Upload
others
View
12
Download
0
Embed Size (px)
Citation preview
i
UJI KESESUAIAN SUBSTRAT ORGANIK TERHADAP STREPTOMYCES SPP.
(MIKROORGANISME ANTAGONIS JAMUR AKAR PUTIH)
Oleh
Ml MADE PUSPAWATI Nl NENGAH DARMKATI
ANAK AGUNG AYU AGUNG SRI SUNARI KONSENTRASI HAMA DAN PENYAK1T TUMBUHAN
PROGRAM STUDI AGROEKOTEKNOLOGI FAKULTAS PERTANIAN UNIVERSITAS
UDAYANA 2016
ii
DAFTAR ISI
Halaman
JUDUL ........................................................................................................... i
ABSTRAK ..................................................................................................... ii
RINGKASAN ................................................................................................ iii
KATA PENGANTAR ................................................................................... vi
DAFTARISI ................................................................................................... vii
DAFTAR TABEL ......................................................................................... ix
DAFTAR GAMBAR ..................................................................................... x
DAFTAR LAMPIRAN ................................................................................. xi
I. PENDAHULUAN .............................................................................. 1
1.1 Latar Belakang ........................................................................... 1
1.2 Tujuan Penelitian ....................................................................... 5
1.3 Manfaat Penelitian ..................................................................... 5
1.4 Hipotesis .................................................................................... 5
II. TINJAUAN PUSTAKA .................................................................... 6
2.1 Pengendalian Hayati .................................................................. 6
2.2 Pertumbuhan dan Kebutuhan Nutrisi Streptomyces spp ........... 9
2.3 Substrat Organik ........................................................................ 13
III. BAHAN DAN METODE .................................................................. 15
3.1 Tempat dan Waktu penelitian .................................................... 15
3.2 Bahan dan Alat ........................................................................... 15
3.3 Metode Penelitian ....................................................................... 15
iii
3.3.1 Perbanyakan Isolat Antagonis Streptomyces spp .......... 15
3.3.2 Penyiapan Substrat Organik ........................................... 16
3.3.3 Inokulasi Antagonis ke dalam Substrat Organik ........ 16
3.3.4 Uji Kesesuaian Substrat terhadap Antagonis
Streptomyces spp ........................................................ 17
3.3.5 Analisis Komposisi Kimia dan Pengujian Beberapa Sifat
Fisika Substrat Organik ............................................... 18
3.3.6 Pengamatan 18
3.3.6.1 Pengukuran Diameter Koloni ......................... 19
3.3.6.2 Pengukuran Ketebalan dan Meratanya Miselium 19
3.3.6.3 Penghitungan Jumlah Streptomyces spp ............ 19
IV. HASIL DAN PEMBAHASAN ...................................................... 20
4.1 Pengaruh Substrat Organik terhadap Diameter Antagonis
Streptomyces spp ........................................................................ 20
4.2 Pengaruh Substrat Organik terhadap Ketebalan dan Meratanya
Miselium Antogonis Streptomyces spp ...................................... 24
4.3 Pengaruh Substrat Organik terhadap Jumlah Spora Antagonis
Streptomyces spp ........................................................................ 25
4.4 Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik .............. 27
4.5 Pengaruh Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik
terhadap Diameter Koloni Antagonis Streptomyces spp ........... 31
4.6 Pengaruh Komposis Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik
4.7 terhadap Jumlah Spora Antagonis Streptomyces spp ................ 32
iv
V. KESIMPULANDANSARAN .......................................................... 34
5.1 Kesimpulan ............................................................................. 34
5.2 Saran ........................................................................................ 34
DAFTAR PUSTAKA .................................................................................. 35
LAMPIRAN ................................................................................................... 39
v
DAFTAR TABEL
No. Judul Halaman
1. Rata-rata diameter Streptomyces spp. (cm) pada berbagai substrat
Organic ...................................................................................................... 21
2. Ketebalan dan meratanya miselium antagonis Streptomyces spp. pada
berbagai substrat organik ....................................................................... 24
3. Rata-rata jumlah spora antagonis Streptomyces spp. 31 hari setelah
inokulasi pada berbagai substrat organik ................................................. 26
4. Komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik .................................. 28
5. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik terhadap
diameter koloni Streptomyces spp ............................................................. 75
6. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik
terhadap diameter koloni Streptomyces spp .............................................. 75
7. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap jumlah
spora Streptomyces spp ............................................................................. 76
8. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik
terhadap jumlah Spora Streptomyces spp .................................................. 76
vi
DAFTAR GAMBAR
No Judul Halaman 1. Pertumbuhan Streptomyces spp. pada berbagai substrat organic ............. 22 2. Kontribusi masing-masing koraposisi kiraia dan sifat fisika terhadap
diameter koloni Streptomyces spp ........................................................... 31 3. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika terhadap
jumlah spora Streptomyces spp ................................................................ 33 4. Ketebalan dan meralanya miselium Streptomyces spp. pada substrat
BS, DJ, RK, DKdan SG ........................................................................... 71 5. Ketebalan dan meratanva miselium Streptomyces spp. pada substrat
DJDK, RKDJ, SGDK dan SGRK ............................................................ 72 6. Ketebalan dan meratanya miselium Streptomyces spp. pada substrat
SGBS, BSDK, RKBS dan SGDJ ............................................................ 73 7. Ketebalan dan meratanya miselium Streptomyces spp. pada substrat
BSDJ dan DKRK ..................................................................................... 74
vii
DAFTAR LAMPIRAN
No. Judul Halaman 1. Diameter antagoms Streptomyces spp. 5 hari setelah inokulasi ............... 42 2. Diameter antagoms Streptomyces spp. 7 liari setelah Inokulasi .............. 45 3. Diameter antagoms Streptomyces spp. 9 hari setelah Inokulasi .............. 47 4. Diameter antagoms Streptomyces spp. 11 han setelah Inokulasi ............. 49 5. Diameter antagoms Streptomyces spp. 13 hari setelah Inokulasi ............ 52 6. Diameter antagoms Streptomyces spp. 15 hari setelah Inokulasi .......... 53 7. Diameter antagoms Streptomyces spp. 17 ivari setelah Inokulasi ........... 55 8. Diameter antagoms Streptomyces spp. 19 hn setelah Inokulasi ............... 57 9. Diameter antagoms Streptomyces spp. 21 hari setelah Inokulasi ............ 59 10. Diameter antagonis Streptomyces spp. 23 hari setelah Inokulasi ............ 61 11. Diameter antagonis Streptomyces spp. 25 hari setelah Inokulasi ............ 63 12. Diameter antagoms Streptomyces spp. 27 hari setelah Inokulasi ............ 65 13. Diameter antagonis Streptomyces spp. 29 hari setelah inokulasi ............. 67 14. Diameter antagoms Streptomyces spp. 31 hari setelah inokulasi ............. 69 15a. Jumlah spora antagoms Streptomyces spp. 31 hari setelah inokulas ........ 71
15b. Hasil perhitungan seteiah ditrasformasi ke 5,0x .......................... 72
15. Gambar ketebalan dan rneratanya misehum pada berbagai substrat organic ..................................................................................................... 74
16. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap diameter koloni Streptomyces spp ............................................. 76
17. Pengamh komposisi kinua dan sifat fisika substrat orgamk terhadap jumlah spora Strepiomvces spp ................................................................ 78
viii
ABSTRAK
Penelitian “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Streptomyces spp.
(Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih) “bertujuan untuk menemukan
substrat organik terbaik yang mana bahannya murah dan mudah didapat Pada
langkah selanjutnya diharapkan substrat organik ini dapat dipergunakan sebagai
media untuk pembiakan massal dalam pengendalian hayati di lapangan.
Hasil penelitian menujukkan tiga substrat organik yang menampakkan
pertumbuhan terbaik dilihat dari variabel diameter koloni dan jumlah spora serta
ketebalan dan meratanya miselium, substrat tersebut : residu kacang tanah + daun
jambu mete (RKDJ), daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) dan serbuk gergaji
+ daun jambu mete (SGDJ). Substrat organik menunjukkan pengaruh sangat nyata
teitiadap variabel diameter koloni dan jumlah spora, begjtu pula dengan komposisi
kimia dan sifat flsika substrat menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap kedua
variabel tersebut.
Diantara ketiga substrat tersebut, campuran residu kacang tanah dan daun
jambu mete mengakibatkan pertumbuhan Streptotnyces spp paling baik,
disamping itu baharmya murah dan mudah didapat.
ix
RINGKASAN
Penyakit akar putih merupakan penyakit hama utama pada pengembangan
jambu mete lima tahun terakhir. Penyakit ini disebabkan oleh Rigidoporus
microporus (Swartz ; Fr.) van Overeem sehingga mengakibatkan penurunan
produksi dan kerugian cukup besar.
Penelitian “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Streptomyces spp.
(Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih)”, bertujuan untuk menemukan
substrat organik yang sesuai bagi pertumbuhan Streptomyces spp. Yang berasal
dari bahan yang murah dan mudah didapat. Selanjutnya keberhasilan pembiakan
massal tersebut berguna untuk memudahkan pengendalian hayati di lapangan.
Penelitian dilaksanakan di Laboratorium Penyakit Tumbuhan Fakultas
Pertanian Universitas Udayana, Denpasar. Penelitian berlangsung dari bulan
November 2014 sampai rcian Januari 2015. Rancangan yang digunakan adalah
Rancangan Acak Lengkap (RAL) jengan 15 perlakuan dan 3 kali ulangan.
Variabel yang diamati yaitu : diameter koloni, ketebalan miselium, meratanya
miselium dan jumlah spora. Guna mengetahui komposisi kimia dilakukan analisis
komposisi kimia dan pengujian beberapa sifat fisika substrat. Bahan substrat
organik diambil dari beberapa bagian tanaman meliputi : buah semu jambu mete,
serbuk gergaji (kayu kamper), dedak kasar, daun jambu mete dan residu kacang
tanah (batang dan daun).
Hasil penelitian menunjukka substrat organik berpengaruh sangat nyata
terhadap dnmeter koloni dan jumlah spora. Substrat yang menunjukkan diameter
x
terpanjang dan spora tertinggi adalah residu kacang tanah + Pada konsentrasi
rendah 6,95 ppm, pertumbuhan antagonis kurang baik, sedangkan pada
konsentrasi tinggi 115,35 ppm pertumbuhan antagonis cukup baik. Komposisi
kimia dan sifat fisika lain (NO3, PO4, DHL, K, C dan N) tidak berpengamh nyata,
tetapi memberikan kontribusi terhadap pertumbuhan Streptomyces spp.
Berdasarkan hasil pengujian terhadap 15 substrat organik didapatkan 3
substrat yang menunjukkan pertumbuhan paling baik yaitu : residu kacang tanah +
daun jambu mete (RKDJ), daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) dan serbuk
gergaji + daun jambu mete (SGDJ). Disamping itu dengan pertimbangan mudah
dan murahnya bahan maka, dipilih substrat campuran residu kacang tanah dan
daun jambu mete sebagai substrat untuk membiakkan antagonis Streptomyces spp.
xi
KATA PENGANTAR
Fuji syukur penulis panjatkan kehadirat Ida Sanghyang Widi Wasa/Tuhan
Yang Maha Esa, karena berkat rahmat-Nyalah, keseluruhan penelitian ini
terselesaikan.
Penelitian berjudul “Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap
Streptomyces spp. Mikroorganisme Antagonis Jamur Akar Putih) “dilaksanakan
di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan. Fakultas Pertanian Universitas
Udayana.
Pada kesempatan ini penulis ingin menyampaikan terima kasih yang
sedalam - dalamnya kepada :
1. Prof. Dr. Ir. I Nyoman Rai, MS. Selaku Dekan Fakultas Pertanian
Universitas Udayana yang telah mengijinkan penelitian ini.
2. Prof. Dr. Ir. I Made Sudamia, MS., selaku Ketua Jurusan/Program Studi
Agroekoteknologi Fakultas Pertanian Universitas Udayana.
3. Semua pihak yang tidak dapat penulis sebutkan satu persatu atas
segala bantuannya selama penelitian ini berlangsung sampai selesai.
Penulis mengharapkan segala saran dan kritik yang bersifat konstruktif
dari pembaca sangatlah penulis harapkan demi kemajuan selanjutnya. Semoga
tulisan ini bermanfaat bagi yang memerlukannya.
Denpasar, Januari 2016
Penulis
1
I. PENDAHULUAN
1.1. Latar Belakang
Pengembangan jambu mete secara komersial di Bali telah dilakukan
sejak tahun 1974 dan terus meningkat, hingga tahun 1993 tercatat mencapai
luas areal 16.325 ha yang tersebar di lima kabupaten yaitu : Karangasem,
Buldeng, Klungkung, Badung dan Bangli (Dinas Perkebunan Propinsi
Daerah Tk. 1 Bali 1994).
