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ISBN 978.85.63274.47-2
Série
Manuais do
HOSPITAL DE CLÍNICAS DA UNICAMP
Manual de Processos de Trabalho da
DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
3ª edição
Campinas 2013
ISBN 978.85.63274.47-2
- 2 -
ISBN 978.85.63274.47-2
ÍNDICE
ESTRUTURA ORGANIZACIONAL _________________________________________________________ 7
PC.O1 – MISSÃO / OBJETIVOS DA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA (atualizado) _____________ 7
PC.02- MAPA DE RELACIONAMENTO FORNECEDOR / PROCESSO / CLIENTE ________________ 8
PC.O3 - MACRO FLUXO DO PROCESSO ____________________________________________________ 9
1. PROCESSOS DE TRABALHO GERAIS DA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA ________________ 10
PC.P1 - ROTINAS ADMINISTRATIVAS E GESTÃO DE PESSOAS _____________________________ 10 ATRIBUIÇÕES DO ASSISTENTE TÉCNICO DE DIREÇÃO ______________________________________ 10 ROTINAS ADMINISTRATIVAS _____________________________________________________________ 12 CONVÊNIO 9531 _________________________________________________________________________ 13 PLANTÕES ______________________________________________________________________________ 14 EDUCAÇÃO CONTINUADA ________________________________________________________________ 15
PC.P2 – EQUIPAMENTOS, REAGENTES E INSUMOS – COMPRAS E FORNECEDORES _________ 16 MATERIAIS DE CONSUMO DE ESTOQUE ___________________________________________________ 16 MATERIAIS DE CONSUMO DE COMPRA EVENTUAL _________________________________________ 17 EQUIPAMENTOS _________________________________________________________________________ 18 CONTROLE DOS CONTRATOS _____________________________________________________________ 19
PC.P3 – PLANO DE CONTINGÊNCIA ______________________________________________________ 21 FALTA DE ENERGIA ______________________________________________________________________ 21 FALTA DE ÁGUA _________________________________________________________________________ 21 FALTA DE REDE DE INFORMÁTICA ________________________________________________________ 22
PC.P4 – CONTROLE DE QUALIDADE EXTERNO ___________________________________________ 24
PC.P5 - BIOSSEGURANÇA ________________________________________________________________ 27 RISCO BIOLÓGICO _______________________________________________________________________ 27 RISCO QUÍMICO _________________________________________________________________________ 30 RISCO ERGONÔMICO_____________________________________________________________________ 31 PROTOCOLO DE CONDUTA EM CASO DE DERRAMAMENTO DE REAGENTE QUÍMICO __________ 31
PC.P6 – ÁGUA REAGENTE _______________________________________________________________ 37 CONTROLE INTERNO DA QUALIDADE _____________________________________________________ 37
PC.P7 – LAVAGEM DE MATERIAL ________________________________________________________ 39
PC.P8 - MANUTENÇÃO DE EQUIPAMENTOS E INSTRUMENTOS ____________________________ 41 PROGRAMA DE MANUTENÇÕES __________________________________________________________ 41
PC.P9 – LIMPEZA DE ÁREAS E SUPERFÍCIES ______________________________________________ 43 PROGRAMA DE LIMPEZA E DESINFECÇÃO _________________________________________________ 44
PC.P10 – LABORATÓRIOS EXTERNOS DE APOIO __________________________________________ 46 ORIENTAÇÕES GERAIS ___________________________________________________________________ 46 LABORATÓRIOS EXTERNOS – ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS __________________________________ 48
2. ORIENTAÇÕES SOBRE EXAMES PARA A EQUIPE DE SAÚDE DO HC-UNICAMP ______________ 52
PC.P11 – TABELA COM OS EXAMES REALIZADOS PELA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA -
HC (atualizada) __________________________________________________________________________ 52
3. PROCESSOS DE TRABALHO DA ÁREA PRÉ-ANALÍTICA _________________________________ 111
PC.P12 – ENTRADAS DE EXAMES DE UNIDADES DE INTERNAÇÃO ________________________ 111 CENTRAL DE RECEPÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE AMOSTRAS__________________________________ 111
PC.P13 – ENTRADAS DE EXAMES AMBULATORIAIS ______________________________________ 116 CENTRAL DE COLETA DE EXAMES _______________________________________________________ 116
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.T1 – TÉCNICAS DE COLETA PARA EXAMES DA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA _____ 125 FATORES DE INTERFERÊNCIA PRÉ-ANALÍTICA ____________________________________________ 125 INTERCORRÊNCIAS _____________________________________________________________________ 125 FATORES QUE PREDISPÕEM A MAL-ESTAR NOS PACIENTES EM COLETA ____________________ 127 CONDUTAS EM INTERCORRENCIAS ______________________________________________________ 127 RECOMENDAÇÕES PARA COLETA EM CRIANÇAS E NEONATOS _____________________________ 128 PUNÇÃO VENOSA _______________________________________________________________________ 129 TÉCNICAS DE COLETA __________________________________________________________________ 130 COLETA DE SANGUE ____________________________________________________________________ 130 Coleta a vácuo____________________________________________________________________________ 130 Coleta com seringa e agulha _________________________________________________________________ 131 Coleta por gotejamento _____________________________________________________________________ 133 COLETA DE EXAMES ____________________________________________________________________ 133 Teste de Tolerancia a Glicose ________________________________________________________________ 133 Gasometria Venosa ________________________________________________________________________ 134 Hemocultura _____________________________________________________________________________ 135 COLETA DE URINA ______________________________________________________________________ 136 Urina Amostra ___________________________________________________________________________ 136 Sequência Proposta para Cultura _____________________________________________________________ 136 Técnica de Coleta Feminina _________________________________________________________________ 136 Técnica de Coleta Masculina ________________________________________________________________ 137 Coleta Domiciliar _________________________________________________________________________ 137 COLETA DE URINA EM SITUAÇÕES ESPECIAIS ____________________________________________ 138 Crianças Sem Controle Miccional (Coletor) _____________________________________________________ 138 Cateterismo Vesical _______________________________________________________________________ 138 Nefrostomia, Vesicostomia, Ureterostomia, Cistostomia e Mitrofanoff ________________________________ 140 Urina de 24 Horas _________________________________________________________________________ 141 COLETA DE AMOSTRAS PARA EXAMES MICROBIOLÓGICOS ________________________________ 141 SECREÇÃO URETRAL ___________________________________________________________________ 141 SECREÇÃO VAGINAL ___________________________________________________________________ 142 SECREÇÃO ENDOCERVICAL _____________________________________________________________ 143 ÚLCERAS GENITAIS _____________________________________________________________________ 143 SECREÇÕES DIVERSAS __________________________________________________________________ 144 Secreção Nasal ___________________________________________________________________________ 144 Secreção Nasofaringe ______________________________________________________________________ 144 Secreção Ocular __________________________________________________________________________ 145 Secreção Orofaringe _______________________________________________________________________ 145 Secreção de Ouvido _______________________________________________________________________ 145 CABELO E OU DESCAMAÇÃO DO COURO CABELUDO ______________________________________ 145 PELES E ANEXOS _______________________________________________________________________ 145 Lesões secas em pele ______________________________________________________________________ 146 Lesões úmidas em pele _____________________________________________________________________ 146 Unha ___________________________________________________________________________________ 146 COLETA DE MUCO NASAL _______________________________________________________________ 146 COLETA DE ESPERMA ___________________________________________________________________ 146 COLETA DE FEZES ______________________________________________________________________ 147 SWAB ANAL ____________________________________________________________________________ 147 SWAB RETAL - Técnica de coleta para pesquisa de Enterobactérias resistentes aos carbapênicos (Novo) ____ 148 PESQUISA PARA ENTEROBIUS VERMICULARIS (Oxiurus) ____________________________________ 148 COLETA DE ESCARRO ___________________________________________________________________ 149 COLETA DE LIQUOR ____________________________________________________________________ 149
4. PROCESSOS DE TRABALHO DA ÁREA ANALÍTICA _____________________________________ 152
PC.P14 – BIOQUÍMICA __________________________________________________________________ 152
PC.P15– BIOQUÍMICA – GASOMETRIA ___________________________________________________ 158
PC.P16 – FISIOLOGIA ___________________________________________________________________ 162
PC.P17 – IMUNOLOGIA _________________________________________________________________ 166
PC.P18 – LÍQUIDOS BIOLÓGICOS _______________________________________________________ 171
PC.P19 – IMUNOGENÉTICA _____________________________________________________________ 176
PC.P20 – HEMATOLOGIA _______________________________________________________________ 179
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P21 – PARASITOLOGIA ______________________________________________________________ 184
PC.P22 – MICROBIOLOGIA _____________________________________________________________ 187
PC.P23 – INVESTIGAÇÃO DE DOENÇAS INFECCIOSAS CLASSIFICADAS POR AGENTES -
ORIENTAÇÕES PARA O MÉDICO _______________________________________________________ 190 BACTÉRIAS QUE EXIGEM CONDIÇÕES ESPECIAIS DE COLETA OU OPÇÕES DE EXAMES _______ 190 EXAME MICROSCÓPICO – PRINCIPAIS TIPOS ______________________________________________ 190 MEIOS DE TRANSPORTE _________________________________________________________________ 190 ORIENTAÇÕES GERAIS __________________________________________________________________ 191 TRATO RESPIRATÓRIO __________________________________________________________________ 192 MATERIAL OBTIDO DURANTE ATO CIRÚRGICO ___________________________________________ 193 DRENOS E FÍSTULAS ____________________________________________________________________ 194 PESQUISA DE FONTES DE INFECÇÃO, INVESTIGAÇÃO DE PORTADORES E MEDICAMENTOS___ 194 INDICAÇÃO DE TÉCNICAS DE MICROBIOLOGIA POR TOPOGRAFIA __________________________ 195 A. TRATO DIGESTIVO ___________________________________________________________________ 195 B. TRATO GENITAL MASCULINO _________________________________________________________ 198 C. TRATO GENITAL FEMININO ___________________________________________________________ 200 D. TRATO RESPIRATÓRIO ________________________________________________________________ 203 E. SISTEMA NERVOSO CENTRAL _________________________________________________________ 211 F. SEPSE, BACTEREMIA, FEBRE A ESCLARECER, ENDOCARDITE ____________________________ 212 G. PELE, ANEXOS E TECIDO SUBCUTÂNEO ________________________________________________ 213 H. OLHO _______________________________________________________________________________ 215 I. OSSO _________________________________________________________________________________ 217 J. MÚSCULO ____________________________________________________________________________ 219 K. GÂNGLIO ____________________________________________________________________________ 219 L. TRATO URINÁRIO ____________________________________________________________________ 221
ANEXOS ____________________________________________________________________________ 223
PC.A1 - NORMAS, PORTARIAS E REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS QUE EMBASAM O
FUNCIONAMENTO DA ÁREA ___________________________________________________________ 223
PC.A2 – DOCUMENTOS UTILIZADOS NA ÁREA ___________________________________________ 225
PC.A3 - TABELA DE TEMPORALIDADE DOS DOCUMENTOS _______________________________ 228
ISBN 978.85.63274.47-2
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MANUAIS DE PROCESSOS DE TRABALHO E TÉCNICAS DE COMPETÊNCIA DE OUTRAS ÁREAS
Assessoria de Materiais – assessoria_materiais.pdf
DSG - Hotelaria – hotelaria.pdf
Emergência Referenciada – emergencia.pdf
Enfermagem - Técnicas da Enfermagem - enfermagem_tecnicas.pdf
Engenharia e Manutenção – engenharia.pdf
Epidemiologia Hospitalar – Centro de Referência em Imunobiológicos Especiais – crie.pdf
Epidemiologia Hospitalar – Comissão de Controle de Infecção Hospitalar – ccih.pdf
Epidemiologia Hospitalar – Hospital Sentinela – hs.pdf
Epidemiologia Hospitalar – Núcleo de Vigilância Epidemiológica – nve.pdf
Faturamento – faturamento.pdf
Gerenciamento de Resíduos – residuos.pdf
Informática – informatica.pdf
Patrimônio – patrimonio.pdf
Serviço de Orçamento e Finanças – sof.pdf
SSPR - Segurança, Portaria e Recepção – sspr.pdf
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ESTRUTURA ORGANIZACIONAL PC.O1
Grupo responsável pela elaboração
Colegiado da Divisão de Patologia Clínica - 2014
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 7 -
ESTRUTURA ORGANIZACIONAL
PC.O1 – MISSÃO / OBJETIVOS DA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
(atualizado)
Promover assistência laboratorial de excelente qualidade, colaborar na
formação e capacitação de recursos humanos na área de saúde e ampliar as
pesquisas na área de Patologia Clínica.
Colegiado da Divisão de Patologia Clínica – 2014
Prof. Dr. Erich Vinicius de Paula
Prof. Dr. Aníbal Eugênio Vercesi
Prof. Dr. Carlos Emílio Levy
Profa. Dra. Maria Heloisa S. L. Blotta
Prof. Dr. Roger F. Castilho
Profa. Dra. Célia Regina Garlipp
Profa. Dra. Eliana Cotta de Faria
Profa. Dra. Maria de Fátima Sonatti
Ana Lúcia Roscani Calusni
Márcia Victor Carneiro Villas Boas
Maria José Landi Bartelega
Dra. Maria de Fátima Gilberti
Angela Laund Teixeira
Margareth Baptistella (representante de funcionários)
Suplentes
Dra Ângela Von Nowakonski
Laurione Candido de Oliveira
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
ESTRUTURA ORGANIZACIONAL PC.O2
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Ângela Teixeira, Ana Lucia Calusni, Lucélia Moya, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 8 -
PC.02- MAPA DE RELACIONAMENTO FORNECEDOR / PROCESSO / CLIENTE
FORNECEDORES
EXTERNOS
FORNECEDORES
INTERNOSPROCESSO
CLIENTES
INTERNOS
CLIENTES
EXTERNOS
CECOM, SESMT,CAISM,
Hemocentro,Gastrocentro,CIPOI
Hospitais e laboratórios
conveniados
Empresas de Ensaio de
proficiência
Limpadora Centro
Superintendência
Departamento de
Patologia Clínica
Médico
DS
DSG
RH
Realização de
Exames
Pós Analítico
Liberação de resultados
Pacientes
Residentes, aprimorandos,
alunos, estagiários.
Acompanhantes
Especialidades Médicas
FCM
Docentes
Unidades de Internação e
ambulatórios
Fornecedores de reagentes e
equipamentos
Agendamento
Unidade de internação /
Ambulatório
Fármacia/Almoxarifado
DEM
Informática
CEB
CEMEQ
CNEM
Hospitais e laboratórios
conveniados
Pré Analítico
Coleta e entrada
Solicitação de exames
Analítico
Realização de exames
SAMCECOM, SESMT,CAISM,
Hemocentro,Gastrocentro,CIPOI
Entrada
Solicitação
de
Exames
Saída
Resultados
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
ESTRUTURA ORGANIZACIONAL PC.O3
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Ângela Teixeira, Ana Lucia Calusni, Lucélia Moya, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 9 -
PC.O3 - MACRO FLUXO DO PROCESSO
LABO
RAT
ÓR
IO
GAS
OM
ETR
IAAG
END
AMEN
TO
ENC
AMIN
HAM
ENTO
DAS
AM
OST
RAS
CO
LETA
DAS
ÁREA
S AN
ALÍT
ICAS
ÁREA
PÓ
S-
ANAL
ÍTIC
AM
ÉDIC
O Início Solicita Exames
Paciente
ambulatorial
HC?
Paciente
ambulatorial
Externo?
Paciente
Internado
Paciente agenda
exames
Paciente Atendido
Coleta
Coleta
Ambulatorial HC
Coleta nas
Unidades de
Internação
Amostra Coletada
Amostra Coletada Amostra Coletada
Coleta
Ambulatorial
Externa
Enfermagem ou médico
realiza coleta
Preenchimento manual
do pedidoSolicitação
pelo SIL?
Solicitação SILLaboratório / enfermagem
procede coletaGeração da ordem
de coletaAmostra Coletada
É gasometria?
Processa Análises e
libera resultadosCentral de
Separação e
Distribuição Recebe as amostrasProcessa e distribui as
amostras
Bioquímica, Hematologia, Fisiologia, Imunologia,
Líquidos Biológicos, Microbiologia, Parasitologia,
Imunogenética
Processa Análises
Libera Resultados no
sistema
FIMNÃO NÃO
SIM
NÃO
SIMSIM
NÃO
SIM
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 10 -
1. PROCESSOS DE TRABALHO GERAIS DA DIVISÃO DE PATOLOGIA
CLÍNICA
PC.P1 - ROTINAS ADMINISTRATIVAS E GESTÃO DE PESSOAS
ATRIBUIÇÕES DO ASSISTENTE TÉCNICO DE DIREÇÃO
ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS À ATUAÇÃO NO COLEGIADO
Participar do colegiado de gestão da unidade produtiva.
Participar de projetos estratégicos da unidade produtiva.
Pactuar metas para a área administrativa da unidade produtiva.
Representar a instituição em fóruns deliberativos / consultivos quando designado.
Colaborar na gestão de custos da unidade produtiva.
Empenhar-se no cumprimento das metas acordadas no contrato de gestão e no planejamento estratégico.
Atender as necessidades da instituição, no que concerne a sua área.
Elaborar atas das reuniões do colegiado, arquivar documentos produzidos e realizar encaminhamentos necessários.
Encaminhar ao colegiado as necessidade e dificuldades da área administrativa, propondo soluções e alternativas.
Assessorar o colegiado quanto à área administrativa.
Colaborar na elaboração, execução e acompanhamento de projetos de melhoria de processo da unidade produtiva.
ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS À GESTÃO ADMINISTRATIVA
Realizar análise de planilhas de produtividade, recursos humanos e custos por meio de comparação com períodos anteriores, identificação de variações, solicitação de esclarecimentos sobre os desvios aos responsáveis da área.
Despachar com a Superintendência e Coordenadorias, bem como atender suas demandas quando necessário.
Elaborar e atualizar o manual de processos da unidade área.
Estabelecer rotinas de trabalho para a área.
Identificar oportunidades e problemas.
Desenvolver métodos e rotinas de simplificação e racionalização de serviços.
Realizar análise de custos de equipamentos e materiais a serem introduzidos na área.
Atuar na implementação de indicadores para sua área.
Identificar desvios de qualidade e implementar ações corretivas.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 11 -
Gerenciar o sistema interno de faturamento de exames, exames de convênio, realizar análise de custos de exames e composição para tabela de preços, elaboração de relatórios e prestação de contas.
Assessorar equipes de desenvolvimento da Divisão, tais como: sistema de informática, padronização de materiais, padronização de manuais e procedimentos.
Gerenciar o sistema informatizado de cadastro e faturamento de exames laboratoriais.
Assessorar o Coordenador da Divisão quanto às definições de políticas a serem adotadas, necessidades das Seções, e tratamento com entidades externas e internas.
ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS A RECURSOS HUMANOS
Responder pela seleção, desenvolvimento e capacitação dos funcionários administrativos, em colaboração com a DRH-HC.
Avaliar o desempenho da equipe administrativa.
Supervisão dos profissionais administrativos e definições quanto a escalas mensais, escala de férias, delegar tarefas, substituições, controle de frequência e gerenciamento de conflitos.
Realização de treinamento em serviço e reuniões periódicas com a equipe administrativa.
Exigir o respeito à ética profissional por sua equipe, durante o desenvolvimento das atividades e no relacionamento com os clientes externos, internos e equipe multidisciplinar.
Diagnosticar necessidades de treinamento e desenvolvimento e apoiar a execução de treinamentos realizados em parceria com a Divisão de Recursos Humanos.
Auxiliar na confecção de escalas de trabalho.
Controle dos documentos a serem enviados a DRH-HC: frequência, atestados, declarações e acidentes de trabalho.
Prover equipamentos de proteção à equipe multidisciplinar da unidade produtiva.
Participar de reuniões promovidas pela DRH-HC.
Participar de sindicância administrativa, quando designado. ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS À SECRETARIA
Garantir qualidade de atendimento aos clientes internos e externos, com eficiência, ética e cordialidade.
Coletar dados e elaborar planilhas dos indicadores de produtividade, recursos humanos e custos.
Emitir relatórios.
Ter domínio operacional dos sistemas informatizados utilizados em sua área.
Zelar pelo funcionamento adequado dos sistemas de informática.
Controlar documentos emitidos e recebidos na área, respeitando a temporalidade dos mesmos.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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- 12 -
Atestar recebimento de notas fiscais.
Controle da emissão e arquivamento de laudos, se pertinentes à unidade produtiva.
Dar suporte administrativo às atividades desenvolvidas pela equipe multidisciplinar da unidade produtiva.
Fazer interface com serviços de apoio (SAM, CEB, CEMEQ, DEM, Almoxarifado, DSG, Patrimônio, dentre outros) e realizar o controle interno das atividades relacionadas.
ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS A MATERIAIS E EQUIPAMENTOS
Efetuar acompanhamento histórico dos equipamentos e mobiliários pertencentes à unidade produtiva, incluindo a solicitação e de manutenção preventiva e corretiva.
Prover e controlar o uso de impressos e materiais de secretaria.
Acompanhar o consumo e planejar a reposição de materiais da unidade produtiva.
Conhecer a logística de suprimentos de materiais e insumos utilizados pela unidade produtiva.
Elaborar justificativa para inclusão ou exclusão de materiais da área administrativa.
Cobrar a realização e encaminhar as justificativas para inclusão ou exclusão de materiais da área técnica.
Colaborar na elaboração de editais para licitação.
Auxiliar na realização de testes de materiais e equipamentos e fluxo dos formulários de teste.
ATRIBUIÇÕES RELACIONADAS AO AMBIENTE DA UNIDADE PRODUTIVA
Zelar pela manutenção e organização do claviculário da área. Estabelecer critérios para fornecimento de cópias e empréstimo de chaves, aprovados pelo gerente da unidade produtiva.
Coordenar e supervisionar a organização das áreas comuns, assistenciais e administrativas da unidade produtiva.
Acompanhar execução de trabalho de ampliação, reformas e obras na unidade produtiva.
ROTINAS ADMINISTRATIVAS
RECEPCIONISTA
Prestar atendimento a usuários internos e externos.
Encaminhar e /ou acompanhar pessoas aos diversos setores.
Prestar atendimento telefônico, fornecer informações e transferir ligações.
Operar equipamentos de escritório (fax, computador).
Recolher, distribuir e encaminhar correspondências e malotes, interna e externamente (protocolo, Faturamento, informática, DRH).
Digitar relação de remessa e documentos de baixa complexidade.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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- 13 -
Realizar o controle de entrada e saída de documentos (como é feito).
Arquivar documentos em geral (relação de remessa, OS – CEMEQ, documentos de funcionários - cursos)
Organização de arquivo morto.
Controle de relatórios de almoxarifado da secretaria.
Separar e distribuir relatórios de estatística às diversas áreas.
Preencher, receber, registrar, encaminhar e controlar a execução de Ordens de Serviço para DEM, CEMEQ.
Receber e encaminhar requisições de almoxarifado.
Receber e transmitir mensagens orais e escritas.
Executar serviços de Copa.
Controle de insumos usados na copa. TÉCNICO ADMINISTRATIVO
Realizar atividades da rotina administrativa da Divisão, nas áreas de Recursos Humanos, suprimentos, faturamento, contratos, expediente, arquivos, patrimônio e logística.
Preparar, controlar e arquivar documentos expedidos e recebidos.
Atender usuários externos e internos, fornecedores e profissionais de saúde.
Executar atividades gerais da administração e de suporte à área técnica.
Receber, encaminhar e acompanhar Ordens de Serviço (DEM, CEMEQ).
CONVÊNIO 9531
TÉCNICO ADMINISTRATIVO
Efetuar o cadastro de Laboratório conveniado para prestação de serviços da Divisão de Patologia Clínica - HC, mediante contrato, via FUNCAMP;
Encaminhar o modelo de solicitação de exame da DPC-HC para laboratório conveniado;
Solicitar que a informática gere um número padrão para o laboratório cadastrado para efeito de cobrança;
Informar ao laboratório conveniado os exames oferecidos e os valores correspondentes.
LABORATÓRIO CONVENIADO
Encaminhar exames para execução da DPC-HC, mediante modelo de solicitação. CENTRAL DE RECEPÇÃO, PREPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO – DPC-HC
Receber os materiais encaminhados para exames, proceder as checagens e encaminhar para área analítica.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 14 -
ENTREGA DO RESULTADO
Caso haja urgência, o resultado pode ser passado por telefone ao laboratório conveniado.
Na rotina, o resultado deve ser entregue ao mensageiro do laboratório conveniado. ASSISTENTE TÉCNICA DE DIREÇÃO Ao final do mês, mediante relatório AHLA49 elaborado pela Informática, realizar:
Cruzamento das informações de exames x preços;
Checagem do número de exames por laboratório;
Checar a conferência do relatório mediante as solicitações emitidas;
Gerar relatório e solicitação de fatura por laboratório;
Assinar e encaminhar para Coordenadoria de Assistência para visto executor do convênio e envio para FUNCAMP para cobrança.
FUNCAMP Administrar o convênio e faturamento, gerando renda para a DPC, por meio do convênio 9531, correntista 07. ASSISTENTE TÉCNICA DE DIREÇÃO Acessar sistema de convênios, na página da FUNCAMP, mediante senha e receber informações sobre movimentação da conta e saldo disponível para uso em pequenas aquisições.
PLANTÕES
ELABORAÇÃO DAS ESCALAS Cada área elabora mensalmente sua escala de acordo com a necessidade do serviço para os dias que estão estabelecidos como plantão e com o número de plantonistas definido para seu funcionamento. Os plantões são pagos em blocos de 2hs até no máximo 108 hs / plantonista A escala é encaminhada pela área até o 15º dia do mês que antecede ao mês do plantão INCLUSÃO DAS ESCALAS NO SISTEMA DE PLANTÕES DO HOSPITAL Digitar as escalas enviadas pelas áreas no Sistema de Plantões do HC. Conferir o que foi digitado com a escala disponibilizada pela área (O sistema bloqueia número de horas superior a 108 e duplicidade de local de plantão para o mesmo plantonista) As escalas podem ser alteradas até o ultimo dia do mês antecedente ao do plantão Consolidar e enviar pelo Sistema Receber e arquivar comunicados internos de trocas de plantão Receber comunicado de necessidade de aumento de plantão para posterior pagamento (em caso de falta de funcionário ou problemas eventuais na rotina) Incluir em arquivo eletrônico o número de horas/plantão de cada área
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P1
Grupo responsável pela elaboração Ana Lucia Calusni, Maria José Landi, Estela Tristão, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Imprimir o documento gerado Arquivar o documento assinado pela Diretora, para acompanhamento do número de horas plantão de cada área e do total de horas plantão da Divisão.
EDUCAÇÃO CONTINUADA
EVENTOS EXTERNOS Elaborar no início do ano um cronograma dos eventos de interesse técnico e científico que ocorrerão ao longo do ano, para programar previamente a liberação de funcionários. Os critérios para liberação do funcionário contemplam os seguintes aspectos:
Apresentação de trabalhos
Temas pertinentes à área de atuação
Rodízio entre os interessados
Não prejudicar escala de trabalho. EVENTOS INTERNOS Eventos são planejados mediante demandas das equipes, chefias e detecção de problemas, abordando aspectos tais como:
Novos equipamentos
Novas técnicas
Revisão de Técnicas
Gestão de Pessoas e Processos
Segurança Ocupacional e Ambiental
Discussão de casos
Feedback de profissionais que participaram de eventos externos Todos os eventos internos são documentados por meio de listagem de presença assinada pelos participantes
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Não se aplica Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
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Revisão N
o: 004
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P2
Grupo responsável pela elaboração Paulo Azevedo, Ana Lucia Calusni
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P2 – EQUIPAMENTOS, REAGENTES E INSUMOS – COMPRAS E
FORNECEDORES
MATERIAIS DE CONSUMO DE ESTOQUE
LABORATÓRIOS Cada usuário solicita seus materiais consumíveis por meio de requisição de almoxarifado, obedecendo à cota mensal e a disponibilização de cota semanal emitida pelo Planejamento.
ALMOXARIFADO Os pedidos de itens de estoque devem ser elaborados pelo controle de estoque do almoxarifado, avaliando: consumo médio, saldo, valor da ultima compra, e quantidade a ser adquirida. Encaminhar à Divisão de Suprimentos para cotação. Enviar a divisão para opção, considerando o maior usuário do produto. SUPRIMENTOS DA DIVISÃO Analisar se o material de menor preço é aprovado/padronizado pela área. Caso não seja aprovado:
Solicitar amostra para teste, caso haja tempo viável para o processo de teste e aprovação;
Optar pelo segundo preço e justificar a necessidade da opção, caso não haja tempo viável para processo de teste e aprovação.
O teste de amostras deve ser realizado pela principal área usuária e confirmado por outras áreas da divisão que também utilizem o item. O usuário deve preencher e assinar parecer técnico padronizado pela Divisão de Suprimentos. Se o menor preço for marca reprovada pela área, anexar o parecer técnico e analisar o segundo preço. Dar suporte à Divisão de compras para indicações de diferentes fornecedores para os produtos utilizados no laboratório. Encaminhar à Divisão de Suprimentos que determinará processo de compras indicado para cada caso. Caso a área da divisão reclame de falta de material de consumo de item de estoque:
Verificar saldo no Almoxarifado;
Verificar se há pedido em andamento;
Verificar previsão de chegada do material;
Verificar número do pedido;
Cobrar Divisão de Suprimentos sobre a falta do item.
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Revisão N
o: 004
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P2
Grupo responsável pela elaboração Paulo Azevedo, Ana Lucia Calusni
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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MATERIAIS DE CONSUMO DE COMPRA EVENTUAL
ÀREAS DA DIVISÃO Considera-se item de compra eventual os reagentes, insumos e materiais de consumo esporádico, independentemente do valor do item. Elaborar o pedido em formulário próprio determinando:
Descrição do item;
Quantidade;
Marca;
Consumo;
Tempo necessário para recebimento (urgência). ASSISTENTE TÉCNICO DE DIREÇÃO Determinar a forma de aquisição (UNICAMP OU FUNCAMP), baseado na urgência de compra. SUPRIMENTOS DA DIVISÃO Emitir o pedido e despachar para o destino:
UNICAMP – Divisão de Suprimentos-HC, o pedido é elaborado em formulário próprio e respeitando data de envio até o 5º dia útil de cada mês (exceto materiais declarados por urgência ou emergência), indicando empresa fornecedora, solicitando registro do produto, junto à ANVISA, quando do envio da proposta, com pedido em 2 vias.
o Assistente técnico de direção deve assinar os pedidos; o Encaminhar as duas vias a DS/HC; o A 2ª via deve retornar a divisão com o número de pedido a ser registrado ou
cobrado. Alimentar planilha de controle de pedidos.
FUNCAMP – Compras da Funcamp, não tem data para envio, deve ser confeccionados em formulário próprio e deve conter uma cotação do respectivo produto a ser adquirido. Só poderão ser adquiridos produtos com registro na ANVISA.
o Assistente técnico de direção deve assinar e, após, encaminhar a CA/HC, para assinatura do executor;
o Após assinatura do executor, fazer Xerox e encaminhar as duas vias ao compras/Funcamp com indicação do procedimento a ser adotado (fechar compra, menor preço ou voltar para autorização);
o A 2ª via deverá retornar a Divisão com o número do protocolo a ser registrado ou cobrado.
Aguardar entrega do produto e controlar prazos de entrega. Na entrega do produto, carimbar o recebimento e colher assinatura do usuário recebedor na nota fiscal (primeira e segunda vias) e a 2º via deve ser arquivada, junto com a 2º vias do pedido.
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Revisão N
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Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P2
Grupo responsável pela elaboração Paulo Azevedo, Ana Lucia Calusni
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Encaminhar 1º via da nota fiscal para pagamento. Dar baixa do pedido na planilha de controle de pedidos.
EQUIPAMENTOS
ÁREAS DA DIVISÃO Encaminhar a necessidade de aquisição ou substituição de equipamento ao Assistente Técnico de Direção da Divisão, por meio de CI (comunicação interna), informando:
Tipo de equipamento;
Especificações técnicas;
Parâmetros a serem analisados;
Programação e tipo de sistema;
Capacidade;
Produtividade;
Consumo de reagentes e insumos;
Indicação se aquisição, comodato ou locação. ASSISTENTE TÉCNICO DE DIREÇÃO DA DIVISÂO Avaliar a viabilidade do pedido e gerar CI para aquisição ou providências. Encaminhar para a Coordenadoria de Assistência ou Administração e aguardar aprovação. Com a CI aprovada, encaminhar para Divisão de Suprimentos que dará início ao processo de aquisição, comodato ou locação, gerando o edital de licitação. Analisar o edital quanto a:
Dados exigidos para o equipamento foram contemplados;
Atender legislação pertinente;
Determinação de prazos de manutenção e assistência técnica;
Determinação de assessoria científica fornecida. Ciência e aprovação do edital para publicação. Participar do pregão ou analisar processo licitatório no que for pertinente à área. SUPRIMENTOS DA DIVISÃO Receber a cópia do contrato assinado, formalizado e já publicado em Diário Oficial. Na entrega do equipamento:
Identificar e encaminhar à área responsável;
Colher assinatura do usuário recebedor;
Arquivar nota fiscal. ÁREA DA DIVISÃO Solicitar instalação do equipamento pelo fornecedor e, se necessário, solicitar auxílio da DEM quanto à infraestrutura. Solicitar patrimoniamento dos equipamentos em comodato e adquirido.
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Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P2
Grupo responsável pela elaboração Paulo Azevedo, Ana Lucia Calusni
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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CONTROLE DOS CONTRATOS
TIPOS DE CONTRATOS Contrato de locação – refere-se ao valor que deve ser pago mensalmente como aluguel de equipamentos. Contrato de fornecimento de reagentes – consiste no fornecimento mensal de reagentes e insumos, dentro de cota e valores contratados. CONTRATO DE LOCAÇÃO Todos os contratos de locação são alimentados em planilhas de controle de notas fiscais e valores de aluguel. Receber, mensalmente, as notas fiscais de locação e:
Conferir;
Descontar dias parados por manutenção;
Alimentar planilha de controle;
Encaminhar para assinatura pelo Assistente Técnico de Direção. Encaminhar nota fiscal para Setor de Contratos-DS para pagamento. No início de cada ano, o usuário deve fazer a programação de manutenções preventivas, por meio de planilhas próprias, determinando datas e período para a realização da manutenção. Encaminhar planilha de manutenção para empresa fornecedora, por meio de fax. Caso haja necessidade de manutenção corretiva, preencher a planilha e encaminhar à empresa fornecedora, por meio de fax. CONTRATOS DE FORNECIMENTO DE REAGENTES Todos os contratos de fornecimento são alimentados em planilhas de controle de entrega de reagentes. Montar a planilha de reagentes e insumos dos contratos, baseado na cota mensal de cada área usuária. Fornecer planilha para área usuária que informará, mensalmente (até dia 20 de cada mês) a necessidade de produtos a serem consumidos no mês seguinte. Montar a planilha de pedido a ser encaminhada à empresa, por e-mail. Na chegada dos reagentes e insumos, conferir:
Se item enviado refere-se ao pedido;
Quantidade enviada (se parcial ou integral);
Validade do produto. Colher assinatura do usuário recebedor. Alimentar planilha com os itens recebidos. Dar baixa nas notas fiscais e arquivar 2ª via. Informar empresa sobre pendências e solicitar manifestação quanto ao prazo de entrega dos reagentes pendentes. Enquanto a entrega não estiver completa, não encaminhar nota para pagamento.
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Revisão N
o: 004
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P2
Grupo responsável pela elaboração Paulo Azevedo, Ana Lucia Calusni
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Com a entrega completa, anexar a planilha de solicitação com a 1ª via da nota fiscal e colher a assinatura da Assistente Técnico de Direção da Divisão. Encaminhar nota fiscal para Setor de Contratos-DS para pagamento. Encaminhar planilhas de custos mensais de locação e reagentes, por área da Divisão, ao Setor de Custos-HC.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Não se aplica Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
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o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P3
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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PC.P3 – PLANO DE CONTINGÊNCIA
FALTA DE ENERGIA
PROGRAMADA Ocorre quando há necessidade de manutenção prolongada na rede de energia. São informadas com pelo menos uma semana de antecedência pela DEM. São manutenções realizadas normalmente aos finais de semana. As áreas que trabalham nas 24 hs do dia, estão contempladas com linha de energia de emergência que entra em funcionamento juntamente com o sistema de gerador de energia do hospital no momento do corte de energia elétrica. Quando a interrupção de energia é por período prolongado, extensões são providenciadas e instaladas pela DEM para ligar freezers, refrigeradores e outros equipamentos a rede de emergência. Plano de Contingência para SIL é acionado OCASIONAL São quedas no sistema de fornecimento de energia elétrica que ocorrem ocasionalmente devido a fortes chuvas ou pequenos reparos. Não são avisadas antecipadamente. Normalmente a energia se restabelece em poucos minutos. Todos os equipamentos automatizados são providos de Nobreak, que mantém os mesmos em funcionamento por no mínimo 30min, permitindo ao operador que encerre a atividade se necessário. Aqueles equipamentos que estão conectados na rede de energia elétrica de emergência, mantida pelo sistema de gerador, continuam a funcionar normalmente. Não é necessário acionar Plano de contingência para SIL.
FALTA DE ÁGUA
PROGRAMADA Ocorre quando há necessidade de alguma manutenção na rede hidráulica. As áreas são informadas antecipadamente, antes da interrupção do fornecimento. As áreas que possuem equipamentos que fazem uso de água em sistema contínuo aguardam a parada do equipamento para autorizar a interrupção no fornecimento de água. As demais áreas que trabalham com reservatórios de água para consumo continuam a trabalhar normalmente, até quando seus reservatórios permitirem. Procedimentos de lavagem de materiais devem ser interrompidos. Depois do serviço executado as áreas são comunicadas da liberação do fornecimento de água para retomada das atividades.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P3
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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FALTA DE REDE DE INFORMÁTICA
CONDUTA IMEDIATA Comunicar a Superintendência e enfermarias do ocorrido e solicitar que priorizem exames de urgência. CONTINGÊNCIA MÉDIA Sistema de informática laboratorial HLPC inoperante. CONTINGÊNCIA ALTA Sistemas de informática laboratorial (CICSHCP e HLPC) inoperante/falta de energia eletrica por período prolongado. CENTRAL DE COLETA DE EXAMES - PARA QUALQUER CONTINGÊNCIA Atender somente as urgências (quimioterapia, crianças, transplantados), pacientes com consulta próxima e com debilidade física. Expor a contigência aos pacientes e fornecer um comunicado padrão. CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE AMOSTRAS – PARA QUALQUER CONTINGÊNCIA Informar as áreas analíticas sobre possível atraso no envio das amostras. Informar as unidades assistenciais (enfermarias, UER, UTI, CC) de possível atraso na liberação dos laudos. PROCEDIMENTOS OPERACIONAIS EM CONTINGÊNCIA MÉDIA CENTRAL DE COLETA DE EXAMES E CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE AMOSTRAS Exame digitado no sistema HLPC – Não permite baixa de recebimento:
Reemitir planilha no sistema CICSHCP, para todos os Serviços;
Digitar malotes pequenos, conferir, ordenar e encaminhar as amostras com as respectivas planilhas as seções.
CENTRAL DE COLETA DE EXAMES Quando o exame não estiver digitado no sistema HLPC:
Fazer etiquetas manuais por paciente de acordo com os exames solicitados, constando HC e nome do paciente;
Encaminhar para Box de coleta as etiquetas juntamente com o pedido original em saco plástico;
Realizar a coleta e etiquetar os tubos, ordenando-os com as requisições médicas por sequência de paciente;
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P3
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Digitar as requisições médicas no CICSHCP, para todas as seções e imprimir planilhas;
Conferir e encaminhar as amostras que não precisam de processamento juntamente com as planilhas aos serviços e as que precisam de processamento encaminhar para a Central de Separação.
PROCEDIMENTOS OPERACIONAIS EM CONTINGÊNCIA ALTA CENTRAL DE COLETA DE EXAMES
Fazer etiquetas manuais por paciente de acordo com os exames solicitados, constando HC e nome do paciente;
Encaminhar para Box de coleta as etiquetas juntamente com o pedido original em saco plástico;
Realizar a coleta e etiquetar os tubos, ordenando-os com as requisições médicas.
Elaborar listas de trabalho contendo nº do prontuário, nome do paciente, exame a ser realizado e ambulatório de origem, para amostras que não precisam de processamento, exames de coagulação e urinas de 24hs, e encaminhar ao respectivo serviço.
Encaminhar os demais materiais que necessitem processamento à Central de Separação.
CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE AMOSTRAS
Elaborar listas de trabalho contendo HC, nome do paciente e exame a ser realizado e enfermaria de origem, para amostras que não precisam de processamento, exames de coagulação e urinas de 24hs e encaminhar ao respectivo serviço;
Para o Serviço de Bioquímica, encaminhar o material processado juntamente com a requisição original;
Encaminhar o material processado para as outras seções com a lista de trabalho. Após a restauração do Sistema, as requisições serão digitadas para posterior liberação dos exames. Caso necessário, os resultados das análises poderão ser informadas via telefone ao médico solicitante ou enfermagem. As áreas analíticas possuem procedimento descrito de contingência para problemas com SIL de acordo com o tipo de interfaceamento disponível.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Não se aplica Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P4
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P4 – CONTROLE DE QUALIDADE EXTERNO
SELEÇÃO DA EMPRESA FORNECEDORA DO ENSAIO Fazer levantamento das empresas que oferecem o Ensaio de Proficiência e qual a abrangência dos programas. Avaliar se a Empresa possui os certificados de habilitação da ANVISA/REBLAS. Selecionar a empresa que oferecer o maior número de analitos constantes do menu oferecido pela divisão. CONTRATAÇÃO DE EMPRESA Seguir os procedimentos de licitação segundo legislação, com a participação das empresas previamente selecionadas. O contrato é assinado por um ano, prorrogável por até cinco anos. ACESSO AO SISTEMA CONTROL LAB - EMPRESA CONTRATADA Acessar o sistema entrando no site da controllab (www.controllab.com.br). Clicar em sistema online, entrar com o numero do usuário, login e senha. O sistema online permite acessar e imprimir documentos, enviar os resultados dos itens analisados a cada rodada, acessar e imprimir avaliações e resultados já enviados, acessar materiais e relatórios. MATERIAL DE ENSAIO Os itens de ensaio são obtidos a partir de sangue, soro, plasma, urina, fezes e outros materiais biológicos de origem humana ou animal fornecidos na forma liofilizada quando possível e embalados em saches plásticos a fim de atender normas de biossegurança. Os módulos são padronizados com 12 rodadas anuais, distribuídas em módulos trimestrais, portanto a divisão recebe mensalmente grupos específicos de módulos conforme calendário anual. O material da rodada é enviado via sedex, entregue junto as Serviço de Protocolo do HC até no máximo a quarta-feira da semana programada, e o participante deve avisar o não recebimento, ou danos no material em até uma semana por e mail ([email protected] ) pelo telefone (021-3891-9900) ou pelo fax (021-3891-9901). DADOS DA RODADA Imprimir os formulários para transcrição dos resultados, os questionários, e dados relevantes a rodada. Distribuir junto com material do ensaio para a área executora. Indicar o prazo final para envio dos resultados. RECEBIMENTO DO KIT DE ENSAIO Conferir o Kit de ensaio e verificar se o material está condizente com documentação da rodada e se não há nenhum dano. Qualquer problema entrar em contato com a empresa
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P4
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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por email ([email protected]), pelo telefone (021-3891-9900) ou pelo fax (021-3891-9901). Checar na lista de verificação os itens: rodada, envio, participante e materiais enviados. Anotar a data de recebimento. Entregar o material e formulários ao responsável de cada área pelo gerenciamento do ensaio de proficiência. Carimbar e assinar a nota fiscal enviada juntamente com o material, e encaminhar para Divisão de Suprimentos para efetivação de pagamento. REALIZAÇÃO DAS ANÁLISES Realizar a análise correspondente a cada rodada no serviço executor do exame. Realizar as análises do controle sob as mesmas condições em que são executadas as amostras dos pacientes. Entrar no site da Controllab, acessar o sistema online entrar no item Entrada de Resultados e inserir resultados. Checar se Equipamentos e Reagentes estão inseridos adequadamente. Enviar resultados. ANÁLISE CRÍTICA MENSAL DE RESULTADOS Analisar todos os resultados dos Relatórios de Avaliação disponibilizados no site. Imprimir os relatórios de avaliação. Anotar em planilha de Analise de Resultados os resultados adequados e inadequados e os índices de desvio de cada análise. Discutir com a área inadequação de resultado. Aguardar envio pelas áreas da planilha de Análise de Resultados Inadequados devidamente preenchida. ANÁLISE ANUAL DE PARTICIPAÇÃO Avaliar o desempenho da Divisão nos doze meses do programa através do Sistema de Avaliação Gerencial. Listar as análises que não atingiram o índice de aproveitamento. Solicitar junto a Controllab o Kit de Recuperação para as análises que não obtiveram índice de aproveitamento. Proceder as análises e encaminhar resultados. Avaliar desempenho da divisão nas análises de recuperação.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P4
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçados fechados
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 004
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P5
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi e grupo de biossegurança da DPC
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P5 - BIOSSEGURANÇA
DEFINIÇÃO Medidas destinadas a reduzir ou eliminar riscos inerentes, gerados em diversas atividades, onde podem ocorrer o comprometimento da saúde do homem, animais e meio ambiente. Ações de Biossegurança devem fazer parte de conjunto de ações voltadas ao gerenciamento da qualidade. Biossegurança envolve: redução e prevenção de acidentes, instalações físicas, ergonomia, recursos humanos, treinamento e educação continuada. OBJETIVOS
Padronizar, normatizar e implementar procedimentos;
Identificar e classificar áreas de risco;
Estabelecer programas de treinamento;
Monitorar acidentes de trabalho. AGENTES DE RISCO
Físico;
Biológico;
Químico. TIPOS DE RISCO Acidentes: Qualquer fator que coloque o trabalhador em situação de perigo e possa afetar sua integridade, bem estar físico e moral. Ergonômicos: Qualquer fator que possa interferir nas características psicofisiológicas do profissional causando desconforto ou afetando sua saúde. Físicos: Riscos provocados por algum tipo de energia. Calor, frio, ruídos, vibrações, radiações ionizantes e não ionizantes e pressões anormais. Químicos: decorrem da exposição a agentes químicos no manuseio, preparo e descarte de soluções. Biológicos: probabilidade da exposição ocupacional a agente biológico e riscos que estes agentes podem representar a saúde do trabalhador.
RISCO BIOLÓGICO
CLASSIFICAÇÃO DE RISCO BIOLÓGICO
Classe I – baixo risco individual e para a comunidade;
Classe II – moderado risco individual e risco limitado para comunidade;
Classe III – alto risco individual e risco limitado para comunidade;
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi e grupo de biossegurança da DPC
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Classe IV – risco elevado individual e para comunidade. NÍVEL DE BIOSSEGURANÇA
Determinado segundo o organismo de maior Classe de Risco;
Define requisitos básicos para funcionamento de unidade assistencial;
As boas práticas são requeridas em todos os níveis de biossegurança. NB-1: uso de práticas biológicas padrão (Boas Práticas em Laboratório) NB-2: uso de práticas biológicas padrão e
Acesso limitado;
Sinalização da presença de risco biológico;
Precaução para perfurocortante;
Manual de Biossegurança definindo tratamento do lixo e políticas de vigilância médica;
Barreiras primárias (CSB I ou II) e EPI’s. NB-3: acesso controlado
Descontaminação do lixo;
Controle do risco ocupacional;
Barreiras primárias (CSB I ou II) e EPI’s;
Porta de acesso dupla;
Ar exaurido não deve ser recirculado;
Pressão negativa no interior do laboratório. NB-4: acesso restrito
Troca de roupas antes da entrada;
Banho na saída;
Todo material descontaminado;
Procedimentos em CSB III;
Construção separada ou zona isolada;
Suprimento e exaustão de ar exclusivos. CONDUTAS
Planejar e organizar atividades;
Utilizar corretamente equipamentos e instrumentos;
Seguir procedimentos de manuseio descritos (POP’s);
Analisar necessidade do uso de EPI’s e EPC’s;
Verificar sinais universais de risco químico, biológico e radioativo;
Treinamento adequado quanto a riscos associados às atividades;
Seguir procedimentos adequados na manipulação de animais.
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BOAS PRÁTICAS EM LABORATÓRIO CLÍNICO (BPLC’S) OBRIGATÓRIO
Uso de avental de manga longa;
Uso de sapatos fechados, luvas e óculos de proteção;
Manter cabelos longos presos;
Desinfetar superfície de trabalho;
Higienizar as mãos antes de calçar as luvas e após retirá-las. PROIBIDO
Comer, beber ou fumar nas áreas;
Aplicar cosméticos;
Manipular lentes de contato;
Usar avental fora do local de trabalho;
Pipetar com a boca;
Colocar objetos na boca;
Reencapar agulhas;
Manipular material não identificado;
Usar joias, bijouterias e adornos. EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAL Equipamentos de uso estritamente pessoal, destinado a proteção de riscos suscetíveis de ameaçar a segurança e saúde do trabalhador – avental, luvas, calçado, óculos, protetor facial, máscara e respiradores, touca. COLETIVO Equipamentos de uso coletivo, destinados à proteção dos profissionais e do meio ambiente contra agentes biológicos e substâncias químicas. Devem estar localizados em locais de fácil acesso e sinalizados – Lavaolhos, chuveiro de segurança, cabine de segurança, capela de exaustão, fluxo laminar, extintor de incêndio. VACINAS RECOMENDADAS
Hepatite B;
Atualização dupla-adulto (tétano e difteria);
Atualização – sarampo, caxumba e rubéola;
Varicela (catapora) para os que não apresentaram a doença.
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ACIDENTES COM RISCO BIOLÓGICO Exposição ao sangue e/ou fluidos corporais ou aerossóis potencialmente contaminantes, que podem acarretar infecções por diversos patógenos. Risco de desenvolvimento de doenças crônicas Hep C, Hep B, HIV, tuberculose. PREVENÇÃO DOS ACIDENTES COM RISCO BIOLÓGICO
Treinamento admissional do profissional;
Uso de EPI’s e EPC’s;
Realização de imunizações para doenças imunopreviníveis;
Realização de teste tuberculínico. EXPOSIÇÃO A SANGUE E FLUIDOS CORPORAIS
Interromper o procedimento;
Lavar o local afetado com água e sabão;
Contato com mucosa, lavar com soro fisiológico;
Comunicar supervisor;
Encaminhar profissional ao atendimento médico para avaliação e profilaxia específica pós-exposição.
EXPOSIÇÃO A AEROSSÓIS CONTAMINANTES
Segurar a respiração imediatamente;
Conter foco gerador;
Evacuar a sala;
Informar o acidente, manter a porta trancada por no mínimo 1hora (deposição de partículas geradas);
Limpeza terminal. CONDUTAS PÓS-EXPOSIÇÃO
Procurar o Cecon. No manual da Seção de Epidemiologia Hospitalar - CRIE consta link para acesso às informações sobre condutas imediatas após o acidente (crie.pdf);
Aos finais de semana, feriados e à noite encaminhar-se a UER;
Seguir Instrução Normativa DGRH 02/2012 de 25 de setembro de 2012 (http://www.dgrh.unicamp.br/documentos/instrucoes-normativas/instrucao-normativa-dgrh-no-002-2012).
