66
Bioprocess Development For Canine Adenovirus Type 2 Vectors KELOMPOK 5

Presentation 1

  • Upload
    anjani

  • View
    220

  • Download
    1

Embed Size (px)

DESCRIPTION

i

Citation preview

Slide 1

Bioprocess Development For Canine Adenovirus Type 2 VectorsKELOMPOK 5INTRODUCTIONAlya zahra dan Shinta MarlinAdenovirusVektor virus saat ini merupakan media yang paling efisien untuk transfer gen in vivo. Vektor Adenovirus (AdV) lebih sering digunakan daripada vektor lainnya.Beberapa karakteristik Adenovirus antara lain :Tropisme sel luas pada sel yang diam maupun bergerakTiter produksi yang tinggi diperoleh pada biakanNamun, khasiat transfer gen dan penggunaan klinis Adenovirus bisa terhambat oleh imunitas humoral dan seluler yang ada pada manusia.Canine Adenovirus tipe 2Canine adenovirus tipe 2 (CAdV-2, atau lebih sering disebutsebagai CAV-2) mungkin memiliki karakteristik terbaik.Kekurangan antibodi dan memori sel T pada manusia, dan transfer gen yang efisien diperoleh karena adanya E1-deleted (DE1) pada vektor CAV-2 dalam sistem saraf pusatmembuat virus ini menjadi media yang menjanjikan untuk terapi gen pada manusia.Kemampuan yang luar biasa untuk menghantarkan sinyal saraf, dikombinasikan dengan kapasitas yang luar biasa dari transportasi aksonal membuat vektor CAV-2 dapat dipertimbangkan untuk pengobatan penyakit neurodegenerative.

Produksi Vektor AdVKebutuhan akan vektor Adenovirus yang tinggi pada akhirnya membutuhkan proses yang efisien dan kuat untuk produksi dan pemurnian pada skala besar sesuai dengan GMP yang baik.Oleh karena itu, protokol skala laboratorium harus disesuaikan. Komposisi bahan serta variabilitas yang tinggi dari batch-ke-batch serum, bersama-sama dengan potensi sumber kontaminasi menimbulkan keprihatinan keamanan dan menghalangi proses standarisasi kultur sel untuk produksi biopharmaceuticals.Introduction#2ALYA ZAHRASampai saat ini, vektor CAV-2 telah diproduksi dalam garis sel yang dihasilkan dari ginjal anjing (Dog Kidney). Namun, sel-sel ini tidak diatur untuk produksi biofarmasi yang menghalangi potensi penggunaan klinis vektor CAV-2.Baru-baru ini, telah dikembangkan garis sel CAV-2 E1-transcomplementing berdasarkan MDCK. Sel MDCK diterima di FDA dan European Medicine Agency, dan digunakan untuk produksi banyak vaksin virus.

Bahkan, baru-baru ini, vaksin flu berbasis sel yang diproduksi di MDCK diluncurkan di pasaran oleh Novartis Vaccines (Optaflu) (Novartis Vaccines and Diagnostics GmbH & Co. KG, Marburg, Germany).Dengan demikian, penggunaan garis sel berbasis MDCK akan Memfasilitasi produksi CAV-2 vektor.

Meningkatkan pemulihan vektor, meminimalkan persyaratan validasi dan pemurnian pelacakan cepat adalah tantangan dalam proses hilir untuk produk vektor virus.Penggunaan tahap kromatografi adalah untuk memfasilitasi proses scale up. Matriks kromatografi yang tersedia saat ini memiliki dimensi pori (30-80 nm) yang mengecualikan vektor virus, sehingga kemampuan mengikatnya rendah. Kelemahan ini bisa diatasi dengan menggunakan tentakel pendukung, yaitu membran kromatografi dan kolom adsorben monolitik.

Tantangan lain bagi pemurnian virus adalah peningkatan ukuran kromatografi eksklusi yang digunakan untuk polishing, karena memiliki kapasitas beban rendah yang membatasi skalabilitas dari proses dan operasi pada laju alir linear yang rendah.Dengan demikian, alat-alat baru seperti matriks yang beroperasi di mode negatif menjanjikan untuk pemurnian skala yang besar dari vektor CAV-2Telah dikembangkan bioproses terintegrasi untuk produksi dan pemurnian CAV-2 vektor.Sel MDCK-E1 tumbuh di microcarriers digunakan sebagai sel inang untuk produksi virus, pemurnian virus hanya berdasarkan langkah kromatografi.Dampak parameter hulu, seperti konsentrasi sel inokulum dan jenis microcarrier pada pertumbuhan sel dievaluasi.

