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INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL
COORDINACION GENERAL DE POSGRADO E INVESTIGACION
INFORME TÉCNICO FINAL DE PROYECTOS DE INVESTIGACION EDUCATIVA 2005 - 2006
Este formato presenta los aspectos necesarios para la elaboración del Informe Técnico Final de los proyectos de investigación que se registraron en la Coordinación General de Postgrado e Investigación (CGPI) para su desarrollo durante el periodo mayo 2005 – abril de 2006. La información que se solicita es la mínima necesaria para documentar y evaluar el avance de los proyectos de investigación, por lo que es indispensable que se requisite sin omisiones, agregando o anexando la información que se considere conveniente.
I. IDENTIFICACIÓN DEL PROYECTO.
ESCUELA, CENTRO O UNIDAD: CICIMAR CLAVE DEL PROYECTO: 20050330
TITULO: Nivel óptimo de inclusión de Macrocystis pyrifera en alimentos balanceados para camarón Litopenaeus vannamei y su efecto como hipocolesterolemico
PROGRAMA EN DONDE SE UBICA EL PROYECTO: DESARROLLO DE TECNOLOGIAS Y ACUACULTURA MARINA
1. PERIODO EN QUE SE REALIZO EL PROYECTO: del 01 04 2005 al 28 02 06 d m a d m a
II. RESPONSABILIDAD TÉCNICA Y ADMINISTRATIVA.
Indicar nombre e incluir firmas autógrafas (en el ejemplar impreso) de los responsables técnicos y administrativos. Vo. Bo.
Dra. Margarita Casas Valdez
Dr. Rafael Cervantes Duarte
Director(a) del proyecto Director(a) de la escuela, centro o unidad
Teléfono del director(a) del proyecto: 1230350 Fecha de elaboración del informe:
28/02/2006
d m a
2
III. PROFESORES PARTICIPANTES.
Incluir exclusivamente a los profesores registrados en el protocolo del proyecto y que efectivamente participaron en el desarrollo del mismo, durante el periodo que se reporta.
NOMBRE DEL PRINCIPALES ACTIVIDADES PERIODO PARTICIPANTE REALIZADAS de a
1) Margarita Casas Valdez (CICIMAR) Director del Proyecto 04/05 02/06
2) Ruth Noemí Aguila Ramírez (CICIMAR) 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
04/05 02/06
3) Sonia Rodríguez Astudillo (CICIMAR) 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
04/05 02/06
4) Alejandro Marín Álvarez (CICIMAR) 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
04/05 02/06
5) Roberto Civera Cerecedo (CIBNOR) 2.1, 2.2, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 7.2
04/05 02/06
6) Ranferi Gutiérrez Leyva (PIFI, CICIMAR) 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
04/05 02/06
7) Nidia Arizbel Mora Castro (PIFI, CICIMAR) 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
04/05 02/06
IV. DESARROLLO TÉCNICO DE LA INVESTIGACIÓN.
En anexo al presente se debe proporcionar la información que se indica a continuación:
En anexo al presente proporcione la información que se indica a continuación: 1. Resumen. Es una versión abreviada y exacta del proyecto que se reporta como concluido y debe estar escrito
de tal forma que pueda ser difundido a través de la página Web institucional, sin necesidad de efectuar revisiones o correcciones de contenido y estilo, recomendándose la inclusión de tres palabras clave para efectos de identificación.
2. Introducción. Debe establecer claramente el propósito del trabajo, incluyendo las hipótesis propuestas y los problemas abordados, así como un bosquejo del trabajo y su importancia en un contexto mas amplio de investigación. Debe ser explícita y comprensible para quienes no son especialistas en el tema.
3. Métodos Experimentales. Esta sección debe comenzar con una descripción del diseño de experimentos o
del procedimiento teórico-metodológico utilizados en la investigación. Se deben establecer claramente las premisas y supuestos del diseño y debe justificarse la selección del método cuando existen otros métodos alternativos. Los métodos deben identificarse y describirse con suficiente detalle para que sea posible obtener los mismos resultados por un investigador experimentado, o para evaluar la confiabilidad y validez de los métodos usados y de los resultados reportados. Deben describirse en un orden lógico para que se pueda identificar fácilmente como se relacionan con el diseño experimental. Se debe describir en forma completa los materiales utilizados en la investigación, incluyendo la preparación que se les haya dado, así como su origen.
4. Resultados. Los resultados de los proyectos se deben presentar en un orden apropiado para proporcionar
evidencia a favor o en contra de la hipótesis, o para dar respuesta al problema que se estableció en el objetivo del proyecto.
5. Conclusiones. Breve discurso sobre los resultados obtenidos y observaciones sobre ellos.
3
V. EJERCICIO DE PRESUPUESTO TOTAL.
PRESUPUESTO IPN-CGPI OTRAS FUENTES DE FINANCIAMIENTO *
DEL PROYECTO ASIGNADO EJERCIDO ASIGNADO EJERCIDO
GASTO CORRIENTE 90000.00 90000.00
INVERSIÓN
TOTAL 90000.00 90000.00
• Especifique el nombre de la fuente de financiamiento: __________________________________________________
VI. PRODUCTO(S) OBTENIDOS.
2 Estudiantes PIFI
1 Artículo de Divulgación
6 Artículos Científicos
5 Trabajos presentados en Congresos
1 Curso de actualización
1 Conferencia Internacional
6 Cursos impartidos
2 Revisiones de artículos para una revista científica
5 Sinodalías de examenes de posgrado
4
VII. SUBPRODUCTOS OBTENIDOS.
Describa los subproductos derivados del proyecto de investigación, anexando en cada caso la documentación comprobatoria correspondiente, como: fotografías; copias de oficios y de constancias de participación; copias de artículos y conferencias; copias de carátulas e índices de libros, manuales publicados, etc. La descripción debe incluir nombre o título, autores, evento, lugar y fecha. En la columna de la izquierda se presenta una lista de claves correspondientes a cada tipo de subproducto.
CLAVE DEL SUBPRODUCTO DESCRIPCIÓN ANEXO No.
2.1.3 Estudiante PIFI Nidia Arizbel Mora Castro
2.1.3 Estudiante PIFI Ranferi Gutiérrez Leyva
3.1.1 Evaluación e industrialización de macroalgas 05/01/2005 - 30/06/2005
1
3.1.1 Seminario departamental de desarrollo de tecnologías 05/01/2005 - 30/06/2005
1
3.1.1 Seminario de Investigación II 05/01/2005 - 30/06/2005
1
3.1.1 Estancia de Investigación en Biología Marina 05/01/2005 - 30/06/2005
2
3.1.1 Seminario Departamental de Desarrollo de Tecnologías 01/08/2005 - 15/12/2005
2
3.1.1 Estancia de Investigación en ecología de algas bentónicas 01/08/2005 - 15/12/2005
2
3.2.2 Aquamar: Calidad nutricional del extracto de langostilla (Pleuroncodes planipes) como aditivo en alimentos balanceados para juveniles de camarón blanco (Litopenaeus vannamei). R. Civera Cerecedo
3
3.3 Aguilera Morales M., Casas Valdez M., Carrillo Domínguez S., Carranco Jáuregui M. 2005. Valor biológico de la proteína del alga Enteromorpha spp. (Chlorophyta: Ulotrichales). Conversus Junio-Julio 2005.
