Trypanosoma cruzi Protozoo, hemoflagelado
Hospedadores
Intermediario: Triatoma infestans
Subfamilia: Triatominae
Taxonomía Familia: Reduvidae
Orden: Hemíptera
Definitivo: Hombre y animales domésticos y selváticos
Prevalencias
América Latina: Vías de transmisión
100 millones en riesgo vectorial
16 a 18 millones infectados transfusional
Argentina: vertical
2.300.000 infectados tx. órganos
accidental
CARGA SOCIAL
América Latina: 16 a 18 millones de infectados Cono Sur: 6.5 millones de infectados Mortalidad por año: 23.000 (Banco Mundial)
43.000 (OMS)
AÑOS DE VIDA PERDIDOS POR INCAPACIDAD (AVADS)
MAYOR CARGA DE ENFERMEDAD
Respiratorias AgudasDiarreasSidaEnfermedad de Chagas
OBJETIVO DEL PROGRAMA
TRATAMIENTO QUÍMICO CON INSECTICIDAS (MONODOSIS DE PIRETROIDES SINTÉTICOS CON ACCIÓN RESIDUAL) A TODAS LAS VIVIENDAS DE AREA ENDÉMICA.
INSTALACIÓN DE LA VIGILANCIA CON PARTICIPACIÓN COMUNITARIA MEDIANTE MÚLTIPLES EFECTORES.
DETECCIÓN DE INFECCIÓN CHAGÁSICA A TODOS LOS NIÑOS MENORES DE 15 AÑOS RESIDENTES EN AREAS DE VIGILANCIA.
ATENCIÓN MÉDICA Y TRATAMIENTO SUPERVISADO DE LOS INFECTADOS CHAGÁSICOS.
CONTROL DE LA MADRE CHAGÁSICA Y SU HIJO HASTA EL AÑO DE VIDA.
CONTROL DE BANCOS DE SANGRE Y DE LOS LABORATORIOS (CONTROL DE CALIDAD EXTERNO).
CONTROL DE DADORES Y RECEPTORES DE TRANSPLANTES DE ÓRGANOS.
7,2
20
1,33 1,42
9,2
1,2
0
2
4
6
8
10
12
14
16
18
20
PORCENTAJES%
ARGENTINA BOLIVIA BRASIL CHILE PARAGUAY URUGUAY
PAISES
PREVALENCIA EN POBLACION ADULTA, CONO SUR
PREVALENCIA DE INFECCIÓN POR TRIPANOSOMA CRUZI EN BANCOS DE SANGRE PÚBLICOS Y PRIVADOS ARGENTINA 2005-2007
AÑOS N° de Muestras que Controlan
N° de Muestras Reactivas
Prevalencia
%
2005 432481 13761 3.18
2006 425489 13266 3.12
2007* 386989 12403 3.21
*Falta Incorporar datos de Santa CruzFuente: Centro Nacional Red de Laboratorios ANLIS - Malbrán
Modalidad evolutiva de la Enfermedad de Chagas con respecto al umbral clínico
95 - 99 %
Evolución serológica y parasitológica en pacientes infectados por T. cruzi
Diagnóstico de la infección por Trypanosoma cruzi
Medidas de control de la endemiaMedidas de control de la endemia
Control y tratamiento de la enfermedad de Chagas (1)Control y tratamiento de la enfermedad de Chagas (1)
Transmisión vectorial vigilancia entomológica Transmisión vectorial vigilancia entomológica
Detección de la madre Chagásica y seguimiento del recién nacidoDetección de la madre Chagásica y seguimiento del recién nacido
Seguimiento serológico de los niñosSeguimiento serológico de los niños
Control obligado de la sangre donada para transfusionesControl obligado de la sangre donada para transfusiones
NORMAS PARA EL DIAGNOSTICO DELA INFECCION DE CHAGAS
Norm as de Diagnóstico parala Infección por T rypanosom a cruziResolución M inisteria l actualizada
N· 523/97
CENT RO DE REFERENCIA NACIONAL
INST IT UT O NACIONAL DE CHAG ASDR. M ARIO FAT ALA CHABEN
M INIST ERIO DE SALUD Y ACCION SOCIALLEY 22360
(1983)
Dupla Serológica
Métodos serológicos Métodos parasitológicos
Normas de Diagnóstico para la infección de Chagas
Chagas agudo X X
Transmisión materno - infantil
Antes de 6 meses X
Chagas asintomático crónico X
Control de los donantes de sangre y de la sangre a transfundir X
Detección de la Infecciónen pacientes inmunosuprimidos
• Dador X Receptor X X
• HIV X
Después de 6 meses X X
X
CHAGAS-HIV
Manifestaciones más graves y frecuentes en esta coinfección:1-Compromiso SNC
2-Afecciones cardíacas
Alta Morbimortalidad por reactivación de la infección chagásica favorecida por las diversas vías probables de contagio relacionadas con la “urbanización”
