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j, ‘1 c64 E:,:, / 2:. *j-. ‘;?- ,.~ ;,” f’ :,,,., ; ;;; UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID Facultad de Veterinaria Departamento de Microbiologia c 6 4 E:,:, / 2:. *j-. ‘;r~~ i’ :_, UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID Facultad de Veterinaria Departamento de Microbiologia BIBLIOTECA UCM 5300899719 5300899719 ADAPTACION DE NUEVOS METODOS DE ADAPTACION DE NUEVOS METODOS DE DIAGNOSTICO PARA RINONEUMONITIS DIAGNOSTICO PARA RINONEUMONITIS EQUINA Y SU VALORACION EQUINA Y SU VALORACION EPIZOOTIOLOGICA EN ESPAÑA EPIZOOTIOLOGICA EN ESPAÑA Luis Enrique Martin Oler0 Luis Enrique Martin Oler0 Madrid, 1992 Madrid, 1992

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j, ‘1 c64 E:,:, / 2:. *j-. ‘;?- ,.~ ;,”

f’ : ,,,., ; ;;; ” UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID

Facultad de Veterinaria

Departamento de Microbiologia

c 6 4 E:,:, / 2:. *j-. ‘;r~~

i’ : _, UNIVERSIDAD COMPLUTENSE DE MADRID

Facultad de Veterinaria

Departamento de Microbiologia

BIBLIOTECA UCM

5300899719 5300899719

ADAPTACION DE NUEVOS METODOS DE ADAPTACION DE NUEVOS METODOS DE

DIAGNOSTICO PARA RINONEUMONITIS DIAGNOSTICO PARA RINONEUMONITIS

EQUINA Y SU VALORACION EQUINA Y SU VALORACION

EPIZOOTIOLOGICA EN ESPAÑA EPIZOOTIOLOGICA EN ESPAÑA

Luis Enrique Martin Oler0 Luis Enrique Martin Oler0

Madrid, 1992 Madrid, 1992

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La Tesis Doctoral de O.&-.k&?&&........

. .l.-Mfmr/.. ..4crv-~

Titulada ikk&I

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . .

~~.b~.O~~~-C~r,~.~...

&.qm .poI9.

ulrcctor Dr.

fue leida en la Facultad de . . . . . . . . .

de 1

d<? .&

UNIVERSIDAU COWLUTENSE DE WIDRID, el dfa .??y.

tb.k.q,-:. . . . . . . de 1961I(,.. ante el tribunal

por105 siguientes Profesares:

wUcl~SAd~~..~.FR~~qnFX,......

. ..~?oac6~lie,l,..I$-rr~,~eZ,.. ..*.

VOCAL .kr.'IQ&?.. .b.L.P.%169@L,. . .i?%t!. . . . . . . . . .

VOCAL .%aFJ . . )42lA~C f-f-G&.wk.. ..*. . -... r;' . . . . . . . . . . . l........

. . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..*..............................

habiendo rccibldo la calificación do .itx::.iJ ..........

i' "1 .. . .. ..:!!'!!l:...rl!i.:Ir~.~~~~.~?i!~ 0.. ................

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mpreso mi mAxlmo sgradecinimto, al Dr. Jos6 Hanuel Sãncher

~ircalno Rcdriguez, por la direcciõn, íntores y b”enos conssjo~

gue me ha dada pcrs realizar oste trabajo, aal como por haber

C?...dC B” Ial, constancia 0 ilusidn B” EiI tomaci6n proíesiona1.

I\ !di amiga y conpanera mm1n1a Aguinaga “aluca”, par 0”

gran a,‘“da, ya que sin alla ne hubiera sido diflcll da llevar a

cabo esta tesis.

A los “~t~?in.rics ,,ilitsree, daatinados en las ““idades donde

se ha realizado la tom da muastras para este estudio, por 8”

gran ayuda y colsbracibn.

A todos los soldados, que durante el periodo s” el gua ne ha

dasarrollado este trabajo, han colaborado de una íorna mtusiast.

y eficaz, poro euy especialmente a mi amigo Javier EwA.5”.

?.l Dr. Jos* MwIl Escribano, a la Diva. mrisa arias y a todo

el grupo de Virolcqla del Depaìtmmto de sanidad Animal del

centro de Invaetigacidn y Tecnolcgla del Instituto Nacional da

Investlgacicnae Agrarias, por BU inastiaable colaboracid” B” la

puesta a punta da dichas t6c”lcas.

Deseo dar las gracias a todos míe compaf,eroa del Departamsnto

de Microbiologia y hnãlisls Cllnicoa del Csntro Hilitsr de

Vaterinarla (Madrid), por 8” apoyo B” el danarrollo del mismo.

A la Diraccibn del &ntro Militar de Veterinaria, en cuyas

laborstorios 86 ha desarrollado princlpalnente esta trabajo, por

la gran colaboracidn y ayuda prestada en tcdo momento.

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,............................................61

111 - I ESTUDIO RELACIOH~INW LAS DISTINTAS

C)rRAcTERISTICAS OBSM¿“*D*S EN MS ANInALzs Y su

LUC)LR DE PROCEDENCI* . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ...61

III.1.1. RESPECTO A‘CLIH.4 . . . . . . . . . . . . . . . . . . ...62

III.1.2. RESPErnO A Lh EDAD . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..s.

III.1.3. RESPECTO AL PESO-SEXO-IUW. . . . . . . . . . . ..s.

