66
44 10. Composición de medios de cultivo utilizados Todos los medios de cultivo y soluciones stock se esterilizan a 120 ºC durante 20 minutos Medio YMA modificado Medio original de Vincent, 1975; Ferrera Cerrato et al., 1993. (ELMARC) K 2 HPO 4 0,655 g MgSO 4 .7H 2 O 0,2 g NaCl 0,1 g Manitol 2,5 g Sacarosa 7,5 g Extracto de levadura 0,5 g Agar 15 g Soluc. Rojo congo * 1 ml pH 6.5 - 6.8 Agua destilada 1000 ml * Rojo congo 1 g Agua destilada 400 ml En los cultivos líquidos se emplea el mismo medio sin la solución de rojo congo.

10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

  • Upload
    others

  • View
    36

  • Download
    0

Embed Size (px)

Citation preview

Page 1: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

44  

10. Composición de medios de cultivo utilizados Todos los medios de cultivo y soluciones stock se esterilizan a 120 ºC durante 20 minutos Medio YMA modificado Medio original de Vincent, 1975; Ferrera Cerrato et al., 1993. (ELMARC)

K2HPO4 0,655 g

MgSO4.7H2O 0,2 g

NaCl 0,1 g

Manitol 2,5 g

Sacarosa 7,5 g

Extracto de levadura 0,5 g

Agar 15 g

Soluc. Rojo congo * 1 ml

pH 6.5 - 6.8

Agua destilada 1000 ml

* Rojo congo 1 g

Agua destilada 400 ml

En los cultivos líquidos se emplea el mismo medio sin la solución de rojo congo.

Page 2: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

45  

Medio glucosa peptona agar (GPA) Ferrera Cerrato et al., 1993 Glucosa 10 g

Peptona de carne 5 g

Púrpura de Bromocresol* 10 ml

Agar 15 g

pH 7.0

* Púrpura de Bromocresol 0.1% p/v

Agua destilada 1000 ml

Medio Triptona – Extracto de levadura (TY) (Beringer, 1974) Bacto-Tryptona 5g

Extracto de levadura 3g

CaCl2. 2H2O 0,87g

Agar 15g

pH 6.7

Agua destilada 1000 ml

Medio M9 (Miller, 1972) Na.2HPO4 5,8 g

KH2PO4 3,0 g

NaCl 0,5 g

*NH4Cl 1,0 g

Agar 15 g

pH 6.7- 6.8

Agua destilada 1000 ml

* Se añade solo para probar fuentes carbonadas

Page 3: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

46  

Soluciones que se preparan por separado y esterilizadas a 120ºC por 20 minutos Compuesto Stock Volumen para 100ml MgSO4 1mM 6,05mg/25ml 50,15µl/100ml

Biotina 0,5µg/ml 10mg/25ml 125µl/100ml

**Sacarosa 0,2% 10g/150ml 1ml/100ml

** Se añade solo para probar fuentes nitrogenadas

Medio YM modificado para fuentes carbonadas (Marquina, 2006) K2HPO4 0,655g

MgSO4.7H2O 0,2g

NaCl 0,1g

NH4NO3 * 0,1g

Azul de bromotimol -

Agar -

Manitol ** 9g

***Fuente carbonada 0,1%

pH 6.7- 6.8

Agua destilada 1000 ml

* Se incorpora para probar fuentes carbonadas

** Se incorpora para probar fuentes nitrogenadas

*** Se incorpora al medio esterilizado por filtración

Page 4: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

47  

Solución Hoagland modificada (Fuente: Eipsten 1972 citado por Taiz y Zeiger, 2002)

Macronutrientes Concentración de sol. Stock Volumen de sol. stock

(g/L) (ml/L)

KNO3 101,10 6

Ca(NO3)2 236,10 4

NH4H2PO4 115,8 2

MgSO4.7H2O 246,49 1

CaCl2.2H2O* 58,9 10

KH2PO4* 54,4 5

KCl* 7,864 2

* Se agregan solo para sustituir las fuentes de Nitrógeno

Micronutrientes

CuSO4.5H2O 0,062 2

ZnSO4.7H2O 0,288 2

NaMoO4.2H2O 0,107 1

MnCl.2H2O 0,396 1

H3BO3 0,773 2

FeSO4.7H2O 0,557 1

Na2EDTA.2H2O 0,745 1

pH 6,5 - 6,8

Los macronutrientes se agregan al momento de enrazar, para evitar su precipitación

en el medio.

 

 

Page 5: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

48  

RESULTADOS Y DISCUSIÓN 1. Aislamiento y purificación de cepas rizobiales a partir de suelos tratados con y sin carbamatos

1.1 Captura de rizobios a partir del suelo empleando como cultivo trampa plantas de Phaseolus vulgars L. y Macroptilium lathyroides L. En el ensayo de captura de rizobios a partir del suelo cultivado con Solanum

tuberosum L. (papa), se observó al cabo de 30 días, la formación de 10 nódulos en

total de coloración blanca en 2 de las 5 plantas de P. vulgaris L. indicando una

distribución heterogénea de la población rizobial en las muestras de suelo

recolectadas (Anexo 4), situación similar que se observó en Macroptilium lathyroides

L., leguminosa utilizada también como cultivo trampa. Estas leguminosas son

huéspedes promiscuos de amplio espectro para las bacterias rizobiales (Bromfield y

Barran, 1990; Michiels et al., 1998). En el caso de P. vulgaris, se conoce que puede

ser nodulada por varios géneros rizobiales, aunque no siempre son nódulos efectivos

en cuanto a la fijación y puede mostrar un grado de preferencia por ciertos rizobios

(Pacovsky et al. 1984; Aguilar et al. 2001). Los resultados fueron poco alentadores

en la captura efectuada en el suelo cultivado con Allium sativum L. ya que se formó

una sola estructura similar a un nódulo de 1 mm de diámetro (que pudo haber sido

un nódulo incipiente, el cual no concretó su formación) en una sola planta en ambos

cultivos trampa.

En el suelo con vegetación natural (no cultivado) fueron negativos los resultados, es

decir no se formaron nódulos en los cultivos trampa, por lo tanto este suelo fue

descartado eligiendo posteriormente como control los rizobios aislados de nódulos de

plantas de Vicia faba L. (Anexo 4) cultivada en la parcela cercana que no había sido

tratada con carbamato. El hecho de no formarse nódulos en el ensayo de captura

del suelo con vegetación natural y no cultivado, significa que la población rizobial es

muy baja debido probablemente a la ausencia de leguminosas como plantas

huésped. Además la densidad poblacional rizobial puede variar enormemente en

Page 6: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

49  

cuestión de metros, que para una bacteria es una distancia muy grande y está sujeta

a cambios por ejemplo de pH, humedad, exposición al sol, contenido de materia

orgánica etc, los cuales pueden determinar un ambiente muy diverso para los

rizobios en una distancia muy corta (Lodeiro et al., 2003).

Con la referencia de estos resultados se hizo un análisis de suelos a las parcelas

cultivadas con S. tuberosum L. y A. sativum L. (Tabla 12), en el Laboratorio de

Suelos de la Escuela de Geografía de la Facultad de Ciencias Forestales y

Ambientales de la Universidad de Los Andes, para verificar si la diferencia de las

respuestas fue debida a las diferencias en las características fisicoquímicas de los

suelos.

Tabla 12. Análisis de suelos de las parcelas cultivadas con Solanum tuberosum L. y

Allium sativum L.

Nombre

Granulometría

pH

agua 1 : 2

C.O.

M.O.

Nitrógeno

Calcio (meq/ 100g)

Relación C/N (%) Clase

textural

(%) arena arcilla

limo

Suelo (papa)

72

12

16

Fa

5.63

1.78

3.06

0.13

2,53

13.64

Suelo (ajo)

62

16

22

Fa

5.11

1.52

2.63

0.13

1,85

11.64

Los resultados mostrados en la Tabla 12 no reflejan una diferencia en las

concentraciones de nitrógeno en ambos suelos que pueda explicar la inhibición de la

simbiosis en las leguminosas- trampa sembradas en suelos cultivados con A.

sativum L. (ajo), por posibles excesos de fertilizantes nitrogenados aplicados en esa

parcela. Sin embargo, en cuanto al pH determinado por la relación 1:2 proporción

suelo : agua en este laboratorio, y según la interpretación de Malagón (1982) los

suelos de pH ácido están en el rango de 5.0 - 5.5 y correspondería al suelo donde

fue cultivado A. sativum L. (ajo), y los suelos de pH ligeramente ácido se encuentran

entre el rango de 5.5 – 6.5 en donde estaría ubicado el suelo donde fue cultivado con

S. tuberosum L. (papa)., podría proporcionar la diferencia entre la población rizobial

Page 7: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

50  

de ambos suelos, pero esto dependiendo de las especies de rizobios que se

encuentren en esa zona, debido a que la tolerancia de los rizobios a la acidez es muy

variada y depende de la especie y aún de la cepa.

En general se considera que los rizobios de crecimiento rápido son menos tolerantes

a la acidez que los de crecimiento lento (Graham et al., 1994) y la infección y la

nodulación se reduce en suelos ácidos, variando las respuestas dependiendo de las

especies leguminosas y los rizobios (Gil, Martínez, 1994). De hecho Evans et al.

(1980) encontraron que en el caso de Pisum sativum, la nodulación resultó 10 veces

más susceptible a la acidez que la propia multiplicación de los rizobios o el

crecimiento de la planta. Además el bajo pH puede conducir a los rizobios a la

muerte, detener su metabolismo, o generar cambios mucho más moderados

dependiendo del nivel de acidez, por ejemplo en R. leguminosarum se ha descrito la

pérdida de movilidad pero no de crecimiento a pH 5.0 (Glenn y Dilworth, 1994). En el

laboratorio se determinó la tolerancia a pH ácidos de los aislados ES1 y EV1, y éstos

crecieron en el rango de 6.0 a 7.0, lo que permite inferir que las bacterias obtenidas

no son resistentes a la acidez y que las que se capturaron probablemente eran

provenientes de una población que se encontraba en un microambiente donde las

condiciones del suelo tales como pH, no eran tan ácidos, que le permitió infectar al

huésped.