RISCO QUÍMICO
ACIDENTES COM RISCO QUÍMICO Ao se manipular reagentes químicos ter sempre em mãos as FISPQ (Ficha de Instrução de Segurança para Produtos Químicos) para seguir condutas em caso de acidentes.
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PREVENÇÃO DOS ACIDENTES COM RISCO QUÍMICO
Elaboração de procedimentos padrão para manuseio e descarte;
Armazenamento adequado das substâncias químicas;
Acondicionamento adequado dos resíduos químicos;
Critérios para identificação e transporte;
Elaboração de Mapa de Risco. CONDUTAS PÓS-EXPOSIÇÃO
Notificar supervisor ou responsável;
Procurar ajuda médica se necessário (ter em mãos FISPQ);
Seguir Instrução Normativa DGRH 02/2012 de 25 de setembro de 2012 (http://www.dgrh.unicamp.br/documentos/instrucoes-normativas/instrucao-normativa-dgrh-no-002-2012).
RISCO ERGONÔMICO
ACIDENTES COM RISCO ERGONÔMICO EXEMPLOS DE RISCO ERGONÔMICO
Levantamento e transporte manual de peso;
Ritmo excessivo de trabalho;
Monotonia, repetitividade;
Responsabilidade excessiva;
Postura inadequada, mobiliário inadequado;
Privilégio da máquina ao profissional. MINIMIZAÇÃO DO RISCO ERGONÔMICO
Ginástica Laboral;
Sociabilização do serviço;
Definição de metas;
Educação Continuada;
Equipamentos adequados à postura.
PROTOCOLO DE CONDUTA EM CASO DE DERRAMAMENTO DE REAGENTE
QUÍMICO
OBJETIVO Estabelecer orientações a serem seguidas que garantam a segurança dos profissionais que manipulam reagentes químicos em caso de acidentes onde ocorra derramamento.
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APLICAÇÃO Aplica-se a todos os profissionais que manipulam reagentes químicos. EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAL A SEREM UTILIZADOS
Luvas de borracha nitrilica de cano longo;
Avental de PVC frontal;
Avental descartável bilaminado;
Botas de PVC;
Óculos de proteção ampla visão;
Respirador com manutenção e filtro químico multigás 3M® (proteção facial);
Protetor facial;
Respirador sem manutenção PFF2+VO. KIT PARA CONTENÇÃO
Vermiculita;
Areia e bicarbonato na proporção 1:1;
Vassoura;
Pá de lixo;
Saco de lixo preto;
Adesivo de reagente químico perigoso;
Caixa plástica de recolhimento. CONDUTA Em caso de acidente com derramamento de reagente químico seguir o seguinte procedimento:
Manter a calma;
Sair imediatamente do local do acidente;
Manter o local isolado e bem ventilado (abrir portas e janelas);
Dirigir-se ao armário de EPI’s e pegar EPI’s, Kit de Contenção e Protocolo de derramamento;
Verificar a Ficha de Instrução de Segurança de Produtos Químicos (FISPQ) do produto derramado.
Paramentar-se adequadamente com os EPI’s necessários:
Calçar as botas de PVC;
Vestir o avental de PVC frontal;
Colocar o respirador facial com o filtro apropriado e ajustá-lo corretamente a face para completa vedação;
Colocar óculos de proteção de ampla visão;
Calçar as luvas de borracha nitrílica de punho longo. Caso o reagente derramado não libere vapores tóxicos ou não tenha odor desagradável paramentar-se com:
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Calçar as botas de PVC;
Vestir o avental de PVC frontal;
Colocar respirador sem manutenção PFF2+VO;
Colocar o protetor facial ou óculos de proteção;
Calçar as luvas de borracha nitrilica de punho longo. Dirigir-se à área contaminada juntamente com o Kit de contenção. PARA DERRAMAMENTO DE SOLUÇÃO ÁCIDA
Dispor sobre o líquido derramado a areia + bicarbonato;
Aguardar a completa absorção do líquido pela areia;
Recolher o resíduo gerado com ajuda de vassoura e pá de lixo;
Colocar o resíduo em saco de plástico preto;
Colocar o saco com o resíduo em uma caixa de papelão para descarte como lixo comum;
Acionar funcionário da limpadora para limpeza final. PARA DERRAMAMENTO DE SOLUÇÃO BÁSICA
Dispor sobre o líquido derramado a vermiculita;
Aguardar a completa absorção do líquido pela vermiculita;
Recolher o resíduo gerado com ajuda de vassoura e pá de lixo;
Colocar o resíduo em saco de plástico preto;
Colocar o saco com o resíduo em uma caixa de papelão identificada como resíduo químico para posterior tratamento (não permitir que funcionários da limpadora retirem este material);
Acionar funcionário da limpadora para limpeza final. PARA DERRAMAMENTO DE SOLUÇÕES ORGÂNICAS
Dispor sobre o líquido derramado a vermiculita;
Aguardar a completa absorção do líquido pela vermiculita;
Recolher o resíduo gerado com ajuda de vassoura e pá de lixo;
Colocar o resíduo em saco de plástico laranja;
Colocar o saco com o resíduo em uma caixa de papelão identificada como resíduo químico para posterior encaminhamento a sala de resíduos juntamente com planilha de inventário de resíduo químico preenchida.
OBSERVAÇÕES IMPORTANTES
Todo o procedimento deverá ser realizado com acompanhamento de um observador/vigia para em caso de emergência com o profissional que está realizando o procedimento, o socorro seja imediato;
Não utilizar água para dispersar o reagente.
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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TRANSPORTE INTERNO Encaminhar a caixa de papelão contendo resíduo orgânico juntamente com a planilha de inventário de resíduo químico preenchida a sala de resíduos químicos. TRANSPORTE EXTERNO Contratados pela Universidade por meio de edital de licitação - transporte de resíduos perigosos. É necessário no transporte plano de contenção e providências no caso de derramamento dos resíduos DEMAIS SOLUÇÕES Para Soluções de Sais, tais como:
Solução de Cloreto de Sódio, de Cálcio, de Potássio e outros cátions;
Solução de Carbonato de Sódio, de Cálcio, de Potássio, de Magnésio e outros cátions;
Solução de Sulfato de Sódio, de Cálcio, de Potássio, de Magnésio e outros cátions;
Solução de Fosfato de Sódio, de Cálcio, de Potássio, de Magnésio e outros cátions;
Solução de Permanganato de Sódio, de Cálcio, de Potássio, de Magnésio e outros cátions.
Procedimento:
Com o uso de luvas nitrílicas dispor sobre o líquido derramado papel absorvente (papel toalha), deixar absorver, recolher o papel e colocar em lixo comum;
Acionar funcionário da limpadora para limpeza final. REAGENTES QUÍMICOS
ÌNORGÂNICOS - ÁCIDOS
Ácido Clorídrico (HCl);
Ácido Sulfúrico (H2 SO4);
Ácido Muriático;
Ácido Ortofosfórico;
Ácido Perclórico;
Ácido Nítrico (HNO3);
Ácido Bórico.
INORGÂNICOS – BÁSICOS
Solução de Hidróxido de Sódio (NaOH);
Solução de Hidróxido de Potássio (KOH);
Solução de Hidróxido de Amônio (NH4OH);
Solução de Hidróxido de Cálcio (Ca(OH)2). continua
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi e grupo de biossegurança da DPC
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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ORGÂNICOS
Acetona Acetato de Etila Álcool Etílico (Etanol) Álcool Metílico (Metanol) Álcool Isobutílico (Isobutanol) Álcool Propílico (Propanol) Álcool Isopropílico (Isopropanol) Ácido Acético (procedimento p/ inorgânico ácido) Éter Sulfúrico Éter Etílico Anidrido Acético Ácido Cítrico Anidro Ácido Ascórbico Ácido Lático Ácido Oxálico Ácido Pícrico Ácido Fênico (Fenol) Ácido Nitrobenzoico
Ácido Piruvico Ácido Sulfanilico Benzeno Brometo de Etídio Clorofórmio Xileno (Xilol) Dimetil Sulfóxido Etilenoglicol Formaldeído Metil Isobutilcetona N acetil N-N-N- trimetil amônio brometo Monotioglicerol Vaselina Glicerina Tween 80 Nujol Diocianeto de Cobinamida Diclorometano Ditiotreitol
ORGÂNICOS - CORANTES
Solução de Azul de Algodão Solução de Azul de Bromofenol Solução de Azul de Metileno Solução de Azul de Timol Solução de Azul de Toluidina Solução de Cristal de Violeta Solução de Azul de Bromocresol
Solução de Eosina Solução de Fucsina Solução de Fucsina Ácida Solução de Púrpura de Bromocresol Solução de Safranina Solução de Verde de Malaquita Solução de Vermelho de Fenol
EPI’S DISPONIBILIZADOS NA DPC PARA CASOS DE DERRAMAMENTO
2 pares de luvas nitrílicas de cano longo Tamanho M;
2 pares de luvas nitrílicas de cano longo Tamanho G;
1 par de luvas Kevlar;
2 aventais de PVC sem manga;
2 aventais descartáveis bilaminados;
1 respirador facial;
2 pares de filtro multigás 3M®;
2 respiradores sem manutenção PFF2+VO;
1 óculos de proteção amplavisão;
1 protetor facial;
1 par de botas de PVC Tamanho 40.
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o: 004
Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P5
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi e grupo de biossegurança da DPC
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Observações:
Sempre que houver um acidente com reagente químico onde haja derramamento e os EPI’s e Kit de contenção forem utilizados deve-se comunicar a administração para que haja a reposição daquilo que se fizer necessário
O armário de EPI’s encontra-se no corredor principal da Divisão de Patologia Clínica e a chave ficará na Central de Separação e Distribuição de Amostras.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Descritos acima. As áreas analíticas da DPC são de acesso restrito. O acesso de pessoas externas deve ocorrer mediante autorização.
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P6
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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PC.P6 – ÁGUA REAGENTE
INTRODUÇÃO A água do abastecimento normalmente apresenta constituintes que podem ser considerados contaminantes na dependência de sua concentração. Os requisitos para qualidade da água variam de acordo com o uso pretendido. Qualquer sistema de obtenção de água grau reagente é aceitável desde que os requisitos da qualidade sejam atingidos. Processos de Purificação da Água Não há um processo específico recomendado para produção de água reagente. Um processo simples como a destilação ou mais elaborado como a osmose reversa, pode ser usado satisfatoriamente, desde que o produto final atenda as especificações determinadas pelas Normas Internacionais. CLASSIFICAÇÃO DE ÁGUA REAGENTE
CLRW - Clinical Laboratory Reagent Water (Água Reagente para Laboratório Clínico);
IFW - Instrument Feed Water (Água para alimentação de instrumentos);
SRW – Special Reagent Water (Água Reagente Especial). Parâmentros de Qualidade
Parâmetro da Qualidade CLRW IFW SRW
Resistividade (MΩ/cm a 25ºC) >10 >1 >18,2
Contagem Microbiológica (UFC/mL) <10 <10 <10
TOC ppb <500 <500 <50
Particulado Filtro de bloqueio
≥0,22 -
Filtro de bloqueio
≥0,22 <0,1
CONTROLE INTERNO DA QUALIDADE
Resistividade – Medição da Resistividade em (MΩ/cm) ou Condutividade em Siemens (S). A medição é feita de forma contínua, devendo ser medida e anotada diariamente no início das atividades do Laboratório. o Equipamentos com condutivímetro: ler no display do equipamneto durante a
produção o valor da resistividade. o Equipamentos sem condutivimetro: o fazer a leitura com condutivímetro de
bancada.
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Data: 02/01/2013
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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Controle Microbiológico - Apesar de ser um controle retrospectivo, fornece ao laboratório dados para detectar tendências e problemas decorrentes da presença de bactérias na água. Deve ser feito semanalmente e preferencialmente após manutenção do equipamento. O controle microbiológico da água é definido como Unidades Formadoras de Colônia por mL de água (UFC/mL).
PROGRAMA DE MANUTENÇÃO PREVENTIVA As áreas que possuem equipamento de produção de água purificada devem manter um programa de Manutenção Preventiva dos equipamentos AÇÕES CORRETIVAS O responsável deverá avaliar a planilha de registro dos parâmetros da qualidade e proceder às ações corretivas quando estes estiverem fora do padronizado.
Resistividade: verificar necessidade de troca de filtros
Controle microbiológico: verificar a tecnica da coleta da amostra de água, necessidade de descontaminação do reservatório, necessidade de troca de filtro.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Não se aplica Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P7
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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PC.P7 – LAVAGEM DE MATERIAL
LIMPEZA Consiste na remoção da sujidade utilizando-se meios mecânicos (fricção), físicos (temperatura) e/ou químicos (soluções detergentes, desincrostantes ou enzimáticas). O emprego associado de todas estas formas de energia aumenta a eficiência da limpeza DESINFECÇÃO Processo que elimina micro-organismos na forma vegetativa, excetuando-se os esporos bacterianos. Pode ser realizada através de processos químicos ou físicos. DESINFETANTES São agentes químicos capazes de destruir micro-organismos na forma vegetativa em artigos, sendo divididos segundo seu nível de atividade. DETERGENTES São substâncias tensoativas que possuem como finalidade a limpeza, através da redução da tensão superficial da água, facilitando sua penetração, dispersando e emulsificando a sujidade. LAVAGEM MANUAL É um procedimento realizado manualmente onde a sujidade é removida por meio da ação física com auxílio de detergente, água e artefatos como escova, esponja, cepilho. Deve ser realizada por profissional treinado para a função. Para lavagem, usar detergente neutro ou enzimático que não danifique o material. Oferece maior risco de contaminação ao profissional, por respingos de matéria orgânica em mucosas ou acidente com material perfurocortante, portanto se faz necessário o uso de equipamentos de proteção. Desprezar toda a matéria orgânica contida no material e imergir em solução de água e detergente (na concentração definida pelo fabricante). Efetuar limpeza minuciosa, utilizando escovas e esponjas. Enxaguar abundantemente em água potável corrente. Observação: A água utilizada no preparo de solução ou enxágue do material deve ser livre de metais pesados e impurezas para evitar a contaminação após a lavagem, portanto a água potável é adequada para este tipo de procedimento. Colocar em estufa à 37ºC para secagem. Pipetas de vidro devem ser colocadas de molho em dispenser apropriado e depois lavadas em água corrente. Placas e tubos de cultura, assim como todos os insumos utilizados em laboratório de microbiologia devem ser autoclavados antes de serem lavados.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P7
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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Ponteiras e insumos plásticos devem ser descartados, na medida do possível. Procedimentos de lavagem especiais de materiais devem ser descritos pelos serviços que os utilizam.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Luvas de borracha nitrílica, sapatos fechados, avental de PVC, óculos de proteção, respirador sem manutenção PFF2+VO.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P8
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P8 - MANUTENÇÃO DE EQUIPAMENTOS E INSTRUMENTOS
OBJETIVO Controlar, calibrar e manter em condições técnicas ideais de funcionamento, todos os equipamentos e instrumentos utilizados no laboratório, visando assegurar boa performance para as análises executadas. DEFINIÇÕES Instrumento Laboratorial: dispositivos empregados pelo laboratório clínico que auxiliam na execução de uma tarefa analítica. Equipamento Laboratorial: dispositivo empregado pelo laboratório clínico como parte integrante do processo de realização de análises laboratoriais. Equipamentos/Instrumentos Patrimoniados: são aqueles que pertencem ao serviço e tem seus programas de manutenção preventiva e corretiva executadas pelo CEB. Estes equipamentos possuem PI. Equipamentos/Instrumentos não Patrimoniados: são aqueles mantidos no serviço por contrato de locação e seus programas de manutenções preventivas e corretivas são executados pela empresa. PROGRAMA DE MANUTENÇÕES
IDENTIFICAÇÃO Identificar todos os equipamentos e instrumentos (patrimoniados ou não) das áreas. Relacionar o equipamento ou instrumento e numerar em ordem sequencial crescente. Listar em planilha por área esta relação. MANUTENÇÃO PREVENTIVA DE EQUIPAMENTOS PATRIMONIADOS Realizada anualmente mediante cronograma prévio pelo Centro de Engenharia Biomédica, normalmente no período de abril a setembro podendo este prazo ser prorrogado. São avaliadas as condições dos equipamentos/instrumentos. Se houver necessidade é aberta uma OS (Ordem de Serviço) para manutenção corretiva e o equipamento/instrumento é encaminhado ao CEB. Caso não haja necessidade de nenhuma intervenção, é colocada uma etiqueta adesiva, indicando a vistoria realizada, a data e o status do equipamento. O relatório gerado é arquivado junto ao CEB e fornecida cópia à Divisão.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P8
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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MANUTENÇÃO CORRETIVA DE EQUIPAMENTOS PATRIMONIADOS Realizar sempre que ocorrer quebras nos equipamentos/instrumentos. Abrir OS (Ordem de Serviço) para conserto junto ao CEB por telefone. Registrar a solicitação da manutenção corretiva e também o relatório da intervenção técnica realizada em planilhas próprias. Sinalizar claramente os equipamentos com dizeres que alertem sobre o estado do equipamento enquanto ele permanecer parado. MANUTENÇÃO PREVENTIVA DE EQUIPAMENTOS EM LOCAÇÃO Estipular no contrato de locação a periodicidade que as manutenções preventivas deverão ocorrer. Acordar o cronograma de manutenções entre empresa e serviço usuário (agendamento de data e horário). Preencher e arquivar relatório de manutenção preventiva. MANUTENÇÃO CORRETIVA DE EQUIPAMENTOS EM LOCAÇÃO Acionar por telefone ou fax a assistência técnica quando houver algum tipo de problema com o equipamento. Estipular prazo de atendimento. Preencher e arquivar relatório de manutenção corretiva.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Não se aplica Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
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o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P9
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P9 – LIMPEZA DE ÁREAS E SUPERFÍCIES
PROGRAMA DE LIMPEZA DE ÁREAS Realizada por funcionários da Limpadora Terceirizada. LIMPEZA TERMINAL: É o procedimento de limpeza e/ou desinfecção de todas as áreas hospitalares, objetivando a redução da sujidade e, consequentemente da população microbiana, reduzindo a possibilidade de contaminação ambiental. É realizado periodicamente de acordo com a criticidade das áreas (crítica, semicrítica e nãocrítica), com data, dia da semana e horário pré-estabelecido em cronograma anual. Inclui todas as superfícies e mobiliários. Seguir padronização de cronograma, técnica, materiais e produtos definidos pelo Serviço de Hotelaria - Higiene e Limpeza do HC. Obedecer sempre a sequência do mais limpo para o mais sujo, ou seja, do teto para o piso e de dentro para fora. LIMPEZA CONCORRENTE É o processo de limpeza diária de todas as áreas hospitalares, objetivando a manutenção do asseio, abastecimento e reposição dos materiais de consumo diário (sabonete, papel higiênico, papel toalha, sacos de lixo etc), coleta de resíduos de acordo com a sua classificação, e higienização molhada dos banheiros, proporcionando ambiente limpo e agradável. Executada em todas as áreas e turnos. ELABORAÇÃO DE CRONOGRAMA DE LIMPEZA DE ÁREAS Mensalmente é elaborado cronograma para limpezas terminais nas áreas a ser executada por funcionários da Limpadora. A verificação do procedimento é acompanhada por supervisor da área ou funcionário por ele indicado. LIMPEZA DE INSTRUMENTOS As superfícies de trabalho devem ser desinfetadas com álcool 70%, antes e após o inicio do trabalho. Os instrumentos devem ser limpos conforme programa estabelecido abaixo.
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o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P9
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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PROGRAMA DE LIMPEZA E DESINFECÇÃO
Equipamentos/
Instalações Frequência
Material para
limpeza Modo da Limpeza
Equipamentos Programa de
manutenções de
equipamento
Vide Programa de
manutenção do
Equipamento
Vide Programa de
manutenção do
Equipamento
Banho Maria Mensal Água e sabão
Retirar a água
Esfregar/enxaguar
Manter seco até o uso
Centrífugas
Mensal Água e sabão
Álcool 70%
Parte interna e tubos
Esfregar/enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Após contaminação Água e sabão
Álcool 70%
Remover matéria orgânica
Esfregar/enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Cabine de Segurança
Biológica (CSB) Antes e após uso
Água e sabão
Álcool 70%
Esfregar/enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Refrigerador e freezer Trimestral Água e sabão
Álcool 70%
Transferir conteúdo
Degelar
Esfregar/ enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Bancadas
Diária Água e sabão
Álcool 70%
Esfregar/enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Após contaminação Água e sabão
Álcool 70%
Remover matéria orgânica
Esfregar/enxaguar/secar
Fricção por 2 min
Pias Diária Água e sabão
Álcool 70%
Esfregar/enxaguar
Fricção 2 min até secar
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P9
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso
Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.P10 – LABORATÓRIOS EXTERNOS DE APOIO
ORIENTAÇÕES GERAIS
OBJETIVO Estabelecer padronização para recebimento e envio de material biológico para realização de exames em Laboratórios de Apoio Aplica-se ao procedimento de recepção e envio de material biológico para Laboratórios de Apoio pelo Serviço de Coleta, Central de Recepção e Separação de Amostras, Serviço de Imunologia, Serviço Microbiologia e Secretaria da Divisão de Patologia Clínica /HC – UNICAMP.
LABORATÓRIOS DE APOIO E CÓDIGOS
Laboratório Fleury
Laboratório Criesp
Instituto de Medicina tropical
Instituto Pasteur
Laboratório Balaguè Center do Brasil
Laboratório SENNE Liquor
Laboratório de Investigações Neurológicas- LIN15
Laboratório de Doenças de Lyme (Borrelia)
Laboratório de Vírus/ USP – Parvovirose
Instituto Adolfo Lutz São Paulo
Instituto Adolfo Lutz Campinas
534
535
533
532
544
549
548
548
553
530
531
RECEBIMENTO DO MATERIAL
Receber e conferir o material de acordo com os exames solicitados;
Conferir se consta na solicitação Médica a autorização da Coordenadoria de Assistência para a realização do exame (quando necessário);
Conferir se está solicitado em formulário dos Laboratórios de Apoio (quando necessário);
Conferir se consta na solicitação Médica o histórico do paciente (quando necessário).
INCLUSÃO NO SISTEMA DE INFORMÁTICA
Fazer uma requisição para cada exame solicitado, independente do exame ir para o mesmo laboratório;
Entrar no sistema de informática da Divisão;
Entrar em Requisitar exames CENTRAL OU COLETA;
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Digitar HC ou Pré Matrícula;
Informar código da unidade se não for paciente internado;
Informar CRM do médico solicitante;
Informar dados clínicos;
Clicar no campo LAB EXTERNO e digitar o código do Laboratório de Apoio;
Clicar no campo N.º EXTERNO digitar o código do Laboratório de Apoio;
No campo PROCEDIMENTO clicar – ROTINA;
No campo EXAME digitar EXTERNO;
No campo MATERIAL digitar o tipo do material biológico enviado;
No campo OBS do MATERIAL digitar exame solicitado;
Clicar em selecionar exames;
Encerrar procedimento padrão para emissão de planilha e etiqueta;
Encaminhar material, planilha emitida e requisição original para serviço de destino para posterior envio ao laboratório de Apoio.
RECEBIMENTO DO LAUDO
Anotar o número do prontuário (HC) do paciente no laudo original;
Xerocar todos os resultados;
Enviar o laudo original para SAM que anexará à pasta do paciente;
Informar pelo Sistema de laboratório que o exame encontra-se no SAM e liberar;
Arquivar o xerox do laudo em pasta arquivo na sala de digitação. ENVIO DO MATERIAL
Solicitar caixa de transporte se necessário;
Acondicionar o material de acordo com procedimento padronizado pelo laboratório de apoio para tipo de exame a ser realizado;
Solicitar à secretaria para agendar retirada do material pelo laboratório de apoio (quando o lab de apoio faz a retirada);
Solicitar à secretaria para agendar o Transporte do HC e providenciar o roteiro do transporte (quando o lab de apoio não faz a retirada) de acordo com os dias pré-estabelecidos para encaminhamento;
Xerocar a solicitação original do exame e datar para comprovação do dia do envio do material;
Arquivar o xerox na pasta de Transporte.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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LABORATÓRIOS EXTERNOS – ORIENTAÇÕES ESPECÍFICAS
LABORATÓRIO FLEURY cod 534 TELEFONE PARA CONTATO 0800-7041110
1. Encaminhar material biológico mediante autorização fornecida pela Coordenadoria de Assistência na própria requisição (carimbo do Coordenador de Assistência);
2. Material biológico deve ser acondicionado conforme procedimento fornecido pelo Laboratório FLEURY (http://www.laboratoriofleury.com.br/);
3. Retirada do material deve ser feita pelo Laboratório FLEURY mediante agendamento, as segundas, quartas e sextas-feiras.
LABORATÒRIO CRIESP Cod 535 TELEFONE PARA CONTATO (11) 5095-2518 / (19) 3237-6296
1. Encaminhar material biológico mediante autorização fornecida pela Coordenadoria de Assistência na própria requisição (carimbo do Coordenador de Assistência);
2. Material biológico deve ser acondicionado conforme procedimento fornecido pelo Laboratório CRIESP (procedimento na secretaria da Divisão);
3. Retirada do material deve ser feita pelo Laboratório CRIESP mediante agendamento, às segundas, e sextas – feiras.
INSTITUTO PASTEUR cod 532 TELEFONE DE CONTATO (11) 3288-0088
1. Encaminhar material biológico com formulário do Instituto Pasteur preenchido (formulário fornecido pelo NVE);
2. Acondicionar e enviar conforme procedimento fornecido pelo Instituto Pasteur ao médico solicitante.
3. Envio do material deve ser feito pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras
Sorologia para Raiva.
INSTITUTO DE MEDICINA TROPICAL Cod 533 TELEFONE DE CONTATO: (11) 3061-7456 / 7031 / 7032 AV. ENÉAS DE CARVALHO AGUIAR, 470, CERQUEIRA CÉSAR, SÃO PAULO
1. Encaminhar material biológico mediante pedido médico do HC e histórico do paciente; 2. Material biológico deve ser acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo
Instituto de Medicina Tropical ao médico solicitante; 3. Envio do material deve ser feita pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do
roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras
Detecção Qualitativa do Vírus da Hepatite B (HVB).
LABORATÓRIO BALAGUÉ CENTER DO BRASIL Cod 544 TELEFONE DE CONTATO: (011) 3049-0800; JERÔNIMO RIBEIRO (019) 3258-7836
1. Encaminhar material biológico mediante autorização fornecida pela Coordenadoria de Assistência na própria requisição (carimbo do Coordenador de Assistência);
2. Material biológico deve ser acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo Laboratório Balaguè Center do Brasil;
3. Retirada do material deve ser feito pelo Laboratório Balaguè Center do Brasil conforme solicitação.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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LABORATÓRIO SENNE LÍQUOR Cod 549 TELEFONE DE CONTATO: (011) 3287-4355
1. Encaminhar material biológico mediante autorização fornecida pela Coordenadoria de Assistência na própria requisição (carimbo do Coordenador de Assistência), anexado ao pedido médico do HC e o histórico do paciente;
2. Material biológico deve ser acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo Laboratório SENNE ao médico solicitante;
3. Envio do material deve ser feito pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras
Exames realizados: Sorologia para Herpes Dosagem de ANTI HTLV2.
INSTITUTO ADOLFO LUTZ SÃO PAULO Cod 530 TELEFONE PARA CONTATO: (011) 3068-2800, 3068-2913 (PARA SOLOGIA DE CAXUMBA), 3068-2906 (SETOR DE VIROLOGIA) INSTITUTO ADOLFO LUTZ CAMPINAS Cod 531 TELEFONE PARA CONTATO: (019)3272-7977/ 3272-2885 (SOROLOGIA)
1. Encaminhar material biológico mediante formulário do HC com símbolo do Adolfo Lutz; 2. Solicitar somente um exame para cada pedido que deverá conter o carimbo e assinatura do
médico requisitante; 3. Material biológico deve ser acondicionado e enviado de acordo com procedimento
padronizado pelo Instituto Adolfo Lutz; 4. Envio do material deve ser feito pelo Transportes-HC mediante a solicitação da Divisão e
fornecimento do protocolo de entraga, em 3 vias:
Uma via é para Transportes acusar recebimento do material (arquivada na secretaria);
Duas vias seguem com material sendo que em uma delas o Instituto Adolfo Lutz acusará o recebimento (arquivada no Transportes-HC);
5. Transporte para São Paulo deve ser feito todas às quintas – feiras e para Campinas as segundas, quartas, quintas e sextas feira;
Exames Realizados em São Paulo: o Sorologia para Toxocariase; o Sorologia para Caxumba; o Sorologia para Hantavirus; o Sorologia para Ricketsia- Febre Maculosa; o Cultura para Ricketsia - coágulo e pele; o Sorologia para Leishmaniose; o Pesquisa de Rotavírus; o Sorologia para Histoplasmose; o Pesquisa de Virus para Poliomielite; o Sorologia para Herpes: Encefalite ou Infecção Congênita.
Exames Realizados em Campinas: o Identificação de Micobactéria (Cepa); o Sorologia para Dengue; o Sorologia para Sarampo; o Sorologia para Leptospirose; o Reação de Widall; o Contra Imuno Eletroforese – LCR.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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LABORATÓRIO DE INVESTIGAÇÕES NEUROLÓGICAS – LIN 15 Cod 548 CONTATO: DRA. NANCY HUANG - RUA DR. ARNALDO, 455, 4°ANDAR, SALA 4110
1. Encaminhar material biológico mediante pedido médico do HC e histórico do paciente; 2. Material biológico deve ser acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo
Laboratório LIN - 15 ao médico solicitante; 3. Envio do material deve ser feito pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do
roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras.
Pesquisa da Proteína 14-3-3 Encefalopatia espongiforme – Doença de Creutzfeld Jacob (vaca louca).
LABORATÓRIO DE DOENÇAS DE LYME (BORRELIA) Cod 548 TELEFONE DE CONTATO: (011) 3061-7496 / 3061-7490 AV. DR. ARNALDO 455, 3º ANDAR, SALA 3139
1. Encaminhar material biológico mediante pedido médico do HC e histórico do paciente; 2. Material biológico deve ser acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo
Laboratório de Doença de Lyme ao médico solicitante; 3. Envio do material deve ser feita pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do
roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras
Sorologia para Borrelia.
LABORATÓRIO DE VIRUS/USP PARVOVÍRUS Cod 553 TELEFONE DE CONTATO: (011) 3091-7293 - ENDEREÇO: AV. LINEU PRESTES, Nº 1374 EDIFÍCIO BIOMÉDICAS II (ICB II), 2º ANDAR – LABORATÓRIO DO PROF. EDSON LUIS DURIGON
3. Encaminhar material biológico mediante pedido médico do HC e histórico do paciente; 4. Material biológico é acondicionado e enviado conforme procedimento fornecido pelo
Laboratório de Virus/USP ao médico solicitante; 5. Envio do material deve ser feito pelo Transportes-HC mediante solicitação e fornecimento do
roteiro elaborado pela secretaria da DPC – sempre às quartas-feiras
Sorologia para Parvovírus.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P10
Grupo responsável pela elaboração Márcia Victor, Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 51 -
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 52 -
2. ORIENTAÇÕES SOBRE EXAMES PARA A EQUIPE DE SAÚDE DO HC-UNICAMP
PC.P11 – TABELA COM OS EXAMES REALIZADOS PELA DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA - HC (atualizada)
(EM ORDEM ALFABÉTICA PELO NOME DO EXAME)
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
17OHPROG 17ALFA HIDROXIPROGESTERONA, HORMÔNIO SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de hiperplasia adrenal congênita, formas clássicas e tardias.
Sangue, frasco sem anticoagulante. Coletar entre 8:00 e 10:00 horas da manhã.
Jejum de 4 horas. Informar o dia do ciclo menstrual e uso de medicamen-tos
Lipemia. Uso de hormônios esteroides. Horário de coleta.
Radioimuno-ensaio (Iodo 125).
Até 15 dias.
TD17OHPROG 17OHPROG, TESTE DINÂMICO, HORMÔNIOSANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de hiperplasia adrenal congênita, formas clássicas e tardias. Diagnóstico de deficiência na via de biosíntese do cortisol. Estímulo com ACTH para pacientes com deficiência de 21-hidroxilase.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar entre 8:00 e 10:00 horas da manhã. Coleta basal e após infusão de ACTH: - 17OHPROG (17OHProg Basal) - 17OHPROG60
Jejum de 4 horas. Informar o dia do ciclo menstrual e uso de medicamen-tos
Lipemia. Uso de hormônios esteroides. Horário de coleta.
Radioimuno-ensaio (Iodo 125).
Até 15 dias.
VITD 25 HIDROXI VITAMINA D
FISIOLOGIA A dosagem tem sua maior indicação na definição de estados de carência de vitamina D, especialmente em crianças, idosos e portadores de osteoporose. A deficiência de vitamina D pode estar associada ao hiperparatireoidismo secundário, a perda óssea e à distúrbios de mineralização óssea. O aumento dos níveis de PTH, especialmente em adultos idosos, com deficiência em vitamina D pode ser utilizada como um auxiliar na avaliação do metabolismo ósseo. O exame também é útil na avaliação da hipercalcemia, quando pode estabelecer ou excluir a possibilidade de intoxicação por vitamina D.
Sangue, frasco sem anticoagulante. Proteger da luz envolvendo em papel laminado ou carbono.
Jejum de 4 horas. Uso de calciferol, colesterolemia e hiperuricemia.
Eletroquimiolu-minescência
Até 7 dias
ACF
ÁCIDO FÓLICO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial das anemias megaloblásticas; síndrome de má absorção e monitoramento de anticonvulsivante (difenilhidantoina).
Sangue, frasco sem anticoagulante Proteger da luz envolvendo em papel laminado ou carbono.
Jejum de 4 horas, dieta seguindo instruções médica.
Lipemia, icterícia, hemólise, exposi-ção do material a luminosidade, alcoolismo e methotrexato ou leucoverina
Imunoensaio/ Eletroquimiolu-minescência
Até 7 dias.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 53 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
URAC ÁCIDO ÚRICO, SANGUE.
BIOQUIMICA As determinações de ácido úrico são usadas no diagnóstico e tratamento de diversas perturbações renais e metabólicas, incluindo insuficiência renal, gota, leucemia, psoríase, subnutrição ou outras doenças que provocam fraqueza
geral, e de doentes a receber fármacos citotóxicos.
Sangue: frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Ácido Ascórbico, quando superior a 30 mg/dL..
Enzimático, Uricase
No mesmo dia da coleta
URACURI ÁCIDO ÚRICO, URINA
BIOQUIMICA O teste é útil no diagnóstico das hiperuricosúrias, encontrando sua indicação principal na propedêutica do paciente calculoso.
Urina amostra isolada e recente Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Concentrações elevadas de ácido homogentísico em amostras de urina produzem resultados falsos.
Enzimático, Uricase
No mesmo dia da coleta
VALP ACIDO VALPROICO DOSAGEM
BIOQUIMICA Monitoramento terapêutico. Controle de nível terapêutico. Sangue, frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia
Hemólise >1000 mg/dL (++++), Bilirrubina > 80 mg/dL, Triglicérides > 3000 mg/dL
Imunoensaio de inibição turbidimétrico
No mesmo dia da coleta
VMA
ÁCIDO VANILMANDÉLICO, URINA
FISIOLOGIA Diagnóstico etiológico de hipertensão arterial, segmento de feocromocitoma, neuroblastoma e ganglioneuroblastoma.
Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Dieta hipofenó-lica no dia da coleta e nos três dias que antecedem a coleta de urina. Não ingerir: café, chá, chocolate, refrigerantes, bananas, doces ou qualquer alimento que contenha baunilha.
Alimentação hiperfenólica. Colorimétrico/ Pisano modificado.
Até 30 dias.
ADALPL ADENOSINA DE AMINASE, ATIVIDADE, LÍQUIDO PLEURAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Método auxiliar na investigação de tuberculose pleural. Líquido pleural. Coletar em frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Hemólise ou predomínio de neutrófilos.
Giusti modificado.
Até 7 dias
ADALAS ADENOSINA DE AMINASE, ATIVIDADE, LÍQUIDOS
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Método auxiliar na investigação de tuberculose peritoneal. Líquido peritoneal. Coletar em frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Material hemolisado ou com predomínio de neutrófilos.
Giusti modificado.
Até 7 dias
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Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 54 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
ADALCR ADENOSINA DE AMINASE, ATIVIDADE, LIQUOR
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Método auxiliar na investigação de neurotuberculose. Líquor. Coletar através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
LCR hemorrágico ou com predomínio de neutrófilos.
Giusti modificado. Até 7 dias
ALT ALANINA AMINOTRANSFERASE (ALT), SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças hepatobiliares, pancreáticas, musculares, hemolíticas. Níveis elevados de transaminases podem indicar enfarte do miocárdio, hepatopatia, distrofia muscular e lesões orgânicas.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Cinético (sem Piridoxal Fosfato ).
No mesmo dia da coleta
LIQALB ALBUMINA, LÍQUIDO PLEURAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação da etiologia dos derrames peritoneais. Líquido peritonial e sangue Frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Hemólise e material lipêmico. Colorimétrico (verde de bromocresol)/ Automatizado.
No mesmo dia da coleta
ALBLCRSG ALBUMINA, RELAÇÃO LCR, SANGUE.
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação de permeabilidade de barreira hemato-encefálica. Sangue, frasco sem anticoagulante Líquor. Coletar através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia em frasco estéril. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente oa laboratório. Indicar local de punção.
Jejum de 4 horas para coleta de sangue.
Hemólise e lipemia. Nefelometria. Até 3 dias
ALB ALBUMINA, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de estados em que há perda ou excesso de água plasmática; processos inflamatórios agudos ou crônicos; queda na síntese hepática; aumento do catabolismo proteico.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Colorimétrico (verde de bromocresol)/
No mesmo dia da coleta
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30/04/2009
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o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 55 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
ALDO ALDOSTERONA, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial de hipertensão arterial: hiperaldosteronismo primário ou secundário e distúrbios eletrolíticos, quando associados à avaliação da atividade renina-angiotensina plasmática.
Sangue, frasco sem anticoagulante Indicar postura do paciente, coletar entre 8:00 e 10:00hs. Coletar em repouso ou após 2 horas em posição ortostática.
Jejum de 4 horas. Informar se está em uso de dieta hipossódica (restrição de sal).
Postura do paciente dieta, medicação e hora do dia.
Radioimunoensaio (Iodo125).
Até 30 dias.
ALFA1 ALFA 1 ANTITRIPSINA DETERMINA- ÇÃO QUANTITA-TIVA,
SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de deficiência congênita de alfa-1 antitripsina e como proteína de fase aguda da inflamação.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Uso de contraceptivos orais, lipemia e hemólise.
Nefelometria. Até 7 dias
ALFA1GLI ALFA 1 GLICO PROTEÍNA ÁCIDA, SANGUE
BIOQUIMICA Utilizada no acompanhamento de processos inflamatórios, infecciosos, proliferativos e degenerativos.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Nefelometria. Até 8 dias
A1M ALFA 1 MICRO GLOBULINA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação de proteinúria tubular. Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã.
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Não identificados. Nefelometria Até 3 dias
AFP ALFA FETO PROTEÍNA
FISIOLOGIA Marcador tumoral de hepatomas e alguns tumores de testículo e trato intestinal; identificação de feto portador de anormalidades do tubo neural.
Sangue, frasco sem anticoagulante Líquor. Coletar através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia em frasco estéril. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente ao laboratório. Indicar local de punção.
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimio luminescência.
Até 2 dias
AMEBAS AMEBAS DE VIDA LIVRE, PESQUISA E CULTURA
PARASITOLOGIA Auxílio no diagnóstico de meningoencefalites e queratites por amebas de vida livre.
Líquor, raspado e biópsia de córnea. Solicitar frasco contendo salina estéril ao laboratório de Parasitologia com antecedência.
Sem preparação prévia.
No caso de biópsia de córnea ou raspado, líquido conservante inadequado pode interferir.
Pesquisa direta e cultura em meio apropriado.
Até 7 dias
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30/04/2009
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Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 56 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PAM AMEBAS, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Diagnóstico de amebíase (Entamoeba histolytica) e outros protozoários intestinais.
Fezes, muco de ulcerações e material de abcesso. Fezes e muco colhidos direto das ulcerações em tempo não superior a 20 minutos; material de abcesso coletado assepticamente.
Quando necessário, deve-se proceder o uso de purgante salino.
O material deve ser enviado em prazo não superior a 20 minutos.
"a fresco" e hematoxilina férrica.
No mesmo dia da coleta
LIQAMIL AMILASE, LÍQUIDOS CAVITÁRIOS.
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de derrames cavitários. Líquido pleural, pericárdico, peritonial e sinovial Coletar em frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Hemólise. Enzimático / Colorimétrico
No mesmo dia da coleta
AMIL AMILASE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças do trato biliar, pancreatites e parotidites; obstrução ou infarto intestinal. diagnóstico e monitorização terapêutica da pancreatite aguda.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Citrato, fluoreto Enzimático Colorimétrico
No mesmo dia da coleta
AMILURI AMILASE, URINA
BIOQUIMICA Auxilia no diagnóstico diferencial da macroamilasemia, e muito pouco na pancreatite aguda.
Urina amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Enzimático Colorimétrico
No mesmo dia da coleta
ANDRO ANDROS TENEDIONA , SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial de hiperplasia congênita de suprarrenal (HCSR) e de tumores virilizantes de adrenal e ovários. Seguimento terapêutico para HCSR e diagnóstico diferencial de hirsutismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante A amostra deve ser colhida pela manhã entre 8:00 e10:00 h.
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise, ciclo menstrual, horário de coleta e exercício físico.
Radio imunoensaio
Até 15 dias.
ASLO ANTI –
ESTREPTO LISINA O DETERMI- NAÇÃO
QUANTITATIVA,
SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de estreptococcias. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
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30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 57 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
ACTG ANTICORPO ANTI TIREO GLOBULINA SANGUE
FISIOLOGIA Dagnóstico das doenças autoimunes da tiroide. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 6 horas. Lipemia, icterícia, Tapazol, Propiltiouracil, Puran-T4, Tetroid e Syntroid.
Imunoensaio/ Eletroquimio luminescência.
Até 2 dias
TPO ANTICORPO ANTITIREO PEROXIDADE, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico das doenças autoimunes da tiroide. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 6 horas. Lipemia, icterícia,Tapazol, Propiltiouracil, Puran-T4 e Tetroid.
Imunoensaio/ Eletroquimioluminescência.
Até 7 dias
ANCA ANTICORPOS ANTI ANTÍGENOS CITOPLASMÁ-TICOS DE NEUTRÓ-FILOS, SANGUE
IMUNOLOGIA ANCA: Vide observação
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Lipemia e hemóliose Imunofluores-cência indireta
Até 20 dias
AADNA ANTICORPOS ANTI-DNA, SANGUE
IMUNOLOGIA Marcador para diagnóstico do Lupus Eritematoso Sistêmico. O seguimento dos títulos de anticorpos anti-DNA pode ser útil na avaliação da resposta terapêutica.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, hemólise e Tratamento com esteroides
Imunofluores-cência indireta, utilizando como antígeno Crithidia luciliae.
Até 14 dias
ANTICCP3 ANTICORPOS ANTIPEPTIDEO CITRULINADO 3
IMUNOLOGIA Ensaio imunoenzimático para detecção de anticorpos IgG anti CCP3 (3 peptídio citrulinado cíclico). A presença destes anticorpos, quando considerada em conjunto com as conclusões clínicas e outros testes de laboratório, constitui uma ajuda no diagnóstico da artrite reumatóide.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Hemólise Imunoenzimático (Elisa)
Até 14 dias
TRAB ANTICORPO ANTI RECEPTOR DE TSH SANGUE
FISIOLOGIA Imunoensaio in vitro para determinação quantitativa de autoanticorpos para o receptor de TSH (anti TSHR) em soro humano. A determinação de anticorpos antiTSHR (TRAb) está indicada: detecção ou exclusão de hipertireoidismo autoimune e na avaliação de remissões ou recidivas da Doença de Graves.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Anticoagulantes. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência
30 dias
ADTRI ANTI DEPRESSIVO TRICÍCLICO, SANGUE
BIOQUIMI-CA Ensaio utilizado para detecção de antidepressívo tricíclicos no sangue. Os fármacos antidepressivos mais comuns são: imipramina, disipramina, aminitriptilina e nortriptilina. Os resultados obtidos ajudam no diagnóstico e tratamento de overdose por ADTRI
Sangue, frasco sem anticoagulante
Não é necessário jejum.
Anticoagulantes: citrato, EDTA, heparina, oxalato e fluoreto de sódio. Bilirrubinas - acima de 10 mg/dL Proteína - acima de 9,6 g/dL
Imunoensaio enzimático homogêneo
No mesmo dia da coleta.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 58 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CA199 ANTÍGENO CARBO HIDRATO 19-9 SANGUE
FISIOLOGIA A medição de CA 19-9 é definida através do uso de anticorpo monoclonal num glicolipídeo, esta mucina coresponde a um hapteno dos determinantes do grupo sanguíneo Lewis-a. Vide observação.
Sangue, frasco sem anticoagulante.
Jejum, de 4 horas Anticoagulantes. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência
7 dias
CEA ANTÍGENO CARCINO EMBRIONÁRIO
FISIOLOGIA Monitoramento de pacientes portadores de câncer, principalmente de origem endodérmica (colon e reto).
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia, hemólise, amostras com atividade de fosfatase alcalina aumentada.
Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 2 dias
PSAL ANTÍGENO PROSTÁTICO LIVRE, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico e monitoramento de câncer prostático. Auxilia no grau de riscos de câncer de próstata.
Sangue, frasco sem anticoagulante .
Jejum de 4 horas, abstinência sexual de 48 horas.
Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 2 dias
PSAT ANTÍGENO PROSTÁTICO TOTAL, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnostico e seguimento de câncer de próstata. Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar amostra desde que não tenha havido toque retal e/ou massagem prostática nas últimas 48 horas.
Jejum de 4 horas, abstinência sexual de 48 horas.
Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 2 dias
ENA ANTÍGENOS NUCLEARES EXTRAÍVEIS PESQUISA DE ANTICORPOS
IMUNOLOGIA ENAscreen - VIDE OBSERVAÇÃO
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Lipemia e hemólise Imunoenzimático
Até 30 dias
OBSERVAÇÃO: teste de triagem que detecta anticorpos contra uma mistura de antígenos nucleares extraíveis (Ro/SSA, La/SSB, Sm, Sm/RNP, Scl70, Jo-1). Um resultado positivo deve ser confirmado em testes específicos. Os anticorpos anti-Sm e RNP são dirigidos contra antígenos nucleares associados ao RNA. Anti-Sm é marcador de LES e detectado em 15-30% dos pacientes. Anti- RNP na ausência de outros autoanticorpos é marcador de DMTC. Anti-RNP é também detectado em LES, Síndrome de Sjögren e esclerose sistêmica. Anticorpos anti-Ro/SSA são detectados em pacientes com Síndrome de Sjögren (60%) e LES (35%) e mais raramente em esclerose sistêmica, polimiosite e cirrose biliar primária. Anticorpos anti- La /SSB são detectados em pacientes com Síndrome de Sjögren (40%) e LES (15%). Anti-Ro/SSA e anti-La/SSB também são associados ao lúpus neonatal e bloqueio átrio-ventricular congênito. Anti Jo-1 associado a polimiosite. Anti Scl 70 frequentemente encontrado em paciente com esclerodermia (20-28%), Raynaud e Síndrome CREST (10-15%).
ATIII ANTI TROMBINA, DETERMI- NAÇÃO,
SANGUE
HEMATOLOGIA Investigação de processos tromboembólicos. Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul
Informar terapia com heparina.
Heparina. Substrato cromogênico- automação.
Até 20 dias.
APOAI APOLIPO PROTEÍNA AI, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias primárias, diabetes mellitus descompensado, doença cardiovascular prematura, doença hepatocelular, colestase, síndrome nefrótica, insuficiência renal crônica.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Não identificados. Nefelometria. Até 3 dias
APOB APOLIPO PROTEÍNA B, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias primárias, doença vascular prematura, diabetes mellitus, hipotireoidismo, síndrome nefrótica, insuficiência renal, Síndrome de Cushing, hepatopatias, porfiria.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Não identificados. Nefelometria. Até 3 dias.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 59 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
AST ASPARTATO AMINO TRANSFE- RASE (AST), SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de hepatopatias; doenças cardíacas e musculares; infartos renal e cerebral; pancreatite aguda; anemias hemolíticas; hemofilia; desnutrição.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Cinético. sem Piridoxal Fosfato
No mesmo dia da coleta
ASPER ASPERGILOSE, PESQUISA DE ANTICORPOS SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de aspergilose. Sangue, frasco sem anticoagulante .
Jejum de 4 horas. Hemólise e lipemia. Imunodifusão radial dupla
Até 10 dias
OLIGOLCR BANDAS OLIGOCLONAIS, PESQUISA, LCR
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Pesquisa de bandas oligoclonais em líquor. Sangue, frasco sem anticoagulante Líquor coletado em frasco estéril
Sem preparação prévia.
Não identificados Focalização isoelétrica
Até 15 dias
BETA2MICRO BETA - 2 MICRO GLOBULINA DETERMI- NAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de doenças renais e sindromes linfoproliferativas benignas ou malignas.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
TGRAV BETA HCG PESQUISA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Diagnóstico de gravidez. Urina, amostra isolada e recente. Coletar a 1ª urina da manhã.
Sem preparação prévia.
Doença trofoblás-tica e algumas neoplasias (falso positivo) e baixo nivel hormonal (falso negativo).
Imunoensaio rápido.
No mesmo dia da coleta
BI BILIRRUBINA, SANGUE
BIOQUIMICA As determinações de bilirrubina são utilizadas no diagnóstico de doenças hepáticas, na detecção da anemia
hemolítica e na avaliação do grau de gravidade da icterícia. Síndromes de Criegler -Najar, Gilbert e Dubin-Johnson.
Sangue, frasco sem anticoagulante. Proteger da luz.
Jejum de 4 horas. Bilirrubina Total: não identificados Bilirrubina Direta: Hemólise.
Bilirrubina Direta e Total: Diazo
No mesmo dia da coleta
LIQBI BILIRRUBINA, LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
BIOQUÍMICA Avaliar presença de bilirrubina em líquidos cavitários Líquido cavitário, frasco sem anticoagulante. Proteger da luz
Não há necessidade de jejum
Bilirrubina Total: não identificados Bilirrubina Direta: Hemólise.
Bilirrubina Direta e Total: Diazo
No mesmo dia da coleta
BRUCEL BRUCELOSE, PESQUISA DE ANTICORPOS, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de brucelose. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Aglutinação em lâmina
Até 7 dias
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 60 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CA125 CA-125, MARCADOR TUMORAL, SANGUE
FISIOLOGIA Monitoramento de tumor de ovário. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Icterícia, hemólise e lipemia, gravidez, endometriose, cirrose, pericardite, necrose hepática, adenoma pancreático, hepatoma.
Imunoensaio enzimático/ Quimiolumines-cência.
Até 7 dias.
