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Tetrahedron Letters,Vol.25,No.S,pp 543-546,1984 0040-4039184 $3.00 + .oo Printed in Great Britain 01984 Pergamon Press Ltd. PREPARATION D’OXYDES DE LIh!ALOL PAR BIOCOIWEFSIOl% L. David et H. Veschambre ERA 392, UniversitG de Clermont II, B.P. 45, 63170 AUBIERE - FRANCE. Swrmary : Microbial cyclisation of ZinaZoL ii), i-J and 1+1 by a nigericin-producing Strepto- myces albus gives ZinaloZ oxides. Cis ZinaZoZ oxide gives&osite signs for the rotatory power when measured neat or in solution. Dans le cadre d’une etude sur la biosynthese des antibiotiques ionophores carboxyli- ques et plus particulibrement sur la formation des cycies tetrahydrofuranniques, selon l’hypo- these admise g&neralement a partir d’un precurseur polyenique ayant subi une epoxydation (1)) il nous a paru interessant de tester cette rGaction d’heterocyclisation oxydante en utilisant un substrat modele avec une souche microbienne productrice d’un de ces antibiotiques. La souche choisie est Streptomyeesalbus, NRRL 1865, productrice de la nigericine 1. _ HCQC - Le substrat 6tudiE est le linalol 2 dont on pouvait attendre la transformation en - o,yde de linalol 3. - Le linalol trait& par d’autres souches (2) conduit avec de trb faibles rendenents aux oxydes de linalol identifies, parmi d’autres produits, par chromatographie en phase gazeu- se et spectrometrie de masse. Avec S. albus, nous avons d’abord &tudie la bioconversion du 3R (-) linalol 2a qui - est ajoute (50 mg/lOO ~1 de culture), apres 24 heures de culture, dans un milieu producteur 543

Preparation d'oxydes de linalol par bioconversion

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Tetrahedron Letters,Vol.25,No.S,pp 543-546,1984 0040-4039184 $3.00 + .oo Printed in Great Britain 01984 Pergamon Press Ltd.

PREPARATION D’OXYDES DE LIh!ALOL PAR BIOCOIWEFSIOl%

L. David et H. Veschambre

ERA 392, UniversitG de Clermont II, B.P. 45, 63170 AUBIERE - FRANCE.

Swrmary : Microbial cyclisation of ZinaZoL ii), i-J and 1+1 by a nigericin-producing Strepto- myces albus gives ZinaloZ oxides. Cis ZinaZoZ oxide gives&osite signs for the rotatory power when measured neat or in solution.

Dans le cadre d’une etude sur la biosynthese des antibiotiques ionophores carboxyli-

ques et plus particulibrement sur la formation des cycies tetrahydrofuranniques, selon l’hypo-

these admise g&neralement a partir d’un precurseur polyenique ayant subi une epoxydation (1))

il nous a paru interessant de tester cette rGaction d’heterocyclisation oxydante en utilisant

un substrat modele avec une souche microbienne productrice d’un de ces antibiotiques.

La souche choisie est Streptomyees albus, NRRL 1865, productrice de la nigericine 1. _

HCQC

-

Le substrat 6tudiE est le linalol 2 dont on pouvait attendre la transformation en - o,yde de linalol 3. -

Le linalol trait& par d’autres souches (2) conduit avec de trb faibles rendenents

aux oxydes de linalol identifies, parmi d’autres produits, par chromatographie en phase gazeu-

se et spectrometrie de masse.

Avec S. albus, nous avons d’abord &tudie la bioconversion du 3R (-) linalol 2a qui - est ajoute (50 mg/lOO ~1 de culture), apres 24 heures de culture, dans un milieu producteur

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de nigPricine (3) contenant de 1’olBate de m6tllyle. 11 se forme deux compos 6s que nous avons

isol& et dont la structure a &t& d6termin6e par RMN en comparaison avec les spectres d6ja

publi&s (4). Ce sont les isomhzs trans 3a et cis 3’a obtenus dans la proportion 1 :2 et dont - le pouvoir rotatoire est respectivement de -7,5’ et -4”.

2a 3R(-) - 3a (ZR,SR) 3’a (ZR,SS) - -

Les meilleurs rhultats sont obtenus aprk 20 jours de bioconversion. Le rendement

a &t6 d&termi& par addition d’un 6talon interne dans le m&lange 3a + 3’a et analyse par C.P.V. -- 11 est seulement de 10 ?I 20 %. Le reste du linalol est vraisemblablement metabolise par le

microorganisme.

