Normes OEPP EPPO Standardsarchives.eppo.int/EPPOStandards/PM7_DIAGNOS/french/pm7-09(1).pdf · EPP_585.fm Page 241 Thursday, ... EPPO Standards are subject to periodic review and amendment

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2002 OEPP/EPPO,

Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

32

, 241243

Blackwell Science, LtdOxford, UKEPPBulletin OEPP/EPPO Bulletin1356-1294OEPP/EPPO, 200232Original ArticleDiagnostic protocols for regulated pestsEPPO Standards

European and Mediterranean Plant Protection OrganizationOrganisation Europenne et Mditerranenne pour la Protection des Plantes

Normes OEPPEPPO Standards

Diagnostic protocols for regulated pestsProtocoles de diagnostic pour les organismes rglements

PM 7/9(1)

European and Mediterranean Plant Protection Organization 1, rue Le Ntre, 75016 Paris, France

EPP_585.fm Page 241 Thursday, August 1, 2002 11:09 PM

242 EPPO Standards

2002 OEPP/EPPO,


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, 241243

Approval

EPPO Standards are approved by EPPO Council. The date of approvalappears in each individual standard. In the terms of Article II of theIPPC, EPPO Standards are Regional Standards for the members ofEPPO.

Review

EPPO Standards are subject to periodic review and amendment. Thenext review date for this EPPO Standard is decided by the EPPOWorking Party on Phytosanitary Regulations.

Amendment record

Amendments will be issued as necessary, numbered and dated.The dates of amendment appear in each individual standard (asappropriate).

Distribution

EPPO Standards are distributed by the EPPO Secretariat to all EPPOmember governments. Copies are available to any interested personunder particular conditions upon request to the EPPO Secretariat.

Scope

EPPO Diagnostic Protocols for Regulated Pests are intended to be usedby National Plant Protection Organizations, in their capacity as bodiesresponsible for the application of phytosanitary measures to detect andidentify the regulated pests of the EPPO and/or European Union lists.

In 1998, EPPO started a new programme to prepare diagnostic pro-tocols for the regulated pests of the EPPO region (including the EU).The work is conducted by the EPPO Panel on Diagnostics and otherspecialist Panels. The objective of the programme is to develop aninternationally agreed diagnostic protocol for each regulated pest. Theprotocols are based on the many years of experience of EPPO experts.The first drafts are prepared by an assigned expert author(s). They arewritten according to a common format and content of a diagnosticprotocol agreed by the Panel on Diagnostics, modified as necessaryto fit individual pests. As a general rule, the protocol recommends aparticular means of detection or identification which is consideredto have advantages (of reliability, ease of use, etc.) over other methods.Other methods may also be mentioned, giving their advantages/disadvantages. If a method not mentioned in the protocol is used, itshould be justified.

References

EPPO/CABI (1996)

Quarantine Pests for Europe

, 2nd edn. CAB Interna-tional, Wallingford (GB).

EU (2000) Council Directive 2000/29/EC of 8 May 2000 on protectivemeasures against the introduction into the Community of organismsharmful to plants or plant products and against their spread withinthe Community.

Official Journal of the European Communities

L169,1112.

Approbation

Les Normes OEPP sont approuves par le Conseil de lOEPP. La datedapprobation figure dans chaque norme. Selon les termes de lArticleII de la CIPV, il sagit de Normes rgionales pour les membres delOEPP.

Rvision

Les Normes OEPP sont sujettes des rvisions et des amendementspriodiques. La prochaine date de rvision de cette Norme OEPP estdcide par le Groupe de travail pour ltude de la rglementationphytosanitaire.

Enregistrement des amendements

Des amendements seront prpars si ncessaire, numrots et dats.Les dates de rvision figurent (si ncessaire) dans chaque normeindividuelle.

Distribution

Les Normes OEPP sont distribues par le Secrtariat de lOEPP tousles Etats membres de lOEPP. Des copies sont disponibles, souscertaines conditions, auprs du Secrtariat de lOEPP pour toutepersonne intresse.

Champ dapplication

Les protocoles de diagnostic de lOEPP pour les organismes rglementssont destins aux Organisations Nationales de Protection des Vgtaux,en leur qualit dautorits responsables de lapplication de mesuresphytosanitaires pour la dtection et lidentification des organismes nuisiblesrglements des listes de lOEPP et /ou de lUnion europenne.

LOEPP a initi en 1998 un nouveau programme de prparation deprotocoles de diagnostic pour les organismes rglements de la rgionOEPP (y compris lUE). Le travail est ralis par le Groupe dexpertsOEPP sur le diagnostic et dautres Groupes dexperts spcialiss.Lobjectif du programme est de dvelopper, pour chaque organismenuisible rglement, un protocole de diagnostic approuv internation-alement. Les protocoles reposent sur les nombreuses annes dexpri-ence des experts de lOEPP. La premire version dun protocole estprpare par un expert. Elle est rdige suivant le format et contenucommuns dun protocole de diagnostic approuv par le Groupedexperts sur le diagnostic, modifi, le cas chant, dans les cas indiv-iduels. En rgle gnrale, un protocole recommande un moyen dedtection ou didentification particulier considr avoir des avantagessur les autres (du point de vue de la fiabilit, la facilit dutilisation,etc.). Dautres mthodes sont parfois mentionnes, en prcisant leursavantages/inconvnients. Des justifications doivent tre fournies si onutilise une mthode qui nest pas mentionne dans le protocole.

Rfrences

EPPO/CABI (1996)

Organismes de quarantaine pour lEurope

, 2me edn.CAB International, Wallingford (GB).