CAI CALCIO IONICO, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de hiper e hipoparatireoidismo, cirurgias em geral, neoplasias, aumento ou diminuição de Vitamina D e pseudo hipoparatireoidismo, alterações do equilíbrio ácido-básico.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum.
Ar atmosférico, Hemólise. Eletrodo Íon Seletivo
Imediato
CA CALCIO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de hiper e hipoparatireoi-dismo primário e secundário; doença maligna com ou sem comprometi-mento ósseo; sarcoidose; intoxicação e deficiência de vitamina D; doença de Paget; tireotoxicose; acromegalia; necrose tubular aguda; hipercalcemia idiopática
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificado NM-BAPTA complexo de Ca EDTA
No mesmo dia da coleta
CAURI CALCIO, URINA
BIOQUIMICA Avaliação de hiper e hipoparatireoidismo primário e secundário; doença maligna com ou sem comprometimento ósseo; sarcoidose; intoxicação e deficiência de vitamina D; doença de Paget; tireotoxicose; acromegalia; necrose tubular aguda; hipercalcemia idiopática.
Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificado. NM-BAPTA complexo de Ca EDTA
No mesmo dia da coleta
CALCULO CÁLCULO, ANÁLISE
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Análise da composição do cálculo. Cálculo renal e biliar. Trazer o cálculo expelido e/ou extraído em frasco limpo.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Teste Químico Qualitativo.
Até 15 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 61 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CARBAMAZ CARBA MAZEPINA, SANGUE
BIOQUIMICA Controle do nível terapêutico. Diagnóstico e tratamento de intoxicação.
Sangue, frasco sem anticoagulante. No caso de controle terapêutico informar se a amostra coletada é pré ou pós-admi nistração e o tempo decorrido desde última administração. Pico: 4 a 8 horas após administração (VO). Nos casos de intoxicação, o horário de coleta não é crítico.
Não é necessário jejum.
Hemólise, ictericia, lipemia e proteina podem causar interferência inferior a 10%.
Enzimaimuno-ensaio
No mesmo dia da coleta
SESARY CÉLULAS DE SESARY, PESQUISA, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxilio diagnostico na suspeita da sindrome de Sesary. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) tampa roxa.
Não é necessário jejum.
Não identificados. Microscopia. Até 2 dias.
CELNEOPL CÉLULAS NEOPLÁSICAS, PESQUISA, LÍQUIDOS
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Pesquisa de tumores primários e/ou metastáticos que acometam meninges, pleura, pericárdico e peritôneo.
Líquidos pleural, pericárdico, peritoneal: coletar em frasco com anticoagulante citrato de sódio tampa azul ou EDTA tampa roxa. Líquor: coletar através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Presença de coagulos. Citocentrifuga-ção com coloração de May-Grunwald, e microsocpia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
CERU CERULO PLASMINA DETERMI- NAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA No diagnóstico da doença de Wilson e na avaliação de algumas neoplasias. Também comporta-se como proteína de fase aguda.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise Nefelometria. Até 7 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 62 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CHAGAS CHAGAS, PESQUISA DE ANTICORPOS, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico da doença de Chagas. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Hemólise, lipemia Quimio luminescencia e Imuno fluorescencia.
Até 15 dias
CHAGASPCR CHAGAS DIAGNÓS- TICO MOLECULAR
PARASITOLOGIA
Auxílio diagnóstico para doença de Chagas Sangue, frasco com anticoagulante EDTA, Aspirado de medula óssea LCR e Tecido de biópsia
Sem preparo prévio Não há Molecular PCR Até 20 dias
CYA 2H CICLOS PORINA PÓS MEDICAÇÃO, DOSAGEM, SANGUE TOTAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Monitoramento de pacientes transplantados. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa Coletar 2 horas após o paciente ter tomado a medicação.
Informar horário da última dose de ciclosporina.
Não sofre interferência de seus metabolismos.
ACMIA sem pré-tratamento manual
No mesmo dia da coleta
CYA CICLOS PORINA, DOSAGEM, SANGUE TOTAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Monitoramento do uso de ciclosporina em pacientes não transplantados.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa Coletar antes do paciente tomar a próxima dose da medicação.
Informar horário da última dose de ciclosporina.
Não sofre interferencia de seus metabólitos.
ACMIA sem pré-tratamento manual
No mesmo dia da coleta
CICLOSP CICLOS PORINA, DOSAGEM, SANGUE TOTAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Monitoramento de pacientes transplantados. Monitoramento do uso de ciclosporina em pacientes não transplantados.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa Coletar antes do paciente tomar a próxima dose da medicação. Necessário formulário APAC.
Informar horário da última dose de ciclosporina.
Não sofre interferencia de seus metabólitos.
ACMIA sem pré-tratamento manual
No mesmo dia da coleta
CISTLCR CISTI CERCOSE, PESQUISA DE ANTICORPOS ANTI –CISTICERCO DE Taenia solium LIQUOR
IMUNOLOGIA Diagnóstico da neurocisticercose Líquor. Coletar através de punção sub ocipital ou lom-bar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril. Sangue, frasco sem anti-coagulante
Sem preparação prévia.
Presença de hemácias em grande quantidade (acidente de punção).
Imunoenzimá-tico.
Até 10 dias.
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 63 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CISTINA CISTINA, PESQUISA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de amino-acidúrias e de litiase renal. Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã.
Informar medicação em uso e resultados anteriores (se houver).
Não identificados. Reação do cianeto-nitroprussiato (prova de Brand - análise qualitativa).
Até 7 dias
CMV CITOMEGALOVÍRUS, PESQUISA DE ANTICORPO, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de infecção passada e/ou recente pelo citomegalovírus.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise e lipemia. Imunoenzimá-tico.
Até 7 dias
CL CLORETO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de distúrbios hidro-eletrolítico e ácido-básico, hiperparatireoidismo primário, hiperfunção adrenocortical, nefrite perdedora de sal, crise addisoniana, intoxicação hídrica, porfiria aguda intermitente, retenção pós-operatória de cloro.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Eletrodo Íon Seletivo.
No mesmo dia da coleta
CLURI CLORETO, URINA
BIOQUIMICA Avaliação do metabolismo hidrossalino ou da ação de diuréticos. Tem valor na diferenciação de alcaloses clororresponsivas ou não
Urina amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Eletrodo Íon Seletivo
No mesmo dia da coleta
CUURI COBRE, URINA
BIOQUIMICA É útil para diagnóstico de Doença de Wilson, cirrose biliar primária e colangite esclerosante primária, nas quais se
apresenta elevada
Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as
outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da mnhã dodia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Espectrofotôme-tria de Absorção
Atômica.
Até 10 dias.
CU COBRE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doença de Wilson; processos neoplásicos; doenças gastrointestinais; fibrose cística; sindrome nefrótica; anemias; queimaduras; desnutrição proteica; cardiopatia isquêmica crônica; estados infecciosos e inflamatórios; cirrose biliar.
Sangue, frasco com anticoagulante - tampa verde (Heparina Lítica).
Jejum de 4 horas Não identificados. Espectrofotô-metria de Absorção Atômica.
Até 10 dias.
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 64 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PCOCCIDI COCCIDEOS, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de coccidioses: Cryptosporidium parvum, Cyclospora cayetannensis e Isospora belli.
Fezes, líquido de aspirado jejunal, escarro e aspirado brônquico. Frasco coletor sem
conservante
Sem preparação prévia.
Antibióticos interferem no ciclo dos protozoários.
Ziehl-Neelsen modificado, centrífugo-flutuação.
Até 2 dias
LDLCOL COLESTEROL DE LIPO PROTEÍNA DE BAIXA DENSIDADE SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias primárias e secundárias. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Não identificados. Enzimático-Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
HDLCOL COLESTEROL DE LIPO PROTEÍNAS DE ALTA DENSIDADE SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias, hepatopatias, alcoolismo, intoxicação crônica, diabetes, doença coronariana, síndrome nefrótica e insuficiencia renal crônica.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Enzimático-Colorimétrico – Direto
No mesmo dia da coleta
COL COLESTEROL TOTAL, SANGUE
BIOQUIMICA São utilizadas para a despistagem do risco aterogénico e no diagnóstico e tratamento de doenças que envolvem níveis elevados de colesterol, bem como de perturbações do metabolismo lipídico e lipoproteico.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas ou de 12 horas se houver solicitação de LDLCOL.
Citrato, oxalato, icterícia, hemólise e fluoreto.
Enzimático-colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
LIQCOL COLESTEROLLÍQUIDOS CAVITÁRIOS
BIOQUÍMICA Detectar a presença de colesterol em líquidos cavitários Liquidos cavitários, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não há
Enzimático-colorimétrico
No mesmo dia da coleta
C3 COMPLEMENTO C3, DETERMI- NAÇÃO QUANTITATIVA DOSAGEM, SANGUE
IMUNOLOGIA Avaliação de pacientes portadores de doenças que evoluem com a presença de imunocomplexos, que ativam a via clássica do complemento e para diagnóstico de deficiência congênita do C3.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
C4 COMPLE- MENTO C4 DETERMI- NAÇÃO QUANTITA TIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de deficiência congênita de C4 e de patologias onde há consumo de complemento e ativação da via clássica do complemento.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 65 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CH50 COMPLEMENTO SÉRICO TOTAL, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico e acompanhamento de doenças que evoluem com a presença de imunocomplexos ou na detecção de deficiência de algum dos componentes do sistema complemento.
Sangue, frasco sem anticoagulante Manter no gelo.
Jejum de 4 horas. Hemólise. Ensaio hemolítico funcional.
Até 10 dias
DIFLEULCAV CONTAGEM DIFERENCIAL LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de derrames. Líquido pleural, pericárdico, peritonial e sinovial Frasco com anticoagulante citrato de sódio (tampa azul) ou em frasco com anticoagulante EDTA (tampa roxa).
Sem preparação prévia.
Presença de coágulos. Citocentrifuga-ção com coloração de May-Grunwald e microscopia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
GLLEULCAV CONTAGEM GLOBAL, LAVADO PERITONEAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de traumatismos abdominais. Lavado peritoneal: coletar em frasco estéril sem gel.
Sem preparação prévia.
Presença de coágulo. Microscopia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
CAAM CONTAMI-NANTES AMBIENTAIS, ANÁLISE MICROBIOLÓGICA
MICROBIOLOGIA Avaliação de contaminação dos frascos de nutrição parenteral, soros ou outros materiais inertes, que sejam utilizados pelos pacientes.
Frascos de nutrição parenteral (completo ou de cada componente), soros fisiológico, glicosado, etc, ou qualquer tipo de material ainda não utilizado pelo paciente. IMPORTANTE: Não violação das embalagens e lacres.
Não se aplica. Conservantes Cultura qualitativa e/ou quantitativa de bactérias e fungos, patogênicos ou contaminantes.
Até 7 dias
COPROROT COPRO CULTURA, CULTURA, FEZES
MICROBIOLOGIA Auxílio na identificação de germes enteropatogênicos responsáveis por quadros de diarreia aguda ou crônica, tais como: E.coli invasora, E. coli enteropatogênica, Salmonella sp, Shigella sp e Yersinia enterocolitica.
Fezes ou ¨swab anal¨ na impossibilidade da coleta de fezes. Conservação: Coletar a amostra em recipiente
próprio c/meio de transporte (glicerina tamponada, ou em Cary Blair), enviar ao laboratório imediatamente.
Suspender antibioticoterapia, se possível por 3 dias.
Antibióticos, coleta e transporte inadequados.
Cultura em meios seletivos e enriquece-dores; isola-mento e identificação por
testes bioquímicos e soro-aglutinação.
Até 4 dias.
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30/04/2009
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o: 011
Data: 28/08/2013
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 66 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CORTURI CORTISOL LIVRE, URINA
FISIOLOGIA Diagnóstico de Síndrome de Cushing e hipofunção adrenal primária ou secundária.
Urina de 24 após crise hipertensiva. Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Não usar cremes/óvulos vaginais nas 24 horas anterior à coleta.
Temperatura ambiente, diurético, prednisolona, metilprednisolona ou prednisona, antihipertensivos.
Imunoensaio/ Eletroquimiolu-minescência, com extração prévia.
Até 30 dias.
CORT CORTISOL, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de Síndrome de Cushing e hipofunção adrenal primária ou secundária.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar pela manhã entre 7:00 e 9 :00 h, especificar horário da coleta.
Jejum de 4 horas. Deixar paciente em repouso por no mínimo 30 minutos.
Lipemia, icterícia, hemólise, temperatura ambiente, diurético, prednisolona, metilprednisolona ou prednisona, antihipertensivos.
Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 3 dias
TDCORT CORTISOL, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de Síndrome de Cushing e hipofunção adrenal primária ou secundária.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar pela manhã entre 7:00 e 9:00 h; especificar horário da coleta. Coleta basal e após infusão: - CORT (Cortisol Basal); - CORT15; CORT30; CORT45; CORT60; CORT90 e CORT120.
Jejum de 4 horas. Deixar paciente em repouso por no mínimo 30 minutos.
Lipemia, icterícia, hemólise, temperatura ambiente, diurético, prednisolona, metilprednisolona ou prednisona, antihipertensivos.
Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-niscência.
Até 3 dias
CKMB CREATINA QUINASE – FRAÇÃO MB, SANGUE
BIOQUIMICA Diagnóstico diferencial dos aumentos de CK: trauma, cirurgias, exercício intenso, miopatias, choque, angina pectoris instável, infarto agudo do miocárdio, arritmias, hemorragia subaracnoide; insuficiência renal crônica, hipo e hipertermia, envenenamentos.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise Cinético UV No mesmo dia da coleta
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Data: 28/08/2013
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 67 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CK CREATINA QUINASE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças musculares e cardíacas, cirurgias, Síndrome de Reye, envenenamento, coma, hipertermia maligna, hipotermia prolongada, hipotireoidismo, doenças infecciosas, arritmias, infartos pulmonar e cerebral, convulsões generalizadas.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise Cinético UV , líquido IFCC
No mesmo dia da coleta
LIQCR CREATININA, LÍQUIDOS
BIOQUÍMICA Avaliar a presença de creatinina em líquidos cavitários bem como monitoramento em líquido de diálise
Líquidos cavitários, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não identificados Cinético, Colorimétrico, Jaffé com compensação
No mesmo dia da coleta
CLEARCREA CREATININA, CLEARANCE URINA
BIOQUIMICA Avaliação da taxa de filtração glomerular. Sangue, frasco sem anticoagulante Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Jejum de 4 horas para a coleta do sangue. Informar peso e altura do paciente.
Não identificados
Cinético, Colorimétrico, Jaffé, com compensação
No mesmo dia da coleta
CR CREATININA, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de função renal; acromegalia e gigantismo; hipo e hipertiroidismo; doenças musculares; leucemias; diabetes mellitus.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados Cinético Colorimétrico, Jaffé, com compensação
No mesmo dia da coleta
CREAURI CREATININA, URINA
BIOQUIMICA Avaliação de função renal; acromegalia e gigantismo; hipo e hipertiroidismo; doenças musculares; leucemias; diabetes mellitus.
Urina: amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Cinético colorimétrico Jaffé com compensação
No mesmo dia da coleta
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
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30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 68 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CRIOAGLUT CRIO AGLUTININAS SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de pneumonia primária atípica por Mycoplasma pneumoniae e certas anemias hemolíticas.
Coletar 3 mL em frasco sem anticoagulante e 3 mL em frasco com EDTA – tampa roxa; imediatamente após coleta manter o frasco sem anticoagulante em banho-maria a 37ºC até o momento de encaminhar ao laboratório. O laboratório somente recebe de 2ª a 5ª feira, até as 16:30h. Não encaminhar em véspera de feriados.
Jejum de 4 horas. Lipemia, hemólise. Aglutinação em tubo.
Até 7 dias
CRIOGLOB CRIO GLOBULINAS, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico e caracterização de crioglobulinemias. Crioglobulinas ocorrem de forma idiopática em doenças autoimunes, em infecções crônicas e em certos tumores.
Sangue, frasco sem anticoagulante Manter o frasco em banho-maria a 37ºC até o momento de encaminhar ao laboratório.
Jejum de 4 horas. Lipemia, hemólise. Observação da formação de precipitado em soro mantido a 4ºC durante 7 dias.
Até 14 dias
CRIPTOLCR Cryptococcus neoformans,
PESQUISA DE ANTÍGENO CAPSULAR, LIQUOR
IMUNOLOGIA Diagnóstico da infecção causada pelo Cryptococcus neoformans.
Líquor. Coletar através de punção sub occipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Presença de hemácias em grande quantidade (acidente de punção). Hiperproteinorraquia
Aglutinação (látex).
Até 7 dias
CRIPTO Cryptococcus
neoformans, PESQUISA DE ANTÍGENO CAPSULAR, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico da infecção causada pelo Cryptococcus
neoformans.
Sangue, frasco sem
anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Aglutinação
(látex).
Até 7 dias
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30/04/2009
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o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 69 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CLCR CULTURA DE LÍQUOR
MICROBIOLOGIA Diagnóstico das meningites bacterianas. Líquor,material de fístulas liquóricas e hematomas intracranianos Coletar a amostra através de punção subocipital ou lombar com prévia antissepsia em frasco estéril. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção.
Sem preparação prévia.
Uso de antibióticos. Exame bacteri-oscópico e cultura em meios apropri-ados: Pesquisa e cultura para BK e fungos não estão in-cluídos, devem ser solicitados à parte.
Até 7 dias.
SBETAB CULTURA E IDENTIFI CAÇÃO DE STREPTO COCCUS AGALACTIAE
MICROBIOLOGIA Investigação de mulheres grávidas portadoras do Streptococcus do grupo B
Swab vaginal e retal. Enviar o próprio swab em meio de transporte (Stuart).
Sem preparação prévia.
Uso de antibióticos. Análise microbiológica
72 horas
CFUNGO CULTURA, FUNGO
MICROBIOLOGIA Auxilia no diagnóstico das infecções fúngicas, possibilitando o isolamento e identificação dos agentes causais.
Qualquer espécime clínico, coletado em swab, coleções purulentas obtidas por punção, líquidos biológicos, urina, líquor e sangue, no caso de pele, o material é colhido por escarificação das lesões; pelos são arranca-dos com sua base e unhas escarificadas ou cortadas em pequenos fragmentos. Secreções são coletadas em soro fisiológico com auxilio de espátula. Biopsias devem
ser encaminhadas em frasco estéril com ou sem soro fisiológico.
Suspender medicação antifúngica tópica ou sistêmica, no mínimo 5 dias antes da coleta, se possível.
Medicação tópica ou antifúngico sistêmico.
Cultura nos meios de Sabouraud, Sabouraud com cloranfenicol e Mycosel (exames relacionados: micológico direto e tinta da china).
Até 30 dias.
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 70 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CMICOSAN CULTURA, MICO BACTÉRIAS, SANGUE OU MEDULA ÓSSEA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de micobacterioses em sangue e medula óssea. Sangue ou medula óssea. Fazer antissepsia cuidadosa do local da punção venosa, ou de medula óssea. Coletar de 1 a 5 mL de sangue e inocular em frasco específico, tendo desinfetado com álcool a tampa de borracha do frasco antes da inoculação.
Sem preparação prévia.
Uso de tuberculostáticos. Automação. 42 dias.
CRD CULTURA, ROTINA DIAGNÓS- TICA (VÁRIOS MATERIAIS)
MICROBIOLOGIA Avaliar e identificar a presença de bactérias em diversos espécimes clínicos.
Qualquer espécime clínico, coletado em swab, coleção purulentas obtidas por punção, exceto urina, líquor e sangue. Os procedimentos de coleta variam conforme o material a ser analisado. Imprescindível indicar o material ou o sítio de coleta. Coletar em frasco estéril.
Coletar antes de medicação antibiótica ou suspender se possível por 3 dias.
Antibióticos. Bacterioscopia, após coloração pelo método de Gram e cultura em meios apropriados conforme o material a ser analisado.
Até 3 dias
DHEA DEHIDRO EPIANDROS TERONA, SANGUE
FISIOLOGIA Estudo de adrenarca precoce, hirsutismo e virilismo. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Ictericia e lipemia. Radioimunoensaio (Iodo 125).
Até 30 dias.
TDDHEA DEHIDROEPIANDROS TERONA, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Estudo para diagnóstico de defeito de síntese adrenal, de adrenarca precoce, hirsutismo e virilismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coleta basal e após Infusão: - DHEA (DHEA Basal). - DHEA 60.
Jejum de 4 horas. Icterícia e lipemia. Radioimunoensaio (Iodo 125).
Até 30 dias
DENGUETR DENGUE IgM/IgG TESTE RÁPIDO
IMUNOLOGIA E LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Detecção qualitativa de anticorpos IgM e IgG específicos para o vírus da Dengue Humana. Indicação: casos suspeitos de dengue.
Sangue, frasco sem anticoagulante .
Sem preparação prévia. Coletar após 6º dia de sintomas.
Não identificados Imunocromato-grafia
Até 2 horas
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 71 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
DENGUENS1 DENGUE TESTE PARA DETECÇÃO DO ANTIGENO NS1 DENGUE
IMUNOLOGIA E LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Detecção qualitativa do antígeno NS1 do vírus da Dengue. Indicado em casos suspeitos de dengue que apresentem hemorragia, sinais de gravidade, alterações hemodinâmicas e outras complicações (neurológicas, hepáticas e cardíacas)
Sangue, frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia. Coletar até o 3º dia
após início de sintomas. Não recomendada após este período. Casos suspeitos com 4 ou mais dias de sintomas, devem aguardatr o 6º dia para coleta de DENGUETR ou Sorologia
Soros de gestantes e soros apresentando fatores reumatoides ou anticorpos antinucleares podem, excepcionalmente, apresentarem resultados falso positivos.
Imunocromato-grafia
Até 2 horas
DUR DENSIDADE URINÁRIA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Estado de hidratação do paciente; capacidade concentração e diluição renal.
Urina isolada e recente Urina de 24h:Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Estase vesical de 3 a 4 horas para amostras isoladas.
Não identificados. Tira reagente. No mesmo dia da coleta
CDIFFICILE DETECÇÃO QUALITATIVA DA TOXINA A/B
PARASITOLOGIA Detectar a preseça da toxina A/B do Clostridium difficile causadora de diarreia e colite pseudomebranosa associadas à antibioticoterapia
Fezes, frascos sem conservante Obs.: exame com solicitação restrita ao CCIH
Não há necessiadde de preparo
Não há Imunocromato-gráfico
Até 2 horas
DIGOXINA DIGOXINA, SANGUE
BIOQUIMICA Controle de nível terapêutico. Sangue, frasco sem anticoagulante Informar se a amostra coletada é pré ou pós administração e o tempo decorrido desde a última administração. Recomendável coletar 12 horas após última dose de digoxina, após ter obtido um nível sérico da mesma.
Não é necessário jejum.
Icterícia, hemólise, lipemia, proteína podem causar interferência inferior a 10%.
Enzimaimunoensaio
No mesmo dia da coleta
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 72 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
DDIM DIMERO D, SANGUE
HEMATOLOGIA Diagnóstico de exclusão de TVP e TEP Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul.
Jejum, se possível. Lipemia, hemólise e icterícia. Elisa Imediato
EFHB ELETROFORESE DE HEMOGLOBINAS, SANGUE
HEMATOLOGIA Alterações quantitativas e estruturais das hemoglobinas. Sangue, (frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Recomendável jejum de 4 horas. Informar transfusão.
Transfusão sanguínea recente. Eletroforese e HPLC.
Até 5 dias.
EFISOCK ELETRO FORESE DE ISOENZIMAS DE CK, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças musculares, neoplasias, doenças do sistema nervoso central, doenças cardíacas, suspeita da presença de macro CK.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Eletroforese em Gel de Agarose.
Até 5 dias
EFLIPO ELETRO FORESE DE LIPOPROTEINAS, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação das dislipidemias primárias e secundárias. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Terapia com heparina. Eletroforese em Gel de Agarose.
Até 5 dias.
EFPLCR ELETRO FORESE DE PROTEÍNAS LIQUOR
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação das alterações no perfil proteico do líquor. Líquor, coletar em frasco esteril; indicar o local da punção. Sangue, frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Não identificados. Eletroforese em gel de agarose com concentração prévia e determinação densitométrica das frações.
Até 7 dias
EFPSE ELETRO FORESE DE PROTEÍNAS SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de cirrose hepática; sindrome nefrótica; desnutrição; enteropatia com perda proteica; processos inflamatórios crônicos; infecções subagudas e crônicas; doenças auto-imunes e linfoproliferativas.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, hemólise, hiperbilirrubinemia, amostras com precipitação, estrogênios e testosterona.
Eletroforese em Gel de agarose.
Até 2 dias
EFPUR ELETRO FORESE DE PROTEÍNAS URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Diagnóstico de mieloma múltiplo e paraproteinemias. Urina, amostra isolada e recente preferencialmente 2a micção da manhã. Sangue: frasco sem anticoagulante
. Bicarbonato de sódio, piridium. Eletroforese em gel de agarose com concentração prévia e determinação densitométrica das frações.
Até 7 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 73 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
VRE ENTEROCOCO RESISTENTE À
VANCOMICINA, PESQUISA, FEZES
MICROBIOLOGIA Avaliação epidemiológica de colonização de pacientes portadores de Enterococo resistente à vancomicina
Swab anal, com meio de transporte e outros.
Internado e em uso de Vancomicina por no mínimo 7 dias.
Não identificados. Utilização de meio super seletivo, manual.
Até 3 dias.
EOSMUCO EOSINÓFILOS PESQUISA, SECREÇÃO E MUCOSA NASAL
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de alergias. Esfregaços de secreção e mucosa nasal. Coletar o muco nasal com swab e fazer 2 esfregaços; secar ao ar.
Comparecer à coleta sem assoar o nariz, não utilizar medicações tópicas nas 24h que antecedem a coleta.
Não identificados. Microscopia óptica comum com coloração de May-Grunwald.
No mesmo dia da coleta
EOSINURI EOSINÓFILOS PESQUISA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Eosinófilos podem estar presentes na urina de pacientes com nefrite intersticial aguda. Outras doenças tais como Cistite, pielonefrite, prostatite necrose tubular aguda, glomerulonefrite e doença aterosclerótica renal também podem estar associadas à presença de eosinófilos na urina.
Urina – amostra isolada e recente
Sem preparação prévia.
Presença de muco e numerosas células epiteliais pavimentosas.
Citocentrifuga-ção e coloração de May-Grunwald
No mesmo dia da coleta
ESCABIOSE ESCABIOSE PESQUISA, PELE
PARASITOLOGIA Diagnóstico de escabiose - pesquisa de Sarcoptes scabiei. Raspado de vesícula, sulcos ou galerias existentes na pele. Colocar bolsa de água quente nas lesões, em seguida raspá-las em diferentes regiões do corpo (espaços interdigitais, axilas, seios, cotovelos, região glútea e pubiana).
Sem preparação prévia.
Pomadas ou cremes. Exame microscópico direto.
Até 2 dias
ESP ESPERMO GRAMA, ESPERMA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de esterilidade. Realizada por masturbação após higiene das mãos e do pênis, colhido em frasco de boca larga; anotar o horário e encaminhar imediatamente ao laboratório.
Abstinência sexual por um período não inferior a 2 dias nem superior a 5 dias.
Total de espermatozoides inferior a 2.000.000/mL.
Exame físico e análise automatizada e computadorizada qualidade do esperma.
No mesmo dia da coleta
XTOIMUNE ESQUISTOSSOMOSE PESQUISA DE ANTICORPOS SANGUE
PARASITOLOGIA Pesquisa de anticorpos específicos IgM de Schistosoma mansoni.
Sangue frasco sem anticoagulante Líquor. Coletar por punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encami-nhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Não é necessário jejum.
Não identificados. Imunofluores-cência indireta usando-se como substra-to, cortes de vermes adultos de Schistosoma mansoni.
Até 15 dias.
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 74 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CPE ESTERILI ZAÇÃO, CONTROLE DO
PROCESSO
MICROBIOLOGIA Controle de esterilização. Esporos de Bacillus sp utilizados como controle no processo de esterilização . Após autoclavação ou
esterilização por calor, enviar o esporo ao laboratório imediatamente.
Não se aplica. Não identificados. Adequado a cada tipo de fita, teste com esporos de Geo Bacillus
stearothermo-philus e Bacillus subtilis.
Até 7 dias
E2 ESTRADIOL SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico da puberdade precoce, ginecomastias, tumores testiculares, estudo de atividade estrogênica no ciclo menstrual.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar período do ciclo menstrual.
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia, hemólise e estrógenos.
Imunoensaio/ Eletroquimioluminescência.
Até 3 dias
FAN FATOR ANTI -NÚCLEO, PESQUISA DE ANTICORPOS SANGUE
IMUNOLOGIA Marcador para diagnóstico de LES e também encontrado em outras doenças autoimunes como artrite reumatoide, esclerodermia, polimiosite, dermatomiosite, lúpus discóide, síndrome de Sjögren, hepatite autoimune.
Sangue, frasco sem anticoagulante .
Jejum de 4 horas. Drogas com procainamida, hidralazina, anticonvulsivantes, alfametildopa, peni-ilinas, butazolidina, ácido para-aminosalicílico.
Imunofluores-cência indireta, utilizando co-mo substrato células Hep-2 (carcinoma de laringe).
Até 14 dias
FR FATOR REUMATOIDE DETERMI NAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de artrite reumatoíde e outras doenças autoimunes.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
FENITOINA FENITOINA, SANGUE
BIOQUIMICA Controle de nível terapêutico. Diagnóstico e tratamento de intoxicação.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar se a amostra coletada é pré ou pós administração e o tempo decorrido desde a última administração.
Não é necessário jejum.
Não Identificados Enzimaimuno-ensaio
No mesmo dia da coleta.
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 75 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
FENOBARB FENOBARBITAL, SANGUE
BIOQUIMICA Controle de nível terapêutico. Diagnóstico e tratamento de intoxicação.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar se a amostra coletada é pré ou pós administração e o tempo decorrido desde a última administração.
Não é necessário jejum.
Não Identificados Enzimaimuno-ensaio
No mesmo dia da coleta
FLP FENO TIPAGEM DE LIPO PROTEÍNAS, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Não identificados. Verificação da aparência do soro após 12 horas de refrigeração.
Até 2 dias
FERRITINA FERRITINA SÉRICA, DETERMINAÇÃO, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico de anemia ferropriva. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia. Imunoensaio/ Quimiolumines-cência.
Até 7 dias
FESERICO FERRO SÉRICO, DETERMINAÇÃO, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico diferencial de anemias microciticas e hipocromicas.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Coletar pela manhã.
Excessiva lipemia ou hemólise no soro.
Colorimétrico (ferrozine sem desproteiniza-ção).
Até 7 dias
TIBC FERRO, DETERMI NAÇÃO DA CAPACIDADE DE TRANSPORTESANGUE
HEMATOLOGIA Auxiliar em diagnóstico de anemia ferropriva. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas, Coletar pela manhã.
Hemólise e Lipemia. Colorimétrico (Ferrozine)
Até 7 dias
AF FEZES A FRESCO
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de diarreias, formas parasitárias de protozoários e de helmintos, quantificação de muco, leucócitos, hemácias, gotículas de gordura, leveduras e bactérias.
Fezes diarreicas, semipastosas ou muco-sanguinolentas. Frasco coletor ou sonda; o material deve ser enviado para análise em prazo não superior a 20 minutos após coleta.
Sem preparação prévia.
Medicamentos como antiácidos, antidiarreicos, antiparasitários, antibióticos, bario, bismuto, magnésio e carbonato de cálcio.
Exame microscópico direto entre lâmina e lamínula.
No mesmo dia da coleta
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 76 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
FIBRAS FIBRAS PESQUISA DE LAVADO PERITONEAL,
PARASITOLOGIA Auxílio no diagnóstico do trauma abdominal. Lavado peritoneal. Frasco estéril, sem anticoagulante e sem gel.
Sem preparação prévia.
Coleta inadequada, grande quantidade de hemácias.
Exame microscópico direto após centrifugação.
No mesmo dia da coleta. (2
a a
6a feiras até
19 horas) ou até 2 dias.
FBRGN FIBRINOGÊNIO,
SANGUE HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico nas coagulopatias. Sangue, frasco com
anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul. Tranportar em banho de gelo.
Recomendável jejum de 4 horas.
Anticoagulantes, Hemólise. Coagulometria/ automação
No mesmo dia da coleta
FSH FOLÍCULO ESTIMULANTE,
SANGUE
FISIOLOGIA Infertilidade, menopausa e doenças do eixo pituitaria-gonadal. Auxilia no diagnóstico da puberdade precoce.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar período do ciclo menstrual.
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 3 dias
TDFSH FOLÍCULO ESTIMULANTE, TESTE DINÂMICO SANGUE
FISIOLOGIA Infertilidade, menopausa e doenças do eixo pituitária-gonadal. Auxilia no diagnóstico da puberdade precoce.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar período do ciclo menstrual. Coleta basal e após infusão de LHRH: - FSH (FSH Basal); - FSH15; FSH30; FSH45 e FSH60.
Jejum de 4 horas. Lipemia e ictirícia. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 3 dias
FALC FOSFATASE ALCALINA, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de hiperparatireoidismo primário e secundário; hipotireoidismo; osteomalácia, raquitismo; sarcoma,mieloma; carcinoma metastático; doenças renais; doenças hepáticas; anemias; cretinismo; acondroplasia; colite ulcerativa; enterite regional; colestase.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Enzimático Colorimétrico + IFCC
No mesmo dia da coleta
PIURI FOSFORO INORGÂNICO, URINA
BIOQUIMICA Útil na avaliação do balanço cálcio /fósforo do organismo. Excreção urinária aumentada de fósforo ocorre em hiperparatiroidismo, acidose tubular renal, uso de diuréticos e na síndrome de Fanconi. Excreção diminuída é encontrada no hipoparatiroidismo e pseudiohipopartiroidismo
Urina: amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Fosfomolibidato UV
No mesmo dia da coleta
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Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 77 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PI FOSFORO INORGÂNICO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças ósseas; sarcoidose; neoplasias hematológicas, intoxicação por vitamina D; insuficiencia renal; doenças da paratireoide e paratireoidectomia; defeitos tubulares renais; diabetes mellitus com cetose; cirrose
hepática; acidose láctica.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Fosfomolibidato U V
No mesmo dia da coleta
PILIQ FÓSFORO INORGÂNICO, LÍQUIDOS
BIOQUÍMICA Avaliar a presença de fósforo em líquidos e monitoramento em procedimentos de diálise
Líquidos, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não Identificados Fosfomolibidato U V
No mesmo dia da coleta
IPF FRAÇOA DE PLAQUETAS IMATURAS
HEMATOLOGIA O conjunto destes parâmetros permite uma avaliação mais detalhada da cinética da produção de plaquetas. Esta informação auxilia no diagnóstico diferencial das plaquetopeniase tem função prognóstica em condições inflamatórias como as coronariopatias agudas, septicemia e outras.
Sangue – frasco com anticoagulante EDTA. Amostra deve chegar ao laboratório em, no máximo, 4 horas.
Não há necessidade de jejum
Crioaglutininas, microcoágulos e agregados de leucócitos e plaquetas.
Impedância e citometria de fluxo automatizada
Até 24 horas
IRF FRAÇÃO DE RETICULÓ CITOS IMATUROS
HEMATOLOGIA O conjunto destes parâmetros permite avaliação mais detalhada da eritropoiese e da cinética da incorporação de hemoglobina aos precursores eritroides. Os parâmetros apresentam resposta mais precoce que a contagem de reticulócitos quando há mudanças na velocidade da produção de hemácias. São informativos no tratamento de pacientes com insuficiência renal crônica e na avaliação de pacientes a transplantes de células tronco hematopoiéticas.
Sangue – frasco com anticoagulante EDTA. Amostra deve chegar ao laboratório em, no máximo, 4 horas.
Não há necessidade de jejum
Crioaglutininas, microcoágulos e agregados de leucócitos e plaquetas.
Impedância e citometria de fluxo automatizada
Até 24 horas
IDFUNGO FUNGO, IDENTIFI CAÇÃO, CEPA
MICROBIOLOGIA Identificação final de cepas de fungo problema. Cepa de fungo enviado ao Laboratório.
Não se aplica. Pleomorfismo Manual e automatizado.
Até 30 dias
PFUNGO FUNGOS, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Auxílio no diagnóstico das infecções causadas por fungos: sistêmicas ou dermatológicas.
Qualquer espécime clínico, coletado, coleções purulentas obtidas por punção, líquidos biológicos, urina e líquor. Material coletado de pele, por escarificação das lesões. Vide CFUNGO. Coletar em frasco estéril
Suspender medicação antifúngica, tópica ou sistêmica por 3 dias antes da coleta, se possível.
Medicamentos antifúngicos tópico ou sistêmicos.
Clarificação por hidróxido de potássio a 20 ou 30% antes da observação ao microscópio. As secreções são examina-das a fresco, com ou sem adição de tinta da china.
Até 24 horas
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Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 78 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
G6PD G6PD, TESTE QUALITATIVOSANGUE
HEMATOLOGIA Diagnóstico da deficiencia de G6PD. Coletar em frasco com anticoagulante ( EDTA) - tampa roxa (1,45 mg/mL sangue); transporte em banho de gelo. Horário de entrada até 12 horas. Enviar ao laboratório imediatamente após a coleta.
Recomendável jejum de 4 horas.
Transfusões. Brewer. No mesmo dia da coleta
GGT GAMA GLUTAMIL TRANSFERA SE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de doenças obstrutivas hepáticas e pós-hepáticas; hepatopatias; mononucleose infecciosa; transplante renal; hipo e hipertireoidismo; distrofia miotônica; como marcador de cânceres primários ou metastáticos; alcoolismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não Identificados Enzimático Colorimétrico, Szasz.
No mesmo dia da coleta
LACTATO LACTATO, GASOMETRIA SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, doenças metabólicas, cetoacidose diabética, acidose láctica, má perfusão tissular, miopatias severas, exercícios.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum.
Ar atmosférico; Hemólise; Garroteamento.
Lactato (Amperometria)
Imediato
PEGASO1 GASOMETRIA PERFIL 1, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmonares, distúrbios hemodinamicos agudos, insuficiência respiratória.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada.
Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum.
Ar atmosférico. Pontenciometria Imediato
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Nome: NÃO SE APLICA
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ISBN 978.85.63274.47-2
- 79 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PEGASO2 GASOMETRIA PERFIL 2, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmonares, distúrbios hemodina-micos agudos, insuficiência respira-tória. Equilíbrio hidroeletrolítico, hiper e hipoglicemia, coma hiperosmolar, diálise, insuficiência hepatica, neo-plasia, hiper e hipoparatireoidismo, cirurgias em geral, hemoconcen-trações e sangramentos.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofili-zada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccio-nar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum, exceto para glicemia.
Ar atmosférico ; Lipemia; Bilirrubina; Hemólise
Gasometria (Potenciométrico) Eletrólitos (ISE), Glicose (Amperomé-trico), Hb (Hemólise por ultrasom e absorbancia), Ht (Cálculo)
Imediato
PEGASO3 GASOMETRIA PERFIL 3, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmo-nares, distúrbios hemodinamicos agudos, insuficiência respiratória. Equilíbrio hidroeletrolítico, hiper e hipoglicemia, coma hiperosmolar, diálise, insuficiência hepatica, neoplasia, hiper e hipoparatireoi-dismo, cirurgias em geral, hemocon-centrações e sangramentos, acidose tubular renal, diarreias, vômitos e nefrites.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum, exceto para glicemia.
Ar atmosférico ; Lipemia; Bilirrubina; Hemólise
Gasometria (Potenciométrico)Eletrólitos (ISE),Glicose (Amperomé-trico), Hb (Hemólise por ultrasom e absorbancia), Ht (Cálculo)
Imediato
PEGASO4 GASOMETRIA PERFIL 4, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmo-nares, distúrbios hemodina-micos agudos, insuficiência respira-tória. Equilíbrio hidroeletrolítico, hiper e hipoglicemia, coma hiperosmolar, diálise, insuficiência hepatica, neo-plasia, hiper e hipoparatireoi-dismo, cirurgias em geral, hemoconcentra-ções e sangramentos, acidose tubular renal, diarreias, vômitos, nefrites, aci-dose lática, má perfusão tissular, mio-patias severas e dishemoglobinemia.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum, exceto para glicemia.
Ar atmosférico ; Lipemia; Bilirrubina; Hemólise; Acetaminofen; Dopamina.
Gasometria (Potenciométrico) Eletrólitos (ISE) Glicose (Ampero-métrico), Hb (Hemólise por ultrasom e absor-bancia), Ht (Cálculo), Lactato (Ampero-metria), Oximetria (Hemólise por ultrasom e absorbancia)
Imediato
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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ISBN 978.85.63274.47-2
- 80 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PEGASO5 GASOMETRIA PERFIL 5, SANGUE
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmonares, distúrbios hemodinami-cos agudos, insuficiência respiratória. Equilíbrio hidroeletrolítico, hiper e hipoglicemia, coma hiperosmolar, diálise, insuficiência hepatica, neopla-sia, hiper e hipoparatireoidismo, cirurgias em geral, hemoconcentra-ções e sangramentos, acidose tubular renal, diarreias, vômitos, nefrites, acidose lática, má perfusão tissular, miopatias severas e dishemoglobine-mia. intoxicações em geral, hemoglo-binopatias e afinidade O2/Hb.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum.
Acetaminofen; ar atmosférico; heparina em excesso; falta de heparina; lipemia; bilirrubina; hemólise; dopamina.
Gasometria (potenciométri-co); eletrólitos (ISE); glicose (ampero-métrico); Hb (hemólise por ultra-som + absorbância); Ht (cálculo); Lactato (amperometria); oximetria (hemodiálise por ultra-som e absorbância)
Imediato
PEGASO6 GASOMETRIA PERFIL 6, SANGUE.
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmonares, distúrbios hemodinami-cos agudos, insuficiência respiratória, dishemoglobinemias, intoxicações em geral, hemoglobinopatias, afinidade O2/Hb.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio liofiliza-da e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccio-nar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum
Ar atmosférico; Lipemia; Bilirrubina; Hemólise; Acetaminofen; Dopamina.
Gasometria (Potenciométrico)Hb ( Hemólise por ultrasom e absorbancia), Oximetria (Hemólise por ultrasom e absorbancia )
Imediato
PSURTO GERMES MULTIRRE SISTENTES, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de colonização de pacientes ou seus contatos. Secreção de orofaringe, nasofaringe, traqueal e de ferida cirúrgica. Swab com meio de transporte ou material coletado em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Nenhum. Cultura em meios seletivos para isolamen-to de: Pseudomonas
aeruginosa, Staphylococcus aureus, Acinetobacter sp e outros.
Até 3 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 81 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
GPL GLICEMIA PÓS SOBRE CARGA DE LACTOSE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de deficiência de dissacaridase pela tolerância à lactose.
Sangue, frasco com anticoagulante - tampa cinza (Fluoreto de Sódio) Sobrecarga: 50g de lactose diluída em água. Coletar os tempos: Jejum, 20, 40 e 60 min após administração de lactose.
Jejum de 8 horas para adultos e 4 horas para crianças.
Lipemia. Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
CGG GLICEMIA, CURVA GESTACIO NAL,DETERMINAÇÃO, SANGUE
BIOQUIMICA Estabelecer diagnóstico de Diabetes Gestacional. Sangue, frasco com anticoagulante - tampa cinza (Fluoreto de Sódio) Coletar tempos: Jejum, 1 h, e 2h pós-sobrecarga oral de glicose.
Jejum de 8 horas. Lipemia. Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
GLI GLICEMIA, SANGUE
BIOQUIMICA As determinações de glicose são utilizadas no diagnóstico e monitorização das doenças do metabolismodos hidratos de carbono, incluindo diabetes mellitus, hipoglicemia neonatal, hipoglicemia idiopática e carcinoma das células dos ilhéus do pâncreas
Sangue, frasco com anticoagulante - tampa cinza (Fluoreto de Sódio) ou san-gue, frasco sem anticoagu-lante apenas pacientes das enfermarias (HC) Informar se: jejum, pós café, pós almoço, pós jantar ou outros.
Jejum de 8 horas para adultos e 4 horas para crianças.
Lipemia. Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
TTG GLICOSE, TESTE TOLERÂNCIA, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de estados de tolerância diminuída à glicose e no diagnóstico de diabetes mellitus de variadas causas.
Sangue, frasco com anticoagulante - tampa cinza (Fluoreto de Sódio ) Coletar jejum e 2 horas pós sobrecarga oral de glicose (tempo 120 min).
Jejum de 8 horas. Lipemia Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
GLI24UR GLICOSÚRIA DE 24 HORAS, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Seguimentos de pacientes com diabetes mellitus. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Manter o frasco na geladeira durante o período de coleta.
Vitamina C, cefalosporinas, l-dopa, piridium, ácido nalidixico.
Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 82 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
GLIFRAUR GLICOSÚRIA FRACIONADA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Seguimentos de pacientes com diabetes mellitus. Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções inclusive a 1ª urina da manhã seguinte, divididas em 4 períodos de 6h em frascos limpos, fornecidos pelo laboratório, identificados por período de coleta. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Manter o frasco na geladeira durante o período de coleta.
Vitamina C, cefalosporinas, l-dopa, piridium, ácido nalidixico.
Enzimático Hexoquinase
No mesmo dia da coleta
GLOBAIS GLOBAIS, CONTAGEM SANGUE
HEMATOLOGIA Avaliações pré operatórias, pré quimioterapias e controles pré e pós transfusão, etc.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Não é necessário jejum.
Crioaglutininas, microcoagulos, agregados de leucócitos e plaquetas.
Automatizado. No mesmo dia da coleta
BHCG GONADOTROFINA CORIÔNICA, HORMÔNIO SANGUE
FISIOLOGIA Monitoramento de tumores de origem trofoblástica e gravidez de alto risco; diagnóstico precoce de gravidez.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia, hemólise, atividade de fosfatase alcalina elevada e pregnyl.
Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 2 dias
TTGOR GORDURA, TESTE DE TOLERÂNCIA, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação da capacidade de metabolização ou utilização de gordura da dieta.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar jejum (tempo 0 min), 2 h, 4h, após ingestão de dieta rica em gordura (40g/m2 de superfície corporal).
Jejum de 12 horas. Anotar peso e altura do paciente.
Ictericia, hemólise, citrato, oxalato e fluoreto.
Enzimático-Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
PHDUCREY Haemophilus ducrey, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de cancro mole. Secreção de lesão genital. Após limpeza prévia da lesão com gase e soro fisio-lógico, coletar o material do interior da lesão com espátu-la de madeira ou alça de platina. Preparar dois esfregaços.
Não usar medicação tópica por 24h.
Medicamentos de uso tópico ou sistêmico.
Pesquisa do H.ducreyi após coloração pelo método de Gram.
No mesmo dia da coleta
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Nome: NÃO SE APLICA
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 83 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
HAM HAM E SACAROSE, TESTE, SANGUE
HEMATOLOGIA Diagnóstico de hemoglobinúria paroxística noturna. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa e frasco sem anticoagulante
Agendar no Laboratório, ramal 17589.
Informar grupo sanguíneo.
Transfusões sanguíneas recentes. Lise por solução iso-osmótica de sacarose.
Até 7 dias.
HAPTO HAPTOGLOBINADETERMINAÇÃ
O, SANGUE
HEMATOLOGIA Investigação de hemólise. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
HEMO HEMOCULTURA, SANGUE E MEDULA ÓSSEA
MICROBIOLOGIA Útil no diagnóstico etiológico das endocardites, meningites, nas bacteremias originadas de focos urinários, respiratórios ou feridas cirúrgicas, febre tifoide, brucelose e na presença de catéteres infectados.
Sangue: Após antissepsia cuidadosa do local da punção, coletar até 2 amos-tras nas primeiras 24 horas em frasco apropriado para automação (de 8 a 10ml para adultos e de 3 a 5 ml para crianças).
Medula Óssea: Colocar o maior volume possível no frasco pediátrico
Antissepsia rigorosa do local da coleta.
Uso de antimicrobianos, coleta em pico febril e refrigeração do frasco.
Automatizado. Até 15 dias.
HBF HEMOGLOBINA FETAL, QUANTIFICAÇÃO, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico no controle de tratamento de pacientes com anemia falciforme/talassemias.
Sangue, (frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa).
Recomendável jejum de 4 horas.
Transfusão recente. automação por HPLC.
Até 5 dias.
HBGLI HEMOGLOBINA
GLICOSILADASANGUE
BIOQUIMICA Monitoramento do controle da glicose a longo prazo em pacientes com Diabetes Mellitus.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa
Não é necessário jejum.
Presença de hemoglobinopatias lipemia, ictericia, uremia e alcoolismo.
Cromatografia Líquida de Alta Pressão (HPLC).
Até 8 dias
HBINST HEMOGLOBINA INSTÁVEL, PESQUISA, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico de anemias hemóliticas. Sangue: 1frasco sem anticoagulante e 2 frascos com anticoagulante EDTA (1,45 mg/ml) ou 3 gotas de EDTA 10%. OBS:Agendar no ramal 17589. Coletar e enviar ao laboratório até as 12 horas.
Jejum de 4 horas. Medicamentos oxidantes. Pesquisa de corpos de Heinz, de inclusões de HbH, instabi-lidade térmica, instabilidade em isopropanol e instabilidade em n-butanol.
Até 5 dias.
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 84 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
HBS HEMO GLOBINA S, QUANTIFICAÇÃO, SANGUE
HEMATOLOGIA Monitoramento de transfusões em pacientes falciformes. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa
Recomendável jejum de 4 horas.
Informar transfusões. Eletroforese e HPLC.
Até 5 dias.
HBUR HEMOGLOBINÚRIA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Reação transfusional, anemia hemolítica, queimados graves, infecções graves.
Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã. ou após crise aguda
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Vitamina C e contaminantes oxidantes.
Tira reagente e teste de Blan-dheim (análise qualitativa).
No mesmo dia da coleta
HMG HEMOGRAMA COMPLETOSANGUE TOTAL
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico em anemias, leucemias, infecções e inflamações.
Sangue, (frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa).
Não é necessário jejum.
Crioaglutininas, microcoágulos e agregados de leucócitos e plaquetas.
Contagem global automatizada (contador eletrônico). Contagem diferencial por microscopia e automação.
Enfermaria: no mesmo dia da coleta. Ambulatório: até 2 dias.
HEPA HEPATITE A, PESQUISA DE ANTICOR-POS, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico da hepatite A. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Quimiolumines-cência (CMIA)
Até 3 dias
ANTIHBS HEPATITE B, DETERMINAÇÃO QUANTITATIVA
DE ANTI-HBS, SANGUE
IMUNOLOGIA Acompanhamento pós vacina ou seguimento sorológico de hepatite B.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Quimiolumines-cência (CMIA)
Até 7 dias
HEPB HEPATITE B, PESQUISA DE ANTÍGENOS E ANTICORPOS ESPECÍFICOSSANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico e seguimento de hepatite B. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Quimiolumines-cência (CMIA)
Até 7dias
VHCPCR HEPATITE C DETECÇÃO QUALITATIVA DO HCV – MÉTODO RT-PCR, SANGUE
IMUNOLOGIA Detecta a presença de RNA do vírus da hepatite C, na circulação.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Não é necessário jejum.
