“Revisión deactualización en loslineamientos paraDengue y otrasArbovirosis” Chikungunya

Q.F.B. ERNESTINA QUINTERO SALGADO

COORDINDORA DE BIOLOGÍA MOLECULAR

SEPT 2019

Dengue

Zika

Conocer el virus

Panoramas epidemiológicos

Entrenamiento

Transferencia

Implementación y Verificación

Aprobación de PEED

Ciclo para la Vigilancia por Laboratorio

• Contar con un diagnóstico oportuno, que promueva una vigilancia virológica proactiva, oportuna y confiable para estas enfermedades emergentes y otras.

• Mantener y mejorar los algoritmos de diagnóstico y referencia.

• Fortalecer a la RNLSP mediante la descentralización de metodologías que les permita responder oportunamente en la identificación de casos.

• Notificar información de calidad que sirva a nuestras autoridades de salud para su toma de decisiones en el control y prevención.

Evidencias científicas generadas a partir de la investigación operativa y evaluaciones

ZIKV-Fase aguda

Laboratorio de Arbovirus y virus hemorrágicos División Biología Molecular DGE/InDRE

RT-PCR en

tiempo real

Combinación demetodologías moleculares

y serológicas para multidetección DENV, CHIKV,

ZIKV

ZIKV-Faseconvaleciente

Inmunofluorescencia Indirecta y ELISA

Positivos Zika IgM

Mayor especificidad y sensibilidad (mejor Vigilancia Epidemiológica)

Necesidad de incorporar una mejora para mayorFacilidad en la interpretación, esto requiere otro insumo queEl kit no incorpora……….que queremos? Mejor desempeño, oportunidad u bajo costo

E v i d e n c i a y e f i c a c i a e n l o s p r o c e s o s

Dengue Chikungunya Zika VON

20152014 20152010 / 2019

ELISA comercial

RT-qPCR

IFI

RT-qPCR

ELISA comercial

IFI

RT-qPCRRT-qPCR

ELISA comercial

IFI

Marco Analítico para el Diagnóstico de las enfermedades emergentes

Fase convaleciente – IFI y ELISA conformación IgM(6- 30 Días de evolución)

N u e v o s l i n e a m i e n t o s

Metodología que queda fuera

N u e v o s l i n e a m i e n t o s

Definición Operacional de caso:Dengue, Chikungunya o Zika(No neurotrópicos y Noencefalíticos)

Negativo

TRIOPLEX RT-qPCR

Diagnóstico Diferencial 5%RNLSP:BACTER: Leptospira y Rickettsia.PARA: Malaria

LNR:FLAVI: Fiebre amarilla en casos de visita a lugares endémicos.ALFA: Enfermedad por virus Mayaro

Considerar Fiebre del Nilo Occidental no neurotrópico en áreas donde se han registrado casos enequinos o en aves durante los últimos seis meses.

Considerar Sarampión/Rubeola en caso de cumplir con la definición operacional.

Positivo

Emisión de resultado

Fase Aguda

Dengue*

DENV-1 DENV-2 DENV-3DENV-4

*Tipificar 100% DG y DSA, 10% DNG

Los porcentajes pueden estar sujetos a cambios dependiendo de la incidencia en los estados y deberán contemplarse diferentes

municipios

Vigilancia en fase aguda 0-5 D.E.SIN MODIFCACIONES

N u e v o s l i n e a m i e n t o s

ELISA IgM

NegativoPositivo

Emisión de

resultado

Fase convaleciente (Dengue Grave) – ELISA IgM EspecificaDengue

(6-14 Días de evolución)

Definición Operacional de Caso probable de DG

Figura 3. Algoritmo de laboratorio para casos probables de DG, que incluye únicamente

ELISA de captura de anticuerpos IgM específicos para virus dengue. Par aplicar en casos

SIN toma de muestra en fase aguda.