FAO (1997)

Convention internationale pour la protection des vgtaux

(nouveau texte rvis). FAO, Rome (IT).OEPP/EPPO (1999) Normes OEPP PM 1/2(8) Listes A1 et A2 dorganismes

de quarantaine de lOEPP. In:

Normes OEPP PM1 Mesures phytosani-taires gnrales

, pp. 517. OEPP/EPPO, Paris (FR).


Diagnostic protocols for regulated pests 243

2002 OEPP/EPPO,


32

, 241243

FAO (1997)

International Plant Protection Convention

(new revised text).FAO, Rome (IT).

OEPP/EPPO (1999) EPPO Standards PM 1/2 (8): EPPO A1 and A2 lists ofquarantine pests. In

EPPO Standards PM1 General phytosanitary meas-ures

, 517. OEPP/EPPO, Paris (FR).

Definitions

Regulated pest

: a quarantine pest or regulated non-quarantine pest.

Quarantine pest

: a pest of potential economic importance to the areaendangered thereby and not yet present there, or present but not widelydistributed and being officially controlled.

Outline of requirements

EPPO Diagnostic Protocols for Regulated Pests provide all theinformation necessary for a named pest to be detected and positivelyidentified by a general expert (i.e. an entomologist, mycologist,virologist, bacteriologist, etc.) but not necessarily a specialist on theorganism or its taxonomic group. Each protocol begins with some shortgeneral information on the pest (its appearance, relationship with otherorganisms, host range, effects on host, geographical distribution andits identity) and then gives details on the detection, identification,comparison with similar species, requirements for a positive diagnosis,list of institutes or individuals where further information on thatorganism can be obtained, references (on the diagnosis, detection/extraction method, test methods).

Many protocols include laboratory tests involving the use of chem-icals or apparatus which may present a certain hazard. In all cases, localsafety procedures should be strictly followed.

Named trade products have been shown to work in these protocols.Other similar products may be equally effective.

Existing EPPO Standards in this series

Five EPPO diagnostic protocols have already been approved andpublished. Each standard is numbered in the style PM 7/4 (1), meaningan EPPO Standard on Phytosanitary Measures (PM), in series no. 7(Diagnostic Protocols), in this case standard no. 4, first version. Theexisting standards are:PP 7/1 (1)

Ceratocystis fagacearum. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 4144.PP 7/2 (1)

Tobacco ringspot nepovirus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 4551.PP 7/3 (1)

Thrips palmi. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 5360.PP 7/4 (1)

Bursaphelenchus xylophilus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 6169.PP 7/5 (1)

Nacobbus aberrans. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

,7177.

UE (2000) Directive du Conseil 2000/29/EC du 8 mai 2000 concernant lesmesures de protection contre lintroduction dans la Communautdorganismes nuisibles aux vgtaux ou aux produits vgtaux et contreleur propagation lintrieur de la Communaut.

Journal Officiel desCommunauts Europennes

L169, 1112.

Dfinitions

Organisme nuisible rglement

: organisme de quarantaine ou organismerglement non de quarantaine.

Organisme de quarantaine

: organisme nuisible qui a une importancepotentielle pour lconomie de la zone menace et qui nest pas encoreprsent dans cette zone ou bien qui y est prsent mais ny est paslargement dissmin et fait lobjet dune lutte officielle.

Vue densemble

Les protocoles de diagnostic de lOEPP pour les organismesrglements donnent toutes les informations ncessaires la dtectionet lidentification dun organisme nuisible donn par un expertgnraliste (cest dire un entomologiste, mycologue, virologue,bactriologiste, etc.), et pas ncessairement par un spcialiste delorganisme ou du groupe taxonomique. Chaque protocole dbute avecde brves informations gnrales sur lorganisme nuisible (aspect,relations avec dautres organismes, gamme dhte, effets sur lhte,rpartition gographique et identit), puis donne des dtails sur ladtection, lidentification la comparaison avec des espces similaires,les exigences pour un diagnostic positif, une liste dinstituts oudindividus susceptibles de fournir des informations supplmentairessur cet organisme, des rfrences (sur le diagnostic, la mthode dedtection/extraction, les mthodes de test).

Ces protocoles font souvent appel des analyses de laboratoirebases sur lutilisation de produits chimiques ou dappareis qui peuventprsenter un certain danger. Il est important, dans tous les cas, de suivrerigoureusement les procdures locales de scurit.

Lefficacit des produits commerciaux qui sont mentionns dans lesprotocoles est reconnue. Dautres produits similaires peuvent aussi treefficaces.

Normes OEPP dj existantes dans cette srie

Cinq protocoles de diagnostic OEPP ont dj t approuves et publies.Chaque norme est individuellement numrote: par exemple la normePM 7/4(1) est une Norme OEPP sur les mesures phytosanitaires (PM),appartenant la srie 7 (protocoles de diagnostic); il sagit dans ce casde la Norme 4, 1re version. Les normes existantes sont:

PP 7/1 (1)

Ceratocystis fagacearum. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 4144.PP 7/2 (1)

Tobacco ringspot nepovirus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 4551.PP 7/3 (1)

Thrips palmi. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 5360.PP 7/4 (1)

Bursaphelenchus xylophilus. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

, 6169.

PP 7/5 (1)

Nacobbus aberrans. Bulletin OEPP/EPPO Bulletin

31

,7177.


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Blackwell Science, LtdOxford, UKEPPBulletin OEPP/EPPO Bulletin1356-1294OEPP/EPPO, 200232Original ArticleCacoecimorpha pronubanaDiagnostic protocols for regulated pests

European and Mediterranean Plant Protection Organization PM 7/9(1)Organisation Europenne et Mditerranenne pour la Protection des Plantes

Diagnostic protocols for regulated pestsProtocoles de diagnostic pour les organismes rglements

Cacoecimorpha pronubana

Champ dapplication spcifique

Cette norme dcrit un protocole de diagnostic pour

Cacoecimorphapronubana

.