Produktivitas jambu mete di Bali mengalami peningkatan antara
tahun 1989 sampai tahun 1991 dari 82 kg/ha tahun 1989 menjadi 387 kg/ha
pada tahun 1991 tetapi pada tahun-tahun berikutnya produktivitas ini
meraimn karena adanya hambatan dalam pengembangan jambu mete, salah
satunya adalah penyakit akar putih. Pada tahun 1992 dilaporkan bahwa
tanaman jambu mete yang terserang sebanyak 1.298 pohon (6,5 ha),
kemudian menjadi 6.604 pohon (333 ha) pada tahun 1993 dan sampai bulan
Oktober 1994 mencapai 24.450 pohon (122 ha). Penyakit akar putih
disebabkan oleh Rigidoporus microporus (Swartz : Fr.) van Overeem,
merupakan suatu jenis jamur yang tergolong kelas Basidiomycetes (Basuki,
1985). Jamur ini mempunyai tiga puluh lima sinonim dan ada beberapa
yang sering dipakai diantaranya : Fomes lignosus Klotzsch, Leptoporus
lignosus (Klotzsch) Heim et Pat Fomes semitosus Petch, dan Rigidoporus
lignosus (Klotzsch) Imazeki (Overeem, 1924). Perkembangan jamur akar
2
putih didukung oleh kondisi lingkungan tertentu seperti musim kemarau
yang terlalu kering dan pH tanah netral sampai basa.
Infeksi jamur akar putih lebih mudah terjadi melalui luka atau lenti
sel dan selanjutnya jamur masuk ke dalam jari-jari empulur (John, 1985).
Menurut Young, (1954) ada dua jenis infeksi yaitu : 1) Infeksi akut, yang
menyebabkan gejala yang jelas ; 2) Infeksi kronis (laten, menahun), gejala
yang ditimbulkan tidak jelas.
Pada garis besamya pengendalian jamur akar putih dapat dilakukan
secara langsung dan tidak langsung. Pengendalian secara langsung
dilakukan dengan menentukan pohon sakit dan kemudian mengobatinya,
sedangkan secara tidak langsung dengan menghilangkan sumber infeksi
secara mekanis, biologjs maupun kimiawi (Semangun, 1989).
Pengendalian jamur akar putih sampai saat ini masih mengalami
hambatan diakibatkan mudahnya penularan penyakit tersebut melalui
kontak antara akar tanaman sakit dengan akar tanaman sehat ataupun sisa-
sisa akar tanaman yang merupakan sumber inokulum di lapangan. Ada
beberapa cara yang sudah dilakukan untuk mengendalikan penyakit tersebut
antara lain : 1) Kultur teknis dengan pemupukan yang seimbang, perbaikan
drainase kebun dan pengendalian gulma; 2) Pengendalian secara mekanis
dengan menghilangkan dan memotong bagian akar yang terserang pada
tanaman muda yang masih dapat dipertahankan dan untuk yang terserang
berat atau mati, bagian tunggul serta akamya dibongkar dan dibakar di
3
tempat ; 3) Mengaplikasikan fungisida khususnya pada tanaman yang
menunjukkan gejala terserang ringan dan sedang.
Penerapan cara tersebut seringkali tidak memberikan hasil yang
memuaskan dan hanya bersifat sementara, pengendalian secara kimiawi
sering meninggalkan residu pestisida yang dapat menimbulkan dampak
negatif bagi lingkungan.
Pengendalian hayati dengan memanfaatkan mikroba antagonis
diharapkan dapat menggantikan pengendalian secara kimia. Pemanfaatan
mikroba antagonis dapat dilakukan dengan 2 cara yaitu : 1) Memanipulasi
lingkungan untuk meningkatkan aktivitas dan perkembangan mikroba
antagonis yang ada; 2) Dengan mengintroduksi secara massal mikroba
antagonis yang telah terbukti dan teruji kemampuannya (Sinaga, 1986).
Usaha pengendali penyakit jamur akar putih menggunakan mikroba
antagonis untuk tanaman jambu mete di daerah Bali saat ini sedang
dilakukan.
Beberapa mikroba telah ditemukan dan mempunyai potensi sebagai
agen pengendali hayati bagj patogen yang menyerang perakaran tanaman.
Kebanyakan yang telah diuji adalah jamur dari genus Trichoderma spp.
seperti T. honingii ( Basuki, 1985) T. hamatum (Lewis dan Papavizas, 1986)
T. harzianum, T. polysorium dan T. viridae (Mulya dan Manohara, 1988)
dan dari genus Gliocladium spp. (Sinaga, 1994), juga telah diuji
kemampuan bakteri Pseudomonas khususnya yang mempunyai kemampuan
membentuk siderofor. Pada penelitian terakhir dari Tim Peneliti
4
Pengendalian Biologi Penyakit Akar Putih Jambu Mete Fakultas Pertanian
Universitas udayana, telah menemukan satu genus yang mampu menekan
pertumbuhan jamur akar putih pada jambu mete, yaitu Streptomyces.
Melalui pengujian, Steptomyces memiliki daya tekan yang cukup tinggi.
Genus ini menghasilkan banyak sekali jenis antibiotika, baik yang memiliki
spektrum luas maupun yang sempit dan spesifik. Antibiotika yang
dihasilkan oleh beberapa spesies atau strain dari Streptomyces spp. memiliki
spektrum yang paling luas dibandingkan dengan beberapa genus lainnya.
Beberapa antibiotika yang dihasilkan mampu aktif pada jamur, bakteri,
tumor, riketsia dan virus secara luas, sedangkan beberapa spesies memiliki
keaktifan yang sempit dan spesifik (Waksman, 1959).
Keberhasilan penggunaan mikroba yang metnpunyai daya
antagonistik yang kuat sangat ditentukan oleh kondisi lingkungan yang baru
dan juga harus ditunjang oleh keberhasilan pembiakan massal inokulum
agen tersebut (Sinaga, 1994). Untuk membiakkan agen hayati secara massal
memerlukan substrat yang diharapkan berasai dari bahan yang mudah
didapat dan murah secara ekonomis, sehingga nantinya dapat menekan
biaya pengendalian dan mudah dalam penerapannya. Keberhasilan dalam
pembiakan massal sangat ditentukan oleh substrat dan antagonis, dimana
bila substrat sesuai dengan yang dibutuhkan oleh antagonis, maka antagonis
tersebutakan mampu tumbuh dengan baik. Beberapa antagonis memiliki
kemampuan beradaptasi yang berbeda-beda terhadap media Kandungan
nutrisi dan komposisi beberapa substrat organik diharapkan dapat
5
memenuhi kebutuhan mikroba antagonis sehingga dapat beradaptasi dan
terangsang pertumbuhannya. Jika kedua faktor tersebut dapat saling
mdengkapi maka antagonis dapat berhasil dibiakkan secara massal, pada
langkah selanjutnya mikroba antagonis dapat diaplikasikan di lapangan
dengan tingkat keberhasilan lebih besar. Temaja (1994) menyatakan substrat
pendukung tersebut dapat berupa bahan organik atau residu tanaman yang
cocok bagi mikroba, sehingga mikroba yang tdah diaplikasikan secara
massal akan mempunyai cadangan makanan yang cukup sampai mempunyai
kemampuan untuk beradaptasi dengan lingkungan. Menurut Johnson dan
Curl (1972) residu tanaman tua menghasilkan pengaruh yang lebih baik
dibandingkan dengan tanaman yang masih hijau. Sisa tanaman yang
dipotong-potong sampai 3 mm atau lebih kecil, memberikan pengaruh lebih
efektif pada pertumbuhan organisme dari pada yang kasar (Maier, 1959).
Berdasarkan hal tersebut penulis berkeinginan untuk membuat
substrat organik yang sesuai bagi isolat antagonis Streptomyces spp.
Diharapkan substrat ini bisa digunakan dalam pembiakan massal antagonis
tersebut
1.2. Tujuan Penelitian
Penelitian ini bertujuan untuk rnenemukan substrat organik yang
cocok bagi pertumbuhan dan perkembangan antagonis Streptomyces spp.
6
1.3. Manfaat Penelitian
Ditemukannya substrat organik yang sesuai dengan Streptomyces
spp, akan memudahkan pembiakan massal untuk kebutuhan aplikasi di
lapangan.
1.4. Hipotesis
Pertumbuhan dan perkembangan mikroba antagonis Streptomyces
spp, dipengaruhi oleh substrat yang mengandung residu kacang tanah.
7
II. TINJAUAN PUSTAKA
2.1. Pengendalian Hayati
Pengendalian hayati adalah meliputi setiap usaha pengurangan atau
penurunan penyakit atau potensi inokulum patogen dengan cara
menggunakan agensia biologi yang lain secara langsung maupun tidak
langsung (Johnson dan Curl, 1972). Garret (1965) mengartikan agensia
biologi yang lain secara lebih spesifik yaitu membatasi pada
mikroorganisme atau makroorganisme selain tanaman dan patogennya
sendiri. Dalam hal ini penggunaan varietas tahan, prainokulasi tanaman
dengan strain avirulen dan manusia sebagai peiaku pengendali tidak
termasuk sebagai agensia biologi yang lain menurut konsep ini.
Satu konsep tentang pengendali hayati dilontarkan oleh Baker dan
Cook (1983) sebagai hasil penggabungan berbagai definisi sebelumnya
sebagai berikut: Pengendalian hayati adalah pemanfaatan organisme untuk
menekan jumlah inokulum atau “disease-producing activity yang meliputi
pertumbuhan, agresivitas dan virulensi dari suatu patogen dalam keadaan
aktif atau dorman.
Pengendalian hayati dipilih karena pengendali ini dapat menjawab
beberapa problema pertanian diantaranya : meningkatkan produksi tanaman
tanpa terlalu banyak menggunakan energi, menghindari terbentuknya
resistensi patogen terhadap bahan kimia, mencegah terjadinya polusi
8
lingkungan dan metode ini nuatibel dengan konsep pertanian berkelanjutan
(Arya, 1995).
Menurut Arya (1994) konsep dasar dari pengendali hayati adalah
berwawasan ekosistem artinya pengendali ini tidak melenyapkan patogen
penyebab penyakit secara total, tetapi membavva mereka ke dalam
keseimbangan biologi. Hal tersebut dapat dilakukan dengan memanfaatkan
agens hayati untuk menyelaraskan hubungan dari komponen ekosistem guna
menghindari munculnya spesies dominan yang pada akhirnya merupakan
patogen tanaman.
Salah satu metode yang memberikan harapan dan sering digunakan
untuk menanggulangi patogen dalam tanah secara hayati ialah dengan
pengaturan kandungan residu tanaman dan bahan organik dalam tanah.
Penurunan intensitas penyakit akibat penambahan substansi ke dalam tanah
terjadi melalui pengaruh antagonisme. Mekanisme penekanan
perkembangan patogen terjadi melalui proses kompetisi, predasi,
parasitisme, antibiosis atau mekanisme lain yang bersifat merugikan bagi
patogen (Patrick dan Tousson, 1970).
Hadi et al. (1975) mengemukakan bahwa bahan organik cukup
efektif untuk mengurangi intensitas penyakit. Juga diketahui efisiensi
pergiliran tanaman untuk pengendalian berbagai jenis penyakit yang
disebabkan oleh patogen dalam tanak Keuntungan cara ini mungkin tidak
hanya karena “kelaparan” dari patogen disebabkan karena tiadanya inang,
9
tetapi juga karena perangsangan sifat antagonistik dari flora mikro dalam
tanah dengan adanya tanaman bukan inang dan sisa tanaman bukan inang.
Akibat kompetisi akan substrat dan lingkungan yang
memberikan kemungkinan hidup, sangatlah berat. Dalam kompetisi untuk
makanan dan ruang, semua jasad berinteraksi secara langsung maupun tidak
langsung dengan jasad lain yang ada didekatnya. Kompetisi yang sangat
berat mengakibatkan jasad yang memiliki pengaruh tidak menguntungkan
terhadap jasad lain yang ada didekatnya, menang dalam kompetisi.
Makanan dalam tanah umumnya terbatas persediaannya, akumulasi
dari hasil sampingan proses metabolisme, kerap kali berpengaruh tidak baik
untuk kelangsungan pertumbuhan jasad renik. Oleh karena itu penambahan
inokulum harus disertai dengan perubahan lingkungan itu sedemikian rupa
sehingga menguntungkan antagonis yang kita berikan. Mungkin sekali
bahwa dengan menanam residu tanaman ke dalam tanah dapat pula
menyebabkan populasi antagonis menjadi lebih besar.
Pengendalian hayati terhadap berbagai penyakit tumbuhan akibat
jamur dalam tanah diarahkan pada memodifikasi tanah sehingga
perkembangan antagonis saprofitik mencapai populasi maksimum.
Pengendalian ini digambarkan sebagai keseimbangan dinamik suatu
populasi hayati dalam tanah (Waksman, 1959). Salah satu usaha yang dapat
dilakukan dengan mengembangankan metode pengendalian patogen secara
biologi yaitu dengan mencampurkan antagonis dan bahan organik yang
10
cocok dengan tujuan mempercepat pemantapan antagonis dalam tanah
(Baker dan Cook, 1974).