de la enfermedad debido a la migración desde zonas endémicas hacia las grandes ciudades en busca de mejores condiciones de vida
El seguimiento de estos pacientes debe hacerse con protocolo de monitoreo preestablecido utilizando métodos altamente sensibles que posibiliten la detección
temprana de una reactivación de la infección implementando el tratamiento específico en forma rápida, evitando así el compromiso del SNC
Métodos de Diagnóstico de LaboratorioMétodos de Diagnóstico de Laboratorio
Parásitos Parásitos AnticuerposAnticuerpos
MétodosInmunoserológicos
MétodosInmunoserológicos
Métodos Parasitológicos
Métodos Parasitológicos
Métodos parasitológicosMétodos parasitológicos
Demostración directa
de parásitos
Demostración directa
de parásitos
AmplificaciónAmplificaciónDemostraciónindirecta
de parásitos
Demostraciónindirecta
de parásitos
Métodos parasitológicosMétodos parasitológicos
Demostración directa de parásitos
Demostración directa de parásitos
S A N G R ES A N G R E T E J I D O S
•1. Biopsias de lesiones cutáneas
•2. Biopsias de ganglio linfático
•3.Necropsias
Gota Fresca Concentración
•Micrométodos de capilares
•Micrométodo del INP
•Strout
Tubo Eppendorf de 1,5 ml de capacidad
una gota de heparina + 0,5 ml de sangre venosa
mezclar por inversión
centrifugar 1 minutos a 3000 rpm
tomar un a gota de la interfase ( glóbulos blancos)
Colocar cubre objeto
NUEVO MICROMETODODE RISSIO AM, MAIDANA C, MARTIN GARCIA M Y RUIZ AM
Medicina Vol 59 Supl III - 1999
Leer al microscopio con 400 aumentos durante 30 minutos cada preparado.Se debe realizar cuatro preparado por paciente.
Trypomastigotes metacíclicos
CORRELACIÓN ENTRE LOS RESULTADOS OBTENIDOS POR EL MICROMÉTODO Y EL XENODIAGNÓSTICO
Micrométodo
Xenodiagnóstico
Positivo Negativo Total
Positivo 15 1 16
Negativo 0 383 383
Total 15 384 399
Concordancia entre ambos métodos: 99.7%Sensibilidad del Micrométodo: 94%Tasa de incidencia por Micrométodo: 3.8%Tasa de incidencia por Xenodiagnóstico: 4%
Strout
8-10 ml de sangre sin anticoagulanteDejar retraer el coágulo
Centrifugar 3 minutos a 160 G (800 rpm)
Centrifugar 5 minutos a 300-600 G (2000-2500 rpm)
Se observa el sedimento entre porta y cubreobjeto en microscopio con 400x
Métodos parasitológicosMétodos parasitológicos
AmplificaciónAmplificación
Sangre con Guanidina
PCR (Reacción en cadena por ADN polimerasa)
Demostración indirecta de parásitos
Demostración indirecta de parásitos
Enriquecimiento
HemocultivoS: 99.7% < 20%
XenodiagnósticoS: 100% 45-50%
Inoculación en animales sensibles
Reacción en Cadena por ADN Polimerasa
PCR en la Enfermedad de Chagas
Aplicación en Enfermedad de Chagas
Investigación a nivel molecular
Epidemiología: Identificación ycaracterización de cepas
Diagnóstico: • Monitoreo en tratamientos antiparasitario• Diagnóstico en pacientes inmunosuprimidos: SIDA, Transplantados y otros • Diagnóstico perinatal• Incrementar la sensibilidad de los métodos parasitológicos ya estandarizados
Reacción en Cadena por ADN Polimerasa
PCR en la Enfermedad de Chagas
Estado Actual de Desarrollo de la PCR permite:
Resultados rápidos
Define casos Dudosos
Confirma ausenciade infección
Expectativas
Cuantificación de la parasitemia (PCR Real time)
Pronóstico evolutivo de la infección por determinación directa de los clones infectantes
Métodos serológicos
TécnicasTécnicas
AglutinaciónAglutinación
EnsayoinmunoenzimáticoEnsayoinmunoenzimático InmunofluorescenciaIndirecta cuantitativaInmunofluorescenciaIndirecta cuantitativa
Aglutinación directa