Reação em cadeia da polimerase (RT- PCR). Sensibilidade do método 50 UI/mL
Até 24 dias
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 85 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
VHCGENOTIP HEPATITE C, GENOTIPAGEM DO VIRUS, SANGUE
IMUNOLOGIA Determinação do genótipo do vírus da hepatite C. Sangue, frasco sem anticoagulante
Não é necessário jejum.
Reação em cadeia da polimerase após transcri-ção
reversa, seguida de hibridização reversa. Permi-te a determina-ção dos 6 genótipos do HCV e seus subtipos.
Até 30 dias
HEPC HEPATITE C, PESQUISA DE ANTICORPOS SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de Hepatite C. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Quimiolumines-cência (CMIA)
Até 7 dias
ACTH HORMÔNIO ADRENOCORTI
COTRÓPICO, SANGUE
FISIOLOGIA Auxílio diagnóstico nas disfunções de hipo e hipersecreção do _cterí adrenal e diagnóstico diferencial de hipercortisolismo (Síndrome de Cushing)
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) – tampa roxa. Manter em banho de gelo, e enviar ao laboratório imediatamente. Coletar preferencialmente entre: 07h00 – 10h00 da manhã.
Jejum de 6 horas, repouso por 30 minutos antes da coleta
Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Quimiolumines-cência.
Até 15 dias.
HGH HORMONIO DO CRESCIMENTO HUMANO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de criança com baixa estatura e de indivíduos com Pan-hipopituitarismo, após testes de estímulo da secreção de hormônios de crescimento. Acompanhamento de pacientes com acromegalia e/ou gigantismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante Manter os frascos em banho de gelo antes e depois da coleta e enviar imediatamente ao laboratório.
Jejum de 6 horas. Repouso de 30minutos antes da coleta de sangue.
Icterícia e lipemia Imunoensaio/ Quimiolumines-cência
Até 15 dias.
TDHGH HORMONIO DO CRESCIMENTO HUMANO, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de criança com baixa estatura (deficit de hormônio de crescimento) e de indivíduos com Pan-hipopituitarismo, após testes de estímulo da secreção de hormônios de crescimento. Acompanhamento de pacientes com acromegalia e/ou gigantismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coleta basal e após infusão: - HGH (HGH Basal); - HGH15; HGH30; HGH45; HGH60; HGH90; HGH120 e HGH180. Manter os frascos em banho de gelo antes e depois da coleta, enviar imediatamente ao laboratório.
Jejum de 6 horas. Repouso de 30minutos antes da coleta de sangue.
Icterícia e lipemia. Imunoensaio/ Quimiolumines-cência.
Até 15 dias.
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 86 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
LH HORMÔNIO LUTEINIZANTE, SANGUE
FISIOLOGIA Avaliação de puberdade precoce, sob teste de estímulo com GnRH; diagnóstico diferencial de hipogonadismo primário ou secundário, infertilidade masculina e feminina, menopausa.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar período do ciclo menstrual.
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimiolumi-nescência.
Até 3 dias
PTH HORMÔNIO PARATI-ROIDIANO, SANGUE
FISIOLOGIA Auxiliar no diagnóstico das disfunções do metabolismo ósseo (hiperparatiroidismo e hipoparatireoidismo) e da litíase renal.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar amostra pela manhã e enviar ao laboratório em banho de gelo.
Jejum de 6 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio / Eletroquimiolu-minescência.
Até 7 dias
HIVTR HIV-1 E HIV-2, TESTE RÁPIDO, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de infecção causada pelo HIV-1 ou HIV-2.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Não é necessário jejum.
Não se aplica. Imunocromato-gráfico.
Ate 2 horas
IGA IGA, DETERMINAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de déficits congênitos ou adquiridos. Níveis elevados podem ser encontrados em pacientes portadores de mieloma de IgA.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise Nefelometria. Até 7 dias
IGFBP3 IGFBP-3 SANGUE
FISIOLOGIA Os fatores de crescimento insulinoides (IGFs) constituem uma família de peptídeos envolvidos na regulação do crescimento celular. No plasma, os IGFs (IGF-I e IGF-II) estão ligados (95%) a uma família de proteínas ligadoras (IGFBP-3) e tem se mostrado útil no diagnóstico e seguimento de doenças relacionadas ao déficit (principalmente) e ao excesso de hormônio de crescimento (GH).
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Anticoagulantes Imunoensaio/ Quimiolumi-nescência
Até 15 dias
IGE IGE, DETERMINAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de atopia. Valores aumentados podem ser encontrados em doenças parasitárias, mieloma de IgE, aspergilose e fenômenos alérgicos tais como: rinite, asma e urticária. Diagnóstico diferencial em imunodeficiências.
Sangue, frasco sem anticoagulante .
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria Até 7 dias
IGGLCR IGG, DETERMINAÇÃO QUANTITATIVA, LIQUOR
IMUNOLOGIA IgG liquor é utilizado para avaliar o envolvimento do sistema nervoso central com infecções, neoplasias ou doenças neurológicas primárias (em particular esclerose múltipla).
Líquor .Coletar através de punção sub oocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia
Presença de hemácias em grande quantidade (acidente de punção)
Nefelometria. Até 7 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 87 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
IGG IGG, DETERMI NAÇÃO QUANTITATIVA,
SANGUE
IMUNOLOGIA IgG sangue: Útil na avaliação de défcits de imunidade humoral, congênitos, transitórios ou adquiridos. Níveis elevados de IgG podem ser encontrados em pacientes portadores de
Mieloma Multiplo.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
IGM IGM, DETERMI NAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Útil na avaliação da imunidade humoral. Níveis elevados são observados nas doenças linfoproliferativas (mieloma, macroglobulinemia de Waldenstron).
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
IEF IMUNO ELETRO FORESE SANGUE
IMUNOLOGIA Útil no diagnóstico de paraproteinemias (mieloma, macroglobulina de Waldenstron) e de imunodeficiências.
Sangue, frasco sem anticoagulante Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Imunoeletro-forese / Imunofixação
Até 15 dias
IMUNOGLOB IMUNO GLOBULINAS, DETERMI NAÇÃO QUANTITA TIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Avaliação da imunidade humoral e no diagnóstico de mielomas múltiplos.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
INSUL INSULINA, DOSAGEM, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico e classificação do Diabetes Mellitus, hipoglicemias, insulinomas e avaliação de reserva pancreática sob estímulos.
Sangue, frasco sem anticoagulante Enviar os frascos imediata-mente ao laboratório.
Jejum de 8 horas. Coleta com EDTA; soro hemolisado; uso de insulina; presença de anticorpos anti-insulina; icterícia; lipemia, proinsulina.
Imunoensaio / Quimiolumi-nescência.
Até 7 dias
TDINSUL INSULINA, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico das Síndromes de Resistência à insulina, classificação do Diabetes Mellitus, hipoglicemias, insulinomas e avaliação de reserva pancreática sob estímulos.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coleta basal e após infusão: - INSUL (Insulina Basal) - INSUL30; INSUL60; INSUL90; INSUL120 e INSUL180.
Jejum de 8 horas. Coleta com EDTA; soro hemolisado; uso de insulina; presença de anticorpos anti-insulina; icterícia, lipemia, próinsulina
Imunoensaio / Quimiolumi-nescência.
Até 7 dias
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Nome: NÃO SE APLICA
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 88 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
RELKAPLAM KAPPA LAMBDA EM URINA, RELAÇÃO
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação de proteinúria tubular. Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2
a micção da manhã.
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Mieloma múltiplo. Nefelometria. Até 3 dias
LIQLD LACTATO DESIDRO GENASE, LIQUIDOS CAVITÁRIOS
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de derrames cavitários. Líquidos pleural, pericárdico, peritoneal. Coletar frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Não identificados. Enzimático No mesmo dia da coleta
LD LACTATO DESIDRO GENASE, SANGUE
BIOQUIMICA As determinações da LDH são realizadas para o diagnóstico e tratamento de hepatopatias como hepatite viral aguda, cirrose e carcinoma metastático do fígado, cardiopatias como enfarte do miocárdio e tumores renais e pulmonares
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise Enzimático No mesmo dia da coleta
PL LARVAS, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Diagnóstico de estrongiloidíase e ancilostomíase. Fezes e escarro recém-emitidos
Sem preparação prévia.
Laxantes. Rugai; Harada-Mori; Sedimentação.
No mesmo dia da coleta
BAL LAVADO BRÔNQUIO ALVEOLAR, CITOLOGIA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de pneumopatias. Lavado brônquioalveolar Coletar o material em 3 a 4 frascos estéreis, numeran-do-os em ordem de coleta.
Sem preparação prévia.
Perda de recuperação total do lavado.
Microscopia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
CLEISH LEISHMÂNIA, CULTURA,
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de formas promastigotas de Leishmânias.
Biópsia de úlceras cutâneas ou mucosas, baço, fígado e outros órgãos - coletar em frasco estéril e enviar ao laboratório. Punção de medula óssea ou de outros órgãos – coletar 0,1 ml do material, semear em meio de cultura formecido pelo laboratório e preparar 2 lâminas de esfregaço.
Sem preparação prévia.
No caso de lesões ulceradas, o paciente não deve fazer uso de medicações. Falta de assepsia na coleta e transporte inadequado.
Cultura em meio N.N.N. e outros; colorações de esfregaço e de "inprint".
Até 21 dias.
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- 89 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PLEISH LEISHMÂNIA, PESQUISA
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de formas amastigotas de leishmânias.
Biópsia de úlceras cutâneas ou mucosas, baço, fígado e outros órgãos - coletar em frasco estéril e enviar ao
laboratório. Punção de medula óssea ou de outros órgãos – coletar 0,1 ml do material e preparar 2 lâminas de esfregaço.
Sem preparação prévia.
Medicação, falta de assepsia na coleta, transporte inadequado e demora no envio das amostras.
Coloração de esfregaço e "inprint".
Até 2 dias
IMUNOLEISH LEISHMA NIOSE VISCERAL, PESQUISA DE ANTICORPOS
PARASITOLOGIA Diagnóstico de Calazar. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Material congelado, lipemia. Imunocromato-grafia
No mesmo dia da coleta.
CULTLEITE LEITE, CULTURA
MICROBIOLOGIA Avaliação de contaminação de leite preparado e leite materno ordenhado.
Leite industrializado, preparado no lactário e leite materno ordenhado. Coletar em frascos estéreis.
Não se aplica. Não há. Manual e quantitativo.
Até 7 dias
LIP LIPASE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de pancreatites; cólicas biliares; torção ou infarto intestinal; peritonite; cisto ou pseudocisto pancreático.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados Enzimático Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
LIQLIP LIPASE, LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
BIOQUÍMICA Avaliar presença de lípase em líquidos cavitários Liquidos cavitários, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não há Enzimático Colorimétrico
No mesmo dia da coleta
TL LIPÓLISE, TESTE DE, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação da atividade lipolítica do plasma após ingestão de dieta rica em gordura.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar jejum (tempo 0 min) e 15 minutos após a administração de heparina 100U/Kg peso corporal, dose única.
Jejum de 12 horas. Citrato, oxalato, fluoreto, icterícia e hemólise.
Enzimático-Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
LPA LIPOPROTEÍNA (A), SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de risco aumentado para doença aterosclerótica. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Lipemia, amostras contaminadas com partículas em suspensão.
Nefelometria. Até 3 dias.
LIQBIOQ LÍQUIDOS BIOLÓGICOS, BIOQUIMICA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de derrames cavitários. Líquido pleural, pericárdico, peritonial e sinovial. Coletar frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Hemólise. Glicose: enzimático Hexoquinase Proteína: colorimétrico
No mesmo dia da coleta
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ISBN 978.85.63274.47-2
- 90 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
LIQCIT LÍQUIDOS, CITOLOGIA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de derrames. Líquido pleural, pericárdico, peritonial e sinovial. Coletar em frasco com anticoagulante citrato de sódio - tampa azul ou em frasco com anticoagulante EDTA - tampa roxa.
Sem preparação prévia
Presença de coágulos. Microscopia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
LCRBIOQ LÍQUOR, BIOQUÍMI-CA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de acometimento do sistema nervoso central. Líquor. Coletar a amostra de líquor através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Ver métodos isolados. Ver métodos isolados (GLILCR e PROTLCR).
No mesmo dia da coleta
LCRCIT LIQUOR, CITOLOGIA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de acometimento do sistema nervoso central. Líquor. Coletar a amostra de líquor através de punção sub ocipital ou lombar com pré-via antissepsia. Após a cole-ta, o material deve ser enca-minhado imediatamente à seção. Indicar local de pun-ção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Material com mais de 30 min de coleta.
Microscopia óptica comum.
No mesmo dia da coleta
EUGLOBULIN LISE DE EUGLOBULINA, SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio na avaliação da fibrinólise. Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul.
Coletar após repouso de 2 horas e jejum de 6 horas. Informar terapia com heparina.
Heparina, fibrinogênio muito baixo, hemólise, garroteamento prolongado.
Lise em tubo/lise em placa.
Até 20 dias
LI LITIO, SANGUE
BIOQUIMICA monitorização dos níveis terapêuticos e toxicidade. quando utilizados na psicose maniaco depressiva e outros distúrbios psiquiátricos.
Sangue, frasco sem anticoagulante. A Coleta deve ser realizada 12h após última dose
Não é necessário jejum.
. Não identificados
Fotometria de Chama.
Enfermaria No mesmo dia da coleta Ambulatório 3 dias
MG MAGNÉSIO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de desidratação; insuficiência renal aguda ou crônica; doenças endócrinas; doenças associadas à baixa ingestão ou absorção deficiente de Mg; pancreatite aguda; alcoolismo crônico; glomerulonefrite crônica.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise, lipemia. Colorimétrico Azul de Xilidil
1 dia.
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- 91 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
MGURI MAGNÉSIO, URINA
BIOQUIMICA Dosagem do magnésio na urina é utilizada para avaliação da sua perda urinária e do seu balanço. Níveis baixos na urina precedem a redução do magnésio sérico e também detectar deficiência de magnésio por doenças intestinal
Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia
Não identificados. Colorimétrico Azul de Xilidil
No mesmo dia da coleta
MALÁRIA MALÁRIA, SANGUE
PARASITOLOGIA Diagnóstico das espécies de plasmódios. Sangue por punção digital (esfregaço sanguineo e gota espessa) ou sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) – tampa roxa Coletar de preferência no pico febril.
Estado febril. Drogas antimalárias, antibióticos. Coloração de Giemsa ou outras no esfregaço fino e método de Walker para gota espessa; será realizada a parasitemia (nºde parasitos por mm³) em Plasmodium falciparum.
No mesmo dia da coleta
MANTOUX MANTOUX, REAÇÃO INTRA DÉRMICA
IMUNOLOGIA Auxiliar no diagnóstico de infecção passada ou presente pelo bacilo da tuberculose; avaliação da imunidade celular, teste de hipersensibilidade à tuberculina.
Aplicação e leitura: Consultar o Setor de Coleta.
Sem preparação prévia.
Uso de corticosteroides ou imunossupressores
Reação intradérmica.
Até 7 dias.
METAHB METAHEMO GLOBINA
GASOMETRIA Avaliação de acidoses, alcaloses, hipoxemias, hiper e hipoventilação, doenças metabólicas, renais, pulmonares, distúrbios hemodinâmicos agudos, insuficiência respiratória,
dishemoglobinemias, intoxicações em geral, hemoglobinopatias, afinidade O2Hb.
Sangue arterial ou venoso, coletado utilizando seringa com heparina de lítio
liofilizada e balanceada. Volume mínimo de 0,5 a 1,0 ml de amostra, coletada sem garroteamento, sem friccionar a pele e sem promover estímulos mecânicos. Enviar imediatamente ao laboratório.
Não é necessário jejum.
Ar atmosférico; Lipemia; Bilirrubina; Hemólise
Hemólise por ultrasom e absorbancia
Imediato
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ISBN 978.85.63274.47-2
- 92 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
METOTREX METO TREXATE, SANGUE
BIOQUIMICA Como imunossupressor: tratamento de artrite reumatóide, lúpus eritematoso sistêmico, agranulomatose de Wegener, doença de Crohn e psoríase severa. Como antineoplásico: câncer de mama, cabeça, pescoço, pele e ovário, linfoma não-Hodgkin, sarcoma osteogênico, carcinoma colo-retal, linfoma de Hodgkin, leucemias, carcinoma de esôfago e estômago, carcinoma de pulmão, tratamento gestacional de coriocarcinoma, corioadenoma
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar se a coleta é pré ou pós-administração e o tempo decorrido desde a última administração. Tempo de coleta: 2 horas após administração oral de baixa dose. 30 minutos após administração (EV) de baixa dose. 24, 48, 72 horas após infusão (EV) de altas.
Não é necessário jejum.
Icterícia, hemólise, lipemia e proteína podem causar interferência inferior a 10%.
Imunoensaio enzimático homogêneo
No mesmo dia da coleta.
MIC MIC DETERMI NAÇÃO DA CONCENTRAÇÃO INIBITÓRIA MÍNIMA, CEPA
MICROBIOLOGIA Determinação da concentraçao mínima inibitória de antibióticos em bactérias importantes para a Comissão de Infecção Hospitalar, para fins epidemiológicos ou para avaliar falha terapeutica.
Cepa isolada no Laboratório de Microbiologia. Micro-organismo obtido nas seguintes análises: CRD, CLIQ, CLCR, PSURTO e CULTLIQ.
Internado em hospital. Não se aplica. Antibiograma especial feito com tiras de E-teste.
Até 3 dias
CMICODIAG MICO BACTÉRIAS, CULTURA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de tuberculose e micobacterioses atipicas em diversos órgãos, que não sangue e medula óssea.
Escarro, lavado brônquico, lavado bronco alveolar, lavado gástrico, líquidos cavitários, urina, biópsia e gânglio. Coletar em frasco estéril Escarro: orientar o paciente para obter o material pela manhã após tosse profunda, Coletar 3 amostras, em dias diferentes, em frasco de boca larga. Urina: coletar a 1ª urina da manhã, como urocultura.
Jejum para lavado gástrico.
Uso de tuberculostáticos. Automação. Até 45 dias.
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ISBN 978.85.63274.47-2
- 93 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CMICOTT MICO BACTÉRIAS, CULTURA, CONTROLE DE TRATAMENTO
MICROBIOLOGIA Avaliação do controle de tratamento de tuberculose e micobacterioses atipicas em diversos órgãos.
Escarro, lavado brônquico, lavado bronco alveolar, lavado gástrico, líquidos cavitários, urina, biópsia, gânglio. Coletar em frasco estéril. Escarro: orientar o paciente para obter o material pela manhã após tosse profunda, Coletar 3 amostras, em dias diferentes, em frasco de boca larga. Urina: coletar a 1ª urina da manhã, como urocultura.
Jejum para lavado gástrico.
Uso de tuberculostáticos. Automação. Até 45 dias.
IDBK MICO BACTÉRIAS, IDENTIFI CAÇÃO, CEPAS
MICROBIOLOGIA Identificação de cepas de micobactérias. Cepas enviadas ao Laboratório.
Não se aplica. Não se aplica. Manual Até 15 dias
PMICODIAG MICO BACTÉRIAS, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de tuberculose. Escarro, lavado brônquico, lavado bronco alveolar, lavado gástrico, líquidos cavitários, urina, biópsia, gânglio, exceto sangue e urina. Coletar em frasco estéril. Escarro: orientar o paciente para obter o material pela manhã após tosse profunda, Coletar 3 amostras, em dias diferentes, em frasco de boca larga. Urina: coletar a 1ª urina da manhã, como urocultura.
Seguir orientação para coleta do material.
Uso de tuberculostáticos. Coloração método de Ziehl-Neelsen.
No mesmo dia da coleta
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 94 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PMICOTT MICO BACTÉRIAS, PESQUISA, CONTROLE DE TRATA-MENTO
MICROBIOLOGIA Avaliação de tratamento de tuberculosse. Escarro, lavado brônquico, lavado bronco alveolar, lavado gástrico, líquidos cavitários, urina, biópsia, gânglio, exceto sangue e urina. Coletar em frasco estéril. Escarro: orientar o paciente para obter o material pela manhã após tosse profunda, Coletar 3 amostras, em dias diferentes, em frasco de boca larga. Urina: coletar a 1ª urina da manhã, como urocultura.
Seguir orientação para coleta do material.
Uso de tuberculostáticos. Coloração método de Ziehl-Neelsen.
No mesmo dia da coleta
MICROALB MICRO ALBUMINÚRIAURINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Diagnóstico precoce de nefropatia diabética. Urina overnight (repouso). Esvaziar a bexiga antes de deitar, ao levantar coletar
todo o volume urinário, ou amostra isolada.
Anotar o horário em que o paciente foi dormir e o horário em
que se levantou.
Não identificados. Nefelometria. 48 horas.
FILÁRIA MICRO FILÁRIAS, PESQUISA, SANGUE
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de filariose. Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul Ideal que a coleta seja realizada entre 22 horas e 2 horas.
Sem preparação prévia.
Horário de coleta. Coloração vital; coloração após fixação (Giemsa ou Leishmann).
Até 2 dias
IDBACTERIA MICRO ORGANISMO, IDENTIFI-CAÇÃO, CEPA
MICROBIOLOGIA Identificação final de cepas de bactéria problema. Cepas enviadas ao Laboratório.
Não se aplica. Não se aplica. Automatizado. Até 7 dias.
PMICROSP MICROS PORÍDEOS, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Auxílio no diagnóstico etiológico da microsporidiose. Fezes recém emitidas, podendo estar conservadas em formol a 10% e líquidos biológicos.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Gram-chromotrope e outras colorações.
Até 2 dias
MIOUR MIOGLOBINA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Trauma muscular, coma prolongado, convulsões, doenças musculares degenerativas, anemia grave.
Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã. ou após crise aguda
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Vitamina C e contaminantes oxidantes.
Tira reagente e teste de Blandheim (análise qualitativa).
No mesmo dia da coleta
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o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 95 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
MONO MONO NUCLEOSE, PESQUISA DE ANTICORPOS, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de mononucleose infecciosa. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Imunoenzimá-tico (ELFA). Aglutinação
Até 11 dias
MONTENEGRO MONTENEGRO REAÇÃO INTRADÉR-MICA (LEISHMANIOSE)
IMUNOLOGIA Auxiliar no diagnóstico da Leishmaniose Tegumentar Americana (LTA)
Aplicação e leitura: Consultar o Setor de Coleta.
Sem preparação prévia.
Pode apresentar reação cruzada com tripanossomoses, tuberculoses e hanseníase
Reação intradérmica.
Até 7 dias
PMH Mycobacterium leprae, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de hanseníase. Vide observação abaixo Sem preparação prévia.
Excesso de sangue misturado a linfa.
Microscopia após coloração pelo método de Ziehl-Neelsen.
No mesmo dia da coleta
Observação Material a Coleta: Linfa de lóbulos de orelhas, cotovelos, joelhos e de outra lesão especificada pelo clínico. Obter a linfa através de compressão prévia do local com pinça e escarificação com agulha sem sangramento. Preparar esfregaços por impressão em lâminas, com identificação do local. Pode-se também fazer uma pequena incisão com bisturi estéril e escarificar o fundo da mesma, sem sangramento. Transportar o material para a lâmina de bacterioscopia.
STUB Mycobacterium tuberculosis, ANTIBIO GRAMA, CEPA
MICROBIOLOGIA Avaliação de falha terapêutica no tratamento de tuberculose. Cepa de Mycobacterium tuberculosis isolada no Laboratório de Microbiologia.
Em uso de tuberculostáticos.
Tuberculostáticos. Automatizado Até 21 dias
PCGONO Neisseria gonorrhoeae, PESQUISA E CULTURA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de Gonorreia. Urina (primeiro jato), secreção uretral, swab de endocervice, swab anal, swab de orofaringe. Coletar 2 amostras de cada sítio, por meio de swab fino, enviar ao laboratório imediatamente. Coletar em frasco estéril.
Coletar antes de antibioticoterapia.
Antibioticoterapia, demora no envio da amostra.
Manual e automatizado.
Até 3 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 96 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
OSMOLAL OSMOLALIDADE
BIOQUIMICA Utilizado para avaliar a capacidade de concentração e diluição da urina. É usada para diagnosticar os diferentes tipos de diabetes insípido, e avaliar a capacidade de concentração dos rins na insuficiência renal aguda ou crônica, e o grau de acometimento renal nas diversas doenças renais.
Sangue, frasco sem anticoagulante Urina - amostra isolada e recente. Urina de 24h: desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Não é necessário jejum.
Glicose e ureia. Osmometria. 3 dias
PBMICOSLCR PARACOC CIDIOIDES BRASILIEN-SIS, PESQUISA DE ANTICORPOSLIQUOR
IMUNOLOGIA Diagnóstico da infecção causada pelo Paracoccidioides brasiliensis.
Líquor Coletar através de punção suboccipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Presença de hemácias em grande quantidade (acidente de punção).
Imunodifusão radial dupla
Até 14 dias
PBMICOSE Paracoccidioides brasiliensis, PESQUISA DE ANTICORPOS, SANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico da infecção causada pelo Paracoccidioides brasiliensis.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise, lipemia. Imunodifusão radial dupla
Até 14 dias
PROTO PARASI TOLOGICO DE FEZES
PARASITOLOGIA Investigação de parasitos intestinais: pesquisa de ovos e larvas de helmintos; cistos, oocistos e trofozoítos de protozoários.
Fezes: coletar fezes em coletor, podendo este material ser conservado em geladeira até 24 horas, fora do congelador.
Sem preparação prévia.
Medicamentos: antiácidos, antidiarreicos, antiparasitários, antibióticos, bário, bismuto, magnésio e carbonato de cálcio.
Lutz (Hoffmann); Rugai; Willis; Kato-katz.
até 24 horas.
PEPTC PEPTÍDEO C, DOSAGEM, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial do insulinoma e da hipoglicemia factícia, marcador de células beta; monitoramento terapêutico de diabetes tipo II; avaliação da reserva pancreática.
Sangue, frasco sem anticoagulante ; Sangue, frasco com anticoagulante - tampa verde (Heparina). Manter em banho de gelo, antes e depois da coleta e enviar imediatamente ao laboratório.
Jejum de 8 horas. Icterícia; hemólise; coleta em EDTA; lipemia; pró-insulina.
Imunoensaio Quimioluminescência.
Até 7 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 97 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PHLCAV PH, LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Diferenciação entre transudatos e exsudatos. Líquido pleural, pericárdico, peritonial ou sinovial. Coletar em seringa heparinizada, mínimo de 5 ml.
Sem preparação prévia.
Coagulos, material em contato com o ar ambiente.
PHmetria. No mesmo dia da coleta
PITS PITS, SANGUE
HEMATOLOGIA Avaliação de função esplênica. Sangue (1 gota, colhido por punção digital). Coletar em frasco próprio do laboratório, contendo 2 mL de solução salina tamponada e formaldeido.
Recomendável jejum de 4 horas.
Transfusão. Microscopia/ contraste de interferência
Até 2 dias.
PLAQUETAS PLAQUETAS, CONTAGEM SANGUE
HEMATOLOGIA Auxílio diagnóstico de coagulopatias e avaliações pré-operatórias.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Não é necessário jejum.
Microcoagulos, agregados plaquetários.
Automatizado. No mesmo dia da coleta
PCARINI PNEUMO CYSTIS CARINII (JIROVECI)
MICROBIOLOGIA Diagnóstico de pneumocistose Lavado broncoalveolar, Lavado brônquico e escarro induzido
Sem preparação prévia.
Não identificados Coloração específica azul orto-toluidina
Até 10 dias
PBGUR PORFOBILINOGÊNIO, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de porfirias. Urina, amostra isolada e recente, colhida em frasco escuro, protegida da luz.
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Urobilinogenio. Reação de Hoesch (análise qualitativa).
No mesmo dia da coleta
K POTASSIO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de distúrbios eletrolíticos de várias causas incluindo doenças hematológicas, endócrinas, renais e gastrointestinais, traumas e medicamentos.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise ISE – eletrodo íon seletivo
No mesmo dia da coleta
LIQK POTÁSSIO EM LÍQUIDOS
BIOQUÍMICA Avaliar a presença de potássio em líquidos cavitários e monitoramento do potássio durante procedimento de diálise
Líquido, frasco sem anticoagulante
Sem preparação prévia.
Hemólise ISE – eletrodo íon seletivo
No mesmo dia da coleta
KURI POTASSIO, URINA
BIOQUIMICA Exame útil na avaliação do equilíbrio hidroeletrolítico e ácido-básico para diferenciação das hipopotassemias, no sentido de indicar se a perda de potássio é renal.
Urina , amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia.
Não identificado. Eletrodo Íon Seletivo.
No mesmo dia da coleta
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 98 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PREALB PRE ALBUMINA (TRANS TIRETINA),
SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de estado nutricional; amiloidose. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Nefelometria. Até 8 dias.
PROG PROGESTERONA, SANGUE
FISIOLOGIA Infertilidade, avaliação do ciclo menstrual e determinação de ovulação.
Sangue, frasco sem anticoagulante Informar periodo do ciclo menstrual. Coletar de preferência na fase lútea (21º ao 24º dia do ciclo).
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimio-luminescência.
Até 3 dias
PRL PROLACTINA, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico de tumores hipofisários produtores de prolactina. Auxilia no diagnóstico das síndromes de galactorreia e/ou amenorreia, esterilidade feminina e no diagnóstico de impotência e esterilidade masculina.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar com paciente em repouso (deitado por 30 minutos ou sentado por 60 minutos, tempo considerado mínimo).
Jejum de 6 horas, não coletar em jejum prolongado.
Estresse e hipoglicemia. Imunoensaio / Eletroquimio-luminescência.
Até 3 dias
TDPRL PROLACTINA, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Teste utilizado para a avaliação da reserva hipofisária e diagnóstico de tumores hipofisários produtores de prolactina. Auxilia no diagnóstico das síndromes de galactorreia e/ou amenorreia, esterilidade feminina e no diagnóstico de impotência e esterilidade.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar com paciente em repouso (deitado por 30 minutos ou sentado por 60 minutos, tempo considerado mínimo). Coleta após infusão de TRH: - PRL (Prolactina Basal) - PRL15; PRL30; PRL45 E PRL60.
Jejum de 6 horas, não coletar em jejum prolongado.
Estresse e hipoglicemia. Imunoensaio/ Eletroquimio-luminescência.
Até 3 dias
PROTCREA PROTEINA CREATININA, RELAÇÃO, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Valor preditivo para excreção de proteínas urinárias em 24 horas.
Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã.
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Icterícia Cinético colorimétrico Jaffé.
No mesmo dia da coleta
PCR PROTEÍNA C REATIVA, DETERMINAÇÃO QUANTITATIVA, SANGUE
IMUNOLOGIA Detecção e avaliação de doenças inflamatórias, infecciosas. Útil no diagnóstico precoce de sepse.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia e hemólise. Nefelometria. Até 7 dias
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 99 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
PROT PROTEÍNAS TOTAIS, SANGUE
BIOQUIMICA Utilizada no diagnóstico e tratamento de uma série de doenças que envolvem o fígado, os rins ou a medula óssea, bem como outras perturbações metabólicas ou nutricionais
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados Colorimétrico. No mesmo dia da coleta
PROTLCR PROTEÍNAS DOSAGEM, LÍQUOR
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de acometimento do sistema nervoso central. Líquor. Coletar a amostra de líquor através de punção sub ocipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Colorimetrico. No mesmo dia da coleta
PROT24 PROTEINÚRIA DE 24 HORAS, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação de lesões glomerulares e tubulares. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Manter o frasco de urina em geladeira durante o período de coleta.
Bicarbonato de sódio, piridium. Colorimétrico automatizado.
No mesmo dia da coleta
PROTGLOM PROTEINÚRIA GLOMERULAR, AVALIAÇÃO
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação da seletividade da proteinúria glomerular (Sindromes nefróticas).
Sangue, frasco sem anticoagulante Urina,amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã.
Jejum de 4 horas. Estase vesical de 3 a 4 horas.
Não identificados. Nefelometria. Até 3 dias
TPAP PROTROMBINA,
TEMPO, SANGUE
HEMATOLOGIA Útil na avaliação da via extrínseca da coagulação. Hepatopatias e acompanhamento de anticoagulante oral.
Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul. Transportar em banho de gelo.
Recomendável 4 horas de jejum.
Anticoagulantes e hemolise acentuada.
Coagulometria/ Automação.
No mesmo dia da coleta
CERENINA RENINA, COLETA ESPECIAL, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial da hipertensão arterial e controle terapêutico da HCSR.
Vice observação abaixo Indicar dietas anormais de sódio. Informar dieta hipossódica (restrição de sal)
Temperatura ambiente, tempo de separação, dieta,lipemia, icterícia, hemólise, quimioterapia, postura, diuréticos, antihipertensivos e radioterapia.
Radioimuno-ensaio (Iodo 125).
Até 30 dias.
OBSERVAÇÃO Material e coleta: Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. Manter os frascos em banho de gelo antes/depois da coleta e enviar imediatamente ao laboratório. Coletar com paciente em repouso (deitado por 30 minutos ou sentado por 60 minutos, tempo considerado mínimo). Coleta Especial (SIGLAS): - RES (Renina Plamática Basal); - CEVCS (Veia Cava Superior); - CEVCI (Veia Cava Inferior); - CEVRD (Veia renal Direita); - CEVRE (Veia Renal Esquerda); - CEPOS (Renina Plamática Pós-estímulo).
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30/04/2009
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 100 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
RENINA RENINA, DOSAGEM EM SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial da hipertensão arterial e controle terapeutico da HCSR.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA). Manter os frascos em banho de gelo antes e depois da coleta e enviar imediatamente ao laboratório. Coletar com paciente em repouso (deitado por 30 minutos ou sentado por 60 minutos, tempo considerado mínimo).
Indicar dietas anormais de sódio. Informar dieta hipossódica (restrição de sal)
Temperatura ambiente, tempo de separação, postura, lipemia, icterícia, hemólise, quimioterapia, diuréticos, antihipertensivos, radioterapia e dieta.
Radioimuno-ensaio (Iodo 125)
Até 30 dias.
RETC RETICULÓCITOS, CONTAGEMSANGUE
HEMATOLOGIA Auxilio no diagnóstico diferencial e tratamento das anemias. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. Berçário e Pediatria, excepcionalmente coletar em microtainer.
Não é necessário jejum.
Não identificados. Coloração com azul de cresil brilhante, manual e automação - fluorescência.
No mesmo dia da coleta
ROTAVÍRUS ROTAVÍRUS PESQUISA
PARASITOLOGIA Detecção de rotavírus nas fezes para auxiliar no diagnóstico de diarreias
Fezes, frasco sem conservantes
Não há necessidade de preparo
Não tem Aglutinação em látex
Até 2 horas
ROTGRAM ROTINA DIAGNÓSTICA BACTERIOSCÓPICA DE GRAM
MICROBIOLOGIA Visualização de bactérias e seus morfotipos, assim como leveduras, leucócitos e outros elementos celulares.
Qualquer espécime clínico, coletado em swab, coleções purulentas obtidas por punção, líquidos biológicos, urina e líquor. Coletar em frasco estéril. Com o material obtido preparar esfregaços em lâminas (2); fixá-las pelo calor.
Evitar o uso de pomadas, solução de iodo, mercúrio cromo, etc.
Pomadas e antissépticos. Pesquisa após coloração pelo método de Gram.
1 dia
RUB RUBÉOLA PESQUISA DE ANTICORPOSSANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de infecção recente ou imunidade ao vírus da rubéola.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise e lipemia. Quimioluminescência (CMIA)
Até 7 d ias.
SO SANGUE OCULTO, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Investigação de presença de sangramento intestinal. Fezes: não utilizar laxantes, nem contaminar com urina; não coletar durante o período menstrual ou quando houver hemorroidas sangrantes.
Sem preparação prévia.
Medicamentos irritantes da mucosa gástrica (anti-inflamatórios, corticoides, aspirina), ferro e vitamina C; sangramento gengival.
Imunocromatografia
No mesmo dia da coleta
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30/04/2009
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Data: 28/08/2013
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 101 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
ECLOSÃO Schistosoma mansoni, ECLOSÃO DE MIRACÍDIOS, FEZES
PARASITOLOGIA Investigação etiológica da esquistossomose mansoni; o exame deve ser requisitado quando houver forte suspeita clínica da doença, e no mínimo, três pesquisas parasitológicas negativas anteriores (parasitológico de fezes e xistosa).
Fezes: volume total de uma evacuação ou coleta de 24 horas.. Evitar contaminação por urina e água do vaso sanitário.
Sem preparação prévia.
Uso de laxantes. Método de eclosão de miracídios.
Até 2 dias
XISTOSA Schistosoma mansoni, PESQUISA, FEZES
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de esquistossomose mansoni. Fezes recém-emitidas, evitando contaminação por urina e água do vaso sanitário.
Sem preparação prévia.
Uso de laxantes. Lutz; Kato-Katz (contagem de ovos)
Até 2 dias
BACURET SECREÇÃO URETRAL, BACTERIOSCOPIA
MICROBIOLOGIA Auxilio no diagnóstico de uretrites em homens, causadas por Trichomonas vaginalis e Neisseria gonorrheae.
Secreção uretral e/ou urina, 1º jato. Desprezar a secreção já existente no terço distal da uretra. Com o material obtido por expressão prepara-se 2 esfregaços em lâmina. O restante coloca-se em 0,5 mL de solução fisiológica estéril. Na ausência de secreção coletar o primeiro jato de urina após a assepcia da glande com água e sabão. Coletar em gfrasco estéril.
Estar há pelo menos 6 horas sem urinar.
Antibióticos e medicação tópica. Coloração pelo método de Gram e pesquisa a fresco.
No mesmo dia da coleta
BACVAG SECREÇÃO VAGINAL, BACTERIOSCOPIA
MICROBIOLOGIA Auxílio no diagnóstico de vaginites e vaginoses, causadas por Candida sp, T. vaginalis e G.vaginalis.
Conteúdo vaginal. Coleta com espéculo umedecido. Utilizando espátula de madeira, coletar material de parede vaginal e fundo de saco, fazer 2 lâminas e inocular frasco com solução fisiológica estéril.
Abstinência sexual de 24 horas; não usar medicação tópica nas últimas 24 horas.
Antibióticos e medicação tópica. Coloração pelo método de Gram e pesquisa a fresco.
No mesmo dia da coleta
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
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30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 102 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
SIFLCR SÍFILIS, PESQUISA DE ANTICORPOS LIQUOR
IMUNOLOGIA Diagnóstico de sífilis adquirida e congênita. Líquor. Coletar a amostra de líquor através de punção sub occipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Presença de hemácias em grande quantidade. (acidente de punção).
Teste de floculação (VDRL)
Até 7 dias
SIF SÍFILIS, PESQUISA DE ANTICORPOSSANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de sífilis adquirida e congênita. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Hemólise e lipemia.
Teste Floculação – VDRL Teste Antitrepo-nema – Quimiolu-minescência (CMIA) e Hemaglutinação passiva – TPHA
Até 7 dias
VDRL SÍFILIS VDRL, PESQUISA DE ANTICARDIOLIPINA
IMUNOLOGIA Diagnóstico de sífilis adquirida e congênita. Sangue, frasco sem anticoagulante .
Jejum de 4 horas. Hemólise e lipemia. Teste de floculação (VDRL)
Até 10 dias
SIROLIMUS SIROLIMUS LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Monitoramento de pacientes transplantados. Sangue. Frasco com anticoagulante EDTA – tampa roxa. Coletar antes do paciente tomar a próxima dose da medicação.
Informar horário da última dose e posologia.
Não sobre interferência de seus metabólitos.
ACMIA sem pré-tratamento manual.
1 dia
NA SÓDIO, SANGUE
BIOQUIMICA Útil na avaliação do equilíbrio hidro-eletrolítico. A hipernatremia ocorre na desidratação hipertônica, no diabetes insipidus, em comas hiperosmolares, entre outras situações. A hiponatre-mia pode ocorrer na síndrome nefrótica, insuficiência cardíaca, desidrata-ção hipotônica, secreção inapropriada de hormônio antidiurético, em neuro-patias com perda de sódio e em estados de hipoadrenalismo.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados Eletrodo Íon Seletivo.
No mesmo dia da coleta
LIQNA SÓDIO, LÍQUIDOS
BIOQUÍMICA Avaliar a presença de sódio em líquidos cavitários, monitoramento de procedimento de diálise e auxiliar no diagnóstico de diabetes
Líquidos, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não identificados Eletrodo Íon Seletivo
No mesmo dia da coleta
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 103 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
NAURI SÓDIO, URINA
BIOQUIMICA Avaliação de distúrbios hidro salino. Importante no diagnóstico diferencial entre oligúria pré natal (sódio urinário < 20 mEq/L) e renal (sódio urinário > 20 mEq/L). Pode estar elevado na insuficiência adrenal, necrose tubular aguda, diurético terapia.
Urina, amostra isolada e recente. Urina de 24h: desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Eletrodo Íon Seletivo.
No mesmo dia da coleta
IGF1 SOMATOMEDINA C SANGUE
FISIOLOGIA A síntese de IGF1 é estimulada pelo HGH e nutrição, sendo útil no diagnóstico complementar das deficiências do hormônio de crescimento (HGH), em tratamento com GH exógeno e no estabelecimento de alterações do estado nutricional. Valores baixos confirmam a deficiência de HGH. Níveis não detectáveis de IGF1 com níveis elevados de GH são característicos da Síndrome de Laron. O exame contribui com o diagnóstico e acompanhamento de pacientes com acromegalia.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Anticoagulantes Imunoensaio/ Quimiolumi-nescência
15 dias
SDHEA SULFATO DEHIDROEPIANDROSTERONA, SANGUE
FISIOLOGIA Avaliação de adrenarca patológica. Diagnóstico e seguimento de hirsutismo e origem adrenal. Seguimento e diagnóstico de carcinomas do córtex adrenal.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar pela manhã (8:00-10:00 horas).
Jejum de 4 horas. Soros lipêmicos. Imunoensaio/ Quimiolumi-nescência.
Até 7 dias.
SWFG SWAB ANAL, FEZES
PARASITOLOGIA Diagnóstico de enterobiose ou oxiuríase. Coletado da região perianal com fita gomada. Coletar preferencialmente à noite ou pela manhã antes de defecar e de realizar a higiene pessoal.
Não defecar ou fazer higiene pessoal antes da coleta.
Uso de anti-helmínticos, pomadas e talco.
Método de Hall. (Fita gomada)
No mesmo dia da coleta
FK 506 TACROLIMUS, DOSAGEM, SANGUE
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS / BIOQUÍMICA
Monitoramento de pacientes transplantados. Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. Coletar antes do paciente tomar a próxima dose da medicação
Informar horário de última dose e a posologia.
Não sofre interferência de seus metabólitos.
ACMIA sem pré-tratamento manual
No mesmo dia da coleta
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Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 104 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
TENIA TÊNIA, IDENTIFI CAÇÃO, FEZES
PARASITOLOGIA Identificação etiológica das tênias. Fragmentos de tênia eliminados após medicação ou espontaneamente. Coletar e conservar em água ou salina.
Sem preparação prévia.
Alcool ou formol. Tamização com pesquisa macroscópica e confirmação microscópica com método de classificação.
No mesmo dia da coleta
TESTL TESTOSTERONA LIVRE, SANGUE
FISIOLOGIA Avaliação de virilização e hirsutismo em mulheres; avaliação de hipogonadismo e esterilidade em homens.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, hemólise e quimioterápicos.
Radioimuno-ensaio (Iodo 125).
Até 15 dias.
TESTT TESTOSTERONA TOTAL, SANGUE
FISIOLOGIA Avaliação de virilização e hirsutismo; avaliação de hipoganodismo e esterilidade.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia, hemólise e medicamentos.
Imunoensaio/ Eletroquimio-luminscência.
Até 15 dias.
MEDULAD1 TIPIFICAÇÃO DOADOR MEDULA ÓSSEA, FASE I – HLA-AB, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de doador aparentado de medula óssea e outros precursores hematopoéticos - 1ª fase - Tipificação HLA-AB (baixa resolução).
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. 5,0 mL de sangue venoso periférico , do DOADOR.
Não é necessário jejum.
Não há. Molecular: Reação em cadeia da polimerase/ "Primers" sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO)
3 dias
MEDULAD2 TIPIFICAÇÃO DOADOR MEDULA ÓSSEA, FASE II - DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de doador aparentado de medula óssea e outros precursores hematopoéticos - 2ª fase - Tipificação HLA-DRDQ (baixa resolução).
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. 5,0 mL de sangue venoso periférico , do DOADOR.
Não é necessário jejum.
Não há. Molecular: Reação em cadeia da polimerase/ "Primers" sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO)
3 dias
MEDULAD3 TIPIFICAÇÃO DOADOR MEDULA ÓSSEA, FASE III - DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de doador aparentado de medula óssea e outros precursores hematopoéticos - 3ª fase - Tipificação HLA-DRDQ (alta resolução).
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. 5,0 mL de sangue venoso periférico para método PCR/SSP.
Não é necessário jejum
Não há. Molecular: Reação em cadeia de polimerase/-"Primers" sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO)
Até 7 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 105 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
MEDULAR1 TIPIFICAÇÃO DE RECEPTOR DE MEDULA ÓSSEA, FASE I – HLA-AB E HLA-DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de receptor de medula óssea – tipificação HLA-AB E HLA-DRDQ (baixa resolução)
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. 5,0 mL de sangue venoso periférico do receptor.
Não é necessário jejum
Não há. Molecular: Reação em cadeia de polimerase/-"Primers" sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO)
Até 7 dias
MEDULAR2 TIPIFICAÇÃO DE RECEPTOR DE MEDULA ÓSSEA, FASE II –HLA-DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de receptor de medula óssea – tipificação HLA-DRDQ (alta resolução)
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa. 5,0 mL de sangue venoso periférico do receptor.
Não é necessário jejum
Não há. Molecular: Reação em cadeia de polimerase/-"Primers" sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO)
Até 7 dias
REDOME1 TIPIFICAÇÃO REDOME FASE I – HLA – A, B, C – DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de doador não aparentado de medula óssea e outros precursores hematopoéticos – 1ª fase – Tipificação HLA-A, -B e HLA-DR, - DQ (baixa resolução).
DOADOR. Sangue. Coletar 5,0 mL sangue venoso periférico, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Não é necessário jejum
Não há. Molecular: Reação em cadeia de polimerase/ “Primers” sequência específica (PCR/SSP, PCR/SSO).
Até 5 dias
REDOME2 TIPIFICAÇÃO REDOME
FASE II - HLA - DRDQ, SANGUE
IMUNOGENÉTICA Identificação de doadores não aparentado de medula óssea e outros precursores hematopoéticos - 2ª fase - Tipificação
HLA-DR, -DQ (alta resolução). Tipificação HLA-C (baixa, média resolução)
DOADOR. Sangue. Coletar 5,0 mL
sangue venoso periférico, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Não é necessário jejum.
Não há. Molecular: Reação em
cadeia de polimerase/ "Primers" sequência específica (PCR/SSP).
Até 7 dias
TG TIROGLOBULINA, SANGUE
FISIOLOGIA Seguimento de câncer de tireoide. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Informar medicamento em uso.
Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Quimiolumi-nescência.
Até 7 dias.
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Data: 28/08/2013
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 106 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
T4L TIROXINA LIVRE, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico precoce de hipotireoidismo congênito (cretinismo); diagnóstico diferencial de hipotiroidismo primário e secundário; monitoramento terapêutico de Doença de Graves e de Hipotireoidismo primário.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimio-luminescência.
Até 2 dias
TOXO TOXOPLASMOSE PESQUISA DE ANTICORPOSSANGUE
IMUNOLOGIA Diagnóstico de toxoplasmose congênita ou adquirida. Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas para coleta de sangue.
Lipemia e hemólise. imunoenzimático (ELFA)
Até 7 dias.
TOXOLCR TOXOPLASMOSE, PESQUISA DE ANTICORPOS, LIQUOR
IMUNOLOGIA Avaliação de comprometimento do sistema nervoso pelo T.gongii.
Líquor. Coletar a amostra de líquor através de punção sub occipital ou lombar com prévia antissepsia. Após a coleta, o material deve ser encaminhado imediatamente à seção. Indicar local de punção. Coletar em frasco estéril.
Sem preparação prévia.
Presença de hemácias em grande quantidade (acidente de punção)
Imunofluores-cência indireta.
Até 7 dias.
PTREPO TREPONEMA PALLIDUM, PESQUISA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico da sífilis primária ou secundária, através da demonstração do Treponema pallidum no material obtido da lesão.
Linfa de lesão genital ou de orofaringe. Limpar a lesão com soro fisiológico e comprimir a lesão até exsudar. O exsudato obtido será colocado em frasco com 1mL de soro fisiológico. Fazer também duas lâminas com esfregaço obtido da mesma lesão.
Não usar medicação tópica durante 24h antes da coleta do material.
Uso de antibióticos. Microscopia direta em campo escuro.
No mesmo dia da coleta
TRIG TRIGLICÉRIDES, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de dislipidemias, hipertensão essencial, infarto agudo do miocárdio, cardiopatia isquêmica crônica, doenças de armazenamento do glicogênio, anorexia nervosa, hipercalcemia idiopática, porfiria aguda, trombose cerebral.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas. Não identificados Enzimático Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
LIQTRIG TRIGLICÉRIDES, LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
BIOQUÍMICA Avaliar a presença de triglicéredes em líquidos cavitários Líquidos cavitários, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não há Enzimático Colorimétrico.
No mesmo dia da coleta
T3L TRIIODOTIRONINA LIVRE, SANGUE
FISIOLOGIA Avaliação da função tiroidiana, não sendo influenciada pelos níveis circulantes de TBG.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Informar medicamento em uso.
Triac (reage 58%), lipemia, hemólise, icterícia e furosemida.
Imunoensaio/ Eletroquimiolu-minescência.
Até 2 dias
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Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 107 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
TCRUZI Tripanosoma cruzi, PESQUISA, SANGUE
PARASITOLOGIA Investigação etiológica de doença de Chagas em fase aguda.
Sangue frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa . Em recém-nascidos realizar punção calcânea. Enviar rapidamente ao laboratório
Sem preparação prévia.
Não identificados. Exame micros-cópico após técnicas de concentração (gota espessa, esfregaços corados após centrifugação).
Até 2 dias
TTPA TROMBOPLASTINA, TEMPO PARCIAL ATIVADO, SANGUE
HEMATOLOGIA Avaliação da via intrinsica da coagulação (controle de heparinização).
Sangue, frasco com anticoagulante (Citrato de Sódio) - tampa azul. Trans-portar em banho de gelo.
Recomendável jejum de 4 horas.
Anticoagulantes. Coagulometria Automação.
No mesmo dia da coleta
TROPONINA TROPONINA, SANGUE
BIOQUIMICA Infarto agudo miocardio, angina. Sangue, frasco sem anticoagulante
Não é necessário jejum.
Hemólise, icterícia, heparina, fluoreto, oxalato.
Imunoensaio/ Eletroquimioluminescência.
No mesmo dia da coleta
TSH TSH, HORMÔNIO ESTIMULADOR DA TIREOIDE, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico precoce de hipotireoidismo congênito (cretinismo); diagnóstico diferencial de hipotiroidismo primário e secundário; monitoramento terapêutico de Doença de Graves e de Hipotireoidismo 1ªrio.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimioluminescência.
