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1 PROBENVORBEREITUNG UND UMGANG MIT BIOLOGISCHEN MATERIALIEN Gewebehomogenisierung Potter Elvehjem Homogen isator Ultraschallhomogenisator Blender Hochleistungshomogenisator

PROBENVORBEREITUNG UND UMGANG MIT … · 14 Probenvorbereitung Probenvorbereitung für spezielle chemische Anforderungen: PFA (Perfluoralkoxy; trade name: Teflon) • Hochreines Polymer

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PROBENVORBEREITUNG UND UMGANG MIT BIOLOGISCHEN MATERIALIEN 

Gewebehomogenisierung 

Potter Elvehjem Homogenisator  

Ultraschall‐homogeni‐sator 

Blender  Hochleistungs‐homogenisator 

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Blutabnahme und ‐aufarbeitung • Für größere Mengen an Blut:  

• Venipunktion  

Blutabnahme und ‐aufarbeitung 

• Für größere Mengen an Blut:  • Venipunktion (einmalig) oder • Katheder (venflow)  

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Blutabnahme und ‐aufarbeitung 

• Für größere Mengen an Blut:  • Venipunktion (einmalig) oder • Katheder (venflow) 

• Für kleinere Mengen: • Kapillarblut (aus der Fingerspitze)  

Probennahme: Blut ‐ Gerinnungshemmung 

• Heparinplasma (Li‐Heparin) • EDTA‐Plasma (K2EDTA) • Zitrat‐Plasma (3.8% Zitronensäure)  

• Serum mit/ohne Trenngel  

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Probennahme: Separation von Plasma und Erythrozyten 

• Zentrifugation (bei relativ niedriger g‐Zahl) • Eventuell Waschen • Weitere Auftrennung (Differential(ultra)zentrifugation) 

Probennahme: Separation von Plasma und Erythrozyten 

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Probennahme:  Auftrennung der Lipoproteine 

• Differential(ultra)zentrifugation 

Plasma

NaBr- Lösung

VLDL

LDL

HDL

(Ch)

Probennahme: Auftrennung der Lipoproteine 

• Differential(ultra)zentrifugation            

• Trennung aufgrund der Dichte  • (Chylomikronen, VLDL, LDL, HDL) 

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 Probenvorbereitung   1. Fettextraktion  

2.  Spurenelementanalytik  

3. Festphasenextraktion (solid phase extraction, SPE) in Hinblick auf LC/MS Analysen 

  

1. Fettextraktion 

Soxhlet Fettextraktion 

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1. Fettextraktion 

Automatische Extraktionsgeräte:  Einzelne Schritte (Extraktion, Spülen und  Trocknen) lassen sich programmieren  Vorteil: die tatsächliche Anzahl an erforderlichen Extraktionszyklen wird auf jeder Position durchlaufen ‐> reproduzierbare Extraktionsbedingungen 

1. Fettextraktion 

Probenvorbereitung für die Analyse von Fettsäuren 

Fettextraktion 

eventuell HPTLC der Membranphospholipide 

Verseifung der Triglyceridester 

Reveresterung der freien Fettsäuren zu Methylfettsäureestern 

GC‐Analyse der Methylfettsäureester 

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1. Fettextraktion 

Rotationsverdampfer 

1. Fettextraktion 

Accelerated Solvent Extraction (ASE) 

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1. Fettextraktion 

Accelerated Solvent Extraction (ASE) 

2. Spurenelementanalytik 

Trockene Veraschung: 

  Proben werden in geeigneten Gefäßen (Porzellan, Platin) unter 

Hitzezufuhr (500‐1000° C) verascht  

Zur Bestimmung des Aschegehalts (Differenzwägung) 

Zur Bestimmung von Mengenelementen (Na, K, Ca, Mg) 

Ungeeignet für die Analyse von flüchtigen Spurenelementen (J, Se) 

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2. Spurenelementanalytik 

Trockene Veraschung: 

Muffelofen 

2. Spurenelementanalytik 

Nasse Veraschung: 

  Proben werden unter Zugabe eines Oxidationsmittels verascht (in 

der Regel eine Mischung aus H2O2 und HNO3) 

Aufschluss erfolgt durch Erhitzung in der Mikrowelle oder unter Hochdruck 

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2. Spurenelementanalytik 

Nasse Veraschung: 