111.1.1. RESPECTO A Lu CoNoICIOH*S DE

~ITABILIDAD . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..6~

III. - 2 ESTUDIO LASORAMRIAL . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..ss

I11.2.1. RESULTIIWS OsTENIcoS POR ELISA

IWDIRECTO.............................S5

II1.Z.l.a. POTROS . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ..ss

III.2.1.h. YEG”*S . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . . ...71

III.2.l.C. SEMENTALES . < < . . . . . . . . . . . . . . . . . .75

TII.2.1.d. COHPARACIOH DE “AUIRES POR ELISA

ENTRE ms S”WOS FQSITI”OS

NEGATIVOS Y “ACUNMOS < . . . . . . . . . .s2

TII.2.2. EVAL”ACION DEL ELISh INDIrlEcm CON LI\

TECWICA DE SEROHmwIZACIOH . . . . . . ...83

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~1 herpewirus agulno tipo-1, BS la myof causa vira1 ds las

anfarmB*sdoa reap1ratorLxl a9ue.s sn cabn11os durante Pi primer

y segundo a,,o ds vida, siendo ceneidearado corso enddmicd en 1a

mayorla de las po,blacIones equinas (Bryans 1.9691 Bt”dderf 1.97,;

POVSll y col. 1.W8).

En E~tadoe Unidos II<) hizo un estudio co” aata virus,

sisldndosa en 21 de 21 potroa que aurlaron en una granja durante

una *pLiesia, pua lle carsctsriz6 por un cuadra abortivo y muertes

psrinatalae, esto les hiz.o pensar gue las epidemias de enfermedad

r.spirstoria antr. caballo, jóvenes, proviana de gran,a.s

infcctaaa* OO” ysquaa prefmíos (Hartley y DíYOIl 1.979). El aborto

“0 ocurrib. aunque 1aa **guaa pranallas estaban aupuestaa àurant.3

el curso da la epidemia. Mn tarda. hubo un n”mero da casos ds

íntscclón de EH”-1 amolados a un slndroma dc patAlisia. Este

dltimo aLndroao era qm~ralmmta esporhdlco, pero las $pldaalas

ha” eid reconooLdas (*iaxeg*?.r* 1.966; Oìee”YOcd y 5imeon 1.980;

Cro~h”rst y col. 1.9811 Thai,, 1.9811.

con la prmlncls d. lOS alndrolno* respiratorios, sbortl”o*

y nerviosos, la apidemlologla da Is infeccI6n co” EH”-1, BS algo

mãs complLcada de detectar.

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, - Citoaegalovirua aurino. I

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AQ

- Virus Epstein-mrr (tipo 4).

- virus Herpes Cercopithacine 12

(*abcm, * - virus "erpes pongine(chimpance)

- virus de la mfermedad de Mare&

(gallid 2).

- virus Herpes del pavo (neleagrid

1)

- Virus Herpes saimirii z(mo"os).

- virus Herpes Ateline 2 (clase

am,.

- Virus Herpes Atelina 3 (clase

73) *

- wnbi6n en esta subfamilia se

puede asociar con el carCinm"a

renal B" rana*.

Estos virus animalea tienen muy poca ralacibn inmnolbgica

con los herpesvirus hunanoa, II excepcibn del virus B de los monos

(&lphaherpes"irinae) que puede produoir reacciones cruzadse CO"

el virus del Herpes Simple (Alphaherpesvirinae).

Estb constituido por un virus ADN, de simetrla de chpside

fcw.&drica, co" un tanafm entre 120-200 nm. y cuya estructura

posee de fuera a dentro, una doble envoltura originada en la

menbrana n"cleõr de la c6lula huesped, teniendo portanto "na

envoltura lipldica sensible aleter y al cloroformo, con pequonae

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2.6

~eneralaente la Rínoneumonitie equina ee manifieste CO" ""

C"?.dìO respiratorio similar el de otrss eneermedades

respiratoriae d$ 10s Squidos. lvmllien * veces aparecen

poeteriormente cuadroe abortivos y nervíosos, que el ganadero

,,o relaciona con loe posibles cuadros respiratorios que tUYo

anteriamente. ES asl, como segdn evenze le enfermedad s"

patologIa se monifiesta y mediante obaervaciõn cllnica de este,

ee como ee realiza el diagnbetico, equivocando en la mayoria de

los cb.60~ la Rinoneumonitis equina, con otìas de similar

caracterfstica como la T"fl"e"Z* 0 Arteritis virica.

la enfermedad tiene los siguientes cuadros olInicos:

1) Infaccidn respiratoria en caballos suceptibles.

2) kho?Ao en yeguas preliadaa.

3) Enfermedad perinatal.

4) Enfermedad del Sistema Nervioso Central (Mieloencefelitis).

l 1, wded Resdratori*: aunque el virus puede infectar

el tracto respiratorio de cualquier caballo, loe animales mas

viejoe que han tenido ""a expansiõn repetida, presentan cierta

resistencia contra la enfermedad. Estoe animales sufren una

infecci6n libre de elntomae. Sn los animales mbs jóvenes sin

eupensibn previa, como los potros deetetados y loe ysarlings,

EUeStrW elntomas respiratorios de do8 e diez dlas despues de

le infeccibn. Como slntomas m6s sobresalientes, se observan:

descarq?. serosa por.faaas nasales, siendo más tarde este

laucopurulenta, fiebre (hasta Il,leC), ligera anorexia (tocos

"ecrõti~o. e" faringe) y deprasiõn con UD periodo de duracibn

de haata siete dfaa. Tmbi.Zn, eparece una necrosis extensiva de

CSlUlae epítelielee del trasto respiratoria superior, ecompafmdo

por una acusada reepueeta inflanatoria. ~ambi&, en eeta zona

puede aparecer una hiperplasia linfonodular con infartación de

los follculos linfoides, que al contaninarse con germenes,

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son caractsr1stioaa sprsciv.las, una vasculítís, CO” una

dsganeraclbn ssoundarlahip6wloa (disminuolbn de la concsatracIbn

de cxlgmo an aangra) en al tejido mural bdyacenta, apareciendo

impartsntas cambIoa hístopatol~lcos a” aabos casQ(1 de

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39

mieloenoefalitis, tanto natura1 como experimenta1 (Platt y col.