Aglutinación pasivaAglutinación pasiva
HemoaglutinaciónIndirecta cuantitativa
gelatina
polimerizada
De partículasDe partículas
ANTIGENOS
REACCIONES DE AGLUTINACION:
• Suspensión de formas epimastigotes de cultivo de T. cruzi • Sobrenadante de un lisado crudo total de epimastigote de T. cruzi• Péptidos de la secuencia antigénica del T. cruzi
ENZIMOINMUNOENSAYO:
• Moléculas solubles obtenidas por ruptura de los parásitos enteros• Purificados por distintos medios (anticuerpos monoclonales, fracciones celulares)• Técnica de ADN recombinante a partir de proteínas específicas de los estadíos epimastigote y tripomastigote del T. cruzi
INMUNOFLUORESCENCIA:
• Epimastigote de cultivo axénicos tratados con formol
Partículas de gelatina
Ag de Trypanosoma cruzi inactivado
+ Ac Anti-T. cruzi AGLUTINACIÓN
Partículas Polimerizadas
Péptidos de la secuencia antigénica del T. cruzi
Reacciones Serológicas
Enzimoinmunoensayo Hemaglutinación Indirecta Inmunofluorescencia
Epimastigotes de Trypanosoma cruzi porInmunofluorescencia
Duplas serológicas
HAI-ELISA
HAI-IFI
ELISA-IFI
Sensibilidad: 99,8%
Inmunodiagnóstico - Criterio de elección(Duplas serológicas)
¨Screening¨ o ¨Descarte¨ Banco de sangre
Epidemiología
¨Confirmación¨
•Consulta clínica y/o cardiológica•Embarazadas•Grupo familiar•Banco de sangre•Politransfundidos•Preocupacionales•Migraciones•Donantes y receptor de órganos
¨Screening¨ o ¨Descarte¨
Control de los donantes de sangre y de la sangre a transfundir
-Todos los dadores de sangre deben ser estudiados serológicamente para Chagas.
-Cuando se obtengan resultados reactivos por 1 o 2 métodos de descarte se deberá desechar la bolsa de sangre.
-El Laboratorio que realice la selección o descarte de las muestras reactivas, debe derivar al dador encontrado reactivo al Laboratorio de Referencia para confirmar o descartar infección.
A aquellas reacciones que permiten identificar rápidamente los sueros reactivos y que ofrecen un margen de seguridad en la detección
Métodos: HAI y ELISA (Títulos de corte correspondientes para screening o descarte según indique el productor del reactivo)
Análisis de los Resultados del Inmunodiagnóstico
Pruebas Serológicas efectuadas: ELISA- HAI / ELISA-IFI / HAI-IFI
Resultados: Reactivo ( con títulos obtenidos) o No Reactivo
Interpretación de los Resultados: El Inmunodiagnóstico se considerará Reactivo cuando por lo menos dos pruebas serológicas son Reactivas.
Diagnóstico Referencial
n = 83507
Diagnóstico Referencial
n = 83507
Diagnóstico Referencial
n = 83507
Control de Calidad Informe de Resultados Totales país, 2006
24 Jurisdicciones del país, respondieron 23 Panel de 4 muestras de Suero Control liofilizado, 2 Reactivos (Alta y Baja reactividad) y 2 No Reactivos Instructivo Planilla para informe de resultados Se enviaron 506 Paneles de ControlSe recibieron 396 respuestas (78%)
Análisis de Resultados: Fueron agrupados por pruebas serológicaempleada (Aglutinación y ELISA para T. cruzi) sin diferenciar
marcas o lotes de equipos usados para las 4 muestras de control.Los resultados se expresan como N° de aciertos / N° de respuestas
Fuente: Dra. Estela N. Cura, Centro Nacional de Control de Calidad de Biológicos- ANLIS “Dr. Carlos G. Malbrán”
Resultados del Control de Calidad Externo de la Red de Chagas, período 2006.
Fuente: Dra. Estela N. Cura, Centro Nacional de Control de Calidad de Biológicos- ANLIS “Dr. Carlos G. Malbrán”
Resultados obtenidos con pruebas de Aglutinación (diferentes marcas y lotes), por el conjunto de los Laboratorios Participantes.