Mikrowellen‐aufschlussgerät 

2. Spurenelementanalytik 

Nasse Veraschung: 

Rotoren und Reaktionsgefäße für Mikrowellenaufschluß 

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2. Spurenelementanalytik 

Nasse Veraschung: 

Hochdruck‐aufschlussgerät 

2. Spurenelementanalytik   Probennahme 

Probennahme

L4

L1

L2

L3

L5

ca. 5 g Lungengewebe von jedem Lungenlappen (Alveolare Region) 5 g Gewebe von Leber und Niere -> tiefgekühlt: -30°C -> gefriergetrocknet -> Mikrowellenaufschluss

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Probenvorbereitung – menschliche Gewebe 

0.5 g gefriergetrocknetes Gewebe 

gespiked mit 196Pt, 108Pd + 4 mL HNO3 + 1 mL H2O2 

Mikrowellenaufschluss 1 min/250W; 1min/0W; je 5 min 

250W/400W/600W; 220°C Abrauchverfahren (offen) 

Einengen auf 500 µL + 100 µL HF + 2 mL HCl (37%) 

Isotopenverdünnungsanalyse (194Pt/196Pt; 195Pt/196Pt; 105Pd/108Pd; 106Pd/108Pd) 

Mikrowellenaufschluss 1h, 400W, 220°C 

Abrauchverfahren (offen) einengen auf 200 µL; + 2 mL aqua regia einengen auf 200 µL; + 1 mL HCl (37%) 

einengen auf 200 µL; + H2O subb;  5 mL Endvolumen 

Verdünnung vor dem Messen 1:4;  ID‐ICP‐MS 

nebulizer

spray chamber plasma torch

extraction lens

sampler cone

skimmer cone

electrostatic analyser

magnetic sector field

ion optics

detector (SEM)

Analytisches set up 

Analytisches set‐up: USN 6000AT+ Element 1  Quantifizierung: IDMS (194Pt/196Pt,  195Pt/196Pt) 

ICP‐SFMS 

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Probenvorbereitung 

Probenvorbereitung für spezielle chemische Anforderungen: PFA (Perfluoralkoxy; trade name: Teflon)  • Hochreines Polymer (Herstellung erfolgt unter Ausschluss    von Weichmachern und Füllstoffen) • sehr gute chemische Beständigkeit gegen fast alle Chemikalien • hohe thermische Stabilität von ‐270°C bis +250°C • extrem glatte Oberflächen herstellbar ‐> leicht zu reinigen    ‐> keine memory Effekte • autoklavierbar und sterilisierbar 

Probenvorbereitung 

Säure Ausdämpf Apparatur: zur Reinigung und Vorbereitung von Probengefäßen in der Ultra‐Spurenanalytik        Vessel Cleaner (Reinigung von Mikrowellengefäßen)  Säurereinigung 

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Probenvorbereitung 

Vessel Cleaner (Reinigung von Mikrowellengefäßen)   

How does it work? Vapor rises from the bath and condenses on the vessels; droplets carrying impurities and return to the acid bath. 

Probenvorbereitung 

Säurereinigung: subboiling   Reinigung für Säuren (HNO3, HCl) oder H2O    

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Probenvorbereitung – Urin 

2 g Urin

Gespiked mit 108Pd + Standardaddition

+250µL HNO3, 1000µL H2O2, 500µL HCl, 1240 µL H2O

Abrauchverfahren (offen) einengen auf 200µL + 1 mL HCl (37%)

einengen auf 200 µL 2 g Probenvolumen

UV-Aufschluss

Isotopenverdünnungsanalyse (105Pd/108Pd; 106Pd/108Pd)

 

Welche Probenvorbereitung ist die richtige? 

 

Manuell oder automatisch? 

On‐line oder off‐line? 

Verdünnen oder Aufkonzentrieren? 

Probenvorbereitung bei der LC/MS Kopplung 

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Warum Probenvorbereitung? 

 

Minimierung der Matrixeffekte 

Eliminierung von Störsubstanzen 

Aufkonzentrieren des Analyten 

Verdünnen des Analyten 

Belastung des LC/MS Systems wird verringert (geringere Kosten in der Erhaltung) 

Genauere Ergebnisse  

  Probenvorbereitung bei der LC/MS Kopplung 

Manuelle oder automatisierte Probenvorbereitung ? 