La diferente nodulación en ambos suelos también podría deberse a la concentración

de calcio (Ca), que según Malagón (1982) serían suelos muy pobres en este

elemento (0 – 5%), ya que este elemento juega un papel importante en diversos

procesos bacterianos como quimiotaxis, virulencia, transporte de azúcares y

proteínas, reacciones de fosforilación, estabilización de los lipopolisacáridos (LPS) de

la membrana externa y la activación entre enzimas entre otros, y en el caso de los

rizobios es conocido que el calcio afecta su crecimiento, supervivencia, adsorción a

los pelos radicales del hospedador, y su capacidad de nodulación (Caetano - Anollés

et al. 1989; Munns, 1970). La adsorción de rizobios a los pelos radicales podría estar

mediada por rhicadesina, una proteína cuyo anclaje a la superficie bacteriana es

Page 8: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

51  

dependiente de la presencia de Ca (Smit et al. 1991). Estas observaciones son

consistentes con el uso de la práctica común del encalado de suelos ácidos que,

además de corregir el pH, ejerce un efecto positivo sobre la supervivencia y

desempeño simbiótico de los rizobios. De este modo, en el suelo cultivado con A.

sativum L. (ajo), la posibilidad de capturar rizobios a través del cultivo trampa sería

menor que en el suelo cultivado con S. tuberosum L. (papa), debido a que la cantidad

de Ca hallada en ese suelo fue menor.

Por otra parte se puede inferir que otras condiciones físico químicas del suelo, tales

como las bajas temperaturas y contenido de materia orgánica que es medio (2 – 4%)

según Gilabert et al. (1990) entre otras, no serían las más adecuados para permitir la

sobrevivencia de estos microsimbiontes en el suelo, y podrían contribuir con la

heterogeneidad de la distribución de la población rizobial en estos suelos.

1.2 Aislamiento y purificación en medio YMAmrc y medio glucosa peptona agar (GPA) (Ferrera Cerrato et al., 1993)

Se obtuvieron 5 aislados rizobiales en principio:

• Dos provenientes del suelo cultivado con Solanum tuberosum L., tratados con

carbamatos, designados como ES1 y ES2.

• Dos del suelo cultivado con Allium sativum L., tratados con carbamatos,

indicados como EA1 y EA2.

• Uno de la planta de Vicia faba L. de suelos no tratados con carbamatos:

denominado EV1 (control).

Page 9: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

52  

1.2a.- Crecimiento en Medio YMAmrc Las colonias que originaron los aislados nodulares, presentaron abundante

crecimiento en el medio YMAmrc (Anexo 5), siendo estas de color blanco o

transparente, mucoides y de aspecto similar a las descritas para las colonias

rizobiales (CIAT, 1988).

1.2b.-Crecimiento en medio glucosa- peptona, púrpura de bromocresol (GPA) Los aislados ES1 y EV1 presentaron un escaso crecimiento en el medio glucosa -

peptona, púrpura de bromocresol, manteniéndose el color morado, características

que indican que se trata de bacterias rizobiales puras. En los demás aislados, ES2

del suelo de Solanum tuberosum L., EA1 y EA2 del suelo de Allium sativum L. se

obtuvo un abundante crecimiento y el indicador viró de color morado a amarillo

indicando la presencia de bacterias no rizobiales (Rodríguez y Ferrera– Cerrato,

1984).

2. Autenticación de los aislados en Macroptylium lathyroides L. y Phaseolus vulgaris L.

Se mantuvieron 30 días las plantas en el umbráculo, un tiempo aceptable para

permitir la nodulación y el reconocimiento de los rizobios, procediendo luego al

desmontaje y la toma de los resultados (Tabla 13).

Page 10: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

53  

Tabla 13. Autenticación de los aislados de los suelos y nódulos en Macroptylium lathyroides L. y Phaseolus vulgaris L.

Suelo

Nodulación Macroptylium lathyroides L.

Posición color Phaseolus vulgaris L.

Posición color

-Cultivado con S.tuberosum

L.(papa) Tratado con carbamatos

ES1: + ES2: -

Blancos y

marrones en todo el sistema

radical

ES1: + ES2: -

Blancos y marrones en todo el sistema radical

-Cultivado con A. sativum L. (ajo)

Tratado con carbamatos

EA1: - EA2: -

_

EA 1: - EA 2: -

_

-Cultivado con V. faba L.(haba) No tratado con

carbamatos

EV1: -

_

EV1: +

Blancos y en todo el sistema radical

+: Presencia de nódulos. - : Ausencia de nódulos De los aislados del suelo cultivado con S. tuberosum L. tratados con carbamatos,

resultó positiva la nodulación para el aislado ES1 en ambos hospedadores y ES2

negativa con ambas plantas. Los aislados del suelo cultivado con A. sativum L.

tratados con carbamatos no formaron nódulos con ambos hospedadores al igual que

el aislado ES2, por lo tanto, basándose en este resultado y por su crecimiento en el

ensayo de purificación en medio GPA se descarta que sean rizobios y que la

estructura similar a un nódulo obtenida en la captura de rizobios en el suelo cultivado

con A. sativum L. se podría considerar como un nódulo incipiente, como se propuso

anteriormente. El aislado de los nódulos de plantas de Vicia faba L. formó nódulos

con las plantas de P. vulgaris L. mientras que con las plantas de M. lathyroides L. no

presentó nodulación.

A pesar de que ambos cultivos han sido designados como hospedadores de amplio

rango hospedador (Bromfield y Barran 1990; Michiels, et al 1998) Odee et al., en

1996 sugirieron que P. vulgaris L. es nodulada por rizobios de rápido crecimiento (2-4

días para observar sus colonias) y Macropthylium atropurpureum por rizobios de

Page 11: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

54  

lento crecimiento (5-7 días para visualizar el crecimiento de sus colonias) (Matos-

Cuzcano et al., 2004), por ende se sugiere que M. lathyroides L. no es una planta

completamente no selectiva para la nodulación, como se obtuvo en los resultados de

Marquina (2006), en donde en la prueba de infectividad, Crotalaria sp, superó los

grados de infectividad presentados en el huésped M. lathyroides L. el cual no logró

establecer simbiosis con todos los 12 aislados ensayados.

Según estos resultados, se continuaron las demás pruebas solo con las bacterias

que mostraron nodulación; el aislado (ES1) del suelo cultivado con S. tuberosum L.

tratado con carbamatos y el aislado (EV1) proveniente de los nódulos de Vicia faba

L., cultivada en suelos no tratados con carbamatos. En la Tabla 14 se describen las

características de los rizobios que se obtuvieron de los aislados de nódulos

formados en la prueba de autenticación en plantas de Phaseolus vulgaris L. y

Macroptylium lathyroides L.

Tabla 14. Características de las colonias aisladas del suelo tratado con carbamatos

(Solanum tuberosum L.) y sin carbamatos (Vicia faba L.)

Suelo Morfología de las colonias Cultivado con Solanum tuberosum L. (papa), tratados con carbamatos

‐ ES1: forma irregular, color blanco lechoso, aspecto opaco-brillante borde liso, textura muy mucoide, elevación convexa. Diámetro de la colonia a las 48h 3mm.

Cultivado con Vicia faba L. (haba), no tratados con carbamatos

EV1: forma irregular, color transparente, borde liso, aspecto brillante- traslúcida, textura muy mucoide, elevación convexa. Diámetro de la colonia a las 48h 4mm.

Según las características macromorfológicas de las colonias de ambos rizobios se

puede sugerir que en base a la clasificación de los géneros rizobiales expuestos por

Marquina (2006), los dos aislados podrían pertenecer al género Rhizobium sp. Frank

1889.

Page 12: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

55  

3. Curvas de calibración del crecimiento de los aislados rizobiales ES1 y EV1. En la Figura 9 se observa que el aislado ES1 creciendo en un medio YMm líquido,

alcanza el orden 108 UFC/ml a una Densidad Óptica de 0.5 aproximadamente, a

comienzos de la fase exponencial, correspondiendo el mayor valor del título

bacteriano a 7.6 x 108 obtenido a una DO=1.0, justo al final de la fase exponencial.

Por lo tanto para los ensayos siguientes con el aislado ES1, no fue conveniente

elegir una DO inferior a 0,5 y superior a 1.0, ya que no se encontrarían dentro de la

fase exponencial de crecimiento.

Figura 9: Curva de calibración (UFC/ml Vs. D.O) en medio YMm para el aislado ES1. En la gráfica (Figura 10.) se observa que el aislado EV1 alcanza el orden 108 UFC/ml

a una Densidad Óptica de 0,4 aproximadamente, a comienzos de la fase

exponencial, correspondiendo el mayor valor del título bacteriano a 10x 108 obtenido

a una DO= 0,85, justo al final de la fase exponencial. Por lo tanto en los ensayos

posteriores realizados con el aislado EV1, no fue conveniente elegir una DO inferior a

0.4 y superior a 0.85.

01000020000300004000050000600007000080000

0,02 0,09 0,39 0,58 0,75 0,95 1,1 1,4

UFC/m

l 104

D.O (600nm)

ES1 en YMm

Page 13: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

56  

Figura 10. Curva de calibración (UFC/ml Vs. D.O) en medio YMm para el aislado EV1. 4. Prueba cualitativa de viabilidad de los aislados rizobiales en presencia de

carbamatos. Esta prueba fue cualitativa, de manera que los resultados de este ensayo fueron

determinantes para los demás experimentos, en consecuencia como se muestra en

las Tablas 15 y 17, los ensayos realizados con los aislados que no presentaron halo

de inhibición, se consideran resistentes a ese carbamato (Ferrera et al., 1993) y a las

que lo presentaron se les determinó el tamaño del halo de inhibición alrededor del

papel de filtro (Tablas 16 y 18) (Anexo 6).

0

20000

40000

60000

80000

100000

120000

0,02

0,04

0,14

0,21 0,5

0,58

0,75

0,85 1,1

UFC/m

l 104

D.O (600nm)

EV1 en YMm

Page 14: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

57  

Tabla 15. Prueba de viabilidad en presencia de carbamatos, del aislado rizobial (ES1) proveniente del suelo cultivado con Solanum tuberosum L. (tratado con agroquímicos)

Pesticida Crecimiento cualitativo

Diluciones del pesticida carbamato Original 1/2 1/4 1/6

Carbodan + ++ + + Dithane - - - - Previcur + ++ + +

Vondozeb - - - - Zineb + + + +

Control ++ ++:  Abundante crecimiento.    + :  Crecimiento           ‐ : No hubo crecimiento  Concentraciones de las diluciones Original; ½; ¼; 1/6  Carbodan (μl/100ml ): 165; 83; 41; 27.5. Dithane (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Previcur (μl/100ml ): 125; 62.5; 31.3; 20.8. Vondozeb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Zineb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041. Control (100ml )    Tabla 16. Tamaño del halo de inhibición (cm) de crecimiento celular alrededor

del papel filtro para el aislado ES1.