Figura 4. Algoritmo de laboratorio para el diagnóstico de ZIKA mediante

uso de ELISA IgM, para seguimientos de embarazadas en fase de

convalecencia y recién nacidos.

S= 100%E= 85%

S= 93%E= 97%

Enfocado a casos con daño hemodinámico

Vigilancia en fase convalecencia 6-14 D.E. /6-30 D.E.

ACTUALIZADO

Mas preciso, oportuno y menos costoso

RESPUESTA INMUNOLÓGICA VS ARBOVIRUS

Manuel Muñoz, Juan Carlos Navarro. Virus Mayaro: un arbovirus reemergente en Venezuela y Latinoamérica. Biomédica:revista del Instituto Nacional de Salud 32(2) · June 2012

Muestras para el diagnóstico de Dengue, Chikungunya y Zika en Fase Aguda

Toma de muestras hasta 5 días a partir de la fecha de inicio de síntomas

Suero / fase aguda hasta cinco días de evolución (RT-qPCR): 5 mililitros desangre total por venopunción en tubos de polipropileno con gel separadorsin anticoagulante.

Una vez tomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C)durante dos horas para permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a3,000 r.p.m. durante 10 min.

Muestras para el diagnóstico de Virus del Oeste del Nilo en Fase Aguda

Toma de muestras hasta 5 días a partir de la fecha de inicio de síntomas

LCR / fase aguda hasta cinco días de evolución (RT-qPCR): Obtener 1mililitro por punción lumbar, realizada por personal calificado. Manejo yenvío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en elLaboratorio.

Suero / fase aguda - hasta cinco días de evolución (RT-qPCR): 5 mililitrosde sangre total por venopunción en tubos de polipropileno sinanticoagulante con gel separador. Una vez tomada la muestra, dejar eltubo en refrigeración (2 a 8 °C) durante dos horas para permitir laretracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.m durante 10 min. Manejo yenvío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en elLaboratorio

Casos de Dengue Grave: toma de muestras de 6 a 14 días posteriores a lafecha de inicio de síntomas. SIN toma en fase aguda.Chikungunya: toma de muestras de 6 a 12 días posteriores a la fecha deinicio de síntomas.Mujeres embarazadas: con toma de muestras de 6 a 30 días a partir de lafecha de inicio de síntomas

DCSA y DG / ELISA de captura de anticuerpos

IgM específica para Dengue

Suero, solo casos de Dengue grave con fecha de toma de muestras de6 a 14 días a partir de la fecha de inicio de síntomas. (IFI: Mosaicoarboviral): Obtener 5 mililitros de sangre total por venopunción entubos de polipropileno sin anticoagulante con gel separador. Una veztomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C) durantedos horas para permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a 3,000r.p.m durante 10 min.*La aplicación de esta ELISA queda sujeta únicamente para casos deDengue con signos de alarma y Dengue Grave. Manejo y envío en redfría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio

Muestras para el diagnóstico de Dengue, Chikungunya y Zika en Fase Convaleciente

Casos de Dengue Grave: toma de muestras de 6 a 14 días posteriores a lafecha de inicio de síntomas. SIN toma en fase aguda.Chikungunya: toma de muestras de 6 a 12 días posteriores a la fecha deinicio de síntomas.Mujeres embarazadas: con toma de muestras de 6 a 30 días a partir de lafecha de inicio de síntomas

Chikungunya / ELISA IgM

Suero / convaleciente desde el día 6 al 12 de evolución (ELISA IgM):Obtener 5 mililitros de sangre total por venopunción en tubos depolipropileno sin anticoagulante con gel separador. Una vez tomadala muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C) durante dos horaspara permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.mdurante 10 min.