4
3.5.2 Aguilera Morales M., Casas Valdez M., Carrillo Domínguez S., González Acosta B., Pérez Gil F. 2005. Chemical composition and microbiological assays of marine algae Enteromorpha spp. as a potencial food source. Journal of food Composition and Analysis, 18:79-88
5
3.5.2 Ruth N. Aguila-Ramírez, Margarita Casas-Valdez, Claudia J. Hernández-Guerrero y Alejandro Marín-Álvarez. Biomasa de Ulva spp. (Chlorophyta) en tres localidades del malecón de La Paz, B. C. S., México. 2005. Revista de Biología Marina y Oceanografía 40(1): 55 – 61.
6
3.5.2 M. Casas Valdez, D. Lluch Belda, S. Ortega García, S. Hernández Vázquez, E. Serviere Zaragoza y D. Lora Sánchez. 2005. Estimation of maximum sustainable yield of Gelidium robustum seaweed fishery in Mexico. J. Mar. Biol. Ass. U.K. 85: 775-778.
7
3.5.2 Casas-Valdez M., Hernández-Contreras H., Marín-Álvarez A., Aguila-Ramírez R. N., Hernándezz-Guerrero C. J., Sánchez-Rodríguez I. & Carrillo-Domínguez S. EN PRENSA. El alga marina Sargassum (Sargassaceae): una alternativa en la alimentación de ganado caprino. Revista de Biología Tropical.
8
3.5.2 Villareal H., Civera Cerecedo R., Hernández Llamas A. 2006. Effect of partial and total replacement of fish, shrimp head, and soybean meals eith red crac meal Pleuroncodes planipes (Stimpson) on growht of white shrimp Litopenaeus vannamei (Boone). Aquaculture Research, 37: 293-298.
9
3.5.2 Rivas Vega M., Goytortua Bores E., Ezquerra Brauer J., Salazar García M., Cruz Suarez E., Nolasco H., Civera Cerecedo R. 2006. Nutricional value of cowpea (Vigna unguiculata L. Walp) meals as ingredients in diets
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1. SUBPRODUCTOS
TÉCNICOS: 1.1 PROTOTIPOS 1.2 PATENTES 1.3 CERTIFICADOS DE
INVENCIÓN 1.4 HARDWARE 1.5 SOFTWARE 2. FORMACIÓN DE
RECURSOS HUMANOS: 2.1 EST. PIFI
2.1.1 N.M.S. 2.1.2 N.S. 2.1.3 N.P.
2.2 PRACTICAS
PROFESIONALES 2.3 SERVICIO SOCIAL 2.4 TESIS
2.4.1 N.S. 2.4.2 N.P.
3. DIFUSIÓN DE LA
INVESTIGACIÓN 3.1 CURSOS
3.1.1 NACIONAL 3.1.2 INTERNACIONAL
3.2 CONFERENCIAS
3.2.1 NACIONAL 3.2.2 INTERNACIONAL
3.3 ARTÍCULOS DE
DIVULGACIÓN 3.4 PROGRAMAS DE TV-
RADIO. 3.5 ARTÍCULOS
CIENTÍFICOS PUBLICADOS
3.5.1 NACIONAL 3.5.2 INTERNACIONAL
3.6 LIBROS 3.7 SEMINARIOS 4. OTROS 4.1 PRECISAR
5
of Pacific white shrimp (Litopenaeus vannamei Boone). Food Chemistry, En Prensa
4.1 Congreso Latinoaméricano de Ciencias del Mar (COLACMAR). Mayo 2005. -Composición proximal y digestibilidad del Frijol Yorimon (Vigna unguiculata L. Walp.) en alimentos para camaron (Litopenaeus vannamei)
11
4.1 VII Congreso de Ficología de Latinoamérica y el Caribe. Septiembre 2005.- Evaluación nutricional de dietas con Sargassum spp. para camarón blanco y café.
12
4.1 XX Reunión Nacional sobre Caprinocultura. Octubre 2005. -Evaluación de Macrocystis pyrifera como complemento alimenticio de ganado caprino.
13
4.1 X Congreso de la Asociación de Investigadores del Mar de Cortés, A.C. Octubre 2005. - Valor nutricional de dietas para camarón elaboradas con harina de Sargassum spp. y su efecto en los niveles de colesterol. - Determinación del efecto del huracán “Juliette” sobre las comunidades algales marinas de la Isla Espíritu Santo y La Partida en la Bahía de La Paz, Baja California Sur México
14,15
4.1 II Taller sobre la problemática de los ecosistemas de manglar. Puerto Vallarta Jalisco. - Forestación experimental de manglares en tarquinas provenientes de dragados en un ecosistema lagunar estuarino del Golfo de California.
16
4.1 Sinodalia en el examen de Maestría de José Elmo Pérez González 17
4.1 Sinodalia en el examen doctoral de Ricardo Yabur Pacheco
18
4.1 Sinodalia en el examen doctoral de Litzia Paul Chávez
19
4.1 Sinodalia en el examen predoctoral de José Delfino Barajas Frías 20
4.1 Sinodalia en el examen predoctoral de Daniel Benitez Pardo
21
4.1 Revisión de articulo cientifico para la revista CICIMAR Océanides 22
4.1 Revisión de artículo científico para la revista CICIMAR Océanides 23
4.1 Curso Maricultivo de macroalgas, usos y sus productos. Centro Interdisciplinario de Ciencias Marinas. 20 Hrs.
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2. FORMACION DE RECURSOS HUMANOS 2.1. ESTUDIANTES PIFI Nombre: Nidia Arizbel Mora Castro Nivel: Posgrado Semestre: 4to. Tiene constancia de aceptación: Si Estado actual del alumno: En proceso Actividad 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4 Nombre: Ranferi Gutiérrez Leyva Nivel: Posgrado Semestre: 4to. Tiene constancia de aceptación: Si Estado actual del alumno: En Proceso Actividad 1.1, 2.1, 3.1, 4.1, 4.2, 5.1, 6.1, 7.1, 8.1, 8.2, 8.3, 8.4
6
1. Resumen
El objetivo del presente proyecto fue determinar el nivel óptimo de inclusión de la harina de M.
pyrifera en dietas balanceadas para el camarón blanco Litopenaeus vannamei, mediante la
evaluación del efecto de la inclusión de niveles de 1%, 4%, 7% y 10% en los parámetros
productivos y la digestibilidad in vivo del camarón, así como evaluar su efecto como
hipocolesterolémico. En la primera parte del estudio (experimento de crecimiento) se llevó a
cabo un bioensayo de durante 45 días, se evaluó la calidad nutrimental de los alimentos por
medio de biometrías quincenales. La segunda parte (experimento de digestibilidad in vivo)
evaluó la digestibilidad aparente in vivo de materia seca, proteína cruda, lípidos y carbohidratos
de alimentos con diferentes niveles de inclusión de kelp y Sargassum, al final de un bioensayo
con duración de 21 días, la colecta de las heces se realizó mediante sifoneo, en las cuales se
evaluó la digestibilidad. Para la primera etapa se formularon y fabricaron cinco alimentos: un
alimento control y cuatro alimentos con diferentes niveles de inclusión de algas (1, 4, 7 y 10 %).