Meraksi antara inang, patogen dan lingkungan ternyata lebih
kompleks danpada yang disangka semula. Sehingga ke dalam segitiga
penyakit perlu ditambahkan peranan mikroorganisme lain yang dapat
digunakan sebagai pengendali hayati secara tepat dan efektif (Modjo, 1991).
Baker (1983) menggambarkan suatu mekanisme pengedalian hayati
sebagai segitiga yang menghubungkan inang, patogen dan agen pengendali
hayati, dimana mekanisme pengendalian hayati berlangsung berupa
interaksi di dalam tanaman inang yang meliputi : 1) Ketahanan terimbas
(proteksi silang) ; 2) Inhibitor atau kompetisi ; 3) Hipovirulen. Mekanisme
pengendalian hayati di luar tanaman dilakukan oleh antagonis. Hal tersebut
terjadi melalui proses : 1) Antibiosis ; 2) Kompetisi; 3) Eksploitasi (meliputi
predasi dan hiperparasitisme).
Ada beberapa agens antagonis yang dilaporkan memiliki potensi
untuk menekan perkembangan jamur akar. Diantaranya dari genus
Trichoderma, Gliocladuim (Sinaga, 1994) dan Pseudomonas khususnya
yang mempunyai kemampuan membentuk siderofor. Beberapa species dari
genus Trichoderma yang ditemukan mampu berperan sebagai pengendali
penyakit tanaman adalah T. koningii (Basuki, 1985 ), T. hcanatum (Lewis
dan Papavizas, 1986) T. liarzianum, T. polysorium dan T. viridae (Mulya
dan Manohara, 1988). Penelitian terakhir dari Tim Peneliti Pengendalian
Biologi Penyakit Akar Putih Jambu Mete Fakultas Pertanian Universitas
11
Udayana, telah memukan satu genus yang memiliki daya tekan yang tinggi
terhadap jamur akar putih jambu mete yaitu Streptomyces.
2.2. Pertumbuhan dan Kebutuhan Nutrisi Streptomyces spp.
Streptomyces merupakan salah satu genus dari Divisio
Actinomycetes. Telah diketahui bahwa Actinomycetes merupakan
organisme transisi (peralihan) antara jamur dan bakteri. Menurut Waksman
(1959) klasifikasi Streptomyces sebagai berikut:
Divisio : Actinomyces
Kelas : Actinomycetes
Ordo : Aetinomycetales
Famiii : Streptomycetae
Genus : Streptomyces
Organisme ini dianggap kebanyakan peneliti sebagai organisme
transisi berdasarkan hubungannya dengan jamur dan bakteri. Peneliti
terdahuiu yang mengklasifikasikan Actinomycetes ke dalam jamur
diantaranya : Harz, Gasperini, Sauvageau dan Radais.
Selanjutnya ada kelompok peneliti yang lebih cenderung
memasukkan Actinoraycetes kedalam kelompok transisi, hal ini didasarkan
adanya perbedaan nyata dari penyusun Actinomycetes khususnya
morfologi alamiah sehingga sebagian besar menempatkannya antara bakteri
dan jamur.
12
Beberapa penelitian menunjukkan bahwa Streptomyces spp yang
diisolasi dari dalam tanah dan perrnukaan memiliki keunggulan lebih
banyak dari pada jamur dan bakteri umumnya. Waksman (1959)
memperkirakan Streptomyces spp. menjadi sangat beriiasil diantara selumh
mikroorganisme, karena memiliki keseimbangan sifat yang menguntungkan
seperti : 1) Kecepatan perkembangbiakan dan mekanisme eflsiensi; 2) Lama
hidup dari organisme (yiabilitas) ; 3) Resistensi organisme tertiadap
pengaruh luar.
Seperti halnya organisme lain, fisiologi pertumbuhan dan kebutuhan
nutrisi dari Streptomyces sangat menarik untuk diketahui. Beberapa hal
yang menyangkut fisiologi Streptomyces meliputi studi tentang
pertumbuhan, nutrisi, proses metabolismenya dan reaksinya terhadap
kondisi lingkungan.
Pertumbuhan Streptomyces griseus sangat maksimal pada media
yang padat dalam sepuluh hari dan media terendam 3 sampai 5 hari, diikuti
oleh lisis miselium Pertumbuhan mikroba tersebut diikuti meningkatnya pH
media, kandungan amonia dan kebutuhan nitrogen. Jumlah nitrogen dalam
miselium setara dengan tingkat pertumbuhan. Produksi dan penyebaran
streptomisin setara dengan perturnbuhan organisme. Sebelum aktivitas
maksimum tercapai, terjadi penurunan kecepatan pertuinbuhan khususnya
pada media terendarn. Produksi dari streptomisin memerlukan adanya
substansi organik yang komplek pada media, salah satu akan menjalankan
prekursor dari molekul streptomisin atau semua kelompok penting dalam
13
molekul atau berfungsi sebagai kelompok prostetik pada mekanisme dasar
untuk sintesis antibiotika Substansi ini menunjukkan aktivitas, yang dapat
dilakukan oleh organisme dalam media yang lengkap. Pada ekstrak daging
atau jagung rendam proses sintesis antibiotik sangat mudah berlangsung
(Waksman, 1959).
Penelitian metabolisme S. aureofacien dalam media komplek berisi
sukrose dan protein, Biffi et al, ((-), dalam Waksman 1959) menemukari
sintesis miselium tumbuh cepat pada 24 jam pertama kanudian
kecepatannya berkurang pada 24 jam berikutnya. Pada waktu 12 jam
pertama konsumsi gula dapat diabaikan, saat kandungan NH3 meningkat
pada media, protein digunakan sebagai sumber energi. Meningkatnya
pertumbuhan mengakibatkan penggunaan gula dan konsumsi amoniak
meningkat cepat, nilainya setara dengan meningkatnya berat kering
organisme.
Proses metabolisme terbagi menjadi 2 fase, crescene dan senescene.
Pada fase pertama, terjadi penyerapan nitrogen terlarut, karbon dan fosfat ke
dalam miselium, keperluan oksigen tinggi dan penggunaan glukose sangat
cepat tetapi produksi antibiotika sangat kecil. Pada fase kedua berat miselia
berkurang, penyerapan fosfat dan nitrogen menurun, keperluan oksigen
terhenti dan produksi streptomisin meningkat. Beberapa laktat juga
terbentuk pada waktu tingkat awal tetapi lambat (Dulaney dan Perlman,
1956 dalam Waksman, 1959).
14
Ada beberapa pernyataan dari para peneliti yang mengungkapkan
kebutuhan in sumber karbon dari Streptomyces diantaranya: Stapp dan
Spicher (1958 dalam Waksman, 1959) menyatakan beberapa spesies
Streptomyces mampu tumbuh pada media yang memiliki sumber karbon
dengan konsentrasi yang tinggi.
Dalam proses metabolisme diperlukan mineral dan unsur lain yang
merupakan komponen dari proses metabolisme tersebut. Elemen mineral
menempati peran yang sangat penting dalam pertumbuhan organisme.
Fungsinya sebagai pengatur mekanisme dari berbagai transformasi yang
terdapat didalam sistem kehidupan. Komposisi sebagian besar media
sintetik yang digunakan pada pertumbuhan actinomycetes, memerlukan
fosfor, belerang, besi, kalium, magnesium dan juga elemen organik dalam
beberapa keadaan, seperti dalam produksi dari beberapa antibiotik, pigmen
dan vitamin, begitu pula elemen seperti, kalium, kalsium, cWorin, mangan,
cobalt dan seng menempati bagian yang sangat penting pada reaksi biokimia
yang rumit.
Thornberry dan Anderson ( dalam Waksman, 1959) meneliti media
sintetik untuk memproduksi streptomisin yang mengandung karbon,
beberapa nitrogen, kalium, magnesium, seng, besi, copper dan mangan.
Pengaruhrrya dilihat dengan menghilangkan unsur tersebut dari media,
kemudian hasil pengamatan dibandingkan dengan media komplek, sehingga
dapat disimpulkan bahwa kalium, magnesium, seng dan besi dibutuhkan
untuk memproduksi streptomisin. Unsur lain seperti mangan dapat
15
merangsang produksi antibiotik tetapi tidak berpengaruh terhadap
pertumbuhan, sedangkan kalsium tidak berpengaruh pada produksi
antibiotik ataupun pertumbuhan.
Protein, pepton dan beberapa asam amino adalah merupakan sumber
nitrogen terbaik untuk Actinomycetes diikuti oleh nitrat, garam amonium
dan urea. Actinomycetes tidak mampu mengikat nitrogen dan hanya dapat
bergantung kepada mayoritas jamur dan bakteri, dalam mengikat komponen
nitrogen untuk sintesis selnya.
Lieske (1921 dalam Waksman, 1959).Sumber nitrogen yang sangat
baik untuk beberapa Actinomycetes pada substrat organik yaitu nitrat dan
nitrit Nitrat dan nitrit direduksi menjadi amoniak kemudian diasimilasi
untuk seluruh sintesa Proses reduksi menjadi nitrogen (amoniak dan
hydroxylamme) sangat mudah pada konsentrasi rendah (tidak lebih dari 10-
12 persen). Kondisi ini memungkinkan bila rasio dari C : N tidak lebih dari
20 : 1.
2.3. Substrat Organik
Penggunaan residu tanaman atau bahan organik dalam
penanggulangan patogen telah banyak dilakukan, antara lain terhadap busuk
akar kacang buncis, tembakau dan wijen yang disebabkan Thielaviopsis
basicola (Berk & Br.) dengan menggunakan residu alfalfa dan jagung
(Adam dan Papavizas, 1969), busuk akar pada apokat yang disebabkan
Phytophthora cirmamoni Rands, dengan menggunakan tepung alfalfa
16
(Zentmyer, 1963), dan busuk akar jeruk yang disebabkan P. parasitica Dast
dengan menggunakan residu dari tanaman kubis-kubisan. Penggunaan
residu tanaman tersebut menyebabkan menurunnya tingkat serangan
patogen tanah. Kasim (1985) menyatakan bahwa residu berbagai tanaman
(padi, jagung, kacang kedelai, kacang tanah dan kacang hijau) dengan cara
dicampur dengan tanah dan yang diberikan dipermukaan tanah (sebagai
mulsa) pada percobaan pot di rumah kaca, mempunyai pengaruh yang
berbeda terhadap perryakit busuk pangkal batang lada (Phytophihora
palmivora (Butler) Butler). Pemberian residu sebanyak 2 persen dengan cara
dicampur tanah telah dapat menurunkan intensitas penyakit busuk pangkal
batang lada {Phytophlhora palmivora) beddsar antara 20 sampai 58 persen,
sedangkan pemberian sebagai mulsa temyata meningkatkan serangan
sebesar 27 persen.
Berdasarkan kenyataan di atas, residu tanaman atau bahan organik
memiliki potensi untuk dijadikan substrat yang dapat merangsang
pertumbulian mikro organisme antagonis, sehingga populasinya meningkat
dan dapat menekan patogen tanah
17
III METODE PENELITIAN
3.1. Tempat dan Waktu Penelitian
Penelitian dilakukan di Laboratorium Ilmu Penyakit Tumbuhan,
Fakultas Pertanian Universitas Udayana, Denpasar. Penelitian berlangsung
selama tiga bulan yaitu bulan November 2014 sampai dengan Januari 2015.
3.2. Alat dan Bahan Penelitian
Peralatan yang digunakan dalam penelitian terdiri dari pH meter,
mesin penggiling, centrifius, timbangan, gelas ukur, gelas beker, cawan
petir, pinset, tabung reaksi, elemeyer, pipet Pasteur, pipet 10 ml, pipet 1 ml,
bor gabus, lampu spritus, autoclave, mikroskop, hemasitometer, ent cast,
selotip, label, kain lap dan ember. Bahan yang digunakan dalam penelitian
ini adalah media potato dextrose agar (PDA), biakan antagonis
Streptomyces spp, aluminium foil, dedak kasar, serbuk gergaji (kayu
kamper), residu kacang tanah (batang dan daun), buah semu jambu mete,
daun jambu mete, alcohol 70%, tissue dan aquades.
3.3. Metode Penelitian
3.3.1 Perbanyakan Isolat Antagonis Streptomyces spp.
Guna mendapatkan biakan Streptomyces spp, yang cukup untuk
penelitian, maka dilakukan perbanyakan pada media PDA dalam cawan
petri.
18
Biakan yang sudah murni dipindahkan ke media PDA secara aseptik
dengan menggunakan jarum isolasi di dalam ruang suci hama. Biakan
tersebut kemudian dinkubasikan pada suhu ruang selama 7 hari untuk
mendapatkan sumber inokulum yang homogeny.