Até 2 dias
TDTSH TSH, TESTE DINÂMICO, SANGUE
FISIOLOGIA Diagóstico precoce de hipotireoidismo congênito (cretinismo); diagnóstico diferencial de hipotiroidismo primário e secundário; monitoramento terpêutico de Doença de Graves e de hipotireoidismo primário.
Sangue, frasco sem anticoagulante Coletar:- TSH BASAL; TSH15; TSH30;
Jejum de 4 horas. Lipemia, icterícia e hemólise. Imunoensaio/ Eletroquimioluminescência.
Até 2 dias
CLEARUR UREIA, CLEARANCE, URINA
BIOQUIMICA Avaliação de taxa de filtração glomerular em conjunto com clearance de creatinina e na avaliação do balanço nitrogenado.
Sangue, frasco sem anticoagulante . Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Jejum de 4 horas. Informar peso e altura do paciente.
Não identificados. Cinético UV No mesmo dia da coleta
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 108 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
U UREIA, SANGUE
BIOQUIMICA A determinação de ureia constitui o teste mais amplamente utilizado para avaliação da função renal. Este teste é frequentemente usado em conjun-ção com a determinação de creatinina para o diagnóstico diferencial de hi-peruremia
pré-renal (descompensa-ção cardíaca, desidratação, aumento do catabolismo das proteínas), hiperuremia renal (glomerulonefrite, nefrite crónica, rins poliquísticos, nefroesclerose, necrose tubular) e hiperuremia pós-renal (obstrução das vias urinárias).
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 4 horas. Não identificados. Cinético UV No mesmo dia da coleta
LIQU UREIA, LÍQUIDOS
BIOQUÍMICA Avaliar presença de ureia em líquidos cavitários e monitoramento da ureia em procedimento de diálise
Líquidos, frasco sem anticoagulante
Não há necessidade de jejum
Não há Cinético UV No mesmo dia da coleta
UREIAURI UREIA, URINA BIOQUIMICA A dosagem de uréia em urina de 24 horas é pouco utilizada na prática clínica. Pode ser útil no cálculo de depuração de uréia, que é um método menos eficiente de estimativa de ritmo de filtração glomerular que o clearance de creatinina. É a principal fonte de excreção do nitrogênio. Produto do metabolismo hepático das proteínas, e excretada nos rins. Desta forma, a uréia é diretamente relacionada a função metabólica hepática e excretória renal. Sua concentração pode variar com a dieta, hidratação e função renal.
Urina, amostra isolada e recente. Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da mnhã dodia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Cinético UV No mesmo dia da coleta
URI URINA I LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação da patologia de trato urinário. Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã.
Estase vesical de 4 horas ou 1ª urina da manhã.
Ver reações isoladas. Automatizado/microscopia contraste de fase.
No mesmo dia da coleta
UROB UROBILINOGÊNIO, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Avaliação de icterícias. Urina, amostra isolada e recente, preferencialmente 2a micção da manhã ou após crise aguda
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Piridium. Reação de Erlich. No mesmo dia da coleta
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30/04/2009
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o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 109 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
URO UROCULTURA, URINA
MICROBIOLOGIA Diagnóstico etiológico das infecções do trato urinário. Vice observação abaixo Não urinar nas últimas 4 h e não tomar líquidos em excesso; suspender,
se possível, antibióticos por 3 dias.
Uso de antibióticos. Relatar sempre se a coleta for por punção supra púbica ou se o paciente apresenta lesão das vias urinárias como:
cistostomia, nefrostomia, ureterostomia, bexiga neurogênica etc.
Manual e automatizado.
Até 3 dias
OBSERVAÇÃO. Material e coleta Urina, jato médio e recente, recomendável primeira micção da manhã ou após 4 horas de estase vesical. Urina colhida por punção supra-pubica ou por sonda-gem. Após antissepsia rigorosa da vulva, glande ou região perineal de crianças, coletar amostra (8 a 10 ml) em frasco estéril de boca larga ou coletor próprio para criança. Em pacientes son-dados, trocar a sonda se possível e colher nova amostra.
UPF UROPORFIRINA, URINA
LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
Investigação de porfirias. Urina, amostra isolada e recente, protegida da luz, preferencialmente 2a micção da manhã.ou após crise aguda
Estase vesical de 3 a 4 horas.
Urobilinogenio. Análise qualitativa.
Até 3 dias
VANCO VANCOMICINA, SANGUE
BIOQUIMI-CA Controle de nível terapêutico. Sangue, frasco sem anticoagulante. Informar se a amostra coletada é pré ou pós administração e o tempo decorrido desde a última administração. Pico 1 a 2 horas após administração (EV).
Não é necessário jejum.
Icterícia e proteina podem causar interferência inferior a 10%.
Imunoensaio de inibição turbidimétrica.
No mesmo dia da coleta
VHS VELOCIDADE DE HEMOSSEDIMENTAÇÃO SANGUÍNEA, SANGUE
HEMATOLOGIA Teste inespecifico usado no rastreamento de processos infecciosos, inflamatórios e neoplasicas. Controle de tratamento de algumas patologias como: tuberculose, febre reumatica e osteomielite.
Sangue, frasco com anticoagulante (EDTA) - tampa roxa.
Jejum de 4 horas. Lipemia e crioaglutininas. Fotometria e capilaridade
No mesmo dia da coleta
IVA VERMES ADULTOS, IDENTIFICAÇÃO, FEZES
PARASITOLOGIA Identificação de espécie de helmintos tais como: Ascaris lumbricoides e Enterobius vermicularis.
Vermes e fezes: validade até 24 horas em geladeira. Coletar os vermes em frasco com água sem nenhum conservante. Coletar fezes em frasco adequado sem conservante, podendo ser mantido em geladeira, fora do congelador até 24 horas.
Sem preparação prévia.
Não colocar o parasita ou fragmentos em formol ou álcool.
Exame macroscópico e tamização.
No mesmo dia da coleta
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Implantação
30/04/2009
Revisão N
o: 011
Data: 28/08/2013
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P11
Grupo responsável pela elaboração Maria José Landi, Márcia Victor e responsáveis pelas áreas analíticas
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 110 -
Sigla Nome Área Uso Material e Coleta Paciente Interferentes Método Resultado
CVCOLERA VIBRIO CHOLERA, CULTURA, FEZES
MICROBIOLOGIA Auxílio no diagnóstico do cólera. Fezes e swab anal. Fezes colhidas dentro das primeiras 24 horas do início dos sintomas, com swab retal ou espontaneamente. Os materiais devem ser transportadas no meio de Cary-blair.
Coletar antes do uso de antibióticos.
Antimicrobianos, coleta inadequada.
Manual e automatizado
Até 3 dias
B12 VITAMINA B12, SANGUE
FISIOLOGIA Diagnóstico diferencial das anemias macrocíticas, acompanhamento evolutivo do tratamento da anemia perniciosa. Auxilia na avaliação da gravidade das doenças hepáticas e gástricas.
Sangue, frasco sem anticoagulante Proteger da luz .
Jejum de 6 horas. Luminosidade, lipemia, icterícia, hemólise, estrógenos e ingestão de ácido ascórbico.
Imunoensaio/Eletroquimioluminescência.
Até 7 dias.
VLDL VLDL COLESTEROLSANGUE
BIOQUIMICA Avaliação das dislipidemias primárias e secundárias; necrose hepatocelular; desnutrição; sindromes de má-absorção; hipertiroidismo; anemias; doença aguda severa; doença pulmonar obstrutiva crônica; retardo mental; artrite reumatoide; linfangiectasia.
Sangue, frasco sem anticoagulante
Jejum de 12 horas Cálculo fórmula Friedwald
No mesmo dia da coleta
ZN ZINCO, SANGUE
BIOQUIMICA Avaliação de osteosarcoma, coronariopatias, tuberculose pulmonar, febre tifoide, metástase hepática, leucemias, linfomas, hipoalbuminemia, stress agudo, doenças hepáticas e do trato gastrointestinal, dermatopatias, hiperparatireoidismo, alopécia.
Sangue, frasco com anticoagulante - tampa verde: (Heparina Litica), livre de metal, usar agulha de aço inoxidável.
Jejum de 4 horas Não identificados. Espectrofotometria de Absorção Atômica.
Até 10 dias.
ZNURI ZINCO, URINA BIOQUIMICA Exame útil no diagnóstico das deficiências de zinco, presente no alcoolismo, cirrose hepática, diabetes, onde ocorrem aumentos dos níveis urinários de zinco. Deficiências muito graves, entretanto, podem cursar com níveis urinários reduzidos.
Urina de 24h: Desprezar a 1ª da manhã, coletar todas as outras micções durante 24h em frasco limpo, fornecido pelo laboratório, inclusive a 1ª urina da manhã do dia seguinte. Conservar em geladeira durante o período de coleta.
Sem preparação prévia.
Não identificados. Espectrofoto-metria de Absorção Atômica.
Até 10 dias.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P12
Grupo responsável pela elaboração Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 111 -
3. PROCESSOS DE TRABALHO DA ÁREA PRÉ-ANALÍTICA
PC.P12 – ENTRADAS DE EXAMES DE UNIDADES DE INTERNAÇÃO
MÉDICO Preencher manualmente o formulário de requisição de exames, após a consulta do paciente, se houver necessidade (ambulatório). Requisitar exames via sistema de informática laboratorial (SIL) no dia anterior ao da coleta nas enfermarias. Requisitar exames via SIL, gerando ordem de coleta para coleta imediata de exames (enfermaria). COLETADORES Retirar na Central de Recepção de Exames as etiquetas de código de barras geradas para cada paciente, separar por posto de coleta e organizar as estantes. Dirigir-se aos postos de coleta com os materiais necessários. Confirmar o nome, solicitando que o paciente diga o seu nome completo; na impossibilidade, fazer identificação por meio da pulseira de identificação. Não colocar a bandeja sobre o leito, acomodar no criadomudo. Em quartos de isolamento, levar o material estritamente necessário e descartar no local. Paramentar-se de acordo com a Precaução instituída pela CCIH. Comunicar ao responsável da Unidade e anotar na planilha o motivo da não realização da coleta. Ex: ausência ou recusa do paciente, procedimento que impeça a coleta etc. Coleta por intracath ou flebotomia deve ser feita pela Enfermagem.
CENTRAL DE RECEPÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE AMOSTRAS
RECEPÇÃO CONFERENCIA DO MATERIAL Respeitar a particularidade de cada exame, de acordo com a padronização do serviço:
Gelo – ACTH, RENINA, HGH, INSUL, PEPTC, PTH, TPAP, TTPA, TT, G6PD;
Banho Maria – CRIOAGLUT, CRIOGLOB;
Proteger da Luz – BI, B12, ACF. Conferir se o material está acondicionado em saco plástico, se as etiquetas estão posicionadas corretamente e se consta nome completo e HC/Pré do paciente. Conferir se as requisições:
Estão preenchidas com letra legível;
Contém os dados do paciente – HC e nome completo e equivale com a identificação da amostra;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P12
Grupo responsável pela elaboração Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 112 -
Contém carimbo com CRM do médico (não assinar em cima do número do registro);
Contém unidade de atendimento, código e nome, hipótese diagnóstica e sigla;
Material dos exames. Conferir se a ordem de coleta equivale com a amostra do paciente. AMOSTRAS DE URGÊNCIA Após conferência, dispor as amostras na bandeja em estante identificada como URGÊNCIA para serem priorizadas. Digitar e processar como as demais amostras. As amostras devem ser processadas e enviadas ao setor no menor tempo possível. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
Ausência de identificação na amostra;
Discordância entre a identificação na amostra e na requisição e/ou ordem de coleta;
Volume ou material inadequado;
Frasco inadequado;
Amostras acondicionadas fora dos padrões de coleta;
Amostras vazadas;
Amostras identificadas com esparadrapo;
Requisições preenchidas incorretamente, com falta de dados ou ilegíveis. TRATAMENTO DAS REJEIÇÕES
Devolução das amostras e requisições na hora do recebimento
Comunicação com solicitação de nova amostra, via telefone. ACEITE DAS AMOSTRAS Após a conferência, dispor as amostras e as requisições em uma bandeja (malote) da seguinte forma:
Amostra de sangue - na estante contida na bandeja;
Amostras de líquidos - na bandeja, fora da estante;
Requisições na bandeja - na mesma ordem das amostras;
Requisições manuais - enviar o malote para a digitação;
Ordem de coleta - emitir etiqueta e enviar o malote para preparação da amostra. DIGITAÇÃO Iniciar o Sistema do Laboratório (HLC COLETA), digitando o login individual e a senha de acesso.
AMOSTRAS COM REQUISIÇÃO MANUAL o Digitar o número do prontuário.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P12
Grupo responsável pela elaboração Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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- 113 -
o Digitar o CRM que consta no pedido, se este não estiver cadastrado, digitar o CRM do docente responsável.
o Digitar hipótese diagnóstica. o Selecionar Emergência ou Rotina. o Digitar a sigla dos exames. o Digitar se necessário, o material, observação do material e/ou observação
médica. o Digitar o número de frascos e o volume da diurese (quando necessário). o O sistema automaticamente gera etiquetas de código de barras. o Deixar requisitados no sistema os exames que não serão realizados no
momento. o Exames bloqueados, suspensos ou não realizados: fazer a devida anotação
na frente da respectiva sigla. o Selecionar os exames que serão realizados e os demais deixar apenas
requisitados. o Conferir se todos os exames foram digitados corretamente.
AMOSTRAS COM ORDEM DE COLETA o Digitar o número da ordem de coleta. o Emitir etiqueta. o Enviar para processamento da amostra.
AMOSTRAS DE ROTINA COLHIDAS PELA DIVISÃO NA ENFERMARIA o Dar baixa de recebimento de amostras de enfermaria digitando o número do
coletador. o Separar as amostras ordenado-as com as planilhas em estantes por setor. o Centrifugar (se necessário) o Acondicionar as amostras e as planilhas nas respectivas caixas e enviar
para o setor. GUARDA DE REGISTROS No final do dia, guardar as requisições médicas e as ordens de coleta identificando se são diurnas ou noturnas, dia e mês em cada malote. As requisições deverão ser guardadas na área por três meses e depois encaminhadas para o arquivo onde serão guardados por cinco anos. PROCESSAMENTO DA AMOSTRA Etiquetar as amostras de forma que a etiqueta de código de barras não obstrua a etiquetagem primaria.
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P12
Grupo responsável pela elaboração Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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AMOSTRAS QUE NÃO REQUEREM CENTRIFUGAÇÃO o Separar as amostras que não requerem centrifugação: parasitologia,
urinálise, microbiologia, líquidos biológicos, hematologia (amostras colhidas em EDTA).
o Dar baixa de recebimento e emitir planilha se necessário. o Acondicionar as amostras e as planilhas nas respectivas caixas e enviar
para o setor.
AMOSTRAS QUE REQUEREM CENTRIFUGAÇÃO o Proceder à centrifugação das amostras. o Separar em estantes por setor. o Dar baixa de recebimento sem emissão de planilha para Bioquímica e
Fisiologia - (sistema on line bidirecional). o Dar baixa de recebimento com emissão de planilha para os demais setores, o Acondicionar as amostras nas respectivas caixas com ou sem as planilhas e
distribuir nas respectivas áreas analíticas. TRANSPORTE DE MATERIAIS BIOLÓGICOS Transportar os materiais em caixas de plástico rígido, lavável, com tampa, trava e simbologia de material infectante. Caso necessário o uso de elevador, utilizar o de carga suja. RETIRADA DE AMOSTRAS BIOLÓGICAS FEITA PELA CENTRAL
ENFERMARIA o Horário de retirada: de segunda a sexta-feira às 11h00; o Preparar uma caixa plástica com tampa e trava contendo 1 caixa de isopor
com gelo e 1 estante; o Iniciar pelo 6º andar; o Passar em todas as enfermarias; o Perguntar no posto de enfermagem se há material para o laboratório; o Verificar os refrigeradores do expurgo; o Conferir as requisições (se houver material) observando se consta nome,
HC, CRM, HD, exame, material e outra informação necessária; o Verificar se as amostras estão adequadas; o Corrigir qualquer não conformidade juntamente com a enfermagem; o Ordenar as amostras e as requisições nas respectivas caixas; o Repetir o procedimento no 5º e 4º andar, inclusive Pediatria e UTI
Pediátrica; o Não retirar material da UTI adulto e UER; o Não retirar material que deva ser encaminhado para a gasometria,
gastrocentro e hemocentro; o Não retirar requisições e amostras com não conformidades.
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Grupo responsável pela elaboração Valéria Malena
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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SESMT o Horário de retirada: segunda a sexta-feira às 12h00 e às 17h00; o Preparar uma caixa plástica com tampa e trava contendo uma estante; o Dirigir-se ao Serviço de Transporte, 1º andar (F1); o Transferir as amostras da caixa de transporte para caixa plástica; o Levar a pasta com a planilha para registro de retirada de amostras; o Preencher corretamente os dados da planilha; o Solicitar que um funcionário do transporte rubrique a planilha.
EMISSÃO DE ETIQUETAS PARA A COLETA DE ENFERMARIA REALIZADA PELA DIVISÃO
Realizar o procedimento de domingo a quinta-feira, após as 00h30;
No computador, clicar no ícone HLC-BCH;
Digitar usuário e senha;
Clicar em IMPRIMIR POR LOTE na tela IMPRIMIR ETIQUETAS PARA PACIENTES DE ROTINA;
Selecionar OK;
As etiquetas e as listas de exames serão impressas automaticamente;
Reiniciar o sistema e refazer o processo se houver erro na emissão das etiquetas;
As etiquetas serão impressas de baixo para cima, sendo que a primeira etiqueta (de baixo) sinaliza um posto (ex: C4P2). Todas as etiquetas impressas até o próximo posto serão de pacientes do posto C4P2.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P13
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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PC.P13 – ENTRADAS DE EXAMES AMBULATORIAIS
MÉDICO Preencher o formulário de requisição de exames, após a consulta do paciente com HC e nome completo; carimbo com CRM do médico (não assinar em cima do número do registro); unidade de atendimento; hipótese diagnóstica; sigla e material dos exames. Orientar o paciente a se dirigir ao Setor de Agendamento e Central de Coleta de Exames para receber a orientação necessária para realização da coleta. SETOR DE AGENDAMENTO Agendar no sistema a data para coleta:
7 a 15 dias antes do retorno - exames em geral;
30 dias - ACM, ACTG, ALDO, ANDRO, DHEA, PEPTC, RENINA, TESTT, TESTL, INSUL, 17OHPROG, PTH, HGH;
Ou de acordo com a solicitação do médico. Encaminhar pacientes com requisição de coleta de líquor e espermograma à Central de Coleta de Exames.
CENTRAL DE COLETA DE EXAMES
RECEPÇÃO FILA
A fila da coleta é única, por ordem de chegada. O paciente deve apresentar o cartão do HC, documento oficial, folha do agendamento e requisição médica.
Receber um paciente por vez de forma acolhedora (bom dia ou boa tarde);
Confirmar o nome, solicitar documento oficial. ORIENTAÇÕES E AGENDAMENTO PARA COLETA
2ª via de resultado dos exames: o Encaminhar o paciente para a Diretoria Clínica (3º andar do HC).
Verificar a requisição dos exames: o Exames de outros serviços, orientar para se dirigir ao local, são eles:
Anatomia Patológica - Pesquisa de células neoplásicas (CITODIAD) – requisição do serviço;
Hemocentro – pacientes atendidos pelo ambulatório de hematologia, requisições de cardiolipina, anticoagulante lúpico, fatores de coagulação, HTLV1.
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Caso o paciente necessite realizar exames no Hemocentro e LPC, entrar em contato com a coleta do Hemocentro (18642/18679) e verificar a possibilidade de fazer apenas uma punção, digitar os exames do LPC, colocar as etiquetas com os tubos dentro de um saco plástico, orientar o paciente para entregar na coleta do Hemocentro.
Gastrocentro – requisições de BG, COPRO, H2LACTULOSE, TTL, TTOC;
Medicina Nuclear – clearence de creatinina EDTA Laboratório de Pediatria – AENDOMISIO, PFEZ, PHALFA1FEZ,
ALFA1ANTITRIPSINA nas fezes, ESTEA, TSUOR, TTFRUTOSE, TTLACTOSE, XILOSAN, XILOURI;
Laboratório de Endocrinologia – LH / RHTDACTH, TDANDRO, TDINSUL.
AMOSTRAS COLHIDAS NA CENTRAL DE COLETA DE EXAMES E ENVIADAS A OUTROS SERVIÇOS ADOLFO LUTZ
Requisição própria do Adolfo Lutz, uma para cada exame;
Verificar o preenchimento dos dados obrigatórios – nome, data de nascimento, nome da mãe e número do prontuário do paciente, CRM e assinatura do médico, data da coleta e início dos sintomas;
Sorologia para Herpes – somente pedidos com dados clínicos de encefalite ou infecção;
Sorologia para Borrélia ou Lyme – necessita do formulário padrão fornecido pelo médico.
LABORATÓRIO DE AIDS
Coleta realizada às 2ª, 3ª, 4ª e 5ª feiras com agendamento prévio pelo Serviço Social;
Necessita formulário próprio para CD3CD4CD8 e carga viral. HEMOCENTRO
Tipagem sanguínea, COOMS, e sorologias (unidades de atendimento autorizadas) – formulário próprio.
BANCO DE SANGUE
Reserva de bolsa de sangue para transfusão – formulário próprio, preenchido corretamente (peso, leito, data da cirurgia, carimbo e assinatura do médico).
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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FLEURY, CRIESP, INSTITUTO DE MEDICINA TROPICAL
Realizar a coleta e encaminhar a amostra mediante autorização da Superintendência, com carimbo e assinatura do médico.
INSTITUTO PASTEUR
Requisição fornecida pelo NVE.
Caso algum dos itens acima esteja faltando ou em desacordo, solicitar que o paciente retorne ao ambulatório de atendimento. Anotar para o paciente o que está faltando. EXAMES REALIZADOS NA DPC
Conferir o número de identificação pelo cartão do HC ou folha de agendamento;
Verificar especialidade médica, CRM do médico (preenchimento obrigatório).
Siglas ou nomes dos exames deverão estar corretos: o CICLOSP, VHCGENOTIP, VHCPCR – requisição em formulário APAC
(assinalar os exmes no verso), constar CRM, nome ou carimbo e assinatura do médico);
Requisições preenchidas incorretas ou dúvidas na solicitação dos exames – solicitar ao paciente que retorne ao ambulatório onde foi atendido;
Orientar o preparo para a coleta das amostras;
Fornecer senha para agendar data para coleta dos pacientes provenientes do CAISM, pacientes de encaixe, coleta de líquor e espermograma.
NO DIA AGENDADO PARA COLETA: Verificar se a data agendada foi respeitada.
Conferir o número do prontuário com o cartão ou folha de agendamento;
Solicitar um documento oficial para identificação; Confirmar se foi seguido o preparo adequado. Anotar na solicitação de exames as informações inerentes à realização.
Peso e altura para clearance de creatinina e ureia;
Horário da última dose de FK 506 (tacrolimus) e Sirolimus (rapamune) e a dosagem;
Quantidade de frascos de urina de 24 horas se o frasco é o recomendado e se o procedimento de coleta está adequado.
Coleta de Líquor - fornecer o Termo de Ciência e Consentimento;
CD3CD4CD8 e Carga Viral somente no dia agendado pelo S. Social coleta até 11h00. Caso ultrapassar o horário, ligar no Laboratório de AIDS (R-17463) para autorização; sem agendamento encaminhar ao S. Social para autorização.
Exames com restrições - anotar na requisição a restrição (ex: não está em jejum, tomou café, jejum de somente 8 horas, frasco inadequado, perdeu 1 micção, etc). Avisar o paciente da possibilidade de reconvocação;
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Para exames suspensos ou bloqueados, anotar na requisição, na frente da sigla do exame – suspenso ou bloqueado, fornecer o informativo;
Para exames que não serão realizados (paciente menstruada, coleta domiciliar não realizada), anotar na requisição, na frente da sigla do exame – não, e fornecer o informativo para que o exame possa ser realizado em nova data;
Aplicação e Leitura de Mantoux e Montenegro - encaminhar o paciente diretamente ao Box 6;
Gasometria e CaI verificar com paciente a data da consulta (menos que 7 dias solicitar ao paciente que aguarde o resultado), anotar se o resultado vai para prontuário ou se o paciente aguardará o resultado.
CRITÉRIOS PARA FORNECIMENTO DE SENHA
SENHA 1 SENHA 2 SENHA 3 SENHA 4 SENHA 5
PRIORIDADE 0 a 100
INFANTIL 101 a 300
PREFERENCIAL 301 a 600
GERAL 601 a 900
ENCAIXE 901 a 999
Pacientes em maca e cadeira de rodas
Motoristas de ambulância, para entrega de material de pacientes
Pacientes em quimioterapia no dia do exame
Crianças até 10 anos
Gestante
Idosos
Coleta de líquor e provas funcionais (TTG E CGG)
Pacientes com necessidades especiais e com crianças de colo
Demais pacientes agendados
Entrega de coleta domiciliar
Pacientes não agendados
Agendamento
Fornecer a senha, se houver alguma informação, anotar na senha se paciente em (maca, cadeirante, deficiente visual, muletas, andador, bengala, passando mal, quimio período manhã ou tarde, coleta no carro), quando urocultura anotar na senha o nº da sala (sala 11 ou 8 a 12);
Encaminhar pacientes com senhas de Prioridade e infantil direto ao digitador;
Senhas Preferenciais e gerais, aguardar a chamada pelo painel eletrônico;
Se o salão estiver cheio colocar senha geral na área externa;
Paciente convocado senha conforme os critérios acima. Pacientes não agendados ou que perderam o dia da coleta, fornecer o número para encaixe e serão atendidos após as 11h00 ou término da fila – senha conforme os critérios acima. APÓS A COLETA Fornecer a declaração de comparecimento, se solicitado.
Solicitar transporte para o paciente, quando necessário (ramal 17743);
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Para UER ou outro local do complexo hospitalar – ligar no Serviço de Transporte - ramal 17743, passar os dados do paciente;
Para residência em Campinas - preencher o formulário de solicitação de transporte e encaminhar o paciente ao Serviço Social;
Transporte para outras cidades – encaminhar ao Serviço Social DIGITAÇÃO Iniciar o Sistema do Laboratório (HLC COLETA). Digitar o login individual e a senha de acessso. Verificar o endereço da impressora. Chamar o paciente através do sistema de senhas. Recepcionar o paciente cordialmente e verificar sua necessidade: digitar ou agendar exames laboratoriais; Solicitar o pedido de exames, a senha e o documento.
AGENDAR EXAMES o Agendar no sistema a data para coleta, para pacientes atendidos no CAISM,
coleta de liquor, espemograma, CGG e Mantoux e MONTENEGRO; o Verificar a data disponível de acordo com os critérios abaixo:
ACM, ACTG, ALDO, ANDRO, DHEA, PEPTC, RENINA, TESTT, TESTL, INSUL, 17OHPROG, PTH, HGH, exames em escarro (PFUNGO, CFUNGO, PMICODIAG, CMICODIAG, PMICOTT, CMICOTT) – 30 dias antes da consulta;
Demais exames - 7 a 15 dias antes do retorno ou de acordo com a solicitação médica;
ESPERMOGRAMA – somente às quartas-feiras; LÍQUOR – segunda das 8 as 10hs e quarta das 10hs às 12hs; MANTOUX e MONTENEGRO – aplicação de 2ª e 3ª feiras, leitura 4ª
e 5ª feiras; o Anotar para o paciente o dia da coleta, horário e as orientações necessárias
para a execução dos exames.
DIGITAR EXAMES o Digitar o número do prontuário e a senha do paciente, conferir; o Preencher os campos obrigatórios:
CRM (se este não estiver cadastrado, digitar o CRM do docente responsável pelo ambulatório);
Hipótese Diagnóstica se não estiver preenchido – digitar NI (não informado), ou se estiver ilegível (IL ou ILEG);
o Digitar os exames solicitados. o Se houver exame bloqueado ou suspenso anotar na requisição médica na
frente da sigla, fornecer ao paciente a filipeta devidamente preenchida; o Exames não cadastrados ou sigla inexistente - anotar na frente do exame
(sigla errada, ilegível);
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 121 -
o Se o paciente trouxer coleta domiciliar que não conste no pedido, verificar se há pendencia no sistema. Em caso afirmativo selecionar o exame, se não, informar o paciente e orientar o descarte;
o Conferir se todos os exames foram digitados corretamente; o Digitar no campo observação o número de frascos de urina de 24 horas e
as informações importantes (urgente, cadeirante, paciente passando mal, urina por sonda, aguardando resultado, resultado na pasta, consulta as 13h00, coleta domiciliar, ambulância, coleta no carro e etc);
o Deixar requisitado os exames pedidos pelo médico, que não serão realizados, confirmar se o paciente está com filipeta de pendência.
o Para duas ou mais solicitações de HEMOCULTURA, CMICODIAG E PMICODIAG, colocar no campo observação do material - 1A, 2A, 3A para diferenciar as amostras e emitir o número correto de etiquetas;
o Para duas ou mais solicitações de protoparasitológico (PROTO) alterar o material para FE1, FE2 e FE3 (fezes controle 1, 2 e 3), para diferenciar as amostras e emitir o número correto de etiquetas;
o Selecionar somente os exames que serão realizados; o Editar número de etiquetas das urinas de 24 h (uma a mais que o numero de
frascos); o Colocar as requisições que deverão ser encaminhadas juntamente com as
amostras, na bandeja ao lado da impressora (APACs, Carga viral, CD3CD4, Hemocentro, gasometria, requisições de pesquisa, requisições de coleta de urinas por sonda);
o Entregar documento e senha ao paciente; o Orientar o paciente sobre o fluxo a ser seguido:
Material domiciliar – dirigir-se ao balcão de entrega; Aplicação de Mantoux, MONTENEGRO e coleta de Líquor – aguardar
próximo das salas 6 e 7; Senhas de 1 a 100 – aguardar próximos as salas 1, 2 e 3; Senhas de 101 a 300 – aguardar no final do corredor - Sala 13; Coletas Femininas (uro) – aguardar próximo das salas 8,9 ou 10; Coletas Masculinas (uro) – aguardar próximo da sala 11; Senhas de 600 a 949 – aguardar próximo das salas 5, 6 e 7.
GUARDA DE REGISTROS No final do dia, guardar as requisições médicas, identificando o dia e mês. As requisições deverão ser guardados na área por 3 meses e depois encaminhadas para o Arquivo, onde serão guardados por 5 anos. FACILITADOR INTERNO Destacar as etiquetas de código de barras, da impressora (zebra) e separar por paciente, mantendo a sequência.
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o: 003
Data: 02/01/2013
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
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- 122 -
Atenção: antes de retirar as etiquetas pressionar tecla feed. Verificar se todas as etiquetas são do mesmo paciente. Verificar o número da senha e os exames que serão realizados. Separar por paciente mantendo a sequência numérica; Grifar as observações importantes antes de distribuir as etiquetas; Urina de 24 horas - anotar na própria etiqueta o número de frascos quando estiver digitado; Associar requisições e etiquetas, quando possível para: Adolfo Lutz, projetos de pesquisas, APACS (VHC PCR e VHC GENOTIP), HEMOCENTRO, BANCO de SANGUE, urina por sonda; Gasometria - montar o Kit (seringa de gaso, etiquetas e requisição de exames); Se necessário reemitir etiquetas, colocar asterisco em todas as etiquetas; Distribuir as Ordens de Coleta de acordo com o padrão:
Só amostra domiciliar, coleta externa e urina de 24hs – receber a amostra no balcão de recebimento;
Senhas de 1 a 100 (prioridade) – entregar diretamente ao coletador disponível;
Senhas de 101 a 300 (infantil) – Sala 13;
Senhas de 301 a 599 (preferencial) – caixa Sala 2;
Senhas de 601 a 999 (geral )– caixa Sala5;
Coletas masculinas - (uro, secreções) caixa azul – Sala 11;
Coletas femininas - (uro, secreções) caixa vermelha – Salas 8, 9 ou 10;
Mantoux, MONTENEGRO (PPD) - Sala 6;
Teste de Tolerância a Glicose – ver o colaborador escalado;
LCR (Coleta de Líquido Raquidiano – líquor) – Sala 7.
RECEBIMENTO DE AMOSTRAS DOMICILIARES OU SERVIÇOS EXTERNOS Chamar o paciente pelo nome, pedir para repetir o nome completo e conferir com a ordem de coleta (etiquetas); Conferir se o paciente seguiu a orientação de coleta corretamente, senão, reorientar, fornecer a pendência, registrar no formulário; Para URI 24hs conferir o número de frascos, anotar na etiqueta, colocar a rúbrica ou nome do responsável pelo recebimento; Etiquetar o material na presença do paciente, vide Instruções para Identificação das amostras PTPA001 – Identificação e Etiqutagem de Amostras Biológicas; Encaminhar para área analítica as etiquetas de uri 24 horas que sobrarem; Se não houver outras coletas, entregar o comprovante de comparecimento e dispensar o paciente; Aqueles que possuem outras coletas, orientar para esperarem próximos às salas de coleta; Para facilitar o fluxo, reforçar com o paciente o local mais adequado para espera.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P13
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
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Verificar
URINA 24 - o período de coleta;
CORTISOL URINÁRIO - se a urina foi mantida e transportada refrigerada;
COBRE E ZINCO URINÁRIO - se o frasco é o padronizado;
GLIFRAUR – se os períodos estão corretos – (6h00 às 12h00, 12h00 às 18h00, 18h00 às 00h00 e das 00h00 às 6h00). Se houver mais que um frasco por período ou não diurese em algum dos períodos - anotar a informações na etiqueta;
Materiais coletados em outros serviços – conferir o material antes da digitação, se houver não conformidade anotar na requisição e na ordem de remessa;
o Dar visto na ordem de remessa ou listagem; colocar o nome legível do responsável pelo recebimento;
o Dar baixa nas amostras recebidas no SIL (coleta não LPC);
Se uri 24hs, fezes e escarro imprimir planilhas; se uri/uro encaminhar para microbiologia;
Acondicionar em caixas para o transporte.
CRITÉRIO DE REJEIÇÃO DE AMOSTRAS
Urina de 24hs em frasco de refrigerante ou similares;
Material vazado;
Cu e Zn urinário – frascos reutilizados;
Cortisol urinário – fora do gelo;
Clearcrea e clearureia – urina de 24 h sem a presença do paciente para realizar a coleta da amostra de sangue.
BOX DE COLETA Chamar o paciente pelo Sistema de senhas ou pelo nome. Acomodar o paciente. Pedir para repetir o nome completo e conferir com o documento oficial. Receber, conferir e identificar material domiciliar, quando entregue no Box. Observar critérios de rejeição, listados no recebimento de material domiciliar.
Higienizar as mãos;
Calçar luvas de procedimento;
Conferir e ordenar todo o material a ser utilizado;
Identificar os materiais diante do paciente (poderá ser identificado após a punção);
Explicar o procedimento;
Realizar o procedimento de coleta de acordo com a técnica padronizada
Fornecer o comprovante de atendimento;
Informar que os resultados serão encaminhados ao prontuário; Liberar o paciente.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P13
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya e Toyoko Watanabe
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA
Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 124 -
Exames de urgência
Colar a etiqueta de urgente;
Dar baixa de coleta o mais rápido possível;
Acomodar na estante específica de amostras de urgência;
Demais pacientes, acondicionar as amostras nas estantes;
Dar baixa de coleta no SIL;
Distribuir as amostras nas estantes de acordo com a padronização;
Em horário de pico, deixar o material juntamente com a identificação (crachá) para que o facilitador dê sequência ao serviço.
FACILITADOR INTERNO - BAIXA DE COLETA DE AMOSTRAS Nos horários de pico, dar baixa das amostras no SIL, digitando o número de identificação de cada coletador; Entrar no menu COLETA (Baixa na Coleta), passar o crachá do coletador - dar baixa das amostras; Distribuir os materiais em estantes separadas por seção: Hematologia, Fisiologia, Imunologia, Microbiologia, Urinálise, Parasitologia, Hemocentro, Laboratório de HIV, LCCI e Pesquisas, Banco de Sangue (refrigerador) e Pesquisas (refrigerador); Respeitar a especificidade dos exames, (acondicionar refrigerado e banho-maria), a informação consta na etiqueta; Exames de urgência, encaminhar imediatamente para a área analítica; VHC PCR e VHC GENOTIP, HEMOCENTRO, BANCO de SANGUE, CD3CD4, Carga Viral, Adolfo Lutz, projetos de pesquisas - associar requisições com as amostras; Imprimir planilha para os malotes das seguintes áreas analíticas: hematologia (todos), parasitologia (todos), microbiologia (todos), fisiologia (RENINA, ACTH, HGH, INSUL), Líquidos biológicos (LCR), imunologia (CRIOGLOBULINA e CRIOAGLUT); Acondicionar os malotes nas caixas padronizadas para o transporte.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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PC.T1 – TÉCNICAS DE COLETA PARA EXAMES DA DIVISÃO DE
PATOLOGIA CLÍNICA
OBJETIVO Padronizar e orientar os procedimentos de coleta dos exames realizados no Laboratório de Patologia Clínica. APLICAÇÃO Aplicam-se aos funcionários, plantonistas da Central de Coleta de Exames e como orientação de coleta a unidades externas.
FATORES DE INTERFERÊNCIA PRÉ-ANALÍTICA
Jejum: o não cumprimento do tempo recomendado pode comprometer o resultado de algumas análises.
Lipemia: aumento dos níveis de lípides, deixando o soro com aspecto leitoso o que pode interferir em algumas metodologias.
Coágulo: ocorre quando há quantidade insuficiente de anticoagulante no frasco ou a homogeneização é insuficiente e/ou inadequada.
Hemólise: aspecto avermelhado do soro/plasma devido à ruptura das células sanguíneas. Ocorre quando há transferência da amostra de sangue da seringa para o tubo sem a retirada da agulha; ao exercer pressão com o polegar sob o embolo da seringa ou por movimentos bruscos durante a técnica de homogeneização.
Preenchimento incorreto do tubo: volume insuficiente ou excesso de sangue, o que altera a proporção correta sangue/aditivo.
Garroteamento: o garrote serve como ferramenta para visualizar a veia e facilitar o acesso venoso. O uso por mais de 1 minuto induz ao erro diagnóstico, com alterações nas análises de potássio, plaquetas, testes de coagulação podendo causar complicações pós-coleta como hematomas e parestesias (formigamento).
Armazenamento: não seguir a recomendação exigida para as análises (Banho – Maria, refrigeração ou temperatura ambiente).
Transporte: tomar precauções para não alterar a integridade e a composição das amostras, evitar movimentos bruscos e acomodação incorreta nas caixas.
INTERCORRÊNCIAS
Transfixação da veia: quando a agulha transfixa o vaso. Deve-se: o Retirar o tubo do adaptador (isso não causará a perda do vácuo, desde que
a veia esteja puncionada); o Retroceder a agulha e recolocar o tubo até que o sangue flua para o interior.
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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Estenose: as paredes dos vasos se unem interrompendo o fluxo sanguíneo, pode ocorrer quando o material utilizado não é adequado (calibre de agulha e volume de aspiração são incompatíveis com o tipo de veia).
Colabamento: bisel da agulha está obstruído pela parede dos vasos, impedindo o fluxo sanguíneo. Deve-se:
o Retirar o tubo, girar cuidadosamente o adaptador para que o bisel da agulha seja desobstruído e recolocar o tubo.
Punção acidental de artéria: as artérias são palpáveis, pulsáteis e localizam-se na parte interna das dobras dos braços. O fluxo de sangue é mais intenso comparado ao sangue venoso, tem coloração vermelho vivo, devido a maior oxigenação.
o Retirar imediatamente o garrote e continuar a coleta; o Fazer compressão vigorosa no local por 5 min; o Acomodar o paciente na sala de espera sob sua observação; o Solicitar que o mesmo faça compressão por mais 5 minutos; o Antes de liberar o paciente, comunicar a enfermeira responsável para
ciência e avaliação do paciente.
Hematoma: complicação mais comum da venopunção. Decorrente do extravasamento do sangue para o tecido, durante ou pós-punção, sendo visualizado na forma de uma protuberância. Deve-se colocar gelo imediatamente no local (CRIOTERAPIA). É formado quando:
o Material utilizado não corresponde ao calibre da veia; o Agulha ultrapassa a veia; o Agulha atinge apenas a parede venosa; o Compressão insuficiente no local da punção.
Lipotimia: caracteriza-se por debilidade geral, como corpo amolecido e sem força, tontura, frio, palidez, sudorese, náuseas, vômitos e em casos graves convulsões. Ocorre especialmente em pacientes emotivos (medo), subnutridos, hipotensos ou hipoglicêmicos. Pode ser evitada e corrigida pelo preparo psicológico prévio do paciente, que deve ser colocado em posição confortável, de preferência deitado para a realização da punção venosa.
Perda momentânea dos sentidos: pacientes apresentam pele fria e úmida, suor abundante, respiração e pulso fraco.
o Deitar o paciente na maca na posição dorsal; o Manter os pés elevados; o Verificar a respiração e pulsação.
Crise Convulsiva: pacientes apresentam contraturas involuntárias da musculatura, provocando movimentos desordenados e perda de consciência.
o Deitar e proteger a cabeça para evitar que bata contra uma superfície dura; o Colocar um pano entre os dentes para reduzir a possibilidade de morder a
língua ou gengiva; o Posicionar em decúbito lateral para evitar aspiração; o Nunca tentar segurar o paciente durante a crise;
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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o Esperar o término da crise, manter o paciente deitado ainda por alguns minutos, até que recupere totalmente o controle de si.
Hipoglicemia o Confirmar nível de glicemia fazendo teste no glicosímetro; o Oferecer rapidamente um copo de água, chá, suco ou leite levemente
ADOÇADO ou bolacha doce; o Deitar o paciente na maca até melhorar os sintomas; o Se o paciente ainda não realizou a coleta, esperar melhorar o estado geral; o Dispensar o paciente após mantê-lo sentado por 15 minutos; o Se houver necessidade de atendimento mais específico, chamar a
ambulância; o (17743) para transportar a UER; o Registrar as ocorrências e comunicar a enfermeira.
FATORES QUE PREDISPÕEM A MAL-ESTAR NOS PACIENTES EM COLETA
o Problemas circulatórios, debilidade física, pós-operatórios, gravidez, hipotensão, jejum prolongado, medo, estresse, calor ambiental e demora no atendimento;
o Sintomas: bradicardia, taquicardia, tontura, fraqueza, sudorese, cefaléia, convulsão, tremores, náusea, desmaios, vômitos, escurecimento da visão, incontinência urinária, pele fria e pálida.
ORIENTAÇÕES QUE DEVEM SER DADAS AO PACIENTE o Manter tempo de jejum de acordo com as orientações; o Informar a recepcionista que é diabético, trazer lanche ou bala para
situações de urgência; o Aplicar insulina, somente após a coleta; o Não suspender medicação sem orientação médica; o Beber água, principalmente em dias quentes; o Manter o braço estendido pós-punção.
CONDUTAS EM INTERCORRENCIAS
o O profissional deve identificar os casos com extrema urgência e socorrer o paciente;
o Deitar o paciente na maca na posição dorsal; o Favorecer privacidade; o Procurar manter o ambiente arejado; o Verificar pulsação, pedir para respirar fundo e calmamente, tranquiliza-lo até
que o pulso volte ao ritmo normal;
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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o Verificar o nível de consciência: Se Consciente - perguntar quais os sintomas do mal estar; o nome,
se tem diabetes, hipertensão, hipotensão, crise convulsiva ou se fez uso de algum medicamento;
Se Inconsciente - observar a respiração e pulsação, se necessário encaminhar para atendimento na UER.
PROCEDIMENTOS GERAIS
Confirmar o nome com o paciente, solicitar um documento (RG, Habilitação, Cert Nasc.);
Informar ao paciente o procedimento a ser realizado;
Conferir e ordenar o material;
Higienizar as mãos;
Calçar luvas de procedimento;
Ao finalizar o procedimento identificar o material (pode ser no inicio);
Retirar as luvas;
Higienizar as mãos. RECOMENDAÇÕES PARA COLETA EM CRIANÇAS E NEONATOS
Considerações
O ambiente, a posição e a presença de pessoas estranhas provocam nas crianças reações de medo e choro, portanto deve-se favorecer a permanência de familiares que irão transmitir segurança e calma. A coleta pediátrica exige do profissional habilidade, calma, paciência, confiança e conhecimento.
Recomendações
Explicar o procedimento ao familiar e à criança dentro da capacidade de entendimento;
Deitar a criança em maca na posição dorsal;
Realizar o procedimento de preferência, por 2 profissionais;
Posicionar o acompanhante no lado oposto ao coletador e pedir para conter o tórax e as pernas da criança;
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Data: 02/01/2013
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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Posicionar o auxiliar na cabeceira da maca, ao lado do coletador, para as demais etapas da coleta (soltar o garrote, ordenhar o braço para permitir melhor fluxo sanguíneo ou transferência do sangue para o tubo);
Solicitar auxílio de mais pessoas, caso a criança seja muito agitada e difícil de ser contida;
Durante a contenção, o corpo da criança deve ser mantido em posição anatômica. A força exercida não pode gerar marcas ou hematomas;
Agir com presteza e ser discreta durante todo o procedimento, para assegurar confiança à criança e ao familiar;
Selecionar a veia com cuidado para efetuar a coleta com uma única punção;
Após a coleta, solicitar ao acompanhante que coloque a criança no colo, acalmando-a.
PUNÇÃO VENOSA
Princípios Gerais
Selecionar o local da punção;
Priorizar as veias cefálica e mediana cubital (braço);
Evitar a veia basílica, porque está próxima ao nervo e artéria;
Na impossibilidade de acesso venoso em membros superiores, puncionar membros inferiores;
Não puncionar veias em locais com: o Infusão intravenosa; o Fístula arteriovenosa; o Hematomas, flebites, edemas, contusões e escoriações; o Mastectomia radical; o Cateterismo cardíaco; o Má circulação ou amputação.
Observações
A punção no dorso da mão e no pé é bem mais dolorosa que na dobra do antebraço;
Não aplicar "tapinhas" no local a ser puncionado, pois pode haver deslocamento de placas de ateroma (gordura);
Utilizar uma bolsa de água quente, protegida por toalha, por aproximadamente 5 min, sobre o local da punção, em situações que não for possível visualizar a veia;
Na impossibilidade de coleta de sangue por punção periférica, nas Unidades de internação pode ser realizada coleta por cateter vascular já instalado. Este procedimento deve ser realizado por médico ou enfermagem.
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
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TÉCNICAS DE COLETA
COLETA DE SANGUE
Coleta a vácuo
Definição - é uma técnica segura, rápida, precisa e eficiente. Mantêm-se as qualidades dos elementos do sangue num sistema fechado e asséptico.
O sangue é coletado por aspiração mecânica automática, devido ao vácuo interno do tubo (pressão negativa).
Material Adaptador para agulha a vácuo, agulha para coleta a vácuo 25x0,7mm ou 25x0,8mm,
tubos de coleta, algodão, álcool 70%, caixa para descarte de material perfuro cortante, luvas, etiquetas, estantes, banho de gelo, adesivo curativo.
Sequência Proposta o Garrotear o braço; o Pedir ao paciente para fechar a mão e mantê-la fechada até segunda
ordem; o Selecionar a veia; o Fazer antissepsia com álcool 70%; o Abrir o lacre da agulha diante do paciente; o Conectar a agulha no adaptador; o Fazer a punção com o bisel da agulha voltado para cima num ângulo de 15°; o Segurar firmemente o adaptador com uma das mãos e com a outra inserir o
primeiro tubo, conforme sequência abaixo: 1º) Hemocultura ou tubo de descarte (quando aplicável)
2º) Tubo de tampa azul (citrato) 3º) Tubo seco com gel (ativador de coágulo) 4º) Tubo de tampa verde (heparina) 5º) Tubo de tampa roxa (EDTA) 6º) Tubo de tampa cinza (fluoreto de sódio)
o Pressionar o tubo dentro do adaptador, até que a agulha perfure a tampa; o Preencher o volume do tubo; o Desgarrotear o braço assim que o sangue começar a fluir dentro do tubo;
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Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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o Remover o tubo do adaptador e trocar pelo seguinte; o Homogeneizar suavemente todos os tubos com movimentos de inversão de
6 a 10 vezes; o Retirar e descartar a agulha (ou agulha e adaptador) na caixa para materiais
perfurocortantes; o Fazer compressão no local da punção ou solicitar que o paciente a faça; o Identificar os materiais; o Colocar curativo adesivo no local; o Acondicionar os tubos em estantes próprias ou dar baixa de coleta
imediatamente se for urgência.
Coleta com seringa e agulha
Definição - sistema aberto e existe a etapa de transferência do sangue para os tubos. É necessária, principalmente, quando se trata de coleta de pacientes especiais: pediátricos, neonatos, oncológicos, geriátricos e com acesso venoso difícil.
Material Agulha comum 25x7 ou 25x8 (se necessário, escalpe), seringas, tubos de coleta,
algodão, álcool 70%, caixa para descarte de material perfuro cortante, luvas, etiquetas, estantes, banho de gelo, adesivo curativo. Pode ser utilizado microtubo caso a coleta seja difícil ou não se consiga obter volume padrão.
Sequencia Proposta o Garrotear o braço; o Pedir ao paciente para fechar a mão e mantê-la fechada até segunda
ordem; o Selecionar a veia; o Fazer antissepsia com álcool 70%;
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- 132 -
o Abrir o lacre da agulha e seringa diante do paciente; o Conectar a agulha na seringa; o Fazer a punção com o bisel da agulha ou escalpe voltado para cima num
ângulo de 15º; o Puxar o êmbolo lentamente, até obter o volume de sangue necessário; o Retirar o garrote durante a aspiração do sangue; o Transferir o sangue para os tubos conforme sequência abaixo:
1º) Hemocultura ou tubo de descarte (quando aplicável) 2º) Tubo de tampa azul (citrato) 3º) Tubo seco com gel (ativador de coágulo) 4º) Tubo de tampa verde (heparina) 5º) Tubo de tampa roxa (EDTA) 6º) Tubo de tampa cinza (fluoreto de sódio)
o Retirar a agulha da seringa (sem contato manual: utilizar dispositivo próprio da caixa de descarte ou pinça);
o Abrir os tubos de coleta; o Fazer o sangue deslizar suavemente pela parede do tubo, NÃO fazer
pressão com o êmbolo para evitar hemólise; o Fazer compressão no local da punção ou solicitar que o paciente a faça; o Identificar os materiais; o Colocar curativo adesivo; o Acondicionar os tubos em estantes próprias ou dar baixa de coleta
imediatamente se for urgência.
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- 133 -
Coleta por gotejamento
Definição - punção somente com agulha, sem uso de seringa, deixando gotejar o sangue diretamente no tubo de coleta. É um sistema aberto, havendo necessidade de rígida técnica asséptica, necessária em pacientes com acesso venoso difícil, principalmente, pacientes pediátricos, neonatos, oncológicos e geriátricos.
Material Materiais da coleta por seringa, excluindo a seringa.
Sequência Proposta Seguir os mesmos passos da coleta por seringa, porém:
o Fazer punção no dorso da mão, se possível, na bifurcação de duas veias para aumentar o fluxo de gotejamento;
o Utilizar somente a agulha para a punção, sem uso de seringa; o Realizar massagem na região de antebraço e punho para acelerar o
gotejamento; o Segurar o tubo e aguardar o gotejamento de sangue no interior do tubo,
homogeneizando durante o preenchimento.
