Embed Size (px)
Citation preview
Las mejores prácticas para detener el avance de la marchitez letal en plantaciones
de palma de aceite
Alex Enrique Bustillo PardeyCoordinador Programa de Plagas y Enfermedades
XIII REUNION TECNICA NACIONAL DE PALMA DE ACEITEMedellín, septiembre 20 – 22, 20116
BASES CONCEPTUALES PARA CONTROLAR Y DETENER LA
DISPERSIÓN DE LA MARCHITEZ LETAL EN LAS ZONAS PALMERAS
Reconocer la presencia del vector de la enfermedad.
El papel que desempeñan las gramíneas en la
dinámica del insecto.
Conocer los hábitos y dinámica del insecto vector del
fitoplasma causante de la ML.
Monitorear su presencia en plantaciones de palma de
aceite.
Conocer cómo llega el patógeno a la palma, como se
desarrolla la infección y cómo se dispersa hacia otras
palmas.
Detección temprana de palmas infectadas por ML.
Llevar a cabo prácticas de control, en concordancia
con lo que se conoce de la ML a través de la
investigación y no por apreciaciones que no tienen
soporte investigativo o de comprobación en campo.
TEMATICA:
La Marchitez Letal (ML) de la Palma de Aceite
Es el resultado de la
interacción entre:
Palma de aceite
(Hospedero)
Gramíneas
El saltahojas, Haplaxius
crudus
(Vector)
Fitoplasma (Agente causante)
Alimentación en una palma enferma
Invasión del fitoplasma en el insecto
Inoculación del fitoplasma en palma sana
Infección sistémica de la palma (ML)
FitoplasmaPalma sana
Palma enferma
Viruses. In the early years of plant pathology research, the term virus simply referred to the unknown: a presumed infectious agent that could not be seen, cultured, or removed with a bacterial filter. Not surprisingly, many early reports of "virus" transmission turned out to be something else: spiroplasmas, phytoplasmas, or the result of direct damage to plant tissue.
Mollicutes. Plant pathogens in this group are associated primarily with yellows, phyllody, stunting, and witches'-broom diseases. In earlier literature these pathogens were usually referred to as mycoplasma-like-organisms (MLO's), and in publications before 1967 they were incorrectly identified as viruses. Current accepted terminology uses the trivial names phytoplasma.
Transmission of Phytoplasm is persistent and propagative; insect vectors remain infective for life and the pathogen moves out of the midgut to multiply in the body cavity and the salivary glands before being transmitted via feeding to a new host plant (Fletcher et al. 1998).
Hemípteros (Saltahojas) como vectores de patógenos de plantasPaula L. Mitchell, Dept. Biology, Winthrop University, Rock Hill, SC 29733 USA,
Neotrop. Entomol. vol.33 no.5 Londrina Sept./Oct. 2004
SON MICROORGANISMOS UNICELULARES PROCARIÓTICOS.
SIN PARED CELULAR, RODEADOS POR UNA SOLA MEMBRANA.
POSEEN CITOPLASMA, RIBOSOMAS Y ADN.
SON PLEOMORFICOS.
NO SE PUEDEN CULTIVAR in vitro.
SE TRANSMITEN A TRAVÉS DE INSECTOS VECTORES.
FITOPLASMAS
Diagrama del tejido vascular y corte transversal del floema. 1. Células cribosas del floema. 2. Flujo de los nutrientes por los conductos cribosos, 3. Células de la pared vascular.
POSICIÓN TAXONÓMICA DE LOS FITOPLASMAS
Clase: Mollicutes
Orden: Acholeplasmatales
Familia: Incertae sedis*
Género: ‘Candidatus Phytoplasma’
La expresión latina incertae sedis se usa en taxonomía para
señalar la incapacidad para ubicar exactamente un taxón
dentro de la clasificación.
Coconut lethal yellowing on the southern coast of the Dominican Republic is associated with a new 16SrIV
group phytoplasma
Detection and Characterization of a Lethal Yellowing (16SrIV) Group Phytoplasma in Canary Island Date
Palms Affected by Lethal Decline in Texas.
First Report of a Phytoplasma-Associated Leaf Yellowing Syndrome of Palma Jipi Plants in Southern
Mexico.