Approbation et amendement spcifiques

Approbation initiale en 2001-09.

Introduction


appartient la famille des

Tortricidae

. Il sagitde la seule espce du genre

Cacoecimorpha

. Les larves sont polyphageset salimentent sur une vaste gamme darbres et arbustes dornement,ainsi que de fruits et lgumes, en particulier sous abri. Les plantes htescomprennent:

Achillea

,

Berberis

,

Bergenia

,

Chaenomeles

,

Citrus

,

Cotoneaster

,

Dianthus caryophyllus

,

Euonymus japonicus

,

Euphorbia

,

Fragaria

,

Hippophae

,

Laurus nobilis

,

Lavandula

,

Ligustrum

,

Lonicera

,

Lycopersicon esculentum

,

Mahonia

,

Malus

,

Philadelphus

,

Pinus halepensis

,

Prunus

,

Pyracantha

,

Pyrus

,

Rhododendron

,

Robinia

,

Rosa

,

Rubus idaeus

,

Spiraea

,

Symphoricarpos

,

Weigela

. Les larves salimentent sur les feuilleset les ptales, les rassemblant entre eux par des toiles en soie. Ellespeuvent galement creuser les bourgeons floraux et endommager la peaudes fruits. Cette espce est originaire de la rgion mditerranenne, o elleest largement rpandue, mais elle est galement prsente dans des paysdEurope du nord (Allemagne, Irlande, Luxembourg, Pays-Bas, Royaume-Uni). Elle a aussi t signale en Afrique du sud et aux Etats-Unis (Oregon).

Identit

Nom:


(Hbner)

Synonymes:

Tortrix pronubana

HbnerCacoecimorpha ambustana Hbner

Cacoecimorpha hermineana

Duponchel

Cacoecimorpha insolatana

Lucas

Cacoecia pronubana

Hbner

Classement taxonomique:

Insecta: Lepidoptera:

Tortricidae:Tortricinae: Archipini

.

Code informatique Bayer:

TORTPR

Catgorisation phytosanitaire:

Liste A2 de lOEPP no. 104

Dtection

Les ooplaques sont gnralement pondues la face suprieure desfeuilles, dans lesquelles les larves de premier stade creusent des mines.

Specific scope

This standard describes a diagnostic protocol for

Cacoecimorphapronubana.

Specific approval and amendment

First approved in 2001-09.

Introduction


belongs to the family

Tortricidae

and is theonly species in the genus

Cacoecimorpha

. The larvae are polyphagous,feeding on a wide range of ornamental trees, shrubs, fruit and vegetables,particularly those grown under protected cultivation. Host plantsinclude:

Achillea

,

Berberis

,

Bergenia

,

Chaenomeles

,

Citrus

,

Cotoneaster

,

Dianthus caryophyllus

,

Euonymus japonicus

,

Euphorbia

,

Fragaria

,

Hippophae

,

Laurus nobilis

,

Lavandula

,

Ligustrum

,

Lonicera

,

Lycopersiconesculentum

,

Mahonia

,

Malus

,

Philadelphus

,

Pinus halepensis

,

Prunus

,

Pyracantha

,

Pyrus

,

Rhododendron

,

Robinia

,

Rosa

,

Rubus idaeus

,

Spiraea

,

Symphoricarpos

,

Weigela

. The larvae feed on leaves andpetals, binding them together with silken webbing, and can also befound boring into flower buds and damaging the skins of fruits. Thespecies originates in the Mediterranean where it is widespread but alsooccurs in some more northern European countries (Germany, Ireland,Luxembourg, Netherlands, UK). It is also recorded in South Africa andthe USA (Oregon).

Identity

Name:


(Hbner)

Synonyms:

Tortrix pronubana

Hbner

Cacoecimorpha ambustana

Hbner

Cacoecimorpha hermineana

Duponchel

Cacoecimorpha insolatana

Lucas

Cacoecia pronubana

Hbner

Taxonomic position:

Insecta: Lepidoptera:

Tortricidae: Tortricinae:Archipini.

Bayer computer code:

TORTPR

Phytosanitary categorization:

EPPO A2 list no. 104

Detection

Egg masses are usually found on the upper surface of leaves and firstinstar larvae mine within leaves. Later instars can be found feeding on


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the terminal or lateral leaves which they roll up and bind together withsilk, resulting in a characteristic crooked growth. Larvae can also befound feeding on flower buds and can sometimes be detected by thepresence of silken webbing on petals, or by the flowers having acharacteristic swollen appearance. The presence of light-brown toblackish patches on the surface of citrus fruit is another indication ofthe presence of

C. pronubana

larvae. Adults, males especially, cansometimes be found flying during sunny days, and can immediately berecognized by their bright orange hindwings. When at rest, moths areless distinctive as the wings are held roof-wise over the body, with onlythe greyish brown forewings showing. Sex pheromone lures and relatedattractants have been developed for

C. pronubana

adult males [Z11-14Ac (Descoins

et al

., 1985), Z11-14OH (Witzgall, 1990)] and arevery effective at detecting and monitoring the presence of this species.