COLETA DE EXAMES
Teste de Tolerancia a Glicose
Siglas: TTG e CGG
Sequência Proposta Seguir os mesmos passos da coleta por vácuo ou seringa, porém:
o Verificar o valor da glicemia após a coleta do tempo 0 - jejum (glicosímetro); o Anotar na etiqueta do tubo o valor da glicemia e o horário da coleta; o Suspender a coleta se o resultado do teste for maior que 140mg/dl para TTG
e 120mg/dl para CGG (gestantes); o Administrar por via oral (VO) solução de glicose:
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o: 004
Data: 02/01/2013
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Adultos: 150 ml de solução glicose (75g); Crianças: 1,75g por Kg de peso, até um máximo de 75g de glicose.
Peso Concentração Volume /ml Peso Concentração Volume /ml
10 Kg 17,5 g 35 ml 27 Kg 47,2 g 94 ml
11 Kg 19,2 g 38 ml 28 Kg 49 g 98 ml
12 Kg 21 g 42 ml 29 Kg 50,7 g 101 ml
13 Kg 22,7 g 45 ml 30 Kg 52,5 g 105 ml
14 Kg 24,5 g 49 ml 31 Kg 54,2 g 108 ml
15 Kg 26,2 g 52 ml 32 Kg 56 g 112 ml
16 Kg 28 g 56 ml 33 Kg 57,7 g 115 ml
17 Kg 29,7 g 59 ml 34 Kg 59,5 g 119 ml
18 Kg 31,5 g 63 ml 35 Kg 61,2 g 122 ml
19 Kg 33,2 g 66 ml 36 Kg 63 g 126 ml
20 Kg 35 g 70 ml 37 Kg 64,7 g 129 ml
21 Kg 36,8 g 73 ml 38 Kg 66,5 g 133 ml
22 Kg 38,5 g 77 ml 39 Kg 68,2 g 136 ml
23 Kg 40,2 g 80 ml 40 Kg 70 g 140 ml
24 Kg 42 g 84 ml 41 Kg 71,7 g 143 ml
25 Kg 43,7 g 87 ml 42 Kg 73,5 g 147 ml
26 Kg 45,5 g 91 ml 43 Kg 75 g 150 ml
o Marcar o tempo a partir do início da ingestão da glicose e anotar nos tubos de coleta o horário das próximas coletas;
o Orientar o paciente que durante o teste, deverá permanecer sentado, sem fumar, comer, beber, podendo fazer uso de medicação de uso contínuo;
o Tempo de coleta pós-administração da solução de glicose: Adulto e Criança: 120 minutos, Gestante: 60 e 120 minutos pós-sobrecarga;
o Suspender o teste caso o paciente apresente vômito; anotar no último frasco;
o Dar baixa, imprimir planilha; o Registrar FORPTDPC014
Gasometria Venosa
Definição - coleta de sangue venoso, em seringa específica com anticoagulante (heparina lítica) em proporção exata e sistema de vedação que impede a perda dos elementos gasosos. Pode ser efetuada por profissionais técnicos de enfermagem e de laboratório.
Siglas: o PEGASO1 - G SIMPLES
o PEGASO2 - G SIMPLES + Eletr (Na,K,Ca) + Metab (glicose)+ Hb/HT o PEGASO3 - G SIMPLES + Eletr (Na,K,Ca, CL) + Metab. (glicose)+ Hb/HT o PEGASO4 - G SIMPLES + Eletr (Na,K,Ca, CL) + Metab. (glicose, lactato, Bil)+ Hb/HT
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Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 135 -
o PEGASO5 - G SIMPLES + Eletr (Na,K,Ca, CL) + Metab. (glic, lact, Bil)+ Hb/HT+ OXIMETRIA
o PEGASO6 - G SIMPLES + OXIMETRIA (OXIHB, CARBOXIHB, METAHB, HBREDUZIDA, HEBFETAL, SULFOHB)
Material Materiais de coleta por seringa, acrescido da seringa específica para gasometria. Caso haja falta da seringa específica, deve-se preparar uma seringa comum com heparina diluida:
o Diluir 1 ml de heparina líquida com 5.000 UI/ml com 4 ml de água destilada; o Aspirar 0,2 ml da heparina diluída em uma seringa de 3 ou 5 ml; o Lubrificar a seringa com a diluição aspirada; o Retirar o excesso; o Conectar uma agulha nova; o Efetuar punção.
Sequência Proposta o Seguir os mesmos passos da coleta por seringa; o Utilizar garrote apenas para a visualização da veia; o Remover o garrote antes da punção e não utilizá-lo durante a coleta; o Coletar de 1 a 3 ml de sangue (seguir a recomendação do fabricante); o Puxar o êmbolo lentamente; o Após a coleta, segurar a seringa na posição vertical e fazer movimentos de
rotação para permitir a homogeneização; o Retirar as bolhas presentes na amostra; o Desconectar a agulha da seringa e desprezá-la; o Conectar a tampa vedante.
Hemocultura
Definição - exame microbiológico, para detectar presença ou não de microorganismo no sangue.
Siglas: CMICOSAN ( frasco específico); HEMO ou CFUNGO - adulto e infantil (frascos distintos);
Material Materiais de coleta por seringa e frascos específicos para hemocultura.
Sequência proposta o Fazer assepsia na tampa do frasco com álcool 70%; o Garrotear o braço; o Selecionar a veia, esta área não deverá mais ser tocada com os dedos; o Colocar as luvas de procedimentos; o Realizar antissepsia com clorexidine alcoólico; o Coletar o volume de sangue descrito no capítulo PC.P11-Tabela com os
exames realizados pela Divisão de Patologia Clínica – HC; o Desgarrotear;
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o Transferir o sangue para o frasco de hemocultura, homogeneizar levemente por rotação. Não há necessidade da troca de agulha para a transferência;
o Identificar o material (não colar a etiqueta sobre o código de barras do frasco).
Em caso de duas amostras: o Repetir o procedimento acima, independente do tempo entre eles; o Puncionar preferencialmente em locais diferentes; o Caso não tenha sucesso na punção e seja necessária nova palpação,
reiniciar o processo. OBS: quando a punção exige palpação local após a antissepsia (crianças, rede venosa difícil ou coleta arterial), devem ser utilizadas luvas estéreis. COLETA DE URINA
Urina Amostra
Orientações o Pacientes que conseguem urinar espontaneamente devem ser
encaminhados ao banheiro e sob orientação técnica do profissional realizar a própria coleta;
o A coleta deve ser feita pela manhã, preferencialmente, após retenção vesical de 2 a 3 horas;
o Se a paciente estiver menstruada ou com sangramento, em caso de urgência fazer uso de tampão vaginal;
o Não utilizar cremes, pomadas ou qualquer medicamento na região genital por 24 horas;
o Qualquer problema na coleta deve ser comunicado ao funcionário do laboratório no momento da entrega do material.
Sigla: A1M, AMILURI, CLURI, CREAURI, EFPUR, KURI, MICROALB, NAURI, OSMOLAURI, PIURI, PROTCREA, RELKAPLAN, URACURI, UREIAURI, URI (urina TIPO1 - coletor não estéril)
URO, PFUNCO, CFUNGO, PMICODIAG, CMICODIAG (cultura - coletor estéril).
Materiais Frasco coletor universal e estéril, laminocultivo.
Sequência Proposta para Urina 1 o Orientar o paciente a desprezar o primeiro jato e coletar 20 ml de urina; o Receber o frasco, utilizando luvas de procedimento.
Sequência Proposta para Cultura
Técnica de Coleta Feminina
Os procedimentos podem variar conforme as condições da paciente:
Coleta realizada pela paciente sob orientação técnica do profissional;
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Coleta em posição ginecológica – realizada pelo profissional;
Coleta domiciliar.
Realizada pela Paciente sob Orientação Técnica o Higienizar a região vulvar com água e sabonete líquido, sempre no sentido
da frente para trás, separando os grandes e pequenos lábios; o Desprezar o primeiro jato e coletar 20 mL de urina; o Solicitar ao paciente para fechar o coletor; o Após a coleta o técnico deve mergulhar o laminocultivo na urina.
Em Posição Ginecológica Indicada para pacientes acamadas, debilitadas, idosas, com deficiência física.
o Pedir ou auxiliar a paciente a remover a roupa da cintura para baixo; o Colocar a paciente em posição ginecológica; o Colocar a comadre; o No caso de menstruação ou na presença de corrimento, remover a secreção
visível com gaze e colocar um tampão de gaze durante a coleta; o Higienizar a região vulvar com água e sabonete líquido, sempre no sentido
da frente para trás, separando os grandes e pequenos lábios; o Enxaguar com gaze umedecida, sempre no sentido de cima para baixo, para
limpeza e remoção do sabão; o Secar com outra gaze; o Continuar afastando os grandes lábios e pedir para a paciente urinar. O
início do jato urinário deve ser desprezado na cuba ou comadre, coletar 20 ml de urina;
o Desprezar o jato final; o Ao término, fechar o frasco; o Remover o tampão (se usado); o Após a coleta o técnico deve mergulhar o laminocultivo na urina.
Técnica de Coleta Masculina
o Higienizar a genitália externa (retrair o prepúcio), com água e sabão, enxaguar com ducha higiênica e secar;
o Desprezar o primeiro jato urinário e coletar 20 ml de urina; o Solicitar ao paciente para fechar o coletor, sem tocar a parte interna do
frasco ou da tampa; o Após a coleta o técnico deve mergulhar o laminocultivo na urina.
Coleta Domiciliar
Fazer uma rigorosa higiene íntima com água e sabonete; o Mulheres - lavar e secar sempre da frente para trás; o Homens - lavar retraindo o prepúcio;
A coleta deve ser feita pela manhã, preferencialmente, após retenção de 2 a 3 horas;
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Desprezar o primeiro jato urinário e coletar 20 ml de urina (meio frasco), terminar de urinar no vaso.
IMPORTANTE
Utilizar o frasco fornecido pelo laboratório (tampa vermelha-estéril);
Abrir o frasco somente na hora do uso, tendo o cuidado para não tocar no interior da tampa e do frasco;
Depois de aberto manter a tampa do frasco, voltada para cima;
Não encostar o frasco na região genital durante a coleta;
Fechar o frasco e coloca-lo em um saco plástico;
Transportar o material em um recepiente com gelo.
COLETA DE URINA EM SITUAÇÕES ESPECIAIS
Ocorre quando o paciente não consegue miccção espontânea, apresenta incontinência urinária, contaminações de coleta e cateter já instalado em sistema urinário (cateter vesical permanente, ureterostomia, vesicostomia, nefrostomia, mitrofanoff).
Crianças Sem Controle Miccional (Coletor)
Material Saco coletor, gaze e sabão líquido.
Sequência Proposta o Posicionar a criança em decúbito dorsal (costas) na maca apropriada; o Fazer higiene rigorosa da região genital com sabão neutro; o Enxaguar com água comum; o Secar a pele com gaze seca; o Fixar o saco coletor segundo as especificações do fabricante; o Solicitar ao acompanhante que ofereça líquido (água, leite etc) à criança; o Em caso de coleta de urocultura, fazer a troca do coletor a cada 30 minutos,
efetuando nova higienização; o Fechar o saco coletor e colocar no coletor universal (não necessário estéril); o Não semear no laminocultivo; o Dar baixa de coleta e emitir planilha; o Anotar nas Planihas coleta realizada por saco coletor.
Cateterismo Vesical
Definição - instalação de um cateter no interior da bexiga, através da uretra, com a finalidade de realizar exames ou escoar a urina. Pode ser intermitente, quando a sonda é
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retirada após o esvaziamento da bexiga, ou de demora, quando permanece na bexiga drenando a urina através de um sistema fechado.
Material Sonda (avaliar numeração conforme necessidade, usar preferencialmente de 12 a 14 para adultos e 6 a 10 para crianças), sabão clorexidina degermante, seringa, luva estéril, coletor estéril, solução fisiológica 0,9%, alcool 70%.
Orientações o O paciente com coletor que não possuir o dispositivo para coleta, não
efetuar o procedimento pelo risco de contaminação; o Não desconectar o cateter do coletor; o Não recolher urina diretamente da bolsa; o Não semear no laminocultivo; o Dar baixa de coleta e emitir planilha; o Anotar nas Planihas coleta realizada por sonda e local do cateterismo.
. Cateterismo Vesical Intermitente (Sonda de Alívio)
Sequência Proposta Feminina
o Abrir e colocar os materiais no campo estéril; o Posicionar a paciente na maca; o Expor a região genital; o Proceder à higiene intima com Clorexidina degermante; o Fazer antissepsia do meato uretral; o Trocar a luva de procedimento pela luva estéril; o Introduzir a sonda com xilocaina, desprezar um pouco de urina, e coletar 20
ml no coletor estéril. Masculina
o Abrir e colocar os materiais no campo estéril; o Posicionar o paciente; o Expor a glande e fazer antissepsia na região uretral com Clorexidina
degermante; o Trocar a luva de procedimento pela luva estéril; o Introduzir a sonda com xilocaina, desprezar um pouco de urina, e coletar 20
ml no coletor estéril. Cateterismo Vesical de Demora
Sequência Proposta o Realizar no dia da troca da sonda ou dia seguinte; o Clampear o cateter; o Aguardar de 10 a 15 minutos para acumular urina suficiente;
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o Fazer desinfecção do dispositivo para coleta (borracha de látex) com álcool 70%;
o Aspirar com agulha fina e seringa estéril aproximadamente 20 ml de urina; o Colocar no frasco estéril; o Desclampear o cateter
Nefrostomia, Vesicostomia, Ureterostomia, Cistostomia e Mitrofanoff
Material - Luva estéril, gaze estéril, seringa de 5 ou 10 ml, frascos coletor estéril, saco coletor, clorexidina degermante, solução fisiológica 0,9%, cateter uretral (avaliar numeração conforme necessidade, usar sonda 6 ou 8).
Orientações o Não semear no laminocultivo; o Dar baixa de coleta e emitir planilha; o Anotar nas Planihas coleta realizada por sonda e local do cateterismo.
Sondagem nas Derivações
Sequência proposta o Fazer antissepsia rigorosa, limpar o orifício com gaze umedecida em
solução Clorexidina degermante; o Enxaguar com solução fisiológica 0,9%; o Trocar a luva de procedimento pela luva estéril; o Introduzir o cateter assepticamente e delicadamente; o Desprezar um pouco de urina, e coletar 20 ml no coletor estéril.
Sondagem nas Derivações sem drenagem espontânea de urina o Deixar aproximadamente 3 ml de ar na seringa, manter este vácuo e
conectar a seringa no cateter; o Aguardar a urina gotejar na seringa (este processo pode demorar); o Ou aspirar a urina por meio da seringa delicadamente; o Caso a quantidade de urina seja mínima, manter a amostra na seringa e
encaminhar para a área analítica.
Saco Coletor na Derivação o Fazer antissepsia rigorosa, limpar o orifício com gaze umedecida em
solução Clorexidina degermante; o Enxaguar com solução fisiológica 0,9%; o Adaptar saco coletor na derivação; o Aguardar coletar a urina.
Bolsa Coletora Conectada na Derivação o A coleta deve ser realizada no dia da troca da bolsa ou no dia seguinte; o Fazer desinfecção com alcool 70% no bico da bolsa; o Desprezar um pouco da urina; o Coletar aproximadamente 20 mL em coletor estéril.
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Urina de 24 Horas
Siglas - AMILURI, CAURI, CLEARCREA, CLEARUR, CLURI, CORTURI, CREAURI, CUURI, GLIFRAUR, GLI24UR, KURI,, MGURI, NAURI , OSMOLAURI, PIURI, PROT24, URACURI, UREIAURI, ZNURI.
Material Frasco padrão, garrafa de água mineral ou alcool.
Orientações o Fornecer a orientação por escrito; o Entregar frascos padronizados; o Para COBRE E ZINCO urinário somente frascos novos; o Beber a quantidade habitual de água.
Sequência proposta o Ao acordar, desprezar a primeira urina da manhã; o A partir da segunda urina, colocar todas durante o dia, noite e a primeira do
dia seguinte, no frasco fornecido pelo laboratório; o Não ultrapassar a marca de volume do frasco; o Manter o frasco com urina em local fresco.
OBSERVAÇÕES
Clearance de Creatinina e Ureia o Necessário a coleta de uma amostra de sangue (com jejum de 4 hs) e
informar peso e altura do paciente.
Cortisol Urinário (CORTURI) o Manter a urina refrigerada durante a coleta e transporte.
Glicosuria Fracionada o Desprezar a primeira urina da manhã, coletar a urina por 24 horas em
frascos separados por períodos de 6 horas, identificar os períodos. Exemplo: Primeiro Frasco - das 06h00 às 12h00; Segundo Frasco - das 12h00 às 18h00; Terceiro Frasco - das 18h00 às 00h00 (meia noite); Quarto Frasco- das 00h00 às 06h00, inclusive a 1ª urina da manhã.
o Informar caso não ocorra micção em um dos períodos.
COLETA DE AMOSTRAS PARA EXAMES MICROBIOLÓGICOS
SECREÇÃO URETRAL
Pesquisa de N. gonorrhoeae (bactéria muito sensível, pode morrer rapidamente se não semeada após a coleta).
Sigla: PCGONO
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Material Swab, lâmina e placa de Thyer-Martin.
Orientações o Realizar a coleta preferencialmente pela manhã, antes da primeira micção,
ou 2 horas após micção. o Remover a secreção superficial com gaze ou swab.
Sequência Proposta No homem
o Introduzir o swab no meato uretral com movimento de rotação; o Utilizar 2 swabs, um para realizar esfregaço em duas lâminas e outro
semear na metade da placa de Thayer-Martin. Na mulher
o Massagear a uretra pela vagina, comprimindo-a contra a sínfise púbica; o Introduzir o swab no meato uretral com movimento de rotação; o Utilizar 2 swabs, um para realizar esfregaço em duas lâminas e outro
semear na metade da placa de Thayer-Martin.
SECREÇÃO VAGINAL
Pesquisa de trichomonnas, candida, gardinerella e leveduras.
Sigla: BACVAG
Material Espéculo, lâminas, swab, frasco com solução fisiológica.
Orientações o Abstinência sexual de 24 h; o Não usar cremes por 48h; o Não realizar ducha no dia da coleta; o Verificar se a paciente passou por consulta com exame ginecológico, pois o
tingimento residual interfere na coleta.
Sequência Proposta o Acomodar paciente em posição ginecológica; o Secar as lâminas que estão imersas em solução alcoólica;
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o Introduzir o espéculo vaginal fechado, girar e abrir de maneira que o colo seja visualizado;
o Com swab coletar secreção local com movimentos giratórios; o Realizar esfregaço em 2 lâminas e passar o swab na salina estéril; o Para CFUNGO- acrescentar 1 swab e introduzir no meio de transporte
(Stuart), somente CFUNGO apenas o swab.
SECREÇÃO ENDOCERVICAL
Sigla PCGONO
Material Espéculo, lâminas, swab estéril, fr com sol fisiológica, placa deThayer-Martin.
Sequência proposta o Solicitar que a paciente esvazie a bexiga; o Acomodar paciente em posição ginecológica; o Secar as lâminas que estão imersas em solução alcóolica; o Posicionar o foco e preparar a placa de Thayer-Martin mantendo em
temperatura ambiente; o Introduzir o espéculo vaginal fechado, girar e abrir de maneira que o colo
seja visualizado; o Fazer limpeza do colo do útero com swab para remover secreção
acumulada; o Introduzir swab estéril no orifício do colo uterino; o Coletar secreção local com movimentos giratórios; o Retirar o swab evitando o contato com a parede vaginal; o Semear em1/4 da placa de Tyer- Martin em forma Z e o Realizar esfregaço em 2 lâminas; o Retirar o espéculo.
Obs: Cuidado para não provocar sangramento em gestantes.
ÚLCERAS GENITAIS
Pesquisa de Haemophilus Ducrey (cancro mole)
Sigla: PHDUCREY
Material Gase, solução fisiológica, espátula de madeira, lâminas.
Sequência proposta o Expor o local da lesão; o Limpar o local com gase e solução fisiológica; o Raspar dentro da lesão com espátula de madeira; o Fazer esfregaço fino em 2 lâminas; o Acondicionar em porta lâminas.
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Pesquisa de Treponema Pallidum (cancro duro ou sífilis)
Sigla: PTREPO
Material Gase, solução fisiológica, seringas, lâminas, swab, frasco com salina.
Sequência proposta o Limpar o local com gase e solução fisiológica; o Unir duas seringas com um pedaço de garrote; o Retirar o êmbolo de uma delas; o Colocar a parte sem êmbolo sobre a lesão, pressionar e “sugar” com a outra
de forma a criar vácuo e retirar linfa da lesão (1 gotícula que se forma sobre a lesão);
o Colher a linfa com alça ou swab e transferir para um frasco contendo salina (1mL).
SECREÇÕES DIVERSAS
Sigla - CRD
Material Gase, lâminas, swab, frasco com salina.
Secreção Nasal
Sequência proposta o Introduzir swab estéril no nariz; o Com movimentos de rotação coletar o material; o Colocar o swab no meio de transporte (Stuart).
Secreção Nasofaringe
Sequência proposta o Introduzir o swab estéril pelo nariz até alcançar o ponto de resistência; o Com movimentos de rotação coletar o material; o Introduzir o swab no meio de transporte (Stuart).
GARROTE
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Secreção Ocular
Sequência proposta o Expor a conjuntiva e passar o swab delicadamente; o Desprezar a secreção purulenta superficial com soro fisiológico e o Coletar dois swabs da parte interna da pálpebra inferior, um para cultura;
introduzir no meio de transporte Stuart, com o outro confeccionar 2 lâminas.
Secreção Orofaringe
Sequência proposta o Solicitar ao paciente que abra bem a boca , expor a língua; o Com o auxílio de abaixador de língua procurar áreas com vermelhidão ou
pontos de inflamação sobre as amígdalas e faringe posterior; o Passar o swab e introduzir no meio de transporte (Stuart).
Secreção de Ouvido
Sequência proposta o Limpar a parte externa do ouvido com soro fisiológico; o Obter com auxílio de um swab, o material da parte mais profunda. Evitar
tocar no conduto auditivo (paredes do ouvido externo); o Introduzir o swab no meio de transporte Stuart.
CABELO E OU DESCAMAÇÃO DO COURO CABELUDO
Sigla - CRD, PFUNGO, CFUNGO
Material Lâminas, frasco estéril.
Sequência proposta o Remover 1 ou 2 fios com pinças onde há falhas; o Caso observe descamação no couro cabeludo (recomenda-se cortar os
fios); o Com uma lâmina, remover as escamas; o Colocar o material coletado em frasco estéril.
PELES E ANEXOS
Sigla - CRD, PFUNGO, CFUNGO
Material Lâminas, frasco estéril, espátula, solução fisiológica, alcool 70%.
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Lesões secas em pele
Sequência proposta o Com uma lâmina, remover as escamas, preferencialmente na borda das
lesões ou onde houver sinais de atividade da doença (hiperemia); o Não realizar a coleta se paciente fez uso de pomadas ou cremes; o Colocar o material coletado em frasco estéril.
Lesões úmidas em pele
Sequência proposta o Com lâmina ou espátula raspar a parte interna da lesão; o Colocar o material coletado em frasco estéril; o Ou coletar a amostra com swab estéril umedecido em solução salina; o Conservar swab com a amostra coletada.
Unha
Sequência proposta o Limpar a unha afetada com álcool 70%; o Usar lâmina para raspar a parte úmida abaixo da unha; o Colocar o material em frasco estéril.
COLETA DE MUCO NASAL
Sigla: EOSMUCO (eosinófilos em muco nasal) - não é cultura e sim contagem de células.
Material Swab, lâmina.
Sequência proposta o Com movimentos de rotação, introduzir o swab estéril nas duas narinas
(pode ser o mesmo swab); o Fazer esfregaço em 2 lâminas.
COLETA DE ESPERMA
Sigla: ESP (espermograma), CRD (cultura).
Orientações o A amostra deverá ser coletada no laboratório; o Abstinência sexual de 2 dias.
Material Frasco coletor estéril de boca larga.
Sequência Proposta o Solicitar ao paciente que lave as mãos;
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 147 -
o Higienizar a glande com água e sabão, distendendo todo o prepúcio; o Enxaguar e secar; o Colher o esperma por masturbação, diretamente no frasco; o Encaminhar ao laboratório em até 30 min.
COLETA DE FEZES
Sigla - AF, COPROROT, PCOCCID, PMICROSP, PMICODIAG, CMICODIAG, PFUNGO, CFUNGO, PROTO, XISTOSA.
Material Frasco coletor, frasco coletor estéril com glicerina e espátula de madeira.
Orientações o À FRESCO - amostra deve ser coletada no dia e encaminhada ao
laboratório. o Coprocultura - Manter o frasco fornecido pelo laboratório ( coletor estéril com
glicerina), fechado no refrigerador. O frasco contém um líquido (glicerina), não desprezá-lo.
o No caso de coleta domiciliar, após a coleta, manter refrigerado. o Pesquisa e cultura de micobactéria (CMICODIAG, PMICODIAG, PFUNGO,
CFUNGO) - amostra pode ser no frasco coletor universal como no frasco fornecido pelo laboratório.
Sequência proposta o Colher pequenas porções do início, meio e fim do bolo fecal. Evitar
contaminação por Urina; o Colocar o material em frasco apropriado; o Manter em local fresco ou no refrigerador (sem congelar); o Preferencialmente, amostra colhida até 24horas antes da data de entrega; o Em caso de 3 amostras – colher uma amostra de cada vez, em dias
alternados.
SWAB ANAL
Sigla - CRD, VRE, PCGONO, SBTAB
Material Swab, solução fisiológica.
Sequência proposta o Umedecer o swab com salina estéril e inserir no esfincter retal, fazendo
movimento giratório; o Ao retirar o swab certificar-se que existe material fecal no algodão; o Introduzir o swab no meio de transporte STUART.
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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- 148 -
SBTAB - material swab anal e vaginal, ou ambos, semeados no mesmo meio de transporte Todd. Introduzir o swab no meato uretral ou vaginal, com movimentos giratórios, colocar no meio de transporte TODD.
SWAB RETAL - Técnica de coleta para pesquisa de Enterobactérias resistentes aos
carbapênicos (Novo)
Sigla – VIGIBAC
Material – As amostras a serem utilizadas para avaliação de colonização por enterobactérias produtoras de carbapenemases são: material coletado com swab retal ou fezes.
Sequência proposta o Utilizar swab com meio de transporte de Amies, Cary-Blair ou Stuart; o Umedecer a ponta com água destilada estéril; o Encostar o swab no esfíncter anal e aguardar alguns segundos até o
relaxamento; o Introduzir o swab cerca de 4 cm, girá-lo sobre o próprio eixo por duas vezes
e remove-lo e introduzi-lo no meio de transporte; o O swab coletado deve preferencialmente ter sujidade de fezes para
favorecer a positividade do exame.
PESQUISA PARA ENTEROBIUS VERMICULARIS (Oxiurus)
Sigla: SWFG (swab em fita gomada).
Orientações o Não fazer higiene íntima; o Não tomar banho ou evacuar antes da coleta; o Realizar o exame de manhã.
Material o Cortar aproximadamente 12 cm de fita gomada(durex) transparente
(exceder o tamanho de uma lâmina); o Colocar etiquetas de cartolina ou papel cartão nas extremidades, estas
etiquetas serão utilizadas como apoio no momento da coleta.
Sequência proposta o Posicionar o paciente em decúbito lateral ou posição ginecológica; o Colocar a fita gomada sobre uma espátula de madeira ou tubo de ensaio,
ficando a superfície gomada para fora; o Pressionar a fita gomada firmemente contra as pregas da região anal e
perianal; o Fixar a fita na lâmina evitando a formação de pregas ou bolhas.
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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- 149 -
COLETA DE ESCARRO
Sigla - CMICODIAG, PMICODIAG, CMICOTT, PMICOTT, CRD, PCARINI.
Material Frasco coletor universal
Sequência proposta o Realizar a coleta preferencialmente pela manhã; o Fazer bochechos com água para higiene oral; o Respirar profundamente e forçar a tosse várias vezes; o Repetir o procedimento até conseguir a quantidade necessária de amostra
(5 a 10 mL); o Realizar a coleta em local aberto de preferência ao ar livre; o Tomar cuidado para que o material não escorra do lado externo do frasco; o Tampar o frasco rosqueando firmemente ; o Colocar em um saco plástico; o Lavar as mãos.
COLETA DE LIQUOR
Orientações Gerais o Procedimento médico; o Realizar a punção entre L4 e L5. Na impossibilidade, fazer entre L5 e S1 ou
L3 e L4 ou suboccipital; o Não há necessidade de jejum; o Em alguns casos pode ocorrer cefaléia o Ápós a coleta orientar repouso relativo e hidratação; o Confirmar o nome do paciente;
aba de
papelão
duréx
lâmina
Tubo de ensaio
Fita duréx
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 150 -
o Informar o paciente sobre o procedimento e orientações pós-coleta; o Solicitar o termo de Ciência e Consentimento assinado; FORPTCO006
Material Agulha simples 25x7 e de insulina 0,45x13, agulha própria para punção lombar 22Gx7,5, seringa, compressa de gaze, solução de xilocaina, clorexidina alcoólica, luvas estéreis, frascos coletores estéreis, campos estéreis.
Sequência Proposta; o Higienizar as mãos; o Calçar luvas de procedimento; o Posicionar o paciente preferencialmente deitado em decúbito lateral, direito
ou esquerdo, os membros inferiores fletidos, próximos do abdomem, ou sentado;
o Colocar um apoio sob a cabeça, para mantê-la na linha da coluna vertebral; o Palpar a coluna para localizar o espaço a ser puncionado; o Abrir todo o material a ser utilizado no campo estéril; o Calçar luvas estéreis; o Fazer antissepsia com clorexidina alcoólica; o Colocar o campo fenestrado no paciente; o Palpar novamente o local; o Aspirar o anestésico com a agulha 25x7; o Trocar pela agulha de insulina; o Fazer um botão anestésico e aguardar sua ação; o Introduzir cuidadosamente a agulha de liquor com o bisel voltado para cima,
num ângulo entre 75º e 90º, no sentido cefálico; o Após transpassar o ligamento amarelo, retirar o mandril da agulha e
observar a saída do líquor; o Segurar o frasco estéril durante o gotejamento, até atingir o volume mínimo
necessário (aproximadamente 20 gotas por frasco); o Após coletar todos os frascos, introduzir o mandril e retirar a agulha
suavemente; o Comprimir o local aproximadamente 3 min; o Colocar o curativo adesivo; o Retirar as luvas e higienizar as mãos; o Identificar os frascos; o Liberar o paciente com as devidas recomendações.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
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o: 004
Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.T1
Grupo responsável pela elaboração Lucélia Moya, Toyoko Watanabe, Susy Afaz
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 151 -
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 152 -
4. PROCESSOS DE TRABALHO DA ÁREA ANALÍTICA
PC.P14 – BIOQUÍMICA
DPC – CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS Transportar o material até Seção de Bioquímica. SEÇÃO DE BIOQUÍMICA RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Avaliar a qualidade da amostra segundo os critérios de rejeição e aceite com restrição. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO SANGUE:
Coleta em tubos inadequados;
Curvas glicêmicas com tempo de coleta não devidamente identificado;
Amostras hemolisadas para: ALT, AST, Bili direta, CK, CKMB, K, Na, LD, MG, PI;
Amostras coaguladas para: HBGLI, FK506. URINA:
Frasco de urina extravasada
Falta de coleta de tubo seco para CLEARCREA E CLEARUR
Não correspondência de recebimento do número de frascos de diurese de 24hs x quantidade informada na planilha;
Coleta em frasco inadequado. ACEITE COM RESTRIÇÃO
Lipemia: ultracentrifugar uma alíquota da amostra a 13000 rpm por 1h, e proceder as dosagens solicitadas. Após resultado, solicitar novamente a dosagem de COL e TRIG na amostra original (sem ultracentrifugar);
Fibrina: retirar fibrina presente na amostra e proceder à dosagem. Atenção na liberação do resultado desta amostra.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA: Antes de reconvocar o paciente, verificar análises solicitadas e grau de hemólise. Se dentre as análises solicitadas a hemólise interferir em poucas análises, proceder:
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o: 003
Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 153 -
Emitir a planilha do paciente e encaminhar para o responsável pela liberação, que deverá no CISHCP cadastrar a requisição como: AMOSTRA COM HEMÓLISE INTERFERENTE PARA ESTA ANÁLISE. Liberar requisição.
Para hemólise total e maioria de análises com interferência, solicitar nova coleta. Proceder:
Reconvocar paciente no sistema HLC_COLETA;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação de nova amostra em formulário. AMBULATÓRIO:
Emitir planilha do paciente;
Pré-reconvovar no Sistema HLC_COLETA;
Registrar a solicitação de nova amostra em formulário;
Enviar a planilha de exames para a Central de Coleta para finalizar a convocação.
BAIXA DE RECEBIMENTO Priorizar exames de urgência. SANGUE Dar baixa de recebimento das amostras no sistema HLS através do Código de Barras. Montar racks para análises no grande porte. Para análises de:
Troponina: encaminhar material e planilha de trabalho para Laboratório de Fisiologia;
Drogas de Urgência: encaminhar alíquota para equipamento com a planilha de trabalho;
HBGLI: encaminhar amostra para análise. Caso não seja realizada no dia, guardar sob-refrigeração;
FK506: guardar as amostras sob refrigeração até realização da rotina (diária). URINA Proceder à volumetria após conferência do nome do paciente X planilha correspondente e total de frascos recebidos. Anotar volume urinário na planilha. Aliquotar uma amostra em frasco de poliestireno (se houver solicitação para Serviço de Urinálise fazer duas alíquotas e encaminhar para Urinálises). Centrifugar por 10 min a 3000 rpm. Dar baixa de recebimento das amostras através do Código de Barras. Informar volume urinário no HLS. Montar as racks usando numeração inferior a 100. Encaminhar racks para análise.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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- 154 -
PROCEDIMENTO ANALÍTICO Proceder às análises nos equipamentos correspondentes, de acordo com a padronização de execução das rotinas:
Bioquímica Básica e Enzimologia: Vide PT Modular;
Drogas Terapêuticas: Vide PT Dimension/Siemens;
MG, Cu, Zn, Pb: Vide PT Absorção Atômica;
EFPSE : Vide PT REP – Helena SPIFE;
HbGli: Vide PT Variant II;
Lítio: Vide PT Fotômetro de Chama;
Osmolalidade: Vide PT Osmômetro;
Proteínas Específicas e lipoproteínas: Vide PT Nefelômetro. CONTROLE DE QUALIDADE Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e registrá-las. Calibrar as análises segundo padronização. Controlar as análises realizadas com soro controle PT Controle de Qualidade; Realizar manutenções/calibrações semestrais e anuais nos instrumentos e registrá-las. (Pipetas, capela, BM, centrifugas). Controlar a qualidade de água produzida. Realizar e registrar trocas de filtro e manutenções. Controlar e registrar as temperaturas dos refrigeradores, freezers, estufas e banhos. Duplo Cego É um Controle de Qualidade Interno, realizado uma vez por semana, selecionado por um funcionário da bioquímica; Após processado os dados são avaliados. SOROTECA Distribuir sequencialmente as amostras com análises finalizadas em estantes com posição determinada pelo sistema de soroteca. Separar em estante com posição determinada pelo sistema de soroteca, as amostras com análise pendentes para realização (Drogas, Lítio, Osmolalidade, EFPSE, Nefelometria, Absorção Atômica). Emitir lista de trabalho ao fim do dia para EFPSE e conferir amostras x lista. Transferir as amostras para caixas específicas das análises. CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Câmara fria: Armazenar em estantes nas caixas correspondentes para EFPSE, HbGli, Nefelometria, Absorção Atômica, e em estante para FK506;
Freezer –20ºC: Cu e Zn sérico e urinário.
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o: 003
Data: 02/01/2013
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PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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PÓS-ANÁLISE Armazenar as amostras em caixas rígidas laváveis, com tampa e trava de segurança, e identificadas:
Amostras de sangue: 3 dias em câmara fria;
Amostras de urina: 7 dias em câmara fria;
FK506 Cu e Zn: 7 dias em freezer a –20ºC. PÓS-ANALÍTICO LIBERAÇÃO AUTOMÁTICA Resultados dos equipamentos interfaceados liberados automaticamente após validação de Delta Check pelo sistema ANÁLISE DO RESULTADO Resultados Bloqueados Fazer correlação clínica laboratorial. Quando não houver correlação checar a amostra (verificar identificação do paciente, presença de hemólise, fibrina ou necessidade de diluição). Solicitar nova amostra em caso de não conformidade. Repetir a dosagem. Liberar resultado com observação – Resultado Confirmado na mesma amostra. RESULTADOS CRÍTICOS Observar os resultados de análises de pacientes que se enquadram na tabela abaixo (salvo os que possuem resultado anterior semelhante). Notificar o resultado:
Análise Inferior à Superior à
Albumina (mg/dL) 1,5 6,0
Amilase (U/L) 20 1000
Birrubina Total (mg/ dL) 0,2 15,0
Cálcio (mg/ dL) 6,6 12,9
CK (U/L) 5,0 1000
Fósforo (mg/ dL) 1,0 9,0
Glicose (mg/ dL) 45 500
Potasio (Meq/L) 2,8 6,2
Sódio (Meq/L) 120 168
Àcido úrico (mg/ dL) 1,0 12,0
Uréia (mg/ dL) - 214
Creatinina (mg/ dL) - 7,4 OBS: As notificações para uréia e creatinina não serão necessárias quando o paciente possuir HD para Insuficiencia Renal.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
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LIBERAÇÃO Liberar no PSM as análises de equipamentos com interface. Para:
Curvas glicêmicas e líquidos biológicos (exceto LIQBI): completar liberação no CICSHCP;
Rotinas urinárias: completar liberação no CICSHCP (checar volume urinário constante na planilha com o valor informado no HLS).
Incluir e liberar no PSM rotina de FK506. Enviar resultados via “on line” e liberar no CICSHCP a rotina de EFPSE (checar com planilhas de densitometria). Proceder à inclusão manual de análises não interfaceadas no PSM. Liberar. Exames de Convênio Liberar no PSM. Preencher a Planilha de Resultados de Convênio. Informar o resultado por telefone quando solicitado. TEMPORALIDADE Arquivar por 5 anos Enviar os documentos para arquivo após 1 ano:
Lista de trabalho ou planilhas de exames onde há inclusão de resultados – rotinas não interfaceadas;
Arquivo eletronico de resultados de equipamentos. Arquivar por 12 meses:
Planilhas de Controle de Qualidade;
Planilhas de Calibração;
Planilhas do Sistema de Garantia da Qualidade;
Fitas de corridas eletroforéticas;
Relatório do equipamento BNP - nefelometria;
Relatório do equipamento SIPFE - EFPSE. Arquivo Eletrônico Salvar em meio eletrônico e guardar por 5 anos:
Resultados de análises realizadas em equipamento de grande porte;
Resultados de drogas terapêuticas. Eliminar Enviar para o Meio Ambiente para picotar e descartar;
Relatórios gerados para liberação;
Listas de solicitação de repetições gerados no PSM;
Lista de pendências. DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P14
Grupo responsável pela elaboração Ana Cândida Facin, Ronise Pozetti
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P15
Grupo responsável pela elaboração Maria Aparecida Selleghin, Maria Cristina Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
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PC.P15– BIOQUÍMICA – GASOMETRIA
ENFERMARIAS E AMBULATÓRIOS O material é coletado e encaminhado ao serviço de gasometria, por médicos residentes, alunos, ligantes, enfermagem, funcionários da escolta, pacientes. LABORATÓRIO DE GASOMETRIA Realização de gasometrias, eletrólitos, metabólitos, e cooximetria para enfermarias, ambulatórios, Centro Cirúrgico, UTI, PS e externos. RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Avaliar a qualidade da amostra, segundo os critérios de rejeição e aceite com restrições.
Conferir dados de identificação da amostra (HC, Nome, Sexo, Tipo de amostra, Temperatura, FiO2, Tipo do exame).
Separar as amostras por tipo de exame e proceder a analise. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO Para coleta com heparina de lítio liofilizada e balanceada e/ou heparina de sódio liquida não balanceada:
Presença de coágulos em quantidade superior a 10%;
Presença de bolhas de ar em quantidade superior a 10%;
Hemólise;
Presença de fibrinas, cristais e lipemia aparente;
Identificação errada da amostra, ou ausência de identificação;
Quantidade de amostra insuficiente para realização da análise;
Coleta realizada de forma inadequada (com técnicas ou seringa diferente das padronizada pelo serviço);
Coleta realizada em volume diferente do preconizado pelo serviço, quando a coleta for realizada pelo método antigo (Coleta com heparina liquida no volume de 1ml para gasometria simples - Pegaso 1 e 3 ml para gasometria completa – Pegaso 2 a 6 );
Coleta realizada de forma inadequada - realizada diretamente da linha de flush sem desprezar o volume adequado; coleta realizada em pontos inadequados: edemas, liquido intersticial;
Amostra enviada em gelo;
Amostra enviada ao laboratório após 1 hora da coleta da mesma. ACEITE COM RESTRIÇÃO Para coleta com heparina de sódio liquida não balanceada:
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P15
Grupo responsável pela elaboração Maria Aparecida Selleghin, Maria Cristina Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 159 -
Coleta realizada em volume insuficiente para realização do perfil completo, mas suficiente para realização do perfil simples.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA
Anotar a solicitação de nova amostra no pedido de exame;
Comunicar a quem trouxer amostra a necessidade de nova coleta;
Se for urgente, ligar para a enfermaria, para fazer a solicitação de nova amostra;
Anotar na planilha de solicitação de nova amostra. AMBULATÓRIO
Anotar no pedido de exame, e entregar para o paciente, encaminhando para nova coleta;
Ligar para a coleta de exames e solicitar nova amostra;
Anotar na planilha de solicitação de exames. CONSERVAÇÃO DE AMOSTRAS As amostras de gasometria não podem ser conservadas após realização do exame, devendo ser descartadas. CONTROLE DE QUALIDADE Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e registrar nas planilhas correspondentes. Verificar procedimentos de calibração geral. Realizar a analise do Controle de Qualidade Interno, segundo a agenda pré-programada e analisar os resultados dos controles segundo as regras de Westgard, para validar os resultados das amostras. Realizar o procedimento necessário, se algum resultado for considerado inadequado e realizar novo controle. Enviar mensalmente o WDC do equipamento Radiometer para avaliação de Controle de Qualidade Externo internacional. PROCEDIMENTO ANALÍTICO Proceder às análises nos equipamentos correspondentes, de acordo com a padronização de execução das rotinas.
Pegaso 1 – Vide TE ABL 5;
Pegaso 2 – Vide TE ABL 800;
Pegaso 3 – Vide TE ABL 800;
Pegaso 4 – Vide TE ABL 800;
Pegaso 5 – Vide TE ABL 800;
Pegaso 6 – Vide TE ABL 800;
Parâmetros isolados - Vide TE ABL 800.
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o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P15
Grupo responsável pela elaboração Maria Aparecida Selleghin, Maria Cristina Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 160 -
ANÁLISE DO RESULTADO Fazer correlação clínica laboratorial. Quando não houver correlação, checar a amostra (verificar identificação do paciente, presença de hemólise, hemodiluição ou hemoconcentração, presença de coágulos, condições de coleta e armazenamento). Se tudo estiver correto, repetir a análise. Caso a não conformidade se repita, solicitar nova amostra. Liberar resultado com observação:
Resultado repetido (em caso de valor diferente);
Resultado repetido e confirmado (em caso de valor igual). RESULTADOS CRÍTICOS Observar os resultados de analises de pacientes que se enquadram na tabela abaixo (salvo os que possuem resultado anterior semelhante e /ou são adequados aos dados clínicos fornecidos):
ANÁLISE INFERIOR À SUPERIOR À
Sódio 120 160
Potássio 2,5 6,0
Cálcio iônico 0,81 1,62
Cloro 85 120
Glicose 40 500
Lactato - 10
pH 6,90 7,6
PO2 - 400
PCO2 5 70
Hb 6 18
Ht 18 55
Notificar o médico solicitante ou responsável pelo paciente. Preencher a planilha da notificação de resultados críticos. LIBERAÇÃO DE RESULTADOS Liberar os resultados imediatamente após a realização, no próprio impresso do equipamento. TEMPORALIDADE Arquivo Permanente Arquivar em meio eletrônico (com Backup) os dados de pacientes e dos equipamentos. Por 5 anos Encaminhar para arquivo todos os documentos da Gestão da Qualidade e requisições médicas.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P15
Grupo responsável pela elaboração Maria Aparecida Selleghin, Maria Cristina Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 161 -
DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P16
Grupo responsável pela elaboração Laurione Cândido Oliveira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 162 -
PC.P16 – FISIOLOGIA
DPC - CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS
Transportar o material até Seção de Fisiologia Clínica. SEÇÃO DE FISIOLOGIA RECEBIMENTO DE AMOSTRAS
Avaliar a qualidade da amostra segundo os critérios de rejeição e aceite com restrição.
CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO SANGUE:
Amostras não protegidas da luz: Ácido Fólico e Vit B12;
Amostras fora do gelo e/ou centrifugadas sem refrigeração : PTH, HGH, Renina, ACTH, PEPTC e HCG;
Amostra em tubo seco: ACTH e Renina;
Amostra totalmente hemolisada;
Amostra não identificada. URINA:
Urina de 24hs para cortisol mantida durante a coleta fora de refrigerador;
Urina de 24hs para cortisol transportadas fora do gelo. ACEITE COM RESTRIÇÃO
Amostra com hemólise, sem proteção da luz ou fora do gelo de crianças, RNs ou pacientes com dificuldade de coleta; o Amostras com leve hemólise.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA
Reconvocar paciente no sistema HLC_COLETA;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação de nova amostra em formulário. AMBULATÓRIO
Emitir planilha do paciente;
Pré reconvovar no Sistema HLC_COLETA;
Registrar a solicitação de nova amostra em formulário;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P16
Grupo responsável pela elaboração Laurione Cândido Oliveira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 163 -
Enviar a planilha de exames para a Central de Coleta para finalizar a convocação do paciente ambulatorial.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS COM RESTRIÇÃO
Colocar na observação do resultado “Análise realizada em amostra com restrição”. BAIXA DE RECEBIMENTO
Proceder à baixa de recebimento das amostras no Sistema HLS através do Código de Barras.
SOROTECA
Proceder a leitura do código de barras das amostras no Sistema PSM, para que as mesmas adquiram um número na soroteca (tubos primários, caixas diária que são armazenadas em refrigerador por 7 dias);
Proceder à leitura do código de barra das amostras no Sistema PSM e aguardar a impressão de etiquetas, para aquelas que terão alíquotas e serão armazenadas em temperatura de -20°C até a data das análises.
REGISTRO DOS EXAMES
Registrar, em livro com um número interno, o exame, número do HC ou Pré-matrícula, somente os pacientes que tiveram “aceite com restrição” e aqueles sorotecados como alíquotas (-20°C);
Alíquotas: PTH, ACTH, Renina, HGH, Insulina, Peptídeo C, TRAb, 17oh-Progesterona, Androstenediona, DHEA, SDHEA, TG, CA125, Test Total, Testo Livre, Aldosterona, IGF1, IGFBP3 e Cortisol Urinário.
CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Refrigerador: TSH, T4L, T3, T3L, E2, FSH, LH, PRL, PROG, ACM, ACTG, ACF, B12, AFP, CEA, BHCG, PSAT, PSAL;
Freezer –20ºC: separar alíquotas para 17OHPROG, ANDRO, RENINA, ALDO, TESTO TOTAL E LIVRE, INSULINA, TRAb, DHT, PEPTC, IGF-1, IGFBP3, DHEA, PTH, SDHEA, CORT, CA125, TG, PTH, ACTH e CORT URI.
PÓS-ANÁLISE
Refrigerador: Tubos primários após realização das análises por 7 dias
Freezer –20ºC: Tubos secundários após realização das análises por 60 dias CONTROLE DE QUALIDADE
Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos;
Calibrar as análises segundo padronização;
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P16
Grupo responsável pela elaboração Laurione Cândido Oliveira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 164 -
Controlar as análises realizadas com soro controle;
Analisar resultados de controles obtidos e recalibar as análises em caso de resultados de controles alterados;
Utilizar controles caseiros (pools) para checar reprodutibilidade das análises. Fazer as análises manuais em duplicata (checar erros de pipetagem);
Realizar manutenções e calibrações semestrais e/ou anuais nos instrumentos e documentar (pipetas, capela, BM, centrífugas).
PROCEDIMENTO ANALÍTICO
Proceder às análises nos equipamentos correspondentes ou as reações manuais de acordo com as técnicas padronizadas.
PÓS-ANALÍTICO
Incluir resultados das reações manuais e de equipamentos não interfaceados no Sistema PSM.
ANÁLISE DO RESULTADO
Consultar resultados anteriores.
Fazer correlação clínica laboratorial.
Incluir alguma análise que facilite a interpretação clínica laboratorial.
Solicitar nova amostra em caso de alguma não conformidade.
RESULTADO CRÍTICO
Os resultados são informados ao médico responsável para pacientes da Onocologia, Radioterapia, Quimioterapia, Pediatria e Boldrini.
LIBERAÇÃO
Liberar os resultados dos procedimentos técnicos automatizados não interfaceados, manuais e interfaceados no Sistema PSM.
TEMPORALIDADE
Enviar as planilhas para arquivo ao fim de cada ano, sendo arquivados por 5 anos. DESCARTE
Resíduos biológicos, químicos, radioativos e comuns deverão ser descartados de acordo com PGRRS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P16
Grupo responsável pela elaboração Laurione Cândido Oliveira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 165 -
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado A manipulação de substâncias radionizantes somente pode ser realizada por profissional devidamente qualificado, autorizado e dosimetrado, conforme preconizado pela NR 32 e CNEN. A manipulação de substâncias radionizantes é realizada em sala específica para essa finalidade. A sala é dotada de capela e local próprio para descarte e decaimento dos rejeitos.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P17
Grupo responsável pela elaboração Mariusa Terezinha dos Santos, Andréa Domenica
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 166 -
PC.P17 – IMUNOLOGIA
DPC - CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS / COLETA Transportar o material até a Seção de Imunologia SEÇÃO DE IMUNOLOGIA RECEBIMENTO Conferir o nome do paciente na planilha de requisição com o do frasco contendo o material a ser examinado, o tipo de material e o exame solicitado. Avaliar a qualidade da amostra a ser processada segundo critérios de rejeição e aceite com restrição. EXAMES EXTERNOS Anotar nome do paciente, HC, data de coleta, exame pedido, tipo de material, data de envio da amostra e nome do responsável no caderno correspondente. Enviar os exames externos para os locais onde as análises serão realizadas conforme descrito no procedimento. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
Amostra hemolisada: rejeitar para todos os exames com exceção VHCPCR e VHCGENOTIP;
Amostra lipêmica: amostras não passíveis de clarificação e para as reações CRIOGLOB e CRIOAGLUT;
Amostra fora do Banho Maria (37ºC): CRIOGLOB E CRIOAGLUT (manter em BM até centrifugação);
Amostra fora do gelo: CH50 (manter em gelo até retração do coágulo);
Amostra aberta fora do Fluxo Laminar: VHCPCR e VHCGENOTIP;
Liquor hemorrágico (com presença de coágulo). ACEITE COM RESTRIÇÃO
Lipemia: Centrifugar amostras a 13000 rpm no mínimo 20 minutos para clarificação;
Hemólise: para VHCGENOTIP/VHCPCR e amostras de crianças/ pacientes com coletas repetidamente hemolisadas.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA
Reconvocar paciente no SIL;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P17
Grupo responsável pela elaboração Mariusa Terezinha dos Santos, Andréa Domenica
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 167 -
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação. AMBULATÓRIO
Emitir planilha do paciente;
Pré-reconvocar no SIL HLC_COLETA;
Registrar a solicitação;
Encaminhar planilha do exame para Serviço de Coleta para finalizar a convocação.