Para la segunda etapa se formularon cuatro alimentos: un alimento control y tres alimentos con
diferentes niveles de inclusión de algas (4, 10 y 15 %), tres con kelp y tres con Sargassum. El
sistema de cultivo utilizado consistió en acuarios con capacidad de 60 L con alimentación de
aire, agua filtrada y esterilizada, control de fotoperiodo, temperatura y oxígeno disuelto. Se
monitorearon diariamente los parámetros fisicoquímicos, semanalmente la calidad del agua
(amonio, nitritos y nitratos).La supervivencia fue superior al 86%. Se encontró que la harina de
kelp puede reemplazar sin ningún efecto negativo hasta el 10% de la mezcla de harinas de
pescado en un alimento con 33% de proteína. Los resultados demuestran que la inclusión de la
harina de kelp tuvo efectos marcados sobre el alimento consumido lo que hace pensar que
tiene una gran capacidad atractante y fagoestimulante, pero además permitió incrementar el
crecimiento, posiblemente como respuesta a un incremento en el alimento consumido, por lo
que se considera que la harina de kelp es un buen aditivo alimentario para L. vannamei. Es
importante recalcar que los alimentos experimentales con todos los niveles de inclusión de
harina de kelp, dieron resultados positivos o mejores que la dieta control, lo que demuestra que
las algas proveen de los nutrimentos necesarios a los camarones, haciendo no necesaria la
adición de aditivos atractantes o nutricionales como aminoácidos, colesterol y fosfolípidos, que
son nutrimentos caros. En general se puede considerar que el tratamiento con la inclusión de
7% de harina de Macrocystis es el más adecuado, ya que aunque el peso final (5.5 g) y la tasa
de crecimiento (408%) quedaron dentro de los valores promedio, su supervivencia fue alta
7
(97%), el consumo de alimento (151 mg/organismo/día) y el factor de conversión alimenticia
(1.4) fueron los más bajos, mientras que la eficiencia proteica fue la más alta (2.1).
2. Introducción
La alimentación representa el costo más elevado en los cultivos semi-intensivos e intensivos de
camarón, llegando a representar hasta dos terceras partes de los costos de operación de las
granjas acuícolas. Muchos de estos costos derivan de la fuente de proteína, proveniente de
harinas de pescado, soya, calamar y cabeza de camarón entre otros. Para que el cultivo de
camarones sea rentable y sostenible es necesario el desarrollo de alimentos compuestos de
alto valor nutricional con ingredientes de bajo precio (Sudaryono et al., 1995).
En México unos de los recursos naturales con mayores posibilidades de utilizarse como
ingrediente o aditivo para alimentos balanceados son las harinas de Macrocystis pyrifera
(Linnaeus) C. Agardh y Sargassum spp. En la costa occidental de Baja California durante el
verano de 1986 Hernández et al. (1990) determinaron una cobertura de mantos de M. pyrifera
de 18,682 Km2 y una biomasa cosechable de 97,804 t.
La camaronicultura ha presentado un crecimiento sobresaliente en nuestro país, este ha sido de
un 82% en los últimos 10 años, ya que la producción se incrementó de 10 000 a 60 000
toneladas anuales, las cuales son producidas en 350 granjas, en un área de cultivo de 26 000
hectáreas. Análisis efectuados por la Comisión Nacional de Acuacultura y Pesca
(CONAPESCA) y la Cámara Nacional de la Industria Pesquera y Acuícola (CANAIPESCA),
indican que en los próximos años seguirá la tendencia de incremento en el cultivo de camarón
en nuestro país. Esta misma tendencia se ha presentado en la demanda de alimentos
balanceados para camarón en cultivo, por lo que la búsqueda de nuevos ingredientes no
convencionales para la elaboración de dichos alimentos tiene gran importancia actualmente.
En la medida en que la investigación pueda impactar en los procesos de nutrición y
alimentación, se favorecerá el incremento de las velocidades de crecimiento y las medidas
corporales de los organismos en cultivo lo que tiene un interés no solo científico sino también
económico. Por otra parte, las tendencias actuales en la formulación y fabricación de alimentos
8
es la disminución de costos por kilo de alimento producido, por lo que es necesario implementar
nuevas fuentes de proteína no convencionales, de bajo costo y que redunden en beneficios en
los precios del alimento balanceado, aspectos que pueden ser cubiertos en la industria con el
empleo de las harinas de M. pyrifera y Sargassum spp.
La harina de M. pyrifera posee una alta concentración de minerales (Mg, Ca, P, K, I, Na, Fe y
Mn), vitaminas (ácido ascórbico, niacina, tiamina, retinol, colecalciferol y riboflavina),
carbohidratos complejos o ficocoloides (alginatos, fucoidinas "polisacáridos sulfatados",
laminarán y manitol) (Rodríguez y Hernández, 1991). El perfil de aminoácidos destaca por
contener aminoácidos esenciales (lisina, fenilalanina, tirosina, treonina y triptófano) y no
esenciales como ácido glutámico y ácido aspártico, ácidos grasos (alfalinoleico y araquidónico)
(Manzano y Rosales, 1989). Propiedades que en su conjunto mejoran el aprovechamiento del
alimento por los camarones y por ende la digestibilidad de los nutrientes del alimento (Brown et
al., 1989).
Cruz-Suárez et al. (2000) plantean la hipótesis de que la digestibilidad está relacionada con el
contenido de alginato en los alimentos y que las algas tienen características atractantes,
aglutinantes y texturizantes que mejoran la palatabilidad y estabilidad de los alimentos para
camarón. Los compuestos atractantes de las algas pueden ser múltiples (aminoácidos,
compuestos nitrogenados volátiles y carbohidratos como los alginatos) (Heinen, 1980).
Recientemente Casas et al. (2002) utilizaron harina del alga Sargassum spp. como aditivo
alimentario en dietas para camarón blanco L. vannamei a niveles de inclusión de 2 y 4 %, los
resultados obtenidos mostraron que la harina de Sargassum funciona como aglutinante y
texturizante del alimento para camarón y que con la inclusión de esta harina se incrementó
considerablemente el consumo del alimento, crecimiento y biomasa del camarón blanco
obteniéndose las mayores tazas con la concentración de 4%. Estos resultados y el
conocimiento que se tiene de que la harina de Macrocystis pyrifera tiene una concentración
mayor (casi del doble, 25%) de alginatos que Sargassum y su gran abundancia, hacen
importante determinar el nivel óptimo de inclusión de esta alga en la dieta para camarón.
9
Asimismo, se conoce que las algas tienen propiedades hipocolesterolemicas en humanos, esta
misma propiedad se ha demostrado en aves de postura. Ramos et al. (1997) concluyeron que la
inclusión de las algas Ulva lactuca y M. pyrifera al 9% en la dieta de gallinas de postura
disminuyó significativamente el contenido de colesterol en suero. Carrillo et al. (1998)
demostraron que la inclusión de S. sinicola y U. lactuca al 9% en la dieta de gallinas de postura
disminuyó significativamente el contenido de colesterol en huevo. Por lo que uno de los
objetivos de este trabajo es inducir la disminución de colesterol en el camarón, al incluir el alga
M. pyrifera en su dieta, ya que dentro de sus componentes se encuentran esteroles y
carbohidratos complejos que tienen propiedades hipocolesterolémicas.
