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UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
TESINA DE GRADO PREVIO A LA OBTENCIÓN DEL TÍTULO DE
LICENCIADOS EN CIENCIAS DE LA SALUD MENCIÓN LABORATORIO
CLÍNICO E HISTOPATOLÓGICO
TÍTULO DE TESINA:
“IMPORTANCIA DE LA EVALUACION DE LA INTENSIDAD DE
REACCION MEDIANTE LA APLICACION DE LA TECNICA DE
HEMAGLUTINACION, PARA IDENTIFICAR GRUPOS Y SUBGRUPOS
SANGUINEOS DEL SITEMA ABO Y RH, EN MUESTRAS DE SANGRE DE
USUARIOS ATENDIDOS EN EL HOSPITAL DE LA BRIGADA BLINDADA
GALAPAGOS, DURANTE EL PERIODO FEBRERO - JULIO DEL AÑO
2012”
AUTORES:
Fulbio Adalberto Banegas Caraguay
Bélgica JaquelineGuamán Barahona
TUTOR
Lic. FERNANDO JARAMILLO
RIOBAMBA – ECUADOR2012
UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
TEMA
“IMPORTANCIA DE LA EVALUACION DE LA INTENSIDAD DE
REACCION MEDIANTE LA APLICACION DE LA TECNICA DE
HEMAGLUTINACION, PARA IDENTIFICAR GRUPOS Y SUBGRUPOS
SANGUINEOS DEL SITEMA ABO Y RH, EN MUESTRAS DE SANGRE DE
USUARIOS ATENDIDOS EN EL HOSPITAL DE LA BRIGADA BLINDADA
GALAPAGOS, DURANTE EL PERIODO FEBRERO - JULIO DEL AÑO
2012”
AUTORES
FulbioAdalberto Banegas Caraguay
Bélgica Jaqueline Guamán Barahona
TUTOR
Lic. FERNANDO JARAMILLO
RIOBAMBA – ECUADOR
UNIVERSIDAD NACIONAL DE CHIMBORAZO
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
Tesis de grado previo a la obtención del título de Licenciados presentado y
aprobado ante el tribunal conformado por:
………………… ………………….
PRESIDENTE CALIFICACION
……………….. .…………………
MIEMBRO CALIFICACION
……………….. …………………..
MIEMBRO CALIFICACION
NOTA:…………………………..
DERECHO DE AUTORIA
Nosotros Fulbio Banegas y Bélgica
Guamán nos hacemos responsables
de los párrafos, ideas, criterios y
datos concluyentes expuestos y
plasmados en le presente trabajo de
investigación y los derechos de
autoría son de expresa y única
pertenencia de la UNACH
AGRADECIMIENTO
Mi gratitud está dirigida a Dios por
haberme dado la existencia y haberme
permitido llegar al término de mi carrera,
mis Padres, Hermanas que hicieron las
veces en mi ausencia con mi Hija por
darme su apoyo incondicional.
Un reconocimiento a la Universidad,
docentes que me han acompañado durante
el proceso de mi formación como persona
y a la vez profesionalmente.
BELGICA J.GUAMAN B.
AGRADECIMIENTO
Mi gratitud esta dirigida a Dios por
haberme dado la existencia y permitido
llegar al final dela carrera. A mi Esposa
y mis hijos que siempre estuvieron con
un apoyo incondicional en el transcurso
de mi carrera. Y también agradezco a
esta gran Universidad los docentes que
me han acompañado durante el largo
camino brindando conocimientos y
afianzando mi formación.
FULBIO A. BANEGAS C.
DEDICATORIA
Es dedicado a Dios, A mi Esposa y mis
hijos. A Dios por brindarme la
oportunidad y la dicha de la vida, al
brindarnos los medios necesarios para
terminar mi carrera. A mi familia por
acompañarme durante todo el transcurso
de mis estudios dándome el apoyo y
fuerzas necesarias para culminar con
éxito la meta que me trace que al fin dio el
resultado esperado.
FULBIO BANEGAS
RESUMEN
El presente trabajo investigativo, valora la importancia de la interpretación de la intensidad de reacción de hemaglutinación en relación a la carga antigénica, cuando se interpretan los resultados de la tipificación sanguínea, dos sistemas de grupo sanguíneo son importantes: El sistema de grupo sanguíneo ABO y el Rh. Las estructuras de los grupos sanguíneos desde el punto de vista químico, derivan a las proteínas, y a los carbohidratos, estas combinaciones se heredan y se transmiten en combinación con las leyes de Mendel. Los aminoácidos son los que derivan la combinación genotípica para los grupos sanguíneos del sistema Rh, y las enzimas como en el caso de la glucosiltransferasa, coordina la combinación de los antígenos para el sistema ABO.La interpretación de los fenótipos mediante la prueba de tipificación se da en base a la distribución alélica, ubicada en un locus específico, existen diferentes métodos para valorar a los antígenos de los grupos sanguíneos, dentro de esta clasificación los métodos de interpretación son, el método directo el cuarto permite valorar la presencia o ausencia de los antígenos cuando éstos se enfrentan a los anticuerpos de tipo comercial, estos anticuerpos son de estructura IgM, el método inverso permite la evaluación de los anticuerpos correspondientes al sistema ABO, estas dos pruebas se las realiza para correlacionar la combinación antigénica y de anticuerpos séricos.Dentro de las técnicas para poder realizar la interpretación de los grupos son sanguíneos está la técnica de placa, tubo, micro placa y gelpara su ejecución el lavado de los hematíes y la suspensión en su fase Liss.
SUMMARY
This research paper assesses the importance of interpretation of the intensity
of hemagglutination reaction when interpreting the results of blood typing, two
blood group systems are important: The ABO blood group system and Rh.
The structures of the blood groups from the point of view chemical derived
proteins, and carbohydrates, these combinations are inherited and
transmitted in combination with the laws of Mendel. Amino acids are those
which derive the genotype combination for Rh blood group system, and
enzymes as in the case of glucosyltransferase, coordinate the combination of
antigens for the ABO system.
The interpretation of phenotypes through typing test is given based on the
allelic distribution, located at a specific locus, different methods and
techniques to assess the blood group antigens, in this classification are the
methods of interpretation, The fourth direct method allows to assess the
presence or absence of antigens when they are facing the commercial type
antibodies, these antibodies are IgM structure, the inverse method allows
evaluation of the antibody for the ABO system, these two tests performed to
correlate the combination of antigen and serum antibodies.
Among the techniques to make the interpretation of blood groups are is the
technique of plate, tube and micro plate gel, each of these techniques has
advantages and disadvantages, the most common and has proven to be
effective for classifying and identifying groups is the sub-tube technique, it
requires to execute the washing of red cells and the suspension, in order to
remove antibodies that interfere with the reaction and capture the higher or
lower antigenic load having a particular blood group.
INDICE
INTRODUCCIÓN……………………………………………………………….…......................... 1
CAPITULO I
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA………………………............................................. 3
1.2 FORMULACIÓNDELPROBLEMA……………………………………………....................... 3
1.3 OBJETIVOS
1.3.1 OBJETIVO GENERAL………………………………………………....…….....………......... 4
1.3.2 OBJETIVOS ESPECIFÍCOS……………………………………………………………...... 4
1.4 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA............................................................................ 5
CAPITULO II
2. MARCOTEÓRICO ………………………………………………………………….............. 7
2.1 ANTECEDENTES DE LA INVESTIGACIÓN………………………………………………... 7
2.2 FUNDAMENTACION TEÓRICA…………………………………………………………....... 7
2.2.1 ANTÍGENOS…………………………………………………………………………………… 7
2.2.1.1 FACTORES DE LA ANTIGENECIDAD…………………………………………………… 8
2.2.1.2 CARACTEÍSTICAS DE LOS ANTÍGENOS…………………………………….…........ 12
2.2.1.3 CLASE DE ANTÍGENOS...................................................................................... 14
2.2.1.4 TIPO DE INMUNÓGENOS……………………………………………………………….. 15
2.2.2 ANTICUERPOS...................................................................................................... 19
2.2.2.1VARIACIONES ESTRUCTURALES DE LOS ANTICUERPOS………………………... 23
2.2.2.2 CLASES DE INMUNOGLOBULINAS……………………………………………………... 25
2.2.2.3 CLASIFICACIÓN DE LOS ANTICUERPOS…………………………………………….. 31
2.2.2.4 REACCIÓN ANTÍGENO-ANTICUERPO………………………………………………… 33
2.2.2.5 PRINCIPIOS QUE RIGE LA REACCIÓN ANTÍGENO - ANTICUERPO……………… 37
2.2.3 SISTEMAS DE GRUPOS SANGUÍNEOS………………………………………................. 38
2.2.3.1 SISTEMA SANGUÍNEO ABO ……………………………………………………………... 41
2.2.3.2 ORIGEN DE LOS ANTÍGENOS DEL SISTEMA ABO…………………………………... 42
2.2.3.3 ANTICUERPOS ANTI-A Y ANTI-B……………………………………………………….. 46
2.2.3.4 SUB GRUPOS DE “A” ……………. 48
2.2.3.5 MÉTODOS DE DETERMINACIÓN DEL SISTEMA ABO …………………………….... 50
2.2.3.6 SISTEMA DE GRUPO SANGUÍNEO Rh………………………………………………..... 60
2.2.3.6 MÉTODOS DE DETERMINACIÓN……………………………………………………..... 68
2.2.4 CONTROL DE CALIDAD……………………………………………………………………. 72
2.3 DEFINICIÓN DE TÉRMINOS BÁSICOS…………………………………………………...... 76
2.4 HIPÓTESIS Y VARIABLES……………………………………………................................ 80
2.4.1 HIPÓTESIS:…………………………………………………………..................................... 80
2.4.2 VARIABLES ……………………………………………………………............................... 80
2.5 OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES…………………………………………………………. 81
CAPITULO III
3. MARCO METODOLÓGICO
3.1 MÉTODO…………………………………………………………………………………………
82
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA …………………………………………………………………. 83
3.3 TÉCNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCIÓN DE DATOS…………………….. 83
3.4 TÉCNICAS PARA EL ANÁLISIS E INTERPRETACIÓN DE RESULTADOS …………… 84
CAPITULO IV
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES
4.1 CONCLUSIONES………………………………………………………………………………...
4.2 RECOMENDACIONES……………………………………………………………………….
4.3 BIBLIOGRAFÍA…………………………………………………………………………………...
ANEXOS…………………………………………………………………………………………… 97
98
100
95
97 98 100
92 94 95 97
INDICE DE FIGURAS
Figura n.-1 ……………………………………………………………………. 8
Figura n.-2 ………………………………………………………………… 10
Figura n.-3 ………………………………………………………………… 11
Figura n.-4 …………………………………………………………………. 12
Figura n.-5 …………………………………………………………………. 18
Figura n.-6 …………………………………………………………………. 20
Figura n.-7 …………………………………………………………………. 21
Figura n.-8 …………………………………………………………………. 22
Figura n.-9 …………………………………………………………………. 23
Figura n.-10 ………………………………………………………………… 25
Figura n.-11 ………………………………………………………………. 27
Figura n.-12 ………………………………………………………………… 28
Figura n.-13 ………………………………………………………………. 29
Figura n.-14 ………………………………………………………………… 30
Figura n.-15 ………………………………………………………………. 35
Figura n.-16 ……………………………………………………………… 36
Figura n.-17 ……………………………………………………………. 35
Figura n.-18 ……………………………………………………………… 50
Figura n.-19 ……………………………………………………………. 51
Figura n.-20 ……………………………………………………………… 55
Figura n.-21 ……………………………………………………………… 68
Figura n.-22 ……………………………………………… …………… 69
Figura n.-24 ………………………………………………………………… 72
Figura n.-25 ………………………………………… ………………… 73
ÍNDICE DE CUADROS
Cuadro n.-1………………………………………………………………….. 31
Cuadro n.-2………………………………………………………………….. 41
Cuadro n.-3………………………………………………………………….. 42
Cuadro n.-4………………………………………………………………….. 43
Cuadro n.-5………………………………………………………………….. 44
Cuadro n.-6………………………………………………………………….. 45
Cuadro n.-7…………………………………………………………………… 47
Cuadro n.-8………………………………………………………………….. 48
Cuadro n.-9…………………………………………………………………… 51
Cuadro n.-10………………………………………………………………….. 57
Cuadro n.-11……………………………………………………………………58
Cuadro n.-12………………………………………………………………….. 62
Cuadro n.-13………………………………………………………………….. 65
Cuadro n.-14………………………………………………………………….. 66
Cuadro n.-15………………………………………………………………….. 62
ÍNDICE DE TABLAS
Tabla: n.- 1……………………………………………………..…………….. 85
Tabla: n.- 2………………………………………………………….………….86
Tabla: n.- 3………………………………………………………………..…….87
Tabla: n.- 4…………………………………………………………………….88
Tabla: n.- 5…………………………………………………………..……….90
ÍNDICE DE GRÁFICAS
Gráfica: N.- 1……………………………………………………………….. .85 Gráfica: N.- 2……………………………………………………………….. .87 Gráfica: N.- 3……………………………………………………………….. .88 Gráfica: N.- 4……………………………………………………………... ....89 Gráfica: N.- 5……………………………………………………………... …90
INTRODUCCIÓN
La valoración de los antígenos de los grupos sanguíneos, se los hace en
base a la llamada reacción de hemaglutinación, en la cual participa dos
elementos de suma importancia, que son los antígenos y los anticuerpos.
Los antígenos o llamados aglutinógenos, están presentes en la
membrana eritrocitaria y los anticuerpos o llamados aglutininas están
presentes en los reactivos. Los sistemas de grupos sanguíneos de mayor
relevancia clínica es el sistema ABO y el sistema Rh.