MATERIAL AND METHODSAngelina Wening dan Good WillCell lines and Culture Media

Sel DKZeo yang dihasilkan dari Sel DK ditumbuhkan dalam DMEM dengan 10%FBS dan 1% asam amino non esensial Sel MDCK E1 didapatkan dengan menyerang MDCK dengan pCl-neo plasmid untuk melindungi gen E1 dari CAV-2 MDCK E1 dikultivasi di MEM dengan 10%FBS, 2mM glutamin, dan 1% asam amino non esensialSel disubkultur 2 kali seminggu dalam 150cm2 t-flask dan dijaga dalam inkubator keadaan lembab (5%CO2 pada suhu 37C)Untuk memisahkan atau mengumpulkan sel, monolayer dicuci dengan saline buffer fosfat yang diinkubasi dengan 0,25% trypsin EDTA pada 37C sampai sel lepas dan terlihat jelas. Setelah itu, sel disuspensikan dalam medium kultur.Sel diinokulasikan dengan media kultur yang mengandung FBS (MEM dan DMEM), sel kemudian diresuspensi dalam medium segar.

Cell Growth assaysMDCK E1 ditumbuhkan pada kultur statis berupa inokulum 1 x 104 sel/cm2 dalam 25/cm2 tflaskStirred culture diperform dalam 125 ml spinner flask, kemudian disilikonisasi dengan larutan dimetilklorosilane dalam toluen untuk mencegah menempelnya sel pada dinding flask.Kedua mikrokarier non-pori, Cytodex 3 dan Cytodex 1 disiapkan berdasarkan instruksi pembuatan. Kurva pertumbuhan ditunjukkan dengan menggunakan inokulum 1 x 105 dan 2x105 sel/mL, konsentrasi mikrokarier 2 dan 3 mg/mL, dan pengadukan 50rpm.Cell concentration determinationSel dihitung dengan hemocytometer Fuchs-Rosenthal dengan metode eksklusi trypan bluePada kultur statis, sel dihitung langsung dari suspensi setelah lepasnya trypsin.Dalam kultur mikrokarier atau stirred culture , prosedur serupa diadaptasi.Dari 1 ml sample, microcarrier distabilkan dan supernatant dibuang. Saline buffer fosfat ditambahkan dalam jumlah yang sama untuk mencuci sel, lalu dibuang setelah microcarrier stabil. Trypsin dalam jumlah yang sama ditambahkan, sel diinkubasi dalam 37C hingga pemisahan terlihat jelas, kemudian disuspensikan dan dihitung.DE1 CAV-2 vector stock preparationCAVGFP, vektor DE1 CAV-2 disiapkan seperti yang telah dideskripsikan sebelumnyaStok preparasi : 150 cm2 t-flasks berisi sel DKZeo yang telah terinfeksi dengan MOI of 5 (IP) dan medium exchange pada waktu infeksi.40 hpi, sel dikumpulkan dan dilisiskan dengan 0,1% (v/v) Triton 100x.Lysate diklarifikasi dengan sentrifugasi pada 3000g selama 10 menit pada 4C dan dipurifikasi dengan gradien CsCl Vektor yang telah dipurifikasi disimpan dalam saline buffer fosfat dengan 10% (v/v) gliserol pada -85C.Rasio IP/physical particles (PP) adalah 1 :21 berdasarkan analisis cytometry flow dan real time PCR.

MOI : ratio agent (phage) atau virus terhadap target infeksi (sel)17CAVGFP production assaysThe infection assays ditunjukkan dalam kultur jaringan pada Petri dengan diameter 10cm dan spinner vessels 125 ml.MOI of 5 (IP) digunakan dan medium diganti bersamaan dengan infeksi dilakukan.Saat menggunakan petri kultur jaringan, 8 x 104sel/cm2 diinokulasikan dan diinfeksi 24 jam setelah sel memiliki confluence 80 - 90%. Dalam kultur spinner flask, 1 x 105sel/ml dan 2 x 105sel/ml diinokulasikan menggunakan MEM dan media Optipro secara berurutan.Sel diinfeksi pada akhir fase pertumbuhan eksponensial (~48h).Virus ekstraseluler dikumpulkan dari supernatan. Virus intraseluler dikumpulkan dengan memisahkan sel dalam suatu larutan buffer.Hasil sampel intraseluler and ekstraseluler diklarifikasi pada 3000 gram selama 10 menit pada 4C dan disimpan pada -85CTitration of infectious CAVGFP particlesKuantifikasi IP ditunjukkan dengan monitor ekspresi gen GFP menggunakan modifikasi metode.4 x 104 sel MDCK E1 diinokulasikan dalam 24 cawan dan diinfeksi dengan larutan suspensi viral.Sel tanpa trypsin (24hpi) dan persen sel GFP positif ditentukan dengan flow cytometry.

