidového membránového potenciálu (díky změnám ve vodivosti pro K+ a Na+).

Dozrávávní oocytární membrány

Výbava iontovými kanály v membráně oocytu se liší druhově: Boltenia vilosa je „osázena“ dovnitř usměrňujícími přechodnými Na+ IKs, dovnitř usměrňujícími přechodnými Ca2+ IKs a dovnitř usměrňující K+ IKs. U žab dominují u nezralých oocytů K+ a Cl- proudy, během dozrávání jsou nahrazeny Na+ proudy.

U savců není měření oocytárních proudů nezralého oocytu snadné, nebot oocyt je obalen buňkami tvořícími tzv. cumullus oophorus. Tyto dvě „funkční jednotky“ se spontánně oddělí po dozrání oocytu. Umělé odstraněné cumulus oophorus může vést k různým artefaktům. Buňky cumullu a oocytu mají různý membránový potenciál, ačkoliv je cumullus s oocytem spojen vodivě pomocí gap junctions. Takto je asi oocyt udržován v rané fázi meiosy – jeho membrána je lehce hyperpolarizovaná (oproti cumullu). Působení gonadotropinů na buňky cumullu navodí depolarizaci membrány oocytu a jeho dozrání.

Page 22: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

L-typ Ca2+ IKs

K+ IKs

Ca2+ - aktivované K+ IKs

Cl- IKs

out

out

in

in

dozrávání oplození

chemotaxe

akrosomální reakce

Ca2+

Během rané fáze meiosy dominuje vliv K+ a Ca2+ IKs L-typu, který klesá během metafáze II. Po oplození spermie navodí uvolnění Ca2+ z intracelulárních rezervoárů, což aktivuje K+ IKs. Otevírají se i vápníkové kanály, vápník vtéká do buňky, membrána se depolarizuje.

Plasmatická membrána bovinního oocytu během dozrávání a oplození.

I membrána spermií doznává během chemotaktického pohybu a akrosomální reakce změn. Akrosomální reakce (AR) je děj regulovaný iontovými kanály: vtok Ca2+ je zásadním požadavkem pro AR u všech živočišných druhů. Zvyšuje se také pH (výtok H+ a výměna H+/Na+). Na hlavičce spermie jsou také 4 typy Cl- IKs s různou vodivostí; eflux chloridů je zřejmě navozen progesteronem.

Page 23: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Prvním (a velmi univerzálním) krokem je spermií navozené uvolnění vápníkových zásob v oocytu (možná zprostředkované aktivací fosfolipasy C při kontaktu oocyt-spermie). Následných procesů vápníkové signalizace v oocytu se účastní řada dalších receptorů (RyR aj.). Spermie navodí na membráně oocytu krátkodobou potenciálovou změnu nazývanou fertilizační potenciál. Proud zodpovědný za tento potenciál je u savců veden iontově-nespecifickými kanály o vodivosti cca 70pS, dále Na+ a Ca+ IKs.

Depolarizační krok (šipka) v momentu oplození ježovčích oocytů, následovaný fertilizačním potenciálem. Dale et al., 1978)

Typy IKs zapojených do aktivace spermie a oocytu a změn membránového potenciálu. Všimněte se, že u obratlovců jde výhradně o hyperpolarizační projevy. RP = klidový membránový potenciál.

Oplození je vysoce specifický proces zahrnující rozpoznání gamet navzájem, jejich navázání a fúzi. Klíčovým momentem je reciproká aktivace těchto gamet.

Page 24: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrické orgány ryb - elektroplaky

Vznikly z modifikovaných svalových vláken. Jsou inervovány cholinergně. Jejich nervosvalová spojení jsou mnohem větší a početnější než u vláken kosterní svaloviny. Postsynaptické membrány jsou hustě osázeny acetylcholinovými Rs nikotinického typu (z jednoho elektroplaku parejnoka rodu Torpedo lze „vytěžit“ až miligramy purifikovaného receptoru!).

E-list postsynaptikcé membrány Torpeda připravený lámáním za mrazu. nAChRs jsou v řádcích. Úsečka = 0,1 m.

motorický neuron

elektroplak

-90 mV

-90 mV0 mV

Jedna stran ploché buňky plaku (= elektrocytu) je inervovaná, má vysoký elektrický odpor a značné množství nAChRs, Na+ a K+ IKs. Druhá strana takto vybavená není a odpor má nízký. Buněk může být v jednom plaku až 5000. Navzájem jsou propojeny elektrickými synapsemi (synchronizace!)

Na obou stranách plaku v

klidu je na membráně

potenciál asi – 90 mV.