Existen diversas técnicas y métodos para la evaluación de estos
antígenos, el más utilizado es el método directo con la técnica de tubo,
este permite apreciar de mejor manera la intensidad de la reacción
cuando participan los elementos denominados aglutinógenos y
aglutininas,
Por el poder aglutinante se puede identificar los subgrupos sanguíneos
de estos sistemas, los mismos que tienen un gran interés en la práctica
transfusional, asegurando la no presentación de las llamadas reacciones
transfusionales.
Se le denomina reacción de hemaglutinación, porque aquí participa las
llamadas partículas vitales que son los hematíes, mismos que se unirán
con los anticuerpos comerciales, que están representados por los
reactivos utilizados en la tipificaciónsanguínea.
A mayor intensidad de reacción, se refleja la carga antigénica y a menor
reacción menor carga antigénica, a la cual se le relaciona con subgrupos
por poseer en la membrana de los hematíes poca carga antigénica.
Para la prueba de tipificaciónsanguínea, que se utilizara para valorar
grupos y subgrupos, es necesario trabajar, con la preparación de los
hematíes, con el lavado y suspensión de los glóbulos rojos.
Se emplea solución salina, a una concentraciónisotónica que es de 0,9%,
esta solución no altera la forma ni la estructura de los hematíes, mantiene
integra la estructura de los antígenos para ser valorada su intensidad en
la reacción.
El objetivo de los lavados de los hematíes, es liberar de partículas o
elementos que afecten la reacción de hemaglutinación, es importante
controlar el tiempo y velocidad de centrifugación ya que esto contribuye a
una buena interpretación de los resultados.
Los registros de los resultados, se lo hará en base al tipo de antígeno que
puede estar presente, en los sistemas ABO y Rh, el de mayor
complejidadantigénica es el Rh, por poseer cinco antígenos que son el D,
C, E c, e.
Los escritos con letras mayúsculas se les denomina antígenos mayores y
los representados con minúscula son los llamados menores, todos los
antígenos suelen estar presentes en los hematíes, esto se da en base a la
variacióngenética.
En el sistema ABO se combina los antígenos A y B, mismos que son
responsables de los grupos sanguíneos A, B, AB y O. Pero en el grupo
sanguíneo A se presenta variación de concentraciónantigénica, lo que ha
permitido clasificarlo como subgrupos, y su complejidad aumenta cuando
los subgrupos del antígeno A se combina con el antígeno B.
CAPITULO I
1.- PROBLEMATIZACIÓN
1.1 PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La identificación de los subgrupossanguíneos, tiene vital importancia en la
práctica transfusional, esta evaluación forma parte de las llamadas
pruebas de compatibilidad cuya meta es evitar las reacciones
Transfusionales inmediatas y tardías.
La variedad de métodos y técnicas son múltiples, avancestecnológicos
han permitido mejorar la calidad de los resultados, hay variación que van
desde costos y complejidad.
La técnica utilizada con mayor frecuencia es la de placa, pero esta
representa unalimitación debido a que aprecia de manera cuantitativa la
concentraciónantigénica interpretada por el poder aglutinante.
Utilizar la técnica de tubo, la cual requiere preparación de hematíes con el
empleo de soluciónsalinaisotónica con suspensión de hematíes, logra de
mejor manera la evaluaciónantigénica.
1.2 FORMULACIÓN DEL PROBLEMA.
¿Qué importancia de la evaluación de la intensidad de reacción mediante
la aplicación de la técnica de hemaglutinación, para identificar grupos y
Subgrupossanguíneos del sistema ABO y Rh, en muestras de sangre de
usuarios atendidos en el Hospital de la Brigada Blindada Galápagos,
durante el periodo Febrero a Julio del año2012.?
1.3 OBJETIVOS
1.3.1 OBJETIVO GENERAL
Evaluar la intensidad de reacción mediante la técnica de hemaglutinación
para identificar grupos y subgrupos sanguíneos del sistema ABO y Rh, en
muestras de sangre de usuarios atendidos en el Hospital de la Brigada
Blindada Galápagos, durante el periodo Febrero – Julio del año 2012.
1.3.2 OBJETIVOS ESPECÍFICOS
Diferenciar los sistemas de grupo sanguíneo ABO y Rh mediante su
composición antigénica.
Emplear técnicas y métodos de evaluación de los grupos sanguíneos
para valorar la carga antigénica mediante la reacción de
hemaglutinación.
Relacionar el resultado de la reacción de hemaglutinación con la carga
antigénica y los subgrupossanguíneos.
Valorar causas para interpretaciónde falsos positivos y negativos en
los resultados.
1.4 JUSTIFICACIÓN E IMPORTANCIA
El desarrollo del presente trabajo investigativo, está basado en la
determinación de los grupos sanguíneos del sistema ABO y Rh, dos
sistemas de alto interés clínico en la terapia transfusional y clasificación
sanguínea, con la finalidad de investigar anticuerpos presentes en una
posible reacción antígeno y anticuerpo.
Tipificar sangre no solo contempla clasificar a la sangre en los conocidos
grupos o fenótipos sanguíneos, esto contempla valorar también la carga
antigénica, es decir la concentración de elementos presentes en la
membrana de los grupos sanguíneos, que le permiten a la sangre
adaptarse con facilidad evitando la reacción minina de incompatibilidad
cuando se habla de una transfusión sea de sangre o derivados.
Una de las técnicas tradicionales y que aún se mantienen en algunos
laboratorios es el de la tipificación es placa, esta técnica tienen
limitaciones, que van desde la no apreciación de la carga antigénica, es
decir no permite valorar de manera cuantifica la reacción, de
hemaglutinación, su poco tiempo de estabilidad, en la apreciación de la
reacción, limitándoseasí a que su lectura sea realizada en el menor
tiempo posible.
Se suele utilizar sangre total, en la técnica de placa, solo los hematíes son
de utilidad en la tipificaciónsanguínea, el resto de elementos figurados y
no de la sangre, podrían representar interferencias en el momento de la
reacción.
Como sangre total, se estructura de suero o plasma, aquí se encuentran
los anticuerpos, elementos que también son factores que podrían altera la
eficacia de los resultados, los lavados de hematíes eliminan estos
elementos para apreciar de mejorar manera la reacción esperada.
Se encuentran elementos que también son factores que pueden causar
interferencia en la eficacia de los resultados, los lavados de hematies
siendo que eliminan a su vez los residuos quedando la parte realmente
importante, son de gran importancia puesto que es la clave para de esta
manera generar un resultado exacto y confiable evitando posibles
confusiones al interpretar su resultado.
Puede ser una causa de valor falso positivo o a su vez negativos cuando
los parámetros de la técnica no sean bien seguidas paso a paso, pueden
haber otras sustancias interferentes externas como un reactivo en mal
estado, contaminado, expedida su fecha de caducidad, deteriorado por la
exposición a la Luz, u otros factores que pueden dar su positividad,
determinada su causa se recomienda su repetición del proceso para su
confirmación de dicha manera otorgar un resultado de alta calidad y
buena confiabilidad.
CAPITULO II
2. MARCOTEÒRICO
2.1 ANTECEDENTES DE LA INVESTIGACIÓN
Luego de hacer una indagación minuciosa en las bibliotecas de la
Universidad Nacional de Chimborazo; se ha llegado a la conclusión de
que no existe un trabajo igual o similar al planteado.
POSICIONAMIENTO PERSONAL
La teoría del conocimiento o creencia con la que vamos a trabajar la
presente investigación que se elabora, es partiendo del conocimiento del
pragmatismo ya que nunca se puede separar la teoría de la práctica.
2.2 FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
2.2.1 ANTÍGENOS
El sistema inmune, permite al organismo defenderse de agentes externos
y componentes propios alterados que podrían ser peligrosos, el término
inmune deriva del latín " exento" y la meta de la inmunidad es permanecer
libre de invasiones extrañas.
A menudo las defensas inmunológicas se clasifican en dos categorías
innatas y adaptativas (adquiridas). Las innatas son inespecíficas;
ante cualquier estímulo invasor o nocivo se despliegan los mismos
mecanismos, en las adaptativas se registran reconocimiento de
características específicas, seguido de reacciones que varían de acuerdo
con las experiencias previstas del huésped, la inmunidad innata por su
parte resulta de propiedades y procesos casi universales como son las
barreras epiteliales, las enzimas proteolíticas, la fagocitosis celular y las
reacciones de inflamación.
Las respuestas adaptativas a sustancias extrañas o nocivas potenciales
obligan a reconocer los agentes específicos.
Las respuestas inmunológicas pueden clasificarse en dos grandes
grupos, la inmunidad humoral y la inmunidad celular, existen dos
poblaciones de linfocitos en la cual se describe la presencia de antígenos
o componentes extraños y la producción de los anticuerpos.
2.2.1.1FACTORES DE ANTIGENECIDAD.
Existen varios factores que determinan el poder antigénico de una
molécula, entre ellos está su naturaleza química, tamaño, complejidad,
conformación y accesibilidad, así como su calidad de extraño.
Figura N.-1 Título:unión antígeno-anticuerpo.
Fuente: Reacción de los Ac sobre Ag nativo Fausto Rubio Campal
EPÍTOPES DE LINFOCITOS B.
Los linfocitos B reconocen epítopes sobre el antígeno nativo (en su
estructura tridimensional natural) y esto es importante para que los
anticuerpos se encuentren en el líquido extracelular para reaccionar con
el antígeno.Es mejor un antígeno cuando éste es una molécula grande a
diferencia de una molécula pequeña, cuando su estructura no se asemeja
a las otras moléculas propias del organismo que induzcan tolerancia a la
calidad del extraño.
También sea visto que las proteínas son mejores antígenos que los
polisacáridos y los glucolípidos, debido a la variación en la secuencia de
aminoácidos, las partes de la estructura peptídica, que sobresale de la
superficie globular tienden a poseer alta densidad de epítope.
Ya que facilitan el acceso y la unión del anticuerpo, del mismo modo,
presenta una cierta flexibilidad en una estructura de estas cadenas
peptídicas, facilitando la asociación con el anticuerpo
EPÍTOPES DE LINFOCITOS T.
Figura N.-2
Título: Reacción de los Ac sobre Ag nativo Fuente: Fausto Rubio Campal
Los linfocitos T CD4 (helper) necesitan que el antígeno vaya asociado a
una molécula de clase II del complejo principal de histocompatibilidad
(MHC), mientras que los linfocitos TCD (citotoxico/supresor) necesitan
una molécula de clase I en la superficie celular para presentación del
antígeno.
A diferencia de los linfocitos B el receptor de los linfocitos T (TCR) no
reconoce al antígeno nativo, sino que necesita un procesamiento previo
en la célula presentadora de antígeno (APC) para transformarlo en un
péptido lineal.
El TCR reconoce al péptido antigénico sobre la superficie de la APC
asociado a una molécula de clase I y II del MHC. Actualmente se cree que
los antígenos proteínicos solubles exógenos son captados por endocitosis
por las APC y que, dentro del endosoma, sufren una desnaturalización de
su estructura y una proteólisis limitada, antes de fusionarse como una
vesícula que contiene molécula del MHC clase II Y retornar a la superficie
para ser presentado al TCR.
Figura N.-3 Título: Reacción de los Ac sobre Ag nativo
Fuente: Fausto Rubio Campal
Los antígenos endógenos, pueden ser proteínas virales sintetizadas en el
interior celular, son degradadas por vías citoplasmáticas, donde
intervienen unas proteasas ligadas a la molécula para fusionarse después
con moléculas del MHC de clase I y salir a la superficie para su
reconocimiento por el TCR.
Se sabe que los epítopes de los linfocitos T son péptidos lineales de 9 a
15 aminoácidos de largo, pero aún no se reconoce con exactitud cuáles
son las secuencias que presentan mayor probabilidad de convertirse en
epitope.1
2.2.1.2 CARACTERISTICAS DE LOS ANTÍGENOS.
1Inmunología aplicada a la Hematología, Faustino Rubio Campal
Figura N.-4 Título: Característica Antigénica
Fuente: William Rojas
INMUNOGENICIDAD Y CANTIDAD DEL INMUNÓGENO.
La producción de una adecuada respuesta inmune, requiere de una
determinada concentración del antígeno, muy pequeñas cantidades o
grandes cantidades del mismo, pueden alterar la respuesta.
Pequeñas dosis inoculadas repetidamente puede inducir a una tolerancia
la producción interna de grandes cantidades de un antígeno puede dar
lugar a la llamada parálisis inmunológica.
ORIGEN
El poder de un antígeno para inducir una respuesta inmune es tanto
mayor cuanto más extraño sea para el organismo en el cual penetra, una
proteína incapaz de producir una respuesta inmune en un animal de la
misma especie puede ser potente imagen cuando se inyecta en otra
especie animal.
COMPLEJIDAD DE LA MOLÉCULA.
Mientras más compleja sea la molécula inmune, mayor será su capacidad
de inducir una respuesta inmune, los poli péptidos lineales son más
débiles como antígenos que los poli péptidos de igual peso molecular
pero ramificados en cadenas.
TAMAÑO DE LAS MOLÉCULAS.
Las moléculas de peso inferior a 5000 unidades Dalton rara vez son
inmunogénicas, salvo donde están unidos a una proteína portadora, en
cambio las moléculas de 100.000 unidades Dalton suelen ser potentes
antígenos así por ejemplo las células extrañas para el organismo como
gérmenes, bacterias, hongos, virus y parásitos tienen gran potencial
inmunogénico.
GRUPOS QUÍMICOS.
Ciertos grupos de determinaciones químicas contienen mayor capacidad
antigénica a una molécula, las terminaciones ácidas o básicas fuertes, los
aminoácidos incrementan la respuesta inmune.