Identification

The adults of

C. pronubana

are distinctive and can be readily identifiedwith experience or by comparison with preserved specimens, whoseidentification should have been confirmed by an experiencedlepidopterist. Adults are best examined pinned under a low powermicroscope (up to

80 magnification). Wing venation can temporarilybe observed by placing a drop of ethanol on the upper surface of thewing and examining with lower stage lighting. For a more permanentview of wing venation, the wing should be detached, placed in 70%ethanol and the scales removed with a fine paintbrush. Guidance onpinning specimens, and diagrams showing the labelled wing venationof a typical tortricid, are provided by Holloway

et al

. (1992).If adults are in poor condition, or where further confirmation is

needed, genitalia dissection can be performed. Both male and femalegenitalia can be used to identify the species. For a method of slide prep-aration of genitalia, see Appendix I. High-power magnification (

100)may be required to discern certain features. Further information on thegeneral structure, terminology, preparation and dissection of genitaliacan be found in Robinson (1976) and Cribb (1972).

With respect to larvae, diagnostic characters may not be visible inearly instars and it is therefore preferable to rear to later instars for iden-tification. The late instar larvae, pupae and pupal cases of

C. pronubana

are distinctive and readily identified with experience or by comparisonwith voucher specimens. If there is any doubt with the larval or pupal,live specimens should, if possible, be reared to adults for confirmation.Both live and dead larvae can be examined under

80 magnification.With live larval and pupal specimens that are to be reared, handlingshould be kept to minimum and manipulation carried out carefully witha fine paintbrush.

Diagrams illustrating setal nomenclature of larvae are provided byCarter (1984) or Holloway

et al

. (1992). Setal maps for

C. pronubana

are illustrated in Carter (1984) and Fisher (1924) and provided in thistext (Figs 1 and 2). To view the larval mandibles, it is necessary to killthe specimen. Eggs cannot be reliably identified and should, if possible,be reared to a later life stage for identification.

Eggs

Size: 1 mm

0.6 mm. Oval to circular, flattened with a reticulatechorion and surrounded by mucilaginous jelly. Initially light-green,

Les stades suivants salimentent sur les feuilles terminales ou latralesquelles enroulent et rassemblent avec des fils de soie, ce qui entranedes dformations de la croissance. Les larves salimentent galementsur les bourgeons floraux et peuvent parfois tre repres par laprsence de soie sur les ptales ou par des fleurs anormalement gonfles.La prsence de taches de couleur brun clair noirtre la surface desfruits des agrumes est une autre indication de la prsence de larves de

C. pronubana

. Les adultes, surtout les mles, volent parfois pendant lesjournes ensoleilles et peuvent tre immdiatement reconnus leursailes postrieures de couleur orange brillant. Ils sont moins caractristiquesau repos car les ailes sont replies en forme de toit au-dessus du corps,et seul le brun gristre des ailes antrieures est visible. Des apptsutilisant des phromones sexuelles et autres attractifs ont t dveloppspour les mles adultes de

C. pronubana

[Z11-14Ac (Descoins

et al

.,1985), Z11-14OH (Witzgall, 1990)]; ils sont trs efficaces pour dtecteret surveiller les populations de cette espce.

Identification

Les adultes de

C. pronubana

sont caractristiques et faciles identifierpar ceux qui connaissent dj lespce ou qui disposent de spcimensde rfrence. Lidentification de ces derniers doit avoir t confirmepar un lpidoptriste expriment. Les adultes pingls sont examinsau microscope ( jusquau grossissement

80). La nervation peut treobserve temporairement en dposant une goutte dthanol la facesuprieure de laile et en lexaminant sous une lumire plus faible. Pourune observation plus durable de la nervation, dtacher laile, la placerdans de lthanol 70% et liminer les cailles avec un pinceau fin.Holloway

et al

. (1992) dcrit lpinglage des spcimens et prsente desdiagrammes de la nervation alaire numrote dun tortricid typique.

Si les adultes sont en mauvais tat, ou si une confirmation estncessaire, les gnitalia peuvent tre dissqus. Les gnitalia mle oufemelle peuvent tre utiliss pour identifier lespce. Une mthode deprparation des gnitalia sur lame est prsente lannexe I. Un gros-sissement fort (

100) est parfois ncessaire pour distinguer certainscaractres. Des informations supplmentaires sur la structure gnrale,la terminologie, la prparation et la dissection des gnitalia sont don-nes par Robinson (1976) et Cribb (1972).

En ce qui concerne les larves, les critres de reconnaissance ne sontpas toujours visibles sur les premiers stades et il est donc prfrablepour lidentification dlever jusqu des stades plus tardifs. Les larvesdes stades tardifs, les chrysalides ou les cocons de

C. pronubana

sontcaractristiques et facilement identifiables par exprience ou par com-paraison avec des spcimens conservs. Si des doutes persistent surlidentification des larves ou des chrysalides, des spcimens vivantsdoivent, si possible, tre levs jusquau stade adulte pour pouvoir con-firmer lidentification. Les larves peuvent tre examines vivantes oumortes, au grossissement

80. Les larves vivantes et les chrysalides quivont tre leves jusquau stade adulte doivent tre manipules lemoins possible et avec prcaution, laide dun pinceau fin.

Carter (1984) et Holloway

et al

. (1992) prsentent un diagramme illustrantla nomenclature des soies des larves. Des cartes des soies pour

C. pronubana

sont illustres par Carter (1984) et Fisher (1924) et donnes dans ce texte(Fig. 1 et Fig. 2). Il est ncessaire de tuer les larves pour examiner lesmandibules. Lidentification des oeufs nest pas fiable et il faut si possibleles lever jusqu un stade ultrieur pour pouvoir raliser lidentification.

Oeufs

Taille: 1 mm

0,6 mm. Ovales circulaires, aplatis avec un chorionrticul et recouverts de scrtion cireuse. Initialement vert clair,



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2002 OEPP/EPPO,


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becoming yellow. Laid in overlapping batches of 10200, usually onthe upper surface of leaves. A colour figure is provided by Chambon(1986).