1.2 Objetivos
Determinar el nivel óptimo de inclusión de la harina de M. pyrifera en dietas balanceadas para el
camarón blanco Litopenaeus vannamei, mediante la evaluación del efecto de la inclusión de
niveles de 1%, 4%, 7% y 10% en los parámetros productivos y la digestibilidad in vivo del
camarón, así como evaluar su efecto como hipocolesterolémico.
Objetivos particulares
1) Determinar el nivel óptimo de inclusión de harina de M. pyrifera en alimentos balanceados
para el camarón L. vannamei
Metas
1. Cuantificar los parámetros productivos: peso, talla, sobrevivencia, consumo de
alimento y factor de conversión alimenticia en los diferentes tratamientos: dieta testigo,
dietas con 1%, 4%, 7% y 10% de harina de Macrocystis,
2. Dar seguimiento a los parámetros ambientales: temperatura, oxígeno, pH, salinidad,
nitritos, nitratos y amonio, a lo largo del experimento.
2) Determinar la digestibilidad aparente in vivo de materia seca, proteínas, lípidos y
10
carbohidratos de los alimentos que contienen diferentes niveles de inclusión de harina de M.
pyrifera.
Metas
1. Cuantificar la materia seca, proteínas, lípidos y carbohidratos digeridos en los
diferentes tratamientos (dieta testigo, dietas con 1%, 4%, 7% y 10% de harina de
Macrocystis)
3) Evaluar el efecto hipocolesterolémico de la harina de M. pyrifera en camarón blanco.
Metas
1. Cuantificar el contenido de lípidos totales en los camarones sometidos a los diferentes
tratamientos al final del experimento.
2. Cuantificar el contenido de colesterol en los camarones sometidos a los diferentes
tratamientos al final del experimento.
3. Cuantificar el contenido de ácidos grasos omega 3 y omega 6 en los camarones
sometidos a los diferentes tratamientos al final del experimento.
3. Material y Métodos
El trabajo experimental se realizó en el Laboratorio de Macroalgas del Centro Interdisciplinario
de Ciencias Marinas (CICIMAR) y en los Laboratorios de Nutrición Acuícola del Centro de
Investigaciones Biológicas del Noroeste, S. C. (CIBNOR) y del Departamento de Nutrición
Animal del Instituto Nacional de Ciencias Médicas y de la Nutrición.
Formulación y fabricación de alimentos. Basándose en la composición química de los
ingredientes se formularon dietas para camarón con la ayuda del paquete MIXIT-WINMR
(Agricultural Software Consultants Inc.), tomando como base un alimento control con 35 % de
proteína y 7 % de lípidos (Gutiérrez-Leyva, 2003), que cubre los requerimientos nutricios
11
reportados para el camarón blanco L. vannamei (Akiyama y Dominy, 1989). Se formularon cinco
alimentos experimentales: un alimento control sin harinas de algas y cinco con diferentes
niveles de inclusión (0, 1, 4, 7 y 10%) de algas. Para la segunda etapa se evaluaron los mismos
alimentos, pero se incluyo 1.0 % de óxido crómico como marcador inerte para medir
digestibilidad de nutrientes.
Los análisis químicos proximales de los ingredientes y las dietas se realizaron por triplicado, de
acuerdo a los métodos de la A.O.A.C. (1995). Determinando la humedad, proteína, extracto
etéreo, fibra y cenizas, así como el extracto libre de nitrógeno por diferencia a 100%.
Estabilidad de alimentos en el agua. Los alimentos fueron sometidos a una prueba de
estabilidad en agua, siguiendo la metodología descrita en Gutiérrez-Leyva (2003)
% de materia seca retenida= (Peso seco del alimento residual/Peso seco del alimento inicial) x
100
Experimento 1. Nivel óptimo de inclusión de harina de M. pyrifera
Las postlarvas de L. vannamei fueron obtenidas de la empresa APSA, La Paz, B.C.S. Para este
experimento se utilizaron tanques de fibra de vidrio con capacidad de 60 L (34 x 55 x 38 cm),
dentro de un sistema de cultivo que cuenta con agua de mar filtrada a través de filtros de arena,
cartucho (5 micras) y luz UV (Fig. 1). Las condiciones de cultivo fueron: temperatura: 27 ± 0.5
°C, salinidad: 37 ± 1 ups; oxígeno disuelto: > 4 mg/l; alimentación: a saciedad aparente;
duración: 60 días; recambio de agua/día: 80%; fotoperíodo controlado: 12 h luz: 12 h oscuridad.
La densidad de cultivo en los bioensayos fue de 10 animales de 0.5 g por tanque, se tuvieron
cuatro réplicas por tratamiento. El primer día de la evaluación se suministraron los alimentos
experimentales a razón del 10 % de la biomasa de cada tanque con distribuidores automáticos
de alimento, y posteriormente fue ajustada diariamente en función del alimento consumido. Se
midió diariamente la temperatura (27 ± 1 °C) con un termómetro de mercurio, la salinidad (39 ±
1 ups) por medio de refractómetro portátil (VISTA A336 ATC) y la concentración de oxígeno
disuelto por medio de un oxímetro YSI® Modelo 57. Semanalmente se midió la concentración
de nitritos, utilizando el método de Bendschneider y Robinson (1952); nitratos, por el método de
12
Morris y Riley (1963); amonio, por el método de Solorzano (1969); fósforo inorgánico por medio
del método de Murphy y Riley (1962) y pH del agua, con un potenciómetro Corning (Modelo
430). A lo largo de los experimentos se estimó diariamente la cantidad de alimento consumido y
se eliminaron, por sifoneo, heces y mudas; se contaron los organismos.
Figura 1. Acuarios utilizados para el bioensayo de camarón
Durante el bioensayo se realizaron biometrías de los organismos al inicio y después cada 15
días. Todos los organismos fueron pesados individualmente en una balanza OHAUS® con
precisión (0.001), eliminado el agua del cuerpo del animal por medio de papel absorbente (Fig.
2).
Figura 2. Biometrías quincenales de los organismos durante el bioensayo
13
Criterios de evaluación: Se evaluó quincenalmente la ganancia de peso, la tasa de crecimiento
porcentual, la sobrevivencia, el alimento consumido, el factor de conversión alimenticia y la tasa
de eficiencia proteica (Tacon, 1989). Donde: Nf es el número final de organismos y Ni es el
número inicial de organismos.
Sobreviencia = (Nf/Ni) x 100
Tasa de crecimiento porcentual = ((Pf-Pi)/Pi) x 100
Factor de conversión alimenticia = Alimento aparentemente consumido (g)/ Incremento en peso
corregido
Incremento en peso corregido IPC = Bf + ½ (Ppf + Ppi) (Nm) - Bi
Este factor corrige el peso en función de la mortalidad, de acuerdo con Kitabayashi et al. (1971).
Donde: Bf es la biomasa final, Bi es la biomasa inicial, Ppf es el peso promedio final, Ppi
es el peso promedio inicial y Nm el número de muertos.