3.3.2 Penyiapan Substrat Organik
Substrat organik yang digunakan adalah yang murah dan mudah
didapat. Bahan tersebut terdiri dari buah semu jambu mete, dedak kasar,
residu kacang tanah (batang dan daun), serbuk gergaji (kayu kamper) dan
daun jambu mete. Bahan tersebut dihaluskan dengan mesin penggiling
kecuali buah semu jambu mete. Buah tersebut djblender terlebih dahulu,
diperas dan dianginkan, baru nudian dikeringkan dengan oven selarna dua
hari pada suhu 50°C. Setelah kering, dihaluskan dengan mesin penggiling
Selanjutnya bahan-bahan tersebut direndam secara terpisah selarna 24 jam,
kemudian diperas sampai kadar airnya ± 45%. Masing-masing bahan
ditimbang seberat 5 gram dan dimasukkan ke dalam cawan petri. Setelah
substrat diratakan, kemudian dibungkus dengan alumunium foil
Selanjutnya disteril 3 kali dengan auto clave selarna 60 menit 15 psi
dengan jelang waktu 2 hari. Hal ini dilakukan untuk meyakinkan substrat
tersebut steril.
3.3.3 Inokulasi Antagonis ke dalam Substrat Organik
Biakan yang sudah disipkan di atas diinokulasikan pada substrat
organik yang sudah disiapkan. Biakan Streptomyces spp. dipindahkan
secara aseptik dengan menggunakan bor gabus berdiameter 0,5 mm dan
19
diletakkan dengan jarum isolasi pada bagian tengah substrat pada setiap
cawan petri. Isolasi tersebut dilakukan secara aseptik dalam ruang suci
hama dan menggunakan lampu sepritus untuk aga kesterilan alat-alat yang
digunakan. Substrat yang sudah diinokulasi kemudian ditutup rapat
dengan selotip untuk menghindari kontaminasi.
3.3.4 Uji Kesesuaian Substrat Organik terhadap Antagonis Strfptomyces
spp.
Guna mengetahui kemampuan pertumbuhan Streptomyces spp.
pada berbagai substrat maka, dilakukan pengujian dengan menggunakan
Rancangan Acak Lengkap (RAL), yang terdiri dari 15 perlakuan dengan 3
kali ulangan. Substrat yang diuji:
BS = buah semu jambu mete
DJ = daun jambu mete
SG = serbuk gergaji
DK = dedak kasar
RK = residu kacang tanah
SGBS = serbuk gergaji + buah semu jambu mete
BSDK = buah semu jambu mete + dedak kasar
RKBS = residu kacang tanah + buah semu jambu mete
SGDJ = serbuk gergaji + daun jambu mete
DJDK = daun jambu mete-t-dedak kasar
RKDJ = residu kacang tanah + daun jambu mete
SGDK = serbuk gergaji + dedak kasar
20
SGRK = serbuk gergaji + residu kacang tanah
BSDJ = buah semu jambu mete + daun jambu mete
DKRK = dedak kasar + residu kacang tanah
3.3.5 Analisis Kompoxisi Kimia dan Pengujian Bdberapa Sifat Fisika
Substrat Organik
Pengkuran dan analisis komposisi kimia dan sifat fisika yang
dikerjakan pada penelitian ini adalah : pH substrat, C7 N, NH3, PO4, NG3
K dan daya hantar listrik (DHL).
Substrat yang akan diukur pH-nya ditimbang sebanyak 50 gram
kemudian diencerkan dengan aquades hingga menjadi 50 ml, dimasukkan
dalam tabung reaksi kemudian dikocok dengan mesin pengocok selama 30
menit Setelah dilakukan pengocokan diukur dengan menggunakan pH
meter.
Analisis C dan N substrat dilakukan di Laboratorium jurusan tanah
Fakultas Pertanian Universitas Udayana. Analisis C menggunakan metode
Kejedalh (Anon, 1958) dan analisis N menggunakaan metode pengabuan
kering (Anon, 1958)
Analisis NH3, PO4, NO3, K dan DHL (daya hantar listrik) substrat
dilakukan di Laboratorium Analitik Fakultas MTPA Universitas Udayana
Analisis daya hantar listrik dilakukan dengan alat conductivity meter kit,
analisa NO3 dengan metode standar nitrat, PO4 dengan metode asam
sulfat-asam nitrat, NH3 dengan metode Nessler dan K dengan metode
Pengabuan basah (Saeni dan Darusman, 1989).
21
3.3.6 Pengamatan
Variabel yang diamati antara lain diameter koloni, ketebalan
miselium, meratanya miselium dan jumlah spora yang terbentuk pada
substrat.
3.3.6.1 Pengukuran Diameter Koloni
Pengukuran terhadap diameter koloni dllakukan 5 hari seteiah
mokulasi, ukuran dilakukan dengan menggunakan plastik trasparan
bersekala. Selang waktu pengukuran adalah dua hari sampai salah satu
petri dipenuhi oleh antagonis.
3.3.6.2 Pengukuran Ketebalan dan Meratanya Miselia
Pengukuran ketebalan dan meratanya miselia antagonis dilakukan
dengan pengamatan visual terhadap miselia antagonis dengan skala
kualitatif sebagai benkut :
Tebal dan merata : ++++
Ketebalan sedang dan agak merata : +-H-
Ttpis : ++
Sangat tipis : +
Tidak mengalami pertumbuhan : -
Pengamatan dilakukan pada saat salah satu cawan petri sudah
dipenuhi oleh antagonis Streptomyces spp (akhir penelitian).
22
3.3.6.3 Penghitungan Jumlah Spora Steptomyces spp.
Untuk menghitung jumlah spora antagonis ini digunakan metode
Hitungan Mikroskopis Langsung (Direct Microscopic Count). dengan
menggunakan hemasitometer.
23
IV HASIL DAN PEMBAHASAN
4.1. Pengaruh Substrat Organik terhadap Diameter Koloni Streptomyces
spp.
Tingkat pertumbuhan antagonis Streptomyces spp. pada berbagai
substrat organik terlihat pada perkembangan diameter antagonis.
Berdasarkan Lampiran 1-15 dapat dilihat bahwa substrat organik
memberikan pengaruh sangat nyata (p<0,01) terhadap diameter antagonis
Streptomyces spp. pada semua pengamatan. Untuk membandingkan masing-
masing perlakuan, dilakukan uji jarak berganda Duncant (Tabel 1.).
Setelah inokulasi pertumbuhan Streptomyces spp. terus meningkat,
kecuali pada empat substrat yaitu : buah semu (BS), buah semu + daun
jambu mete (BSDJ), serbuk gergaji + buah semu (SGBS), buah semu +
dedak kasar (BSDK) dari awal inokulasi sampai akhir pengamatan tidak
memperlihatkan gejala pertumbuhan. Hal ini disebabkan pH pada substrat
tersebut rendah (dibawah 4,0), dimana pH substrat berpengaruh sangat nyata
(p<0,01) terhadap diameter Streptomyces spp. Diameter terpanjang terlihat
pada substrat residu Kacang tanah + daun jambu mete (RKDJ) dengan pH
7,05 yang mendekati kisaran pH optimum (7,1 - 8,0) dari Streptomyces spp.
Tingkat pertumbuhan Streptomyces pada masing-masing perlakuan
ditampilkan pada Gambar 1. Grafik pertumbuhan Streptomyces spp.
meningkat cukup tinggi pada awal penelitian (7 dan 9 hari setelah inokulasi)
seperti pada : residu kacang tanah (RK), residu kacang tanah + buah semu
24
(RKBS), serbuk gergaji + daun jambu mete (SGDJ), daun jambu mete +
dedak kasar (DJDK), RKDJ, serbuk gergaji + residu kacang tanah (SGRK)
dan dedak kasar + residu kacang tanah (DKRK). Unsur yang merupakan
pendorong pertumbulian yang baik
25
Tabel 1. Rata – Rata diametr Streptomyces spp. (cm) pada berbagai substrat organik
Hasil Setelah Inokulasi Perlakuan 5 7 9 11 13 15 17 19 21 23 25 27 29 31
BS 05.c DJ 06.bc SG 06.bc DK 07.b RK 0.8 a
SGBS 0.5 c BSDK 0.5.c RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ
DKRK
26
Gambar 2. Pertumbuhan Streptomyces spp, pada berbagai substrat organik
27
bagi Streptomyces adalah kalium, hasil analisis regresi menunjukkan kalium
memberikan kontribusi sebesar 0,95 persen. Konsentrasi kalium yang tinggi
pada substrat diatas dapat memacu pertumbuhan pada masa awal ini.
Sedangkan pada substrat yang kaliumnya rendah seperti pada serbuk gergaji
(SG) dan daun jambu mete (DJ), pertumbuhannya mengalami sedikit
peningkatan. Pada substrat BS, BSDJ, SGBS dan BSDK, konsentrasi
kaliumnya tinggi tetapi pH-nya rendah, sehingga tidak mengalami
pertumbuhan. Pada subMrat dedak kasar (DK) konsentrasi kalium tinggi,
tetapi tingkat pertumbuhannya rendah, hal ini disebabkan konsentrasi NH3
substrat ini rendah, dimana NH3 berpengamh nyata terhadap diameter
antagonis (p<0,05) dan memberikan kontribusi sebesar 9,21 persen.
Komponen tersebut saling terkait karena masing-masing memiliki
kontribusi terhadap pertumbuhan antagonis, disamping itu peningkatan
pertumbuhan antagonis sangat dipengaruhi oleh kemampuan adaptasinya
pada substrat yang berbeda komposisi kimia dan sifat fisikanya. Pada
pengamatan selanjutnya peningkatan diametemya bervariasi seperti terlihat
pada Gambar 1.
Pada akhir pengamatan (31 hari setelali inokulasi) semua substrat
yang diuji mengalami sedikit peningkatan, kecuali pada substrat BS, BSDK,
BSDJ dan SGBS yang memang tidak tumbuh sejak awal.
Hampir semua substrat mengakibatkan aktivitas maksimum pada
waktu tertentu, bahkan ada yang sampai 2 kali dalam periode 31 hari
inokulasi, kecuali substrat SG tidak mengalami masa peningkatan
28
maksimum dibandingkan substrat yang lainnya. Disamping mengalami
aktivitas maksimum antagonis juga mengalami masa penurunan aktivitas,
seperti pada substrat daun jambu mete + dedak kasar (DJDK) pada 19-21
hari setelah inokulasi dan SG sedikit sekali mengalami peningkatan
diameter pada 21-23 hari setelah inokulasi.
4.2. Pengaruh Substrat Organik terhadap Ketebalan dan Mcratanya
Misdium Antagonis Strept&myces spp.
Hasil pengamatan visual terhadap ketebalan dan meratanya
miselia Streptomyc.es spp. dengan menggunakan skala kualitatif disajikan
pada Tabel 2.
Tabel 2. Ketebalan dan meratanya miselia antagonis Streptomyces spp. pada berbagai substrat organik
Perlakuan Ketebalan dan Meratanya
Miselia
BS -
DJ ++
SG +
DK ++
RK +++
SGBS -
BSDK -
RKBS ++++
29
SGDJ ++
DJDK ++
RKDJ +-H-
SGDK ++
SGRK ++++
BSDJ -
DKRK +++
Keterangan :
++++ : tebal dan merata
+++ : ketebalan sedang dan agak merata
++ : tipis
+ : sangat tipis
- : tidak mengalami pertumbuhan
Pertumbuhan koloni tebal dan merata terlihat pada substrat RKBS
dan SGRK, ketebalan sedang dan agak merata pada substrat RKDJ RK5
DKRK, tipis pada substrat DJ, DK, SGDJ, SGDK dan DJDK, sangat tipis
pada substrat SG (Garnbar 4, 5, 6 dan 7 pada Lampiran 16). Pada media
yang mengandung bahan daun jambu mete dan dedak kasar rniselia tarnpak
sangat tipis sampai finis, hal ini disebabkan pH substrat tersebut rendah
berkisar 5,33 6.96, sedangkan Sireptomyces mernbutuhkan kisaran pH yang
optimal. (7,1 - 8,0) untuk dapat tumbuh dengan baik.
30
Faktor yang juga berpengaruh kemungkinan besar kandungan nutrisi
dari masing-masing substrat. Substrat yang padat nutrisi persatuan luasnya
terutama nutrisi yang banyak dibutuhkan oleh antagonis, cenderung
membentuk miselium yang lebih tebal. Sebaliknya pada substrat yang
kandungan nutrisi persatuan luasnya sedikit maka antagotiis cenderung
bergerak mencari sumber nutrisi yang lebih iuas permukaannya sehingga
pertumbuhan kearah vertikai kurang berkembang.
4.3. Pengaruh Substrat Organik Terhadap Jumlah Spora Antagonls
Streptomyees spp.
Jumlah spora pada masing-masing palakuan tersaji pada Tabel 3.
Lima substrat. yang memiliki jumlah spora tertinggi seperti yang terlihat
pada Tabel 3 yaitu : RKDJ (18,75 x 106 ), DJDK (8,83 x 106), DJSG (8,67 x
10), RK (7,75 x 10°) dan DJ (7,67 x 106).