Jednotlivé „články“ jsou spojeny do

série.Vzpomeňte si

na Voltův sloup!

Page 25: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

motorický neuron

elektroplak

-90 mV

-90 mV0 mV

motorický neuron

elektroplak

+40 mV

-90 mV130 mV

Na nervový podnět dojde k výlevu ACh a masivní depolarizaci vzrušivé strany plaku. Vznikne akční potenciál, dojde ke zvratu polarity a na inervované straně plaku je potenciálový rozdíl mezi vnějškem a vnitřkem membrány +40 mV. Druhá strana plaku je nevzrušivá a zachovává si potenciál –90 mV. Celý plak tedy vytvoří potenciálový rozdíl 130 mV.

Pokud je 5 000 elektroplaků spojeno do série a na každém je potenciálový rozdíl 130 mV, výsledný rozdíl napětí na pólech sloupce bude

5 000 x 0,130 = 650 V

Sladkovodní úhoř Electrophorus electricus může vyvinout až 800 V (i 650 V stačí na usmrcení člověka).

Page 26: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrické orgány se vyvinuly nezávisle přinejmenším v 6 různých skupinách ryb (rejnoci, parejnoci, Gymnotiformes, Mormyriformes aj.). U některých generují silné elektrické výboje (Torpedo sp., Gymnotus sp., Raja sp.), u jiných slabé. Pulsy slouží k např. elektrolokaci, rozpoznávání hrubého tvaru, vodivosti a lokace blízkých objektů, k rozpoznání jedinců téhož druhu, lákání partnera, obraně či lovu kořisti.

Morfologie elektrocytů se liší mezidruhově a souvisí s typem výbojů, který ryba generuje. Slabě elektrické ryby generují výboje o síle stovek milivoltů až jednotek voltů, silně elektrické ryby generují až stovky voltů. Slabě elektrické ryby generují výboje buď v nepravidelně se objevujících pulsech, nebo v pravidelných sinusových vlnách o frekvenci 50-1000 Hz.

Elektrocyty zástupce rodu Gymnotus mají asi 1 mm v průměru a jsou

cca 300 m tlusté. Produkují jen zlomky

voltů, což stačí k elektrolokaci.

Inervovány jsou podobně jako u

Torpeda.

Page 27: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrocyty (EL) zástupce rodu Eigenmannia sp.

D, dermis

A, ocasní ploutev

Šipkou je označena inervace motorickými nervy

Page 28: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška
Page 29: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Sternopygus macurus, 50-200 Hz

Slabě elektrické ryby se zřejmě v evoluci vydělily dvakrát. Jedna skupina žije v Africe (Mormyriformes), druhá v Jižní Americe (Gymnotiformes). Žijí v bahnitých vodách, kde jim elektrolokace nahrazuje do značné míry zrak. S výjimkou jediného zástupce samičky těchto druhů vydávají výboje o vyšší frekvenci než samci. Zdá se, že hormony ovlivňují také amplitudu výboje.

Eigenmannia virescens, 250-600 Hz

Apteronotus leptorhynchus, 650-1100 Hz

mozekelektrický orgán

receptorvýboj

Page 30: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Sexuální dimorfismus výboje u Hyppomus occidentalis.

Samci (A) jsou větší a mají delší tenčí ocas. Jejich výboj je asymetrický, neboť druhý výboj bifázického pulsu je delší než první.Samice (B) jsou kratší a jejich puls je kratší, symetrický.

Page 31: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Někteří zástupci mohou mít i dva či tři elektrické orgány, jako např. Electrophorus electricus.

Hlavní orgán a přední část Hunterova orgánu produkují vysokonapěťové výboje,zatímco Sachsův orgán a zbytek orgánu Hunterova výboje nízkonapěťové.

Hlavní orgánSachsův orgán

Hunterův orgán

Page 32: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Vnímání elektrického pole není doménou ryb; jsou jej schopny paryby (žraloci, rejnoci), některé kostnaté ryby (sumci), mloci, axolotli nebo např. i ptakopysci. Vnímají i velmi slabé elektrické pole: rejnok Raja clavata je schopen detekce 0,01-0,02 V/cm (hodnota produkovaná napětím monočlánku na vzdálenost asi 1 000 km). K vnímání intensity elektrického pole slouží ampulární orgány.