Muestras para el diagnóstico de Dengue, Chikungunya y Zika en Fase Convaleciente

Casos de Dengue Grave: toma de muestras de 6 a 14 días posteriores a lafecha de inicio de síntomas.Chikungunya: toma de muestras de 6 a 12 días posteriores a la fecha deinicio de síntomas.Mujeres embarazadas: con toma de muestras de 6 a 30 días a partir de lafecha de inicio de síntomas

ELISA de captura de anticuerpos IgM

específica para Zika

Suero / convaleciente (Mujer embarazada sin antecedente de tomade muestra en fase aguda) – desde el día 6 al 30 de evolución (ELISAIgM específica): Obtener 5 mililitros de sangre total por venopunciónen tubos de polipropileno tipo “Vacutainer ®” sin anticoagulante congel separador. Una vez tomada la muestra, dejar el tubo enrefrigeración (2 a 8 °C) durante dos horas para permitir la retraccióndel coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.m durante 10 min. *La aplicaciónde esta ELISA queda sujeta únicamente al seguimiento deembarazadas y neonatos por Infecciones por VZIK. Manejo y envío enred fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio.Aplica para mujeres embarazadas que no tienen muestra en losprimeros cinco días de inicio de síntomas.

Muestras para el diagnóstico de Dengue, Chikungunya y Zika en Fase Convaleciente

Vigilancia Epidemiológica de seguimiento a casos de SGB.

Enfermedad por virus Zika / RT

qPCR

Suero recién nacido- Toma de muestra hasta 5 días después delnacimiento. Toma de muestra preferentemente al mismo tiempo quela toma de orina. Muestra obtenida por venopunción a partir desangre total, en tubos de polipropileno sin antigoagulante con gelseparador, (Se recomienda el uso de tubos BD Microtainer tapa decolor rojo® especificados para recién nacidos, se debe realizarhomogenización de 8 a 10 veces por inversión para ayudar a mejorarel desempeño del tubo BD Microtainer®, el volumen de muestra quese obtiene con este tipo de tubo es de 250-500 µL). Una vez tomadala muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C) durante dos horaspara permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.mdurante 10 min. Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la tomahasta la recepción en el Laboratorio. Al menos se deben obtener 300µL de suero.

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

Vigilancia Epidemiológica de seguimiento a casos de SGB.

Enfermedad por virus Zika / RT

qPCR

Orina (RT-qPCR) / Para aplicar en casos asociados con infecciones por VZIK y que no se lestomo muestra en fase aguda. Toma de micción espontanea. Desechar el primer chorro yrecoger la parte media-final de la micción en el contenedor estéril. Toma de muestra comomáximo hasta 17 días de inicio de la parálisis y el antecedente de inicio de síntomas de casoprobable de infección por VZIK. Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta larecepción en el Laboratorio. El volumen de medio de transporte viral para enviar sedimentodebe ser de 1.5 a 3.0 mL.

Saliva (RT-qPCR) / Para vigilancia de casos asociados a Parálisis Flácida Aguda (PFA), comoseguimiento a síndrome de Guillain-Barré (SGB) asociados con infecciones por VZIK y que nose les tomo muestra en fase aguda. Indicar al paciente que deposite la saliva directamente enel contenedor de plástico. Toma de muestra como máximo hasta 17 días de inicio de laparálisis y el antecedente de inicio de síntomas de caso probable de infección por VZIK.Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio.

Las tomas de orina y saliva deben ser al mismo tiempo. En caso de que la muestra de orinano llegue al laboratorio en el transcurso de las siguientes 48 horas, después de haber sidotomada se debe realizar la metodología de centrifugación para obtener sedimento (al menos25 mL) y en su caso enviar en medio de transporte viral.

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

Vigilancia Epidemiológica en seguimiento a malformaciones congénitas.

Enfermedad por virus Zika / RT

qPCR

Suero de madre / fase aguda hasta cinco días de evolución (RT-qPCR): 5 mililitrosde sangre total por venopunción en tubos de polipropileno sin anticoagulante congel separador. Una vez tomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C)durante dos horas para permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.mdurante 10 min. Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta larecepción en el Laboratorio.