Jumlah spora Sireptomyces spp juga dipengaruhi oleh ketebalan dan
meratanya miselium serta panjang diameter koloni. Substrat RKDJ yang
jumlah sporanya menempati urutan pertama dari 15 substrat, memilik
diameter terpanjang (8,97 cm) sedangkan ketebalan dan meratanya sponi
menempati urutan ke dua (ketebalan sedang dan agak merata). Substrat yang
menempati urutan ke dua jumlah spora tertinggi yaitu DJDK, memiliki
panjang diameter 7,47 cm densan ketebalan dan meratanya spora termasuk
daiain skala tipis begitu pula dengan DJSG.
31
Tabel 3. Rata-rata jumlah spora antagonss Sireptomyc.es spp. 31 hari setelah inokulasi pada substrat organik
Perlakuan Rata-rata Jumlah
Spora (dalarn 10*)
Notasi
RKDJ 18,75 a
DJDK 8,83 b
SGDJ 8,67 b
RK 7,75 c
DJ 7,67 c
RKBS 6,50 d
DK 6,00 e
SGRK 5,83 e
SGDK 5,33 f
DKRK 4,83 f
SG 3,67 £
BS 0,00 h
BSDJ 0,00 h
SGBS 0,00 h
BSDK 0,00 h
Keterangan :
1. Data dianalisis setelah ditransformasi ke 5,0x
2. Huruf yang berbeda pada kolom yang sama menunjukan berbeda nyata (p<0,05) berdasarkan uji jarak berganda Duncant.
32
Substrat residu kacang tanah (RK) dengan panjang diameter
koloninya menempati posisi ke enam (6,37 cm) akan tetapi termasuk
memiliki skala ketebalan sedang dan agak merata memiliki jumlah spora
terbanyak setelah RKDJ, DJDK dan SGDJ yaitu 7,75 x 106. Substrat DJ
diameternya lebih panjang dari RK tetapi skala ketebalannya termasuk tipis
memiliki jumlah spora lebih sedikit dibandingkan dengan RK yaitu 7,67 x
106. Jumlah spora juga diduga dipengaruhi oleh fase vegetatlf dan generatif
seperti pada substrat RM yang menempati urutan ke empat (7,75 x 106) pada
jumlah spora dari 15 substrat, tetapi diameternya menempati urutan ke enarn
(6,37 cm) menunjukkan fase generatifnya lebih menonjol daripada fase
vegetatif sedangkan pada substrat SGDK yang menempati urutan ke empat
(6,52 cm) dari diameter miselia, rnenempati urutan ke sembilan (5,33 x 106)
dalarn jumlah spora, ini menunjukkan pertumbuhan vegetatifnya lebih
menonjol.
4.4. Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik
Analisis dan pengukuran terhadap komposisi kimia dan fisika media
tumbuh disajikan pada Tabel 4. Hasil pengukuran menunjukkan pH
tertinggi pada substrat RK : 8,05, sedangkan pH terendah pada perlakuan
BS : 3,52. Pada pH dibawah 4,0 Streptomyc.es spp. tidak mampu tumbuh,
hal ini terlihat pada substrat, BS, BSDJ, SGBS dan BSDK. Semuanya
mengandung buah semu jambu mete, hal ini disebabkan buah semu pH-nya
rendah, sehingga menghambat bahkan mematikan pertumbuhan
33
Streptomyces spp, sedangkan antagonis ini membutuhkan kisaran pH yang
cukup tinggi untuk dapat tumbuh.
Pada substrat RKBS yang juga mengandung buah semu, antagonis
ini mampu tumbuh cukup baik, hal ini disebabkan kandungan komporien ke
dua yaitu residu kacang tanahyang memiliki pH tinggi, yang dapat
meningkatkan pH menjadi 4,53, sehingga tidak menghambat pertumbuhan
Streptomyces spp.
Pertumbuhan paling baik dari antagonis ini terlihat pada substrat
RKDJ dengan pH 7,05, yang mendekati pH optimum bagi Streptomyces
spp. (Waksman 1959). Antagonis ini tumbuh paling lambat pada pH 5,48
pada substrat SG, hal ini disebabkan konsentrasi nitrogen dan kalium pada
substrat ini rendah disamping itu
34
Tabel 4. Komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik
Komposis Kimia dan Fisika
Perlakuan PH C (ppm) N (ppm) DHL (ms) N03 (ppm) P04 (ppm) NH3 (ppm) K (ppm)
BS 3,52 46,86 1,05 1,15 0,30 33,09 14,00 412,50
DJ 5,23 46,89 0,35 0,92 0,37 17,04 115,35 35,70
SG 5,48 46,08 0,07 0,34 0,72 31,93 11,85 22,05
DK 6,96 39,12 0,28 0,88 7,05 18,94 6,95 211,70
RK 8,05 50,97 1,61 3,55 0,12 45,60 112,10 1747,50
SGBS 3,86 56,62 0,42 0,71 0,31 30,61 24,55 212,10
BSDK 3,88 40,47 0,63 1,07 0,82 20,57 13,25 352,80
RKBS 4,53 50,48 0,84 2,94 0,44 33,73 47,20 1176,30
SGDJ 5,33 45,15 0,49 0,66 0,41 41,20 71,55 176,50
DJDK 5,75 48,25 0,49 0,94 1,08 14,48 37,55 172,70
RKDJ 7,05 53,11 1,12 2,39 0,17 18,74 75,90 805,90
SGDK 6,30 44,23 0,28 0,61 2,38 17,17 12,85 152,40
SGRK 7,53 49,59 0,49 2,80 0,14 22,68 62,80 941,10
BSDJ 3,79 53,85 0,84 1,02 0,50 22,68 40,30 239,10
DKRK 7,26 48,04 0,70 2,88 0,21 25,86 59,55 1085,10
Keterangan : DHL - daya hantar listrik
35
substrat ini diduga mengandung fenol, yang dapat mengharnbat
pertumbuhan organisme.
Substrat yang mengandung C paling tinggi yaitu SGBS : 56,62 ppm,
terendah pada substrat DK : 39,12 ppm sedangkan pada substrat RKDJ yang
menunjukkan pertumbuhan paling baik karbormya 53,11 ppm. Pada
konsentrasi yang lebih kecil dari konsentrasi ini, antagonis menunjukkan
pertumbuhan yang lebih rendah.
Konsentrasi nitrogen tertinggi dari substrat terlihat pada RK : 1,61
ppm, terendah pada substrat SG : 0,07 ppm. Pada substrat dimana
Streptomyces spp. tumbuh dengan baik yaitu RKDJ konsentrasi nitrogennya
1,12 ppm. Kelihatanrrya konsentrasi rendah merupakan penghambat
pertumbuhan antagonis ini, begitu juga pada konsentrasi tinggi
pertumbuhannya agak terhambat.
Daya hantar listrik berhubungan dengan ketersediaan unsur hara bagi
antagonis. Pada penelitian ini DHL 2,39 ms pada substrat RKDJ
memperlihatkan pertumbuhan yang paling baik, hal ini menunjukkan pada
DHL 2,39 ms kebutuhan antagonis tersedia dan dapat digunakan. Pada
substrat SG, DHL terlihat paling rendah yaitu 0,34 ms dimana pertumbuhan
antagonis terlihat paling rendah. Hal ini mungkin disebabkan ketersediaan
beberapa nutrisi rendah sehingga kebutuhan antagonis terhadap nutrisi tidak
terpenuhi dan mengakibatkan peltumbuhan kurang baik.
36
Tabel 4 menunjukkan, substrat yang konsentrasi NO3-nya tertinggi
pada substrat DK : 7,05 ppm sedangkan terendah pada substrat residu
kacang tanah : 0,12 ppm. Peltumbuhan terbaik dari Streptomyces spp.
terlihat pada konsentrasi NO3 : 0,17 ppm yaitu pada substrat RKDJ. Pada
konsentrasi yang lebih rendah dan konsentrasi ini (0,17 ppm) aniagonis
masih dapat tymbuh tdapi tidak sebaik pada konsentrasi ini, sedangkan pada
konsentrasi yang lebih tinggi diduga dapat menghambat proses rnetabolismc
sehingga mengurangi tingkat pertumbuhan.
Konsentrasi PO4 tertinggi terdapat pada substrat RK : 45,60 ppm,
sedangkan terendah pada substrat DKDJ : 14,48 ppm. Pada substrat RKDJ
konsentrasi PO4 18,74 ppm, Streptomyces spp. memmjukkan pertumbuhan
yang paling baik. Kalium dan fosfat merupakan komponen yang penting
dalam pembentukan antibiotik, pigmen dan vitamin, hal ini memungkinkan
unsur ini dibutuhkan dalam jumlah cukup banyak. Kelebihan atau
kekurangannya dapat mengakibatkan terhambatnya pertumbuhan antagonis.
Sumber nitrogen terbaik setelah protein, peptone dan asam amino
adalah NH3 diikuti oleh NCX Pada 15 substrat yang diuji, konsentrasi NH3
tertinggi terdapat pada substrat DJ : 115,35 ppm, sedangkan yang terendah
pada substrat SG : 6,95 ppm. Konsentrasi dimana antagonis dapat tumbuh
dengan baik yaitu : 75,90 ppm yang terdapat pada substrat RKDJ. NH3
merupakan sumber nitrogen yang lebih baik dari NO3 sehingga
ketersediaanya pada substrat organik dalam jumlah tertentu akan
merangsang pertumbuhan antagonis.
37
Kahum merupakan salah satu senyawa yang dibutuhkan untuk
produksi dan pendorong pertumbuhan yang baik sekali disamping unsur
lainya. Konsentrasi kalium tertinggi terdapat pada substrat RKDK : 1085,1
ppm, sedangkan terendah pada substrat SG : 22,05 ppm. Konsentrasi
dimana antagonis Streptofftyces dapat tumbuh dengan baik adalah pada
konsentrasi 805,9 ppm yaitu pada substrat RKDJ. Pada konsentrasi rendah
22,05 ppm Streptomyces spp. tidak dapat tumbuh dengan baik, sedangkan
pada konsentrasi yang terlalu tinggi 1085,1 ppm pertumbuhannya juga agak
terhambat.
Secara urnum organisme memerlukan keseimbangan komposisi
kimia dan sifat fisika untuk mencapai pertumbuhan yang baik, jika salah
satu komponen unsumya kekurangan atau kelebihan maka akan terjadi
gangguan terhadap tingkat pertumbuhannya sesuai dengan tingkat
kekurangan atau kelebihan suatu komponen dan penting tidaknya komponen
itu bagi pertumbuhan mikroba tersebut
4.5. Pengaruh Komposisi Kimla dan Sifat Fisika Substrat Organik
terhadap Diameter Koloni Streptomyces spp.
Hasil analisis sidik ragam komposisi kimia dan fisika substrat
organik, menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap diameter antagonis
(Tabel 5 Lampiran 17). Berdasarkan persamaan regresi YK = 2,06 + 1,29
pH - 0,0528 C + 1,88 DHL + 0,066 NO, + 0,0248 PO4 + 0,0287 NH3 -
38
0,00524 K maka, dicari pengaruh masing-masing komponen komposisi
kimia dan sifat fisika terhadap diameter koloni Streptomyces spp.
Analisis regresi terhadap masing-masing komposisi kimia dan fisika
menunjukkan pengaruh pH sangat nyata terhadap diameter koloni antagonis,
NH3 berpengaruh nyata, sedangkan DHL, NO3, PO4, K, C dan N
berpengaruh tidak nyata terhadap diameter antagonis (label 6 Lampiran 17).
Gambar 2. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika terhadap diameter koloni Streptomyces spp.
Walaupun komponen substrat organik tersebut tidak nyata
pengaruhnya terhadap diameter koloni tetapi sangat diperlukan untuk
pertumbuhan antagonis.
Hal tersebut dapat dilihat pada kontribusi masing-masing komposisi
kimia dan fisika substrat organik pada pada Gambar 2.
Gambar 2 menunjukkan kontribusi terbesar diberikan oleh pH
(52,87%), diikuti oleh NH3: 9,21% NO3: 1,35%N : 0,96% K : 0,95% PO4 :
0,45% DHL : 0,15% dan kontribusi terkecil diberikan oleh C sebesar 0,11%.
39
4.6. Pengaruh Komposisi Kimia dan Sifat Fisika Substrat Organik
terhadap Jumlah Spora Streptomyces spp.
Hasil analisis menunjukkan komposisi kimia dan sifat fisika substrat
organik berpengaruh sangat nyata terhadap jumlah spora Streptomyces spp.
(Tabel 7 Lampiran 18). Berdasarkan persamaan regresi YK = 2,06 + 0,544
pH - 0,058 C + 1,24 DHL + 0,0251 NO3+ 0,0183 PO4 + 0,00786 NH3 -
0,00349 K maka, dicari pengaruh masing-masing komponen komposisi
kimia dan sifat fisika terhadap jumlah spora Streptomyces spp.