Ampulární orgány jsou složeny z kanálků o průměru asi 1 mm a délce 15-20 cm. Jsou distribuovány po těle živočicha a otevírají se přímo do (mořské) vody.

kinocilie

tight junction mikroklky

receptor

podpůrná buňka

synaptický hřebínek

bazální membrána

kanál

alveoly

vnitřek alveolu

nervová vláknakanálky

otvory

oko

kapsula

břišní strana

Page 33: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Žraloci a spol. žijící ve mořské vodě s vysokou koncentrací iontů mají nízký odpor kůže. Elektrické pole ve vodě tedy není příliš rušeno tělem živočicha. Stěny kanálků ampulárních orgánů mají odpor vyšší, uniká přes ně jen málo náboje. Pokud jsou kanál a vnější elektrické pole orientovány stejným směrem, lze intenzitu elektrického pole (V/cm) vypočítat jako součin délky kanálku a síly pole. Při konstantní intenzitě pole bude napěťový rozdíl dráždící receptor tím větší, čím delší bude kanál. Díky různé délce kanálků mohou např. rejnoci vnímat různé amplitudy v různých směrech a místech.

Tyto receptory se pravděpodobně vyvinuly z vláskových buněk postranní čáry. Jejich excitačním neuropřenašečem je zřejmě glutamát.

Struktura receptorů vnímajících změny v intenzitě elektrického pole je u sladkovodních ryb jednoduchá. Jde o prostý kanál otevřený do vody, na jehož „dně“ jsou receptorové buňky. Pokud je napětí vně ryby kladnější než uvnitř, tekou proudy dovnitř receptorových buněk přes luminální membránu a pak ven na membránu bazální.

lumen kanálu

receptorové buňky

luminální membrána

bazálnímembrána

Ta se depolarizuje, zvyšuje se

pravděpodobnost otevření Ca2+ IKs, do

přilehlé nervové buňky vstupuje vápník,

depolarizuje ji a navodí výlev neuropřenašeče

(receptor je sekundární). Ten depolarizuje

postsynaptické nervové vlákno a zvyšuje

frekvenci vzniku APs.

Page 34: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Ampulární receptory jsou tonické – pomalu se adaptují a reagují na relativně stálé změny v intenzitě okolního pole. Jiný typ receptorů slouží k elektrolokaci: tuberózními receptory (?, tuberous receptors. Tyto receptory reagují na pulsy vysílané rybou (generované elektrocyty).

mozekelektrický orgán

receptorvýboj

Tyto receptory nejsou spojeny kanálem s vnějším prostředím, ale jsou uzavřeny a odděleny vrstvou epiteliálních buněk. Mají různý počet receptorových buněk, jejichž membrána často ční do kanálku. U bází jsou spojeny těsnými spoji (tight junction). Nemají cílie, ale často jsou pokryty mikroklky. Jejich bazální membrána také obsahuje synaptické hřebínky a zpravidla k ní přiléhá jen jeden aferentní nerv.

Elektroloka(liza)ci popsal prvně H.W. Lissmann.

epidermis

epitelové buňky

lumen kanálku

receptorové buňky

nerv

Page 35: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Ampulární receptory jsou tonické – pomalu se adaptují a reagují na relativně stálé změny v intenzitě okolního pole. Tuberózní receptory slouží k elektrolokaci, receptory reagují na pulsy vysílané rybou (generované elektrocyty).

Rozsah sensitivit obou typů receptorů se liší. Obecně jsou citlivější ampulární receptory, rozkódují i nižší frekvence.

Page 36: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Elektrický orgán generuje výboj (podle orientace sloupce elektroplaku + nebo -). Proud opustí plak na jeho anteriorním konci a na konci posteriorním se vrací. To vytvoří kolem ryby 3D gradient napětí, který zvíře detekuje.

Page 37: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Napětí rychle klesá se vzdáleností a slouží k získání informace do vzdálenosti max. 1-2 délky těla ryby. Pokud je v blízkosti ryby izolant (kamínek aj.) nebo vodič (červ k snědku, rostlina aj.), dojde k narušení ekvipotenciálních ploch. Aby ryby nerušily toto pole vlastním pohybem, dochází u nich jen k vlnivým pohybům hřbetní ploutve.

izolant vodič

Page 38: Bioelektrické jevy a jejich měření 5. přednáška

Co si pamatovat z dnešní přednášky

- co je to tkáň- apolární a polární buňky- potenciály v poškozené a mechanicky namáhané tkáni- odpověď tkáně na průchod proudu- impedanční a vodivostní měření: srovnání tkání, detekce nádorů v tkáních- vývoj polarity rostlinných buněk (tkání)- elektrické jevy při dozrávání zárodečných buněk- ryby a jejich elektrické orgány (elektroplaky a receptory)