Measurement of total CAVGFP particles by real time PCRCAVGFP DNA diekstrak dan dipurifikasi dengen High Pure Viral Nucleic Acid Kit.Sebelumnya, plasmid coding untuk genom vektor DE1 CAV-2 yang telah dipurifikasi digunakan sebagai standard.Amplifikasi ditunjukkan dengan Light Cycler System dengan Fast Start Master SYBR Green 1 KitDalam 20uL reaksi PCR, 10uL DNA template dan 10uL mastermix ditambahkan pada tiap kapiler.Isi mastermix berupa 3mM MgCl2 dan 0,5mM tiap primer.Forward primer yang digunakan adalah 50-AAATATACAGGACAAAGAGGTGTGG-30 dan reverse yang digunakan adalah 50-GAACTCGCCCTGTCGTAAAA-30Program standar ditunjukkan berdasarkan Light Cycler RT PCR dan dianalisa menggunakan software Light Cycler.Protein dan DNA AnalysisAnalisa total protein diketahui dengan Pierce BCA kit 23225DNA total analisis dikonduksi menggunakan PicoGreen dsDNA assay kitSerapan terbaca pada 562nm untuk menentukan total protein, dan flourosensi hijau diukur dalam fluorimeter untuk mendeteksi DNAPicoGreen assay memiliki batas deteksi 25pg/ml dsDNAMaterial and Method#2Good will Protein profile of CAVGFP by SDS-PAGE and western blotPartikel virus diendapkan dalam etanol absolut pada suhu 20C selama semalam, disentrifugasi pada 10000 g selama 10 menit dan konsentrasikan pada SDS-PAGE loading-buffer pada 30 g protein per volume total untuk dipindahkan pada gel. SDS-PAGE dilakukan sesuai dengan protokol NuPAGE Novex Bis-Tris Mini Gel menggunakan peralatan Xcell SureLock (Invitrogen).Analisis Western blot dilakukan dengan menggunakan kelinci poliklonal anti CAV-2 antibodi primer. 32 Protein yang didapatkan melalui BCIP / NBT substrat (Pierce) setelah inkubasi dengan alkaline phosphatase terkonjugasi anti kelinci antibodi sekunder (Sigma Aldrich).

Size and electrodynamics measurements of CAVGFPUkuran dan zeta potensial partikel virus ditentukan oleh scatering cahaya dinamis menggunakan Zetasizer Nano-ZS Series ZEN3600 dilengkapi dengan 633nm laser He-Ne (Malvern, Worcestershire, Inggris). Potensial zeta diukur dengan menggunakan 40 l sampel pada 660 l dapar fosfat 10mM (Sigma-Aldrich) dengan pH berkisar antara 3-10 pada kuvet plastik 10x10mm (Sarstedt, USA) dengan menggunakan dip-cell (Malvern). Ukuran partikel ditentukan dengan menggunakan sampel dan volume buffer yang sama pada pH 8.

Bioreactor culture and CAVGFP productionSel MDCK-E1 yang dibudidayakan di tangki bioreaktor siliconized 2-l stirrer (Biostat Q-Plus, Sartorius Stedim Biotech) dilengkapi dengan tiga impeler pisau, dalam kondisi :(volume : 1,5 l ; pH: 7,4 ; suhu: 37 C ; permukaan aerasi pada 40% pO2 ; kecepatan pengadukan: 50-60 rpm). Sel (2x10 sel/ml) yang diunggulkan di 3mg/ml dari Cytodex 1 microcarriers ditempatkan di dalam botol kaca dan dipindahkan ke wadah bioreaktor.Medium kultur OptiPro telah dilengkapi dengan 5% FBS (V/V) selama inokulasi (12 jam). Penggantian media dilakukan dengan menghentikan agitasi dan membiarkan microcarriers menetap. Setelah 2 hari budidaya (1x10 sel/ml), medium ditukar ke OptiPro biasa (tanpa FBS) dan sel-sel yang terinfeksi MOI 5.