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Automatisierung   • Probenvorbereitung: off‐line   SPE, LLE   Manuell oder automatisiert  • Probenvorbereitung: on‐line   SPE, mehrdimensionale SPE,    Säulenschaltung 

 

SPE is an extraction process  

whereby an aqueous sample is filtered through a thin bed of 

sorbent particles,  

the analytes of interest are removed from the liquid matrix,  

and concentrated onto the sorbent.   

 

Once concentrated, the analytes are removed by an eluting 

solvent. 

Principles of SPE  

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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SPE Column  

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

Comparison of LLE vs SPE Disk 

    LLE          

Uses 200 ‐ 500 ml solvent    

Shaking / continuous process  

Forms emulsions       

Little selectivity       

Takes 1 ‐ 2 hours / sample    

   Uses 2 ‐ 20 ml solvent 

 

  Filtration process 

  No emulsions formed 

 

  Wide selectivity  

    (adsorbent)  

  Takes 10 ‐ 20 min. / sample 

SPE disk 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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What are the Benefits of SPE? 

SPE uses less solvent than LLE 

SPE is faster (at least 5 times) 

High capacity  

Total SPE costs are considerably less than LLE 

High selectivity: broad choice of bonded phases and solvents 

Automation much easier 

 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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SPE Column accessories 

 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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            Silicagel‐Phases    Reversed Phase 

C18 

 Adsorption 

Si‐OH   

 Normal Phase 

NH2 

CN C‐OH(OH) 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

                   Anion Exchange 

 N+ 

 NH2 

Cation Exchange 

 C6H5‐SO3H 

 COOH 

 SO3H 

Biochromatography 

 WP PEI (NH2)   

 WP Butyl (C4) 

 WP CBX (COO)   

Sephadex G‐25   

Phases 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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         Interactions 

 

  Non polar:    van der Waals     ~20 KJ/mole 

 

Polar:           Dipole / Dipole   ~ 40 KJ/mole 

    Hydrogen bond   ~40 KJ/mole 

 

Electrostatic:   Ionic                     ~600 KJ/mole! 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

4 Steps in SPE 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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Experiment 1: Rapid Extraction of natural dyes in beverages: sample load 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

Experiment 1: Rapid Extraction of natural dyes in beverages: washing step 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

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Experiment 1: Rapid Extraction of natural dyes in beverages: elution step 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

Online SPE‐LC 

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3. Festphasenextraktion (Solid Phase Extraction SPE) 

Online SPE‐LC 

3. Festphasenextraktion (SPE) 

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Proteinfällung 

Vorteile: 

hohe Wiederfindungsrate bei geeignetem Fällungsreagenz 

universell einsetzbar 

schnell durchführbar 

geringe Fehlerquellen, da keine komplizierten Bauteile oder Schaltungen verwendet werden 

 

Nachteile: 

schwer automatisierbar 

Ionische Matrix bleibt erhalten ‐> Belastung des LC/MS Systems 

Verdünnen (Dilute and Shoot) 

Vorteile: 

Alle Komponenten bleiben für die Messung erhalten (Analyt und Matrix!) 

geringer Aufwand für die Probenvorbereitung 

leicht automatisierbar 

kostengünstig 

 

Nachteile: 

Die Matrix muss chromatographisch abgetrennt werden 

Belastung der analytischen Säule und des MS mit der Matrix 

hohe Empfindlichkeit des MS erforderlich 

 

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Festphasenextraktion 

Vorteile: 

leicht automatisierbar 

direktes Einsetzen der Probe beim on‐line Betrieb 

Abtrennung der Matrix 

 

Nachteile: 

schlechte Wiederfindungsrate bei polaren Analyten 

hoher Zeitaufwand beim Einengen des Eluates 

Kosten für die Kartuschen (Einmalkartuschen) 

höherer Zeitaufwand für die Methodenentwicklung als bei der Proteinfällung 

nicht universell einsetzbar 

 

Flüssig‐Flüssig‐Extraktion (LLE) 

Vorteile: 

kostengünstiger als SPE 

schnelleres Einengen des Eluates als bei der SPE 

Matrix wird abgetrennt 

 

Nachteile: 

schlechter automatisierbar als SPE 

schlechte Wiederfindungsrate bei polaren Analyten 

nicht universell einsetzbar