Muestra 1(Suero ControlNo Reactivo)
Muestra 2(Suero Control
Reactivo, alta reactividad)
Muestra 3(Suero Control
Reactivo,baja reactividad)
Muestra 4(Suero ControlNo Reactivo)
N° de Aciertos / N° de respuestas
355 / 386 387 / 388 379 / 388 378 / 387
Concordancia de resultados ( % )
92 100 98 98
Pruebas de Aglutinación para detección de T. cruzi Resultados del conjunto de Participantes
Concordancia de resultados (%) para cada muestra de control
0102030405060708090
100
Muestra 1 NoReactivo
Muestra 2 Reactivo (alta reactividad)
Muestra 3 Reactivo(baja reactividad)
Muestra 4 Noreactivo
Resultados del Control de Calidad Externo de la Red de Chagas, período 2006.
Fuente: Dra. Estela N. Cura, Centro Nacional de Control de Calidad de Biológicos- ANLIS “Dr. Carlos G. Malbrán”
Resultados obtenidos con pruebas de ELISA (diferentes marcas y lotes), por el conjunto de los Laboratorios Participantes.
Muestra 1(Suero ControlNo Reactivo)
Muestra 2(Suero Control
Reactivo, alta reactividad)
Muestra 3(Suero Control
Reactivo,baja reactividad)
Muestra 4(Suero ControlNo Reactivo)
N° de Aciertos / N° de respuestas
348 / 351 353 / 353 351 / 354 348 / 351
Concordancia de resultados ( % )
99 100 99 99
Pruebas de ELISA para detección de T. cruzi Resultados del conjunto de Participantes
Concordancia de resultados (%) para cada muestra de control
0102030405060708090
100
Muestra 1 NoReactivo
Muestra 2Reactivo (alta
reactividad)
Muestra 3 Reactivo (baja
reactividad)
Muestra 4 Noreactivo
Conclusiones
Con las pruebas de Aglutinación se encontró mayor proporción de Falsos Positivos para muestras No Reactivas (92 y 98%) que con pruebas de ELISA (99%).
Los Falsos Negativos hallados con el suero Reactivo con baja reactividad fue del 2% para pruebas de Aglutinación y del 1% para ELISA. Esto aporta justificación al empleo de la dupla serológica segúnNormas N° 523/97
Para pruebas de IFI y Aglutinación de Partículas de Gelatinatodos los participantes obtuvieron el 100% de aciertos con las 4 muestras.
Control de la Mujer Embarazada Infectada – Seguimiento del RN
Laboratorio Departamento de DIAGNOSTICOINP “Dr. Mario Fatala Chabén”
800 mujeres embarazadas( 50% Reactivas)
Chagas Congénito20 – 25 casos
Tasa de Incidencia6.3%
54% 46%
0
20
40
60
80
100
% M
ujer
es E
mba
raza
das
Reactiva No Reactiva
SEROLOGIA
PORCENTAJES DE CONFIRMACION DIAGNOSTICA PARA INFECCION POR T cruzi EN MUJERES EMBARAZADAS
PERIODO 2001-2005
n=1888n=1615
Total=3503
15% 17%22.5%
1.5%
44%
0
10
20
30
40
50
60
70
80
90
100
% M
ujer
es E
mba
raza
das
Rea
ctiv
as
NOA NEA CENTRO CUYO PAISESLIMI.
Regiones
PORCENTAJES de MUJERES EMBARAZADAS REACTIVAS POR REGIONES Y PAISES LIMITROFES. PERIODO: 2001-2005
Total: 1888/3503
5546 30
145
5 32
233
29 30 13 10
265
111
26 10 10 2 12
637
187
1 10
100
200
300
400
500
600
700
Nº E
mba
raza
das
Reac
tivas
Salta
Jujuy
Tucu
mán
Sgo.
del
Cata
marc
aFo
rmos
aCh
aco
Corri
ente
sMi
sione
sEn
tre R
íosCó
rdob
aBu
enos
CABA
Sant
a Fe
La R
ioja
San
Luis
San
Juan
Mend
oza
Boliv
iaPa
ragu
ay Chile
Bras
il
NOA NEA CENTRO CUYO Países Lim.