Lethal yellowing‐type diseases of palms associated with phytoplasmas newly
identified in Florida, USAAnnals of Applied Biology 153(1): 85 - 94 · April 2008, Nigel Harrison, University of Florida, Ericka Helmick ,University of
Florida; M.L. Elliott
Abstract
A nested polymerase chain reaction (PCR) assay was used to detect phytoplasmas in stem tissues from declining silver
date (Phoenix sylvestris), Canary Island date (Phoenix canariensis), edible date (Phoenix dactylifera), Queen
(Syagrus romanozoffiana) and Mexican fan (Washingtonia robusta) palms, all displaying symptoms similar to lethal
yellowing (LY) disease, in a tri-county region of west central Florida. Restriction fragment length polymorphism analysis
or sequencing of PCR-amplified rDNA products (1.6 kb) identified three distinct group 16SrIV phytoplasma strains
among 38 infected palms. Most palms (86.8%) contained Texas Phoenix decline (TPD) phytoplasma, a subgroup
16SrIV-D strain, while two P. canariensis harboured palm LY phytoplasma, a subgroup 16SrIV-A strain. The emergence of
new lethal disease of palms beyond southern subtropical region of the state is unprecedented but follows similar
developments in other regions where LY is known to occur.
Evidencias de la presencia de fitoplasmas en palmas con
amarillamiento letal
Las palmas comúnmente son afectadas por “Enfermedades de tipo
amarillamiento letal”, fuera de América también se presentan en regiones
como África Occidental y Oriental y en el Sureste Asiático.
El amarillamiento letal de la palma de coco es una enfermedad que está
distribuida y ha acabado con millones de palma de coco en la región Caribe y el
litoral Atlántico de Centroamérica. Solo en la Florida se registran 35 especies
de palmas que son afectadas por amarillamiento letal, causado por fitoplasmas.
Estudios para determinar el agente causante, realizados en el sur de la
Florida, Texas, República Dominicana, y México, han mostrado en todos los
casos que se trata de un fitoplasma. Sin embargo, a través de análisis
moleculares con RFLP utilizando secuencias de productos de rADN de1,6kb,
amplificadas por PCR, se han identificado tres grupos distintos de razas de
fitoplasmas 16SrIV provenientes de 38 especies de palmas infectadas.
Candidatus Phytoplasma
palmae
En palma de coco se ha
comprobado en la Florida,
Republica Dominicana y México
que el insecto Haplaxius crudus
es el vector del fitoplasma
Así mismo han encontrado el
patógeno en el interior del cuerpo
de H. crudus.
Antecedentes en palma de aceite sobre la ML y el
saltahojas de la palma, Haplaxius crudus
En 1963, el ICA registró una enfermedad en la zona palmera
del Norte de Santander, en la plantación Oleaginosas
Risaralda que afectó toda la plantación y finalmente fue
erradicada. Los investigadores del ICA demostraron que era
transmitida por Haplaxius crudus.
Entre los años 1966 y 1970, se registró en otras plantaciones la
misma enfermedad en los Llanos Orientales (Meta), Indupalma
S. A. (Cesar), Palmares de Andalucía (Magdalena) y Coldesa
S. A. (Antioquia). Se empezó a denominar «La Marchitez letal
de la palma de aceite».
En las hojas, los haces vasculares (Floema) están ubicados hacia el envés de las hojas.
Esta es la razón por la cual los insectos chupadores se localizan en la cara inferior de las hojas.
ADULTOS DE Haplaxius crudusEN EL ENVÉS DE FOLIOLOS DE PALMA
Foto L. G. MONTES
0
5
10
15
20
25
30
35
0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25
Ad
ult
os
de
Ha
pla
xiu
s cr
ud
us
vivo
s(N
úm
ero
)
Tiempo (Días)
Palma de coco
Palma de aceite
Diferencias en la supervivencia de adultos de H. crudus en palma de coco y palma de aceite
Esta información indica que la palma de coco es un hospedero primario de H.
crudus, en donde el adulto está más adaptado a sobrevivir.
Con la introducción de la palma de aceite, Haplaxius crudus se ha adaptado a
este nuevo hospedero, para servir de transmisor de la ML, enfermedad muy
similar al «Amarillamiento letal de la palma de coco».
¿Cómo se ha incrementado la enfermedad en la Zona Oriental?
En la Zona Oriental, la enfermedad se detectó en 1994 en la región del
Bajo Upía (Departamento del Casanare).