19sa,. E" particular Jackson y COl.(1977, fuero" cspsoes de

reproduoir un eLitedo parautioo, 00" une gran vascu1itis por

i"yecol6" suh~utanea del EH"-1, en yaguas prefmdas del EjBrcito

Australiano. cambios vasculares, ere" nSs predominantes en la

m6dula que en el cerebro y el poco tiempo, les lesiones de le

materia blanca de le medula eran ~6s manifiestas que las lesionea

de la materia gris (Jackson y Kendrick 1971). Evidencias como

i"ClUSiO"eS i"tra"ucleares en "e"ro"a*, en infecciones M

"eurotróficas no son apreciadas en los caeos producidos por *

Ex"-1 (Thomson y CC.1 1979).

En les encefalitis asociadas co" herpesvirus en otra8

especies, por ejemplo, el virus herpes simple en el hombre, el

herpesvirus en el ganado bovino y el virus de Is enfermedad de

Aujeszky en cerdos, hay una clara evidencia de "eurotrofismo

primario con nultiplicaci6n del virus en neuronae y "eurofagia

(Paltt y col. 1980). En contraate, el UN-1 apreciado e" el

Ejercito Australianrr, no hay neurotrofiamo en cerebro equino,

apareciendo nas tarde en le inoculaci6" intracerebral directa

(Prickett y Bryana 1970; Jackson y col. 1977).

Experimentalmente, la mieloencefalitis producida por E"V-l ee

caracteriza por una difusa vasculitie, mds prominente en el

tejido nervioso, afectando tambi6" al endotelio y pulmones (Platt

y col. 1980). Se propuso por parte de Jackson y col. 1977, que

durante la viremia aparecen altoe niveles de anticuerpos en 18

clrculaoi6n, propagbndose el virus directamente por la circulación e las c6lules infectadas ye les o6l"l.s endotelialee

y de estm, a las cB1ul.e endotelialee contigua sin una fase

extracelular.

Una vez que la ínfecciõ" sndotelial es iniciada, el virus tiende e propagarse centrlfugamente e infecta las c6lulas

pare"quimalea adyacentes. Esto, responde a una severe y

generalizada vasculitis sin destruooibn neurona1 primaria,

aroclada co" EHV-1. Focos malbceos (blandos), presumiblemente

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Concentración de scrílamida ----- - ----- Jp( ---- m

,o, acrllamida , -_-_________ 2.5 ------- ,,, ---- 1

0.8, bisadlamí+ '

1.88 M RIS-CLH p" .3,B ---------- 1,2 ------- 1,2 ---- 1,2 O,B* sO8 __-_____--------__------ 1,2 ------- 1,z ---- 1.2 AgUa ---_------------------------ l,, ------- (J,2 ---- 1.6

Tam& _-___----_--_---_--________ 5 pl ------ 5 pl ____ lj p1

10) de persu1rsto an6nico ------- 30 ill ----- 30 p1 --- 30 p1

E) va acrílalnída , --------------------____ IJ,,, m1

0,8, bisacrilarids 1 l),62$M wi*-Cm p" 6.8 ---- - ------ - ---------- o,, m1

0,5t 806 ---------__--_--_------------------- 0.4 m1

Irgua ----------_--__-________________________ o,a, al

*el& --_---__-___________------------------- 2 IrI

Lo* da porsulfata amó”&co ------------------- 10 pl

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Hegro -idO ____--_-_----__-_--_---------------- 0.5 g

UW,WIOl ______________---___-------------------- 45 ml

WJ,M daetllada ---_--_“------------------------- 4s nl

AcIdo *Artico _----_------_---_----------------- 10 nl

el Gel

nat.nol ____-__-----------_--------------------- 40 cc

*cido &$c~t~c#j ---------------------------------- 10 cc

Apa (hasta) ___-________-___-_-_--------------- 100 cc

netano1 _________--___--____-------------------- 10 cc

ACl& Ac‘tico _----_-_---__,-__-_________________ ej cc

Agua (hasta) -_--_------------------------------ 10,) cc

u&,a ec~lia,, dasnata&, ------------------------- 1,, g

*B* (hasta) ------------------------------------ 1 1i-o

F

Clc,ro”aftol --------_--------------------------- 30 mg

)JlJta”ol _-------------__--__-------------------- 10 00

Tng (haata) ------------------------------------ 50 00

Agua dsatilada sl JOI ----------------_-_------- 6<) 111

W,s Clorldrico -----_-----__ ,,8, g _--_-____-_ z‘, m

Cloruro a&$i,Jo -------------- 58,1(1 g --------_- 500 u

,.g”a dantilsda (hasta). ------------------------- 7 litr~os

Ajustar pH a 7.5 CO” cw

a-Ea-

AErilaida ------------------------------------- 30 g

Blsacrllaaida -----______--_-___________________ 0,s g

Agw, daatilnda (,,.uta) ------------------------- 100 cc

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Ba,uci6n de 1a”adtJ ------_--------------------- 1 sitr,J

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- Acido Acbtico. Probus.