Pesticida Tamaño del halo de inhibición ( cm) Diluciones del pesticida carbamato

Original 1/2 1/4 1/6 Carbodan - - - - Dithane 2,5 1,5 1 1 Previcur - - - -

Vondozeb 2,2 1,2 1,1 0,8 Zineb - - - -

Control - - - -                                                        ‐ : No hubo halo de inhibición  Concentraciones de las diluciones Original; ½; ¼; 1/6  Carbodan (μl/100ml ): 165; 83; 41; 27.5. Dithane (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Previcur (μl/100ml ): 125; 62.5; 31.3; 20.8. Vondozeb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Zineb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041. Control (100ml )       

Page 15: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

58  

Tabla 17. Prueba de viabilidad en presencia de carbamatos, del aislado rizobial (EV1) proveniente de nódulos de Vicia faba L. cultivada en suelos sin tratamientos de agroquímicos.

Pesticida Crecimiento cualitativo

Diluciones del pesticida carbamato Original 1/2 1/4 1/6

Carbodan + ++ + + Dithane - - - - Previcur + ++ + +

Vondozeb - - - - Zineb + + + +

Control ++ ++: Abundante crecimiento. +: Crecimiento. - : No hubo crecimiento  Concentraciones de las diluciones Original; ½; ¼; 1/6  Carbodan (μl/100ml ): 165; 83; 41; 27.5. Dithane (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Previcur (μl/100ml ): 125; 62.5; 31.3; 20.8. Vondozeb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Zineb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041. Control (100ml )  

El aislado EV1 presentó crecimiento en el tratamiento con Zineb en todas sus

concentraciones, formando un pequeño halo de inhibición alrededor del papel filtro,

cuyas dimensiones se señalan en la (Tabla 18), sin embargo, no fue tomado en

cuenta este carbamato para elaborar la prueba cuantitativa de las curvas de

crecimiento, ya que en términos comparativos, el resultado no era similar al del

aislado ES1 (Tabla 16), pero si se consideró para la prueba de uso de fuentes

carbonadas y nitrogenadas y para el ensayo de la germinación de semillas de Vicia

faba L.

De acuerdo a estos resultados, los tratamientos con carbamatos, en los cuales los

aislados rizobiales presentaron abundante crecimiento fueron Carbodan ½ y

Previcur ½ y el control. En vista, que en los dos aislados EV1 y ES1, la respuesta de

crecimiento fue similar, esta apariencia fue discernida en las curvas de crecimiento y

el conteo viable (plaqueo).

Page 16: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

59  

Tabla 18. Tamaño del halo de inhibición del crecimiento celular alrededor del papel filtro para el aislado EV1.

Pesticida Tamaño del halo de inhibición ( cm) Diluciones del pesticida carbamato

Original 1/2 1/4 1/6 Carbodan - - - - Dithane 2,7 2,7 2 1,5 Previcur - - - -

Vondozeb 2,7 2,7 2,7 2,7 Zineb 1 0,5 0,5 0,5

Control - - - - - : No hubo halo de inhibición  Concentraciones de las diluciones Original; ½; ¼; 1/6  Carbodan (μl/100ml ): 165; 83; 41; 27.5. Dithane (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Previcur (μl/100ml ): 125; 62.5; 31.3; 20.8. Vondozeb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041 Zineb (g/100ml ): 0.25; 0.125; 0.063; 0.041. Control (100ml ) 5. Prueba de utilización de carbamatos como única fuente carbonada y nitrogenada.

Basándose en la resistencia que tienen los rizobios ES1 y EV1 a los pesticidas

usados en la prueba de viabilidad cualitativa, se seleccionaron los carbamatos

Previcur, Carbodan y Zineb, por permitir el crecimiento de estos aislados

bacteriales. Por lo tanto, se realizó un ensayo para corroborar si los aislados

rizobiales eran capaces de emplear los 3 carbamatos como única fuente carbonada o

nitrogenada, demostrándose que los microsimbiontes ES1 y EV1 son incapaces de

metabolizarlos y utilizarlos como fuente de carbono y nitrógeno, ya que solo hubo

crecimiento en el control positivo de ambos aislados que contenía manitol y NH4NO3

como fuente de carbono y nitrógeno respectivamente. Los resultados se muestran

en las Tablas 19, 20, 21 y 22.

Page 17: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

60  

Tabla 19. Utilización de carbamatos como única fuente carbonada para el aislado ES1 proveniente del suelo cultivado con Solanum tuberosum L.

Fuente de carbono Crecimiento D.O (600nm) Carbodan - 0.03

Zineb - 0.02 Previcur - 0.02

Control positivo (manitol) + 1.0 Control negativo - 0.02

+ Crecimiento. - No hubo crecimiento Tabla 20. Utilización de carbamatos como única fuente nitrogenada para el

aislado ES1 proveniente del suelo cultivado con Solanum tuberosum L.

Fuente de nitrógeno Crecimiento D.O (600nm) Carbodan - 0.02

Zineb - 0.02 Previcur - 0.05

Control positivo (manitol) + 1.0 Control negativo - 0.02

+ Crecimiento. - No hubo crecimiento Tabla 21. Utilización de carbamatos como única fuente carbonada para el

aislado EV1 del suelo cultivado con Vicia faba L.

Fuente de carbono Crecimiento D.O (600nm) Carbodan - 0.02

Zineb - 0.02 Previcur - 0.02

Control positivo (manitol) + 1.0 Control negativo - 0.02

+ Crecimiento. - No hubo crecimiento Tabla 22. Utilización de carbamatos como única fuente nitrogenada para el

aislado EV1 del suelo cultivado con Vicia faba L.

Fuente de nitrógeno Crecimiento D.O (600nm) Carbodan - 0.02

Zineb - 0.02 Previcur - 0.02

Control positivo (manitol) + 1.0 Control negativo - 0.02

+ Crecimiento. - No hubo crecimiento

Page 18: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

61  

Con estos resultados se rechaza una de las hipótesis planteadas, ya que se

comprobó que estos aislados no son capaces de metabolizar estos carbamatos, al

no utilizarlos como fuentes de carbono ni de nitrógeno. Sin embargo, sí se conoce

que los utilizan varios géneros bacteriales, tales como: algunas cepas de

Pseudomonas sp. aisladas de suelos de jardín que son capaces de metabolizar el

carbaryl como fuente carbonada, demostrado por la medición fluorométrica de la

producción de 1- naphtol como resultado de la hidrólisis del Carbaryl (Larkin et al.,

1985, Chapalamadugu et al., 1991), Arthrobacter sp. cepa RC100 por Hayatsu et al.,

1999 y Rhodococcus sp. (NCIB 12038) reportada por Larkin et al., 1985., aisladas de

suelos tratados con carbaryl que degradan ese pesticida carbamato y los usan como

fuente carbonada, y en el caso de la NCIB también como fuente nitrogenada. De

igual manera Feng et al. (1997), quienes aislaron bacterias del género

Sphingomonas sp. cepa CF06 de suelos tratados con carbofurano y con la habilidad

de usar este carbamato como fuente de carbono y nitrógeno en la cual están

implicados los plásmidos pCF01–pCF05 de esa bacteria, y específicamente en el

género Rhizobium sp. la cepa AC100 sp aislada de suelos tratados con carbaryl

estudiada por Hashimoto et al., en el 2001, la cual es capaz de degradar este

carbamato, y usarlo como fuente de carbono.

Resultados similares fueron obtenidos por Castro (2008). Este estudio permitió

suponer la presencia de un cometabolismo en los aislados de suelos sometidos a

tratamiento agroquímico que no fueron capaces de utilizar el Acarin (la forma

comercial del acaricida Dicofol) como fuente carbonada, pero sí lo degradaron al

estar presente el glicerol como fuente de carbono más el acaricida.

Page 19: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

62  

6. Prueba cuantitativa de viabilidad de los aislados rizobiales en presencia de carbamatos. En la Figura 11 se observa el crecimiento (aumento de DO) del aislado ES1

proveniente de suelos tratados con carbamatos, en función del tiempo, 2 cultivos

rizobiales, uno tratado con Carbodan y el otro con Previcur, cada uno diluido a ½ de

la concentración original empleada en el campo, comparando con el control sin

agroquímico. Se observa una curva sigmoide típica del crecimiento celular

bacteriano, con la fase lag, que transcurre durante 6 horas aproximadamente para

todos los tratamientos. La fase exponencial de los cultivos que crecen en YMm +

Previcur ½ y YMm + Carbodan ½, presentaron mayor pendiente en relación al

control sin carbamatos en YMm, significando un crecimiento más apresurado, el cual

es más pronunciado en los cultivos que contiene Previcur, que alcanza la fase

estacionaria más rápidamente a las 29 h aproximadamente, seguido por el

tratamiento con Carbodan (31 h) y el cultivo sin carbamato (39 h).En todos los

tratamientos el aislado obtuvo un máximo de DO. = 1,45.

Figura 11. Curva de crecimiento del aislado ES1, proveniente del suelo tratados con carbamatos, cultivado con Solanum tuberosum L. (papa), creciendo en medio YMm en presencia de carbamatos. Las concentraciones ½ para Carbodan y Previcur corresponden a 12,45μl/15ml YMm y 9,3 μl/15ml YMm respectivamente.

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

1,4

1,6

0 6 11 14,5 18 23 29 35,5 45

Den

sida

d óp

tica (6

00nm

)

Tiempo (h)

ES1 en YMm

ES1 en YMm + Carbodan 1/2

ES1 en YMm + Previcur 1/2

Page 20: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

63  

Figura 12. Curva de crecimiento del aislado EV1, proveniente del suelo no tratado con carbamatos cultivado con Vicia faba L. (haba), creciendo en medio YMm en presencia de carbamatos. Las concentraciones ½ para Carbodan y Previcur corresponden a 12, 45μl/15ml YMm y 9,3 μl/15ml YMm respectivamente. En la Figura 12 se observa que el crecimiento del aislado EV1, proveniente del suelo

no tratado con carbamatos, presenta de igual manera que el aislado ES1 procedente

del suelo tratado con carbamatos, un comportamiento sigmoidal con la fase lac, más

breve aproximadamente 4 h en todos los tratamientos. La fase exponencial de los

cultivos que crecen en YMm + Previcur ½ y YMm + Carbodan ½, exhibieron la

misma pendiente, indicando que el crecimiento ocurre a la misma velocidad en

ambos tratamientos, pero son más acelerados en relación al control sin carbamatos

en YMm, alcanzando rápidamente entre las 9 y 10 h la fase estacionaria con una DO

máxima = a 0.52, que se mantiene durante el transcurso del experimento (60 h). Por

el contrario en el tratamiento sin carbamatos, la fase exponencial transcurre a menor

velocidad prolongándose hasta las 53 h, cuando alcanza la fase estacionaria con

una DO máxima de 1.1.