TRATAMENTO DE AMOSTRAS COM RESTRIÇÃO Incluir o resultado do paciente no SIL - CICSHCP colocando na observação do resultado “Análise realizada com amostra com restrição (informar qual restrição) – Sugerimos nova coleta”, e proceder a liberação. BAIXA DE RECEBIMENTO
Proceder à baixa de recebimento do material no SIL HLC_COLETA através do leitor de código de barras. SEPARAÇÃO Aliquotar as amostras quando necessário Encaminhar para o procedimento solicitado ou armazenar
LCR: Centrifugar as amostras a 2000 rpm por 15 minutos. Retirar o sobrenadante, aliquotar e colocar na caixa de LCR, se houver mais de um exame a ser realizado nesta amostra. Se houver somente um exame solicitado, colocar na caixa do exame.
VHCPCR e VHCGENOTIP: Acondicionar as amostras em refrigerador até o momento da separação de alíquotas em fluxo laminar, após a separação acondicionar em caixas correspondente (freezer -80ºC)
CRIOGLOB e CRIOAGLUT: Acondicionar as amostras de soro em banho-maria 37°C antes e após a centrifugação, até o momento da realização do teste. Para crioaglutininas, manter o tubo de EDTA em temperatura ambiente.
CH50: Centrifugar as amostras em centrífuga refrigerada, 2 a 8 °C, a 2000 rpm, por 15 minutos. Retirar o sobrenadante, fazer duas alíquotas e estocar na caixa correspondente.
Exames Externos: Separar as alíquotas se necessário, conforme descrito em procedimento.
PROCEDIMENTO ANALÍTICO E RASTREABILIDADE Processar as análises correspondentes de acordo com a padronização de execução das técnicas descritas seguindo os POP’s das análises e PT dos equipamentos:
Hepatites (A, B e C) Rubéola : equipamento Architec;
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P17
Grupo responsável pela elaboração Mariusa Terezinha dos Santos, Andréa Domenica
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 168 -
Imunoglobulinas (IgA, IgM, IgG,IgE) C3, C4, FR, PCR, ASLO, α1antitripsina, ceruloplasmina β2 microglobulina: Equipamento BNProSpec;
TOXO, CMV e MONO: Equipamento Vidas 30;
Sifilis, Chagas, Blasto, FAN, Aspergilose, ENA, ANCA, CrioGlobulina, CrioAglutinina,Cisticercose, Brucelose, AntiCCP3: reações manuais;
VHCPCR e VHCGentipagem: Equipamento COBAS. Anotar os resultados nas planilhas de exames das técnicas manuais e automatizadas. Registrar os resultados das técnicas manuais nas planilhas de rastreabilidade correspondentes às análises. Preencher o banco de dados do Access para rastrear as técnicas de VHCPCR e VHCGENOTIP. Preencher o banco de dados do Excel para rastrear a técnica de HBSAG Confirmatório. CONTROLE DE QUALIDADE INTERNO Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e registrá-las. Calibrar as análises segundo padronização. Realizar diariamente o controle interno pertinente a cada análise como padronizado. Analisar os resultados dos controles para validar os resultados das amostras. Anotar em planilhas de Controle de Qualidade os resultados dos controles referentes a cada análise. Calibrar ou repetir a dosagem do controle quando necessário. Realizar manutenções/calibrações semestrais e anuais nos instrumentos e registrá-las. (Pipetas, microscópios, leitora de ELISA, pHmetros, balança analítica e semi-analítica, fluxo laminar etc). Controlar a qualidade de água produzida. Realizar e registrar trocas de filtro e manutenções. Controlar e registrar as temperaturas dos refrigeradores, freezers, estufas e banhos-maria. CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Refrigerador: Armazenar nas caixas correspondentes TOXO, CMV, SIF, SIFLCR, HEPA, HEPB, HEPC, RUB, FR, PCR, ASLO, C3, C4, IGG, IGA, IGM, IGE, IMUNOGLOB, ALFA1, CERU, BETA2MICRO, IGGLCR.
Freezer –80°C: Armazenar nas caixas correspondentes em: VHCPCR, VHCGENOTIP E CH50, exames externos (conforme TE de Exames Externos).
Freezer –20°C: Armazenar nas caixas correspondentes CRIPTO, CRIPTOLCR, MONOTEST (Anticorpos Heterófilos) e MONO (às sextas-feiras e vespera de feriado), CISTLCR, FAN, AADNA, ENA, ANCA, PBMICOSE, ASPER, PBMICOSLCR, CHAGAS, BRUCEL, TOXOLCR, TOXOIFI, ANTICCP3 exames externos.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P17
Grupo responsável pela elaboração Mariusa Terezinha dos Santos, Andréa Domenica
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 169 -
PÓS-ANÁLISE
Refrigerador: amostras de soro por 7 dias.
Freezer –80ºC: amostras para VHCPCR até a liberação do exame no SIL CICSHCP.
Freezer –20ºC: amostras de LCR por 3 meses e amostras de LCR e soro selecionado para padronização de pools ou controles de análises (sorotecas), por até 6 e 12 meses respectivamente. Registrar em planilhas específicas.
PÓS-ANALÍTICO DOCENTE - ANÁLISE DO RESULTADO
Interpretar o resultado da análise (avaliação clínica e laboratorial);
Rubricar e autorizar a digitação e liberação do resultado.
No caso de não correspondência na avaliação clínica e laboratorial: o Repetir a análise ou outro teste confirmatório; o Entrar em contato com o médico para melhor avaliação; o Solicitar nova amostra.
DIGITADORES
Digitar no SIL - CICSHCP as requisições com os resultados dos pacientes. BIOLOGISTAS
Conferir a digitação;
Confirmar a interpretação clínica e laboratorial;
Liberar os resultados das análises no SIL CICSHCP. RESULTADOS CRÍTICOS Não se aplica. EXAMES CONVÊNIO Resultados liberados pelo SIL sistema CICSHCP. Informar o resultado por telefone quando solicitado. Registrar. RESULTADOS DE NOTIFICAÇÃO COMPULSÓRIA Liberar os resultados das análises no SIL CICSHCP, colocando um adendo para envio de cópia para o Núcleo de Vigilância Epidemiológica em casos novos de HBSAG reagente, VHCPCR positivo, Hepatite A IGM reagente, Rubéola IgM reagente,Sífilis positivo com títulos de VDRL superiores ou iguais a 1/8, Sífilis no LCR VDRL positivos, e PBmicose positivos.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P17
Grupo responsável pela elaboração Mariusa Terezinha dos Santos, Andréa Domenica
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 170 -
Procedimentos especiais: Hepatite A IGM reagente, ligar pra NVE-HC, CECOM e CAISM. Rubéola IgM reagente, ligar pra NVE-HC, CECOM e CAISM. Nos AMES enviar a notificação por e-mail aos responsáveis. Registrar em formulário a notificação. TEMPORALIDADE Arquivar por 5 anos
Enviar os documentos a serem arquivados para arquivo. o Planilhas de exames; após 3 meses da liberação; o Relatórios emitidos pelos equipamentos de automação e rastreabilidade de
reações manuais; o Planilhas de CQ, calibração de equipamentos e do SGQ.
Arquivo Eletrônico
Backup dos equipamentos AXSYM, BN ProSpec e Vidas30. Eliminar
Não se aplica Resultados duvidosos ou discordantes ficam armazenados no Serviço. DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P18
Grupo responsável pela elaboração Paula Bottini, Maria Inês de Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 171 -
PC.P18 – LÍQUIDOS BIOLÓGICOS
DPC – CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS Transportar o material até Seção de Líquidos Biológicos. SEÇÃO DE LÍQUIDOS BIOLÓGICOS RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Conferir material com planilha de trabalho. Verificar os exames solicitados para aquele mesmo material. Neste caso separar as planilhas de outros exames e as respectivas amostras para serem processadas. Avaliar a qualidade da amostra segundo os critérios de rejeição e aceite com restrição. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO LCR e LÍQUIDOS CAVITÁRIOS
Material mal/ não identificado;
Coágulo volumoso (citologia global e diferencial e pH);
Frasco inadequado para o exame solicitado;
Amostras hemolisadas ou lipêmicas para dosagens bioquímicas;
Amostras com predomínio de neutrófilos para dosagem de ADA. URINA
Material mal / não identificado;
Contaminação visível a olho nú (fezes, óleo, talco etc);
Não correspondência de recebimento do número de frascos de diurese de 24hs X quantidade informada na planilha.
SANGUE
Coleta em tubos inadequados;
Amostras coaguladas para FK506, CYA e SIROLIMUS;
Coleta em momento inadequado em relação à tomada do medicamento;
Falta de coleta de tubo seco para PROTGLOM e ALBLCRSG. ACEITE COM RESTRIÇÃO
LCR e LÍQUIDOS: Em situações excepcionais, é possível trabalhar com materiais com pequenos coágulos ou com redes de fibrina. Nestes casos deixar claro no laudo a presença de coágulo e que consequentemente o resultado da análise citológica (tanto global quanto diferencial) pode ser impreciso;
URINA Frasco de urina extravasada, falta de coleta ou identificação de um dos períodos da glicosúria fracionada;
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P18
Grupo responsável pela elaboração Paula Bottini, Maria Inês de Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 172 -
Falta de coleta de tubo seco para eletroforese, PROTGLOM e ALBLCRSG. TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA e UER
Reconvocar paciente no SIL;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação;
Em casos de material nobre onde não existe a possibilidade de nova coleta anotar na planilha “material inadequado” e liberar no sistema.
AMBULATÓRIO
Emitir planilha do paciente;
Pré-reconvocar no SIL HLC_COLETA;
Registrar a solicitação;
Encaminhar planilha do exame para Serviço de Coleta para finalizar a convocação.
BAIXA DE RECEBIMENTO Dar baixa de recebimento das amostras no SIL HLC_COLETA através do Código de Barras. PROCEDIMENTO ANALÍTICO Proceder às análises nos equipamentos correspondentes de acordo com a padronização de execução das rotinas:
Dosagens Bioquímicas: Modular, pHmetria;
Drogas Terapêuticas: Dimension/Siemens;
Eletroforeses: REP – Helena;
Proteínas Específicas: Nefelômetro;
Urinálise: sistema integrado LabUmat + UriSed;
Analise citológica: microscopia;
BEIM e ADA: procedimentos manuais. Registrar resultados nas planilhas de trabalho. CONTROLE DE QUALIDADE
Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e registrá-las;
Calibrar as análises segundo padronização;
Controlar as análises realizadas com soro controle;
Realizar manutenções/calibrações semestrais e anuais nos instrumentos e registrá-las. (Pipetas, capela, BM, centrifugas);
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P18
Grupo responsável pela elaboração Paula Bottini, Maria Inês de Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 173 -
Controlar e registrar as temperaturas dos refrigeradores, freezers, estufas e banhos;
Utilizar controle de qualidade alternativo na indisponibilidade de controles comerciais (pools, procedimento adicional para assegurar uma distinção acurada dos eritrócitos das demais células, livros-atlas, figuras e laminários e para garantir a reprodutibilidade, prática da dupla observação nos casos de citologias não habituais, comparação com resultados anteriores e correlação clínico-laboratorial).
CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Refrigerador: Armazenar em estantes correspondentes para Nefelometria;
Freezer –20ºC: FK506, CYA, SIROLIMUS, ADA, eletroforese, BEIM. PÓS-ANÁLISE Armazenar as amostras em caixas ou estantes identificadas:
Temperatura Ambiente: URI até as 18 horas do dia da coleta (rotina) ou até as 7hs do dia seguinte (plantão);
Refrigerador: o LCR e LÍQUIDOS por 3 dias; o Urina – dosagens bioquímicas por 24 hs.
Freezer –20ºC: o FK506 e CYA por 7 dias; o SIROLIMUS e Eletroforese por 30 dias.
PÓS-ANALÍTICO Fazer correlação clínica laboratorial e com os demais exames do paciente. Quando não houver correlação verificar identificação do paciente, checar a amostra, dados brutos e resultados anteriores. Repetir a dosagem se necessário. Liberar resultado com observação - Resultado Confirmado. ANÁLISE DO RESULTADO RESULTADOS CRÍTICOS Observar os resultados de análises de pacientes que se enquadram na relação abaixo
LCR: glicose não detectável (zero);
LCR e LÍQUIDOS: presença de células de MO em recém-nascidos. Notificar o resultado. Registrar a notificação.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P18
Grupo responsável pela elaboração Paula Bottini, Maria Inês de Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 174 -
DIGITAÇÃO DOS RESULTADOS Digitar e registrar os exames nos diversos livros de acordo com o tipo de exame (apenas citologias). CONFERÊNCIA E LIBERAÇÃO Conferir os resultados digitados na tela do computador com aqueles da planilha de trabalho. Se OK, liberar no SIL. Se não OK, encaminhar para correção antes de liberar. Resultados interfaceados: Validar resultados no PSM para as aálises bioquímicas; Validar os resultados no AR_GINTER para urina (equipamento Urised-Labumat). EXAMES DE CONVÊNIO Liberar no SIL. Preencher a Planilha de Resultados de Convênio. Informar o resultado por telefone quando solicitado. TEMPORALIDADE Arquivar por 5 anos Enviar as planilhas de resultados para arquivo após 1 ano:
Planilhas de trabalho;
Lista de trabalho que exibem resultados anotados. 12 meses
Planilhas de Controle de Qualidade;
Planilhas de Calibração;
Planilhas do Sistema de Garantia da Qualidade;
Relatório de Nefelometria emitido pelo equipamento. Arquivo Eletrônico Salvar em meio eletrônico e guardar por 5 anos;
Resultados de análises realizadas em equipamento de grande porte. DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P18
Grupo responsável pela elaboração Paula Bottini, Maria Inês de Souza
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 175 -
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P19
Grupo responsável pela elaboração Arthur Macoto, Ana Cristina Biral
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 176 -
PC.P19 – IMUNOGENÉTICA
TIPIFICAÇÃO DOS ALELOS HLA CLASSE I (HLA-A, HLA-B, HLA-C) HEMOCENTROS, HEMONÚCLEOS, HOSPITAIS SUS - COLETA DOADORES APARENTADOS E VOLUNTÁRIOS Coletar sangue venoso periférico em 1 tubo com anticoagulante EDTA; Acondicionar e transportar até o Laboratório de Imunogenética de Transplantes. PARA DOADORES VOLUNTÁRIOS Captar e preencher o termo de Consentimento de doadores voluntários de medula óssea LABORATÓRIO DE IMUNOGENÉTICA RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Conferir o nome do paciente na planilha de requisição com o frasco da amostra. Avaliar a qualidade da amostra segundo os critérios de rejeição. Numerar as amostras e planilhas de trabalho correspondentes. Encaminhar a solicitação dos exames para inclusão de coleta no SIL. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
Amostras não identificadas corretamente;
Amostras com sangue coagulado. TRATAMENTO DA AMOSTRAS REJEITADAS Ligar no serviço que encaminhou o material e solicitar a coleta e envio de nova amostra REGISTROS DOS EXAMES Registrar os exames manualmente em cadernos de acordo com a procedência e fase do exame:
Registro de Doadores Voluntários não Aparentados (REDOME) o 1ª fase: data de entrada e saída do exame, nome do doador, identificação
interna e resultados;
Transplante de medula óssea o 1ª fase: data de entrada e saída do exame, nome do paciente e doador
aparentado, identificação interna e resultados.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P19
Grupo responsável pela elaboração Arthur Macoto, Ana Cristina Biral
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 177 -
CONSERVAÇÃO DE AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Temperatura ambiente: processamento em até 24hs;
Refrigerador: processamento em até 7 dias. PÓS-ANÁLISE
Armazenar as amostras em caixas rígidas;
Freezer –20ºC: por tempo indeterminado. CONTROLE DE QUALIDADE Todas as amostras da rotina laboratorial, com finalidade de identificação dos alelos do complexo principal de histocompatibilidade (CPH) de classe I e II são submetidas à extração do DNA genômico. Dessa forma, são necessários os seguintes procedimentos que garantem o controle de qualidade de todos os testes:
Quantificar a concentração, através de dois (02) comprimentos de onda, 260 e 280;
Grau de pureza;
Contaminação por proteínas;
Avaliação dos ítens anteriores, por dois funcionários da área, frente aos valores de padronização e orientação do fabricante, para posterior uso dos kits de tipificação dos alelos de classe I do CPH;
Quando os valores não estão conforme as determinações para obtenção da continuidade dos testes, é necessária avaliação dos reagentes e do método empregado;
Anotações das não conformidades e ações corretivas são feitas em planilhas ou cadernos padronizados.
Amplificação do DNA genômico através da reação em cadeia da polimerase (PCR)
Controle negativo da placa/kit, com iniciadores (“primers”) específicos, não deve conter nenhum produto do DNA amplificado, mostrando que não houve contaminação no teste;
Controle interno de amplificação da placa/kit, com iniciadores (“primers”) não específicos para os alelos do CPH, deve amplificar em todas as escavações, mostrando que todos os reagentes empregados no teste estão em conformidade com a técnica utilizada;
Quando os controles internos dos testes não estão conforme as determinações para obtenção da continuidade das tipificações, é necessária avaliação dos reagentes e do método empregado;
Anotações das não conformidades e ações corretivas são feitas em planilhas ou cadernos padronizados.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P19
Grupo responsável pela elaboração Arthur Macoto, Ana Cristina Biral
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 178 -
PROCEDIMENTO ANALÍTICO Proceder às análises de acordo com as técnicas envolvidas. PÓS-ANALÍTICO Incluir em planilha própria do laboratório (IGEN), os dados cadastrais e os resultados obtidos com as análises dos alelos e avaliações de compatibilidade do receptor/possíveis doadores da 1ª fase, imprimir e arquivar em pasta identificada. Incluir no Sistema/SUS/REDOMEnet, os dados cadastrais e os resultados obtidos dos doadores voluntários de medula óssea 1ª fase, imprimir o relatório e arquivar em pasta identificada. Digitar os resultados no Sistema CICSHCP. Liberar os resultados. TEMPORALIDADE Os cadernos e planilhas de resultados (“Worksheets”) são arquivados por tempo indeterminado DESCARTE Resíduos Biológicos, químicos e comuns deverão ser descartados segundo PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado Dosímetros devem ser utilizados sempre que houver manipulação de substâncias radionizantes.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
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30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P20
Grupo responsável pela elaboração Maria de Fátima Gilberti, Gisélia de Lima, Rosângela Simões
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 179 -
PC.P20 – HEMATOLOGIA
DPC – CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS Transportar o material até Seção de Hematologia. SEÇÃO DE HEMATOLOGIA RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Avaliar a qualidade da amostra segundo os critérios de rejeição e aceite com restrição. CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
Coleta em tubos inadequados;
Hemólise intensa;
Amostras coaguladas para: HMG, GLOBAIS, VHS, RETC, PLAQ, EFHB, TP-AP, TTPA, FBRGN, ATIII, EUGLOBULIN, D-DIM.
ACEITE COM RESTRIÇÃO Hemólise e lipemia: colocar observação no resultado. TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA e UER
Reconvocar paciente no SIL;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação;
Em casos de material nobre onde não existe a possibilidade de nova coleta anotar na planilha “material inadequado” e liberar no sistema.
AMBULATÓRIO:
Emitir planilha do paciente;
Pré-reconvocar no SIL HLC_COLETA;
Registrar a solicitação;
Encaminhar planilha do exame para Serviço de Coleta para finalizar a convocação. BAIXA DE RECEBIMENTO Conferir o nome do paciente na planilha e no tubo de exame. Centro Cirurgico, Hemato, Onco Quimio, amostras com pouco volume:
Identificar o tubo e a planilha com etiquetas do mesmo número, específicas para cada tipo de exame realizado no serviço (número interno).
Realizar a associação do número interno com a identificação do paciente no sistema de informática “hemato”.
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Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P20
Grupo responsável pela elaboração Maria de Fátima Gilberti, Gisélia de Lima, Rosângela Simões
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 180 -
Demais enfermarias, ambulatórios e UER:
Dar baixa de recebimento das amostras no SIL HLC_COLETA através do Código de Barras.
Montar racks de trabalho para análise nos aparelhos hematológicos, de hemostasia e VHS. Encaminhar racks para análise. Encaminhar para análise. Caso o teste não seja realizado no dia, guardar em refrigerador (EFHB). Centrifugar a amostra, aliquotar, identificar e guardar no freezer. Guardar a planilha em local identificado para tal. (Fe sérico, Ferritina e TIBC). PROCEDIMENTO ANALÍTICO Proceder as análises nos equipamentos correspondentes de acordo com a padronização de execução das rotinas:
Hemograma, Globais, Plaquetas, reticulócitos: XE 2100 e XE 5000;
TP-AP, TTPA, Fibrinogênio: Destiny max;
VHS: Alifax;
Fe sérico, TIBC: Modular;
Ferritina: Cobas 411
EFHB, HbS, HbF: Variant II;
Ddímero – MiniVidas;
Ham e sacarose, Hb inst, Alfatal e Betatal: específico;
Haptoglobina: nefelômetro (Seção de Líquidos Biológicos). CONTROLE DE QUALIDADE Realizar as manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e registrá-las. Verificar a calibração dos aparelhos, antes de iniciar a rotina com:
Hematológico: sangue controle em três níveis;
Hemostasia: plasma controle 2 níveis e pool;
Ferritina: controle em 3 níveis . Calibrar o aparelho quando mudar o lote;
Fe sérico e TIBC: controle 2 níveis, calibração semanal. Analisar os resultados obtidos de acordo com regras de Westgard, para validar os resultados dos controles. Controlar os resultados durante a rotina com controle de reprodutibilidade. Calibrar ou repetir a dosagem do controle quando necessário. Imprimir o controle para avaliação do DP, cálculo do CV a cada 15 dias (insight) ou quando mudar o lote de controle. Enviar resultados para avaliação no Insight quando necessário. Realizar manutenções preventivas quadrimestrais no ap. hematológico e semestrais nos demais. Realizar manutenções/calibrações, semestrais e anuais nos instrumentos e registrá-las. (Pipetas, capela, BM, centrifugas).
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P20
Grupo responsável pela elaboração Maria de Fátima Gilberti, Gisélia de Lima, Rosângela Simões
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 181 -
Controlar e registrar as temperaturas dos refrigeradores, freezers, estufas e banhos-maria. CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE
Temperatura ambiente: se forem realizadas imediatamente após o recebimento;
Refrigerador: EFHB, HbS, HbF, Fe, TIBC;
Freezer –20º C: Ferritina, Haptoglobina guardar alíquota de soro; PÓS-ANÁLISE Armazenar as amostras em caixas rígidas laváveis, com tampa e trava de segurança, e identificadas:
Amostras de sangue c/ EDTA: 1 dia em refrigerador;
Amostras de sangue c/ citrato de sódio: até a liberação do resultado;
Amostras de soro: 1 semana após liberação, em refrigerador;
Sangue para EFHB: até liberação do resultado (quando normal) ou congelar as hemácias lavadas em freezer –20ºC (quando resultado alterado).
ARQUIVO DE AMOSTRAS E LÂMINAS Distribuir as amostras com análises finalizadas em estantes em sequência númérica. Guardar em refrigerador até o dia seguinte os exames ainda não realizados. Guardar as lâminas de esfregaço sanguíneo realizadas na rotina em caixas específicas por uma semana. PÓS-ANALÍTICO TRIAGEM DE HEMOGRAMA, GLOBAIS E PLAQUETAS Analisar o laudo emitido pelo aparelho e proceder a condutas padronizadas Resultados questionados:
Repetir em outro módulo. Resultados alterados:
Conferir identificação;
Consultar resultados anteriores;
Repetir dosagem;
Verificar presença de coágulo na amostra;
Enviar para microscopia. HEMOSTASIA Resultados alterados;
Conferir identificação;
Consultar resultados anteriores;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P20
Grupo responsável pela elaboração Maria de Fátima Gilberti, Gisélia de Lima, Rosângela Simões
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 182 -
Repetir a dosagem se necessário;
Verificar a presença de coágulo. RESULTADOS CRÍTICOS Confirmar o resultado. Notificar o resultado ao responsável de ambulatório ou enfermaria. Anotar nome de quem recebeu a informação. Resultados alterados e críticos: liberar com observação de repetido e confirmado na amostra recebida.
Hemoglobina: inferior a 5mg% - em qualquer caso;
Leucócitos: inferior a 1.000/mm3 – em casos novos ou diferentes do exame anterior (exceção hematologia, oncologia e TMO);
Plaquetas: inferior a 20.000/mm3 (exceção hematologia, TMO e oncologia);
Presença de parasitas à microscopia (plasmodium, tripanosoma etc);
Presença de células blásticas à microscopia (exceção de hematologia e TMO);
VHS: valores muito elevados;
TP-AP e TTPA: incoaguláveis. LIBERAÇÃO
Resultados liberados após validação pela TRIAGEM e MICROSCOPIA;
Liberar no Sistema HEMATO as análises de equipamentos interfaceados.
Resultados do setor de Hemoglobinas: digitar e liberar no sistema HEMATO.
Resultados de Fe sérico, e TIBC : emitir laudos do equipamento, digitar e liberar no sistema HEMATO.
Resultados de Ferritina liberar no PSM – Fisiologia. EXAMES DE CONVÊNIO
Liberar no sistema HEMATO;
Preencher a Planilha de Resultados de Convênio;
Informar o resultado por telefone quando solicitado. TEMPORALIDADE Arquivar por 5 anos Enviar os documentos para arquivo após 03 meses.
Hemogramas em que foram realizadas análises microscópicas;
Resultados transcritos. Arquivo eletrônico
3 meses on line todos os exames realizados na rotina;
5 anos: no sistema de informática de grande porte do Hospital;
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P20
Grupo responsável pela elaboração Maria de Fátima Gilberti, Gisélia de Lima, Rosângela Simões
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 183 -
Indeterminado: para resultados de EFHB. Eliminar Enviar para o Meio Ambiente para picotar e descartar:
Exames realizados sem interferência manual e sem transcrição. DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P21
Grupo responsável pela elaboração Ângela Teixeira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 184 -
PC.P21 – PARASITOLOGIA
DPC- CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS / COLETA Transportar o material até a Seção de Parasitologia. SEÇÃO DE PARASITOLOGIA RECEBIMENTO DE AMOSTRAS Conferir o nome do paciente na planilha de requisição com o do frasco contendo o material a ser examinado. Avaliar a qualidade das amostras segundo critérios de rejeição e aceite com restrição. ACEITE COM RESTRIÇÃO
Amostra de fezes com conservante: direcionar a técnica (apenas sedimentação);
Amostras de fezes contendo laxantes oleosos;
Amostras com volume insuficiente para todas as técnicas (priorizar metodologia);
Amostras de fezes sem consistência (mucosas ou líquidas): direcionar a metodologia.
REJEIÇÃO FEZES
Amostra com bolor;
Amostra para exame a fresco colhido em frasco de coprocultura;
Amostras que contenham sais de bismuto ou bário;
Amostras mal acondicionadas, mal vedadas; OUTROS MATERIAIS
Frasco com culturas de leishmânias mal transportadas (no gelo ou com material vazando);
Frasco com amostra de raspado de cornea com bisturi
Amostra de sangue coagulada para pesquisa de parasitos. TRATAMENTO DE AMOSTRAS REJEITADAS ENFERMARIA e UER
Reconvocar paciente no SIL;
Ligar na enfermaria onde se encontra o paciente;
Fazer solicitação de envio de nova amostra;
Registrar a solicitação.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P21
Grupo responsável pela elaboração Ângela Teixeira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 185 -
AMBULATÓRIO
Emitir planilha do paciente;
Pré-reconvocar no SIL HLC_COLETA;
Registrar a solicitação;
Encaminhar planilha do exame para Serviço de Coleta para finalizar a convocação. BAIXA DE RECEBIMENTO Proceder à baixa de recebimento do material no SIL HLS através do leitor de código de barras. Numerar as amostras e planilhas de trabalho correspondentes e encaminhar para o procedimento solicitado. PROCEDIMENTO DAS ANÁLISES Preparar as amostras para análise de acordo com a padronização de execução das técnicas. Analisar micro ou macroscopicamente as amostras. Anotar o resultado na planilha de exame e no caderno de registro correspondente à análise. REGISTRO DOS EXAMES Os resultados das análises são registrados em cadernos:
PROTO, AF, SO: Anotar o número interno do exame, número do prontuário, nome do paciente, técnicas realizadas e resultados.
PCOC, PMICROSP, XISTOSA / XTOIMUNE;CULTURAS DE PROTOZOÁRIOS E PESUISAS DE HEMATOZOÁRIOS: Anotar o nome, idade, prontuário, dados clínicos, técnicas realizadas, resultados.
CONTROLE DE QUALIDADE INTERNO
Realizar manutenções/calibrações semestrais e anuais nos instrumentos e registrá-las (Pipetas, capela, BM, centrifugas, microscópios);
Controlar e registrar as temperaturas dos refrigeradores, freezers, estufas e banhos;
Proceder o controle de qualidade dos corantes e meios de cultura;
Análises parasitológicas de fezes (qualitativos): utilizar amostras com resultado conhecido como controle de qualidade do microscopista;
Colorações permanentes: utilizar amostra controle com resultado positivo a cada reação;
Utilizar livros, atlas, figuras, laminários e a prática de dupla observação em microscopia;
IFI esquistossomose: utilizar controle positivo, negativo e “branco” a cada reação;
Reação imunológica para o teste da malária:utilizar controle comercial;
Registrar os controles em planilhas padronizadas.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P21
Grupo responsável pela elaboração Ângela Teixeira
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 186 -
CONSERVAÇÃO DAS AMOSTRAS PRÉ-ANÁLISE Conservar:
Refrigerador: amostras que não serão processadas no mesmo dia.
Freezer –20ºC: amostras de soro para IFI. PÓS-ANALÍTICO Incluir e liberar os resultados no SIL - CICSHCP. ANÁLISE DO RESULTADO E LIBERAÇÃO Fazer correlação clínica laboratorial. Solicitar nova amostra em caso de não conformidade. Liberar resultado com observação quando necessário. Resultados com notificação comunicar ao médico e ao NVE. RESULTADOS CRÍTICOS Não se aplica TEMPORALIDADE Os cadernos de registros servirão de arquivos dos exames durante 5 anos. As planilhas de exames são mantidas na área por 3 meses e depois eliminadas. DESCARTE Resíduos Biológicos, Químicos e Comuns deverão ser descartados de acordo com PGRSS.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P22
Grupo responsável pela elaboração Ângela Von Nowakonski, Maria Rita Ulbricht, Eliane Picolli
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 187 -
PC.P22 – MICROBIOLOGIA
CENTRAL DE SEPARAÇÃO E DISTRIBUIÇÃO DE MATERIAIS Conferir nome do paciente na requisição e no frasco do material coletado. Transportar o material até a seção de microbiologia clínica. SEÇÃO DE MICROBIOLOGIA CLÍNICA TRIAGEM E DISTRIBUIÇÃO GERAL
Conferir nome do paciente na requisição e no frasco do material coletado;
Avaliar a qualidade da amostra, segundo os critérios de rejeição e de aceitação com restrição.
CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
Critério geral: discordância de identificação do material com a planilha ou ausência de identificação;
Material com formol ou álcool, vazamento total, colhido em frasco não estéril, refrigerado (exceto urina). Ponta de sonda Folley.
CRITÉRIOS DE ACEITAÇÃO COM RESTRIÇÃO
Amostra em duplicata no mesmo dia, exceto pesquisa de BK ou hemocultura;
Swabs secos;
Hemocultura coletada em frasco não padronizado. TRATAMENTO DA AMOSTRA REJEITADA AMBULATÓRIO
Solicitar nova amostra na planilha do paciente;
Encaminhar planilha para Central de Separação e Distribuição de Materiais. ENFERMARIA
Registrar na planilha, por meio eletrônico, o motivo da rejeição, solicitando nova amostra.
BAIXA DE RECEBIMENTO Dar baixa no recebimento das amostras no HLC por meio do código de barras. Separar os materiais, com as respectivas planilhas de trabalho, para análise nas bancadas específicas e nos outros setores:
Micologia;
BK.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P22
Grupo responsável pela elaboração Ângela Von Nowakonski, Maria Rita Ulbricht, Eliane Picolli
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 188 -
REGISTRO DE EXAMES Registrar a planilha com o número sequencial fornecido pela bancada. Em caso de BK e fungo, registrar também nos cadernos da bancada. Arquivar planilha nas pastas próprias padronizadas. CONSERVAÇÃO DE AMOSTRA PRÉ-ANÁLISE Havendo necessidade de conservar amostra de BK, manter em refrigerador. Demais materiais, devem ser processados no mesmo dia. PÓS-ANÁLISE Manter amostras em temperatura ambiente, por até uma semana, em caixas separadas segundo o dia da semana. Manter as placas com crescimento por até 48 horas e os frascos de hemocultura positivos, por até uma semana, em temperatura ambiente. Manter cepas de interesse científico e clínico em freezer a –80°C, por tempo indefinido. PROCEDIMENTO ANALÍTICO Efetuar o preparo de lâminas para coloração de Gram e Ziehl Neelsen, a fresco ou Tinta da China quando necessário. Semear em meios apropriados, de acordo com padronização do laboratório.
Incubar as placas em estufa a 35°C ( 2°C) com ou sem CO2, de acordo com técnicas padronizadas para o tipo de material. No caso de hemocultura, o frasco deve ser incubado diretamente no equipamento automatizado. Ler as lâminas coradas anteriormente e registrar nas planilhas e, em casos positivos críticos (hemocultura, líquor e BK) sempre telefonar para a unidade de origem dos exames e para CCIH, NVE e COVISA, caso indicado. Após 24 horas de incubação, avaliar crescimento microbiano e proceder identificação e antibiograma, de forma automatizada ou manual, de acordo com o caso. Relatar o resultado da identificação e antibiograma na planilha. PROCEDIMENTO PÓS-ANALÍTICO Digitar os resultados no sistema. Liberar os resultados no sistema:
Resultados negativos – devem ser liberados pelos biólogos;
Resultados positivos – devem ser conferidos pela chefia da seção e posteriormente liberados pelos biólogos.
Caso haja não conformidade no resultado, detectada na conferência, retornar a planilha para a re-identificação ou retrabalho do antibiograma.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
PROCESSOS DE TRABALHO OU PROTOCOLOS DE COMPETÊNCIA DA ÁREA PC.P22
Grupo responsável pela elaboração Ângela Von Nowakonski, Maria Rita Ulbricht, Eliane Picolli
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Dr. Luis Gustavo Oliveira Cardoso Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: Sr. Jacques Gama Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
ISBN 978.85.63274.47-2
- 189 -
TEMPORALIDADE Na Seção, as planilhas devem ser mantidas arquivadas por 1 mês. Posteriormente, são armazenadas em caixas para arquivo padronizado pela Divisão de Patologia Clínica. Os resultados de BK ficam arquivados por 5 anos no sistema. CONTROLE DE QUALIDADE Realizar:
Manutenções diárias, semanais e mensais dos equipamentos e aparelhos. Registrar em planilhas;
Controle das autoclaves, semanalmente;
Manutenção diária das capelas e fluxos laminares;
Manutenção anual do banho-maria;
Manutenção anual das micropipetas dos equipamentos de automação;
Controlar a qualidade de água reagente usada em meio de cultura;
Checagem dos kits testados com cepas ATCC;
Calibração diária do colorímetro do equipamento de automação Vitek2;
Teste mensal dos discos de antibióticos com cepas padrão segundo valores de referência do CLSI;
Testes de controle de qualidade em meios de cultura, reagentes, corantes e séries bioquímicas com cepas padrão ATCC.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Calçado fechado Utilizar máscara N95 para BK. Utilizar capela de biossegurança para processamento de material respiratório, cultura de BK e cultura de fungos sistêmicos.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 190 -
PC.P23 – INVESTIGAÇÃO DE DOENÇAS INFECCIOSAS
CLASSIFICADAS POR AGENTES - ORIENTAÇÕES PARA O MÉDICO
BACTÉRIAS QUE EXIGEM CONDIÇÕES ESPECIAIS DE COLETA OU OPÇÕES DE
EXAMES
Consultar a Divisão para orientação da coleta (Ramais: Micro 17435 e Imuno 17677).
EXAME MICROSCÓPICO – PRINCIPAIS TIPOS
PRINCIPAIS TIPOS DE EXAME MICROSCÓPICO Exames diretos (a fresco)
Pesquisa de fungos de micoses profundas, Candida e Trichomonas vaginalis;
Tinta da china – pesquisa de Cryptococcus sp;
KOH 10% - dermatófitos;
Campo escuro - treponema e leptospira. Exames com coloração
Coloração de Gram - bactérias e fungos em geral [Candida e filamentosos];
Coloração de Ziehl Neelsen – micobactérias, Nocardia;
Coloração de Giemsa – pesquisa de fungos e protozoários. COMO FAZER UM ESFREGAÇO Usar lâmina nova e desengordurada. Rolar o swab ou espalhar uma alçada da porção mais purulenta da amostra (se secreção muito espessa, adicionar 1 ou 2 gotas de salina para um esfregaço fino) sobre a superfície da lâmina, distribuindo o material no centro desta. Líquidos cavitários ou de diálise: encaminhar ao laboratório para ser centrifugado e utilizar o sedimento para o preparo de lâminas e culturas. Não esfregar o swab, pois irá destruir a morfologia celular. Secar ao ar e fixar rapidamente em uma chama ou calor. Identificar o material do lado em que foi feito o esfregaço.
MEIOS DE TRANSPORTE
AMOSTRAS PARA BACTERIOSCOPIA OU EXAME DIRETO A FRESCO Swab sem meio de transporte; pode ser umedecido em 0,5mL de soro fisiológico estéril.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 191 -
AMOSTRAS PARA CULTURA Preferencialmente utilizar swab com meio de transporte. MEIO DE STUART Meio de transporte que suporta a viabilidade da maioria das bactérias, incluindo as exigentes por até 24 horas. MEIO DE CARY BLAIR Indicado para transporte de fezes quando se deseja cultura para Vibrio cholerae ou outras enterobactérias enteropatogênicas, mantendo-as viáveis por até 48h. MEIO DE AMIES COM CARVÃO Utilizado principalmente quando há suspeita de micro-organismos exigentes como Neisseria (secreção genital) ou Haemophilus (faringe). FRASCO ESTÉRIL Para pequenos fragmentos de tecidos ou biópsias, podem ser adicionados de 0,5 a 1mL de soro fisiológico estéril. Para cultura de Legionella não colher material (lavado brônquico) com soro fisiológico, mas com água destilada estéril. MEIO DE TRANSPORTE PARA ANAERÓBIOS Existem frascos comerciais estéreis com vácuo ou com meio de transporte para anaeróbios, mantendo viáveis por até 24h. Consultar laboratório antes da coleta.
ORIENTAÇÕES GERAIS
AMOSTRA É sempre preferível colher fragmentos de tecido ou fluidos, ao invés de amostras colhidas com swab. Em geral, quanto maior o volume de material, melhor. Preferencialmente, deve-se obter o material de cavidades fechadas, através de punção da pele após antissepsia da mesma. PRÓPRIA SERINGA DE COLETA Embora seja uma maneira muito prática de colher material, procura-se evitar o envio de seringas pelo risco de acidente quando se manuseia a agulha colocada para impedir a saída de material e contaminação. Deve-se utilizar frasco estéril. Encaminhar imediatamente ao laboratório. LOCAL DE COLETA
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 192 -
Procurar as lesões ativas, lembrar que pús em geral é pobre em micro-organismos. Remover secreção superficial ou crostas com soro fisiológico estéril ANTISSEPSIA Quando fizer punção ou penetrar tecido íntegro, fazer antissepsia com álcool 70%. Em caso de mucosa, utilizar solução tópica. QUANTIDADE Colher material suficiente para todos os exames solicitados; sempre que possível colher material e fazer esfregaço para exames microscópicos (Gram, Ziehl). PREENCHIMENTO DO PEDIDO Identificar o material adequadamente e especificar o material coletado. Solicitar os exames de forma clara, colocando suspeita clínica ou informações relevantes:
Imunossuprimido, dados epidemiológicos, gestante, idade etc.
Nome claro do solicitante e CRM Na dúvida consultar o laboratório para orientações (Ramal 17435).
TRATO RESPIRATÓRIO
PACIENTES INTERNADOS COM PNEUMONIA Colher duas amostras de hemocultura antes do início da antibioticoterapia, de preferência de locais diferentes. PESQUISA DE MICOBACTÉRIAS Não se recomenda de início obter material por broncofibroscopia e sim coleta de escarro. LAVADO BRONCOALVEOLAR E CULTURA QUANTITATIVA Estão indicados em casos de pneumonias graves, que necessitem suporte ventilatório, de evolução rápida ou em imunocomprometidos ou quando há falha da terapêutica empírica. Há trabalhos recentes que mostram não haver diferenças significativas em relação ao prognóstico em se colher lavado ou secreção traqueal quantitativa e esta tem a vantagem de não ser invasiva. INFILTRADO PULMONAR FOCAL E REFRATÁRIO AOS ANTIMICROBIANOS EM IMUNOCOMPROMETIDOS Considerar como causa infecciosa a possibilidade de: Tuberculose, outras micobacterioses, P. jiroveci, fungos, vírus herpes simplex, CMV, helmintos etc. ASPIRADO TRAQUEAL
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 193 -
A coleta deste material é realizada em pacientes entubados, através de sonda de aspiração. Os resultados microbiológicos dessas amostras refletem também colonização, sendo difícil à interpretação clínica e laboratorial. A análise quantitativa do aspirado endotraqueal pode melhorar significativamente a sensibilidade (especificidade) do exame, quando forem encontradas contagens > 106 unidades formadoras de colônias /mL de um mesmo tipo bacteriano. Este material pode ser útil também para diagnóstico de P. jiroveci e vírus. De comum acordo com a CCIH este material poderá ser colhido para monitoramento de pacientes críticos ou crônicos possíveis portadores de cepas multirresistentes (colonização). Nestes casos pode ser feita cultura qualitativa. LAVADO BRONCOALVEOLAR Material indicado para diagnóstico de processos infecciosos, em pacientes hospitalizados, incluindo infecções bacterianas hospitalares, micobacterias, P. jiroveci, Legionella sp, micoses pulmonares, etc. Material obtido através de procedimento broncoscópico é injetado cerca de 100 mL de solução salina e amostras são colhidas, sendo a primeira usada para citologia, a porção intermediária para semeadura e exame microscópico para bactérias e a porção final é a mais recomendada para pesquisa de Micobactérias. Enviar com urgência para processamento microbiológico. A cultura é quantitativa e considerando-se a diluição inicial de 100 mL de salina introduzidas durante a coleta, a contagem final é significativa quando forem encontradas
contagens 10.000 UFC/ mL. Em imunossuprimidos pode ocorrer BAL falso negativo na vigência de infecção fúngica invasiva por Aspergillus spp e Fusarium spp. Neste caso, amostra ideal é aquela obtida por biópsia.
MATERIAL OBTIDO DURANTE ATO CIRÚRGICO
PROCEDIMENTO Biopsias devem ser colocadas em frasco estéril. Aspirados podem ser colocados em frasco estéril ou quando houver suspeita de infecção anaeróbia enviar na própria seringa ou inocular parte do material em frasco de cultura para anaeróbios a ser solicitado ao laboratório. Próteses, quando removidas e enviadas inteiras, devem ser colocadas em frasco estéril. Quando possível apenas colher swab, enviar uma amostra imersa no meio de transporte e outro swab para bacterioscopia. Osso: Colocar num recipiente estéril contendo NaCl 0,85% estéril (solução fisiológica) volume suficiente para manter a peça úmida (1-2 ml). Enviar os materiais rapidamente ao laboratório.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 194 -
DRENOS E FÍSTULAS
PROCEDIMENTO Não se recomenda colher secreção drenada, swab do dreno ou de fístula, bem como ponta de dreno para cultura, tendo em vista a abundante contaminação do dreno e da superfície das fístulas. No caso das fístulas, recomenda-se ampliar o pertuito cirurgicamente e coletar material em profundidade por aspiração ou biópsia. No caso de drenagem abundante pode-se realizar cultura do material colhido em frasco estéril, ou obtido por aspiração com cateter até o nível da lesão. O laboratório de Microbiologia informará o predomínio dos agentes isolados, lembrando-se que em amostras de sítios relacionados com cavidade abdominal, orofaringe ou trato genital, há a possibilidade de participação de anaeróbios no processo infeccioso.
PESQUISA DE FONTES DE INFECÇÃO, INVESTIGAÇÃO DE PORTADORES E
MEDICAMENTOS
PROCEDIMENTO Consultar previamente a CCIH sobre necessidade de coleta. Após aprovação da CCIH, consultar o Laboratório de Microbiologia sobre técnica de coleta e material para coleta. Fora do horário de rotina, na dúvida realizar os seguintes procedimentos:
Soros suspeitos de contaminação - guardar o soro suspeito, equipo e agulha em saco plástico limpo, preferencialmente estéril, em refrigerador – vide item: bolsas de sangue, alimentação parenteral e soros;
Medicamentos - guardar em saco plástico limpo, preferencialmente estéril, em refrigerador;
Alimentos - guardar em recipiente estéril, em refrigerador;
Alimentação enteral e parenteral – guardar os recipientes/frascos dentro de sacos plásticos preferencialmente estéreis em refrigerador;
Portadores no staff: o S. aureus - pesquisar na fossa nasal anterior ou em lesões cutâneas; o Salmonella e Shigella - fezes/swab anal; o Streptococcus pyogenes - lesões de pele; o Candida spp – unhas, pele.
Manual de Processos de Trabalho DIVISÃO DE PATOLOGIA CLÍNICA
Revisão N
o: 003
Data: 02/01/2013
Implantação
30/04/2009
ANEXOS PC.A1
Grupo responsável pela elaboração Carlos Emílio Levy
Responsável pela área Data: 02/01/2013 CCIH Data: 02/01/2013 SST Data: 02/01/2013
Nome: Prof. Dr. Carlos Emílio Levy Assinatura ASSINADO NO ORIGINAL
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
Nome: NÃO SE APLICA Assinatura
ISBN 978.85.63274.47-2
- 195 -
INDICAÇÃO DE TÉCNICAS DE MICROBIOLOGIA POR TOPOGRAFIA
(OBSERVAR ABREVIATURAS DESCRITAS NO RODAPÉ)
A. TRATO DIGESTIVO
ABSCESSO ABDOMINAL, APENDICITE, DIVERTICULITE AE=bactérias aeróbias facultativas e anaeróbias estritas.
COL= 2 - 4ml aspirado em seringa.
MT= própria seringa ou em frasco estéril ou frasco com vácuo.
TP=<2h.
EXM= cultura para bactérias facultativas e opcional para anaeróbios. ABSCESSO ESPLÊNICO / HEPÁTICO AE=bactérias aeróbias e anaeróbias, Candida, fungos filamentosos, protozoários, microsporidia e Leishmania donovanii, Micobactérias.
COL=Colher aspirado do abscesso em frasco estéril ou frasco com vácuo para anaeróbios. Biópsia em frasco estéril.
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM=cultura para bactérias aeróbios estritos e facultativos; opcional para anaeróbios estritos. Pesquisa direta e cultura para fungos. Pesquisa de protozoários (exame direto para Entamoeba histolytica). Histopatológico: pesquisa de protozoários.
Diarreia/Gastroenterite AE= Enteropatógenos pesquisados de rotina – E coli (EPEC, EHEC- O157 associada a fezes sanguinolentas e síndrome hemolítico-urêmica, EIEC), Salmonella, Shigella, Aeromonas/Plesiomonas , Yersinia enterocolitica e Campylobacter spp
COL=colher fezes; swab anal somente para Shigella spp.
MT= frasco estéril ou em meio de preservação: salina glicerinada tamponada ou swab anal (pode ser menos eficiente para isolamento) em meio de Cary Blair.
TP=12-24h (em MT).
EXM= cultura para enteropatógenos – se suspeita identificar qual. Para Campylobacter deve-se solicitar exame específico, pois não é rotina da maioria dos laboratórios.
AE=Vibrio cholerae
COL=fezes.
MT= Cary Blair.
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T=24h.
EXM= cultura para V. cholerae. AE=Rotavírus
COL=fezes.
MT=frasco estéril.
TP= 6-8h.
EXM=Técnica imunológica: ELISA ou látex. AE= Clostridium difficile – diarrreia hospitalar em geral associada a uso de antimicrobianos.
COL=Colher fezes.
MT= frasco estéril.
TP=<2h.
EXM=Pesquisa de toxina A e/ou B para Clostridium difficile – imunodiagnóstico. AE= toxina de B. cereus ou S. aureus – diagnóstico clínico.
Em surtos, consultar Laboratório de Referência. AE=Parasitas, Giardia, Strongyloides, E. histolytica
COL= fezes.
MT=frasco para protoparasitológico de fezes.
EXM= protoparasitológico de fezes. AE=Cyclospora, Isospora e Cryptosporidium spp
COL=fezes.
MT= frasco estéril.
EXM= coloração de Ziehl modificada. ASPIRADO GÁSTRICO/LAVADO Raramente utilizado (em crianças ou pacientes que não expectoram) para pesquisa e cultura de micobactérias. AE= Micobactérias de origem pulmonar
COL= Colher lavado gástrico utilizando 25-50 mLsalina ou água destilada estéreis, através de sonda nasogástrica, pela manhã, em jejum, antes do paciente se levantar.
MT= frasco estéril.
TP=refrigerar até 24h. ESTÔMAGO E DUODENO Pesquisa e cultura de Helicobacter pylori (1) Não está indicado fazer cultura para bactérias do conteúdo gástrico. Raramente utilizado em recém-nascido com rutura precoce de membrana(2). (1)AE= Helicobacter pylori.
COL= fragmento de mucosa obtido por biópsia.
MT=para H. pylori, usar meio BHM (solicitar orientação) e ureia.
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TP<2h.
EXM=cultura para H.pilory. (2)AE= enterobactérias, Streptococcus agalactiae, Listeria spp, etc.
COL= Colher lavado gástrico utilizando 5-10ml mL salina ou água destilada estéreis, através de sonda nasogástrica.
MT= frasco estéril.
EXM=cultura para bactérias aeróbias e facultativas; FÍGADO ABCESSO AE= enterobactérias, enterococos, mista com anaeróbios (1) e E. histolytica/outros protozoários (2), Micobactérias em imunossuprimidos.
COL=punção aspirativa.
MT = enviar na seringa ou de preferência em frasco estéril.
TP=<2h.
EXM(1)= cultura p/ bactérias facultativas e anaeróbios estritos.
EXM(2)=Pesquisa de E. histolytica, L. donovani e microsporidia. GRANULOMA AE=micobactérias(1), fungos(2), Brucella spp (3), S. mansoni(4) etc.