Actualmente la enfermedad está presente en 160.000 hectáreas que
comprenden a las Subzonas palmeras:
• Villanueva - Barranca de Upía;
• Cumaral – Paratebueno – Cabuyaro;
• Acacías - Guamal – Castilla;
• San Carlos de Guaroa y San Martin – Ariari.
En estas Subzonas de la Zona Oriental se han presentado entre 1997 y 2015
un total de 320.000 casos de ML,
Las estadísticas muestran una tendencia creciente de 524 casos anuales en
1997 a 80.098 en el 2015.
¿Qué cambios fisiológicos se presentan en la palma infectada por ML? ML es una enfermedad sistémica y letal, una vez el patógeno ingresa en la palma
por la acción de la alimentación del vector Haplaxius crudus, se inicia una serie de cambios fisiológicos.
La rápida reproducción del patógeno en las células de la palma vía floema causa bloqueos que impiden el transporte de los foto asimilados hacia los órganos que lo demandan.
Su capacidad de absorción de agua desde las raíces hasta las hojas a través del xilema se reduce, por esto se produce el cierre de estomas al presentarse un déficit hídrico y se acumulan los carbohidratos en los órganos fuente, lo que conlleva a una reducción de la fotosíntesis, transpiración, y de la capacidad de producir y mantener nuevas hojas y raíces.
Al disminuirse la tasa de transpiración, la capacidad de disipar calor y energía se ve reducida, por lo que se altera el balance hídrico de las palmas y aumenta la temperatura foliar, que a su vez causa una elevación de la concentración interna de CO2 en el mesófilo, dificultando el intercambio gaseoso.
¿Una vez infectada una palma con ML, cuándo
aparecen síntomas visibles de la enfermedad?
Los síntomas típicos visibles de la ML se muestran en la
palma al cabo de 6 a 7 meses desde la inoculación por el
insecto.
Es importante tener presente que la palma infectada puede
convertirse en fuente de contagio, entre el momento en
que el insecto la infecta y el tiempo en el que aparecen los
primeros síntomas de la enfermedad.
1985
Martínez et. al. 1985 Eficacia 14%
2011
Arango et. al. 2011 Eficacia 22%
En Oleaginosos Risaralda se logró reproducir los
síntomas de ML a los 157 días, 5,2 meses
En Palmar de Oriente se logró reproducir
los síntomas de ML a los 172 días, 5,7 meses
Foto: L. J. Sierra
Estudios de transmisión en 2010 demostraron que el vector del patógeno de ML es Haplaxius crudus, confirmando hallazgos anteriores
del ICA EN 1985
Foto: M. Arango
Glándulas salivares de adultos de H. crudus
alimentados en palmas sanas
Informe: Arango, M. 2015
Glándulas
de insectos
alimentados
en palmas
enfermas
por ML
Glándulas
de insectos
alimentados
en palmas
sanas
GLANDULAS SALIVARES DE H. crudus ALIMENTADO EN PALMAS CON ML
¿En Colombia dónde se encuentra el saltahojas de la palma, Haplaxius crudus?
Este saltahojas es un insecto nativo de zonas donde se
encuentran palmas en Colombia.
Se encuentra distribuido en la Zona Oriental palmera asociado a
la ML en plantaciones ubicadas en los municipios de
Paratebueno, Cumaral, Acacias, San Carlos de Guaroa y San
Martín.
En la Zona Central en las subzonas Sur de Santander (La
Vizcaína), Sur del Cesar (Pravia, Palmas del Cesar), Puerto
Wilches (Monterrey).
En la Zona Norte, recientemente en la plantación El Roble y se
espera que esté muy distribuida en la zona, ya que en los años
70 la ML causó serios problemas a las plantaciones de palma de
la época.
Características, comportamiento y biología del saltahojas de la
palma, Haplaxius crudus
Foto: O. Moya Foto: L. J. Sierra
Los adultos machos y hembras de H. crudus tienen mucha actividad diurna y
nocturna, se aparean en las palmas y se desplazan continuamente entre
plantas haciendo visitas cortas para alimentarse de la savia de las hojas con su
aparato bucal del tipo chupador - picador.
Durante el día, en momentos de altas temperaturas, las hembras se refugian
en el suelo donde están las gramíneas y ahí depositan sus huevos.
De los huevos emergen ninfas que se alimentan de las raicillas de las
gramíneas.
Cuando estos se convierten en adultos, salen del suelo y vuelan hacia el follaje
de las palmas, para alimentarse de la savia de las hojas y continuar así su
reproducción.