Suero de recién nacido - Toma de muestra inmediatamente después delnacimiento y hasta 5 días: Toma de muestra preferentemente al mismo tiempoque la toma de orina. Muestra obtenida por venopunción a partir de sangre total,en tubos de polipropileno con gel separador, (Se recomienda el uso de tubos BDMicrotainer tapa de color rojo® especificados para recién nacidos, se debe realizarhomogenización de 8 a 10 veces por inversión para ayudar a mejorar el desempeñodel tubo BD Microtainer®, el volumen de muestra que se obtiene con este tipo detubo es de 250-500 µL). Una vez tomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración(2 a 8 °C) durante dos horas para permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a3,000 r.p.m durante 10 min. Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la tomahasta la recepción en el Laboratorio. Al menos se deben obtener 300 µL de suero.Aplica para mujeres embarazadas que no tienen muestra en los primeros cincodías de inicio de síntomas y en los casos de recién nacidos con microcefalia.

Vigilancia Epidemiológica en seguimiento a malformaciones congénitas.

Enfermedad por virus Zika / RT

qPCR

Líquido amniótico (RT-PCR en tiempo real) / Restringida únicamente a mujeresembarazadas, en donde el producto muestre malformaciones congénitas,sustentadas con los resultados de las ecografías realizadas. El volumen requerido esmínimo de 300 microlitros. Obtener mediante amniocentesis, realizada por personalexperto, en la cual se debe retirar una pequeña cantidad de líquido del saco que rodeaal feto en el útero. Toma en el momento necesario, para realizar únicamente RT-PCRen tiempo real. Esto se basa según indicaciones y lineamientos establecidos por elCentro Nacional de Equidad de Género y Salud Reproductiva. Manejo y envío en redfría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio.

Necropsia de cerebro, cerebelo, muestra de la vellosidad coriónica o placentaria,cordón umbilical (RT-qPCR) / Para vigilancia de mortalidad en casos probables deenfermedad por VZIK. En casos de producto propio de la concepción (aborto omortinato). Toma realizada por personal experto inmediatamente después de ladefunción (necropsia), para realizar RT-PCR en tiempo real. Tomar de 2-3 cm3 ensolución salina estéril al 0.85%. No usar formol. Contenedor de plástico (frasco depolipropileno con tapa, estéril con capacidad para 50 mL, de 55mm de diámetro x45mm de altura). Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta larecepción en el Laboratorio .

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

Vigilancia Epidemiológica en seguimiento a malformaciones congénitas.

Enfermedad por virus Zika / RT

qPCR

Saliva (RT-qPCR) / Para vigilancia de casos asociados a Parálisis Flácida Aguda (PFA),como seguimiento a síndrome de Guillain-Barré (SGB) asociados con infecciones porVZIK y que no se les tomo muestra en fase aguda. Indicar al paciente que deposite lasaliva directamente en el contenedor de plástico. Toma de muestra como máximohasta 17 días de inicio de la parálisis y el antecedente de inicio de síntomas de casoprobable de infección por VZIK. Manejo y envío en red fría (2 a 8 °C) desde la tomahasta la recepción en el Laboratorio.

Orina de recién nacido - Toma de muestra de preferencia en los primeros 5 días denacimiento. En caso de no haber obtenido muestra en los primeros 5 días, se debetomar la muestra hasta 17 días después de nacimiento (no tomar muestra de suerocon más de 5 días después del nacimiento). Muestra obtenida mediante bolsaperineal o mediante maniobras de estimulación vesical en neonatos. Tomar la muestraen contenedor estéril, en volumen de aproximadamente 1-5 mL, Manejo y envío enred fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio. Se debenconsiderar dar total cumplimiento a las especificaciones de envío y transporte.

VIGILANCIA EPIDEMIOLÓGICA DE LAS COMPLICACIONES ASOCIADAS A LA

ENFERMEDAD POR VIRUS ZIKA

Vigilancia Epidemiológica en seguimiento a malformaciones congénitas.