Eficiencia proteica= Incremento en peso corregido/ Proteína consumida
A los alimentos usados en el ensayo de crecimiento se les determinó el porcentaje de materia
seca retenida. Para esto, se pesaron 2 g de alimento, se colocaron en un matraz de 250 ml, con
200 ml de agua marina a 40 ups. Después de 1 h de inmersión con agitación constante a 100
rpm y 27 ° C, el contenido del matraz se filtró a través de papel filtro Whatman No. 3. El papel
filtro con el alimento residual se secó en una estufa con flujo de aire a 105 ° C por 24 h (Obaldo
et al., 2002). Para calcular la estabilidad del alimento se usó la siguiente fórmula:
100inicial alimento del seco Pesofinal alimento del seco Peso retenida seca Materia % ∗=
14
Experimento 2. Digestibilidad de alimentos con tres diferentes niveles de inclusión de harina de
Macrocystis pyrifera
Después de una semana de aclimatación, los juveniles de L. vannamei se pesaron
individualmente y se seleccionaron de acuerdo a su peso (entre 11 y 12 g), los cuales se
distribuyeron aleatoriamente en los acuarios a razón de ocho organismos por acuario. Para
medir la digestibilidad in vivo se utilizaron los tres alimentos experimentales como en el
bioensayo de crecimiento, con la única variante, que en todos los alimentos se incluyo 1.0 % de
óxido crómico como marcador inerte. Cada uno de los alimentos fue distribuido aleatoriamente
a tres acuarios (triplicados). El experimento tuvo una duración de 30 días en los que
diariamente se monitorearon los parámetros físico-químicos con las mismas condiciones de
cultivo anteriores. Una vez limpios los acuarios, se suministro el alimento correspondiente al 10
% de la biomasa de los camarones, al paso de dos horas se llevo a cabo la primera colecta de
las heces en cada acuario. La colecta de las heces se llevo a cabo mediante sifoneo con la
ayuda de una manguera de plástico, después de esta primera colecta, se volvió a proporcionar
alimento, para luego de una hora proceder a una segunda colecta.
El material fecal se analizó en su composición química de proteína (N x 6.25), carbohidratos por
el método de antrona (Dreywood, 1946), óxido crómico (Olvera-Novoa, 1994) y lípidos totales
(Folch-Lees y Sloane-Stanley, 1957) según los protocolos metodológicos de la A.O.A.C.
(1995).
Para calcular el porcentaje de óxido crómico, 50 mg de alimento y material fecal finamente
molidos (< 500 micras) se colocaron en un tubo TECATORMR de 100 ml y se les adicionó a cada
uno 5 ml de HNO3. Los tubos se colocaron en un digestor TECATORMR, y al término de la
reacción, indicada por el color verdoso claro de la solución, se dejaron enfriar. Una vez fría la
solución, se les agregó con cuidado 3 ml de ácido perclórico a cada tubo y se sometieron a un
proceso de digestión hasta que la solución viró de verde a amarillo limón. La confirmación del
final de la reacción se observó por un anillo rojo que se forma en la superficie de la solución una
vez fría. La solución se paso a un matraz volumétrico de 25 ml, se aforo con agua destilada, y
de ahí se tomó una muestra para leer su absorbancia a 350 nm en un espectrofotómetro. Las
15
fórmulas utilizadas para el cálculo del valor de óxido crómico fueron las siguientes:
X= (Y-0.0032/0.2089)/4
Donde: X = cantidad de óxido de cromo presente en la muestra y
Y = absorbancia. 0.0032 y 0.2089 y 4 son constantes.
% de óxido crómico = 100 x (X/A)
siendo A = peso de la muestra.
Criterios de evaluación: Se estimó la digestibilidad aparente de materia seca, proteínas, lípidos
y carbohidratos (DAMS, DAPC, DAL y DAC, respectivamente) con las fórmulas propuestas por
Ezquerra et al. (1997). Para la digestibilidad de materia seca % DAMS= 100-100* (% Cr2O3 en
dieta/ % Cr2O3 en heces), y para la digestibilidad aparente la siguiente fórmula:
% Digestibilidad aparente= 100- ((%Cr1O1 en dieta/%Cr1O1 en heces) x (% nutrientes en heces/
% nutriente en dieta)) x 100
Lípidos totales, colesterol y ácidos grasos en camarón: Para estas determinaciones se tomó un
número representativo de camarones de cada uno de los tratamientos en estudio, y el análisis
se efectuó tanto en tejido de hepatopáncreas, como de músculo (Fig. 3).
Figura 3. Obtención de tejido y músculo de camarón para la determinación de lípidos, ácidos
grasos y colesterol.
16
Los lípidos totales fueron determinados mediante el método de Folch et al. (1957). El colesterol
se cuantificó por saponificación directa (Abell et al. 1951) usando 5 alf-colestano como estándar
interno, en un cromatógrafo de gases Varian 3400 CX, equipado con una columna capilar DB-5
(3 m x 0.25 mm i.d.) y un detector de flama ionizado. Se utilizó nitrógeno como gas acarreador,
aplicando una tasa de flujo de 30 mL/min. La temperatura fue de: columna 280 °C; inyector 260
°C y detector 280 °C. Los ácidos grasos fueron cuantificados en un cromatógrafo de gases
Varian 3400 CX, equipado con un automuestreador y un detector de flama ionizada, usando
una columna DB23. Se utilizó nitrógeno como gas acarreador, aplicando una tasa de flujo de 30
mL/min. Las temperaturas fueron: columna 230 °C; inyector 150 °C y detector 300 °C. Los
tiempos de retención fueron comparados con una mezcla de estándares de ácidos metilados.
Las muestras se analizaron por triplicado.
Las pruebas de proteína soluble se llevaron acabo por medio del método de Bradford (1976.)
mediante la cuantificación espectrofotométrica de las proteínas. De las dietas que se
sometieron a la prueba de hidroestabilidad por el método de Obaldo (2002), se tomó 1 mL de
agua y colocó en un tubo Ependorf, posteriormente se centrifugó a 13,500 rpm durante 15
minutos a 4 ºC, de esta muestra se tomó una alícuota de 8 µg para las determinaciones.
Se determinó la proteína soluble en los alimentos experimentales (CONTROL, HK 1%, HK 4%,
HK 7% y HK 10%). Fueron pesados 0.200 mg de alimento y sumergieron en tubos de plástico
de 8 mL que contenía agua de mar a (40 UPS y 27 ºC). Se homogeneizaron en un equipo tipo
POLITRON durante 10 min., se vertieron en vasos de precipitado en un volumen de 20 mL de
agua de mar con las características ya mencionadas, después se tomó 1 mL de muestra y se
siguió el procedimiento anterior de centrifugado y de toma de alícuota.
La determinación de proteína soluble se efectuó en homogeneizados diluidos (Preparar 5
diluciones de un standar de proteínas (albúmina sérica bovina) que cubre las concentraciones
de 0 a 10 µg/20µl y aplicando el protocolo establecido en Bio Rad. Las lecturas se efectuaron a
una longitud de onda de 595 nm en un espectrofotómetro de doble haz marca Milton Roy
(Spectronic 1201).