- Acido Cltrioo. Probus.

- Ahcido Etilen Diamino ‘Petra AcOtico. Marck.

- ACid SUlfIlrIco. Prohe.

- Aceilamida. Bio-Rad.

- Aminoboidos no esenciales 100x. Plow.

- Anti-IgG ds mballc mm-cada con peroridasa RAH,PO. Nordic.

- Azul brillante de Coomaasle R-250. Sio-Rad.

- Azul da Bromofenol. Merck.

- Blcaebamto Sbdico. Panreac.

- Bisaerilanida. Sic-Rad.

- Carbonato Sbdico. Probus.

- Cloronsetol. Sio-Rad.

- Cloruro Sbdicc. Probus.

- Dinetil Sulibxido. Fluka.

- Dodecil’ Sulfato Sbdico. Sia-Rad.

- Etanol. Probus.

- Fosfato Disbdico. Nerck.

- Fosfato MonopotSsico. Mero)<.

- Gentamiclna song,rd. Flov.

- Clicerol. Slo-Rad.

- Glicina. Sio-Rad.

- lecha dematada Wolioo. Nestle.

- Medio Eagle Modificado de Dulbecoo, sin Clutamina y sin

Bicarbonato Sfdico (MEM). Flov.

- “er~aptoeta”01. Mo-bd.

- Hata”c.1. Prabus.

- Negro Anido, Merck,

- Nonidat-PIO. Marok.

- Orto Fenilen Dianina. Dakopatts.

- Perbrido de Hidr6geno 3Ok. Pa”reao,

- Parsulfato Sbdico. Bio-Rad.

- Piruvato Sl>dico. Plow.

- Sacarosa, “ere)<.

- Seroalbdmina Bovina (ESA). Sigma chemical corp,

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3.4

11-I ANI B

Distribuci6n geogrãfica:

realizamos un estudio epide&,lbgícode la enfermedad, tomando

muestras de diferentes regiones de Espana para ver la incidencia

ds las misma y recogiendo a SU vez informaoibn de las

caracterieticas más importantes de estos animales, como so"8

edad, paso, raza, actitud, vacunacionas y clima, para su posible

relaci6n con los resultados.

MB lugares de toma de m"estra fueron:

*Yeguada Militar de Cordovilla la Real (Palencia).

R?&l:TirO.

*Yeguada Militar de Lora - Toki (san Sebastian).

RaZa:P"ra sangre Ingles (P.S.I.).

*Yeguada Hilítar da JBT‘~E de la Frontera (Cadiz).

Raza:P"ra Raza Espflola (PAL) y Pura Raza Arabe (P.R.A.).

*DepõSito Militar da Sementales WI Alcalã de Henares

(Madrid).

RaEa:Pum RaZa Fx.pafio1a (P.R.E.).

l Depdsito Militar de Sementales Nn5 (Zaragoza).

R?LSa:TitO.

Estos animales los agrupamos dependiendo de su funcidn en los

grupos siguientes:

- SMENTAL.ES

- YEGUAS

- P0TRD.s

Esta clasificacibn se realiza para ver a la hora de valorar los

resultados, ai hay alguna caracterlstica c.,m‘,n an cada grupo o

por el contrario no existe ninguna.

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/ .,b

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Ip

i

l

E,, eete trabajo se ha utilizado la cepa Xentucky del virus

E"", adaptada e c6lulae BHK-11 en eu pese 21, facilitado por el l

Laboratorio de Sanidad Animal de Algete (Madrid).

I

El oultivo, lo raalizamoe en frascoa Palcon de 75 cm' de

*Up*l-fiCi*. una vez que el tapiz celular ee enC"ectre

subconsluente, sfiadlmoe 1,s ml. del virue, mhs 4,s ml. del medio

de mantenimiento. Transcurrido una hora e. 37*C y ""e atmosfera

del 5% de COZ, de cc,,tectc del virus con lee cdlulas, anadinos

15 ml. del medio de mantenimiento y lo incubamos con las mismas

csracterfstioas anteriormente citadas.

A lee 24 horas, apreciamos. un efecto citopático clero,

manífeatandcee cdlulas aincitiales y c6lulas individuales

desgrendidas en un 80%. Hde tarde, realizamos le obtenoibn del

antlgenc eoluble citoplasmdtico, como ee indica en el apartado

n-7.

Esta antLgen0, lo fijamos en los pooillos de lee placas

microtiter e le dilución bptíma, utilizbndolas inmedistamente 0

bien congelándolas a -2O*C, tapadas con papel parafilm, no

perdiendo actividdd durante 12 meeee.

Tanbi6n este antfgen0, lo utilisamos para realizar la

electroforesis e inmunotransferencia del Immunoblottíng.

de linea celular utilizada fu.3 la BHK-21 (chlulas de ri¡Ibn

de hamster joven), que eataba congelada en nitrbgeno liquido y

tretade con cuero fetal de ternera al 101 y dímetil sulfbrido

en pr,,pc,rcibn de 9:1 con reepecto al cuero fetal de ternera.

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Foto nQ3. Cdlulaa BHR 21,infectade.s co" Virus EH"-1.

Realizado en nuestro laboratorio. x 2.00.