A la izquierda macolla de Paspalum virgatum (maciega), principal hospedera de
ninfas. Derecha «nidos» de ninfas en la base de los tallos de la gramínea,
mostrando cerosidades blancas típicas de su presencia.
El saltahojas de la palma, Haplaxius crudus se reproduce en las
gramíneas de los lotes de las plantaciones de la palma de aceite
(Foto: C. M. Arango)
(Foto: O. Moya
¿CÓMO ES EL CICLO DE VIDA DEL SALTAHOJAS DEL LA PALMA, Haplaxius crudus?
Adulto: 25 – 30 días Huevo:14 días
Ciclo total lo completan en alrededor de 80 días
Ninfas 39 días
El saltahojas Haplaxius crudus, se encuentra de preferencia en gramíneas
bien desarrolladas que proliferan en los bordes de los lotes de la palma.
Localización de
adultos de
Haplaxius crudus
en el envés del
follaje de las
palmas
Esta posición de H. crudus en el
follaje hace difícil que con
aplicaciones aéreas con
insecticidas se logre buena eficacia
en el control de los adultos.
Hora de captura
7:00 – 9:00
9:00 – 11:00
11:00 – 13:00
14:00 – 16:00
16:00 – 18:00
0
50
100
150
200
250
300
7 - 9 9 - 11 11 - 13 14 - 16 16 - 18
No
. de
adu
lto
sd
e H
. cru
du
s ca
ptu
rad
os
HORA DEL DÍA
Horas del día en que la presencia de adultos de Haplaxius crudus es más frecuente en las plantaciones
Mayor presencia de adultos
Entre las 7:00 - 9:00 horas y
entre 16:00 - 18:00 horas.
Esta información es importante ya que si se va a controlar adultos de H. crudus con insecticidas, es necesario lograr un buen cubrimiento, para impactar los adultos en el envés y aplicarlos en los momentos de mayor abundancia en el follaje.
1:4
Adultos en el follaje
Adultos en las gramíneas
Esta situación indica que, las poblaciones de hembras de H. crudus, en un momento en el día son más abundantes en las gramíneas donde bajan de la palma a ovipositar, que en el follaje de la palma. Por lo tanto, se debe tener en cuenta esto cuando se utilicen insecticidas para su control, ya que es posible que muchas hembras escapen al control.
¿Cómo se dispersan los adultos de Haplaxius crudus
en las zonas palmeras?
Es un insecto de unos 3 mm de longitud y a pesar de que vuela, los
mayores desplazamientos se llevan a cabo por corrientes de vientos.
Se debe tener presente, que aunque en una plantación no se presenten
casos de ML, normalmente hay poblaciones de H. crudus nativos
que no transmiten la ML por no haber adquirido el patógeno al no
existir palmas enfermas en la plantación.
También sucede que entre la población de este insecto que adquiere el
patógeno, no todos son capaces de transmitirlo, como lo demostraron
los estudios de transmisión de Cenipalma, si esto ocurriera el problema
sería aún más severo.
Llegada de adultos infectados de otra plantación
¿Cómo se realiza la diseminación de la ML en una plantación a la que llega un adulto de Haplaxius crudus infectado?
Población nativa de Haplaxius crudus alimentándose en palmas enfermas
Adultos infectados Palma enferma
Diseminación de la ML en el lote con insectos que adquirieron el patógeno de palmas infectadas
¿ EN QUE TIPO DE PLANTAS SE ENCUENTRAN LAS NINFAS DE Haplaxius crudus?
Entre 2013 y 2014 en plantaciones del Bajo Upía, se examinaron 16.820 arvenses presentes en plantaciones de palma de aceite en el Bajo Upía por presencia de ninfas de Haplaxius crudus.
No se encontraron ninfas en las raíces de coberturas de hoja ancha, pero si estaban presentes en 10 especies de gramíneas (Poaceae) y en 4 especies de coquito (Cyperaceae) encontradas en los muestreos.
Poaceae:Andropogon bicornisBrachiaria humidicolaDigitaria sanguinalisEleusine indicaPanicum maximumPanicum fasciculatumPaspalum conjugatumPaspalum virgatumPaspalum plicatulumRottboellia exaltata
Cyperaceae:Cyperus brevifoliusCyperus flavusCyperus luzulaeCyperus sesquiflorus
Especies que albergan en sus raíces ninfas de H. crudus
Las macollas de Paspalum virgatum (Maciega) son atractivas
para la reproducción de H. crudus.