17
La normalidad y homogeneidad de varianzas se verificó utilizando la prueba de Lilliefors y la
prueba de Bartlett. Para comprobar si existen diferencias significativas ente los tratamientos, se
aplicó un análisis ANOVA y una prueba de comparación múltiple de medias por el método de
Tukey. Se consideró que hay diferencias significativas entre los tratamientos cuando el valor
calculado de P < 0.05.
4. Resultados
Experimento 1. Efectos de la inclusión de harina de Macrocystis pyrifera spp., en
juveniles de L. vannamei.
Condiciones de Cultivo
Los intervalos de los diferentes parámetros registrados durante el experimento fueron:
temperatura (27-27.4 °C), salinidad (39.5-40 UPS), oxígeno (5.2-6.4 mgL-1), amonio (0.100-
0.078 mgL-1), nitritos (0.011-0.003 mgL-1), nitratos (0.0047-0.012 mgL-1). Estos valores se
mantuvieron constantes durante todo el experimento y están dentro de los rangos para el cultivo
de camarones peneidos (Lawrence, 1985) (Tabla 1).
Tabla 1. Valores promedio de parámetros fisicoquímicos del agua durante cuarenta y cinco de
cultivo.
Tratamiento Nitritos (mgL-1) Nitratos (mgL-1) Amonio (mgL-1) HK 1% 0.015 ±0.009 0.044 ±0.032 0.180 ±0.026 HK 4% 0.012 ±0.007 0.048 ±0.035 0.213 ±0.031 HK 7% 0.013 ±0.008 0.074 ±0.054 0.150 ±0.022 HK 10% 0.018 ±0.011 0.058 ±0.043 0.188 ±0.027 CONTROL 0.013 ±0.008 0.057 ±0.042 0.186 ±0.027
Valores promedio de 2 réplicas ± desviación estándar. HK 1% alimento con inclusión del 1% de harina de kelp, HK
4% alimento con inclusión del 4% de harina de kelp, HK 7% alimento con inclusión del 7% de harina de kelp, HK
10% alimento con inclusión del 10% de harina de kelp.
18
Composición química proximal de los ingredientes.
La composición química proximal de los ingredientes utilizados en la fabricación de los
alimentos se presenta en la tabla 2. Lo más relevante son los valores proteicos para la harina
de sardina y pasta de soya con 68.45 y 50%, la concentración de proteína de Macrocystis es
similar a la de la harina integral de trigo, el aceite de sardina presentó también el valor más alto
de lípidos 99.5%. Los valores más altos de cenizas y fibra cruda se registraron en la harina de
kelp (21% y 9.3% respectivamente) y el valor más alto de energía en el aceite de sardina y la
lecitina de soya (8952 y 8355 cal/g).
Tabla 2. Composición química proximal de los ingredientes utilizados en los alimentos
experimentales para determinar el valor nutrimental de la harina de kelp.
PC (%)
EE (%)
CEN (%)
FC (%)
ELN (%)
ENER (%)
H (%)
Harina integral trigo1 13.9 0.5 0.8 0.2 84.5 4177 10.8
Harina de pescado2 68.4 5.3 11.2 0.2 15.0 4212 5.2
Pasta de soya3 50.0 1.3 8.4 3.0 37.3 4166 8.2 Harina de kelp4
(Macrocystis pyrifera) 12.6 0.7 21.3 9.3 56.1 3086 8.4
Aceite de sardina6 0.7 99.5 0.1 ND ND 8952 0.1
Lecitina de soya7 3.8 89.2 7.0 ND ND 8355 0.5 Premezcla de
minerales8 ND ND 46.6 53.4 ND ND ND Premezcla de
vitaminas9 ND ND ND 96.0 ND ND ND Valores promedio de tres réplicas, expresados en g/100 g de materia seca, excepto humedad. H:Humedad;
PC:Proteína cruda (N x 6.25); EE:Extracto etéreo; FC:Fibra cruda; CEN:Cenizas; ELN:Extracto libre de nitrógeno.
ND:no detectado. 1Harina integral de trigo HIT0312-1, 2Harina de pescado HP0312-1, 3Pasta de soya PS0312-1, 4Harina de kelp HK0410-1, 6Aceite de sardina AS0406, 7Lecitina de soya LS0303, 8Premezcla de minerales
MINCRUS0201, 9 Pemezcla de vitaminas VITCRU0201.
19
Composición química proximal y de energía de los alimentos utilizados en el experimento
1.
La composición química proximal de los alimentos se presenta en la tabla 3; se observa una
ligera diferencia en el contenido proteínico de los alimentos, el cual varió de 32.35 a 36.64 %, el
extracto etéreo fue muy similar en los cinco tratamientos y cubren los requerimientos
nutricionales del camarón (AQUACOP, 1978) El contenido de cenizas fue afectado por la
inclusión de la harina de Macrocystis, aumentando más en las dietas con mayor nivel de
inclusión, esto se debe a la alta concentración de minerales que contiene esta alga. Los valores
de energía tienden a disminuir al incrementarse el nivel de inclusión del alga.
Tabla 3. Composición química proximal y de energía de los alimentos utilizados en el
experimento de crecimiento (experimento 1). CONTROL HK 1% HK 4% HK 7% HK 10% Humedad (%)1 8.47± 0.05 6.79± 0.03 6.84± 0.09 6.83± 0.03 6.99 ± 0.06 Proteína cruda (%)1 36.64± 0.11 34.11± 0.51 33.85± 0.19 32.35± 0.24 33.47± 0.09 Extracto etéreo (%)1 7.28± 0.13 7.41± 0.26 7.55± 0.06 7.06± 0.26 7.45± 0.05 Fibra cruda (%)1 1.7± 0.04 1.11± 0.11 2.14± 0.49 1.07± 0.33 2.11± 0.14 Cenizas (%)1 7.30± 0.03 6.79± 0.03 8.09± 0.02 9.55± 0.03 9.24± 0.04 ELN (%)2 50.08 50.57 48.36 49.98 47.73 Energía (cal/g) 4452± 7.99 4515± 11.63 4527± 4.24 4071± 4.18 4127± 8.27 1Valores promedio de tres réplicas ± desviación estándar, expresados en g/100 g de materia seca, excepto
humedad. HK 1% alimento con inclusión del 1% de harina de kelp, HK 4% alimento con inclusión del 4% de harina
de kelp, HK 7% alimento con inclusión del 7% de harina de kelp, HK 10% alimento con inclusión del 10% de harina
de kelp, 2ELN: extracto libre de nitrógeno calculado de la formula E.L.N.= 100 – (% proteína + % extracto etéreo + % ceniza
+ % fibra cruda).
Pruebas de Hidroestabilidad
Los valores de estabilidad en el agua de los alimentos, expresados como porcentaje de materia
seca retenida fueron superiores al 87% en todos los alimentos, sin presentar diferencias
significativas (P > 0.05) entre las dietas, para los pelets enteros (Tabla 4).
20
Tabla 4. Estabilidad de los alimentos en el agua.