EFECTO CrmPAmcc

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sa

EI sntIgeno 88 ohtuvo siguiendo le .etodolcqla.descrita por

esorlbano y Tabe~6s (198,), para el virus de la Peste porcina

afrleana. Cblulas inieotadss, se recogieron e les 24 horas con

un efecto citopático aproximademente de un 801, sin haberse

desprendido lee cLlule8. Estes, lae lavamos primeramente dos

"eces con PBS pH 7,2 y una OO" sacaroB& 0,34 n 4" Tris ClH 5mN

de pH 8. De.epu.3~ de este tercer lavado y msnteníendo le seEeP=Qe,

retiremos lee c6lulae infectadae oon una eapbtula articulada,

quedando estas suependidas en la solucibn del tercer levedo. PeXe ssdimentarlae, centrifugamos esta aoluoibn a 650 g durante cinco

minutos II 4PC. beguldemente las oblulas se resuspendieron e" Un

tampbn hipotbnico de sacarosa 0,067 M e” Tris Cl" 5 104 de pH 8,

se inoubaron duranta 10 minutos en un bafio de hielo y se lisaron

por adiclbn de& detergente Nonidet P-40 (Merck), LI una

concentracibn final del 1\, que ee de,6 ectuet durante 10 minutos

a OPC. Pere recuperar le isotonicidad del medio, se afíadio 117

del "cl"me" total de eeoeroee 64t en Tris ClH 0,4H de pH 8. LOS

nboleos celulares se eliminaron por centrifugacibn a 1000 g

durante 10 minutos, tras lo cual el sobrenadante (fraccibn

citoplasmática) Be tretb con EDTA Iwl4, 2-narcaptcetanol o,05n y

ClNa 6,51[.

Tree IS minutos de inoubecibn e temperstura ambiente, la

mezcla II. o.ntrifugb a 100.000 g durante una hora e 4QC sobre

un colahbn de sacarosa el 20% en Tris CIR 5Om!! de pH 8. La

fraocibn cbtenida por encima de le eecerose, se utilirb como antígeno positivo pare la t6anica.(Poto nn 5)

A la. 'vez y en le.8 mismas oondioiones~ gue preparamos el

ant1gano positivo, realiramos Ie pleparación del antlgeno

negativo, utilizando la misma linea celular, pero sin infectar.

El tratamiento utilizado con estae oálules, es idbntico el

realizado co" le, oblulaa infectada&, reco+ndo en la bltima

fase el mobranadsnte del colchón de sa.carosa el 701 y

utilizhndolo como antigeno negativo.

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"na n"ltiplicIdad de infecciõn (m.d.i.) de 10. TZXS dos horas de

absorci6" del VirUS a 37QC Y "na atn6sfera de 5k de Co,, S=

m,adisro" ~OO,‘l/po~ill~ de medio HM s"plamentado con 2% de BYBTO

fetal de ternera.

Tras dos horas de incubacibn õ 37PC y una atmbstera de 5% de

co,, so rstir6 el medio de marcaje, lavando a continuacifin c"atro

WCBS PO,' pOCill0 COI, íO!~l,pWillo de PBS-esteril. ""a YBZ

realizado Bato, afmdimos 4O,‘l/pocillo de solucibn de rotUI?, y

ho,ac.qeniZmos recogiendo todo el volumsn sn un tubo apFadort.

Por dltlmo SO cargo "" gel al 17% de acrilanida con el fin de

estudiar 1s cin4tica de apsricibn de las protsinas vlricas. El

marcaje y procesamiento de las o¡Slules sin infectar (controles),

se rsalir6 de forma similar a la utilizada en c4lulas infectadas.

II.9.I CON

El contaje de la radiactividad existente en las diferentes

wsstras marcadas con'%-metionina, SB datamin6, afiadiendo a un

"clusen conocido de la m"Bstra deseada. 2,s ml del lfymido de

oentellso. Las ri"estrrm asi preparadas on vlalari da centelleo.

BB introdujeron an un contador de csntslleo de radiaciones 6 para

0" 1actura.

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(~m?mmlA), CC" las siguientes caracteriaricaal

l ce1 - hpelmzsdor ----- 20 mA,PO ” ( 1 hora l ce.1 - separador ------- ,o M,lrJcl ” ,

,

bsapuds de la transferencia, loa filtros fueron cortados an

tiras da 0,s cm y mantenidas a tsnpsratura ambiente, hasta

r.aliaar las lnmuncrreaccícnoe con los dlfsrsntea sueros.

~1 ndnero total de s~srcs utlliaados para (IBte estudio, fu6

de 101. Zstw suarcs fueron truwpoìtadoa desde BU lugar de

criganal laboratorio, B” contenedores refrigerados yhenóticcs,

en un medio de trsnsporte rhpido, recepcionbndolos LI las 21

horas.

las BUBTCI~ controles positivos, los obtuvimos de un brota de

Rlnoneu0onitia equina, producido en Hospitallet da

Llohregat(Barcelona) en al ano 1987, de animales con slndrome

respiratorio y cuadro paralitico, en au fase aguda.