Paspalum virgatum
(Maciega). A. Forma de
crecimiento. B.
Inflorescencia.
Eleusine indica (pata de gallina). A.
Forma de crecimiento. B.
Inflorescencia.
SIERRA M., L. J.; BUSTILLO PARDEY, A. E.; ROSERO E., G. A.; GUTIÉRREZ A., H. J.; MARTÍNEZ P., J. A. 2014. Plantas
hospederas de Haplaxius crudus (Van Duzee) (Hemiptera: Cixiidae) en plantaciones de palma de aceite. Ceniavances 177.
Cenipalma, Colombia, Octubre 2014, 4 p.
Aplicación de herbicidas más un coadyuvante.
Glifosato en dosis de 3,0 l/ha + coadyuvante, con buen
cubrimiento es eficaz reduciendo las poblaciones de ninfas de
H. crudus hasta en un 90%.
Si las gramíneas se presentan en parches es posible eliminarlas
aplicando graminicídas.
¿Aplicaciones de herbicidas pueden reducir las poblaciones de H. crudus?
Información a recordar sobre Haplaxius crudus:
Es un habitante nativo en plantaciones de las Zonas Oriental, Central y Norte, pero no
es una plaga directa de la palma de aceite.
Es el vector del fitoplasma que causa la ML en palmas.
La dispersión de la ML ocurre solo mediante el desplazamiento de H. crudus, que se
da al volar y ser transportado por el viento.
Las hembras adultas de H. crudus colocan los huevos en la base del tallo de las
gramíneas y las ninfas se alimentan de sus raíces.
Las ninfas alcanzan el estado adulto y este vuela hacia el follaje de las palmas a
alimentarse. Puede vivir activo alrededor de 30 días
Si el adulto de H. crudus se alimenta de una palma con ML, adquiere el fitoplasma, que
se reproduce en su tracto digestivo y este luego se aloja en las glándulas salivares de H.
crudus, y el insecto al alimentarse en palmas sanas transmite la ML.
Las poblaciones de adultos de H. crudus se pueden encontrar durante todo el año, pero
son más abundantes en épocas secas al final e inicio y a mediados del año.
Durante el día los adultos se pueden encontrar con mayor frecuencia en el follaje de la
palma. En la mañana (7-9) en la tarde 16-18 horas. Siempre se localizan en el envés de
los foliolos.
¿Cómo se puede monitorear o hacer seguimiento a
poblaciones de Haplaxius crudus?
Para detectar la presencia de adultos de H. crudus en una plantación
se usan las trampas amarillas pegajosas. Se recomienda ubicar dos
trampas por hectárea, cambiándolas semanalmente a diferentes
áreas cercanas a los parches de gramíneas presentes en los lotes.
Esta información debe registrarse para propósitos de tomar decisiones.
Estructuras lanosas en la base de las raíces de macollas de maciega.
Monitoreo de ninfas de Haplaxius crudus
Para detectar la presencia de ninfas en una plantación se debe recorrer los lotes, localizar macollas de las gramíneas más abundantes, como son maciega, pasto granadilla, pate gallina, falsa caminadora, etc.
Se sugiere realizar un muestreo 10 x 10, o sea cada 10 líneas y cada 10 palmas. En cada sitio se localizan entre 3 a 5 macollas las cuales se desentierran y se observa si en las raíces se encuentran ninfas del insecto.
La información tanto de presencia de adultos como de ninfas se lleva a las hojas de registro de la plantación.
El personal que lleva a cabo el censo para la detección, erradicación
y aplicaciones de productos, debe ser preparado e idóneo para que
sus diagnósticos sean certeros, a tiempo y ejecuten la erradicación
con eficacia.
Censos de plantaciones para detectar palmas enfermas
Termometría infrarroja DETECCIÓN DE PALMAS ENFERMAS CON CAMARAS TERMOGRAFICAS O INFRARROJAS
Informe Mauricio Arango 2016
¿El control de la ML se debe considerar como una
actividad a nivel regional? Es importante que todas las actividades de control para la ML, se realicen en
todas las zonas de influencia, ya que debido al movimiento y desplazamiento
de los insectos vectores a través del viento, estos no respetan linderos de
plantaciones.
Si una plantación realiza correctamente todas las acciones para reducir la
enfermedad, pero en lotes vecinos de otras plantaciones no lo hacen,
siempre existirá el riesgo de nuevas infecciones provenientes de las áreas
aledañas.