En la Figura 11 y 12 se observa una promoción del crecimiento de los dos aislados

ES1 y EV1, cuando son cultivados en un medio que les proporciona las fuentes de

carbono (manitol y sacarosa) y además tiene el carbamato, superando al

0

0,2

0,4

0,6

0,8

1

1,2

0 4 8 12 15 17 20 22 45 53

Den

sida

d óp

tica (6

00nm

)

Tiempo (h)

EV1 en YMm

EV1 en YMm + Carbodan 1/2

EV1 en YMm + Previcur 1/2

Page 21: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

64  

crecimiento rizobial del tratamiento control, que crece en presencia de las mismas

fuentes carbonadas sin carbamatos.

Es importante referirse a los resultados negativos que se obtuvieron en el ensayo de

los carbamatos como únicas fuentes carbonadas y nitrogenadas (Tablas 19, 20, 21 y

22), en donde no hubo crecimiento bacteriano, permitiendo sugerir que los aislados

EV1 y ES1, en presencia de las fuentes carbonadas (manitol y sacarosa) son capaces de biodegradar el Previcur (9,3μl/15ml YMm) y el Carbodan (12,45μl/15ml

YMm) en diferente medida, bajo un proceso denominado cometabolismo, definido

como la transformación de un compuesto llamado cosustrato, en presencia obligada

de un sustrato durante el crecimiento o por células en reposo en ausencia del

sustrato de crecimiento (Perry, 1979), el cual requiere agregar un factor iniciador del

crecimiento bacteriano que en este caso será las fuentes carbonadas, que induzcan

la producción de enzimas que puedan transformar estos compuestos carbamatos.

Resultados similares se han encontrado en bacterias del género Brevibacterium sp.,

en una investigación realizada por Luo et al. (2008), quienes detectaron el

cometabolismo del Bensulfuron-methyl (BSM) en presencia de varias fuentes de

carbono nitrógeno y fósforo, determinándose la mejor respuesta, usando el lactato

de sodio como fuente de carbono con un 79,5% de degradación del BSM.

En este trabajo se observó que el aislado ES1 presenta una resistencia a los

agroquímicos Previcur y Carbodan en una dilución correspondiente a ½ de la concentración empleada en el campo (9,3 μl/15ml YMm y 12,45μl/15ml YMm

respectivamente). El aislado EV1, se considera como un aislado más sensible a las

mismas concentraciones de estos carbamatos, pese a tener un crecimiento inicial

más acelerado en presencia de ellos, ya que hay un punto a una DO = 0.52, en

donde se está tornando tóxica la presencia del compuesto transformado o

cometabolizado, tal como se podrá evidenciar más adelante en el conteo viable.

Debido al número de repeticiones en esta prueba, se utilizó el análisis de

comparación de medidas repetidas para la prueba estadística, que permitiera

Page 22: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

65  

establecer, si había diferencias significativas entre los tratamientos dentro del mismo

aislado rizobial. Dicha prueba se hizo usando el programa computacional SPSS, el

cual arrojó en la prueba de Post hoc diferencias significativas a nivel 0,05 para el

aislado ES1 entre todos los tratamientos, y para el aislado EV1 diferencias

significativas entre el control y los dos tratamientos con carbamatos (Tabla 23 y 24

respectivamente).

Tabla 23. Comparaciones múltiples. Pruebas de post hoc (Curvas D.O/ Tiempo) para

ES1.

Tratamiento   (i) 

Tratamiento (j)   

Diferencia entre medias  (i‐j)  

Error típ.    

Significación    

Intervalo de confianza al 95% Límite inferior 

Límite superior 

Carbodan  Control Previcur 

,0998(*) ‐,1291(*) 

,02306 ,02306 

,023 ,011 

,0264 ‐,2025 

,1732 ‐,0557 

Control  Carbodan Previcur 

,1647(*) ‐,2289(*) 

,02306 ,02306 

,023 ,002 

‐,1732 ‐,3023 

‐,0264 ‐,1555 

Previcur  Carbodan Control 

,1291(*) ,2289(*) 

,02306 ,02306 

,011,002 

,0557 ,1555 

,2025 ,3023 

   Basado en las medias observadas. * La diferencia de medias es significativa al nivel ,05. Tabla 24. Comparaciones múltiples. Pruebas de post hoc (Curvas D.O/ Tiempo) para EV1.

Tratamiento (i) 

Tratamiento (j)   

Diferencia entre medias  (i‐j)  

Error típ.    

Significación    

Intervalo de confianza al 95% Límite inferior 

Límite superior 

Carbodan  Control Previcur 

‐,1647(*) ,0103 

,01375 ,01375 

,001 ,510 

‐,2085 ‐,0335 

‐,1210 ,0540 

Control  Carbodan Previcur 

,1647(*) ,1750(*) 

,01375 ,01375 

,001 ,001 

,1210 ,1312 

,2085 ,2188 

Previcur  Carbodan Control 

‐,0103 ‐,1750(*) 

,01375 ,01375 

,510 ,001 

‐,0540 ‐,2188 

,0335 ‐,1312 

Basado en las medias observadas. * La diferencia de medias es significativa al nivel ,05.

Page 23: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

66  

En las siguientes gráficas (Figuras 13 y 14) se muestra el conteo viable para ambos

aislados en medio YMm y con la adición a este medio de los carbamatos Carbodan y

Previcur en la dilución ½.

Figura 13. Unidades formadoras de colonias del aislado ES1, proveniente del suelo tratados con carbamatos y cultivado con Solanum tuberosum L. (papa), creciendo en medio YMm en presencia de carbamatos. Las concentraciones ½ para Carbodan y Previcur corresponden a 12,45μl/15ml YMm y 9,3 μl/15ml YMm respectivamente. Acorde con el comportamiento del aislado ES1 en la curva de crecimiento de la

Figura 11, y su correspondiente conteo viable, representado en la Figura 13, se

observa una promoción del crecimiento celular mayor en los tratamientos con

carbamatos que en el control, siendo el que contiene Previcur el que produjo un

mayor número de unidades formadoras de colonia por mililitro (UFC/ml). Estas

cantidades máximas fueron 14 x 108 a las 16,5 h en el tratamiento con Previcur, 11 x

108 a las 27 h con Carbodan y 7,6 x 108 a las 29 h con el control (YM). Así como el

Previcur promovió el incremento de la población bacteriana hasta aumentar incluso

de orden (109), en un corto tiempo a las 13,5 h aproximadamente, también disminuyó

bruscamente registrando valores más bajos (2,5 x 108) que el control a las 29 h,

justamente cuando este tratamiento obtuvo su máxima cantidad. Las fases de la

curva de crecimiento observables en la Figura 13 y 14 se corresponden a la fase lag,

exponencial y fase de muerte, en donde es importante destacar que la fase

estacionaria no es observable posiblemente debido a que el medio de crecimiento

0

20000

40000

60000

80000

100000

120000

140000

160000

0 4 11 13,5 15,5 18 23 29 33,5

UFC/m

l 104

Tiempo (h)

ES1 en YMm

ES1 en YMm + Carbodan 1/2

ES1 en YMm +  Previcur 1/2

Page 24: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

67  

usado (YMm) no es un medio completamente rico, en donde no hay tantos sustitutos

de las fuentes de carbono, que al finalizar la fase estacionaria disminuyen en el

medio y se produce la muerte celular por agotamiento de nutrientes.

Figura 14. Unidades formadoras de colonias del aislado EV1, proveniente del suelo no tratado con carbamatos, cultivado con Vicia faba L. (haba), creciendo en medio YMm en presencia de carbamatos. Las concentraciones ½ para Carbodan y Previcur corresponden a 12,45μl/15ml YM y 9,3 μl/15ml YM respectivamente. En la Figura 14 se muestra la curva de crecimiento (UFC/ml Vs. Tiempo) para el

aislado EV1. Observándose al final de la fase exponencial de los tratamientos con

carbamatos (correspondiente a la zona media de la fase exponencial del tratamiento

control) que el crecimiento celular se detiene y comienza a disminuir rápidamente (a

las 10 h), tanto para los tratamientos con Carbodan ½ como con Previcur ½, mientras

que en el medio YMm sin carbamato este aislado continúa creciendo hasta las 21h y

luego si comienza a decrecer su división celular. Los mayores valores de UFC/ml

obtenidos fueron 3,3 x 108 para Previcur, 4,5 x 108 para Carbodan y 10 x 108 para el

control, donde prácticamente se duplica el título bacteriano. De tal manera que se

observa un decaimiento del conteo viable al final de la fase exponencial para los

tratamientos con carbamatos, acorde con el resultado de la curva D.O Vs. Tiempo

(Figura 12), quedando evidenciado primeramente que el aislado EV1 es capaz de

0

20000

40000

60000

80000

100000

120000

0 2 4 6 8 10 14 15 19 21 45

UFC/m

l 104

Tiempo (h)

EV1 en YMm

EV1 en YMm + Carbodan 1/2

EV1 en YMm + Previcur 1/2

Page 25: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

68  

cometabolizar ambos carbamatos , debido al crecimiento acelerado que presentan

los cultivos rizobiales en medio YMm en presencia de los carbamatos y en segundo

lugar se puede sugerir que el compuesto que se origina por trasformación a partir

del carbamato (cometabolismo), origina toxicidad en el medio, causando la muerte

celular de este aislado rizobial.

De igual manera debido al número de repeticiones en esta prueba, se utilizó el

análisis de comparación de medidas repetidas para la prueba estadística que lograra

establecer si había diferencias significativas entre los tratamientos dentro del mismo

aislado rizobial, el cual arrojó en la prueba de Post hoc diferencias significativas a

nivel 0,05 para el aislado ES1 y EV1 entre todos los tratamientos (Tabla 25 y 26).

Tabla 25. Comparaciones múltiples. Pruebas de post hoc (Curvas UFC/ml/ Tiempo) para ES1.  Tratamiento

(i) Tratamiento

(j)

Diferencia entre medias

(i-j)

Error típ.