CARGA ELÉCTRICA
Las moléculas cargadas eléctricamente suelen tener mayor poder
inmunogénico que las cargadas de manera neutra.
2.2.1.3 CLASES DE ANTÍGENOS
PROTEÍNAS.
Las proteínas con un peso molecular de más de 6000 unidades Dalton
son por lo general buenos inmunógenos siempre y cuando sean
introducidos en animales de distinta especie, algunos Aloantígenos bajo
determinadas circunstancias.
Pueden producir una respuesta inmune en individuos de la misma
especie, la modificación de las proteínas propias del organismo, por
infecciones virales y por agentes físicos o químicos, adquieren gran
importancia desde el punto de vista de la inmunogenicidad.
POLISACÁRIDOS.
De ser en la capacidad antigénica que varía de especie a especie la
variabilidad antigénica de proteínas se genera por combinaciones lineales
entre los 20 diferentes aminoácidos, esta variabilidad es superada por los
carbohidratos que dada su capacidad de formar cadenas laterales,
incrementan su diversidad.
LIPOPOLISACÁRIDOS.
Complejos propios de la endo- toxina de gérmenes gran negativos así
como de la enteró bacterias (shigella, salmonellas) inducen a la
producción de anticuerpos de tipo M.
GLUCOPROTEÍNAS.
Son moléculas cuya capacidad antigénica está dado por las cadenas de
carbohidratos, las más conocidas son los antígenos de los grupos
sanguíneos A y B el organismo humano produce espontáneamente
anticuerpos contra algunos de estos antígenos responsables de las
lesiones transfusionales de sangre mal tipificadas.
ACIDOS NÚCLEICOS.
Son pobres como inmunógenos desde el punto de vista experimental es
difícil lograr la obtención de anticuerpos contra ácidos nucleicos, sin
embargo en enfermedades como el lupus eritematoso sistémico se
producen ahí anticuerpos contra los ácidosnúcleicos.
2.2.1.4 TIPOS DE INMUNÒGENOS.
XENOANTÍGENOS.
Se llama así a los inmunógenos que se originan en una especie diferente
la inmunizada.
HALOANTÍGENOS.
Son los que provienen de un individuo de la misma especie pero
diferentes genéticamente.
AUTOANTÍGENOS.
Está presente en las células del mismo individuo, contra el cual se han
desarrollado anticuerpos o clones de células T inmunológicamente
activas, el organismo adquiere durante la vida fetal y las primeras
semanas de vida, tolerancia a sus propios antígenos, no obstante por
procesos físicos, químicos o infecciosos.
Estas tolerancias pueden romperse durante el curso de la vida del
individuo y originarse la reacción inmunológica desarrollándose en esta
forma la enfermedad a auto inmune.
ANTÍGENOS ÓRGANO ESPECÍFICOS.
El cristalino, la tiro globulina y la glándula suprarrenal, son ejemplos de
antígenos con especificidad de órganos, y los anticuerpos producidos
contra ellos permiten detectar las proteínas propias de determinado
órgano, que se encuentran presentes en animales de distinta especie,
esto facilita el empleo de anticuerpos inmuno fluorescentes.
Para detectar muchos procesos autoinmunes, si se requiere estudiar, por
ejemplo, si determinado plasma humano posee anticuerpos contra las
glándulas suprarrenales, o contra el epitelio del estómago, o contra el
cristalino, se puede acudir al empleo de cortes histológicos de estos
órganos obtenidos de otras especies animales como el conejo.
Estos cortes histológicos se pone en contacto con el plasma en estudio,
que sí tiene anticuerpos se fijarán a los antígenos presentes en el tejido,
como el empleo de anticuerpos contra inmunoglobulinas humanas
marcadas por fluoresceína, será posible definir si el plasma en estudio
posee anticuerpos contra esos órganos.
ANTÍGENOS ESPECÍFICOS DE ESPECIE.
Son los que se encuentran presentes en todos los individuos de una
misma especie y que difieren de los antígenos análogos de otras
especies, algunos animales tienen gran especificidad de su respuesta
frente a algunos de ellos.
ANTÍGENOS OCULTOS.
El cristalino por falta de irrigación sanguínea o linfática, el cerebro por la
barrera hematoencefálica, y el testículo conformada por la barrera de
células de Sertolitiene antígenos que están excluidos del contacto con el
sistema inmune específico, el trauma puede poner en contacto proteínas
del cristalino con el sistema inmune y desencadenarse en una región
contra este tejido.
ANTÍGENOS TUMORALES.
Muchos tumores presentes en la membrana de sus células o moléculas
específicas pueden ser reconocidos por el sistema inmune.
ALERGÉNOS.
Son moléculas que únicamente inducen respuesta inmune en individuos
predispuestos genéticamente, por lo general son proteínas y gluco
proteínas en algunos casos y de manera ocasional carbohidratos, el
individuo genéticamente predispuesto produce inmunoglobulinas de tipo E
contra estos alérgenos éstas inmunoglobulinas son las responsables de
producir la respuesta inflamatoria aguda que es la característica de las
lesiones alérgicas.
ANTÍGENOS DE LOS ERITROCITOS.
GRUPO
SANGUÍNE
O
A B AB O
GLÓBULOS
ROJOS
La membrana de glóbulos rojos presentan varias moléculas antigénicas,
que permite su clasificación en distintos grupos y subgrupos, la
producción de anticuerpos contra estos antígenos ocasionan lesiones
transfusionales cuando la sangre es incompatible dándose como
resultado la destrucción de eritrocitos y agudizando las anemias
hemolíticas.
Figura N.-5
Título: Manual de Pruebas Inmunohematólogicos
Fuente: Ángel M, Ortiz.
2.2.2 ANTÍCUERPOS.
La inmunidad humoral, es el mecanismo específico de defensa que
cumplen los linfocitos B, gracias a sus productos de secreción, los
anticuerpos llamados también inmunoglobulinas.
Ayudan al control de infecciones por microorganismos extracelulares y su
función se cumple directamente por la activación de fagocitosis y o del
sistema de complemento, la producción de anticuerpos contra antígenos
puede desencadenar procesos autoinmunes.
El linfocito B puede ser activado directamente por los antígenos Timo
dependientes, como el antígeno es proteico, además del estímulo
antihigiénico el linfocitos B puede recibir de los linfocitos T.
Una serie de señales por medio de interleucina que hace que la célula
entre en una fase del ciclo reproductivo, transformándose luego en célula
plasmática, productora inicialmente de anticuerpos IgM pero que
rápidamente pasan a ser clase G con mayor afinidad por el antígeno,
luego se aprecia un aumento del tamaño que se debe a la versión de la
interleucina cinco la cual es el factor de crecimiento de los linfocitos B.
Es producido por los linfocitos T, ayudadores, pasando por efecto de la
interleucina seis a la etapa de célula plasmática productora de
anticuerpos.
RESPUESTA PRIMARIA.
Se denomina así al resultado de la activación de un linfocitos B dice, que
no ha tenido contacto como antígeno y que genera entre 7 a 10 días
después del contacto, con la producción de anticuerpos IgM, de una
especificidad baja respuesta que suele ser pasajera con duración de
pocas semanas.
RESPUESTA SECUNDARIA.
Se genera cuando un linfocito B de memoria encuentra por segunda vez
el antígeno que lo generó, esta respuesta es más rápida, ocurre de 24 a
72 horas, genera inmunoglobulinas o anticuerpos de otra clase y de
mayor especificidad por el antígeno, además es de más larga duración
que en ocasiones sobre todo si es generada por respuesta a algunas
infecciones virales puede ser permanente.2
2E. Kirkwood, Inmunología Medica Básica
Figura: N.-6 Título: Reacción de los Ac sobre Ag nativo
Fuente: Fausto Rubio Campal
Los anticuerpos son glucoproteínas que forman el organismo como
respuesta al contacto con antígeno y que reaccionan específicamente
contra el, debido al papel que desempeña el sistema inmunitario, ya que,
en la electroforesis existe, junto a otras globulinas.
También se las llama inmunoglobulinas, aunque muchas de ellas están
incluidas en la fracción gamma, otras no están en la fracción beta o en la
alfa, su parte proteica está compuesto por cuatro cadenas poli peptídicas,
unidas entre sí mediante enlaces.
Covalentes, puentes Disulfuro, dos de estas cadenas son pequeñas y se
llama L (ligeras) y las otras dos son grandes y se las llama H (pesadas).
Figura N.-7 Título: Reacción de los Ac sobre Ag nativo
Fuente: Fausto Rubio Campal
Las cuatro cadenas se organizan entre sí constituyendo una estructura
en forma de Y, se llama regionalizada a la zona en la que confluyen los
brazos de Y.
Mediante una enzima Proteolítica, llamada Papaína, la molécula de
inmunoglobulina se rompe en tres fragmentos: el fragmento Fab (dos) y el
fragmento Fc.
El fragmento Fab son idénticos y como están, cada una de ellas de una
cadena ligera y la porción amino terminal (N-terminal) de una cadena
pesada, esto recibe el nombre de fragmento Fab, que le permite
combinarse con el antígeno. El tercer está constituido por las porciones
carboxiterminales (C-terminal) de las cadenas pesadas y se denomina
fragmento Fc que puede combinarse para la activación del sistema de
complemento.
Cada una de estas cadenas está compuesto por varias regiones de
tamaño uniforme en el dominio amino terminal, la secuencia de
aminoácidos es muy cambiante, de las inmunoglobulinas a relación a
Figura N.-8 Título:Reacción de los Ac sobre Ag nativo
Fuente Fausto Rubio Campal
otras, por lo que se llama región variable, el resto de esta cadena está
formada por dominios muy parecidos en la mayoría de las
inmunoglobulinas, por lo que reciben el nombre de la región constante (C)
Figura N.-9 Título: Reacción de los Ac sobre Ag nativo
Fuente: Fausto Rubio Campal
2.2.2.1 VARIACIONES ESTRUCTURALES DE LOS ANTICUERPOS.
ISÓTIPOS.
Son variaciones en las regiones constantes de las cadenas pesadas y
ligeras, que están presentes en todo individuo sano de la especie, ahí con
variaciones isotópicas en las cadenas H: gamma Y, Mu, alpha, delta,
epsilon, que dan lugar respectivamente a cinco clases de
inmunoglobulinas: GADME.Algunas de estas clases se dividen, a su vez
en sub clases.
ALÓTIPOS.
Son variaciones en las regiones constantes de las cadenas pesadas y
ligeras, pero que están presentes en algunos individuos de la especie y
en otras no, estas variaciones alotÍpicas, dependen de la existencia de
alelos, se producirá un alótipo y cuando no sea por otro, se originará otro
alotipo.
IDIÓTIPOS.
Son variaciones en las regiones variables y los anticuerpos, cuando los
anticuerpos tienen una estructura exclusiva en sus regiones variables se
dicen que tienen un idiótipo privado
A veces distintos anticuerpos pueden compartir una misma estructura a
nivel de sus regiones variables se habla entonces de idiótipos públicos o
de sección cruzada.
Figura N.-10
Título: Membrana plasmática de los linfocitos B.
Fuente: Fausto Rubio Campal
2.2.2.2 CLASES DE INMUNOGLOBULINAS.
Existen cinco clases de inmunoglobulinas, su producción está
determinada unas veces por el tipo de antígeno, otras por el efecto de
citoquinas.
Los Lipo - polisacáridos generan anticuerpos de tipo IgM, en tanto que
los alérgenos inducen la producción de IgE, cada clase de
inmunoglobulina tiene su propia cadena pesada, la estructura especial de
estas cadenas pesadas, es responsable de las diferencias biológicas que
tienen las inmunoglobulinas.
INMUNOGLOBULINA G.
Constituye el 85% del total de las inmunoglobulinas presentes en el
plasma, la mayor parte de los anticuerpos producidos contra bacterias
Gram positivas, virus, antitoxina, corresponden a esta clase de
inmunoglobulinas.
Su concentración plasmática varía entre 700 a 1800 mg/100 ml, tiene una
vida media que varía de 15 a 35 días, no es sintetizada por el feto, y la
que se encuentre en el plasma del cordón umbilical se encuentra en
proporciones de 1000 mg/ 100 ml.
Corresponde la inmunoglobulina que pasa activamente en la placenta
durante el embarazo, las células trofoblásticas tienen receptores para el
segmento CH3 de esta inmunoglobulina.
Existen cuatro su clases que tienen actividad diferente para fijar el
complemento la inmunoglobulina g3 es la más potente en este aspecto, le
sigue la inmunoglobulina g1 y g2 en tanto que la inmunoglobulina g4
carece de la capacidad de activar el complemento por vía clásica, se
requiere de la presencia de dos moléculas próximas para activar el
complemento.
La producción de determinada su clases de este inmunoglobulina está
determinada en parte por características y algunos antígenos, la Brucella
induce la síntesis de Ig2, Ig3 pero no de Ig1.
Tienen un peso molecular de sólo 150.000. Por su tamaño, atraviesan con
facilidad la placenta y en consecuencia, a menudo se asocian a un cuadro
denominado enfermedad hemolítica del recién nacido (EHRN). Este
problema tiene lugar cuando los anticuerpos maternos cruzan la placenta
y atacan a los eritrocitos fetales que poseen los antígenos
correspondientes.
Los anticuerpos IgG no causan aglutinación de los glóbulos rojos
antigénicos suspendidos en solución salina; sólo los recubren y
sensibilizan.
INMUNOGLOBULINAS M.
Figura N.-11
Título: fragmentos Fab
Fuente: Inmunología, IvanRoitt.
Debido a su alto peso molecular suele llamarse también macro globulina,
es un pentámero de la estructura básica de las inmunoglobulinas, estando
los Incómeros unidos entre sí mediante puentes de disulfuro y cadena poli
peptídica, tiene muchas zonas de unión para el antígeno ya que cuenta
con diez fragmentos Fab.