Alimento experimental
% de estabilidad
CONTROL 86.3a ± 1.9 HK 1% 87.2a ± 0.2 HK 4% 90.5a ± 1.3 HK 7% 88.9a ± 0.6 KH 10% 87.1a ± 1.0
Valores promedio de tres réplicas ± desviación estándar, expresados en g/100 g de materia seca, excepto humedad. HK 1%
alimento con inclusión del 1% de harina de kelp, HK 4% alimento con inclusión del 4% de harina de kelp, HK 7% alimento con
inclusión del 7% de harina de kelp, HK 10% alimento con inclusión del 10% de harina de kelp.
Parámetros zootécnicos
Después de 45 días de experimentación se evaluaron los parámetros zootécnicos: peso
promedio, supervivencia, tasa de crecimiento, alimento consumido, factor de conversión
alimenticia y tasa de eficiencia proteica (Tabla 5).
El peso inicial promedio fue similar en todos los tratamientos (1.1 g). La supervivencia fluctuó
entre 87% en el tratamiento con inclusión de 10% de harina de Macrocystis y el 100% en el
tratamiento con inclusión de 4% de harina de Macrocystis, ninguno de los tratamientos presentó
diferencia significativa con respecto al testigo.
El peso promedio final obtenido en todos los tratamientos con inclusión de Macrocystis fue
superior al obtenido en el tratamiento testigo (5.2 g), aunque la diferencia solo fue significativa
(P< 0.05) para con el de 10% de inclusión de Macrocystis (6.4 g) que fue el máximo peso
obtenido, siendo este también mayor (P< 0.05) a los tratamientos con 1%, 4% y 7% de
Macrocystis.
Las tasas de crecimiento registradas fluctuaron entre 363% en el testigo y 443% en el
tratamiento con 10% de Macrocystis. En todos los tratamientos que incluyeron Macrocystis el
crecimiento fue mayor al testigo, aunque la diferencia no es significativa (P>0.05) con respecto
a este ni entre tratamientos.
21
Respecto al alimento consumido, el consumo mínimo se presentó en el tratamiento con 7% de
Macrocystis (152 g/camarón/día), mientras que el consumo máximo lo presentó el tratamiento
con 10% de Macrocystis (214 g/camarón/día), no se observa ninguna tendencia conforme se
incrementó la harina del alga en el alimento. El factor de conversión alimenticia en los
tratamientos con 1%, 7% y 10% fue menor al testigo, particularmente el de 7% fue 22% menor
(P<0.05).
La tasa de eficiencia proteica de los tratamientos con 1%, 7% y 10% fue mayor que en el
testigo. La mejor eficiencia se obtuvo en el tratamiento con 7% (P<0.05).
22
Tabla 5. Resultados zootécnicos del bioensayo de crecimiento con juveniles de camarón L. vannamei alimentados durante
45 días.
Alimento
Peso Promedio Inicial (g)
Peso
PromedioFinal (g)
Supervivencia
(%)
Alimento
Consumido (mg/camarón/
día)
Tasa de Crecimiento
(%)
Factor de Conversión Alimenticia
Tasa de Eficiencia Proteica
CONTROL
1.1a
± 0.0 5.2c
± 0.6 93.3ab
± 5.8 191.9ab
± 5.9 363.3a
± 86.1 1.90a
± 0.2 1.65b
± 0.2 HK 1%
1.1a
± 0.0 6.2ab
± 0.4 90.0ab
± 10.0 199.8ab
± 14.0 439.2a
± 112.5 1.58b
± 0.1 1.99a
± 0.1 HK 4%
1.1a
± 0.0 5.5bc
± 0.4 100.0a
± 0.0 182.5b
± 5.9 418.9a
± 34.0 1.86a
± 0.1 1.67b
± 0.1 HK 7%
1.1a
± 0.0 5.5bc
± 0.4 96.7ab
± 5.8 151.9c
± 17.2 408.6a
± 61.2 1.48b
± 0.1 2.11a
± 0.1 HK 10%
1.1a
± 0.0 6.4a
± 0.4 86.7b
± 5.8 213.7a
± 21.0 443.1a
± 113.9 1.56b
± 0.1 2.0a
± 0.2 Valores promedio de 3 réplicas ± desviación estándar. HK 1% alimento con inclusión del 1% de harina de kelp, HK 4% alimento con inclusión del 4%
de harina de kelp, HK 7% alimento con inclusión del 7% de harina de kelp, HK 10% alimento con inclusión del 10% de harina de kelp, Valores con
diferente superíndice dentro de las columnas indican que hay diferencias significativas (P < 0.05).
Experimento 2. Digestibilidad de alimentos con diferentes niveles de inclusión de
harina de M. pyrifera en juveniles de L. vannamei.
Composición química proximal de los ingredientes.
La composición química de los alimentos de las dietas con inclusión de 4% y 10% de harina
de Macrocystis presentan valores similares al testigo en cuanto a proteína cruda, extracto
etéreo, fibra cruda, extracto libre de nitrógeno y energía, mientras que las cenizas se
incrementan en la medida que se incrementa la concentración del alga en la dieta (Tabla 6).
La dieta con mayor inclusión del alga (15%) presenta una menor concentración de proteína,
extracto etéreo y energía y por el contrario las cenizas y el extracto libre de nitrógeno se
incrementan, las primeras por el alto contenido de minerales de las algas y el segundo por el
alto contenido de ficocoloides.
Tabla 6. Composición química proximal y de energía de los alimentos utilizados en el
experimento de digestibilidad in vivo (experimento 2).
CONTROL HK 4% HK 10% HK 15%
Proteína cruda (%)1 31.65 31.65 31.65 28.76
Extracto etéreo (%)1 7.89 7.89 7.89 6.80
Cenizas (%)1 4.93 5.75 6.97 7.36
Fibra cruda (%)1 5.00 5.36 5.90 5.64
ELN (%)2 49.48 49.35 47.60 51.44
Energía (cal/g) 4172.30 4129.48 4065.41 4003.66
1Valores expresados en g/100 g de materia seca, excepto humedad. HK 4% alimento con inclusión del 4% de harina de kelp, HK 10% alimento con inclusión del 10% de harina de kelp, HK 15% alimento con inclusión del 15% de kelp. 2ELN: extracto libre de nitrógeno calculado de la formula E.L.N.= 100 – (% proteína + % extracto etéreo + % ceniza + % fibra cruda).
La concentración de lípidos totales en el músculo de los camarones alimentados con las
dietas que contienen harina de Macrocystis, fueron menores (2.09-3.13 g/100 g) en todos los
24
casos al tratamiento testigo (3.36 g/100 g), si embargo estas diferencias no son significativas
(P= 0.37). Es importante mencionar que en todos los tratamientos la concentración de lípidos
poliinsaturados fue superior a los lípidos saturados (tabla 7).
Tabla 7. Contenido de Lípidos totales, lípidos saturados, monoinsaturados y poliinsaturados en el músculo de camarones alimentados con dietas con diferentes concentraciones de harina de Macrocystis pyrifera Tratamiento Lípidos
totales (g/100 g)
Lípidos saturados
Monoinsaturados Poliinsaturados
Testigo
3.36 ± 0.26 31.21± 0.58 21.92 ±1.31 46.87± 0.72
Macrocystis al 1%
3.13 ±0.14 34.87± 1.68 22.71 ±1.42 42.42± 3.11
Macrocystis al 4%
2.09 ±0.04 32.26±0.45 22.06± 1.82 45.68 ±1.36
Macrocystis al 7%
3.07 ±0.28 32.50± 0.59 21.09 ±0.46 46.40 ±1.03
Macrocystis al 10%
3.03 ±0.18 36.80 ±6.50 46.40± 3.60 41.56 ±10.10
La composición de ácidos grasos del músculo del camarón alimentado con las diferentes
dietas se presenta en la tabla 8.