56Harvest and clarificationPemanenan dilakukan pada akhir bioreaction (approx pada 42 HPI). Untuk mempromosikan sel lisis, 0,1% Triton X-100 (Merck) ditambahkan dan diinkubasi selama 30 menit pada 37 C dengan Benzonase (50 U/ml).Selanjutnya, microcarriers dibiarkan menetap, dan supernatan yang dihasilkan digunakan untuk diproses lebih lanjut. Klarifikasi pertama kali dilakukan oleh mikrofiltrasi menggunakan kapsul penyaring Sartobrand P 0,45 m (Sartorius Stedim Biotech) pada 70 ml/min.Sentrifugasi dilakukan pada 10000 g, 15 menit pada 4C. Sebuah Sartopure 2 membran kapsul yang terbuat dari polietersulfon (Sartorius Stedim Biotech) dengan prefilter 0,8 m + 0.45 m retensi filter dengan luas daerah filtrasi 50 cm2ChromatographyAKTAexplorer 100 dan 10 sistem (GE Healthcare) yang digunakan untuk melakukan pemurnian kromatografi cair; sistem ini dilengkapi dengan UV, konduktivitas dan pH meter dan dikendalikan secara online dengan ditambah software UNICORN (GE Healthcare). Buffer Tris-HCl (10mm, pH 8,0) ditambah dengan 2mM dari MgCl2 buffer digunakan untuk equilibrium semua kolom.

Anion exchange chromatographyDua perangkat kromatografi anion exchange kuat,menggunakan Tabung Kolom Monolithic CIM QA-8f (mengandung ligan amina kuartener) dan Sartobind Q 75. Tris-HCl (10mM, pH 8,0) ditambah dengan 2mM dari MgCl2 ditambah 1M NaCl digunakan sebagai pencampuran buffer untuk langkah-langkah elusi.Kolom monolitik dipelajari sebagai langkah untuk pemurnian CAV-2. Empat macam kecepatan aliran dievaluasi : 5, 10, 20 dan 40 ml/min ; 8 Volume kolom garam linear dients elusi dilakukan; langkah isokratik garam elusi diuji menggunakan 75, 200, 300 dan 500mM NaCl pada kec 40ml/ minSize exclusion chromatography(gel filtration)Prepacked Superdex 200 10/300 GL (GE Healthcare) diameter 1 cm dan panjang 30 cm. Ini memiliki rentang resolusi optimal 5-200 kDa pemisahan. Buffer Tris-HCl (10mM, pH 8,0) ditambah dengan 2mM MgCl2 digunakan pada kecepatan 1 ml/min (76 cm/h).

Core bead prototype chromatographySebuah inti prototipe matriks (GE Healthcare) digunakan untuk langkah studi. Manik-manik mengandung gugus fungsional (ligan) dalam matriks bola sehingga memungkinkan pengikatan terfragmentasi DNA sel inang dan protein tuan rumah sel kotoran dengan pertukaran ion dan interaksi hidrofobik sementara membiarkan partikel virus mengalir bebas di ruang antar-manik. Salah satu prepacked kolom Hiscreen pencampuran berbagai jenis kromatografi cair digunakan. Kolom ini diseimbangkan dengan 10mM Tris-HCl pH 8,0 dilengkapi dengan 2mM MgCl2 dan sampel dimuat pada 10mS/cm dan 150 atau 300 cm/h

RESULTFikry Dwi Anjani, Nurul Eka, Mega WattyProduktivitas-sel tertentu yang sama dan amplifikasi IP yang diperoleh untuk kedua sel (Tabel 1). Tidak ada perbedaan yang signifikan dalam ukuran partikel, biaya atau protein profil SDS terdeteksi untuk virus yang dihasilkan dengan DKZeo dan MDCK-E1.Hasil penelitian menunjukkan bahwa sel-sel MDCK-E1 cocok untuk produksi CAV-2.