COL=punção/biópsia.
MT= frasco estéril com 1 ml de água estéril ou solução salina estéril .
TP=<2h . Para exame Histopatológico=colher fragmento em frasco contendo formol.
EXM(1)=pesquisa de BAAR e cultura para micobactérias.
EXM(2)=Pesquisa direta e Giemsa modificado para fungos; cultura p/ fungos (Histoplasma spp/Candida spp etc).
EXM(3)=Cultura para Brucella spp e sorologia.
EXM(4)=Exame histopatológico p/Schistosoma mansoni e Imunofluorescência direta.
PÂNCREAS AE= Enterobactérias; anaeróbios e fungos – (é frequente a associação de pancreatite necro-hemorrágica com presença de Candida).
COL= aspirado, (em geral não indicada a punção).
MT= frasco estéril.
TP<2h.
EXM=cultura para bactérias.
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PERITONITE ESPONTÂNEA AE=enterobactérias, S. pneumoniae, enterococos e anaeróbios (raro).
COL=aspirado.
MT= frasco estéril ou seringa.
TP=<2h.
EXM=bacterioscopia e cultura; caso indicado solicitar cultura para anaeróbios. PERFURAÇÃO DE VÍSCERA OCA AE= mista enterobactérias com anaeróbios, Salmonella typhi, enterococos e P. aeruginosa etc.
COL=aspirado intra-operatório em
MT= frasco estéril ou meio de transporte para anaeróbios com vácuo ou mistura de gases sem O2 ou seringa sem ar.
TP<2h. Se MT para anaeróbios TP=24h.
EXM= bacterioscopia e cultura para facultativos e se desejar para anaeróbios estritos.
VESÍCULA BILIAR AE= enterobactérias, incluindo salmonella e aeromonas, enterococos e anaeróbios (mais raro).
COL= aspirado de vesícula em frasco estéril.
MT= utilizar o transporte em seringa ou meio de transporte para anaeróbios quando desejar este cultivo.
TP=2h.
EXM=cultura para bactérias; cultura para anaeróbios se indicado.
B. TRATO GENITAL MASCULINO
BALANITE AE= Candida spp, Streptococcus agalactiae e Gardnerella spp
COL=swab umedecido em salina estéril.
MT=Stuart. Fazer esfregaço em lâmina para bacterioscopia.
TP=24h.
EXM= bacterioscopia (Gram) e cultura para bactérias e Candida spp. EPIDIDIMITE/ORQUITE AE= Chlamydia trachomatis(1), N. gonorrhoeae (<35 anos)(2) e enterobactérias (>35 anos)(3).
COL= Se indicado: coleta de esperma ou punção aspirativa.
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TP<2h.
EXM (1) = IF para Chlamydia (difícil disponibilidade do teste), a melhor sensibilidade é com PCR/ Captura Híbrida em urina de 1º jato para uretrite. Para outros sítios, a opção é a sorologia.
EXM (2) e (3) = bacterioscopia e cultura para Neisseria e outros agentes. PROSTATITE AE= Chlamydia trachomatis (1), N. gonorrhoeae (<35 anos) (2) e enterobactérias (>35 anos) (3). Crônica – frequente cultura negativa.
COL= aguda não está indicado coleta de esperma ou massagem prostática, na forma crônica sim.
TP=imediata ou colocar em meio Stuart.
EXM (1) = IF da secreção prostática (difícil disponibilidade do exame), a melhor sensibilidade é com PCR/ Captura Híbrida em urina de 1º jato como para uretrite. Para outros sítios, a opção é sorologia.
EXM (2) e (3) = bacterioscopia e cultura para Neisseria e outros agentes. URETRITE AE= Chlamydia trachomatis (1), Neisseria gonorrhoeae(2) Mycoplasma hominis, Ureaplasma urealyticum (3), Trichomonas vaginalis (4), herpes simples vírus (HSV)(5)
COL= swab uretral fazendo rotação para remover células do epitélio uretral.
(1) Para C. trachomatis fazer esfregaço em lâmina, fixar em carbovax ou fixador fornecido pelo Laboratório e deixar secar.
o TP=24-48h. o EXM (1) = IF para Chlamydia trachomatis (difícil disponibilidade do exame),
a melhor sensibilidade é com PCR/ Captura Híbrida em urina de 1ª micção. A coleta de secreção uretral parece ter menor sensibilidade.
(2) Para N. gonorrhoeae fazer lâmina para bacterioscopia e outro swab introduzir no meio de transporte Stuart ou semear diretamente em agar Thayer Martin.
o TP=o quanto antes, até 24h. o MT=Stuart o EXM (2) = bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae.
(3) Para M. hominis e ureaplasma solicitar meio de transporte específico, introduzir o swab e fazer movimentos de rotação para liberar material.
o TP=24h. o EXM (3) = Cultura semiquantitativa e antibiograma.
(4) Para T. vaginalis pode-se colher secreção uretral em salina ou urina jato inicial o TP=imediato. o EXM (4) = exame direto.
(5) Para herpes(HSV) fazer esfregaço no centro da lâmina, fixar em carbovax o TP=24-48h.
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o EXM (5) =Exame citológico para pesquisa de HSV. ÚLCERAS GENITAIS AE=Sífilis (cancro duro),H. ducreyi (cancro mole) e Herpes(HSV). SÍFILIS
COL= para pesquisa de treponema em campo escuro - coleta no laboratório; pesquisa de treponema em esfregaço corado pelo Fontana (baixa sensibilidade e especificidade).
EXM= pesquisa de treponema em campo escuro; sorologia. HERPES SIMPLES VÍRUS
COL= raspado com swab da úlcera, após remoção de eventual secreção; esfregaço em lâmina e fixar com carbovax.
TP=24h.
EXM= exame citológico para pesquisa de inclusão viral (células de Tzank), geralmente feito na anatomia patológica, pode ser feito PCR para HSV da secreção da vesícula com boa especificidade e sensibilidade, neste caso pode ser feito um aspirado da vesícula ou swab sem meio de transporte.
H. ducreyi (Cancro Mole)
COL=remover secreção superficial e colher com swab.
MT= Stuart.
TP=rapidamente para laboratório <2h.
EXM= bacterioscopia e cultura para H. ducreyi (difícil isolamento).
C. TRATO GENITAL FEMININO
DOENÇA INFLAMATÓRIA PÉLVICA AE= N. gonorrhoeae(1), Chlamydia trachomatis(2), enterobactérias(3), anaeróbios(4) e Mycoplasma questionável.
COL=material obtido por endoscopia, ou endocervical ou intra-operatório: fazer aspirado de abscesso tubo-ovariano, endocervical , punção de fundo de saco,etc. e colocar em frasco estéril com vácuo se desejar cultura para anaeróbios ou enviar seringa.
MT= seringa ou frasco estéril com vácuo
TP=imediato.
EXM (1)(3) = bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae e outras bactérias.
EXM (2) = pesquisa de Chlamydia por IF ou eventualmente por cultura.
EXM (4) = Cultura para anaeróbios.
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CERVICITE AE= Chlamydia trachomatis (1), Neisseria gonorrhoeae(2) e HSV(3)
COL=material obtido por exame especular e coleta de material endocervical, removendo secreção do colo e fazendo movimento de rotação no endocervix. Colher duas amostras.
Amostra (1): fazer três esfregaços, sendo 1 para Chlamydia e fixar com carbovax TP=24h, 1 para citologia para HSV e fixar com carbovax, TP=24h, e outro para bacterioscopia TP=24h.
Amostra (2): colocar em MT=Stuart,TP=quanto antes, até 24h.
EXM (1) = IF para Chlamydia.
EXM (2) = bacterioscopia e cultura.
EXM (3) pesquisa de células de inclusão viral para HSV. URETRITE AE= Chlamydia trachomatis(1), Neisseria gonorrhoeae(2), Mycoplasma hominis(3), Ureaplasma urealyticum(3), Herpes simples vírus(4), Trichomonas vaginalis(5)
COL= Antes de efetuar a coleta da secreção uretral, deve ser feita limpeza da região vulvar com gaze e salina ou água destilada, para remover a flora residente. Colher 2 ou 3 swabs uretrais (dependendo do número de exames) fazendo movimento de rotação para remoção de células epiteliais. Para Trichomonas pode ser urina jato inicial.
(1) Para Chlamydia fazer esfregaço em lâmina e fixar com carbovax o TP=24h. o EXM (1) = IF para Chlamydia.
(2) Para Neisseria fazer esfregaço em lâmina e fixar no ar e colocar outro swab em o MT=Stuart. o TP= o mais rápido até 24h. o EXM (2) = bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae.
(3) Para micoplasma e ureaplasma semear o swab em meio de transporte específico agitando o swab no meio
o TP=24h. o EXM(3) = cultura semiquantitativa e antibiograma para micoplasma e
ureaplasma.
(4) Para HSV fazer esfregaço e fixar com carbovax. o TP=24h. o EXM (4) = exame citológico para pesquisa de HSV.
(5) Para Trichomonas vaginalis dissolver o swab em salina ou encaminhar urina rapidamente ao laboratório
o TP<2h.
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o EXM (5) = exame direto para pesquisa de Trichomonas (pode ser pedida cultura caso o Laboratório disponibilize este exame).
CORRIMENTO VAGINAL VAGINOSE AE= Gardnerella vaginalis, Mobiluncus spp, Mycoplasma hominis
COL=swab de fundo de saco.
MT=Stuart ,
TP= até 24h. Colher lâmina para bacterioscopia. EXM= bacterioscopia e cultura.
CANDIDÍASE AE= Candida albicans e outras espécies de Candida
COL=swab vaginal.
MT=Stuart.
TP=24h.
EXM = bacterioscopia, exame direto para pesquisa de Candida spp e cultura para Candida. Caso necessário e disponível, pedir identificação de espécie e antifungigrama.
TRICHOMONÍASE AE= Trichomonas vaginalis
COL= swab vaginal.
MT=colocar em tubo com salina.
TP<2h. EXM= exame direto para pesquisa de trichomonas. Pode ser pedida cultura caso o
Laboratório disponibilize este exame. GONORREIA AE=N. gonorrhoeae
COL= swab endocervical.
MT=Stuart.
TP= o mais rápido possível, até 24h.
EXM= bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae. EM GESTANTES Pesquisar portadores de Streptococcus agalactiae (grupo B) e Listeria spp.
COL= swab vaginal ou retal (maior sensibilidade para estado de portadora).
MT= Stuart.
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TP=até 24h.
EXM= pesquisa de S. agalactiae e Listeria spp. ÚLCERAS GENITAIS AE=Sífilis (cancro duro)(1)
COL= para pesquisa de treponema em campo escuro - coleta no laboratório; pesquisa de treponema em esfregaço corado pelo Fontana (baixa sensibilidade e especificidade).
EXM= pesquisa de treponema em campo escuro; sorologia. AE= H. ducreyi (cancro mole)(2)
COL=remover secreção superficial e colher com swab.
MT= Stuart.
TP=rapidamente para laboratório <2h.
EXM= bacterioscopia e cultura para H. ducreyi AE= Herpes(HSV)(3)
COL= raspado com swab da ulcera, após remoção de eventual secreção; esfregaço em lâmina e fixar com carbovax.
TP=24h.
EXM= exame citológico para pesquisa de inclusão viral.
D. TRATO RESPIRATÓRIO
LARINGITE AE= Bacteriana (M. catarrhalis, Bordetella pertussis, H. influenzae)
COL= aspirado com frasco coletor de secreções e aspirado com vácuo.
TP=imediato, se coleta com swab.
MT=Stuart .
TP=24h.
EXM= bacterioscopia e cultura (inclui pesquisa de M. catarrhalis e H. influenzae. Para Bordetella pedir cultura específica.
AE= Viral: herpes simples vírus(HSV), varicella, influenza, parainfluenza, rhinovirus e adenovírus
Custo e demora costumam contra-indicar coleta. OROFARINGE E AMÍGDALAS
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AE= Streptococcus pyogenes, Corynebacterium diphtheriae, Neisseria gonorrhoeae, Arcanobacterium haemolyticum e Candida spp em imunossuprimidos. A pesquisa de cada um destes agentes é feita mediante solicitação específica.
COL= swab da superfície amigdaliana onde exista secreção purulenta.
MT=Stuart
TP=24h.
EXM=bacteriosopia (Gram) e cultura para Streptococcus pyogenes; quando disponível pode ser feita através de teste rápido.
EXM=bacterioscopia pela coloração de Albert-Laybourn e cultura para Corynebacterium diphtheriae; a coloração de Albert-Laybourn e os meios específicos em geral estão disponíveis apenas em Laboratórios de Referência.
EXM=bacterioscopia (Gram) e cultura para Neisseria gonorrhoeae.
EXM=bacterioscopia (Gram) e cultura para Arcanobacterium haemolyticum.
EXM= exame direto para pesquisa de fungos ou coloração de Gram. Se necessário solicitar cultura para fungos.
LESÕES ORAIS (MUCOSA, GENGIVA, ABSCESSOS) AE=bactérias aeróbias(1), anaeróbias(2), HSV(3), sífilis(4), Candida spp (5) e Paracoccidioidomicose(6). COL= coleta de lesões, remover secreção superficial e com swab remover material do fundo da lesão.
MT=Stuart.
TP=24h. No caso de abscesso, obter material por punção, principalmente se desejar cultura para anaeróbios
MT=frasco estéril com vácuo ou a seringa.
TP=imediato.
COL1=bactérias aeróbias. Colher swab para bacterioscopia e outro colocar em meio de transporte
MT=Stuart.
EXM1=bacterioscopia (Gram) e cultura para bactérias aeróbias; cultura em geral não indicada por ser comum isolamento de flora Gram positiva sem valor clínico.
COL2=Cultura para bactérias anaeróbias – indicado no caso de abscessos; lesões superficiais a cultura em geral não indicada.
MT=Colher aspirado em seringa.
TP=imediato ou
MT = frasco com meio de transporte específico em anaerobiose.
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TP=24h.
EXM2= bacterioscopia e cultura para anaeróbios.
COL3=Pesquisa de Herpes simples vírus (HSV) em úlceras ou vesículas; colher com cureta ou swab e fazer esfregaço no centro de duas lâminas e fixar com carbovax ou alcool.
TP=24h Pode ser feito PCR da lesão.
EXM3= exame citológico para pesquisa de inclusões virais pela coloração Hematoxilina-eosina (HE).
Pesquisa de CMV: Pode ser feito PCR / Pacientes transplantados, imunossuprimidos, onde a prevalência é maior, pode ser colhida também antigenemia CMV. COL4=Treponema pallidum – suspeita de lesões de sífilis primária ou secundária, fazer raspado da lesão e colher a linfa com tubo capilar ou encaminhar ao Laboratório para coleta
TP=imediato.
EXM4=Exame direto em campo escuro ou coloração de Fontana (pouco sensível).
COL5=Candida spp; colher com swab, removendo secreção superficial.
MT=Stuart.
TP=24h ou
MT = transportar em tubo estéril com 0,5 ml de salina estéril.
TP=<2h.
EXM5=Pesquisa em exame direto e cultura para Candida spp. COL6= Paracoccidioides brasiliensis. Úlceras na cavidade oral: remover secreção superficial e com swab remover material do fundo da lesão;
Transportar em tubo estéril com 0,5 ml de salina estéril.
TP=<2h.
EXM6= exame direto para pesquisa de P. brasiliensis e cultura para fungos (micoses profundas).
OTITE OTITE EXTERNA AE=Pseudomonas aeruginosa e outras Pseudomonas , enterobactérias , S. aureus e fungos
COL=swab de lesão. Se secreção abundante, remover com salina e colher da lesão.
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MT=Stuart.
TP=24h.
EXM= bacterioscopia, exame direto a fresco e cultura. OTITE MÉDIA AE=pneumococo, Haemophilus influenzae , Moraxella catarrhalis (1), vírus(2).
COL= em geral não indicada, terapêutica costuma ser empírica. Se necessário, fazer miringotomia e aspirar.
Se colher em MT=frasco estéril TP=imediato.
Se usar MT=Stuart TP=24h. Se otite supurada, remover secreção superficial com salina estéril.
Coleta com swab os resultados são menos confiáveis.
EXM= bacterioscopia e cultura.
Vírus (2): não indicado procedimento diagnóstico – embora seja etiologia muito importante.
MASTOIDITE MASTOIDITE AGUDA AE=pneumococo, Streptococcus pyogenes, S. aureus, Haemophilus influenzae , P. aeruginosa.
COL= raramente indicada; tratamento empírico. Se indicado, colher por punção. aspirativa e envio.
MT= frasco estéril ou seringa TP=imediato.
Se MT=Stuart TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura. MASTOIDITE CRÔNICA AE=polimicrobiana (enterobactérias, S. aureus, P. aeruginosa, anaeróbios etc)
COL= coleta em procedimento cirúrgico (indicada remoção do tecido. comprometido).
MT=frasco estéril com 0,5-1mL de salina estéril. TP=imediato.
Se MT=Stuart TP=24h.
EXM= bacterioscopia e cultura. SINUSITE
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- 207 -
SINUSITE AGUDA AE=alérgica, viral, bacteriana (pneumococo, hemófilos, Moraxella catarrhalis, Streptococcus pyogenes, S. aureus) ou mista com facultativos e anaeróbios.
Em neutropênicos e imunossuprimidos considerar possibilidade de Aspergillus spp e outros fungos.
hospitalizados com cânula nasotraqueal ou tubo nasogástrica considerar: enterobactérias, não fermentadores, Candida spp, Aspergillus spp.
COL= tratamento empírico, coleta não indicada. Se necessário fazer punção aspirativa.
MT=frasco estéril TP=imediato ou MT=Stuart e TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura. Se indicado solicitar cultura para fungos. SINUSITE CRÔNICA AE= polimicrobiana com participação frequente de anaeróbios. Comum insucesso terapêutico antimicrobiano por associação com causas não infecciosas.
COL= se cultura indicada, colher por punção aspirativa.
MT=frasco estéril e TP=imediato ou se MT=Stuart, TP=24h.
Se solicitar cultura para anaeróbios solicitar frasco específico ou enviar em seringa.
EXM= bacterioscopia e cultura para bactérias (aeróbias e facultativas); se indicado solicitar cultura para anaeróbios; se indicado solicitar exame direto para pesquisa de fungos e cultura para fungos.
PULMÃO ABSCESSO PULMONAR AE=Bactérias aeróbias e anaeróbias estritas, Nocardia spp, Cryptococcus spp, E. histolytica, micobactérias e Aspergillus spp em imunossuprimido
COL= punção biópsia, toracoscopia; aspirado ou biópsia.
MT=frasco estéril com 0,5mL de salina estéril e TP<2h.
Se cultura para aneróbios MT=frasco com vácuo ou enviar seringa e TP<2h.
EXM=bacterioscopia e cultura. Se suspeita de fungos: exame direto para pesquisa de fungos, pesquisa de Cryptococcus com tinta da china e cultura para fungos de micoses profundas. Se suspeita de anaeróbios: bacterioscopia e cultura para anaeróbios. Se suspeita de micobactérias:baciloscopia pelo Ziehl Neelsen e cultura para micobactérias. Se suspeita de protozoários e confirmação de outros agentes: exame histopatológico.
BRONQUIOLITE/BRONQUITE <5anos - AE=viral: Vírus Respiratório Sincicial e outros – diagnóstico clínico, mas pode ser feita imunofluorescência direta para pesquisa de vírus respiratórios.
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- 208 -
Jovens e adultos duração 7-10 dias AE= alérgica, vírus, Chlamydia pneumoniae, e Mycoplasma. Nos casos com > 2 semanas duração; afastar Bordetella pertussis, parapertussis e tuberculose EMPIEMA PLEURAL <5anos AE=S. aureus, S. pneumoniae e H. influenzae
COL=punção(toracocentese).
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM=bacterioscopia e cultura. >5 anos AE= S. aureus, S. pneumoniae , H. influenzae e S. pyogenes(1). Forma subaguda ou crônica considerar anaeróbios(2), enterobactérias(1) e M. tuberculosis(3).
COL=punção (toracocentese).
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM(1)=bacterioscopia e cultura.
EXM(2)=bacterioscopia e cultura para aeróbios, facultativos e anaeróbios estritos. EXM(3)=baciloscopia pelo Ziehl Neelsen e cultura para tuberculose.
FIBROSE CÍSTICA AE= S. aureus, P. aeruginosa, B. cepacia e S. maltophilia
COL= escarro.
MT=frasco estéril – refrigerar.
TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura. PNEUMONIA PNEUMONIA DA COMUNIDADE Do nascimento até 20 dias AE=Streptococcus agalactiae (B), Enterobactérias, Citomegalovirus e Listeria monocytogenes. 3 semanas a 3 meses AE=Chlamydia trachomatis , Vírus respiratório sincicial Parainfluenza vírus 3, Streptococcus pneumonia e Bordetella pertussis. 4 meses a 4 anos AE=Vírus respiratório sincicial, Parainfluenza vírus, influenza vírus adenovírus, rhinovírus e Streptococcus pneumoniae. 5 a 15 anos AE=Mycoplasma pneumoniae Chlamydia pneumoniae, Streptococcus pneumoniae e Mycobacterium tuberculosis. Adultos: AE= S. pneumoniae, H. influenzae, S. aureus, virus (influenza, adenovírus, VRS, parainfluenza), enterobacterias, Chlamydia pneumoniae, M. catarrhalis.
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- 209 -
AE= bactérias:
COL=escarro, se indicado lavado endotraqueal ou BAL.
MT=frasco estéril.
TP=<2h.
EXM=bacterioscopia e cultura.
COL= hemocultura antes de iniciar antibioticoterapia 1 a 2 amostras.
MT=frasco de hemocultura.
TP=2h ambiente.
EXM=hemocultura. AE=Chlamydia pneumoniae, trachomatis e psittaci
COL=escarro, lavado traqueal ou BAL;
MT=frasco estéril;
TP=imediato.
EXM= C. trachomatis: cultura (demorada) ou PCR. C. pneumoniae: cultura (demorado), sorologia e Imunofluorescência ou PCR. C. psittaci: sorologia.
AE=Mycoplasma pneumoniae
COL=escarro, se indicado lavado endotraqueal ou BAL;
MT=frasco estéril.
TP= imediato.
EXM= cultura, sorologia, crioaglutininas, imunohistologia, PCR de biópsia. AE=vírus
COL=escarro ou quando indicado lavado endotraqueal ou BAL. Centrifugar e colher sedimento.
MT=frasco estéril.
TP<2h- refrigerar.
EXM= o Vírus Respiratório Sincicial(VRS) – Adenovírus, Parainfluenza e Influenza:
Imunofluorescência com anticorpos monoclonais direto do escarro ou centrifugado do lavado ou PCR.
o Varicella-zoster vírus(VZV) - sorologia ou PCR. o Herpes vírus 6:IgG e IgM:ELISA e Imunofluorescência. o Citomegalovirus (CMV) – sorologia(IgM,IgG),ELISA, PCR qualitativo,
Imunohistoquimica, PCR de líquidos nobres; antigenemia em imunossuprimidos: IFI anti PP65 ou PCR.
AE=Mycobacterium tuberculosis e outras micobacterioses
COL=escarro, se indicado BAL, ou biópsia.
MT=frasco estéril refrigerado.
TP=24 horas.
EXM=baciloscopia pelo Ziehl Neelsen e cultura para micobactérias; exame histopatológico.
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AE=Fungos (Histoplasma capsulatum, Cryptococcus spp, P. brasiliensis)
COL= escarro, se indicado BAL, ou biópsia.
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM=exame direto para pesquisa de fungos, exame histopatológico com coloração pelo Groccot, cultura para fungos de micoses profundas.
PNEUMONIA HOSPITALAR AE=enterobactérias, P. aeruginosa, Acinetobacter spp, Stenotrophomonas malthophilia, Burkholderia cepacia.
COL=escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar (BAL) ou biópsia.
MT=frasco estéril.
TP=24h se refrigerado.
EXM=bacterioscopia e cultura. OUTROS AGENTES DE PNEUMONIA AE= Mista (inclui anaeróbios quando aspirativa)
COL=escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar.
MT=frasco com vácuo ou anaerobiose.
TP<2h.
Bacterioscopia e cultura para aeróbios, facultativos e anaeróbios estritos.
AE= Legionella spp – hospitalar ou em surtos
COL= escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar.
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM=bacterioscopia e cultura para Legionella (meio BCYE seletivo e não seletivo). AE= fungos em imunocomprometidos (P. carinii, Aspergillus spp, vários fungos filamentosos)
COL=escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar ou biópsia.
MT=frasco estéril.
TP=<2h.
EXM=exame histopatologico (biópsia) ou citológico pelo Giemsa, Groccot; pesquisa de P. carinii. Exame direto para pesquisa de fungos. Cultura para fungos de micoses profundas.
AE= parasitas (T. gondii, S. stercoralis e Cryptosporidium spp)
COL= escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar ou biópsia.
MT=frasco estéril.
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TP=24-48h se refrigerado.
EXM=exame histopatológico ou citológico para pesquisa de parasitas. Coloração de Ziehl modificada para Cryptosporidium spp).
AE= vírus em imunocomprometidos (herpes simples vírus (HSV), varicella –zoster e CMV)
COL= escarro, se indicado Lavado endotraqueal ou Lavado broncoalveolar ou biópsia; MT=frasco estéril.
TP<2h. Para cultura de vírus congelar a menos 70oC.
EXM= o Varicella-zoster vírus(VZV)- Imunofluorescencia ou sorologia ou PCR; o Citomegalovirus (CMV) – sorologia, Imunohistoquimica, PCR de líquidos
nobres, captura híbrida, pp65, NASBA para antigenemia em imunossuprimidos.
E. SISTEMA NERVOSO CENTRAL
MENINGITE AE= Viral (caxumba, enterovírus, HIV, Herpes simples vírus)
COL=LCR.
MT=frasco estéril.
TP=imediato.
EXM=sorologia ou se indicado cultura. AE= Bacteriana <1mês: Streptococcus beta do grupo B, , E.coli. >1 ano: Haemophilos sp, meningococo e pneumococo. >50 anos: pneumococo, Listeria sp , enterobactérias.
COL=LCR; frasco estéril ou semear direto no meio de cultura; não refrigerar.
TP=imediato.
EXM=bacterioscopia e cultura do LCR, pesquisa de antígenos pelo látex (bactérias e Cryptococcus spp).
AE= Tuberculosa
COL=LCR.
MT=frasco estéril.
TP=<2h.
EXM=bacterioscopia para BAAR e cultura.
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AE= Cryptococcus (em geral imunossuprimidos)
COL=LCR;
MT = frasco estéril.
TP<2h.
EXM= pesquisa direta no LCR com tinta da china e cultura para fungos, teste para antígeno com látex.
ABSCESSO CEREBRAL AE=Gram positivos(S. aureus, Streptococcus spp), enterobactérias, anaeróbios, Nocardia spp, toxoplasmose
COL= aspirado da lesão.
MT=frasco estéril ou para anaeróbios com vácuo ou meio específico.
TP=imediato.
EXM= bacterioscopia, cultura simples ou incluir para anaeróbios. Recomenda-se enviar parte do material fixado em formol para exame histopatológico ou esfregaços fixados em alcool para exame citológico e diferentes colorações.
DERIVAÇÃO EXTERNA OU VENTRÍCULOPERITONEAL AE=Staphylococcus spp, não fermentadores(Acinetobacter spp, etc), enterobactérias, estreptococos e enterococos.
COL= LCR de derivação.
MT=frasco estéril.
TP< 2h.
EXM=bacterioscopia e cultura.
F. SEPSE, BACTEREMIA, FEBRE A ESCLARECER, ENDOCARDITE
FEBRE, BACTEREMIA, SEPSE, CHOQUE SÉPTICO NEONATAL AE= S. agalactiae, enterobactérias, S. aureus, Listeria monocytogenes.
COL= 1 a 2 amostras sangue 1 a 3 mL antes de iniciar antibioticoterapia.
MT=frasco de hemocultura.
TP=imediato.
T=ambiente até colocar na estufa do Laboratório ou automação.
EXM=hemocultura. Especificar agente se houver suspeita(p. ex. Listeria spp). CRIANÇAS E ADULTOS
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AE= enterobactérias, pneumococo, hemófilos, S. aureus , enterococos (origem biliar, urinária ou enterocolite), estreptococos beta hemolíticos( grupo A principalmente), Salmonella spp, N. meningitidis, etc.
COL= 2 até 3 amostras , sendo antes ou no início do pico febril e antes da antibioticoterapia. Colher preferencialmente em 2 locais diferentes. Evitar coleta em cateter exceto se suspeita de colonização ou infecção de cateter. Volume por frasco de 1 a 3 mL para crianças e 5 a 10 mL para adultos.
CAUSAS MAIS RARAS E ARRASTADAS (FEBRE DE ETIOLOGIA INDETERMINADA) AE= vide endocardite abaixo; brucelose, Bartonella spp, Ehrlichia spp, doença de Lyme (Borrelia burgdorferi), leptospirose, salmonelose.
COL= para brucelose e salmonelose (S. typhi – febre tifoide) colher sangue para hemocultura em frascos comuns.
MT=frasco de hemocultura. Colher 2 a 3 e se necessário repetir 1 semana após. Informar suspeita clinica.
EXM= hemocultura – solicitar incubação por 30 dias. Para Leptospira semear o sangue em meio de Fletcher, se disponível (o I. A.. Lutz fornece).
EXM= fazer pesquisa de leptospira na urina colhida e imediatamente centrifugada e/ou alcalinizada para observação em microscópio de campo escuro. Solicitar exames sorológicos para leptospirose as demais suspeitas.
ENDOCARDITE AE= S. aureus 38%, Staphylococcus coagulase negativos 6%, Streptococcus spp 31%, Enterococcus spp 8%, grupo HACEK* 4%, polimicrobiano 2%, fungos 1%, outros 4% e negativo 6%.
COL=colher 2 a 3 hemoculturas na ascensão do pico febril, antes da antibioticoterapia e em locais diferentes. Se após 24-48h as amostras estiverem negativas, colher mais 2 nas mesmas condições.
MT=frasco de hemocultura.
TP=imediato
EXM=hemocultura. Destacar o diagnóstico de endocardite para que agentes potencialmente contaminantes possam também ser considerados (Streptococcus spp, Corynebacterium spp, etc.), principalmente se isolados em mais de uma amostra.
*HACEK=Haemophilus, Actinobacillus, Cardiobacterium, Eikenella corrodens e Kingella spp
G. PELE, ANEXOS E TECIDO SUBCUTÂNEO
PIODERMITE E FURUNCULOSE
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AE=S. aureus, Streptococcus spp e anaeróbios.
COL= aspirado de abscesso ou limpeza da ferida com salina e coleta por aspiração ou swab em profundidade.
MT=Stuart. Fazer esfregaço em lâmina.
TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura de aspirado. CELULITE AE=Streptococcus pyogenes(erisipela), outros estreptococos beta-hemolíticos e S. aureus. P. aeruginosa enetrobactérias em imunossuprimidos, diabéticos e neutropênicos.
COL=swab se houver secreção ou fissura. Fazer limpeza prévia da pele com salina estéril. Se tiver vesícula ou bolha fazer assepsia prévia com PVP-I alcoólico.
MT=swab em meio de Stuart ou enviar a seringa.
TP<24h para MT Stuart e imediato para seringa.
EXM=bacterioscopia e cultura. MORDIDA HUMANA/ANIMAL/PICADA DE COBRA AE=mordida humana (Gram positivos e anaeróbios) ou animal (Pasteurella spp), picada cobra (Aeromonas, enterobactérias e anaeróbios)
COL=lavar lesão e colher aspirado ou swab em profundidade.
MT=Stuart , colher outro swab para confeccionar esfregaço para bacterioscopia.
TP<24h.
EXM=bacterioscopia e cultura. Se desejar cultura para anaeróbios colher material em MT.
FERIMENTO INFECTADO AE=enterobactérias, S. aureus, Aeromonas spp, Pseudomonas spp etc.
COL=lavar lesão e colher aspirado ou swab em profundidade;
MT=Stuart- fazer esfregaço para bacterioscopia;
TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura. FERIDA CIRÚRGICA INFECTADA AE=enterobactérias, S. aureus, P. aeruginosa e outros não fermentadores, Enterococcus spp.
COL=lavar lesão e colher aspirado ou swab em profundidade
MT= Stuart- fazer esfregaço para bacterioscopia;
TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura.
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FASCEÍTE NECROTIZANTE AE=(S. pyogenes ou Clostridium spp), Sindr. Fournier (P. aeruginosa, polimicrobiana, incluindo anaeróbios).
COL=fazer biópsia com punch ou bisturi e colocar em 0,5mL de salina; se secreção lavar com salina e colher swab
MT= swab em Stuart; biópsia em frasco estéril.Se desejar cultura para anaeróbios solicitar meio de transporte específico ou transporte em seringa.
EXM=bacterioscopia e cultura.Se indicado solicitar cultura para anaeróbios. ÚLCERA FLEBOPÁTICA E ÚLCERA DE PRESSÃO AE=polimicrobiana;
COL=lavar lesão e colher aspirado ou swab em profundidade;
MT=Stuart; fazer esfregaço para bacterioscopia.
EXM=bacterioscopia e cultura. QUEIMADURA AE=enterobactérias, P. aeruginosa, S. aureus, Candida spp, Enterococcus spp;
COL=lavar lesão com salina estéril e colher biópsia e colocar em 0,5 mL de salina estéril; ou aspirado ou swab em profundidade;
MT=Stuart para swab ou aspirado; aspirado pode ser enviado em frasco estéril ou na seringa; fazer esfregaço para bacterioscopia.
EXM=bacterioscopia e cultura. LESÕES E ULCERAS CRÔNICAS, COM OU SEM FÍSTULAS AE – primário: tuberculose, micobacterioses, MH, paracoccidioidomicose, esporotricose, outras micoses e micetomas, Leishmaniose cutânea, S. aureus, actinomicetos, etc. Pode ocorrer infecção bacteriana secundária de menor importância.
COL= lavar lesão com salina estéril e colher biópsia e colocar em 0,5 mL de salina estéril; ou aspirado ou swab em profundidade;
MT=Stuart para swab ; aspirado pode ser enviado em frasco estéril ou na seringa; fazer esfregaço para bacterioscopia e pesquisa de BAAR.
EXM=exame direto com KOH, bacterioscopia, pesquisa de BAAR, esfregaço corado pelo Giemsa, cultura para bactérias, Micobacterias, fungos.
H. OLHO
ORDÉOLO AE=S. aureus
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COL=se houver drenagem espontânea, lavar com salina estéril e colher secreção emergente com swab ou aspirar com seringa. Caso desejar fazer punção, fazer antissepsia com PVP-I alcoólico.
MT=Stuart para swab ou aspirado.
TP=24h
EXM=bacterioscopia e cultura CONJUNTIVITE NA 1A E 2ª SEMANAS DE VIDA AE= química, N. gonorrhoeae, Chlamydia trachomatis e HSV
COL=remover secreção presente com swab estéril e colher secreção e células da conjuntiva rodando suavemente o swab.
MT=Stuart
TP<2h. Fazer com outro swab 3 esfregaços em lâmina e fixar com carbovax.
EXM=bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae. Pesquisa de C. trachomatis por IF ou PCR; exame citológico para pesquisa de inclusão viral.
CONJUNTIVITE ADULTO AE=S. aureus, S. pneumoniae, H. influenzae, N. gonorrhoeae, viral(HSV, VZV, etc.), C. trachomatis, etc.
COL= remover secreção presente com swab estéril e colher secreção e células da conjuntiva rodando suavemente o swab.
MT=Stuart
TP<2h. Fazer com outro swab 3 esfregaços em lâmina e fixa-los com carbovax.
EXM= bacterioscopia e cultura para N. gonorrhoeae e outras bactérias. Pesquisa de C. trachomatis por IF ou PCR; exame citológico para pesquisa de inclusão viral ou PCR p/ HSV e VZV.
ASSOCIADA A LENTE DE CONTATO AE=P. aeruginosa, fungos, Achantamoeba
COL= remover secreção presente com swab estéril e colher secreção e células da conjuntiva rodando suavemente o swab.
MT=Stuart
TP<24h. Colher outro swab para bacterioscopia.
EXM=bacterioscopia e cultura; exame direto para pesquisa de Achantamoeba se indicado.
CELULITE PERIORBITÁRIA AE=S. pneumoniae, H. influenzae, M. catarrhalis, S. aureus, S. pyogenes, etc.
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COL=em geral não há secreção visível e punção não indicada. Caso haja conjuntivite colher swab de conjuntiva.
MT=Stuart.
TP=24h.
EXM=bacterioscopia e cultura CÓRNEA AE= fungos filamentosos, Pseudomonas, etc.
COL=usar cureta de Kimura;
MT = como material é muito escasso seria desejável semear diretamente, solicitando 1 placa de agar chocolate, um tubo de agar Sabouraud. Ou colher em frasco estéril com 0,5 mL de salina estéril e TP=imediato.
EXM= cultura para bacterias e fungos.Se houver material suficiente fazer bacterioscopia e micológico direto.
I. OSSO
ARTICULAÇÕES ARTRITE REACIONAL (S. REITER) AE=S. pyogenes, C. trachomatis, Campylobacter jejuni, Yersinia enterocolitica, Shigella e Salmonella spp
COL=raramente isolado o agente na articulação acometida. Pode aparecer 1 ou mais semanas após a infecção. Diagnóstico sorológico. Se diarreia, colher fezes para pesquisa dos AE.
EXM=quando indicado coprocultura para agentes específicos (citar qual suspeita). Se suspeitar C. trachomatis colher esfregaço uretral ou endocervical para IF ou PCR.
ARTRITE PURULENTA AGUDA Neonato AE = S. aureus, enterobactérias, S. agalactiae, N. gonorrhoeae >3 anos AE = S. aureus, S. pyogenes , S. pneumoniae, H. influenzae , N. meningitidis, Gram negativos. Sexualmente ativos AE= incluir N. gonorrhoeae.
COL= punção articular com antissepsia prévia.
MT=Stuart e TP<2h ou
MT = frasco estéril e TP=imediato.
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EXM=bacterioscopia e cultura.Se suspeitar de N. gonorrhoeae solicitar cultura específica.
Causas mais raras: Borrelia burdorferi, hepatite B, vacina da rubéola, parvovírusB19, e outros vírus. EXM= sorologia se indicado.
CRÔNICA AE= brucella, nocardia, micobactérias e fungos
COL=punção articular.
MT=frasco estéril.
TP<2h.
EXM= bacterioscopia e cultura.Micológico direto e pesquisa de BAAR.Cultura para micoses profundas e micobactérias. Sorologia para Borrelia, Brucella e vírus se indicado.
FRATURA EXPOSTA AE= S. aureus, anaeróbios (terra), Pseudomonas e Aeromonas spp (água). MORDIDA EM OSSO AE=enterobactérias, estreptococcus, Pasteurella, Aeromonas, anaeróbios. OSTEOMIELITE AGUDA AE= S. aureus, Streptococcus pyogenes, enterobactérias, etc. OSTEOMIELITE AGUDA EM FALCIFORME AE=Salmonella spp OSTEOMIELITE CRÔNICA AE= S. aureus, enterobactérias, Pseudomonas aeruginosa, anaeróbios, etc. OSTEOMIELITE CRÔNICA COM INSUFICIÊNCIA VASCULAR AE=polimicrobiana com anaeróbios
COL=melhor material obtido por procedimento cirúrgico, removendo e debridando tecido desvitalizado. Amostras de tecido ósseo colocadas em MT=frasco estéril com 1mL de salina; se suspeita de anaeróbios.
MT=frasco próprio em anaerobiose ou vácuo.
TP=<2h.
EXM=bacterioscopia e cultura. Informar dados clínicos relevantes [falciforme, presença de gás, material fétido(suspeita de anaeróbios), mordida, suspeita de Tuberculose, imunossuprimido e associação com fungos, etc. Solicitar exames conforme suspeita.
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J. MÚSCULO
MIOSITE AE=Staphylococcus aureus, Streptococcus pyogenes, anaeróbios (pensar em clostridium se presença de gás) e vírus
COL= punção aspirativa orientada por ultrasson.
MT= frasco estéril; se suspeita de anaeróbio utilizar meio de transporte específico ou na seringa.
EXM= bacterioscopia e cultura podendo incluir cultura para anaeróbios.
K. GÂNGLIO
ADENOPATIA GENERALIZADA AE= Múltiplas causas infecciosas (considerar também não infecciosas): mononucleose , toxoplasmose , tuberculose, paracoccidioidomicose, brucelose , doença de Lyme, HIV inicial, etc
COL=a biópsia ou punção aspirativa para diagnóstico de doença infecciosa está indicada quando há iminência de supuração ou quando há drenagem espontânea ou fístulas. Muitas vezes a biópsia indicada para investigação histopatológica pode revelar ao corte características de doença granulomatosa ou piogênica sendo interessante investigar tanto bactérias comuns (S. aureus p.ex), como outros potenciais agentes como: bactérias mais raras como Brucela, Bartonella, etc, fungos(histoplasmose ou paracoccidioidomicose) ou micobacterioses.
MT=frasco estéril ou aspirado em seringa;
TP=imediato;
Recomenda-se não colher material com swab, pois o material colhido será insuficiente para os diferentes exames que deverão ser realizados.
EXM= mononucleose (sorologia), toxoplasmose (sorologia), tuberculose (PPD, biópsia e pesquisa de BAAR e cultura para micobactérias), paracoccidioidomicose: exame direto para pesquisa de fungos e cultura de P. brasiliensis), brucelose (sorologia),doença de Lyme(sorologia), HIV inicial (sorologia) etc.
ADENOPATIA LOCALIZADA CERVICAL AE=Doença da arranhadura do gato , bacteriana(S. aureus, S. pyogenes, etc) e Micobacteriose.
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COL= a biópsia ou punção aspirativa para diagnóstico de doença infecciosa está indicada quando há iminência de supuração ou quando há drenagem espontânea ou fístulas.
MT= frasco estéril ou aspirado em seringa;
TP=imediato; recomenda-se não colher material com swab, pois o material colhido será insuficiente para os diferentes exames que deverão ser realizados.
EXM= o Doença da arranhadura do gato (exame histopatológico, cultura p/
bactérias), o Bacteriana - bacterioscopia e cultura, o Micobacteriose: pesquisa de BAAR e cultura para micobactérias,
SUBMANDIBULAR - VERIFICAR CAVIDADE ORAL PARA FONTE DA INFECÇÃO AE=Vírus – herpes simples, bacteriana, Paracoccidioidomicose, estomatite aftosa, etc.
COL= indicada na suspeita de infecção bacteriana ou fúngica. Punção aspirativa ou biópsia.
MT=frasco estéril ou aspirado em seringa.
TP=imediato.
EXM= o herpes simples – imprint se existir lesão ou raspado com swab e esfregaço.
Exame citológico para pesquisa de inclusões virais ou para PCR. o Bacteriana - bacterioscopia e cultura. o Paracoccidioidomicose - exame direto para pesquisa de fungos e cultura. o Estomatite aftosa - diagnóstico clínico; pode ser feito PCR para HSV e CMV.
AXILAR AE=Bacteriana (S. aureus, S. pyogenes, doença da arranhadura do gato) e Esporotricose
COL= Punção aspirativa ou biópsia.
MT=frasco estéril ou aspirado em seringa.
TP=imediato.
EXM= o Bacteriana (S. aureus, S. pyogenes, doença da arranhadura do gato e
outros): bacterioscopia e cultura. o Esporotricose: exame direto para pesquisa de fungos (especificar suspeita
clínica) e cultura p/ fungos. INGUINAL AE=Herpes simples, cancro duro (sífilis), cancro mole (H. ducrey) e linfogranuloma venéreo, granuloma inguinal, doença da arranhadura gato.
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COL= Punção aspirativa, biópsia, swab para coleta de material no fundo da lesão genital ou de gânglio. Para treponema encaminhar paciente ao Laboratório para pesquisa de treponema em campo escuro.
MT=frasco estéril ou aspirado em seringa.
TP=imediato.
EXM= o herpes simples – imprint se existir lesão ou raspado com swab e esfregaço.
Exame citológico para pesquisa de inclusões virais ou para PCR. o sífilis - pesquisa de treponema em campo escuro; sorologia. o cancro mole – bacterioscopia e cultura para H. ducreyi (dificil isolamento). o linfogranuloma venéreo – Chlamydia trachomatis – IF e Reação de fixação
de complemento ou PCR ; biópsia contra-indicada. o granuloma inguinal,( bactéria: Calymmatobacterium granulomatis)- esfregaço
da lesão corado pelo Giemsa ou Wright para pesquisa de corpusculos de Donovan ou cocobacilos intrafagócitos com coloração bipolar.
o doença da arranhadura gato: exame histolopatológico, bacterioscopia e cultura p/ bactérias).
L. TRATO URINÁRIO
CISTITE AGUDA NÃO COMPLICADA AE= enterobactérias, S. saprophyticus (mulheres jovens), enterococcus
COL=urina de jato médio.
MT=frasco estéril.
TP=<2h ou 24h em refrigerador.
EXM=urina I e cultura com contagem de colônias. INFECÇÃO URINÁRIA EM PACIENTES HOSPITALIZADOS E SONDADOS AE=Enterobactérias, P. aeruginosa, Acinetobacter spp, Enterococcus spp, Candida spp, etc.
COL=urina de jato médio ou punção de sistema fechado em pacientes sondados.
MT=frasco estéril.
TP=<2h ou 24h em refrigerador.
EXM=urina I e cultura com contagem de colônias. PIELONEFRITE AE= enterobactérias, enterococo
COL=urina de jato médio.
MT=frasco estéril.
TP=<2h ou 24h em refrigerador.
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EXM=urina I e cultura com contagem de colônias. ABSCESSO RENAL AE=S. aureus, enterobactérias(1), tuberculose(2), etc.
COL1 - secreção do abscesso o MT=frasco estéril ou seringa se suspeita de anaeróbio o TP=<2h ou 24h em refrigerador. o EXM1=urina I e cultura com contagem de colônias.
COL2 - primeira urina total da manhã (3 dias alternados) o MT=frasco estéril; o TP<2h ou se refrigerado 24h. o EXM2= baciloscopia (coloração de Ziehl Neelsen) e cultura para micobacterias.
PREVENÇÃO DE INFECÇÕES RELACIONADAS À ASSISTÊNCIA À SAÚDE Precauções Padrão
Devem ser adotadas sempre que prestar assistência aos pacientes, manusear equipamentos, materiais e superfícies da assistência. Consistem em:
Higienizar as mãos (água e sabão ou álcool gel);
Utilizar barreiras e equipamentos de proteção individual (luvas, avental, máscara e protetor ocular) de acordo com o grau de exposição à matéria orgânica ou fluidos corporais;
Realizar limpeza/desinfecção de materiais e equipamentos utilizados;
Prevenir acidentes com pérfuro-cortantes;
Manusear adequadamente resíduos, materiais biológicos e roupas usadas.
Caso o profissional apresente sintomas respiratórios (resfriado / gripe), conter secreções e higienizar as mãos após assoar o nariz ou espirrar.
Precauções Adicionais
Adotar Precauções Adicionais sempre que indicado pela CCIH. Maiores informações: Manual da Comissão de Controle de Infecção Hospitalar (ccih.pdf).
SEGURANÇA E SAÚDE OCUPACIONAL Adotar as orientações descritas no Guia para Adequação da NR-32 no Hospital de Clínicas (NR32.pdf).
EQUIPAMENTOS DE PROTEÇÃO INDIVIDUAIS E COLETIVOS ESPECÍFICOS Não se aplica
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ANEXOS
PC.A1 - NORMAS, PORTARIAS E REFERÊNCIAS BIBLIOGRÁFICAS
QUE EMBASAM O FUNCIONAMENTO DA ÁREA
A .V. Hoffbrand, J.E. Pettit – Essential Haematology; Ed. Blackwell Scienc
Carl A. Burts, Edward R. Ashwood - Tietz Textbook of Clinical Chemistry; Ed. W.
B. Saunders Company
F.G.I Hayhoe e R.J. Flemans – Atlas de Citologia Hematológica; Ed.Artes Médicas
Geraldo Atílio de Carli - Parasitologia Clínica; Ed. Atheneu
HURLEY, C.K. - Acquisition and use of DNA-based HLA typing data in bone
marrow registries. Tissue Antigens, 49: 323-8, 1997.
Jacques Wallach, MD – Interpretação de Exames Laboratoriais; Ed. MEDSI
Lynch – Técnicas de Laboratório; Ed. Manole
Lynne S. Gracia – Practical Guide to Diagnostic Parasitology
Manual Nacional de Vigilância Laboratorial da Tuberculose e outras Micobactérias
(Ministério da Saúde)
Métodos Básicos de Laboratório em Parasitologia Médica – Organização Mundial
de Saúde OMS
Miller AS, Dykes DD, Polesky HF. A Simple Salting out Procedure for Extracting
DNA for Human Nucleated Cells. Nuclei Acids Res 1988;16:1215.
Módulos de microbiologia da Anvisa.
http://www.anvisa.gov.br/servicosaude/manuais/microbiologia.asp
NR-32 – Segurança e Saúde no trabalho em serviços de saúde.
www.tem.gov.br/legislação/normas_regulamentadoras
Olerup O, Zetterquist H. HLA-DR typing by PCR amplification with sequence-
specific primers (PCR-SSP) in 2 hours: an alternative to serological DR typing in
clinical practice including donor-recipient matching in cadaveric transplantation.
Tissue Antigens 1992;39:225-235.
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Performance Standards for Antimicrobial Susceptibility Testing: Eighttenth
International Supplement (CLSI)
Portaria CVS-13 de 4 de novembro de 2005 – Condições de Funcionamento dos
Laboratórios de Análises e Pesquisas clínicas, Patologia Clínica e Congêneres
www.cvs.saude.sp.gov.br/busca_legis.asp.
RDC 302 de 13 de outubro de 2005 – Regulamento Técnico para Funcionamento
de Laboratórios Clínicos
http://e-legis.anvisa.gov.br/leisref/public/showAct.php?id=19176&word=
RDC 306 de 7 de dezembro de 2004 – Regulamento Técnico para gerenciamento
de Resíduos de Serviços de Saúde
http://e-legis.anvisa.gov.br/leisref/public/showAct.php?id=13554
RDC-50 de 21 de fevereiro de 2002 – Normas para Projetos Físicos de
Estabelecimentos Assistenciais de saúde
http://www.anvisa.gov.br/legis/portarias/1884_94.doc
Resolução nº358 de 29 de abril de 2005 - Tratamento e Disposição Final dos
Resíduos dos Serviços de Saúde www.mma.gov.br/port/conama
Robins e Cotran – Patologia – Bases Patológicas das Doenças; Ed. Saunders
Sir John V. Dacie/ S.M.Lewis – Practical Haematology; Ed. Churchill Livingstone
Urinalysis and Colecction, Transportation and Preservation of Urine Specimen
(CLSI)
Walter Ferreira, A e L.M. Ávila, Sandra: Diagnóstico Laboratorial das Principais
Doenças Infecciosas e Autoimunes; Ed. Guanabara Koogan
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PC.A2 – DOCUMENTOS UTILIZADOS NA ÁREA
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PC.A3 - TABELA DE TEMPORALIDADE DOS DOCUMENTOS
O tempo de arquivamento dos documentos na Divisão de Patogia Clínica está descrito
nos processos de trabalho que compõem este manual.