En el diseño de las plantaciones se debe tener presente la siembra de coberturas de hoja ancha (leguminosas) y evitar la proliferación de gramíneas.
Cultivo de palma con cobertura de hoja ancha.
Coberturas de hoja ancha para reducir las poblaciones del saltahojas de la palma, Haplaxius crudus
Cultivo de palma con cobertura de gramíneas
En lotes establecidos que presenten gramíneas, se deben eliminar aplicando herbicidas y/o con prácticas mecánicas para su control pasando rastras ó agobiándolas con rolos.
¿Cómo realizar labores para eliminar gramíneas y controlar el vector? Seleccionar la cobertura a utilizar: desmodium, kudzú, mucuna.
En lotes con gramíneas aplicar glifosato en dosis de 3 litros/ha para “quemarlas”
.
Luego pasar el rotospeed, o el rolo para remover sus raíces y acondicionar el
suelo para la siembra de la leguminosa.
Abonar de acuerdo con las necesidades del suelo y de la cobertura, proporcionar
riego para su establecimiento.
Si quedan parches de gramíneas, aplicar herbicidas selectivos a gramíneas
como fluazifop, haloxifop y cletodim.
Estas labores además de acabar con la gramínea tienen efecto deletéreo sobre
las ninfas que se alimentan en las raíces.
Monitorear la presencia de ninfas de H. crudus, desenraizando las macollas para
observar la presencia de ninfas de H. crudus.
Aplicar insecticidas sistémicos y de contacto al follaje y al suelo pero no
simultáneos con los herbicidas.
La experiencia de muchas
plantaciones indican que algunos
materiales muestran ser muy susceptibles
a la ML.
Entre estos, se mencionan algunos
códigos de materiales como: ASD,
Unilever, Hope, ICA, IRHO 2878, Papua,
Golden, Guthrie, Smit (Montelibano).
Si en las plantaciones existen lotes con
materiales muy susceptibles hay que
mantenerlos bajo estricta observación
y analizar la posibilidad de su
erradicación.
Evitar plantar materiales muy susceptibles a ML
RECOMENDACIONES PARA PREVENIR LA ML
Realizar las mejores prácticas agronómicas.
A nivel regional mantener un programa de monitoreo
por presencia de H. crudus y palmas con síntomas de ML
Establecer coberturas de hoja ancha al inicio de la
plantación, eliminar las gramíneas a través de labores
culturales y herbicidas.
Monitorear con frecuencia los lotes en plantaciones
donde se detecta ML a través de trampas para adultos e
inspección de macollas de gramíneas por ninfas.
gramíneas.
En sitios donde se encuentren áreas con gramíneas
realizar parcheos con herbicidas selectivos.
Si en los monitoreos de las plantaciones se detectan
casos de ML, se debe proceder como se indica a
continuación:
1. Realizar censos semanales para detectar a tiempo las
palmas enfermas.
2. Una vez se detecta una palma infectada con ML, hay que asperjar con
insecticidas, un área alrededor de la palma infectada, que cubra al
menos cuatro anillos de palmas.
3. Se recomienda que la palma enferma se erradique al día siguiente de
la detección.
La aplicación se debe hacer
con un insecticida que tenga
actividad sistémica y de
contacto, dirigida tanto al follaje
de las palmas como a la
vegetación en el suelo.
4. En el lote donde se encuentran casos de ML y hay presencia de
gramíneas, se debe inmediatamente proceder a reducir sus
poblaciones.
5. Desde el momento que se detecten palmas infectadas en un
lote, este debe considerarse como un foco de la enfermedad.
6. Si se presenta una palma enferma en otro lote diferente, este
lote se considera como un nuevo foco en la plantación y debe
hacerse lo mismo detallado con anterioridad.
7. Para que un lote infectado con ML sea considerado libre de
infecciones, se debe mantener el manejo indicado anteriormente
por un tiempo no menor a 8 meses, (libre de nuevas
infecciones), el cual se prolonga si se detectan en el lote nuevas
palmas infectadas.
MESA DE TRABAJO MULTIDISCIPLINARIA
Programa de Plagas y Enfermedades
Coordinadora de Manejo Fitosanitario
Extensión y Validación
Núcleo Aceites Manuelita
Investigación básica:
Biología
Fisiología
Geomática
Proyecto Regalías – Gobernación del Meta