Está con un confinada al espacio intravascular, también puede activar al
sistema de complemento y es muy eficaz en la revisión de obstinación y la
citólisis de los microorganismos, éste apareció muy temprana por la que
se desempeña en un papel predominante en la respuesta inmune
primaria.Los anticuerpos IgM constituyen alrededor del 8% de las
inmunoglobulinas totales. Son mucho más grandes que los IgG y tienen
un peso molecular de 900.000. No pueden atravesar la placenta, de
manera que no provocan enfermedad hemolítica del recién nacido.
Aglutina con facilidad los glóbulos rojos suspendidos en solución salina y
su sobrevida es de apenas 10 días. Durante las reacciones antígeno-
anticuerpo, a menudo activan el complemento y en consecuencia, causan
hemólisis de los eritrocitos, más que aglutinación
INMUNOGLOBULINA A
Figura N.-12 Título: puente de unión Fab.
Fuente: Inmunología, Ivan Roitt.
Hay 2 subclases de IgA: Ig A1 e Ig A2. En el plasma es medianamente
abundante y, sobre todo, monomérica y de la subclase Ig A1.
Sinembargo, es la Ig predominante en las secreciones externas (saliva, s.
lagrimal, secreción nasal, leche materna, etc.).
En éstas es dimérica (cuatrivalente) y fundamentalmente, de la subclase
Ig A2. LaIg A dimérica se llama Ig A secretora (Ig A) y sus 2 monómeros
están unidos entre sí mediante puentes disulfuro y una “proteína j”.
Además, a esta estructura se le añade una cadena polipeptídica adicional,
denominado componente secretor, que es producida por las células de las
mucosas. El componente secretor facilita el transporte de las Ig A y la
protege contra la proteólisis enzimática.
Las Ig A inhibe la adherencia de los microorganismos a la superficie de
las células mucosas, por lo que se constituye en una primera línea de
defensa frente a las infecciones. Además es importante en el
procesamiento del Ag alimentario en el intestino.
INMUNOGLOBULINA D
Figura N.-13 Título:estructura de inmunoglobulina D.
Fuente: Inmunología, Ivan Roitt.
Es un monómero de la estructura básica de las Ig. En el plasma es muy
poco abundante.
Se encuentra, esencialmente, en la superficie de algunos linfocitos B
sanguíneos. Se cree que puede intervenir en la diferenciación linfocitaria.
INMUNOGLOBULINA E
Figura N.-14 Título: estructura inmunoglobulina E..
Fuente: Inmunología, Ivan Roitt.
También es monomérico. Su concentración en el plasma es baja. Se
encuentra, sobre todo, pegada a la superficie de las células cebadas
(mastocitos) y granulocitos basófilos.Se cree que puede intervenir en la
protección de las zonas anatómicas susceptibles de traumatismos o de
agresiones por intrusos, al desencadenar una liberación de sustancias
vasoactivas y factores Quimiotácticos que desencadenan la reacción
inflamatoria.
Siendo así además responsables de las infecciones parasitarias.
Cuadro N.-1
Título: relación de la actividad de las IgM y las IgG
Fuente: www.google.com/hematologia
2.2.2.3 CLASIFICACIÓN DE LOS ANTICUERPOS.
ANTICUERPOS NATURALES.
Son inmunoglobulinas que aparecen independientemente de cualquier
tipo de estímulo y generalmente son IgM. Los anticuerpos IgM constituyen
alrededor del 8% de las inmunoglobulinas totales. Son mucho más
grandes que los IgG y tienen un peso molecular de 900.000. No pueden
atravesar la placenta, de manera que no provocan enfermedad hemolítica
del recién nacido.
Aglutina con facilidad los glóbulos rojos suspendidos en solución salina y
su sobrevida es de apenas 10 días.
Durante las reacciones antígeno-anticuerpo, a menudo activan el sistema
de complemento y en consecuencia, causan lisis de los eritrocitos, más
que aglutinación.
RELACION DE LA ACTIVIDAD DE LAS IgM Y LA IgG
IgG IgM
% de inmunoglobulina totales 73 8
Peso molecular 150.000 900.000
Aglutinación eritrocitaria n o sí
Cruce placentario Sí no
Activación del complemento Sí sí
Reacción óptima a 37º C 4° C
Tipo de anticuerpo Inmune natural
ANTICUERPOS IRREGULARES.
Denominamos anticuerpos irregulares a aquellos que se producen frente
a antígenos distintos a los del sistema ABO. Son anticuerpos que
generalmente aparecen por una inmunización, transfusión o fetomaterna,
y pueden producir reacciones pos transfusionales.
La Identificación de los anticuerpos irregulares es de gran importancia, así
en el diagnóstico y tratamiento de la enfermedad hemolítica de recién
nacido y de ciertos transtornos Hemáticos, así como en la prevención de
reacciones transfusionales y en estudios durante el embarazo.
La detección de los anticuerpos se realiza enfrentando el suero a una
serie de hematíes tipados, de los cuales se conocen con exactitud los
antígenos presentes en su membrana. El resultado positivo es la
aglutinación de los hematíes.
Se puede llevar a cabo mediante tres tipos de técnicas:
Test de Coombs indirecto.
Técnica enzimática.
Técnica a 4 °C.
El Test de Coombs indirecto consiste en la incubación previa del suero y
los hematíes tipados para conseguir la sensibilización de estos hematíes,
es decir, que los anticuerpos presentes en el suero se adhieran a la
superficie eritrocitaria.
Posteriormente añadimos en el suero de Coombs (antiglobulina humana)
para poner de manifiesto la presencia o no de esos anticuerpos mediante
la aglutinación de los hematíes.
Para acortar el tiempo de incubación y mejorar los resultados, podemos
emplear un medio de baja fuerza iónica o LISS (lowionicStrengthsolution).
Técnica enzimática consiste en tratar previamente los hematíes tipados
con una enzima, para facilitar la aglutinación de los hematíes. Se suelen
emplear la Tripsina, Papaína, Ficina o Bromelina.
La técnica a 4° C se utiliza para detectar la crioaglutininas o anticuerpos
que reaccionan mejor abaja temperatura. Consiste en incubar el suero y
los hematíes a 4° C para posteriormente centrifugar y observar la
presencia o no de aglutinación.
Se recomienda utilizar al menos dos de estas técnicas para obtener
buenos resultados en la detección de anticuerpos irregulares.3
2.2.2.4 REACCIÓN ANTÍGENO- ANTICUERPO.
La reacción entre el antígeno y sus correspondientes anticuerpos pueden
producirse ínvivo o invitro, la reacción in vivo, generalmente coincide con
la invasión del organismo por antígenos extraños a él, contra los que
reacciona produciendo anticuerpos, en estados de autoinmunidad, la
reacción antígeno anticuerpo, puede causar enfermedades tales como:
anemia Hemolítica autoinmune, púrpura Trombocitopenia Idiopática.
La reacción y Vitro es de particular importancia porque ella permite que
los antígenos y anticuerpos puedan ser detectados y estudiados en el
laboratorio.
Algunos principios generales, son aplicados a la reacción antígeno
anticuerpo, entre ellos cabe señalar los siguientes:
3Inmunología, IvanRoitt
La especificidad, es decir que el anticuerpo reacciona con el antígeno
determinante.
En la reacción antígeno anticuerpo, reaccionan las moléculas enteras,
esto es que no hay intercambio de partes o fracciones ni tampoco se
forma un nuevo producto.
La unión del antígeno y su anticuerpo es firme pero reversible, esto
significa que bajo condiciones apropiadas, ambos, antígeno y
anticuerpo, se pueden recuperar sin cambiar el uno o el otro.
La reacción antígeno anticuerpo es un fenómeno de superficie, que no
altera la estructura primaria de las partes reacción antes indicada.
Cada parte sea el antígeno o el anticuerpo puede combinarse en
proporciones variables, dependiendo de las condiciones del
experimento.
El antígeno y el anticuerpo en su relación en ciertas excepciones es
muy rápida y en algunos casos, menos de un minuto.
Figura N.-15 Título: Reacción de los Ag sobre Ac.
Fuente:Inmunología, Ivan Roitt.
La mayor parte de las reacciones antígeno anticuerpo, suceden en dos
etapas, en la primera el antígeno se combina con el anticuerpo y en la
segunda mediante ciertos cambios electro químico se produce un
complejo antígeno anticuerpo haciéndose visible la reacción, existen
varias formas de evidencia la reacción antígeno anticuerpo y entre ellas
cabe citar las siguientes:
Precipitación: Es la reacción entre un anticuerpo, antígeno soluble,
observándose la producción de un precipitado.
Neutralización: es una reacción biológica en la cual se inhibe o bloquea
la actividad de un antígeno por su correspondiente anticuerpo in vivo o in
vitro.
Como ejemplos de neutralización están los efectos terapéuticos logrados
con la administración de la antitoxina tetánica,
Radio inmuno ensayo: el anticuerpos marcado con un radio isótopo y en
esta forma se detecta que tejidos contienen un antígeno específico.
Figura N.-16
Título: reacciones de precipitación.
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematologicas: Ángel
M, Ortiz
Aglutinación: es la reacción empleada en el trabajo de grupos
sanguíneos, en esta reacción el anticuerpo reacciona con el antígeno
para formar masas o aglutinados que pueden ser evidenciados a simple
vista o con microscopio, se puede realizar en lámina, el tubo centrifugado
para dejar lista la sedimentación4
Figura N.-17
Título: Unión antígeno-anticuerpo.
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematologicas: Ángel M, Ortiz
2.2.2.4 PRINCIPIOS QUE RIGE LA REACCIÓN ANTÍGENO
ANTICUERPO.
ESPECIFICIDAD: El anticuerpo reacciona con un determinado
antígeno.
REACCIÓN DE MOLÉCULAS ENTERAS: No se produce
intercambios de partes o fracciones, ni se forma un nuevo producto.
TIEMPO: Es variable, se puede necesitar un corto o largo tiempo para
observar una reacción o resultado.
FACTORES QUE AFECTAN LA REACCIÓN ANTÍGENO ANTICUERPO.
4Gordon, B.L. Ford, Lo esencial de la inmunología
Carga iónica eritrocitaria.
Temperatura
Ph
Antigüedad del suero y los eritrocitos
Potencia iónica
2.2.3 SISTEMAS DE GRUPOS SANGUÍNEOS.
Los primeros pasos, en el este de los grupos sanguíneos fueron dados
por Landois, en el año de 1875 reportaba que si los glóbulos rojos de una
especie era mezclados con el suero de sangre provenientes de otra
especie, se producía un fenómeno de aglutinación.
Posteriormente Erlich y Morgeronth observan igual fenómeno en animales
de una misma especie, Lansdsteiner en 1900 quien primero reportó la
aglutinación de los glóbulos rojos humanos por el suero proveniente de
sangre de otras personas como dando lugar este hallazgo al
descubrimiento del sistema ABO.
Fue completado dos años más tarde por Descraltello y Sturly quienes
descubrierón el cuarto grupo sanguíneo al cual se le denominó AB ,
lograda esta clasificación sanguínea de las personas en estos cuatro
grupos, se inicia de una manera más segura la transfusión entre
humanos.
Un grupo sanguíneo es una clasificación de la sangre de acuerdo a las
características presentes o no en la superficie de los glóbulosrojos.
Los sistemas sanguíneos se clasifican normalmente en dos categorías.
1. Mayor.-Son aquellos grupos inmunológicamente poderosos (ABO y
Rhesus).
2. Menor.-Son los grupos inmunológicamente débiles, aunque también
pueden provocar reacciones inmunológicas severas ( NMSs, Lewis,
Duffy, Kell, Lutheran, Kidd, Diego y Xg....)
HERENCIA DE LOS GRUPOS SANGUÍNEOS.
Los grupos sanguíneos heredan según las leyes o principios genéticos
expuestos por Mendel en 1865, una rápida visión sobre los aspectos
básicos de genética humana ayuda a entender mejor herencia de los
grupos sanguíneos.
El cuerpo humano está conformado por dos tipos de células, las células
somáticas que forman diferentes tejidos y las células germinales que
producen los gametos (espermatozoides y óvulos).
En el hombre cada célula somática está formada por 46 cromosomas
agrupados en 23 pares, las células germinales sólo contienen 23
cromosomas es decir la mitad, en el proceso de fertilización, los dos
gametos se encuentran y se combinan para constituir 23 pares de
cromosomas de esta manera.
Cada padre contribuye con la mitad de sus cromosomas, los cuales
transportan los genes, que a su vez, determina las características
individuales de los hijos.
De estos 23 pares de cromosomas, 22 son iguales pero una pareja es
diferente y es la que determina el sexo, en la mujer un cromosoma X. se
aparea, otro cromosoma X. y determinan el sexo femenino, en el hombre
un cromosoma X. se aparea con cromosoma Y determinan el carácter
masculino.
Los cromosomas están localizados en el núcleo de cada célula y
transportan las unidades básicas de la herencia, que son los genes los
cuales están constituidos por moléculas de ácido desoxirribonúcleico,
cada gen determina una característica específica y ocupa en el
cromosoma un lugar fijo denominado locus, en igual orden.
De esta manera, la célula hija tiene un par de genes provenientes, cada
uno de un padre.
Un locus cromosómico controla una característica hereditaria, por ejemplo
el sistema ABO y del cual pueden existir un número de variantes, las
variantes o alternativas son controladas por genes situados en un solo
locus, y son denominados genes ale mórficos, en condiciones regulares
una persona hereda sólo un alelo de cada padre.
Por ejemplo, en el sistema ABO los tres alelos mayores son A, B, O pero
un individuo solo tendrá dos de ellos como es AB, BO, AO, cada libido
hereda dos genes idénticos situados en un locus determinado, los
términos fenotipo genotipo son de uso común.