Procedencia
TOTAL DE MUJERES SEROREACTIVAS POR LUGAR DE PROCEDENCIA PERIODO: 2001-2005
Total: 1888/3503
505(68%)
291(39%)
214(28%)
234(32%)
46(6%)
0
100
200
300
400
500
600
N°
de E
mba
raza
das
Ser
orea
ctiv
as
RURAL URBANA
DISTRIBUCION DE MUJERES SEROREACTIVAS POR AREA RURAL - URBANA Y PAISES LIMITROFES
Periodo 2004-2005
Total
PaísesLimítrofes
Argentina
Total=739/1282
188 (26%)
49(6.6%)
319(43.2%)
371(50.2%)
0
50
100
150
200
250
300
350
400
Nº d
e E
mba
raza
das
Ser
orea
ctiv
as
1º 2º 3º
Trimestre de Gestación
DISTRIBUCION DE MUJERES EMBARAZADAS SEROREACTIVAS POR TRIMESTRE DE GESTACION (2004-2005)
Total: 739
65
11(17%)
66
11(16.6%)
67
14(21%) 4
0
184
31(17%)
0
20
40
60
80
100
120
140
160
180
200N
º de
Muj
eres
Em
b.
Infe
ctad
as M
últip
aras
NOA NEA CENTRO CUYO PAISES LIM.
Regiones
MUJERES EMBARAZADAS MULTIPARAS INFECTADAS POR T cruzi POR REGIONES. PORCENTAJES DE MADRES CON HIJOS ESTUDIADOS
AÑO: 2001-2005
Emb. Múltiparas Infectadas
Emb. Múlt. Inf. con Hijos Estudiados
Total Madres con Hijos Est.: 67/386 (17%)Total Madres con Hijos No Est.: 319/386 (83%)
Algoritmo del recién nacido, hijo de madre chagásica
1er control
10 - 20 días10 - 20 días
2do control
6 meses6 meses
3er control
12 meses12 meses
serológico
parasitológicoparasitológico Diagnósticode certeza
serológicoserológico
parasitológicoparasitológico Positivo Tratamiento
No reactiva
Reactiva (Tìtulos ≥ al titulo basal)
serológicoserológico
parasitológicoparasitológico
Positivo Tratamiento
DIAGNOSTICO DE LA INFECCION CONGENITA
• Detección de Ac IgM contra Trypanosoma cruzi madiante el uso de Ag recombinantes.
**LA IgM NO SIEMPRE SE DETECTA** CAUSAS:
• La infección es muy reciente o se produjo en el canal de parto
• La infección ocurrió tempranamente por Ej durante el primer trimestre
• Existe exceso de IgG materna, por lo tanto se suprime la síntesis de IgM específica.
• El bebe no tiene respuesta inmune normal
Por lo tanto:La falta de anticuerpos IgM contra Ag derivados de epimastigotes de T. Cruzi no excluye la posibilidad de infección
Año Total de niños estudiados
Total de niños
Detectados(+)
Tasa de incidencia
1994 180 12 6.7%
1995 337 17 5.0%
1996 418 18 4.3%
1997 436
24 5.5%
1998 410 21 5.1%
1999 466 36 7.7%
2000 421 29 6.4%
2001 422 29 6.9%
2002 440 29 6.6%
2003 442 25 5.4%
2004 383 27 5.8%
TOTAL 4355
267 6.1%
TRANSMISION VERTICAL - TASA DE INCIDENCIA PERIODO 1994-2004
TRANSMISION CONNATAL DISTRIBUCION DE POSITIVIDAD EN LA POBLACION
INFANTIL SEGUN LA EDAD EN EL PRIMER CONTROL
Edad Nº de Niños Porcentaje %
Hasta ≤ 1 Mes 149 56%
≥2 Meses y
≤5 Meses
68 25%
≥6 Meses y
≤12 Meses
53 19%
TOTAL 267 100%
INCIDENCIA DE PARASITEMIA POR TRYPANOSOMA CRUZI Y DE ANTICUERPOS ESPECÍFICOS EN NIÑOS ≥ 6 MESES Y ≤ 12
MESES QUE CONCURRIERON AL PRIMER CONTROL
Edad Parasitemia
(+)
Parasitemia
(-)Total Serología
Reactiva
Serología
No Reactiva
Serología
Discordante(aIFI+)
TOTAL
6 Meses 20 0 20 11 55% 6 30% 3 15% 20
7 Meses 16 0 16 8 50% 6 38% 2 12% 16
8 Meses 2 0 2 1 50% 1 50% 0 0% 2
9 Meses 7 1 8 4 50% 2 25% 2 25% 8
10Meses 3 0 3 3 100% 0 0% 0 0% 3
11Meses 3 1 4 4 50% 0 0% 1 25% 4
12Meses 14 2 16 15 94% 0 0% 1 6% 16
TOTAL 65 4 69 45 65% 14 21% 10 14% 69-100%
COMPORTAMIENTO DE LOS ANTICUERPOS ESPECIFICOS EN NIÑOS HIJOS DE MADRE CHAGASICA AL 6° MES SIN
TRANSMISION CONNATAL
AÑO N° NIÑOS ELISA/HAI ELISA/IFI HAI/IFI DISCORDANTE
2NR/1R
TOTAL
1999 240 0 1 0 10 11
2000 182 0 1 1 11 13
2001 200 0 0 0 12 12
2002 200 0 1 2 15 18
TOTAL 822
100%
0 3
0.4%
3
0.4%
48
5.8%
54
6.6%
• El Diagnóstico de infección chagásica en la embarazada es requisito previo para la sospecha de infección potencial del feto o del RN.