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§.l

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ELISA INDIRECT’O

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ELISA INDIRECTO JEREZ DE LA FRONT. (CADIZ)

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c RACtON DE VALORES POR ELISA IF(DIRECTO SEGUN ACTITUD

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ELISA INDIRECTO Gxx?Dovn.LA REAL-PALENCIA

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ELISA INDIRECTO JEtw DE LA FRONT. (CADIU

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boN 0s w.u?REs POFI ELISA tF4?MKTO SEGUN ACTITUD

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ELISA INDIRECTO LORE-TOKI (SSESASTIAN)

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ELISA INDIRECTO ZARAGOZA

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COMPARACION DE VALORES POR ELISA INDIRECTO SEQUN ACTITUD

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CONTROL POSITIVO

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0.2

/ .-

--nu /

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IV — DXBCUBION

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22

IV—l SITUACION DE LA RINONEtJI4ONITIS EqUINA EN }2SPAIIA

La Rinoneunonitis equina es una enfermedad extendida por todo

el inundo, pero controlada en la mayoría de los países, sobre todo

de la CE. En España, debido a la falta de buenas técnicas de

diagnóstico que nos pudieran ofrecer una situación

epizcotiológica de la enfermedad, así como la falta de estudio

de factores que pudieran tener ralación con ella, hace que se

desconozca su incidencia y localización, apareciendo

esporádicamente brotes en sus distintas manifestaciones.

En este trabajo, hemos tratado de cubrir este espacio vacio

anteriormente citado, estudiando los posibles factores que

pudieran influir en el desarrollo de la enfermedad, así cono

poniendo a punto, un Elisa indirecto y un Inunoblotting, que

fueran lo suficientemente rápidos y sensibles como para poder

llevar a cabo estudios serológicos masivos.

Hemos estudiado animales de diferentes regiones de Espafla y

de diversas características, las cuales hemos tenido en cuenta

a la hora de valorar el trabajo. Estas características, son: el

clima, la edad, el peso, el sexo, la raza y las condiciones de

habitabilidad y que al igual que Campbell y Stiaddert(1983),

creemos que pueden tener gran importancia en el desarrollo de la

enfermedad.

Los resultados serológicos obtenidos en este trabajo, nos han

llevado a pensar, que la incidencia de la enfermedad en nuestro

país es muy alta, ya que en la mayoría de los estudios

serológicos realizados han sido positivos, observando anticuerpos

frente a la enfermedad.

El hecho de haber realizado tres períodos de muestreo, en

tiempos diferentes, nos ha permitido conocer la posible evolución

de los anticuerpos y de las distintas formas clLnicas. Durantetodo el trabajo, no se presentó ninguna manifestación clínica,

pero se mantuvieron los niveles de anticuerpos detectados por

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uElisa indirecto e Imnunoblotting, indicAndonOs que la mayoría de

los animales estudiados, ha tenido contacto con el virus.

Esto pone de manlf testo, el riesgo que potencialmente eyiste

en nuestro país, de que se produzca una reactivacién de la

enfermedad,ya que el número tan elevadode casos asintomtticos

crónicos. hace que en cuanto se modifiquen algunas de lascaracteristicasespecíficas y ambientalesestudiadasen estosanimales, pueda desencadenarse,algunas de las distintasmanifestacionespatológicasde esta enfermedad.

¡frs ~.nMOnfInICA5 ESTUDIADAS

* l&especto a las característicasdel CLIMA,RAZA,SEXO Y PESO, no

hemos apreciado ninguna variación significativa, que pudiera

relacionarse con el desarrollo de la enfermedad. Ya que animales

con diferencias en estas características, mantienen valores

similares de niveles de anticuerpos, tanto por Elisa como por

Imnunoblotting.

* No ocurre lo mismo con la EDAD, ya que hemos apreciado

variabilidad en los resultados serológicos, ausentandoel nivel

de positividad por le general, con la misma. Lo que nos sugiere,que al ausentar la edad, aumenta la posibilidad de contagio. Un

hecho que nos llama la atención en algunos sementalesadultos,en la disminución de los indices de anticuerpos.

* Normalmente en los potros, los valores que hemos obtenido en

los sueros de la tercera muestra, suelen ser los sim elevados,como me aprecia en las gráficas n’l y n

13, de las localidades de

Cordovilla la leal <Palencia> y Jerez de la Frontera <Cadiz). No

obstante, de estas dos localidades, los potros de Cordivilla la

Real (Palencia),tienen valoressuperioresa los de Jerez. Esto

puede ser debido, a que las yeguasde cordovilla la Real, estinvacunfls de Rir.oneumonitis equina.

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99

También se aprecia que el potro ntZ de cordovilla la Real.

presenta un valor en Su tercera muestra de 1,316, próximo al dado

al control positivo (1,587>. Esto puede ser debido a que es unode los de mayor edad estudiados en esa zona <2 años).

Otro aspecto significativo, es lo que ocurre con los potros

de Lore — Toki (San sebastian), debido a que su tercera muestraes la que presenta los valores más bajos, como se demuestra en

el gráfico n92, pudiendo esto deberse a una ligera infección con

cuadro clínico poco manifiesto.

* En las yeguas. los valores obtenidos en Cordovilla la Real

<Palencia>, 505 muy altos e incluso algunocomo el n99, está porencima al dado para el control positivo. Esto es debido a que

estos animales han sido vacunados en fechas próximas a la

recogida de muestras. No obstante, apreciamos en el gráfico fl04,que los valores de las tres muestrasde esta localidad, están

bastantepróximos, a excepciónde las yeguas nTMB y nOé, cuyosvalores en suS primeras muestras, fué inferior a los valoree delas otras dos. También observamoscome las yeguasn*lO Y fl0 11tienen unos valores muy bajos, a pesar de estar vacunadas deRinoneusonitis equina. Esto creemos que puede ser debido, a quela vacunano les hayaproducido una buenarespuesta.