Analisis regresi terhadap masing-masing komposisi kimia dan sifat
fisika menunjukkan pengaruh pH sangat nyata terhadap jumlah spora,
sedangkan NH3, DHL, NO^ PO4, K, C dan N berpengaruh tidak nyata
terhadap jumlah spora (Tabel 8 Lampiran 18).
Komponen yang menunjukkan pengaruh sangat nyata hanya pH
substrat sedangkan yang lainya berpengaruh tidak nyata. Walaupun
pengaruhnya tidak nyata tetapi komponen-komponen tersebut memiliki
kontribusi terhadap jumlah spora (Gambar 3).
Gambar 3 menunjukkan pH memberikan pengaruh tertinggi yaitu
52,8% kemudian NH3 sebesar 8,41% NO3 1,45% persen dan seterusnya.
Pengaruh terendah adalah C sebesar 0,27% hal ini tidak terlihat pada
analisis regresi, tetapi komponen tersebut memegang peranan terhadap
jumlah spora Streptomyces spp walapun persentasenya kecil.
40
Gambar 3. Kontribusi masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika
terhadap jumlah spora Streptomyces spp.
Uraian di atas menunjukkan perlakuan substrat organik berpengaruh
sangat nyata terhadap pertumbuhan antagonis pada variabei jumlah spora
dan diameter koloni, sedangkan komposisi kirnia dan sifat fisika juga
menunjukkan pengaruh sangat nyata terhadap kedua variabei tersebut
Pengujian terhadap 15 substrat, didapatkan tiga substrat yang
menunjukkan pertumbuhan paling baikyaitu : residu kacang tanah ditambah
daun jambu mete (RKDJ), daun jambu mete ditambah dedak kasar (DJDK)
dan serbuk gergaji ditambah daun jambu mete (SGDJ). Berdasarkan
pertimbangan mudah dan murahnya bahan maka, dipilih campuran residu
kacang tanah dan daun jambu mete (RKDJ) sebagai substrat untuk
membiakkan antagonis Streptomyces.
41
V. KESIMPULAN DAN SARAN
5.1. Kesimpulan
Berdasarkan hasil penelitian dan uraian pada pembahasan dapat
disimpuikan bahwa media yang paling cocok digunakan untuk mernbiakkan
Streptomyces spp. adalah campuran residu kacang tanah dan daun jambu
mete (RKDJ).
5.2. Saran
Perlu pengujian perlakuan substrat organik campuran residu kacang
tanah dan daun jambu mete pada perbandingan yang berbeda selain 1 : 1
(v/v), sehingga kemungkinan didapatkan komposisi yang lebih memacu
peruimbuhan Streptomyces spp.
42
DAFTAR PUSTAKA
Adam, P. B., J.A Lewis and G.C. Papavizas. 1968. Survival of Foot Infecting Fungi in Soil IV : The Nature of Fungistatis in Nature and Cellulose-Amendement Soil on Chlamidospores of Fusarium solani f. sp phaseoli Phytopathology 59 (3) : 379 - 383.
Adam, P. B., J. A. Lewis and G. C. Papavizas. 1969. Survival of Root Infecting
Fungi in soil and Sensitivity of Propagules of Thielaviopsis basicola to soil Fungistatis in Nature and Alfalfa amended soil. Phytopathology. 59 : 135-138
Adam, P. B. 1971. Effect of Soil Temperature and Soil Amendements on
Thielaviopsis Root Rot of Sesame. Phytopathology. 61 : 93 - 97. Anonimus. 1978. Penuntun analisis Tanaman Departemen Pertanian. Badan
Penelitian dan Pengembangan Pertanian Bagian Kesuburan Tanaman. Lembaga Penelitian Tanaman. 112p.
Arya, N. 1994. Pengendalian Terpadu Penyakit Busuk Batang Vanili (Fusarium
batatatis var vanillas} di Daerah Bali. Laporan Penelitian I. UNUD. 7-8.
Arya, N. 1995. Explorasi, Penanganan dan Aplikasi Agens Hayati pada Tanaman
Hortikultura. Bahan. Seminar. Strategi Perlindungan Tanaman Hortikultura dan Pertamanan di Daerah Pariwisata. Fak. Pertanian UNUD. 9p.
Baker, R and R.J. Cook. 1974. Biological Control of Plant Pathogens. W. R
Freeman and Co. San Fransisco. 433p. Baker, R and RJ. Cook. 1983. Biological Control of Plant Pathogenes. The APS
Publ. St Paul, Minnesota 433 p. Basuki. 1985. Peranan Belerang Sebagai Pemicu Pengendalian Biologi Penyakit
Akar Putih pada Karet Desertasi S3 UGM, Yogyakarta. 169 p. Chet, I. and R Baker. 1980. Introduction of Supressiveness to Khizoctortia solani
in Soil. Pythopatkology 70 : 994 - 996. Dhingra, O.K. and IB. Sinclair. 1987. Basic Plant Pathology Methods. CRC Press,
Inc. Boca Raton, Florida. 355p. Dwidjoseputro, D. 1990. Dasar-dasar Mikrobiologi. Penerbit Djambatan,
Bandung. 209p.
43
Garet, S. D. 1956. Biology of Root-infecting Fungi. Cambrige University Press. Sydney. 23 9p.
Hadi, S., R Suseno dan J. Sutakaria. 1975 . Patogen Tanarnan dalam Tanah dan
Perkembangan Perryakit IPB, Bogor. 196p. Herr, L. J. 1959. A Method of Assaying Soil for Number of Actynomycetes
Antagonistic to Fungal Pathogens. Phytopathology. 49 (6): 273-276. John, K.P. 1966 Two Experiments on The Control of White Root Disease of
Hevea Rubber Caused by Forms llgnosus Klotzsch, Leading to a revision of Established Methods. J. Kubb. Res. Inst Md. 19(13) : 153 -157.
John, K. P. 1985. Inoculation Experiment with Pomes lignoxus, Klotzsch. J.
Rtibh. Jter. Jtt& Mil 223-240 Johnson, L. F. and E. A Curl. 1972. Methods for Research on The Ecology of
Soil-Borne Plant Patogens Burgess Pub. Co., Minnesota 247 p. Kasim, R. 1985. Pengaruh Residu Tanaman terhadap Perkembangan Perryakit
Busuk pangkal Batang (Phytopfahora palmivora (Butler) Butler) pada Tanaman Lada. Tesis S2 IPB. Bogor. 52p.
Lewis, J. A. and G. C. Papavizas. 1986. Reduction of Inoculum of Rhizoctonia
solard by germling of Trichoderma. hamatum. Soil Eiol. Bio chem. 19 (2) :195-201.
Maier, C. R. 1959. Effect of Cistein Crop residues on Bean Root Rot Pathogens.
Plcuit Diseases Dept. 43 : 1027 -1030. Modjo, H. S. 1991. Mikrobia Berguna dalam Pertanian. Usaha Menjadikan
Pengendalian Hayati terhadap Patogen Tumbuhan sebagai Tulang Punggung Pengendalian Hama Terpadu. Pros. Sem Penmgkatan Pemanfaatan Serangga sebagai Mikrobia Berguna dalam Usaha Menaikkan Pendapatan Petani. Fak. Pertanian UNSUD. 27p.
Muiya, KL dan Manohara. 1988. Penyebaran Triclioderma spp. dan Penicillium
spp. dan Sifat Antagonismenya terhadap Phytophthora palmivora BuL Littro. 3(1) :12-17.
. Patrich, Z. A. and T. A. Toussoun. 1970. Plant Residues and Organik
Amandements in Relation to Biological Control, in K. F. Baker dan W. C. Snyder (Ed.). Ecology of Soil Bome Pilant Pathogens. Univ. California. Press, Barkiey, Los Angeles and London. 68-69p.
44
Racle, F. A. 1965. The Effect of pH and Trace Element Concentration on Certain Metabolic Presses in Triclioderma spp. Ph. D. Thesis, Ohio State University. 124p.
Rismunandar, 1990. Memperbaiki Lingkungan dengan Bercocok Tanam Jambu
Mete dan Advokat. Sinar Baru Bandung.49p. Saeni, M. S. dan L. K. Darusman. 1989. Penuntun Analisa Kimia Jurusan Kimia
Fakultas Matematika dan Hmu Pengetahuan alam IPB. Bogor. 103p. Sasatrahidayat I. Rdan DS. Soemarno. 1991. Jambu Mete (Atiacardium
occiaemale) dan Masalahnya. Penebar Swadaya.54p. Semangun, H. 1989. Penyakit-penyakit Tanaman Perkebunan di Indonesia.
Gad?all Mada Univ. press, Yogyakarta. SOSp. Smaga, M. S. 1986. Biological Control of Some Soil Borne Funaal Pathogens of
Soybean with Gliocladium spp. Ph. D. desatation (Unpublished). 1 62p.
Sinaga, M.S. 1994. Pbtensi Gliocladium spp. Sebagai Agen Pengendali beberapa
CmdawanPatogenTumbuhanyangBersifatTuSarTanah. J. II. Pert. Indon. Vol. 4(1)6-11.
Soepena, H. 1980. Pengaruh Residu Tanaman terhadap Perkembangan Penyakit
Cendawan Akar Putih (Rigidoporus ligtiosus (Klot.) Imazeki) pada Tanaman Karet Tesis S2 IPB, Bogor. 51p.
Temaja, I G.R.M. 1994. Pengaruh Residu Tanaman pada Antagonisme
Trichoderma koningii terhadap Pertumbuhan Ektotrofik Jamur Akar Putih Tanaman Karet Tesis S2 UGM, Yogyakarta. 75p.
Overeem, V. C. and J. Weese. 1924. Polyporaceas : Rigidopoms tnicropoms.
Incones Fungorum Malanesium, Heft V. Weia 128p. Waksman, S. A. 1959. The Actinonrycd.es, Vol. L Nature, Occurrence, and
Activities. The Williams and Wilkins Company. Baltimore. 322p. Young, R E. 1954. White Root Disease of Hevea, Leptoporus lignosus (Fomes
lignosus) Rubb. Jfess. InsL Ceylon, Adv. Cire. 43p. Zentmeyer, G. A 1963. Biological Control of Phytophthora Root Rot of Avocado
with Alfalfa Meal. Phytopathology. 53 : 1383 -1387.