• La detección de la infección en el RN es de suma importancia para la implementación temprana y eficaz del tratamiento.
• Los métodos actuales, empleados para el Diagnóstico de certeza necesario para el tratamiento del bebé infectado pueden requerir hasta 9 meses.
CONCLUSION
Actualmente no existen procedimientos para prevenir ni predecir la transmisión del T. cruzi.
Propuesta:estudiar la generación de los mediadores que
regulan la respuesta inmune como preditores dea infección chagásica
Niveles de citoquinas en circulación
IL-10 incrementa en la no-embarazada Tc+ y en la embarazada Tc- (* p<0.05 , ANOVA de 2 factores). Los niveles de TNF tienden a aumentar por la infección.
IL-10
0
20
40
60
No Emb Tc- Emb Tc- No Emb Tc+ Emb Tc+
IL-1
0 (p
g/m
l) * *
0
10
20
30
No Emb Tc- Emb Tc- No Emb Tc+ Emb Tc+
IF
N-
(p
g/m
l)
IFN-γ
TNF
0
10
20
30
40
No Emb Tc- Emb Tc- No Emb Tc+ Emb Tc+
TN
F (p
g/m
l)
Niveles plasmáticos de citoquinas
TNF
0
15
30
45
60
TN
F (
pg
/ml) *
IL-10
0
15
30
45
60
IL-1
0 (
pg
/ml
)
IL-10
0
5
10
15
IL-1
0 (
pg
/ml)
Sin trans Con trans
Embarazadas infectadas
Tc- Tc+
Bebés
IFN-
0
5
10
15
20
IFN
- (p
g/m
l)
IFN-
0
3
6
9
12
IFN
- (
pg
/ml)
(* p<0.05, test t)
TNF
0
30
60
90
120
TN
F (
pg
/ml)
*
Liberación espontánea de citoquinas, por leucocitos de sangre periférica,
de madres con y sin transmisión de la infección
Los niveles de TNF fueron mayores en las madres sin transmisión
( * p<0.05, test t)
TNF
0
100
200
300
TN
F (
pg
/ml)
*
0
3
6
9
IFN
-(p
g/m
l)
IFN-γ IL-10
0
40
80
120
160
IL-1
0 (p
g/m
l)
Sin trans Con trans
Embarazadas infectadas
Sin trans Con trans
Embarazadas infectadas
Sin trans Con trans
Embarazadas infectadas
Niveles en circulación de citoquinas en bebés no infectados, hijos
de madres infectadas por T. cruzi.
IL-10
0
20
40
60
80
1 m 1 m 6 m 12 m
Bebé Tc+ Bebé Tc-
IL-1
0 (
pg
/ml)
*TNF
0
40
80
120
1 m 1 m 6 m 12 m
Bebé Tc+ Bebé Tc-
TNF
(pg/
ml)
*
( * p<0.05, test t)
Conclusiones
Los niveles circulantes de TNF fueron mayores en las mujeres que no transmitieron la infección que en aquellas que si lo hicieron
La liberación espontánea de TNF fue mayor en las madres de niños no infectados en comparación con las madres de niños infectados
Los hijos no infectados de madres infectadas presentaron mayores niveles plasmáticos de TNF que los infectados.
TNF
modulado por
IL-10
Perspectivas futuras
Evaluar la bioactividad del TNF Evaluar los niveles de los receptores sTNF-R1 y sTNF-R2
Evaluar la respuesta de los LP de los bebés en presencia
de Ag de T. cruzi
sTNF-R1 y sTNF-R2