1. Kemampuan sel MDCK-E1 untuk menghasilkan CAV-2 partikel yang benarukuran, biaya dengan profil SDS dievaluasi dibandingkan denganproduksi vektor virus pada sel DKZeo.2. Pengaruh media free serum (SF) OptiPro terhadap pertumbuhan sel dan produksi virus dinilai dengan membandingkan hasil yang diperoleh dengan serumsupplemented (SS) Minimum Esensial Medium Elang (MEM).3. Untuk mengembangkan proses scalable, Strategi dengan inokulasi terbaik (konsentrasi sel inokulum dan jenis microcarrier) untukpertumbuhan sel ditingkatkan dan pemanen pada waktu terbaik panen.4. hasil produksi virus dalam kondisi pengadukan dievaluasi dandikonfirmasi dalam 2-l bioreaktor. Akhirnya, pendekatan untuk vektorklarifikasi, pemurnian dan polishing diselidiki32Pengaruh media kultur terhadap pertumbuhan sel dan produksi vektor dalam kondisi statisPertumbuhan sel dan produksi virus pada medium Free serum SF (OptiPro) dibandingkan dengan media SS (MEM).Nilai yang diperoleh setengah dari, bila menggunakan media SS. konsentrasi sel maksimum dicapai adalah 3,5 kali lipat lebih tinggi (1,9x 106 sel /ml)Produksi-sel spesifik 2223 IP per sel dan 391 IP per sel diperoleh dari SF dan SS, dengan amplifikasi rasio 445 dan 78 IP

Result #2Nurul ekaOptimasi produksi pada kondisi pengadukanPengaruh inokulum sel dan jenis microcarrier pada pertumbuhanselinokulum pada kultur yang diaduk, dan telah dievaluasi menggunakan medium SS dan SF pada konsentrasi: 1x10-5sel ml-1dan 2x10-5sel ml-1Cytodex 1 dan Cytodex 3 digunakan dalam pertumbuhan sel pada media SFNurul Eka Putri-1106002242Hasil Konsentrasi sel maksimum yang diperoleh pada kedua media yang diuji pada konsentrasi inokulum 2x10-5sel ml-1.

Pengaruh waktu pada virus yang dihasilkan.Setelah sel menginfeksi, jumlah maksimum IP dicapai antara 24 dan 36 HPI(time) , sebagian berada di fraksi intraseluler.

Proses Purifikasi CAVGFPMega Watty 1206260091Pengaruh strategi klarifikasi atas hasil vector virus. Setelah lisis sel dipromosikan oleh triton, sebagian besar bioreactor diperlakukan dengan 50 Uml-1 dari benzonase untuk mencerna asam nukleat. Dua metode dievaluasi untuk klarifikasi massal: filtrasi menggunakan filter kedalaman dan sentrifugasi. Kedalaman filter dengan pori-pori 0,45 mm menyebabkan pemulihan dari B30%. Satu filter mendalam dengan lapisan ganda (0.80.45 mm) diperkenalkan dengan langkah sentrifugasi, dan hasil dari IP meningkat menjadi 90% (2%; n3).Pengaruh tingkat dan elusi metode aliran selama capture/pemurnian menengah E1 CAV-2. Untuk menentukan penangkapan terbaik /menengah tahap pemurnian, dua strategi dibandingkan:pengadsorpsi membran (Sartobind Q, Sartorius Stedim Biotech,Goettingen, Jerman) dan penukar anion monolitik Q (CIM Q)Rasio amplifikasi IP bersama saat setelah menginfeksi sel MDCKE1 dalam tabung pemutar dengan medium SS dan medium SF. Antara 24 dan 36 hpi sebagian besar sel-sel yang layak dicapai melekat pada pembawa mikro. Bar kesalahan mewakili s.d. pengukuran rangkap tiga

Produktivitas volumetric (IP ml-1) diperoleh dengan MDCK-E1 dikulturkan pada kultur statis (Tabung T) dan bioreactor (dalam Cytodex 1) menggunakan medium yang disuplementasi menggunakan serum dan medium SF. Vektor virus dikumpulkan pada 40 dan 36 hpi dalam kultur statis dan bioreactor, masing-masing. Bar kesalahan mewakili s.d. pengukuran rangkap tigaProfil kromatogram yang sama diperoleh dengan menggunakan kedua strategi, dimana tiga puncak ditemukan. Gambar 5a menunjukkan diperolehnya kromatogram yang khas. Namun, resolusi yang lebih baik dan hasil vektor yang lebih tinggi dicapai menggunakan CIM Q (82%2% recovery,n3) bila dibandingkan dengan Sartobind Q (42%5% recovery, n3). Menggunakan kolom monolitik, sebagian besar vector virus yang dielusi pada puncak pertama pada 21mScm-1 seperti yang telah dikonfirmasi dengan real-time PCR, analisis elektroforesis dan western blot. Jumlah vektor di puncak lainnya