Larvae

Diagnostic larval characters of Tortricidae

Holloway

et al

. (1992) provide a key to the family

Tortricidae

.Characters generally consistent for the family, and with

C. pronubana

,are as follows:

anal comb present, with straight prongs;

crotchets on prolegs (segments A3A6) uniserial, arranged in a com-plete circle;

setae: L-group on prothorax (T1) trisetose; L1 and L2 adjacent on(abdominal segments) A1A8; SD1 on A8 anterior to the spiracle(Fig. 1).

Diagnostic larval characters of Cacoecimorpha pronubana

length up to 20 mm in the final instar;

head varying in colour from bright green to yellowbrown, withvariable dark brown or black ocellar and posterolateral markings;

devenant jaunes. Dposs en amas imbriqus (= ooplaques) de 10200oeufs, gnralement la face suprieure des feuilles. Chambon (1986)prsente une illustration en couleur.

Larves

Critres de diagnostic des larves de Tortricidae

Holloway

et al

. (1992) prsente une cl de la famille des

Tortricidae

.Les critres gnralement communs la famille et

C. pronubana

sontles suivants:

peigne anal prsent, avec des dents droites;

crochets des fausses-pattes (segments A3A6) unisris et formantun cercle ferm;

soies: groupe L du prothorax (T1) tristose; L1 et L2 adjacentes surles segments abdominaux A1 A8; SD1 antrieure au stigmate surA8 (Fig. 1).

Critres de diagnostic des larves de Cacoecimorpha pronubana

longueur jusqu 20 mm au dernier stade;

tte de couleur variable, de vert brillant jaune brun, avec des marquesvariables brun fonc ou noires, ocellaires et postro-latrales;

Fig. 1 Cacoecimorpha pronubana: schematic diagram of setae on abdomen and thorax.Diagramme schmatique des soies sur labdomen et le thorax.



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prothoracic plate yellow or greenbrown, usually paler than the restof the integument, divided medially by a pale line and with distinc-tive dark elliptical or triangular marking on the posterolateral margin(Fig. 3A); several other smaller and less conspicuous markings alsousually present, including one elongate mark on the lateral marginand a dot in the angle formed by the posterior margin and mid-dorsalline. Several irregular brown markings may also be present in thecentre of each half of the prothoracic plate (Bradley

et al

., 1973);

integument varying in colour from bright to olive-green and tendingto be paler ventrally and on A10;

integument covered in microscopic brown spinules giving a granularappearance (Swatschek, 1958);

pinaculi shiny, and paler than the rest of the integument;

thoracic legs yellowbrown or green, sometimes with blackmarkings;

setae whitish, clearly visible against the body surface;

spiracles broadly elliptical, with a narrow, dark brown or blackperitreme. The spiracles of T1 (prothorax) and A8 are larger andsituated more dorsally than spiracles on other body segments(Fisher, 1924);

anal plate yellow, green or greenbrown, often with brown markings;

anal comb green, with six to ten prongs, usually with four long andtwo short (outer) prongs (Bradley

et al

., 1973) (Fig. 3J);

crotchets on prolegs A3 to A6 in a complete biordinal circle, anal pro-legs not arranged this way;

mandible with three acute and two blunt teeth and a small molar(Fig. 3B).It is important to note that colour is highly variable in caterpillars

and is only a helpful indicator during diagnosis. Arrangement of setaeand the structure of features such as the mandibles are far less variable andconsequently more reliable.

Comparisons with larvae of similar species are given further on inthis text.

plaque prothoracique jaune ou vert brun, gnralement plus claireque le reste des tguments, divise en son milieu par un sillon ple etportant une marque caractristique elliptique ou triangulaire sur lebord postro-latral (Fig. 3A); plusieurs autres marques plus petiteset moins visibles sont gnralement prsentes, dont une marqueallonge sur le bord latral, et un point dans langle form par le bordpostrieur et la ligne du milieu du dos. Plusieurs marques irrguliresbrunes sont parfois prsentes au centre de chaque moiti de la plaqueprothoracique (Bradley

et al

., 1973);

tguments de couleur variable, de vert brillant vert olive, avec tend-ance tre plus clair sur la face ventrale et sur le segment A10;

tguments couverts de spinules microscopiques brunes donnant uneapparence granule (Swatschek, 1958);

pinaculums brillants, et plus clairs que le reste des tguments; pattes thoraciques brun jaune ou vertes, parfois avec des marques

noires; soies blanchtres, clairement visibles la surface du corps; stigmates largement elliptiques, avec un pritrme troit, brun fonc

ou noir. Les stigmates de T1 (prothorax) et A8 sont plus grands et ontune position plus dorsale que les stigmates des autres segments ducorps (Fisher, 1924);

plaque anale jaune, verte ou brun vert, souvent avec des marquessombres;

peigne anal vert, avec six dix dents, gnralement quatre longueset deux courtes (externes) (Bradley et al., 1973) (Fig. 3J);

crochets biordinaux en cercle ferm sur les fausses-pattes des seg-ments A3 A6. Le cercle nest pas compltement ferm sur lesfausses-pattes anales;

mandibule portant trois dents pointues, deux mousses et unepetite mola (Fig. 3B).Il est important de noter que la couleur des chenilles varie beaucoup

et quil sagit seulement dune indication pour le diagnostic. Ladisposition des soies et la structure des caractres tels que lesmandibules sont beaucoup moins variables et par consquent plusfiables.

Des comparaisons avec des larves despces similaires sont donnesplus bas dans le texte.

Fig. 2 Cacoecimorpha pronubana: schematic diagram of head capsule and setae. Diagramme schmatique de la capsule cphalique et des soies.