Gous avons ensuite 6tudi6 la bioconversion du (+) linalol 2b et du linalol racgmique - par S. albus.

Les r&sultats concernant le 3s (+) linalol sont en accord avec ceux observds dans le

cas du (-) linalol puisque les 2 isomsres obtenus 3b et 3’b (dans la proportion 2:l) sont biell - - les hantiomh-es de 3a et 3’a. On constate Bgalement que, dans les 2 cas, l’oxyde de linalol - - majoritaire dans le m6lange a un carbone SS, 3’a B partir du (-) linalol et 3b 2 partir du (+) - 1 inalol .

y--y ) Ho)+JJ t _p(--y

2b 3S(+) - 3b (2S,SS) - 3’b (ZS,SR)

Le linalol racgmique conduit aux rhultats attendus. En effet, dans le melange des

oxydes trans 3a + 3& c’est le compos6 3b (5s) qui est majoritaire (pouvoir rotatoire positif), - - alors que dans le mglange des oxydes cis 3’a + 3’b c’est le compos6 3’a (5s) qui est majoritaire -- (pouvoir rotatoire Ggatif). (Voir tableau I).

Enfin, nous avons repris la synthhe chimique de F6lix et ~011. (5). Nous avons cher-

&& 2 pr&parer 1’6poxyde de (-) linalol en traitant cet alcool par une solution &h&-&e d’acide

perphtalique. Nous avons obtenu, non pas 1’6powde du (-) linalol, mais directement le m6lange

des oxydes de linalol. Les deux isomhes, s&par& par distillation 2 l’aide d’une colonne 2 ban-

de tournante Nester-Faust INFA 100, sent identiques ;i ceux form& par biocowersion du (-) lina-

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-

C

546

101 par S. albus. 11s ont des pouvoirs rotatoires de -b,S' et -4" (tableau I).

Les pouvoirs rotatoires des oxydes de linalol 3a et 3'a obtenus par Felix et ~011. -- sont respectivement de -12" et +3:4 (tableau 1). Ces pouvoirs rotatoires paraissent tr& dif-

ferents de ceux que nous avons observ& pour les mi?mes isomih-es y compris pour le signe de

l'oxyde cis. En fait les pouvoirs rotatoires ont &tG d&termin& par ces auteurs sur les pro-

duits purs ; nous avons retrouv6, dans les m$mes conditions des valeurs t&s voisines (tableau

1). Nous avons dgalement montre que les pouvoirs rotatoires de l'oxyde cis sont de signe oppo-

s& en solution dans le chloroforme et dans le m&anol. 11 s'agit done d'un exemple supplgme=-

taire des variations du pouvoir rotatoire suivant les conditions experimentales de sa mesure.

REb1ERCIEMENTS

Nous remercions m. A. KERGOMARD, ELF. FENARD (Universit& de Clermont II) et M. A.F.

THOMAS (Firmenich, Genhe) pour d'utiles discussions et Mesdames G. KERGOUQD et fi. GRANGEMAU

pour leur collaboration technique.

REFERENCES ET NOTE :

1 - J.W. WESTLEY, Polyether antibiotics Biosynthesis. Dans "Antibiotics" vol. IV Biosynthesis

ed. CORCORAN J.W.,Springer Verlag, Berlin, Heidelberg, New York, 1981.

2 - J. SHIMIZU, M. HEHARA and M. WATANABE. Agric. Biol. Chem., 46, 1339 (1982).

K.&l. MADYASTHA, P.K. BHATTACHARYYA and C.S. VAIDYANAT&!N, Can. J. bIicrobiol., 23, 230 (1977).

3 - Milieu de production de la nighicine pour 1 litre : glucose log, casamino-acid 4g, extrait

de levlhre lg, et extrait de viande lg. Le pH est ajust B 7 avec de la soude concentrde

avant St&rilisation.

4 - A.F. TmMAS, W. THOf+lEN, B. WILLHALM, E.W. HAGAh1AN and E. WENKERT, Helv. Chim. Acta, 57,

2055 (1974).

5 - D. FELIX, A. MELERA, J. SEIBL and E. sz KOVATS, Helv. aim. Acta, 46, 1513 (1963).

(Received in France 7 December 1983)