Enfermedad por virus Zika / ELISA de captura de

anticuerpos IgM específica para Zika.

Suero de madre hasta cinco días después del nacimiento del bebé (ELISA IgM específica): 5 mililitrosde sangre total por venopunción en tubos de polipropileno tipo “Vacutainer ®” sin anticoagulantecon gel separador. Una vez tomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C) durante doshoras para permitir la retracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.m durante 10 min. Manejo yenvío en red fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio.

Suero de recién nacido (ELISA IgM específica) - Toma de muestra inmediatamente después delnacimiento y hasta 5 días: Toma de muestra preferentemente al mismo tiempo que la toma de orina.Muestra obtenida por venopunción a partir de sangre total, en tubos de polipropileno tipo“Vacutainer ®” para análisis de suero sin anticoagulante con gel separador, (Se recomienda el uso detubos BD Microtainer® tapa de color rojo® especificados para recién nacidos, se debe realizarhomogenización de 8 a 10 veces por inversión para ayudar a mejorar el desempeño del tubo BDMicrotainer®, el volumen de muestra que se obtiene con este tipo de tubo es de 250-500 µL). Unavez tomada la muestra, dejar el tubo en refrigeración (2 a 8 °C) durante dos horas para permitir laretracción del coágulo. Centrifugar a 3,000 r.p.m durante 10 min. Manejo y envío en red fría (2 a 8°C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio. Al menos se deben obtener 300 µL de suero.

Debe tomarse en cuenta la toma de suero del neonato con microcefalia y de la madre paraidentificación de anticuerpos IgM mediante cualquiera de las metodologías avaladas (ELISA decaptura de IgM).

Defunciones

Dengue, Chikungunya y Zika

Necropsia de hígado, ganglios, bazo, riñón, (RT-qPCR). Toma realizadapor personal experto inmediatamente después de la defunción(necropsia), para realizar RT-PCR en tiempo real. Tomar de 2-3 cm3en solución salina estéril al 0.85%. No usar formol. Contenedor deplástico (frasco de polipropileno con tapa, estéril con capacidad para50 mL, de 55mm de diámetro x 45mm de altura). Manejo y envío enred fría (2 a 8 °C) desde la toma hasta la recepción en el Laboratorio.

En caso de solicitar búsqueda de arbovirus causantes de encefalitis,enviar necropsia de cerebro y especificar el agente virológico del quese sospecha. (Envío al InDRE).

Criterios de aceptación de muestras biológicas:

➢ Muestras que cumplan con definición de caso probable paracualquiera de las arbovirosis.➢ Contenedor primario adecuado (tubos tipo eppendorf o criovialesde polipropileno, estériles y libres de RNasa).➢ Muestras en red fría (2-8°C).➢ Muestras acompañadas con la documentación legible ydebidamente requisitada, incluyendo el registro de plataforma ETVo Formato de envío de muestras, según aplique.

Criterios de rechazo de muestras biológicas:

❖ Muestras lipémica (esta condición queda exenta por motivos de condición médica ydebe ser aclarada en el formato de envío de muestras o en el registro de plataformaETV-SiNaVE).❖ Muestras contaminadas.❖ Muestras hemolizada.❖ Muestras con volumen insuficiente (esta condición queda exenta en los casos derecién nacidos o que por condición del paciente no se pueda cumplir con este criterio ydebe ser aclarada en el formato de envío de muestras o en el registro de plataformaETV-SiNaVE).❖ Muestras con datos incorrectos o por falta de ellos.❖ Muestras con incumplimiento a la red fría.❖ Muestras con más de 15 días naturales de tránsito (queda exenta la orina debido aque debe ser recibida en el laboratorio en las siguientes 48 horas después de habersido tomada).❖ Muestras en contenedor primario de vidrio.❖ Muestras que excedan con días de evolución según técnica de diagnóstico.❖ Muestras remitidas por LESP que cuenten con liberación diagnóstica y que no hayaninformado oportunamente al LNR del motivo de la solicitud de servicio.