Significación

Intervalo de confianza al 95%

Límite inferior

Límite superior

Carbodan Control Previcur

17916,3861(*) ‐20138,2929(*) 

1920,44878 1920,44878

,000 ,000

13217,2172 ‐24837,4618

22615,5550 ‐15439,1240

Control Carbodan Previcur

‐17916,3861(*) ‐38054,6790(*)

1920,44878 1920,44878

,000 ,000

‐22615,5550 ‐42753,8479

‐13217,2172 ‐33355,5101

Previcur Carbodan Control

20138,2929(*) 38054,6790(*)

1920,44878 1920,44878

,000 ,000

15439,1240 33355,5101

24837,4618 42753,8479

Basado en las medias observadas. * La diferencia de medias es significativa al nivel ,05

Page 26: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

69  

Tabla 26. Comparaciones múltiples. Pruebas de post hoc (Curvas UFC/ml/ Tiempo) para EV1. Tratamiento

(i) Tratamiento

(j)

Diferencia entre medias

(i-j)

Error típ.

Significación

Intervalo de confianza al 95%

Límite inferior

Límite superior

Carbodan Control Previcur

-10399,8782(*) 7142,0673(*)

710,02371 710,02371

,000 ,000

-12137,2436 5404,7019

-8662,5128 8879,4327

Control Carbodan Previcur

10399,8782(*) 17541,9455(*)

710,02371 710,02371

,000 ,000

8662,5128 15804,5800

12137,2436 19279,3109

Previcur Carbodan Control

-7142,0673(*) -17541,9455(*)

710,02371 710,02371

,000 ,000

-8879,4327 -19279,3109

-5404,7019 -15804,5800

Basado en las medias observadas. * La diferencia de medias es significativa al nivel ,05

7. Dosis Letal media (DL50) Como antepenúltimo ensayo se determinó la Dosis Letal media (DL50) de los

carbamatos usados en la prueba de viabilidad de rizobios en presencia de ellos. En

base al ejemplo mostrado en Miranda (2006) para calcular la DL50 se realizó una

regresión para conocer la recta que más se ajustara y de ahí hacer los despejes de

las ecuaciones resultantes de esas regresiones. Para esto fue necesario usar los

programas de computación Maple 11 y Matlab R2007a, y la tendencia polinómica,

arrojó ecuaciones de 3er grado para hallar las dosis de ES1 con Carbodan y EV1 con

Carbodan y Previcur y 4to grado para ES1 con Previcur ya que en esta fue necesario

usar 5 concentraciones para hallar la DL50. Se tomó el mayor número de UFC/ml

como el 100% de la población y la mitad de este valor como el 50% de la población,

para la cual había que hallar la dosis. Los resultados se presentan en las Figuras 15,

16, 17 y 18.

Page 27: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

70  

Figura 15. Dosis letal media de Carbodan para el aislado rizobial ES1del suelo tratado con carbamatos y cultivado con Solanum tuberosum L.

En la Figura 15, se observa que el 50% de la población corresponde a 4350x104 UFC/ml y la DL50 hallada para ocasionar la muerte de esta población fue 200.81 μl/

100ml.

Figura 16. Dosis letal media de Previcur para el aislado rizobial ES1 del suelo tratado con carbamatos y cultivado con Solanum tuberosum L.

En la Figura 16, se observa que el 50% de la población corresponde a 6550x104 UFC/ml y la DL50 hallada para ocasionar la muerte de esta población fue 214.14 μl/

100ml.

0

2000

4000

6000

8000

10000

83 165 206 248

UFC/m

l 104

Concentraciones (µl/100ml)

ES1 YM + Carbodan

Polinómica (ES1 YM + Carbodan)

DL50=200.81µl/100ml

02000400060008000100001200014000

62,5 125 156,3 187,5 250

UFC/m

l 104

Concentraciones (µl/100ml)

ES1 YM + Previcur

Polinómica (ES1 YM + Previcur)

DL50=214.14µl/100ml

Page 28: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

71  

Figura 17. Dosis letal media de Carbodan para el aislado rizobial EV1 del suelo no tratado con carbamatos y cultivado con Vicia faba L. En la Figura 17, se observa que el 50% de la población corresponde a 7.3 x 104 UFC/ml y la DL50 hallada para ocasionar la muerte de esta población fue 123.35 μl/

100ml.

Figura 18. Dosis letal media de Previcur para el aislado rizobial EV1 del suelo no tratado con carbamatos cultivado con Vicia faba L. En la Figura 18, se observa que el 50% de la población corresponde a 8.55 x 104 UFC/ml y la DL50 hallada para ocasionar la muerte de esta población fue 108.06 μl/

100ml.

02468

10121416

27,5 41 83 165

UFC/m

l 104

Concentraciones (µl/100ml)

EV1 YM + Carbodan

Polinómica (EV1 YM + Carbodan)

DL50=123.35µl/100ml

02468

101214161820

20,8 31,3 62,5 125

UFC/m

l 104

Concentraciones (μl/100ml )

DL50=108.06µl/100ml

Page 29: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

72  

En estos resultados se puede observar que las DL50 halladas para el aislado ES1

tienen un valor mayor en ambos carbamatos que las DL50 calculadas para el aislado

EV1 creciendo en presencia de los mismos carbamatos, demostrando que

efectivamente la bacteria ES1, que estuvo bajo presiones de selectividad por el

tratamiento químico de ese suelo, ha desarrollado una mayor resistencia ante estos

compuestos que el aislado EV1 que no ha estado sometido a tratamiento químico, al

menos durante los 12 años precedentes al aislamiento.

8. Prueba de germinación de Vicia faba L. en presencia de carbamatos.

Los resultados mostrados en la Figura 19, indican que el mayor porcentaje de

germinación fue con el tratamiento Previcur en su concentración original

correspondiente a un 77,5% de germinación, incluso por encima del porcentaje del

tratamiento control que fue de 72,5%. Sin embargo, entre ellos no hubo diferencias

significativas, como se denota en la Figura 19 con las letras a y ab, y en la Tabla 27.

Por lo tanto, no se puede sugerir que el tratamiento con Previcur en su concentración

original estimula la germinación de la semilla, sino que simplemente no la afecta. No

obstante la respuesta no inhibitoria que presentaron las semillas con este tratamiento

podría deberse a que este pesticida es un fungicida de acción sistémico-estimulante

(Indice agropecuario, 2001).

Page 30: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

Figuraacuerd660 µPrevicZineb Mient

germi

que e

signifi

con l

difere

propu

Zineb

meno

origin

al trat

ANOV

a 19. Porcedo a los tratl; Carbodan

cur ½: 250µ¼: 0,25g; Z

ras tanto l

nación com

el análisis

icativas ent

etras difer

entes grupo

uesta de qu

b) pueden in

or porcentaj

al (25%) y

tamiento co

VA simple r

1

2

3

4

5

6

7

8

9

% to

tal de germ

inación

entaje total dtamientos. T ½: 330µl; Cµl; Previcur ineb 1/6: 0,1

a mayoría

mo se mues

estadístic

tre los trata

rentes y u

os homogé

e altas con

nhibir la ge

je de germ

Zineb orig

ontrol. El

realizado co

0

10

20

30

40

50

60

70

80

90

de germinacTratamientosCarbodan 1/¼: 125µl; P

16g. Control

de los otr

stra en la F

co mediant

amientos, id

un desplaz

éneos. C

ncentracion

rminación d

minación fu

inal (30%)

tratamiento

on el progra

T

a

ción de las ss µl ó g/400/4: 165µl; CaPrevicur 1/6: 400ml Sol.

ros tratamie

Figura 19 y

te el ANO

dentificándo

zamiento a

Con estos

es de carba

de las sem

e precisam

y son esta

o estadístic

ama Statgra

Tratamientos

semillas de ml de Sol. H

arbodan 1/66: 83,3µl. Zin

Hoagland ¼

entos sí af

en la Tabl

OVA establ

ose en el c

a otra colu

resultados

amatos (po

illas de Vic

mente en lo

dísticamen

co para est

aphics.

Vicia faba LHoagland 1/4: 110µl. Preneb orig: 1g¼.

fectaron ne

la 27 en do

ece que h

contraste m

umna form

s se acep

or lo menos

cia faba L.,

os tratamie

te diferente

ta prueba

ab

L. a los 6 día4: Carbodan

evicur orig: 5g; Zineb ½:

egativamen

onde se obs

hay diferen

últiple de r

ando parte

pta la hipó

s de Carbod

debido a q

entos Carb

es con resp

consistió e

 

73  

as de n orig: 500µl; 0,5g;

nte la

serva

ncias

rango

e de

ótesis

dan y

ue el

odan

pecto

en un

Page 31: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

74  

Tabla 27. ANOVA simple para resultados de germinación de V. faba L. con p < 0,05 y

contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0% según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 12026,9 12 1002,24 2,88 0,0061 Intra grupos 13550,0 39 347,436 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 25576,9 51 Contraste Múltiple de Rango para germinacion según tratamiento -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD tratamiento Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- Carbodan Origin4 25,0 e zineb original-4 30,0 ed zineb 1/2-6 4 32,5 edc zineb 1/6 -6 4 35,0 edc Carbodan 1/2-6 4 37,5 edc Carbodan 1/6-6 4 42,5 edc zineb 1/4 -6 4 45,0 edc Previcur 1/6-6 4 45,0 edc Previcur 1/4-6 4 50,0 edcb Carbodan 1/4-6 4 55,0 dcba Previcur 1/2-6 4 57,5 cba Control-6 4 72,5 ba Previcur origin4 77,5 a --------------------------------------------------------------------------------

9. Pueba de nodulación y crecimiento de Vicia faba L. en presencia de carbamatos. Por último se hizo esta prueba a nivel de umbráculo, y luego de 50 días de

crecimiento de las plantas de V. faba L. después de la inoculación con los dos

aislados rizobiales ES1 y EV1 y el carbamato Previcur, se desmontaron y se

midieron los parámetros mostrados en las siguientes Figuras.

Page 32: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

75  

Figura 20. Número de nódulos formados en plantas de Vicia faba L. Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado). En la Figura 20, se observa el número de nódulos formados en las plantas de Vicia

faba L. de acuerdo a los tratamientos. En otras palabras se puede ver la infectividad

de los aislados rizobiales. El aislado ES1 resultó no ser infectivo con este

hospedador, ya que no formó nódulos ni en el tratamiento ES1 (inoculado con la

bacteria, sin carbamato) ni en el tratamiento P+ES1 (inoculado con el carbamato +

aislado ES1). Este resultado no es de extrañar si se compara con los resultados

obtenidos en otras investigaciones como la de Mutch y Young (2004), en donde

observan la especificidad de Rhizobium leguminosarum biovar viciae, con cultivos de

varias leguminosas entre las cuales está la de nuestro interés que es Vicia faba L. y

obtienen que ésta es una planta bastante específica ya que fue nodulada en gran

cantidad por bacterias aisladas precisamente de ese mismo cultivo (10 nódulos por

planta) mientras que fue escasamente nodulada por bacterias aisladas a partir de

otras plantas (entre 1 y 4 nódulos por planta dependiendo del hospedador original)

en total fue infectada por solo un 32,5% de los 625 aislados rizobiales. Un ejemplo

de la deficiente nodulación de Rhizobium leguminosarum biovar viciae con este

cultivo fue estudiado por Esser-Mönning et al. (1995), con dos líneas puras de Vicia

faba L. l 40 y l 25, en donde asociaron la falta de infectividad al control que ejerce un

0

2

4

6

8

10

12

14

16

18

Control ES1 EV1 P + EV1 P + ES1 Previcur

Núm

ero de

 nód

ulos/planta

Tratamientos

Page 33: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

76  

gen dominante (Sym-2) para la línea l 40, y un gen recesivo (sym-3) para la línea l

25, siendo el gen Sym-2 epistático del gen sym-3.