Elfenótipo expresa el carácter visible de una persona, como es, por
ejemplo el color de los ojos, del cabello, el tipo sanguíneo.Elgenótipo
expresa la constitución genética de un individuo con respecto a un
determinado rasgo así por ejemplo el genotipo de una persona de grupo
sanguíneo A puede ser AA, AO.5
5J.G Kelton y N:M Heddle, Transfusión Sanguínea
2.2.3.1 SISTEMA SANGUÍNEO ABO.
Fue el primero de los grupos sanguíneos descubiertos y continúa siendo
hasta el momento el más importante con relación a la transfusión
sanguínea, en 1900 Landsteiner encontró que los sueros de ciertas
personas aglutinaban los glóbulos rojos de otras, siendo esto una
característica constante e individual, se hizo evidente que existían por lo
menos, dos factores en los glóbulos rojos, designados aglutinógenos por
Landsteiner y actualmente conocidos como los antígenos A y B.
Landsteiner, postuló que cada persona podía tener uno de ellos, ambos
con ninguno que cuando uno de estos aglutinó ajenos no se encontraba
en los glóbulos rojos de una persona su correspondiente anticuerpo
estaba presente en el suero plasma, esta recíproca relación entre el
antígeno y su correspondiente anticuerpo es lo que se conoce como ley
de Landsteiner.
GENÓTIPO FENÓTIPO
AA A
AO A
BB B
BO B
AB AB
OO OO
Cuadro N.-2
Título: características fenotípicas y genotípicas
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematologicas: Ángel
M, Ortiz
Grupo ABO Antígenos Anticuerpos
A A anti – b
B B anti – a
AB A, B Ninguno
O Ninguno anti – ab
2.2.3.2 ORÍGEN DE LOS ANTÍGENOS DEL SISTEMA ABO.
Las sustancias de grupos sanguíneos A y B, han sido encontradas en los
glóbulos rojos y en ciertas expresiones como saliva y líquido de quistes de
ovario, ello ha permitido el estudio bioquímico de estas sustancias y se ha
encontrado que son mucopolisacáridos con pocas diferencias entre sí,
dependiendo su especificidad serológica, de la presencia de una
molécula de carbohidrato diferente para cada grupo.
La hidrólisis de este compuesto conduce sustancias precursoras en
primer lugar aún polisacáridos y que a sido denominado H luego a la
sustancia que compone el antígeno Lewis, y por último a un compuesto
que tiene la especificidad serológica del neumococo tipo XIV.
En el proceso de síntesis la formación de cada uno de estas sustancias
está influenciados por un gen, partiendo del compuesto más simple, que
sería el material específico similar al neumococo tipo XI, la primera
transformación sería hacia la síntesis de la sustancia Lewis el cual hace
agregar un radical fucosa.
El gen H induce a partir de la sustancia Lewis la formación de la
sustancia H, mediante la adición de una nueva molécula de fucosa en
contraposiciónEl gen A ordena la agregación de N-acetilgalactosamina a
Cuadro N.-3
Título: sistema sanguíneo ABO ag-ac que generan.
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematólogicos: Ángel
M, Ortiz
la sustancia H para formar el antígeno A, o bien bajo la influencia del gen
B agrega galactosa para formar el antígeno B , el gen O no tiene efecto
de conversión sobre la sustancia H por lo cual ella se encuentra inalterada
y el mayor proporción en estas células.
En resumen, se considera que las células rojas humanas contienen
sustancia H ya que está es la sustancia básica de la cual se han formado
las sustancias A y B, mediante la influencia de los genes A y B
respectivamente.
Como el gen O no transforma este material, este grupo la contendrá en
ayor proporción, los grupos A1 y B retendrán solamente una pequeña
cantidad el grupo A2 contiene menor cantidad de sustancia A ver en la
misma proporción aumenta su contenido de H.
Este antígeno se detecta mediante el suero anti-H o bien con la lecitina
anti-H y el grado de reacción de los diferentes grupos con estos reactivos
se han reportado de la siguiente forma: O>A2>A2B>A1>A1B>B , esto
quiere decir que O contiene mayor cantidad de sustancia H que A.
SUSTANCIA EN
HEMATÍES
GRUPO SANGUÍNEO
H O
H Y A A
H Y B B
H, A, B AB
Cuadro N.-5
Título:relación sustancia H con sistema ABO
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematologicas: Ángel
M, Ortiz
En personas de grupo sanguíneo A1 y A1B (con escasa sustancia H.)
puede encontrarse en su suero anticuerpos anti-H, se trata de un
anticuerpo natural, por lo tanto su estimulación antigénica es igual que
para los anticuerpos anti-a y anti-b.
Se reconoce porque reacciona fuertemente con hematíes de grupo O,
débilmente con A2 y no lo hace con A1, puede ser de importancia clínica
igual que anti-A1 si reacciona a temperatura corporal o si el paciente es
sometido a hipotermia.
.
En un grupo muy escaso de personas del grupo O se encontró que sus
glóbulos rojos no mostraba ninguna reacción frente al suero anti -H
(reactivo) y al mismo tiempo presentaba un potente anticuerpo anti-H
(natural) se determinó que los glóbulos rojos y secreciones de tales
personas había una sustancia H. porque no poseían el gen H.
Cuadro N.-6 Título: sistemaABO, azúcar precursor, relación con la
sustancia H. Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G, La
Inmunohematologia aplicada a la Terapia Transfusional
Que les permitía sintetizar antígeno, este nuevo grupo sanguíneo se le
denomino Bombay por ser en esa población de la india donde se
descubrió y que se expresa con el símbolo Oh.
2.2.3.3 ANTICUERPOS ANTI-A Y ANTI-B.
Como se indica, los anticuerpos anti-a y anti-b están presentes en el sur
de personas que no poseen su antígeno correspondiente.
Su presencia obedece a un estímulo natural, pues las sustancias A y B
tienen amplia distribución en la naturaleza (plantas, animales, bacterias)
antígenos a los cuales se está expuesto desde el mismo momento del
nacimiento.
Así el recién nacido no contiene anticuerpos anti-a o anti-b naturales, a
menos que la madre haya producido una forma inmune durante el
embarazo, el cual puede atravesar la placenta.
Parte la síntesis de anticuerpos en el niño comienza entre los tres a seis
meses, alcanzando su máximo nivel de los cinco a 10 años para después
decrecer progresivamente.
Los anticuerpos antia -a y anti-b son generalmente naturales, de tipo IgM,
aunque a menudo pueden encontrarse formas IgG, como resultado de
una estimulación antigénica mediante la inyección de sangre incompatible
de sustancias A o B, o de embarazos heteroespecificos.
El mismo efecto puede observarse después de inmunización con vacunas
que contienen sustancias específicas A y B tales como la influenza.
Las personas del grupo "O" tienen títulos más elevados de anticuerpos
anti-a y anti-b que los otros grupos y la presencia del componente IgG es
bastante frecuente, cuando se determina el grupo sanguíneo es
importante caracterizar las aglutininas anti-a y anti-b, mediante hematíes
conocidos.
Este método se conoce como procedimiento inverso, la práctica de cada
prueba, determinación de antígenos o de anticuerpos se complementan,
es decir, una prueba confirma los resultados de la otra; por lo tanto, en
rutina ambas deben realizarse.
Cuadro N.-6 Título: Células A, Células, Células O.
Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La Inmunohematologia aplicada a la Terapia Transfusional
2.2.3.4 SUB GRUPOS DE “A”.
El antígeno A puede presentarse bajo varias formas que difieren entre sí
cualitativamente y cuantitativamente y esta diferencia guarda relación con
la cantidad del antígeno A presente.
La cual disminuye progresivamente desde A1 hasta Am, las dos formas
más comunes de la presentación de concentración del antígeno es A1 y
A2 y ambas comprenden el 99. 9% de todos los subgrupos de A,
Cuadro N.-7
Título: Sub Grupos de “A”.
Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La
Inmunohematologia aplicada a la Terapia Transfusional
sediferencian en que él A2 reaccionan menos intensamente con el
antisuero comercial ANTI-A.tiene dos componentes anti -A1 que
reacciona solamente con los hematíes A1 y anti-A que reacciona con
ambos hematíes A1 y A2.
El suero anti -A se obtiene de donantes de grupo sanguíneo B, el
componente anti- A puede ser removido del suero, absorbiéndole con
hematíes del grupo A2 , quedando solamente el anti- A1, el cual es
usado como reactivo para identificar los hematíes tipo A1 y A2B , los
hematíes A2 y A2B no reaccionan con el suero anti - A1.
Subgrupos más débiles que A2 son menos frecuentes y reaccionan en
forma tan débil que es difícil su reconocimiento y pueden erróneamente
ser clasificados como O, si bien estos subgrupos no están aglutinados por
el suero anti - A1 sí lo son por suero Anti-AB, provenientes de personas
"O" aunque la aglutinación es menos intensa.
Esta es una razón por las cuales, de rutina, se deben emplear tres anti
sueros: Anti-A, Anti-B y anti-AB, su identificación es importante desde el
punto de vista transfusional, pues si son erróneamente clasificados como
O= pueden ocasionar una reacciónhemólitica severa.
Aproximadamente 1 a 2 % de individuos del grupo "A" y un25% de A2B
producen anti-A1, el cual parece ser un anticuerpo natural pues con
frecuencia se encuentren personas sin antecedentes transfusionales o
embarazos.
Es poco probable que un anticuerpo anti-A1 dé lugar a una revisión
hemóliticatransfusional y estos se debe a que el anticuerpo no es activado
a 37 °C, sólo en muy raros casos se ha reportado un acortamiento de la
sobrevida de los glóbulos rojos transfundidos y ello coincide con el
hallazgo de un anti-A1 activo a 37 °C, pero en cambio sí interfiere con las
pruebas de compatibilidad6.
2.2.3.5 MÉTODOS DE DETERMINACIÓN DEL SISTEMA ABO
Los métodos y determinaciones del sistema ABO, pueden darse mediante
la realización de la prueba directa e inversa.
El procedimiento de recomendación para la valoración de la intensidad de
creación es la práctica, por lo tanto la evaluación de la presencia o
ausencia de los antígenos y anticuerpos puede darse:
prueba globular o determinación de aglutinógeno
prueba sérica o determinación de antiminas o grupo inverso
6Molliso, P Medicina Transfusional
Figura N.-18
Título: Unión antígeno-anticuerpo.
Fuente: Manual de Pruebas Inmunohematologicas: Ángel
M, Ortiz
TÉCNICA ABO DIRECTA
Cuadro N.-8
Título: demostración Invitro de los grupos ABO.
Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La Inmunohematologia
aplicada a la Terapia Transfusional
Figura N.-19
Título: determinación del grupo ABO DIRECTA.
Fuente: Hemostasia y Banco de Sangre, Benjamín García Principio de la
prueba Directa
LAVADO Y SUSPENSIÓN DE GLOBULOS ROJOS.
Material
Tubos de ensayo
Muestra de sangre
Solución salina
Método
Centrifugar la muestra para separar el suero o plasma de los glóbulos
rojos, pasar el suero o plasma a otro tubo limpio y rotulado.
Con una pipeta de Pasteur, colocar 0,5 ml de glóbulos rojos a un tubo
limpio y rotulado.
Complementar con solución salina hasta 1 cm del borde.
Centrifugar por 1 minuto 2000 a 2500 rpm para sedimentar las
células.
Decantar la solución salina sobrenadante.
Agitar los tubos para resuspender los glóbulos rojos.
Repetir los lavados por tres veces.
En el último lavado la solución salina debe ser clara sin signo de
hemólisis.
SUSPENSION CELULAR AL 5%
En un tubo de 12x75 dispensar 19 gotas de SSF y adicionar 1 gota de
GR sedimentados.
Homogenizar y mantener en refrigeración (4°C)
Requerimientos.
Sueros comerciales: Anti-A, Anti-B, Anti-AB
GR al 5%
Tubos 12x75 mm
Solución Salina
Pipetas Pasteur,
Lámpara,
Centrifuga.
Muestra requerida
Sangre del donante (unidades a transfundir)
Sangre del receptor o paciente.
PROCEDIMIENTO:
1. Colocar una gota de anti-A en un tubo limpio y rotulado.
2. Colocar una gota de anti-B en un segundo tubo limpio y rotulado.
3. Colocar una gota de anti-AB en un tercer tubo limpio y rotulado.
4. Colocar una gota de SSI en un cuarto tubo limpio y rotulado
5. Añadir a c/tubo una gota de GR al 5 % en SSI.
6. Mezclar suavemente el contenido de los tubos y centrifugarlos
7. durante 15-30 segundos a 3500 r.p.m.
8. Resuspender suavemente los sedimentos de los hematíes y examinar
la aglutinación.
9. Anotar los resultados de la prueba.
REPORTE DE RESULTADOS:
La aglutinación de hematíes con antisuero específico es interpretado
como positivo e indica la presencia del antígeno correspondiente.Si no
hay aglutinación produce un resultado negativo (0) indicando que el
antígeno correspondiente no se encuentra.7
TÉCNICA ABO INVERSA.
7Lic. Fernando Jaramillo G. La Inmunohematologia aplicada a la Medicina Transfusional.
REACTIVOS, SUMINISTROS Y EQUIPOS.
Hematíes Al, (A2), B y O preparados al 3- 5%.
Tubos de 12 x 75, Pipetas Pasteur.
Lámpara con luz intensa.
Centrifuga
PROCEDIMIENTO.
1. Colocar una gota de hematíes reactivos del grupo Al en un tubo limpio
y rotulado.
Figura N.-20
Título: determinación del grupo ABO INVERSA.