25
Tabla 8. Ácidos grasos en las dietas testigo y con inclusión de Macrocystis pyrifera.
ACIDO GRASO TESTIGO HM1% HM4% HM7% HM10% (mg/100 g de muestra) Butirico (C4:0) 0,00 0,00 0,00 0,00 0,00 Caproico (C6:0) 0,63 0,05 0,00 0,00 0,10 Caprilico (C8:0) 0,00 0,03 0,04 0,02 0,05 Caprico (C10:0) 0,00 0,20 0,00 0,05 0,26 Undecanoico (C11:0) 0,37 0,06 0,12 0,07 0,06 Laurico (C12:0) 0,20 0,42 0,05 0,15 0,54 Tridecanoico (c13:0) 0,06 0,13 0,05 0,07 0,07 Miristico (C14:0) 2,99 4,70 2,55 3,11 5,76 Pentadecanoico (C15.1) 1,86 1,63 1,69 1,58 1,78 cis10-pentadecenóico (C15:1) 14,88 13,68 13,08 12,55 10,02 Palmitico (C16:0) 135,85 158,81 156,16 139,30 197,23 Palmitoleico (C16:1) 13,79 14,53 15,88 11,21 17,65 Heptadecanoico (C17:0) 9,44 8,60 10,32 8,47 9,19 cis10-heptadecenoico (C17:1) 24,42 23,27 24,63 24,02 16,83 Estearico (C18:0) 69,43 81,95 85,92 75,81 102,64 Elaidico (C18:1 trans) 1,68 4,54 7,23 2,94 7,76 Oleico (C18:1) 81,42 99,78 104,73 83,70 124,37 Linolelaidico (C18.2 trans) 0,29 0,57 0,69 0,52 0,61 Linoléico (LA) (C18.2) 88,35 79,85 94,74 82,31 86,73 gama-linolénico (C18:3) 1,47 4,45 6,14 2,61 7,61 alfa-linolénico (ALA) (C18:3 w3) 6,17 5,31 6,51 5,32 5,64 Araquidico (C20:0) 1,13 4,24 6,63 1,79 6,58 Eicosenoico (C20:1) 5,41 5,24 6,32 5,58 6,32 cis-11,14-eicosadienoico (C20:2) 8,50 8,62 10,18 9,07 9,92 cis-11,14,17eicosatrienoico (C20:3) 1,79 4,47 7,06 3,36 7,87 cis-8,11,14-eicatrienoico (C20:3) 1,02 0,82 1,08 0,83 0,95 Araquidónico (AA) (C20:4) 17,41 15,87 18,83 17,24 19,23 Heneicosanoico (C21:0) 1,24 1,48 1,78 1,48 1,68 Behenico (C22:0) 0,70 3,72 6,31 2,64 7,78 Eicosapentaenoico (EPA) (C20:5 w3) 120,85 113,79 134,37 120,32 126,78 Erucico (C22:1) 0,41 0,29 0,29 0,33 0,33 cis-13,16-docosadienoico (C22:2) 0,49 2,59 4,45 1,79 5,01 Tricosanoico (C23:0) 0,20 0,21 0,29 0,27 0,19 Lignocerico (C24:0) 0,56 0,43 0,42 0,59 0,55 Nervonico (C24:1) 11,10 9,50 11,93 9,87 10,34 Docosahexaenoico (DHA) (C22:6 w3) 87,34 86,93 98,72 90,50 96,26
Cruz et al. (2000) y Casas et al. (2002) también utilizaron dietas con inclusión de 4% de
harina de Macrocystis en juveniles de camarón blanco, durante 28 días, al comparar sus
resultados con los obtenidos en el presente bioensayo a los 28 días, se observa que tanto el
peso final como la supervivencia fue superior al que registraron estos autores, la tasa de
crecimiento fue mas o menos similar a la obtenida por Casas et al. (2002) (404%) pero fue
inferior a la registrada por Cruz et al. (2000) (470%). Mientras que la tasa de conversión
26
alimenticia obtenida en el presente bioensayo (1.9) fue inferior a la reportada por ambos
autores.
Proteína soluble
Los valores de proteína soluble en los alimentos que se sometieron a la prueba de
hidroestabilidad no fueron realmente significativos, ya que Cruz-Suárez et al. (2004)
encontraron valores de perdida de proteína total alrededor de un 11.4% en dietas con 35%
de proteína. Esta misma tendencia se presentó en los alimentos donde se efectuó el 100%
de dilución con el homogeneizador de tejidos (Tabla 9).
Tabla 9. Proteína soluble en los alimentos con diferentes niveles de inclusión de Macrocystis
pyrifera.
Tratamiento mg/ 100 g alimento
CONTROL 0.06
HK 1% 0.06
HK 4% 0.04
HK 7% 0.03
HK 10% 0.04
Valores promedio de tres réplicas ± desviación estándar, expresados en g/1000 g de materia seca. HK 1%
alimento con inclusión del 1% de harina de kelp, HK 4% alimento con inclusión del 4% de harina de kelp, HK
7% alimento con inclusión del 7% de harina de kelp, HK 10% alimento con inclusión del 10% de harina de kelp.
La propiedad de insolubilidad de las proteínas en el alimento consiste en la pérdida de la
estructura terciaria por cambios de temperatura, una proteína soluble en agua cuando se
desnaturaliza se hace insoluble en agua y precipita (Espíndola, 1999).
Conclusiones
En general se puede considerar que el tratamiento con la inclusión de 7% de harina de
Macrocystis es el más adecuado, ya que aunque el peso final (5.5 g) y la tasa de crecimiento
27
(408%) quedaron dentro de los valores promedio, su supervivencia fue alta (97%), el
consumo de alimento (151 mg/organismo/día) y el factor de conversión alimenticia (1.4)
fueron los más bajos, mientras que la eficiencia proteica fue la más alta (2.1).
Bajo las condiciones del presente estudio, la harina de kelp puede reemplazar sin ningún
efecto negativo hasta el 10% de la mezcla de harinas de pescado en un alimento con 33% de
proteína.
Los resultados demuestran que la inclusión de la harina de kelp tuvo efectos marcados sobre
el alimento consumido lo que hace pensar que tiene una gran capacidad atractante y
fagoestimulante, pero además permitió incrementar el crecimiento, posiblemente como
respuesta a un incremento en el alimento consumido, por lo que se considera que la harina
de kelp es un buen aditivo alimentario para L. vannamei.
Es importante recalcar que los alimentos experimentales con todos los niveles de inclusión
de harina de kelp, dieron resultados positivos o mejores que la dieta control, lo que
demuestra que las algas proveen de los nutrimentos necesarios a los camarones, haciendo
no necesaria la adición de aditivos atractantes o nutricionales como aminoácidos, colesterol y
fosfolípidos, que son nutrimentos caros.
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