Por otra parte, el aislado EV1 sí noduló a Vicia faba L. como era de esperarse, ya

que esta bacteria fue aislada a partir de nódulos eficientes de estas plantas (Anexo

11). En las plantas del tratamiento EV1 (inoculadas con el aislado EV1 sin

carbamato), se obtuvo un total de 92 nódulos de color blanco con un promedio por

planta de 15 nódulos, a un total de 9 nódulos de color verde con un promedio de 2

nódulos por planta, en su mayoría situados en la parte central del sistema radical.

Mientras que para el tratamiento P+EV1 (inoculadas con el carbamato + aislado

EV1), se obtuvo un total de 29 nódulos de color blanco con un promedio por planta

de 5 nódulos, a un total de 12 nódulos de color marrón con un promedio de 2 nódulos

por planta, en su mayoría ubicados en la zona terminal del sistema radical. Por estas

características, se puede sugerir que el aislado no fue efectivo, ya que no se

encontraron nódulos de color rojizo en ambos tratamientos, lo que indica que no

hubo actividad fijadora de N2 debido posiblemente a la ausencia de leghemoglobina

ya que ésta es de color rojo, y que se observó en la formación de nódulos de color

blanco característica de nódulos inefectivos (Lodeiro et al., 2003). Mientras tanto, la

coloración verde obtenida en algunos nódulos del tratamiento EV1 (inoculadas con el

aislado EV1 sin carbamato) es característica de los nódulos que están comenzando

a desintegrarse (Amadeo, 2006). Referente a la coloración marrón de algunos de los

nódulos obtenidos en el tratamiento P+EV1 (inoculadas con el carbamato + aislado

EV1), y a su ubicación terminal en el sistema radical, se puede inferir que la

aplicación del carbamato Previcur en su concentración original (aplicada en campo)

afectó desfavorable la nodulación, ya que el color marrón de los nódulos es

característico de los nódulos senescentes o ya degradados (Lodeiro et al., 2003;

Amadeo, 2006), y la ubicación en la zona terminal de la raíz indican que la

nodulación se produjo cuando ya el carbamato Previcur estaba más diluído por los

riegos efectuados durante la realización de la prueba de nodulación en el umbráculo,

y permitió que el rizobio EV1 lograra infectar las raíces nuevas de las plantas de

Vicia faba L.

Page 34: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

77  

En este sentido, con el análisis estadístico ANOVA simple se encontraron diferencias

significativas entre ambos tratamientos (Tabla 28), lográndose aceptar la segunda

hipótesis planteada, en donde se supuso que la aplicación de altas concentraciones

de carbamatos podría afectar desfavorablemente la nodulación de esta planta,

acorde con la información de Alexander (1977), quien señala que la nodulación por

Rhizobium sp. en las leguminosas se anula o reduce por pesticidas, ya que en

principio éstos afectan la viabilidad de la bacteria además de la capacidad para

nodular raíces, y en consecuencia la posibilidad de la Fijación Biológica de

Nitrógeno. Esto en contraste a los resultados obtenidos por Aamil et al. (2004),

quienes mostraron que las semillas de Cicer arietinum tratadas con bajas

concentraciones de pesticidas producían plantas en las que la nodulación se

incrementaba significativamente, y las que eran tratadas con altas concentraciones

de pesticidas tenían una reducción en la nodulación con Mesorhizobium sp..

Page 35: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

78  

Tabla 28. ANOVA simple para resultados de Nº de nódulos de V. faba L. con p < 0,05

y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos.

Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 1420,22 5 284,044 8,63 0,0000 Intra grupos 987,667 30 32,9222 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 2407,89 35 Contraste Múltiple de Rango para Nº de Nódulos según Tratamientos -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- PREVICUR 6 0,0 c CONTROL 6 0,0 c ES1 6 0,0 c P+ES1 6 0,0 c P+EV1 6 6,83333 b EV1 6 16,8333 a --------------------------------------------------------------------------------

En la Figura 21 se muestran los pesos frescos y secos de los nódulos obtenidos para

cada tratamiento, específicamente para los tratamientos EV1 y P + EV1 que fue en

donde hubo nodulación. Observándose que ambos pesos resultaron ser mayores en

el tratamiento EV1 que en el P + EV1, significando que el primer tratamiento presentó

mayor biomasa producto de la mayor incorporación de materia orgánica como

elementos estructurales, por lo tanto mayor tejido nodular que es capaz de hidratarse

y registrar peso fresco mayor respecto al tratamiento P + EV1.

Page 36: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

79  

Figura 21. Pesos fresco y seco promedio de nódulos por tratamiento en Vicia faba L.. Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado). En las Tablas 29 y 30, se demuestra mediante el análisis estadístico del ANOVA

simple que diferencias estadísticamente significativas entre ambos tratamientos

vistas en el contraste múltiple de rango, y se puede corroborar que la nodulación se

vé afectada negativamente por la aplicación de altas concentraciones de

carbamatos, como sucedió con la variable número de nódulos.

0

0,005

0,01

0,015

0,02

0,025

0,03

0,035

Peso  promed

io (g)

Tratamientos

Peso fresco nódulos

Peso seco nódulos

Page 37: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

80  

Tabla 29. ANOVA simple para resultados de peso fresco de nódulos de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 0,00455522 5 0,000911044 11,17 0,0000 Intra grupos 0,00244667 30 0,0000815556 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 0,00700189 35 Contraste Múltiple de Rango para -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- PREVICUR 6 0,0 c CONTROL 6 0,0 c ES1 6 0,0 c P+ES1 6 0,0 c P+EV1 6 0,0113333 b EV1 6 0,0303333 a --------------------------------------------------------------------------------

Tabla 30. ANOVA simple para resultados de peso seco de nódulos de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza

------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 0,000422806 5 0,0000845611 16,46 0,0000 Intra grupos 0,000154167 300,00000513889 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 0,000576972 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- PREVICUR 6 0,0 c CONTROL 6 0,0 c ES1 6 0,0 c P+ES1 6 0,0 c P+EV1 6 0,00283333 b EV1 6 0,00933333 a --------------------------------------------------------------------------------

En la Figura 22 se observan las longitudes de vástago y raíz de acuerdo a cada

tratamiento. La mayor longitud de vástago fue la del tratamiento P + ES1, sin

embargo, es notorio en la Tabla 31, que no existen diferencias significativas entre

todos los tratamientos. La longitud de los sistemas radicales en los diferentes

tratamientos son prácticamente del mismo tamaño, sin diferencias significativas. Por

Page 38: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

81  

lo tanto, no puede sugerirse un efecto promotor de crecimiento de parte de la

bacteria ni siquiera debido al fungicida (Tabla 32).

Figura 22. Longitud promedio de vástago y raíz de plantas de Vicia faba L. Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado). Tabla 31. ANOVA simple para longitud de vástago de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 329,733 5 65,9467 0,76 0,5831 Intra grupos 2590,52 30 86,3506 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 2920,25 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- ES1 6 38,1667 X EV1 6 41,0 X PREVICUR 6 42,5 X P+EV1 6 42,5 X CONTROL 6 43,25 X P+ES1 6 48,2833 X --------------------------------------------------------------------------------

0

10

20

30

40

50

60

Control ES1 EV1 P + EV1 P + ES1 Previcur

Longitud

 promed

io (cm)

Tratamientos

Long Vástago

Long Raíz

Page 39: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

82  

Tabla 32. ANOVA simple para resultados de longitud de raíz de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 21,1014 5 4,22028 0,43 0,8240 Intra grupos 294,408 30 9,81361 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 315,51 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- P+ES1 6 23,0833 X CONTROL 6 23,0833 X EV1 6 23,25 X P+EV1 6 23,25 X ES1 6 24,6333 X PREVICUR 6 24,9167 X --------------------------------------------------------------------------------

En la Figura 23 se muestran los pesos frescos y secos del vástago de las plantas de

V. faba L. con diferentes tratamientos. El tratamiento Previcur, presentó el peso más

alto, tanto fresco como seco, en comparación con los demás. Es importante

destacar que las plantas de este tratamiento presentaron necrosis en la yema apical

que se mantuvo durante todo el ensayo, posiblemente debida al efecto tóxico

ocasionado por la concentración del carbamato usado, ya que era igual a la utilizada

en campo pero en un área mucho más pequeña, lo que pudo haber ocasionado un

exceso de nitrógeno (haciendo referencia al análisis de nitrógeno foliar de la Tabla

37) y haber producido la quema de este tejido vegetal.

Page 40: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

83  

Figura 23. Pesos fresco y seco promedio de vástago de Vicia faba L.. Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado).

En la Tabla 33, el ANOVA mostró diferencias significativas entre los pesos fresco del

vástago, siendo los grupos Previcur y P + ES1 iguales en su respuesta en el

contraste múltiple de rango, pero muestran diferencias con el resto de tratamientos.

El tratamiento P + EV1 es distinto de los dos anteriores así como de los demás, y los

tratamientos Control, ES1 y EV1 iguales entre sí, y diferentes a los demás

tratamientos. Según esto, la aplicación del carbamato favorecería la toma de agua

por parte de las plantas, ya que son los valores más altos en cuanto al peso.