En las yeguasde Jerez de la Frontera (Cadiz>, vemos en lagráfica nOS, come los valores obtenidosse manifiestanen formade dientes de sierra, entre los valores dadosa los controlespositivo y negativo. Esta variabilidad, puede ser debida a las

distintas formas de respuestade anticuerpos observadaen lavacunación, frente a esta enfermedad(Dutta y Sbipley 1975>.

Nt~ obstante, en la figura ~O3, se aprecia que hay pocadiferencia de valores en las yeguas. enús las localidadesestudiadas,apesarde estar las yeguas de Cordivilla la Real(Palencia) vacunadasde Rinoneumonitisequina. La explicación aesto, debe ser relacionadacon una respuestainmune pobre a ¡avacuna de estos animales.

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loo

• En los sementales, los valores de Elisa obtenidos según las

gráficas nO6, 7, 8 y 9. manifiestan que la tercera muestra por

1* general, alcanza valores intermedios o bajos, respecto a las

otras dos muestras tesadas. Quitas esto pudiera ser comoconsecuenciaa qn tuvieran un cuadroclínico no muy manifiestoy estánen procesode recuperación.

Les sementalesde Alcala de Henares (Hadrid>, son los quetienen valoresmás elevados,ya que sus tomasde muestra fueronrealizadasen fechaspróximasa la vacunaciónde Rinoneumoflitilequina. Los sementales de las otras regiones, presentan valores

en dientes de sierra, entre los valores dados a los controles

positivo y negativo, creyendo que es por el mismo motivo que en

las yeguas.

* RespectO al suero de los animales vacunados, no hemosapreciado ninguna reacción cruzada con nuestro antígeno, a

excepción lógica de los vacunados da Rinoneumonitis equina, que

evidentemente aumentan sus valores de anticuerpos, en eldesarrollo de las mismas. Lo cual demuestra, que tanto elantígeno utilizado, como los métodos puestos a punto, son lo

suficientemente específicos como para no presentar reaccionescruzadas con el antígeno de Tétanos e Influenza equina.

* Por último, las CONDICIONES DEHIGIENE y HABITABILIDAD,nO han

influido en nuestro caso, ya que los locales en donde seencontraban los animales estudiados, estaban en buenascondisienes.

Ente punto es Importante, ya que una de las vías de contagiode la enfermedad, es por contacto, bien directo o ambiental.pudiendo influir en su desarrollo,

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101

Tv—a vlLoRAOTOfl DE LAS TECHICAS DE TRABAJO

La puesta a punto de las técnicas de Elisa indirecto e

~5~unoblottiflq, ha sido otro de los objetivos de estetrabajo ynos ha permitido realizar el seguimientode la enfermedad,ennuestro país.

Una cosa a tener ancuenta,es el control positivo utilizadoen el estudio, ya que se obtuvo de animales que presentaban un

cuadro clínico respiratorio y nervioso, en fase aguda. Por lotanto, se podría decir que no es válido como control paraanimales, que padecierano hubieran padecido, Rinoneumoflitisequina con síndrome abortivo. No obstante, al igual que Alíen(1983>, creemos,que si hubieramosestadoanteun casode cuadroclínico abortivo,lO hubieramos detectado igualmente, ya quecompartimoscon los anteriores autores citados, la idea de quela variación existenteentre los subtipos 1 y 4, esaparentementefuncional. También, compartimos la opinión de Alíen (1983) y

Studdret (1984>, de que el virus productorde todos los cuadrosclínicos es el mismo, pero, dependiendode donde evolucione,presentará un cuadro clínico diferente.

* La técnica de ELISA flWTkECTO, la evaluamosrespecto a laseroneutralitaclóui, que es la técnica de referencia utilizada en

la actualidad para el diagnóstico de esta enfermedad. Laseroneutralización, es una técnica de facil manejo, pero deprocesamiento muy largo y no de muy alta sensibilidad, ya que

nos valora solamentela aparición de anticuerposneutralizantes<Vulcano y col 1988). No obstante, debido a la cinética deaparición de los anticuerposneutralizantes, algo tardía en estaenfermedad, normalmente es necesario realizar pruebas deseroconversión,para ser mucho más objetivo a la hora de valorar

un análisis.

La técnica del Elisa indirecto es más sensible y rápida quela seroneutralización (Vulcano y col. 1958>, pero quizás la

especificidad de Elisa esté ligada al nodo de preparar el.

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antígeno (Seula y col. 1982>, aunqueen nuestro caso, no hemosencontradorecciones cruzadas contra la vacuna de Tétanos eini luenza.

No podemosdiferenciar por Elisa, los anticuerposvacunales,de los producidos por la enfermedad, ya que la vacuna utilizadase realiza con vtrus vivo atenuado.Así, valores superiores al

control del positivo, tendríamos que ver si el animal está o novacunado de Rinoneumonitis equina, y si está, cuando se realizó.

En esteultimo case, es oportuno repetir la prueba con 25 díasde intsrnlo.

El amplio abanico de valores obtenidos en los resultados,todos comprendidosen el rango marcado por los valores delcontrol negativo y positivo, son debidos, a las diversassituaciones que el animal se ha encontrado a lo largo de su vida,entre las que se encuentran, lugares de estancia, proximidad a

animalesafectadospor la enfermedad o vacunados y condiciones

de higiene y habitabilidad.

* 51 TMl(flOELOflING, presenta la gran ventaja de su altaespecificidad, al definirnos de una manera clara la situación delas proteínas inmunoreactivas, así como de localizar sus pesos

moleculares, para poderlos comparar con otras proteínasde pesos

moleculares conocidos.