Cacoecimorpha pronubana 271

2002 OEPP/EPPO, Bulletin OEPP/EPPO Bulletin 32, 267275

Pupae

Diagnostic pupal characters of TortricidaeCharacters generally consistent for the family and with C. pronubanaare as follows:

Chrysalides

Critres de diagnostic des chrysalides de la famille des TortricidaeLes caractres gnralement communs la famille et C. pronubanasont les suivants:

Fig. 3 Cacoecimorpha pronubana: (A) prothoracic plate: lateral view/plaque prothoracique: vue latrale; (B) left mandible/mandibule gauche; (C) pupal cremaster (ventral view)/crmaster de la chrysalide (vue ventrale); (D) pupal cremaster of Epichoristodes acerbella for comparison (ventral view)/crmaster de la chrysalide dEpichoristodes acerbella pour comparaison (vue ventrale); (E) male fore and hindwings/ailes antrieures et postrieures du mle; (F) female fore and hindwings/ailes antrieures et postrieures de la femelle; (G) wing venation/nervation des ailes; (H) male genitalia/gnitalia mles; (I) female genitalia/gnitalia femelles; (J) anal comb/peigne anal.




abdominal segments A4 to A6 in female, and A4 to A7 in male, mov-able (Geest & Evenhuis, 1991);

abdominal segments A3 to A7 dorsally with two rows of sharp, back-wardly directed spines;

presence of setae on the cremaster anterior to the apex (on the analrise);

cremaster with eight hooked setae.

Diagnostic pupal characters of Cacoecimorpha pronubana

length: 912 mm, average 10 mm; abdominal segments brown; thorax, head, and wings dark brown,

becoming black; tergites of A2 to A8 each with two rows of well developed dorsal

abdominal spines, plus several yellow bristles on abdominal segments;

cremaster elongate (Fig. 3C), tapered to a bluntly rounded point withfour pairs of hooks, two pairs lateral in position, which arise from thedorsal surface of the cremaster, and two pairs arising terminally fromthe ventral surface (Fisher, 1924);

characteristically enclosed within a dense web of silk in a folded leaf.

Comparisons with pupae of similar species are given further on inthis text.

Adult

Keys to Tortricidae are provided by Heath & Emmet (1985); Hollowayet al. (1992) or Medvedev (1989).

Diagnostic adult characters of TortricidaeCharacters generally consistent for the family, and consistent withC. pronubana are as follows: antennae filiform; head rough-scaled; proboscis unscaled; presence of ocelli and chaetosemata; labial palpi ascending; epiphysis (a lappet-like process on the inner aspect of the front tibiae)

present; tibial spur formula is 0-2-4; hindwings approximately the same width as forewings; at rest, resembles a bell in outline.

Diagnostic adult characters of Cacoecimorpha pronubana (male) wingspan 1418 mm; head and thorax red-brown; abdomen brown banded with orange;

antennae strongly ciliate (Carter, 1984); forewings (Fig. 3E) light brown to redbrown, with dark reticulation;

sometimes with bluegrey suffusion; basal, median and subterminalfascia darker brown;

forewing without costal fold; vein 11 originates distal to the midpointof the discal cell, with internal vein present (Fig. 3G);

on forewing, outer margin of basal fascia (transverse band) usuallyvisible, distinct median fascia and broad subterminal fascia present;

bases of veins 4 and 5 in hindwings separate (Fig. 3G); hindwings bright orange; apex, terminal and inner margins and

sometimes distal half suffused with dark brown. Cilia yelloworange(Fig. 3E).

segments abdominaux A4 A6 (femelle) et A4 A7 (mle) mobiles(Geest & Evenhuis, 1991);

segments abdominaux A3 A7 portant dorsalement deux rangesdpines pointues diriges vers larrire;

prsence de soies sur le crmaster antrieur lapex (sur la crteanale);

crmaster portant huit soies en crochet.

Critres de diagnostic des chrysalides de Cacoecimorpha pronubana longueur 912 mm, moyenne 10 mm; segments abdominaux bruns; thorax, tte et ailes brun fonc, deve-

nant noirs; tergites des segments A2 A8 portant chacun deux ranges dpines

abdominales bien dveloppes, ainsi que plusieurs soies jaunes surles segments abdominaux;

crmaster allong (Fig. 3C), se terminant en une pointe arrondie por-tant quatre paires de crochets, deux paires latrales issues de la sur-face dorsale du crmaster, et deux paires issues de lextrmit de lasurface ventrale (Fisher, 1924);

typiquement enferm dans une toile de soie dense dans une feuillereplie.Des comparaisons avec des chrysalides despces similaires sont

donnes plus bas dans le texte.

Adulte

Des cls de la famille des Tortricidae sont prsentes par Heath &Emmet (1985), Holloway et al. (1992) et Medvedev (1989).

Critres de diagnostic des adultes des TortricidaeLes caractres gnralement communs la famille et C. pronubanasont les suivants: antennes filiformes; tte grosses cailles; proboscis sans cailles; prsence docelles et de chaetosemata; palpes labiaux ascendants; piphyse (prolongement squamiforme sur la face interne du tibia

antrieur) prsente; la formule des perons tibiaux est 0-2-4; ailes postrieures environ de la mme largeur que les ailes antrieures; au repos, silhouette en forme de cloche.