0

1

2

3

4

5

6

7

8

Peso promed

io (g)

Tratamientos

Peso Fresco Vástago

Peso Seco Vástago

Page 41: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

84  

Tabla 33. ANOVA simple para resultados de peso fresco del vástago de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0% según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 44,241 5 8,8482 4,19 0,0052 Intra grupos 63,3191 30 2,11064 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 107,56 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- EV1 6 4,49833 c ES1 6 4,69333 c CONTROL 6 4,90667 c P+EV1 6 5,205 cb P+ES1 6 6,64333 ba PREVICUR 6 7,50167 a --------------------------------------------------------------------------------

En la Tabla 34 el ANOVA para el peso seco del vástago arrojó diferencias

estadísticamente significativas entre los tratamientos, siendo en el contraste múltiple de

rango los tratamientos Previcur, P + ES1 y Control iguales entre sí, presentando los

valores más altos de peso seco, pudiéndose deber esto al riego que tuvieron 1 vez a la

semana con la solución Hoagland a ¼ de la concentración de nitrógeno, lo que permitió

la toma de este elemento por parte de las plantas y la traslocación al vástago, además

de la aplicación del carbamato Previcur, ya que las plantas de Vicia faba L. acumulan

este carbamato en la parte aérea (según el análisis de la tabla 37) específicamente a

los tratamientos que Previcur y P + ES1. Por otra parte, los tratamientos EV1 y P +

EV1 a pesar de haber sido los tratamientos que nodularon, hace inferir que esos

nódulos fueron inefectivos ya que los pesos secos del vástago de este tratamiento

fueron los más bajos, incluso similares al del tratamiento ES1 (tabla 34) que no

presentó nodulación lo que indica que no hubo incorporación de nitrógeno a la planta.

Page 42: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

85  

Tabla 34. ANOVA simple para resultados de peso seco del vástago de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza ------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 0,854791 5 0,170958 3,47 0,0136 Intra grupos 1,47815 30 0,0492717 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 2,33294 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- EV1 6 0,6845 c ES1 6 0,689167 c P+EV1 6 0,803 cb CONTROL 6 0,9 cba P+ES1 6 1,02 ba PREVICUR 6 1,08833 a --------------------------------------------------------------------------------

En la Figura 24 se observan los pesos frescos y secos de la raíz. El tratamiento P +

EV1 presentó los valores más altos en comparación a los demás tratamientos, pero a

pesar de esto no hay diferencias significativas entre los tratamientos respecto al

control según el ANOVA para peso fresco de raíz (Tabla 35) y el ANOVA para el

peso seco de raíz (Tabla 36). Sin embargo se observa en el contraste múltiple de

rango para ambos pesos (Tabla 35 y 36) que el tratamiento ES1 tiende a ser

diferente estadísticamente de los demás, y el tratamiento EV1 tiende a ser igual

estadísticamente al ES1 en cuanto al peso seco, y diferente a los demás (Tabla 36).

Con estos resultados se ratifica que la presencia del aislado rizobial EV1 en el

sistema radical no es efectiva, y que tanto este aislado como el ES1, no pueden

sugerirse tampoco como rizobacterias promotoras de crecimiento.

Page 43: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

86  

Figura 24. Pesos fresco y seco promedio de raíz de Vicia faba L.. Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado). Tabla 35. ANOVA simple para resultados de peso fresco de la raíz de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los tratamientos. Análisis de la Varianza

------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 74,197 5 14,8394 1,66 0,1753 Intra grupos 268,525 30 8,95084 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 342,722 35 Contraste Múltiple de Rango -------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos -------------------------------------------------------------------------------- ES1 6 5,00333 b EV1 6 5,975 ba CONTROL 6 7,62 ba P+ES1 6 8,24833 ba PREVICUR 6 8,76167 a P+EV1 6 8,80333 a --------------------------------------------------------------------------------

0

1

2

3

4

5

6

7

8

9

10

Control ES1 EV1 P + EV1 P + ES1 Previcur

Peso promed

io (g)

Tratamientos

Peso Fresco Raíz

Peso Seco Raíz

Page 44: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

87  

Tabla 36. ANOVA simple para resultados de peso seco de la raíz de V. faba L. con p

< 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de confianza del 95,0%, según los

tratamientos. Análisis de la Varianza

------------------------------------------------------------------------------ Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 0,254114 5 0,0508228 1,75 0,1526 Intra grupos 0,868799 30 0,02896 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 1,12291 35 Contraste Múltiple de Rango ------------------------------------------------------------------------------- Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamientos Frec. Media Grupos homogéneos ------------------------------------------------------------------------------- ES1 6 0,474333 b EV1 6 0,484 b CONTROL 6 0,602667 ba P+ES1 6 0,616167 ba PREVICUR 6 0,65 ba P+EV1 6 0,705333 a -------------------------------------------------------------------------------

En la Figura 25 se muestra el contenido de nitrógeno de la parte aérea de Vicia faba

L. para cada tratamiento. Como se observa, el tratamiento con Previcur fue el que

aportó mayor cantidad de nitrógeno a las plantas, posiblemente debido a la

aplicación de este fungicida, lo que implica una fuente de nitrógeno artificial, aunado

al riego que se hizo con solución Hoagland a ¼ de la concentración de nitrógeno, por

tanto, este tratamiento tuvo doble fuente de nitrógeno y por ello la diferencia en las

cantidades asimiladas con respecto a los otros tratamientos.

Page 45: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

88  

Figura 25. Análisis del contenido de nitrógeno de la parte aérea de Vicia faba L. (%). Control (sin aislado y sin Previcur), ES1 (aislado ES1 sin Previcur), EV1 (aislado EV1 sin Previcur), P+EV1 (Previcur + EV1), P+ES1 (Previcur + ES1), Previcur (Previcur sin aislado).

En la Tabla 37 se muestran los resultados del ANOVA simple para el análisis de

nitrógeno de la parte aérea de Vicia faba L. según los tratamientos, el cual no arroja

diferencias significativas entre los tratamientos. En el contraste múltiple de rango no

se observan diferencias significativas entre los tratamientos que contienen ambos

aislados como lo son ES1, P + ES1, EV1 y P + EV1, ni entre ellos con respecto al

control, por lo que el aislado EV1 quien fue el que noduló a Vicia faba L. no es una

bacteria efectiva en el aporte de nitrógeno debido a que no realizó la fijación

biológica de N. Sin embargo, el tratamiento Previcur se muestra como

estadísticamente diferente con respecto a los tratamientos Control, ES1 y P + ES1.

La fitorremediación es una reciente técnica efectiva, estéticamente agradable y de

bajo costo tecnológico que consiste en utilizar plantas para descontaminar los suelos

o el agua, en donde se utiliza la habilidad de las plantas para concentrar elementos y

compuestos del medio ambiente y metabolizar varias moléculas en sus tejidos. Las

plantas pueden transportar y concentrar metales del suelo, inclusive compuestos

orgánicos (Garbisu, et al., 2002).

0

0,5

1

1,5

2

2,5

3

Control ES1 EV1 P + EV1 P + ES1 Previcur

Porcen

taje de Nitrógeno

 foliar (%

)

Tratamientos

Page 46: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

89  

En este sentido, Garcinuño et al., 2003, evaluaron el efecto de los pesticidas

Carbaryl, Fenamiphos y Permethrin en semillas de Lupinus angustifolius, mostrando

que éstas, luego de 17 días, tienen una alta capacidad de retención de los pesticidas

mencionados y para extraerlos de sus semillas utilizaron solventes orgánicos como

methanol, acetonitrilo, ethyl acetato y n-hexano, y no detectaron residuos de estos

pesticidas, de manera que atribuyeron la capacidad de estas semillas para degradar

los pesticidas utilizados.

De igual manera Garcinuño et al. (2006) observaron por cromatografía líquida que

plantas de Lupinus angustifolius bajo condiciones hidropónicas luego de 16 días de

crecimiento, lograron degradar el 57, 53 y 55% de los pesticidas Carbaryl, Linuron y

Permetrhrin respectivamente, sugiriendo que L. angustifolius podría ser usada como

remediadora de aguas contaminadas por pesticidas.

En el caso de Vicia faba L., se puede sugerir que esta especie podría actuar

probablemente como una planta fitoacumuladora o fitodestoxificante en base a los

resultados del ANOVA simple del contenido de nitrógeno de la parte aérea (Tabla

37), en donde las plantas de V. faba L. con el tratamiento Previcur (Previcur sin

aislado) resultaron diferentes estadísticamente a las del control, lo que indica que la

planta está tomando el Previcur, y hace inferir que esta especie podría actuar como

una planta fitoacumuladora de este fungicida.

Page 47: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

90  

Tabla 37. ANOVA simple para resultados de análisis de contenido de nitrógeno de la

parte aérea de V. faba L. con p < 0,05 y contraste múltiple de rango con un nivel de

confianza del 95,0%, según los tratamientos. ------------------------------------------------------------------------

Fuente Sumas de cuad. Gl Cuadrado Medio Cociente-F P-Valor ------------------------------------------------------------------------------ Entre grupos 1,01395 5 0,202789 2,23 0,0772 Intra grupos 2,72842 30 0,0909472 ------------------------------------------------------------------------------ Total (Corr.) 3,74236 35 Contraste Múltiple de Rango ------------------------------------------------------------------------------ Método: 95,0 porcentaje LSD Tratamiento Frec. Media Grupos homogéneos ------------------------------------------------------------------------------ ES1 6 2,00833 b P+ES1 6 2,12 b CONTROL 6 2,145 b P+EV1 6 2,245 ba EV1 6 2,26833 ba PREVICUR 6 2,545 a ------------------------------------------------------------------------------

Los resultados de este trabajo sugieren que el aislado nodulante EV1 es infectivo

más no es efectivo para la especie Vicia faba L. debido a que no es una bacteria

potencialmente fijadora de nitrógeno, y que el aislado ES1 no es infectivo para esta

especie de planta y debe ser probado en otra especie de leguminosa para determinar

su infectividad y efectividad en la fijación biológica de nitrógeno. En cuanto al efecto

sobre la planta, los resultados indican que la presencia del carbamato Previcur en su

concentración original (aplicada en campo), incrementó significativamente el

contenido de nitrógeno en la parte aérea en relación al tratamiento control, indicando

una fitoacumulación de este carbamato en esta parte de la planta.

 

 

 

 

 

 

Page 48: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

91  

CONCLUSIONES

1. Se lograron capturar, aislar, purificar y autenticar bacterias del suelo tratado

con carbamatos y del suelo sin tratamiento agroquímico, y fueron designadas

como ES1 y EV1 respectivamente.

2. ES1 y EV1 posiblemente sean del género Rhizobium sp.

3. Los rizobios mostraron ser más resistentes a los pesticidas Carbodan y

Previcur en la dilución ½, y fueron sensibles a Dithane, Vondozeb y Zineb.

4. Los aislados no metabolizaron los carbamatos Carbodan, Previcur y Zineb, es

decir, no los utilizaron ni como fuente carbonada ni como fuente nitrogenada.