Fuente: Hemostasia y Banco de Sangre, Benjamín García
Principio de la prueba Inversa
2. Colocar una gota de hematíes reactivos del grupo B en un 2do. tubo
limpio y rotulado.
3. Colocar una gota de hematíes del grupo O en un tercer tubo limpio y
rotulado.
4. Añadir a cada tubo dos gotas de suero problema.
5. Mezclar suavemente el contenido de los tubos y centrifugar 15
segundos a 20 con 3500 r.p.m.
6. Resuspender suavemente el botón celular y examinar buscando
aglutinación.
7. Anotar los resultados de la prueba.
8. En caso de dudar de un resultado volver a realizar el proceso y
confirmar la determinación.
Cuadro N.-9
Título: Células A, Células, Células O. Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La Inmunohematologia aplicada a la Terapia
Transfusional
REPORTE DE RESULTADOS.
La aglutinación o hemólisis indica que un anticuerpo específico contra el
antígeno A o B está presente en el suero problema y se consideran un
resultado positivo. Una suspensión uniforme de hematíes después de la
resuspensión del botón (aglutinado) es un resultado negativo.8
DISCREPANCIAS ENTRE LA PRUEBA GLOBULAR Y SÉRICA.
8Guía para la realización de pruebas Inmunohematologicas, Lic. Fernando Jaramillo G.
Cuadro N.-10 Título: Discrepancia de Resultados
Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La
Inmunohematologia aplicada a la Terapia Transfusional
SE DEBE CONSIDERAR:
No confiar en el color de los antisueros para identificar la colocación de
los reactivos.
Todos los tubos deben estar debidamente rotulados.
No realizar pruebas a temperaturas muy altas.
Realizar la observación de aglutinación con un fondo bien iluminado,
no sobre una caja visora de temperatura alta.
Anotar los resultados inmediatamente observados.
Recordar que muestras, reactivos o material contaminado interfieren
en los resultados de prueba.
Si el paciente fue recién transfundido con sangre compatible pero de
grupo diferente (grupo O a un paciente de grupo A), se aprecia
aglutinación de campo mixto.
Las discrepancias de grupo globular puede deberse a antígenos
debilitados, expresión antigénica alterada debido a enfermedad,
quimerismo o exceso de sustancia de grupo sanguíneo.
Se puede encontrar falso-negativo en tubo si la suspensión de
hematíes es muy concentrada.
POSIBLES CAUSAS DE FALSO POSITIVO.
1.- Adición del antisuero equivocado al tubo de prueba.
2.- Exceso de centrifugación de la mezcla suero/células.
3.-Material de vidrio sucio (lejía, detergente, silicona).
4. Técnica de lectura inadecuada, agitación muy débil.
POSIBLE CAUSAS DE FALSO NEGATIVO
1. Omisión de las células del paciente o del donante.
2. Omisión del antisuero al tubo de prueba.
3. Baja centrifugación de la mezcla suero/células.
4. Agitación vigorosa al momento de hacer la lectura.
5. Deficiente lavado de las células
POSIBLES CAUSAS DE FALSO POSITIVO O FALSO NEGATIVO
1. Rotulado incorrecto de los tubos.
2. Adición equivocada de un antisuero.
3. Errores en la lectura o interpretación de resultados.
4. Registro inexacto de los resultados.
5. Contaminación de antisuero o células de prueba.
6. Una inexacta relación suero/células en la mezcla de prueba.
2.2.3.6 SISTEMA DE GRUPO SANGUÍNEO Rh.
En el descubrimiento del sistema RH, concurrieron dos hallazgos
importantes, en 1939 Levine y Stetson encontraron un anticuerpo
causante de una reacción hemolitica en una paciente que había recibido
una transfusión de sangre proveniente de su esposo, esta paciente
terminaba de dar a luz a un feto muerto por eritroblastocis, ellos dedujeron
que este anticuerpo era responsable de ambos problemas.
1940 Landsteiner y Wiener produjeron un anticuerpo el conejos que
habían sido invitados con glóbulos rojos provenientes del mono Rhesus,
ambos anticuerpos presentaron una especificidad como, este factor fue
denominado Rh para indicar su interpretación con el factor eritrocitario
del especie rhesus.
Se denomina como RH positivo a las personas que posee este antígeno y
como RH negativo a quienes tienen ausente este antigeno, a diferencia
del sistema ABO, este sistema no reporta anticuerpos naturales en el
suero, los anticuerpos anti-rh sólo se producirán mediante inmunización
activa, es decir por inyección de sangre RH positiva o embarazos en
aquellas personas que no poseen tal antígeno y son evaluadas o
tipificadas como RH negativos9.
HERENCIA Y NOMENCLATURA.
El sistema ABO posee dos antígenos, A y B, pero el Rh es mucho más
complejo porque está codificado por los genes Cc, Dd y Ee, responsables
de los antígenos Cc, D y Ee.
Los genes Rh se disponen en grupos de tres y cada progenitor aporta
uno. Las combinaciones son múltiples, por ejemplo CDe, cDE, cdE, etc. y
las que se registran en los hijos dependen de las de sus progenitores.
9Sangre y Componentes seguros OPS
Algunas son más comunes que otras, pero lo más importante es la
presencia o ausencia del gen D.
Cuando una persona hereda el gen D, sus glóbulos rojos reaccionan con
los anti-D y por lo tanto, se dice que es Rh D positiva. Si no hereda el gen
D, sus glóbulos rojos no reaccionan con los anti-D y por lo tanto, se dice
que es Rh D negativo. Como no existen anti-d, no es factible saber si el
individuo que reacciona con los anti-D es homocigota (heredó un gen D
de cada progenitor, D/D) o Heterócigota(recibió un gen D de uno y un d
del otro, D/d): el que hereda dos genes d es D negativo
.
Cuadro N.-11 Título: Discrepancia de Resultados
Fuente: Cortesía Lic. Fernando Jaramillo G. La Inmunohematologia aplicada a la Terapia Transfusional
En hemoterapia es preciso garantizar que los pacientes Rh D negativo
reciban sangre Rh D negativa. Este hecho adquiere mayor relevancia en
las mujeres (con la posible excepción de aquellas que superaron la edad
de concebir) , porque la transfusión inadvertida de sangre Rh D positiva a
una niña o joven Rh D negativa podría sensibilizarla e inducir la
producción de anti-D.
Como los anticuerpos anti-D son IgG, pueden atravesar la placenta y
durante una gestación Rh D positiva, pueden destruir los glóbulos rojos
fetales y causar enfermedad hemolítica del recién nacido. En
consecuencia, para determinar el grupo Rh D es esencial emplear
técnicas apropiadas y confiables. Existen dos teorías acerca de la
herencia del sistema Rh.
Los antígenos RH son compuestos, o configuraciones moleculares
presentes en muchos sitios de la membrana eritrocitos, negándose a
calcular, que, según el genótipo el número de determinaciones para el
antígeno RH d podría alcanzar hasta un número de 33.000 registros, dos
teorías tratan de explicar la herencia de los antígenos RH.
Una fue propuesta por Fisher y porRace ellos argumentan cinco
determinaciones antigenicas principales o de mayor importancia clínica
que integran el sistema (DCcEe) son el producto de tres pares de genes
situados en tres locus distintos pero íntimamente ligados, en su concepto
cada gen da origen a un antígeno determinado.
El más importante de este locus fue denominado con la letra D , ocupado
por el gen responsable del antígeno D , un gen alelo propuesto fue el d el
cual es hipotético pues no ha sido demostrado como determinante
antigenico, de esta manera la letra "d" se usa sólo para señalar la
ausencia del antígeno D.un segundo locus fue llamado "C"
conteniendoUno o dos alelos C, c.El tercer locus contiene los genes E o e
cada uno de ellos es responsable de la producción de su correspondiente
antígeno eritrocitario.
Considerando que estos locus están estrechamente ligados, la herencia
de ellos se produciría en un solo bloque, contribuyendo ambos padres con
sendos genes.
NOMENCLATURA DEFISHER - RACE.
Utiliza las letras D, C, y E para referirse a los tres locus del cromosoma, y
las letras d, c, y e para sus alelos. Al referirnos al genótipo de la persona,
su composición genética completa, debemos mencionar a cada uno de
los alelos que ocupan el locus, sin embargo, al referirnos a su fenótipo, los
determinantes antihigiénicos presentes en los hematíes, no se menciona
la letra d, ya que es un gen nulo que no da lugar a ningún antígeno.
NOMENCLATURA DE WIENER.
Dado que postuló un único locus en el cromosoma, el genotipo de la
persona viene expresado por una única letra R o r, según de lugar o no al
antígeno RH D. los antígenos o aglutinógenos, formados en la superficie
de los hematíes se expresan con dos letras Rh o rh, según posean o no el
determinante antihigiénico D.
Seguidos de un número o letra para indicar su posición antihigiénica
completa, los determinantes antihigiénicos que conforman cada
aglutinógeno se expresan con dos letras: Rh, rh o hr, acompañados de
comicios para diferenciarlos, podemos comparar que la nomenclatura de
Fisher - Race y la de Wiener para entender mejor el sistema.
Wiener denomina rh´ a la presencia del antígeno C y rh ´´ a la presencia
del antígeno E, y cambia el orden de las letras para expresar a los alelos
respectivos hr´ indica la presencia del antígeno ce y hr´´ indica la
presencia de e.
Cuadro N.-12
Título: Relación Genótipo, antígeno, Gen antigénico.
Fuente: Hemostasia y Banco de Sangre, Benjamín García
NOMENCLATURA NUMÉRICA O DE ROSENFIELD.
El sistema se complica cada vez más porque existen múltiples variantes
de alelos postulados, por ello se introdujo en 1962 una nueva
nomenclatura numérica, que hace referencia sólo a la presencia o
ausencia de un determinante antigénica en la superficie de los hematíes.
Se nombra RH para referirnos al sistema, y se relaciona detrás con los
números de los anti, proseguidos de un - en el caso que el antígeno no
esté presente.
Aunque en un intento de facilitar la denominación de los antígenos, lo
cierto es que se utiliza con frecuencia porque no tiene en cuenta la
estructura genética del sistema, se conocen 35 antígenos relacionados
con el sistema RH.10
10
Hemostasia y Banco de Sangre, Benjamín García.
GENOTIPO
FISHER
ANTIGENOS
WIENER
GEN
ANTIGENICO
ANTIGENO DETERMINANTES
DCe D, C, e R1 Rh1 Rh0, rh´, rh´´
Dce c, e R Rh hr´, hr´´
DcE D, c, E R2 Rh2 Rh0, hr´, rh´´
Dce D, c, e R0 Rh0 Rh0, hr´, hr´´
DCe C, e r´ rh´ rh´, hr´´
ROSENFIELD FISHER-RACE WIENER FRECUENCIA
1 D Rho 85%
2 C rh´ 70%
3 E rh´´ 30%
4 c hr´ 80%
5 e hr´´ 97%
6 f(ce) Hr 64%
7 Ce rhi 69%
8 Cw rhi 2%
9 Cx rhx 1%
10 V (ces) hrv 1% en blancos
ANTIGENOS DEL SISTEMA RH
Se han descrito por lo menos 36 factores relacionados que componen el
sistema RH, de los cuales el más importante en clínica es el "D".
Existen variantes de los determinantes antigénicos mayores del sistema
de H., pero de todos el más importante por su implicación en clínica es la
variante D, del antígeno D , fue descrita por Stratton en 1946, época en el
cual se emplean sueros anti-D provenientes de un solo donante y no
mezclan como se usan hoy en día, él observa que ciertos glóbulos rojos
eran aglutinados débilmente por algunos sueros anti-D pero no por otros.
Los glóbulos rojos que reaccionan con elevado porcentaje de sueros
fueron denominados D de alto grado, mientras que los que reaccionaban
con un escaso número fueron clasificados como Du de bajo grado.
Clásicamente, este factor es definido como alucinógeno que da algunas
pero no todas reacciones de un tipo Rh , con los sueros actuales
provenientes de mezclar, éstos detectan casi todas las células rojas Du
Cuadro N.-13
Título: Relación nomenclatura y herencia.
Fuente: Hemostasia y Banco de Sangre, Benjamín García.
positivas, aunque la reacción obtenida es más lenta y más débil que la
observada con células estándar Rh D positivas.
Los individuos Du han sido clasificados en dos tipos, el Du hereditario o
de bajo grado, es la forma más débil del antígeno y es heredado como un
verdadero aleloamorfo, siendo transmitida como tal de una generación a
la siguiente, las células de este tipo da una dirección muy débil o
negativa, cuando son puestas en contacto con suero comercial anti-D , sin
embargo ellas absorben el anticuerpo dado una dirección de coombs
indirecta positiva.
Los clasificados Du de interacción o de alto grado, ocurre rara vez se
presentan como resultado de un efecto de supresión del antígeno D en un
cromosoma, cuando el cromosoma opuesto se encuentra en el gen C
Ejemplo: DCe/dCe.
IMPORTANCIA DEL FACTOR RH DU.
Toda sangre con resultado negativo o positivo débil debe ser probado
para Du mediante la prueba PAD indirecta.Sin donante resulta RH
negativo Du positivo ciertos bancos de sangre recomiendan que se debe
considerar como el de H. negativo ytransfundir sangre RH negativo.
Algunos autores piensan que estos individuos pueden ser transfundidos
con sangre Rh positiva, aunque en raros casos se han reportado
inmunizaciones de tales receptores, con producción de anticuerpos anti-
D,igual mente ha sucedido con algunos pacientes el VIH positivos.
Embarazadas RH negativas, Du negativas, si su hijo es el de H. positiva
deben recibir la inmunoglobulina anti RH para prevenir la inmunización,
las madres Du positivas no la requiere.11
2.2.3.6 METODOS DE DETERMINACIÓN
La determinacion de estos antigenos, se logra mediante el uso de
antisueros comerciales específicos, de lata potencia, es importante para el
técnico, que antes de trabajar con cualquier antisuero , lea las
instrucciones del fabricante, pus algunos son antisueros salinos que
requieren mayor periodo de incubación
DETERMINACION EN TUBO.