Critres de diagnostic des adultes de Cacoecimorpha pronubana (mle) envergure 1418 mm; tte et thorax brun rouge; abdomen brun avec des bandes oranges;

antennes fortement cilies (Carter, 1984); ailes antrieures (Fig. 3E) brun clair brun rouge, couvertes dune

rticulation sombre; parfois avec une coloration gris bleu; fasciesbasales, mdianes et subterminales brun fonc;

aile antrieure sans pli costal; nervure 11 naissant au del de la moitiapicale de la cellule discale, prsence dune nervure interne (Fig. 3G);

sur laile antrieure, bord externe de la fascie basale (bande trans-verse) gnralement visible, fascie mdiane distincte et grande fasciesubterminale prsentes;

bases des nervures 4 et 5 des ailes postrieures spares (Fig. 3G); ailes postrieures orange brillant; apex, bordures terminales et

internes et parfois moiti apicale colore avec du brun fonc. Cilsjauneorange (Fig. 3E).




Diagnostic adult characters of Cacoecimorpha pronubana ( female) wingspan 1624 mm; head, thorax and abdomen as for the male; antennae weakly ciliate; forewing coloration similar to the male but often paler with darker

reticulation (Fig. 3F); forewing median fascia weak towards the costa; forewing subterminal fascia reduced to a subapical blotch, emitting

a variably distinct stria (longitudinal line) from inner margin to tornalarea (Bradley et al., 1973);

hindwings (Fig. 3F) orange, with a brown suffusion often presenton the inner margin which is sparse or absent on apex and terminalmargins.

Description of genitaliaA description of the general structure and terminology of lepidopterangenitalia, and details on methods of preparation and dissection, areprovided by Robinson (1976) and Cribb (1972).

Male: uncus long and broadened, with two lobes (Fig. 3H). Sociistraight and undeveloped. Gnathos simple, with poorly expressed cau-dal hook. Valva reduced, with a long elaborate sacculus: a large spinebeyond midpoint, followed by a short one, the apex rounded and free.Transtilla entire, produced and lobed at either side. Anellus very large,with long lobes. Aedeagus very slightly curved; vesica with a few,small, slender spines (Medvedev, 1989; Mourikis & Vassilaina-Alexopoulou, 1972; Pierce & Metcalf, 1922).

Female: ductus bursae long and slender (Fig. 3I), with a sclerotizedline throughout length. Corpus bursae smaller than appendix bursae,with a pointed signum.

Comparison with similar speciesEggs, larvae and pupae of C. pronubana could be confused with thoseof Epichoristodes acerbella (Walker). Mature E. acerbella larvae canbe distinguished from C. pronubana by the presence of the followingcharacters.

Larvae

In C. pronubana, the dark marking on the posterolateral margin of theprothoracic plate is elliptical or triangular in shape. In E. acerbella thismarking extends further towards the head capsule, as a line along thelateral margin of the prothoracic plate. The integument of E. acerbellahas a dark dorso-central longitudinal line, with a pair of dark subdorsallines which are generally not apparent in C. pronubana. The anal combis pale brown in E. acerbella and green in C. pronubana.

Pupae

E. acerbella pupae have the cremaster tip as broad as wide and with thetip squared-off (Fig. 3D) rather than elongate and with a rounded tipas in C. pronubana (Fig. 3C).

Adults

Adults of E. acerbella are easily distinguished by their distinctivegreyish hindwings (C. pronubana bright orange).

Critres de diagnostic des adultes de Cacoecimorpha pronubana ( femelle) envergure 1624 mm; tte, thorax et abdomen comme chez le mle; antennes faiblement cilies; ailes antrieures de mme couleur que celles du mle, mais souvent

plus claires avec une rticulation plus fonce (Fig. 3F); fascie mdiane de laile antrieure peu prononce vers la costa; fascie subterminale de laile antrieure rduite une tache subapicale

do part une strie plus ou moins distincte (ligne longitudinale) entrela marge interne et la zone tornale (Bradley et al., 1973);

ailes postrieures (Fig. 3F) oranges, avec une coloration brunesouvent prsente sur la bordure interne, et clairseme ou absente surles bordures apicales et terminales.

Description des gnitaliaUne description de la structure gnrale et de la terminologie desgnitalia, et des dtails sur les mthodes de prparation et de dissection,sont prsents par Robinson (1976) et Cribb (1972).

Mle: uncus long et largi, avec deux lobes (Fig. 3H). Socii droitset peu dvelopps. Gnathos simple, avec un crochet caudal peudvelopp. Valve rduite, avec un sacculus long et compliqu: grossepine au del du milieu suivie dune courte pine, apex arrondi et libre.Transtilles entires, naissant et lobes de chaque ct. Anellus trs largeavec des lobes longs. Aedegus trs lgrement recourb. Vesica portantquelques petites pines fines (Medvedev, 1989; Mourikis & Vassilaina-Alexopoulou, 1972; Pierce & Metcalf, 1922).

Femelle: ductus bursae long et mince (Fig. 3I), avec une ligne sclri-fie tout le long. Corpus bursae plus petits que lappendix bursae, avecun signum pointu.

Comparaison avec des espces similairesLes oeufs, larves et chrysalides de C. pronubana peuvent treconfondus avec ceux dEpichoristodes acerbella (Walker). Les larvesmatures dE. acerbella peuvent tre distingues de celles de C.pronubana par la prsence des caractres suivants.

Larves

Chez C. pronubana, la marque noire du bord postrolatral de la plaquethoracique est de forme elliptique ou triangulaire. Chez E. acerbella,cette marque stend en avant vers la capsule cphalique, sous formedune ligne le long du bord de la plaque. Les tguments dE. acerbellaportent une ligne longitudinale fonce dorso-centrale et une paire delignes subdorsales fonces qui ne sont gnralement pas visibles chezC. pronubana. Le peigne anal est brun clair chez E. acerbella et vertchez C. pronubana.