OPD SECRETARÍA DE SALUD JALISCO

LABORATORIO ESTATAL DE ALUD PÚBLICA

DEPARTAMENTO DE CONTROL MICROBIOLÓGICO

COORDIDNACIÓN DE BIOLOGÍA MOLECULAR

PRODUCTIVIDAD BIOLOGÍA MOLECULAR DIC '18 - AGO '19

DETERMINACIÓN DICIEMBRE ENERO FEBRERO MARZO ABRIL MAYO JUNIO JULIO AGOSTO RECHAZADAS TOTAL

INFLUENZA 48 117 110 78 80 60 39 34 40 13 619

SUBTIPIFICACIÓN INF A Y LINAJES B

6 35 22 13 23 19 10 1 2 0 131

OTROS VIRUS RESPIRATORIOS 13 56 60 54 38 33 21 14 27 0 316

TRIPLEX 169 118 123 159 139 207 350 550 1921 307 4043

TIPIFICACIÓN DE DENGUE 94 44 29 35 34 55 145 321 1134 0 1891

ZIKA 0 6 4 10 0 6 5 9 4 7 51

VON 1 1 0 2 1 3 0 0 0 4 12

VIGILANCIA ENTOMOVIROLÓGICA

0 0 0 2 0 88 0 82 2 0 174

SARAMPIÓN 1 3 6 5 8 11 13 3 23 6 79

RUBÉOLA 1 3 6 5 8 11 13 3 23 6 79

RUBÉOLA CONGÉNITA 0 0 0 3 2 2 4 8 3 2 24

CARGA VIRAL DE VIH 292 1363 1052 1076 1076 1149 987 1097 1130 3 9225

LINFOCITOS T CD4+/CD8+ 224 1149 887 884 883 997 803 899 860 0 7586

24230

Ago: 159 muestras rechazadas para Triplex.Sep 05: 44 muestras rechazadas para Triplex.

0

200

400

600

800

1000

1200

1400

1600

1800

2000

NÚ

MER

O D

E M

UES

TRA

S

MES

PRODUCTIVIDAD BIOLOGÍA MOLECULAR DIC '18 - AGO '19

INFLUENZA SUBTIPIFICACIÓN INF A Y LINAJES B OTROS VIRUS RESPIRATORIOS

TRIPLEX TIPIFICACIÓN DE DENGUE ZIKA

VON VIGILANCIA ENTOMOVIROLÓGICA SARAMPIÓN

RUBÉOLA RUBÉOLA CONGÉNITA

TOTAL: 7419

MUESTRAS

Extracción RNAPreparación de

reactivos

Montaje de placas

Instrumentación

rRT-PCR

Tratamiento e inactivación

de muestras

Interpretación

Recepción de Muestras

Emisión de resultados

RT-qPCR en tiempo real

Gráfico de amplificación Triplex

Gráfico de amplificación Tipificación DenV

C o n s id e r a c i o n e s

Respetar el porcentaje de muestreo…..para tener solvencia entipificaciones

Para vigilancia de serotipos, promover el recibir muestras de zonas donde no sehaya detectado serotipo

Se cuenta con estuches comerciales TRIPLEX y de tipificación de dengue (“NUEVO”,además de RT-PCR individuales “in house” en caso de no contar con estuchescomerciales

Próximo panel de evaluación contemplara la evaluación de las nuevas metodologías(noviembre de 2019)

Actualmente la RNLSP esta en proceso de verificar todas las metodologías, comoseguimiento al SGC, se esperan resultados en fechas programadas

Toda la RNLSP tiene liberadas las metodologías moleculares y serológicas alineadas al SGI (fortaleza)

El InDRE haciendo referencia de otros flavivirus y alfavirus, incluyendo Mayaro y Fiebreamarilla. LESP de Chiapas realizará la vigilancia de FAV y MAYV. Se estará estratificando RNLSPpara atender también VON