TECNICA DEL C, c, E, e.
PRUEBA EN TUBO
1.-Deje que el reactivo alcance la temperatura ambiente (18-25ºC) antes
de utilizarlo.
2.-Identifique 5 tubos de vidrio limpios para los correspondientes reactivos
CDE, C, c, E, y e, añadiendo el nombre o el numero del paciente.
3.-Pipetee en cada tubo 1 gota (50ul) de reactivo correspondiente.
Figura N.-23
Título: Tipificación Directa
Fuente:Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada Diseño Fulbio Y Bélgica
4.-Añada 1 gota (50ul) de la suspensión de eritrocitos.
5.-Mezcle bien e incube durante 5 minutos a temperatura ambiente (18-
25ºC).
6.-Centrifugue 20 segundos a 1000g o 1 minuto a 125g.
7.-Resuspenda cuidadosamente los eritrocitos y realice una observación
macroscópica sobre una fuente de luz indirecta y compruébese si existe
aglutinación.
8.-En caso de reacciones negativas o dudosas, incube los tubos durante 5
minutos a 37ºC.
NOTA: interpretar la lectura por el grado de aglutinación positivo y si hay
resuspensión de las células como negativo.
CAUSAS DE ERROR EN LA IDENTIFICACIÓN DEL ANTÍGENO RH
POSIBLES CAUSAS DE FALSO POSITIVO.
Adición del antisuero equivocado al tubo de prueba.
Exceso de centrifugación de la mezcla suero/células.
Material de vidrio sucio (lejía, detergente, silicona).
Técnica de lectura inadecuada, agitación muy débil.
POSIBLE CAUSAS DE FALSO NEGATIVO
Omisión de las células del paciente o del donante.
Omisión del antisuero al tubo de prueba.
Baja centrifugación de la mezcla suero/células.
Agitación vigorosa al momento de hacer la lectura.
Deficiente lavado de las células.
POSIBLES CAUSAS DE FALSO POSITIVO O FALSO NEGATIVO
Rotulado incorrecto de los tubos.
Adición equivocada de un antisuero.
Errores en la lectura o interpretación de resultados.
Registro inexacto de los resultados.
Contaminación de antisuero o células de prueba.
Una inexacta relación suero/células en la mezcla de prueba
REACTIVOS PARA IDENTIFICAR ANTIGENOS MAYORES Y
MENORES Rh.
2.2.4 CONTROL DE CALIDAD.
LA CALIDAD DE LOS REACTIVOS
Todas los centros adquieren los reactivos que van a utilizar después de
comprobar que cumplen sus expectativas técnicas. Ello no significa, no
obstante, que no deban someterse a controles sistemáticos, que deben
abarcar la calidad de los análisis inmunohematólogicos.
Figura:N.-24
Título: reactivos para identificación sistema ABO y Rh.
Fuente: Cortesía: Guía para la realización de pruebas Inmunohematológicas,
Lic. Fernando Jaramillo G.
Figura N.-25
Título: Set de Tipificación ABO y RH.
Fuente:Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada Diseño Fulbio Y Bélgica
1. El registro, en el momento de la recepción de los reactivos, de que
las condiciones de embalaje, temperatura y caducidad son
adecuadas.
2. La evaluación de cada lote en el laboratorio antes de usarlo.
3. El control de las condiciones de almacenamiento.
4. El cumplimiento de las instrucciones del fabricante para garantizar
resultados correctos.
5. El análisis diario de controles internos apropiados para garantizar la
corrección y repetibilidad de los resultados.
6. Cualquier error o problema debe ser convenientemente registrado y
comunicado.
LA CALIDAD DE LAS TÉCNICAS
Todos los procedimientos de trabajo deben estar escritos con claridad y
concisión y, una vez que estén aprobados, deberán colocarse en un lugar
de fácil acceso para que el personal pueda consultarlos.
Nadie puede practicar las técnicas de una forma distinta de la aprobada y
no hay que olvidar que la mayoría de los errores que se cometen se
pueden evitar si se siguen las normas,es preciso:
1. Identificar y ordenar las muestras correctamente.
2. Controlar los reactivos.
3. Estudiar controles positivos y negativos junto con las muestras
problemáticas y constatar que se obtienen los resultados
esperados.
4. Establecer un sistema a prueba de errores para el registro de los
resultados.
LA CALIDAD DE LOS INSTRUMENTOS
El equipo que contiene un laboratorio debe ser el adecuado para el uso al
que está destinado.
Para garantizar su correcto funcionamiento es necesario cumplir las
siguientes normas:
CONTROL DE CALIDAD DE LOS REACTIVOS. SUEROS ABO.
Parámetros que se deben controlar Requisitos cualitativos Frecuencia
de los controles.
Apariencia.
Reactividad y especificidad.
Potencia
Ausencia de hemólisis, precipitación, partículas, o formación de gel
detectables mediante examen visual.
Ausencia de hemólisis inmune, formación de Rouleauxo fenómeno de
Prozona.
Reacciones claras con los hematíes portadores del antígeno
correspondiente.
Ausencia de reacciones falsas.
El suero no diluido debe producir una reacción de 3+ a 4+ en medio
Salino con hematíes al 3% a temperatura ambiente. Su titulación
debe ser de 1/128 para al anti-A, anti-B, y anti-AB con hematíes A1
y B, y de 1/64 con hematíes A2 y A2B.
CONTROL DE CALIDAD DE LOS REACTIVOS. SUEROS RH
Parámetros que se deben controlar Requisitos cualitativos Frecuencia de
los controles:
Apariencia.
Reactividad y especificidad.
Potencia.
El suero sin diluir debe dar una reacción de 3+ a 4+ en el test
diseñado para cada suero.
Titulación de 1/16 para anti-D, anti-C, anti-E, anti-c, anti-e y anti-
CDE12.
2.3 DEFINICIÓN DE TÉRMINOS BÁSICOS.
12
Luz Elena Bowen, Manual de Bancos de Sangre
Aglutinación.- Proceso por el cual los glóbulos rojos se unen y ligan entre
sí.
Aloinmunización.- Respuesta inmune en la cual en presencia de
antígenos extraños, el organismo produce anticuerpos.
Anticuerpo.- Proteína protectora producida por la respuesta inmune de
un individuo estimulado por una sustancia extraña generalmente proteica.
Actúa en la defensa contra los patógenos, a menudo por neutralización o
identificación de un agente que debe ser eliminado.
Anticuerpo natural.- Anticuerpo que aparece en el torrente sanguíneo
en ausencia de estimulación antigénica conocida.
Antígeno.- Cualquier sustancia reconocida por el organismo como
extraña, que estimula una respuesta inmune.
Anticuerpo Monoclonal.-anticuerpo homogéneo derivado de una única
clona celular B, todos estos anticuerpos tienen idénticos sitios de fijación
antigénica e isotipo.
Célula sensibilizada.- Célula recubierta de anticuerpos, pero no
aglutinada.
Enfermedad hemolítica del recién nacido.- Cuadro en el cual los
anticuerpos maternos cruzan la placenta y atacaban a los eritrocitos
fetales que poseen los antígenos correspondientes.
Fagocitosis.- Proceso por el cual las células ingieren elementos sólidos,
en particular desechos celulares y patógenos.
Fenótipo.- Efecto observable de los genes heredados; es decir, el grupo
sanguíneo en sí.
Gen alélico.- Gen alternativo que ocupa un locus único en uno de los dos
componentes de un par de cromosomas homólogos.
Genoma.- Estructura genética completa de un organismo.
Genótipo.- Genes heredados de cada uno de los progenitores y que se
encuentran en los cromosomas.
Globulina.- Proteína sérica de la que derivan los anticuerpos.
Hemoglobina.- Líquido rojizo presente en los eritrocitos, constituido por
hierro (hem) y cadenas polipeptícidas (globina).
Hipersensibilidad.-respuesta inmunológica inadecuada o exagerada que
causa daño en un individuo inmunizado.
Inmune.-protegido natural o artificialmente contra una enfermedad
determinada.
Inmunidad Adaptativa.- Es una respueta inmune mucho más compleja
que la anterior ya que ésta si genera memoria, lo cual permite brindar una
protección más efectiva ante un posterior encuentro con el
mismo patógeno
Inmunidad celular.-es la inmunidad mediada por células, alude a las
respuestas inmunitarias mediadas por células T, inmunidad en que los
factores activos son células fagocitarias.
Inmunidad innata.- es un sistema de defensa con el que uno nace y que
lo protege contra los antígenos.
Inmunoglobulina.- proteína, macromolécula que ayuda a la
biodegradación, síntesis del metabolismo.
Locus.- específico sitio de un gen en un cromosoma.
Nucleótido.- Unidad de molécula del DNA o RNA que contiene fosfato,
una pentosa y una base nitrogenada. También es la unión de un
nucleósido con un grupo fosfato.
Precipitación: Combinación específica de anticuerpos
precipitantes con los correspondientes antígenos solubles.
Presentación Antigénica.- proceso por el cual ciertas células (células
presentadoras de antígenos) expresan antígenos en su superficie en una
forma reconocible para linfocitos.
Procesamiento de antígenos: degradación de antígenos
en fragmentos y la asociación de estos fragmentos con moléculas de HLA
para la presentación por células presentadoras de antígenos a células T
específicas.
Prostaglandinas.- derivado activo del ácido araquidónico .pueden
modular respuestas inmunes.
Proteína C Reactiva.- b-Globulina análoga a los anticuerpos que se
encuentra en el suero de pacientes con inflamaciones agudas. Es una
proteína de fase aguda. Es capaz de aglutinar y de opsonizar bacterias.
Respuesta inmune: es específica de los anticuerpos y requiere de la
presentación de sustancias que no son propias del organismo mediante
un proceso llamado” presentación de los antígenos", que se da por unas
células especiales llamadas "células presentadoras de antígenos".
Sangre: líquido que mantiene la vida y que está compuesto de plasma,
glóbulos rojos (eritrocitos), glóbulos blancos (leucocitos) y plaquetas. La
sangre circula a través del corazón, las arterias, las venas y los capilares
del cuerpo; transporta los desechos y el dióxido de carbono para su
eliminación y aporta nutrientes, electrolitos, hormonas, vitaminas,
anticuerpos, calor y oxígeno a los tejidos.
Sistema inmune sistema compuesto por líquido linfático, ganglios
linfáticos, el sistema linfático y glóbulos blancos. Su función consiste en
proteger al cuerpo de infecciones y enfermedades.
Sistema linfático.- parte del sistema inmune que incluye la linfa, los
conductos, los órganos, los vasos linfáticos, los linfocitos y los ganglios
linfáticos. Su función es producir y transportar glóbulos blancos para
combatir infecciones y enfermedades.
2.4 HIPÓTESIS Y VARIABLES
2.4.1 HIPÓTESIS:La hemaglutinación se mide mediante la intensidad de
reacción cuando se valora grupos y subgrupos sanguíneos.
2.4.2 VARIABLES.
VARIABLE INDEPENDIENTE.
Valoración de la Intensidad de Reacción.
VARIABLE DEPENDIENTE.
Identificación de grupos y subgrupos sanguíneos.
2.5 OPERACIONALIZACIÓN DE LAS VARIABLES.
VARIABLE
INDEPENDIEN
TE
CONCEPTO
CATEGOR
IA
INDICADOR
ES
TÉCNICAS E
INSTRUMENT
OS
Intensidad de
reacción
Valoración
semi
cuantitativa de
la reacción de
hemaglutinaci
ón, en los
grupos
sanguíneos,
para expresar
la carga
antigénica
eritrocitaria
Intensidad
de
reacción
4+, 3+, 2+,
1+, 0+
Presencia o
ausencia de
la reacción de
hemaglutinaci
ón
TÉCNICA
Observación
INSTRUMENT
OS
Guía de
observación
Identificación
de grupos y
subgrupos
Conjunto de
antígenos y
anticuerpos
que permiten
clasificar a los
hematíes en
grupos
sanguíneos,
que por su
carga
antigénica Se
diferencian en
grupos y
subgrupos
Sistema
ABO
Sistema
Rh
Presencia o
ausencia de
la reacción de
hemaglutinaci
ón
TÉCNICA
Observación
INSTRUMENT
OS
Guía de
observación
CAPITULO III
3. MARCO METODOLÓGICO.
3.1 MÉTODO.
En la presente investigación se utilizó el método deductivo – inductivo con
un procedimiento analítico, sintético y explicativo.
MÉTODO DEDUCTIVO- INDUCTIVO: Utilizamos este método ya que nos
ayudó al estudio de cada uno de los ensayos, para obtener resultados
generales que nos llevó a sacar conclusiones particulares de nuestro
tema de investigación.
LA APLICACIÓN DEL MÉTODO ANALÍTICO nos permitió analizar las
muestras de sangre los usuarios que acuden al servicio del laboratorio
del Hospital de la Brigada Blindada Galápagos.
LA UTILIZACIÓN DEL MÉTODO SINTÉTICO nos permitió unificar todos
los conceptos y los diversos elementos para formular la teoría.
CON LA APLICACIÓN DEL MÉTODO EXPLICATIVO manifestamos las
causas y consecuencias de nuestro tema de estudio.
TIPO DE INVESTIGACIÓN.
La investigación se caracteriza por ser de tipo descriptiva- explicativa de
campo no experimental.
DESCRIPTIVA Porque una vez que se realiza el primer estudio profundo
de la problemática a investigarse describimos con fundamentos de causa
y consecuencia.