45
LAMPIRAN
46
Lampiran 1. Diameter antragonis Streptomyces spp 5 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 0,6 0,6 0,6 0,8 0,5 0,5 0,6 0,7 0,5 0,8 0,6 0,6 0,5 0,6
0,5 0,7 0,6 0,7 0,9 0,5 0,5 0,7 0,8 0,5 ,07 0,6 0,7 0,5 0,6
0,5 0,6 0,6 0,7 0,7 0,5 0,5 0,8 0,9 0,5 0,9 0,6 0,6 0,5 0,7
1,5 1,9 1,8 2,0 2,4 1,5 1,5 2,1 2,4 1,5 2,4 1,8 1,9 1,5 1,9
0,5 0,6 0,6 0,7 0,8 0,5 0,5 0,7 0,8 0,5 0,8 0,6 06 0,5 0,6
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 0,53644 0,038832 10,76** Acak 30 0,10667 0,00356 Total 44 0,64311
2,04 2,74
47
Contoh perhitungan statistika :
1. Faktor Koresi (FK) = 45
)1,28( 2
= 45
61,789
= 17,54689
2. JK Total = (0,5)2 + (0,5)2 + (0,5)2 + ….. + (0,7)2 – FK
= 18,19 – 17,54689 = 0,64311
3. JK Perlakuan = FK
3)9,1(.....)9,1()5,1( 222
= 18,083333 – 17.54689 = 0,53644
4. JK Acak = JK. Total – JK Perlakuan = 0,64311 – 0,54689 = 0,10667
5. Uji Duncant
SX = u
AcakKT
= 3
00356,0
= 0,03
Keterangan :
P = Jarak antara dua perlakuan yang dibandingkan rp = Jarak nyata terkecil pada tabel staristika Rp = rp X SX
48
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,03 - RK 0,8 a
2 2,89 0,03 0,09 SGDJ 0,8 a
3 3,04 0,03 0,09 RKDJ 0,8 a
4 3,12 0,03 0,09 RKBS 0,7 b
5 3,20 0,03 0,10 DK 0,7 b
6 3,25 0,03 0,10 DJ 0,6 be
7 3,29 0,03 0,10 SG 0,6 be
8 3,32 0,03 0,10 SGDK 0,6 be
9 3,35 0,03 0,10 SGRK 0,6 be
10 3,37 0,03 0,10 DKRK 0,6 be
11 3,39 0,03 0,10 BS 0,5 c
12 3,40 0,03 0,10 BSDJ 0,5 c
13 3,42 0,03 0,10 SGBS 0,5 c
14 3,43 0,03 0,10 BSDK 0,5 c
15 3,44 0,03 0,10 DJDK 0,5 , c
49
Lampiran 2. Diameter Antragonis Streptomyces spp 7 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 1,0 0,8 0,8 1,5 0,5 0,5 1,5 1.4 0,7 1,5 0,9 1,3 0,5 1,2
0,5 1,0 0,7 0,8 1,4 0,5 0,5 1,6 1,3 0,8 1,6 0,8 1,5 0,5 1,1
0,5 0,9 0,7 0,9 1,3 0,5 0,5 1,6 1,2 0,7 0,7 0,9 1,4 0,5 1,3
1,5 2,9 2,2 2,5 4,2 1,5 1,5 4,7 3,9 2,2 4,8 2,6 4,2 1,5 3,6
0,5 0,97 0,73 0,83 1,40 0,5 0,5 1,57 1,30 0,73 0;8
1,60 0,87 0,5 1,20
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 6,92800 0,49468 105,76** Acak 30 0,14000 0,00467 Total 44 7,06800
2,04 2,74
50
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,04 - RKDJ a
2 2,89 0,04 0,12 RKBS a
3 3,04 0,04 0,12 SGRK b
4 3,12 0,04 0,12 RK b
5 3,20 0,04 0,13 SGDJ bc
6 3,25 0,04 0,13 DKRK c
7 3,29 0,04 0,13 DJ d
8 3,32 0,04 0,13 DK de
9 3,35 0,04 0,13 SGDK ef
10 3,37 0,04 0,13 DJDK f
11 3,39 0,04 0,14 SG f
12 3,40 0,04 0,14 BS 0,5 g
13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,5 g
14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,5 g
15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,5 , g
51
Lampiran 3. Diameter Antragonis Streptomyces spp 9 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 1,5 0,9 1,2 2,3 0,5 0,5 2,1 2,0 1,3 2,3 2,5 1,7 0,5 2,0
0,5 1,4 0,9 1,3 2,1 0,5 0,5 2,2 2,2 1,5 2,5 2,2 1,9 0,5 2,2
0,5 1,3 0,8 1,2 2,1 0,5 0,5 2,0 2,0 1,2 2,4 2,2 1,7 0,5 2,0
1,5 4,2 2,6 3,7 6,5 1,5 1,5 6,3 6,2 4,0 78,2 6,9 5,3 1,5 6,2
0,50 1,40 0,87 1,23 2,17 0,50 0,50 2,10 2,10 1,33 2,40 2,30 1,77 0,50 2,07
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 22,3053 1,5932 165,96** Acak 30 0,2867 0,0096 Total 44 22,5920
2,04 2,74
52
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,06 - RKDJ 2,40 a
2 2,89 0,06 0,17 RKBS 2,30 ab
3 3,04 0,06 0,18 SGRK 2,17 bc
4 3,12 0,06 0,19 RK 2,10 c
5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 2,10 c
6 3,25 0,06 0,19 DKRK 2,07 c
7 3,29 0,06 0,19 DJ 1,77 d
8 3,32 0,06 0,19 DK 1,40 e
9 3,35 0,06 0,20 SGDK 1,33 e
10 3,37 0,06 0,20 DJDK 1,23 e
11 3,39 0,06 0,20 SG 0,87 f
12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 g
13 3,42 0,06 0,20 BSDJ 0,50 g
14 3,43 0,06 0,20 SGBS 0,50 g
15 3,44 0,06 0,20 BSDK 0,50 g
53
Lampiran 4. Diameter Antragonis Streptomyces spp 11 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 1,8 0,9 2,3 2,8 0,5 0,5 2,2 2,3 1,6 2,7 2,5 1.7 0,5 2,2
0,5 1,8 0,9 2,1 2,5 0,5 0,5 2,2 2,5 1,8 2,8 2,3 1,9 0,5 2,4
0,5 1,7 0,9 2,0 2,4 0,5 0,5 2,0 2,2 1,7 2,9 2,4 1,8 0,5 2,3
1,5 5,3 2,7 6,4 7,7 1,5 1,5 6,4 7,0 5,1 8,4 7,2 5,4 1,5 6,9
0,50 1,77 0,90 2,13 2,57 0,50 0,50 2,13 2,33 1,70 2,80 2,40 1,80 0,50 2,30
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 29,9178 2,1370 205,48** Acak 30 0,3133 0,0104 Total 44 30,2311
2,04 2,74
54
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,06 - RKDJ 2,80 a
2 2,89 0,06 0,17 RKBS 2,57 b
3 3,04 0,06 0,18 SGRK 2,40 bc
4 3,12 0,06 0,19 RK 2,33 c
5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 2,30 cd
6 3,25 0,06 0,19 DKRK 2,13 d
7 3,29 0,06 0,19 DJ 2,13 d
8 3,32 0,06 0,19 DK 1,80 e
9 3,35 0,06 0,20 SGDK 1,77 e
10 3,37 0,06 0,20 DJDK 1,70 e
11 3,39 0,06 0,20 SG 0,90 f
12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 g
13 3,42 0,06 0,21 BSDJ 0,50 g
14 3,43 0,06 0,21 SGBS 0,50 g
15 3,44 0,06 0,21 BSDK 0,50 g
55
Lampiran 5. Diameter Antragonis Streptomyces spp 13 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 2,8 1,2 2,6 3,2 0,5 0,5 2,3 2,6 1,9 3,3 3,0 1,9 0,3 2,9
0,5 3,0 1,1 2.7 3,1 0,5 0,5 2,4 2,6 2,0 2,4 2,9 2,0 0,5 3,0
0,5 2,9 1,2 2,5 3,0 0,5 0,5 2,5 2,5 U»- 3,4 2,9 2,0 0,5 3,2
1,5 8,7 3,5 7.8 9,3 1,5 1,5 7,2 7,7 5,8 10,1 8,8 5,9 1,5 9,1
0,50 2,90 1,17 2,60 3,10 0,50 0,50 2,40 2,57 1,93 3,38 2,93 1,97 0,50 3,0
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 35,3087 2,5221 5,42** Acak 30 13,9611 0,4654 Total 44 49,2698
2,04 2,74
56
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,39 - RKDJ 3,38 a
2 2,89 0,39 1,13 RKBS 3,10 ab
3 3,04 0,39 1,19 SGRK 3,03 ab
4 3,12 0,39 1,22 RK 2,93 ab
5 3,20 0,39 1,25 SGDJ 2,90 ab
6 3,25 0,39 1,27 DKRK 2,60 ab
7 3,29 0,39 1,28 DJ 2,57 ab
8 3,32 0,39 1,29 DK 2,40 ab
9 3,35 0,39 1,31 SGDK 1,97 bc
10 3,37 0,39 1,31 DJDK 1,93 bc
11 3,39 0,39 1,32 SG 1,17 bc
12 3,40 0,39 1,33 BS 0,50 d
13 3,42 0,39 1,33 BSDJ 0,50 d
14 3,43 0,39 1,34 SGBS 0,50 d
15 3,44 0,39 1,34 BSDK 0,50 d
57
Lampiran 6. Diameter Antragonis Streptomyces spp 15 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 4,0 1,6 3,7 39 0,5 0,5 3,1 3,6 2,7 4,0 3,9 2,7 0,5 4,0
0,5 4,2 1,6 3,8 3,8 0,5 0,5 3,0 3,5 2,9 4,0 4,0 2,5 0,5 4,2
0,5 4,2 1,7 3,6 3:7 0,5 0,5 3,0 3,5 3,5 4,2 3,8 2,4 0,5 4,3
1,5 12,47 4,9 11,1 11,4 1,5 1,5 9,1 10,6 8,4 12,2 11,7 7,6 1,5 12.5
0,50 4,13 1,63 3,70 3,80 0,50 0,50 3,03 3,53 2,80 4,07 3,90 2,53 0,50 4,17
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 92,8529 6,6324 643,92** Acak 30 0,3088 0,0103 Total 44 93,1617
2,04 2,74
58
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,06 - RKDJ 4,417 a
2 2,89 0,06 0,17 RKBS 4,13 a
3 3,04 0,06 0,18 SGRK 4,07 ab
4 3,12 0,06 0,19 RK 3,90 bc
5 3,20 0,06 0,19 SGDJ 3,80 cd
6 3,25 0,06 0,19 DKRK 3,70 de
7 3,29 0,06 0,19 DJ 3,53 e
8 3,32 0,06 0,19 DK 3,03 f
9 3,35 0,06 0,20 SGDK 2,80 g
10 3,37 0,06 0,20 DJDK 2,53 h
11 3,39 0,06 0,20 SG 1,63 i
12 3,40 0,06 0,20 BS 0,50 j
13 3,42 0,06 0,21 BSDJ 0,50 j
14 3,43 0,06 0,21 SGBS 0,50 j
15 3,44 0,06 0,21 BSDK 0,50 j
59
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,04 - RKDJ 4,57 a
2 2,89 0,04 0,12 RKBS 4,47 ab
3 3,04 0,04 0,12 SGRK 4,40 b
4 3,12 0,04 0,12 RK 4,07 c
5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 4,07 c
6 3,25 0,04 0,13 DKRK 4,03 c
7 3,29 0,04 0,13 DJ 3,97 c
8 3,32 0,04 0,13 DK 3,17 d
9 3,35 0,04 0,13 SGDK 3,00 e
10 3,37 0,04 0,14 DJDK 2,70 f
11 3,39 0,04 0,14 SG 1,70 g
12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 h
13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 h
14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 h
15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 h
60
Lampiran 8. Diameter Antragonis Streptomyces spp 13 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 5,0 1,8 4,5 4,9 0,5 0,5 3,5 5,0 3,7 5,0 4,6 2,9 0,5 4,6
0,5 5,0 1,9 4,5 5,0 0,5 0,5 3,4 4.9 4,0 5,1 4,7 3,0 0,5 4,7
0,5 4,9 1,9 4,4 4.8 0,5 0,5 3,7 4.8 3,8 5,0 4,8 2.8 0,5 4,8
1.5 14,9 5,6 13,4 14.7 1,5 1,5 10,6 14.7 11,5 15.1 34,1 8,7 1.5 14,1
0.50 4,97 1,37 4.47 4,90 0,50 0,50 3,53 4,90 3,83 5,03 4,70 2,90 0,50 4,70
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 149,7120 10,6937 3240,52** Acak 30 0,2200 0,0033 Total 44 149,9320
2,04 2,74
61
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,03 - RKDJ 5,03 a
2 2,89 0,03 0,09 RKBS 4,97 ab
3 3,04 0,03 0,09 SGRK 4,90 b
4 3,12 0,03 0,09 RK 4,90 b
5 3,20 0,03 0,09 SGDJ 4,90 c
6 3,25 0,03 0,10 DKRK 4,70 c
7 3,29 0,03 0,10 DJ 4,47 d
8 3,32 0,03 0,10 DK 3,83 e
9 3,35 0,03 0,10 SGDK 3,53 f
10 3,37 0,03 0,10 DJDK 2,90 g
11 3,39 0,03 0,10 SG 1,87 h
12 3,40 0,03 0,10 BS 0,50 i
13 3,42 0,03 0,10 BSDJ 0,50 i
14 3,43 0,03 0,10 SGBS 0,50 i
15 3,44 0,03 0,10 BSDK 0,50 i
62
Lampiran 9. Diameter Antragonis Streptomyces spp 21 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 5,6 2.2 5,3 5,1 0,5 0,5 4,0 5,8 3,7 6,9 5,5 3,2 0,5 5.6
0,5 5,5 2,3 5,2 5,0 0,5 0,5 4,1 5,7 4,0 7,0 5.6 33 0,5 5,5
0,5 5,3 2,1 5,2 5,2 0,5 0,5 4,2 5,6 3,8 6,9 5.4 3,1 0,5 5,5
1,5 16,4 6,6 15,7 15,3 1,5 1,5 12,6 17,1 13.5 20,1 16,5 9,6 1,5 16,6
0,50 5,97 2,20 5,23 5,10 0,50 0,50 4,10 5,70 3,83 6,93 5,50 3,20 0,50 5,53
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 216,2787 15,4485 1980,58** Acak 30 0,2333 0,0078 Total 44 216,5120
2,04 2,74
63