En maestro trabajo besos distingudo 12 proteínas antiqénicas

del EUV—l, las cuales tienen pesos moleculares parecidos a los

descritos por Shlmizu y col.(1989>, aunque este autor hace&lmsión solanenta a .11 proteínas antigénicas, dejando la

pasibilidad que hubiera alguna más.

Minales vacunados con la misma vacuna de Rinoneumonitis

equina en Diciembre de 1985, presentan dos proteínasimmu*wrsactivas más (18,8 1<4 y 23 lCd), que los vacunados en

flvi,abre de 1988. Esto nos hace pensar, que esas dos proteínasantiglalcas, son ee las primerasen ser bloqueadaspor el sistema

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inmune,

sin embargo la diferencia que apreciamos entre las proteimasde inmunoreacción de un animal enfermo y un animal vacunado, se

encuentraen la aparición en el enfermode las proteínascuyospesos moleculares son: ll,SKd, 14,SICd, 33Kd y aveces la de 230¡cd.

Estas proteínas, son unas excelentes candidatas, como indicativas

para dar un diagnóstico, diferenciando vacunación de enfermedad,

aunque un mayor numero de pruebasse deberían realizar, parapoder comprobarestehecho.

Todas las proteínas inmunoreactivas,son de aparición tardíaen la infección, siendo la primera de ellas, la de 23OKd a las

12 horas post—infección (h.p.i.>, la de 53Xd a las 20 h.p.i. ylas de il,8K~i y 14,8Kd a las 28 h.p.i..

En los animales que no padecen cuadro clínico, pero tienenanticuerpos frente al virus, aparecen menos proteínas

inaunoreactivasqueen los vacunados• Otra de las diferenciasquehemos visto, son las proteínas iiuáunoteactivasque no aparecenen los animales sin cuadro clínico y si en los animalesvacunados, Estas son las de pesos moleculares de l8,ECd y 79,53<4.

El Zmmunoblotting, es una excelente técnica para estudiar loscasos dudosos que por la técnica Elisa puedan surjir, ya que dada

su enorme especifIcidad resuelve las dudas. No es sin embargo una

técnica recomendada para utilizarla a gran escala, debido a loengorroso de su elaboración, aunque no complicado. Por esoparael estudio de grandespoblaciones,recomendamoslas técnicas deprocesamientorápido y sensibles, como es el Elisa, quedando el

Immunoblotting para casos de comprobación dudosa, como se ha

recomendadoo para el estudio de pocosanimales.

Es también importante destacar que el suero control positivoutilizado en este trabajo, procedede animalescon enfermedadaguda, presentandovalores por encima de los valores positivos

medios, obtenidos en nuestro estudio serológico, ya que lospositivos encontrados por Elisa indirecto e Imsunoblettinq.

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procedan de anisales asintosáticos. Quino, para realizarestudios serológicos masivos, y ante la experiencia de estetrabajo, seria recomendableincorporar como control positivo,valores de estos últimos animales, ya que se daría, una imagenmás real de la situación epizootioloqia.

Finalmente resaltar que en el estudio realizado, hemos podido

conprobar que la incidencia de la enfermedad en su manifeetaci¿n

clínica, es practicaisente inexistente, no así ocurre en su forma

serológica, ya que en anisales adultos es bastante manifiesta,

entontrandonos un gran número de animales, seropositivos por

Elisa indirecto e Imzunoblotting.

Ante estos resultados, seria recomendable hacer controles

periódicos de estos animales, por ser posibles fuentes de

infección y transmisiónde la enfermedad,ya que la falta de estacontrol, pueda llevar a la aparición exporádicamenteen nuestropaís de algún caso, con las consiguientespórdidas económicasysanitArias. Por eso. recomendamosrealizar campaft.sde vacunaciónen les animales de mayor riesgo, como son los animales jóvenes

y yeguas, puesto que hemos comprobado que la mayoría de lapoblaoión equina española, está sin vacunar.

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los

Y - CORCLU8XOIIU

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1, No se han encontrado diferencias significativas, respecto al

clima, sexo, rata y habitabilidad, en cuanto a la distribuciónserológica y/o clínica de la Rinoneumonitis equina en España.

2. Respecto a la edad, se ha observado que los animales adultos

no vacunados de Rinoneumonitis equina, presentan anticuerposespecíficos frenta al ElfV—l, detectados por las distintas

técnicas empleadas en el estudio ( SN., ELISA INDIRECTO e

II4IIJNOBWTTING)

3. Se ha puesto a punto, la técnica de Elisa indirecto, para la

detección de anticuerpos de Rinoneumonitis equina, presentando

unos resultados de sensibilidad y especificidad con relación a

la Saroneutralización del 100% y 97,9%, respectivamente.

4. Se ha puesto a punto, la técnica de Iwmunoblotting, para ladetección de anticuerpos de Rinoneumonitis equina, presentando

unos indices de sensibilidad y especificidad, comparables a los

obtenidos por El¿n indirecto,

5. En el Imsunoblotting, las proteínas de peso molecular de

11.8 lCd, 14,8 lCd y 33 lCd, se presentan como las más

representativas, para establecer un diagnóstico de Rinoneumonitis

equina por estemétodo.

6. El estudio serolóqico realizado, demuestra que laseropositividadfrente al virus EHV—l en animalesno vacunados,está muy extendida en nuestro país.

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107

VI — DIBLIOGRAPIL

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