EXPLICATIVA:Porque sobre la base del procedimiento de la información,
recopilación de textos, libros, folletos, llegamos a establecer las causas y
consecuencias.
DISEÑO DE INVESTIGACIÓN.
Esta investigación fue de campo no experimental.
DE CAMPO: Debido a que el proceso investigativo se llevó a cabo en un
lugar específicoen este caso en el laboratorio Clínico de la Brigada
Blindada Galápagos.
3.2 POBLACIÓN Y MUESTRA.
POBLACIÓN.
La presente investigación está constituida por 200 ensayos, es
relativamente pequeño por ello no se extrae muestra.
MUESTRA.
En vista de que nuestra población no es muy extensa trabajamos con
todas las muestras involucradas a quienes se les aplico los diferentes
instrumentos de investigación sobre el fenómeno o problema investigado.
3.3 TECNICAS E INSTRUMENTOS DE RECOLECCION DE DATOS.
TÉCNICAS.
Observación.
Análisis documental.
Recopilación Bibliográfica.
INSTRUMENTOS:
GUIA DE OBSERVACIÓN: Hoja guía para reporte de resultados.
3.4 TÉCNICAS PARA EL ANALISIS E INTERPRETACIÓN DE
RESULTADOS.
Cuadros.
Tabulación.
Análisis.
TABLAS Y GRÁFICOS
Tabla N°1.
ENSAYOS ABO REGISTRADOS POR MES
TABLA: N.- 1
Título: ensayos ABO registrados por mes
FUENTE: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
GRAFICA TABLA N°1
Gráfica: N.- 1
Título: ensayos ABO registrados por mes FUENTE: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
MES
GRUPO
A1
GRUPO
A2
GRUPO
B
GRUPO
A1B
GRUPO O
POSITIVO
GRUPO O
NEGATIVO
FEBRERO 0 0 0 0 25 0
MARZO 5 0 2 1 21 2
ABRIL 2 0 0 0 25 2
MAYO 3 0 1 0 36 0
JUNIO 3 0 0 0 20 0
JULIO 8 1 0 0 43 0
TOTAL 21 1 3 1 170 4
INTERPRETACION: La gráfica de la tabla uno demuestra la cantidad de
ensayos realizados durante el periodo de investigación, el mes de mayor
evaluación corresponde a Julio con 43 determinaciones y se demuestra
que el grupo sanguíneo de mayor frecuencia encontrado es el O con 170
ensayos identificados.
TABLA N°2
EVALUACION PORCENTUAL DE ENSAYOS ABO FIN DE MES.
MES TOTAL
FEBRERO 25
MARZO 31
ABRIL 29
MAYO 40
JUNIO 23
JULIO 52
TABLA: N.- 2
Título: ensayos porcentual ABO registrados por mes
Fuente: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
GRAFICA N°2
EVALUACIÓN PORCENTUAL DE ENSAYOS ABO
Grafica N.- 2
Título: relación porcentual ABO registrados por mes
Fuente:Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
INTERPRETACION: La gráfica de la tabla dos demuestra el número de
ensayos realizados por mes, el de mayor evaluación corresponde al mes
de Julio con 52 determinaciones, incluida la evaluación de una variante
A2, a comparación del mes de Febrero con 25 determinaciones
TABLA N°3
REGISTRO DE ENSAYOS ABO – SUBGRUPOS A Y RH D POSITIVOS -
NEGATIVOS
GRUPO
A1
GRUPO
A2
GRUPO
B
GRUPO
A1B
GRUPO O
POSITIVO
GRUPO O
NEGATIVO
21 1 3 1 170 4
GRAFICA N°3
TABLA N.-3 Título: Registro de ensayos ABO-subgrupos A y Rh Positivos y Negativos. Fuente: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
REGISTRO DE ENSAYOS ABO SUBGRUPOS A Y RH D POSITIVOS Y
NEGATIVOS
INTERPRETACIÓN: La gráfica de la tabla tres, demuestra la cantidad de
ensayos del grupo sanguíneo A con sus variantes A1 con 21 ensayos y
con la variante A2 1 ensayo. Se registra al grupo sanguíneo A1B con un
ensayo y los Rh positivos 170 determinaciones a relación de los Rh D
negativos con 4 determinaciones.
TABLA N°4
DETERMINACIONES DE SUBGRUPOS A
A1 A2 A1B
21 1 1
GRAFICA N°4
Grafica N.- 3
Título: Registro de ensayos ABO-subgrupos A y Rh Positivos y Negativos.
Fuente: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
Tabla N.-4
Título: determinaciones de subgrupos A.
Fuente: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
DETERMINACIONES DE SUBGRUPOS A.
INTERPRETACIÓN: La gráfica de la tabla 4 demuestra la combinación de
la expresión antigénica del grupo sanguíneo A, el más frecuente es el sub
grupo A1 de mayor carga antigénica a relación a la variante A2, esto
Sucede cuando el A1 se combina con el antígeno B para formar el grupo
sanguíneo A1B.
Un receptor A1 de mayor carga antigénica puede recibir transfusiones del
grupo A2, A3 es decir de los de menor carga, pero una transfusión
viceversa no, esto provocará sensibilización y reacción.
Grafica N.-4
Título: determinaciones de subgrupos A.
FUENTE: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
TABLA N°5
DETERMINACIONES DE INTENSIDAD DE REACCIÓN
GRUPOS INTENSIDAD DE REACCIÓN
A1 4
A1B 4
A2 1
D 4
Tabla N.-5
Título: determinaciones de Intensidad de reacción.
FUENTE: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
GRAFICA N°5
DETERMINACIONES DE INTENSIDAD DE REACCIÓN.
Grafica N.-5
Título: determinaciones de Intensidad de reacción.
FUENTE: Ensayos realizados Laboratorio Clínico Hospital Brigada Blindada
Diseño Fulbio Y Bélgica
0
4 4
1
4
GRUPOS A1 A1B A2 D
INTENSIDAD DE REACCION DE SUGRUPOS A1, A1B Y D
Series1 Series2 Series3
INTERPRETACION: la mayor intensidad de reacción se observa, en los
grupos y subgrupos que contienen la mayor carga antigénica, es así como
se observa la reacción de hemaglutinación de 4+ para los subgrupos del
A1, cuando este comparta otro antígeno, como es el caso del A1B,y en
los antígenos D, de este existen seis variantes , al igual del antígeno A la
mayor expresión antigénica se da en el D1 positivo.
CAPITULO IV
4. CONCLUSIONES Y RECOMENDACIONES.
4.1 CONCLUSIONES:
La estructura antigénica ABO combina tres antígenos A, B y H de
estructura glicoproteína, a diferencia de la estructura proteica de cinco
antígenos del Rh, razón por la cual la hace más compleja en la
compatibilidad transfusional y poder hemolizante.
Las técnicas de empleo para evaluar antígenos de grupos sanguíneos,
varían desde su costo, complejidad por la preparación previa de las
muestras. La técnica de tubo emplea la preparación previa de lavado y
suspensión de hematíes para retirar anticuerpos que podrían interferir
en la reacción.
El poder de reacción de intensidad se relaciona con la carga
antigénica, a mayor concentración de antígenos, mayor poder
aglutinante lo que determinara una buena compatibilidad de grupo
siendo más sensible y eficaz su resultado de transfusión.
Como resultado obtenido concluimos que a mayor intensidad de
reacción se observa en la mayor carga antigénica de los grupos y
subgrupos, teniendo como resultado la reacción de hemaglutinación
de 4+ ,3+ siendo así su mayor expresión antigénica el D1.
Concluimos que la mayor cantidad de ensayos del grupo sanguíneo A
y subgrupos de registra mayor cantidad de determinaciones de ABO
Rh positivos con relación a un menor porcentaje de Rh negativos.
Se concluye que el grupo A1 tiene mayor carga antigénica a
relación a la variante A2, esto ocurre, es decir suele haber
compatibilidad con el grupo A2, A3de menor poder antigénico, cuando
el A1 se combina con el antígeno B para formar el grupo sanguíneo
A1B.
Concluimos que el 21% de los pacientes son AI 4+, A2 1+, A1B con
1+, lo cual nos da que a mayor concentración antigénica mayor es la
intensidad de reacción en la, y a menor concentración disminuye la
intensidad de reacción esto es directamente proporcional.
4.2 RECOMENDACIONES.
Compatibilizar sangre ABO tiene su complejidad por la sobrecarga
antigénica que se expresa en subgrupos sanguíneos, es importante
cuando se determina un grupo A, evaluar a cuál de sus variantes se
les ubica.
La suspensión de hematies se las debe hacer 1 en 20, la hemodilución
no afecta a las pruebas, si se tratara de evaluar grupos sanguíneos de
pacientes con deficiencia de hemoglobina, se pondrá mayor cantidad
de muestra de sangre para la tipificación así por ejemplo 2 gotas de
hematíes con una de reactivo.
Tomar precaución su característica natural antigénica de cada grupo
sanguíneo que anticuerpo lo genera, para de esa manera evitar
posibles alteraciones pre-transfusionales en el organismo, en caso de
transfusiones y compatibilidad de grupos.
Estar siempre en constante actualización tecnológica con métodos
técnicas y procedimientos, reactivos así aplicar el control de calidad
externo e interno siendo parte de la renovación técnica teniendo su
objetivo principal atención de calidad al paciente.
Debemos recomendar que una intensidad de reacción está
relacionada con las características genotípicas y fenotípicas de un
grupo sanguíneo, pero debemos tomar muy encuenta que es
sinónimo de herencia, pero más no de paternidad para ese acaso
vendrán pruebas confirmatorias respectivamente de
ADN.(cromosomas
BIBLIOGRAFÍA
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Trabajo en Bancos de Sangre, El Salvador, 2007.
10.-Ministerio de Salud Pública y Asistencia Social, Manual de
MedicinaTransfusional, Uso Clínico de la Sangre, El Salvador, 2002.
11.- OPS.Sangre y componentes seguros.
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14.-Rojas, William.Inmunologia. Colombia : Corporación para
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15.-Rubio CampalFaustino,Inmunologia aplicada a la Hematologia.
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Prestorage WBC reduction on the rates of febrile non haemolytic
transfusion reactions to platelet concentrates and RBC transfusion. USA,
2004; 44:10-15.
ANEXOS
ACCION DE GRUPOS Y SUBGRUPOS ABO Y Rh
Número de Pruebas
ANTI-A
ANTI-B
ANTI-A1
ANTI-A2
ANTI-AB
ANTI-D
ANTI-C
ANTI-c
ANTI-E
ANTI-e
1 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
2 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
3 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
4 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
5 0 0 0 0 0 4+ 0 4+ 4+ 0
6 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
7 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
8 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
9 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
10 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
11 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
12 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
13 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
14 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
15 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
16 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
17 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
18 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
19 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
20 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
21 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
22 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
23 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
24 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
25 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
26 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
27 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
28 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
29 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
30 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
31 0 4+ 0 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
32 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
33 4+ 4+ 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
34 0 0 0 0 0 0 0 4+ 0 4+
35 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
36 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
37 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
38 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
39 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
40 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
41 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
42 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
43 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
44 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
45 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
46 0 0 0 0 0 0 0 4+ 0 4+
47 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
48 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
49 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
50 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
51 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
52 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
53 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
54 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
55 4+ 4+ 4+ 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
56 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
57 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
58 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
59 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
60 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
61 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
62 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
63 0 0 0 0 0 0 0 4+ 0 4+
64 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
65 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
66 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
67 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
68 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
69 0 0 0 0 0 0 0 4+ 0 4+
70 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
71 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
72 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
73 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
74 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
75 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
76 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
77 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
78 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
79 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
80 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
81 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
82 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
83 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
84 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
85 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
86 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
87 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
88 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
89 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
90 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
91 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
92 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
93 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
94 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
95 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
96 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
97 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
98 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
99 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
100 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
101 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
102 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
103 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
104 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
105 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
106 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
107 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
108 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
109 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
110 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
111 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
112 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
113 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
114 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
115 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
116 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
117 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
118 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
119 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
120 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
121 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
122 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
123 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
124 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
125 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
126 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
127 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
128 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
129 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
130 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
131 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
132 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
133 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
134 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
135 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
136 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
137 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
138 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
139 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
140 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
141 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
142 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
143 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
144 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
145 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
146 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
147 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
148 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
149 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
150 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
151 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
152 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
153 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
154 0 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 0 4+ 0
155 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
156 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
157 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
158 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
159 0 0 0 0 0 4+ 4+ 0 4+ 0
160 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
161 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
162 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
163 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
164 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
165 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
166 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
167 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
168 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
169 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
170 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
171 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
172 4+ 0 0 4+ 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
173 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
174 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
175 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
176 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
177 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
178 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
179 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
180 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
181 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
182 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
183 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
184 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
185 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
186 0 0 0 0 0 4+ 4+ 4+ 0 0
187 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
188 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
189 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
190 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
191 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
192 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
193 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
194 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
195 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
196 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 4+ 4+ 0 0
197 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
198 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
199 0 0 0 0 0 4+ 0 0 4+ 4+
200 4+ 0 4+ 0 4+ 4+ 0 0 4+ 4+
Imagen N.-1
Título: preparación de materiales.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-2
Título: rotulado, para proceder a centrifugar.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-3
Título: observamos la presencia del botón aglutinado.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-4
Título: homogenizamos en el agitador suavemente.realizamos el proceso x tres veces.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-5
Título: observamos la presencia o ausencia del botón aglutinado.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-6
Título: posee aglutinación positiva grupo A y reportamos su resultado.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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Imagen N.-7
Título: determinación de grupo ABO y Rh positivo.
Imagen N.-7
Título: determinación de grupo ABO y Rh positivo.
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico
Hospital
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Imagen N.-8
Fuente: Ensayos realizados practica Laboratorio Clínico Hospital
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