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,05 - RKDJ 6,93 a
2 2,89 0,05 0,14 RKBS 5,70 b
3 3,04 0,05 0,15 SGRK 5,53 c
4 3,12 0,05 0,16 RK 5,50 c
5 3,20 0,05 0,16 SGDJ 5,47 c
6 3,25 0,05 0,16 DKRK 5,23 d
7 3,29 0,05 0,16 DJ 5,10 e
8 3,32 0,05 0,17 DK 4,10 d
9 3,35 0,05 0,17 SGDK 3,83 e
10 3,37 0,05 0,17 DJDK 3,20 f
11 3,39 0,05 0,17 SG 2,20 g
12 3,40 0,05 0,17 BS 0,50 h
13 3,42 0,05 0,17 BSDJ 0,50 h
14 3,43 0,05 0,17 SGBS 0,50 h
15 3,44 0,05 0,17 BSDK 0,50 h
64
Lampiran 10. Diameter Antragonis Streptomyces spp 23 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0.5 6,0 2,2 5,3 5,1 0,5 0,5 4,1 5,9 5,0 7,1 5,8 3,2 0,5 5,5
0,5 6,0 2,3 5,4 5,3 0,5 0,5 4,1 6,0 5,3 7,2 6,1 3,3 0,5 5,6
0,5 5,9 2,2 5,3 5,2 0,5 0,5 4,2 5,9 5,2 7,0 6,0 3,2 0,5 5,5
1,5 17,9 6,7 16,0 15,6 1,5 1,5 12,4 17,8 15,5 21,3 17,9 9.7 1,5 16,7
0,50 5,97 2,23 5,33 5,20 0,50 0,50 4,13 5.93 5,17 7,10 5,97 3,23 0,50 5,57
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 266,5987 17,7733 3478,13** Acak 30 0,1533 0,0051 Total 44 266,7520
2,04 2,74
65
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,04 - RKDJ 7,30 a
2 2,89 0,04 0,12 RKBS 6,57 b
3 3,04 0,04 0,12 SGRK 6,43 c
4 3,12 0,04 0,12 RK 6,40 c
5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 5,60 d
6 3,25 0,04 0,13 DKRK 5,60 d
7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,53 e
8 3,32 0,04 0,13 DK 5,23 f
9 3,35 0,04 0,13 SGDK 4,30 g
10 3,37 0,04 0,13 DJDK 3,40 h
11 3,39 0,04 0,14 SG 2,83 j
12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 j
13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 j
14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 j
15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 j
66
Lampiran 12. Diameter Antragonis Streptomyces spp 27 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0.5 6,6 3,2 5,6 5,8 0,5 0,5 4,8 6^9 6.5 8,5 6,5 3.8 0,5 5,6
0,5 6,8 3,3 5,7 6,0 0,5 0,5 4,7 7,0 6,7 8,6 6,5 3.7 0,5 5,7
0,5 6,6 3,2 5,7 5.8 0,5 0..5 4,8 6,8 6,6 8,7 6,5 3.6 0,5 5,7
1,5 20,0 9,7 17,0 17,6 1,5 1,5 14,3 20;7 19,8 25,8 19,5 11,1 1,5 17,0
0,50 6,67 3,23 5,67 5,87 0,50 0,50 4,7? 6,90 6,60 8,60 6,50 3,70 0,50 5,67
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 319,3844 22,8132 4308,38** Acak 30 0,1600 0,0053 Total 44 319,5444
2,04 2,74
67
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,04 - RKDJ 8,60 a
2 2,89 0,04 0,12 RKBS 6,90 b
3 3,04 0,04 0,12 SGRK 6,67 c
4 3,12 0,04 0,12 RK 6,60 c
5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 6,50 d
6 3,25 0,04 0,13 DKRK 5,87 e
7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,67 f
8 3,32 0,04 0,13 DK 5,67 f
9 3,35 0,04 0,13 SGDK 4,77 g
10 3,37 0,04 0,13 DJDK 3,70 h
11 3,39 0,04 0,14 SG 3,23 j
12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 j
13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 j
14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 j
15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 j
68
Lampiran 13. Diameter Antragonis Streptomyces spp 29 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 6,7 3,7 5,7 6,2 0,5 0,5 5,4 7,3 7,0 8,8 6,5 4:9 0,5 5,7
0,5 6,8 3,8 5,8 6,2 0,5 0,5 5,5 7,5 7,0 8,7 6,6 5.0 0,5 5,8
0.5 6,6 3,7 5,7 6,2 0,5 0,5 5,4 7,4 7,1 8,9 6,6 5,1 0,5 5,8
1,5 20,1 11,2 17,2 18,6 1,5 1,5 16,3 22,2 21,1 26,4 19,7 15,0 1,5 17,3
0,50 6,70 3,73 5,70 6,20 0,50 0,50 5,43 7,40 7,03 8,80 6,57 5,00 0,50 5,77
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 340,8164 24,3440 6080,00** Acak 30 0,1200 0,0040 Total 44 340,9364
2,04 2,74
69
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,04 - RKDJ 8,60 a
2 2,89 0,04 0,12 RKBS 7,40 b
3 3,04 0,04 0,12 SGRK 7,03 c
4 3,12 0,04 0,12 RK 6,70 d
5 3,20 0,04 0,13 SGDJ 6,57 e
6 3,25 0,04 0,13 DKRK 6,20 f
7 3,29 0,04 0,13 DJ 5,70 g
8 3,32 0,04 0,13 DK 5,77 h
9 3,35 0,04 0,13 SGDK 5,43 i
10 3,37 0,04 0,13 DJDK 5,00 j
11 3,39 0,04 0,14 SG 3,73 k
12 3,40 0,04 0,14 BS 0,50 i
13 3,42 0,04 0,14 BSDJ 0,50 i
14 3,43 0,04 0,14 SGBS 0,50 i
15 3,44 0,04 0,14 BSDK 0,50 i
70
Lampiran 14. Diameter Antragonis Streptomyces spp 31 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,5 6,7 4,0 5,8 6,3 0,5 0,5 6,0 7.4 7,3 9,0 6,5 5,4 0,5 5,8
0.5 6,8 4,0 5,8 6.4 0,5 0,5 6,0 7.5 7,5 8,9 6,6 5,4 0,5 5,9
0,5 6,7 4,1 5.8 6.4 0,5 0,5 6,1 7.5 7,4 9,0 6,6 5,5 0,5 6,0
1.5 20,2 12,! 17,4 19.1 1,5 1,5 18,1 22.4 22,2 26,9 19,7 16,3 1,5 17,7
0.50 6,73 4,03 5,80 6,37 0,50 0,50 6,03 7.47 7,40 8,97 6,57 5,43 0,50 5,90
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 357,5787 25,5413 8239,13** Acak 30 0,0933 0,0031 Total 44 357,6720
2,04 2,74
71
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,03 - RKDJ 8,97 a
2 2,89 0,03 0,09 RKBS 7,47 b
3 3,04 0,03 0,09 SGRK 7,40 b
4 3,12 0,03 0,09 RK 6,73 c
5 3,20 0,03 0,09 SGDJ 6,57 d
6 3,25 0,03 0,10 DKRK 6,37 e
7 3,29 0,03 0,10 DJ 6,03 f
8 3,32 0,03 0,10 DK 5,90 g
9 3,35 0,03 0,10 SGDK 5,80 h
10 3,37 0,03 0,10 DJDK 5,43 i
11 3,39 0,03 0,10 SG 4,03 j
12 3,40 0,03 0,10 BS 0,50 k
13 3,42 0,03 0,10 BSDJ 0,50 k
14 3,43 0,03 0,10 SGBS 0,50 k
15 3,44 0,03 0,10 BSDK 0,50 k
72
Lampiran 15.a . Diameter Antragonis Streptomyces spp 31 hari setelah inokulasi
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0 7,75 3,50 5,75 7,75
0 0
6,50 8,50 9,00 18,50 5,25 6,00
0 4,50
0 7,50 3,75 6,25 8,00
0 0
6,75 8,75 8,50 18.75 5,50 5,75
0 4,47
0 7.75 3,75 6,00 7,50
o 0
6,75 8,75 9,00 19.00 5,25 5,75
0 5,25
0 23,00 11,00 18,00 23,25
0 0
19,50 26,00 26,50 56,25 16,00 17,50
0 14,50
0 7,67 3,67 6,00 7,75
0 0
6,50 8;67 8,83 18.75 5,33 5,83
0 4,83
73
Lampiran 15.b. Hasil Perhitungan setelah ditransformasi ke 5,0x
Perlakuan Ulangan
Total
Rata – rata I II III
BS DJ SG DK RK
SGBS BSDK RKBS SGDJ DJDK RKDJ SGDK SGRK BSDJ DKRK
0,71 2,87 2,00 2,50 2.87 0,71 0,71 2,65 3,00 3,08 4,36 2,39. 2,55 0,71 2,24
0,71 2,83 2,06 2,60 232 0,71 0,71 2,60 3,04 3,00 4,39 2,45 2,50 0,71 2,29
0,71 2,87 2,06 2,55 2.83 0,71 0,71 2,69 3,04 3,08 4,42 2,39 2,50 0,71 2,39
2,13 8,57 6,12 7,65 8,62 2,13 2,13 7,94 9,08 9,16 13,17 7,23 7.55 2,13 6,92
0,71 2,86 2,04 2,55 2,87 0,71 0,71 2,65 3,03 3,05 4,39 2,41 2,52 0,71 2,31
Daftar Sidik Ragam SK DB JK KT F Hit
F Tabel 5% 1%
Perlakuan 14 49,3760 3,5269 2713,00** Acak 30 0,0395 0,0013 Total 44 49,9320
2,04 2,74
74
Daftar Uji Duncant
P rp Sx Rp Perlakuan Rata-rata Notasi
- - 0,02 - RKDJ 4,39 a
2 2,89 0,02 0,06 RKBS 3,05 b
3 3,04 0,02 0,06 SGRK 3,03 b
4 3,12 0,02 0,06 RK 2,87 c
5 3,20 0,02 0,06 SGDJ 2,86 c
6 3,25 0,02 0,07 DKRK 2,65 d
7 3,29 0,02 0,07 DJ 2,55 e
8 3,32 0,02 0,07 DK 2,52 e
9 3,35 0,02 0,07 SGDK 2,41 f
10 3,37 0,02 0,07 DJDK 2,31 f
11 3,39 0,02 0,07 SG 2,04 g
12 3,40 0,02 0,07 BS 0,17 h
13 3,42 0,02 0,07 BSDJ 0,71 h
14 3,43 0,02 0,07 SGBS 0,71 h
15 3,44 0,02 0,07 BSDK 0,71 h
75
Lampiran 16 Gambar 4. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat
BS (buah semu jambu mete), DJ (daun jambu mete), RK (residu kacang tanah), (DK) dedak kasar dan SG (serbuk gergaji).
76
Gambar 5. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat
DKDJ (dedak kasar + daun jambu mete), RKDJ (seridu kacang tanah + daun jambu mete), SGDK (serbuk gergaji + dedak kasar) dan SGRK (serbuk gergaji + residu kacang tanah)
77
Gambar 6. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat
SGBS (serbuk gergaji + buah semu jambu mete), BSDK (buah semu + dedak kasar), RKBS (seridu kacang tanah + buah semu jambu mete) dan SGDJ (serbuk gergaji + daun jambu mete)
78
Gambar 7. Ketebalan dan Meratanya Miselia Streptomyces spp, pada Substrat
BSDJ (buah semu + daun jambu mete) dan DKRK (dedak kasar + residu kacang tanah)
79
Lampiran 17. Tabel 5. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organic terhadap
diameter koloni Streptomyces spp.
Sumber DB JK KT F P Perlakuan
Acak Total
8 36 44
236,239 121,433 357,672
29,530 3,373
8,75** 0,000
Daftar keragaman
Sumber DB JK pH C N
DHL NO3 PO4 NH3
K
1 1 1 1 1 1 1 1
25,6091 0,1343 0,0675 0,3713 0,5538 0,5805 4,1457 1,5103
Tabel 6. Pengaruh masing – masing komposisi kimia dan sifat fisika substans
organic terhadap diameter koloni.
Penduga Koefisien Standar deviasi
t-hitung p
Konstanta pH C N DHL NO3 PO4 NH3 K
-2,064 1,2909
-0,05282 -0,099 1,883
0,0664 0,02479 0,02868
-0,0005237
4,866 0,3379
0,07901 1,496 2,183
0,2511 0,06026 0,01374
0,005208
-0,42 3,82**
-0,67 -0,07 0,86 0,26 0,41
2,09* -1.01
0.674 0.001 0.508 0.948 0.394 0.793 0.683 0.044 0.321
80
Lampiran 18. Tabel 7. Pengaruh komposisi kimia dan sifat fisika substrat organik teriiadap
jumlah spora Streptomyces spp.
Sumber DB JK KT F P
Perlakuan 8 32,9725 4,1216 9,10 ** 0,000
Aeak 36 16,3103 0,4531
Total 44 49,2828
Daftar keragaman
Sumber DB JK pH C N
DHL N03 P04 NH3
K
1 1 1 1 1 1 1 1
189,102 0,378 3,438 0,534
4313 1,621 32,944 3,410
Tabel 8. Pengaruh masing-masing komposisi kimia dan sifat fisika substrat
organik terhadap jumlah spora Streptomyces spp.
Penduga Koefisien Standar deviasi t-hitung P
Konstanta -1,932 1,783 -1,08 ' 0,286 pH 0,5437 0,1238 4,39 ** 0,000 C -0,00579 0,02896 -0,20 0,843 N 0,6281 0,5482 1,15 0,259 DHL 1,2404 0,8001 1,55 0,130 NO3 0,02513 0,09204 0,27 0,786 P04 0,01831 0,02209 0,83 0,412 NH3 0,007859 0,005035 1,56 0,127 K -0,003485 0,001909 -1,83 0,076