Chrysalides

Lextrmit du crmaster des chrysalides dE. acerbella est aussi largeque long. Lextrmit est tronque (Fig. 3D) plutt quallonge etarrondie comme chez C. pronubana (Fig. 3C).

Adultes

Les adultes dE. acerbella sont facilement distingus par leurs ailespostrieures gristres caractristiques (orange brillant chez C.pronubana).




Requirements for a positive diagnosisThe procedures for detection and identification described in thisprotocol should have been followed. Mature larvae or adults in goodcondition, or male or female genitalia, should have been available. Foridentification of pupae, voucher specimens should have been availablefor comparison or confirmed by an experienced lepidopterist. Thedistinctive diagnostic morphological characters should have been seen,and the specimen should match the illustrations and/or voucherspecimens.

Report on the diagnosisA report on the execution of the protocol should include: information on the origin and type of the infested plant material; a description of the symptoms (including photographs if possible);

measurements, drawings or photographs (as relevant) of the morpho-logical features required for a positive diagnosis;

an indication of the magnitude of the infestation (how many indi-vidual pests found; how much damaged tissue);

comments on the certainty or uncertainty of the identification.Specimens should also be preserved where possible; adults pinned,

empty pupal cases kept and larvae added to a wet collection. Hollowayet al. (1992) provides details on preservation of specimens.

Appendix I

A basic method for the slide preparation of lepidopteran genitaliaThe following basic method has been modified from Cook (1997).

Remove entire abdomen from the specimen. Place abdomen in a testtube and cover with 10% KOH. Heat the abdomen and KOH until theinternal tissues become soft and the KOH becomes dark in colour (usu-ally 510 min). Transfer the abdomen into a watch glass and cover withdistilled water. Remove the scales from the abdomen by brushing witha fine brush, and tease out the internal tissues with a needle. Replace thewater in the watch glass when it becomes difficult to see the structures.Remove the genitalia from the abdomen by tearing the intersegmentalmembrane with two forceps. Dehydrate the genitalia by replacing thewater with 30% ethanol for a few minutes. Replace the 30% ethanolwith 70% ethanol. The structures now begin to stiffen and at this pointthe genitalia should be arranged and flattened so that all structures canbe seen. In the male, the valva need to be folded out. Dehydrate com-pletely by adding 100% isopropanol and flatten further if necessary.Immerse the genitalia in Euparal essence. Place a small drop of Euparalon a clean slide (sufficient to cover the genitalia), then transfer the gen-italia into the Euparal and lower the cover slip.

Exigences pour un diagnostic positifLes procdures de dtection et didentification dcrites dans ceprotocole doivent avoir t suivies. Des larves matures ou des adultesen bon tat, ou des gnitalia mle ou femelle, doivent avoir tdisponibles. Pour lidentification des chrysalides, des spcimensconservs doivent avoir t disponibles pour comparaison ou confirmspar un lpidoptriste expriment. Les caractres morphologiquestypiques doivent avoir t observs et le spcimen doit correspondreaux illustrations et/ou spcimens conservs.

Rapport sur le diagnosticLe rapport sur la mise en oeuvre du protocole doit comporter: des informations sur lorigine du matriel vgtal infest; une description des symptmes (y compris des photographies si

possible); des mesures, dessins ou photographies (comme pertinent) des cara-

ctristiques morphologiques ncessaires pour un diagnostic positif; une indication de limportance de linfestation (nombre dindividus

trouvs; quantit de tissus attaque); une apprciation de la certitude ou non de lidentification.

Des spcimens doivent galement tre conservs dans la mesure dupossible (adultes pingls, cocons de chrysalide prservs, larves enflacons. Holloway et al., 1992 prsente des dtails sur la conservationdes spcimens.

Annexe I

Une mthode de base pour la prparation de gnitalia de lpidoptres sur lameLa mthode suivante a t adapte de Cook (1997).

Prlever labdomen entier du spcimen. Le placer dans un tube avecdu KOH 10% et couvrir. Chauffer le tube jusqu ce que les tissusinternes de labdomen se ramollissent et que le KOH prenne une cou-leur sombre (gnralement 510 min). Transfrer labdomen dans unverre de montre et recouvrir deau distille. Eliminer les cailles delabdomen laide dune brosse fine et faire sortir les tissus internes laide dune aiguille. Remplacer leau dans le verre de montre lorsqueles structures sont difficiles voir. Sortir les gnitalia de labdomen endchirant la membrane intersegmentaire avec deux pinces. Dshydraterles gnitalia pendant quelques minutes en remplaant leau par de lth-anol 30%. Remplacer lthanol 30% par de lthanol 70%. Lesstructures commencent se raidir. Les gnitalia doivent alors tre dis-poss et aplatis de manire pouvoir observer toutes les structures.Chez le mle, les valves doivent tre dplies. Dshydrater complte-ment en ajoutant de lisopropanol 100% et aplatir encore sincessaire. Immerger les gnitalia dans de lessence dEuparal. Placerune petite goutte dEuparal sur une lame propre (suffisamment pourcouvrir les gnitalia), puis transfrer les gnitalia dans lEuparal etrecouvrir dune lamelle.




Further information/Renseignements supplmentairesFurther information on this organism can be obtained from:/Desrenseignements supplmentaires sur cet organisme peuvent treobtenus auprs de:D. Carter, Department of Entomology, Natural History Museum,Cromwell Road, London, SW7 5BD (UK)

Acknowledgements/RemerciementsThis protocol was originally drafted by:/Ce protocole a t initialementprpar par:J.S. Clark (formerly of CSL) & J. Robinson, Invertebrate IdentificationTeam, Central Science Laboratory, Sand Hutton, York, YO41 1LZ (UK)

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