5. Existe una promoción del crecimiento bacteriano en presencia del carbamato

Previcur o Carbodan y fuentes de carbono, sugiriendo un proceso de

cometabolismo para ambas bacterias, que favorece a ES1 y es tóxico para

EV1.

6. ES1 cometabolizó Previcur y Carbodan, en donde el producto biotransformado

aceleró el metabolismo y promovió su crecimiento celular.

7. EV1 cometabolizó Previcur y Carbodan, originando un producto tóxico que

acelera la disminución de su población bacteriana.

8. Se determinaron las DL50 para ambos aislados con los carbamatos Carbodan

y Previcur, sugiriendo una mayor resistencia del aislado ES1 a dichos

carbamatos, indicando que de alguna manera esta bacteria tiene la propiedad

de ser más resistente a pesticidas por encontrarse en un suelo sometido a

tratamientos agroquímicos, bajo una presión selectiva.

9. La germinación de semillas de Vicia faba L. resultó ser inhibida por los

carbamatos Carbodan y Zineb en sus concentraciones originales (aplicadas en

campo), mientras que no fue afectada por la concentración original del carbamato

Previcur.

Page 49: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

92  

10. En la prueba de nodulación de Vicia faba L. el aislado ES1 resultó no ser

infectivo, señalando que esta leguminosa es muy especifica como hospedador.

El aislado EV1 fue infectivo en esta prueba, pero en condiciones de invernadero

no fue potencialmente fijador de nitrógeno con Vicia faba L., ya que no hubo

diferencias significativas entre los tratamientos en el análisis de nitrógeno foliar, ni

se obtuvieron nódulos de coloración rojiza.

11. La nodulación fue afectada desfavorablemente ante la presencia de altas

concentraciones del carbamato Previcur (concentración original aplicada en

campo) debido a la disminución del número de nódulos del tratamiento EV1 al

tratamiento P + EV1, ya que esta diferencia fue estadísticamente significativa.

12. Es importante destacar que el Previcur incrementó los niveles nitrogenados

de la parte aérea de las plantas de las plantas de Vicia faba L., permitiendo

sugerir a esta especie de leguminosa como una posible planta fitoacumuladora o

fitodestoxificante para este carbamato.

                    

Page 50: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

93  

RECOMENDACIONES

• Se recomienda hacer un ensayo de nodulación y crecimiento en otra especie

de leguminosa con el aislado ES1 para observar su infectividad y efectividad.

• El aislado ES1 podría ser objeto de estudios posteriores en el tema de la

biorremediación, ya que resultó ser una bacteria que cometaboliza el

carbamato Previcur y Carbodan y el producto biotransformado puede ser

utilizado por él mismo promoviendo su crecimiento, y posiblemente este

producto pueda ser degradado por otros microorganismos en la naturaleza, y

disminuir los niveles de estos carbamatos en el suelo.

• Realizar estudios utilizando Vicia faba L., como una posible planta

fitoacumuladora o fitodestoxificante del carbamato Previcur, en condiciones de

campo.

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

 

Page 51: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

94  

REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS

Aamil, M., Zaidi, A., Saghir, Md. 2004. Fungicidal impact on chickpea-Mesorhizobium

symbiosis. Journal of Environmental Science and Health. 2004; 39(5-6): 779-790.

Aguilar, O. M., López, M. V. and Riccilio, P. M. 2001. The Diversity of Rhizobia

Nodulating Beans in Northwest Argentina as a Source of More Efficient Inoculant

Strain. Biotechnol. 91: 181 – 188.

Allen, O.N y Allen, E. 1981. The Leguminosae. A Source Book of Characteristics,

Uses and Nodulation. Macmillan Publishers LTD. United states of America. p.p 677,

678, 680.

Alexander, M. 1977. Introduction to Soil Microbiology. Second edition. John Wiley

and Sons. New York. p.p 442, 447.

Alexander, M. 1999. Biodegradation and bioremediation. Academic Press. U.S.A.

Amadeo, C. 2006. Inoculación. La fijación del nitrógeno por simbiosis.

Disponible: http://www.elsitioagricola.com/articulos/amadeo/Inoculacion%20-

%20la%20Fijacion%20del%20Nitrogeno%20por%20Simbiosis.asp. Visitada en

Marzo de 2009.

Beringer, J. E. 1974. R. Factor Transfer in Rhizobium leguminosarum. J. Gen.

Microbiol. 84: 188 - 198.

Bromfield, E. S. y Barran, L. R. 1990. Promiscuous Nodulation of Phaseolus vulgaris,

Macroptilium atropurpureum and Leucaena leucocephala by Indigenous

Rhizobium meliloti. Can. J. Microbiol, 36: 369 – 372.

Page 52: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

95  

Caetano – Anollés, G., Lagares, A., Favelukes, G. 1989. Adsorption of Rhizobium

meliloti to alfalfa roots: Dependence on divalent cations and pH. Plant and Soil

117: 67 – 74.

Castro, D. 2008. Caracterización de cepas bacterianas resistentes al dicloro difenil

tricloroetano (DDT) y Paration aisladas de suelos sometidos a manejo agrícola

intensivo de diferentes localidades del estado Mérida. Trabajo especial de grado

para optar al título de Licenciado en Biología. Facultad de Ciencias. Universidad de

Los Andes, Venezuela. p.p 12, 20, 39.

Chapalamadugu, S., Chaudhry, GR. 1991. Hydrolisis of carbaryl by a Pseudomonas

sp. and construction of a microbial consortium that completely metabolizes

carbaryl. Applied and Environmental Microbiology. Mar. 1991; 57(3):744-50.

CIAT (Centro Internacional de Agricultura Tropical). 1988. Simbiosis Leguminosa-

Rizobio. Manual de Métodos de Evaluación, Selección y Manejo Agronómico.

Centro Internacional de Agricultura Tropical. Cali. Colombia. p.p. 3-1, 3-2.

Criddle, C. S. 1993. The kinetics of cometabolism. Biotechnology and Bioengineering.

41: 1048 - 1056

Cronquist, A. 1981. An Integrated System of Classification of flowering Plants.

Columbia University Press. New York. United States of America. p.p xiii, xv.

Díaz, C. y De la Sovera, V. 2009. Carbamatos. Disponible en

http://mail.fq.edu.uy/~planta/Cursos/neonicarbam.pdf. Visitada en Febrero de 2009.

Page 53: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

96  

Dich, J.: Zahm, S.: Hanberg, A.: Adami, H. O. (1997). Pesticides and cancer. Cancer

Causes Control 8: 420-443.

Esser-Mönning, K., Roskothen, P., Röbbelen, G. 1995. Two host genes in Vicia faba

for nodulation deficiency with strain specificity for Rhizobium leguminosarum. Plant

Breeding. 1995; 114 (4): 363-365.

Evans, L. S., Lewin, K. F., Vella, F. A. 1980. Effect on nutrient medium pH on

symbiotic nitrogen fixation by Rhizobium leguminosarum and Pisum sativum. Plant

soil 56: 71 – 80.

Feng, X., Ou, L. y Ogram, A. 1997. Plasmid-Mediated Mineralization of Carbofuran by

Sphingomonas sp. Strain CF06. Applied and Environmental Microbiology. Apr. 1997;

63 (4): 1332–1337.

Ferrer, A. (2003). Intoxicación por Plaguicidas; Pesticida Poisoning. Anales del

Sistema Sanitario de Navarra 26: 155-171.

Ferrera, R., González, M., Rodríguez, M. 1993. Manual de Agromicrobiología.

Editorial Trillas. México. p.p. 45-46.

Garbisu, C., Hernández-Allica, J., Barrutia, O., Alkorta, I., Becerril, J. M. 2002.

Phytoremediation: a technology using green plants to remove contaminants from

polluted areas. Rev Environ Health. Jul-Sep; 17 (3): 173 - 88.

García-Rivero, M. y Peralta-Pérez, M. R. 2008. Cometabolismo en la Biodegradación

de Hidrocarburos. Revista Mexicana de Ingeniería Química. Abr 2008; 7(1): 1-12.

Garcinuño, R. M., Fernández-Hernando, P., Cámara, C. 2003. Water Res. Aug; 37

(14): 3481 – 9.

Page 54: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

97  

Garcinuño, R. M., Fernández-Hernando, P., Cámara, C. 2006. Removal of carbaryl,

linuron, and permethrin bye Lupinus angustifolius under hydroponic conditions. J

Agric Food Chem. Jul 12; 54 (14): 5034 – 9.

Gil Martínez, F. 1994. Fijación de Nitrógeno. En: Elementos de Fisiología vegetal.

Ediciones Mundi – Prensa, Madrid. p.p 945.

Gilabert, J., López, I., Pérez, R. 1990. Análisis de Suelos para Diagnóstico de

Fertilidad. Manual de Métodos y Procedimientos de Referencia. MAC, FONAIAP,

CNIA, Escuela de Agronomía – UCLA. Maracay, Venezuela. ISBN 980 – 6090 – 89 –

6.

Glenn, A. R. y Dilworth, M. J. 1994. The life of root nodule bacteria in the acidic

underground. FEMS Microbiol. Lett 123: 1 – 10.

Graham, P. H., Draeger, K. J., Ferrey, M. L., Conroy, M. J., Hammer, B. E., Martínez,

E., Aarons, S. R., Quinto, C. 1994. Acid pH tolerance in strains of Rhizobium and

Bradhyrhizobium, and initial studies on the basis for acid tolerance of Rhizobium

tropici UMR 1899. Can. J. Microbiol 40: 198 – 207.

Hashimoto, M., Fukui, M., Hayano, K., Hayatsu, M. 2001. Nucleotide sequence and

genetic structure of a novel carbaryl hydrolase gene (cehA) from Rhizobium sp.

strain AC100. Applied and Environmental Microbiology. Mar.2002; 68(3): 1220-

1227.

Hayatsu, M., Hirano, M., Nagata, T. 1999. Involvenment of two plasmids in the

degradation of carbaryl by Arthrobacter sp. strain RC100. Applied and

Environmental Microbiology. Mar.1999; 65(3): 1015-9.

Hotchkiss, J. (1992). Pesticide Residue Controls to Ensure Food Safety. Critical

Rev. Food Sci. Nutrition 31:191-203.

Page 55: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

98  

Jordan, D. C. 1984. Rhizobiaceae. In Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology.

Vol I. Edit N. R. Krieg.. Williams and Wilkings, Baltimore, Usa. P.p 234-256.

Indice Agropecuario. 2001. Disponible en

http://danac.org.ve/indice/detalle_productos.php?ps=478554. Visitada en Enero de

2009.

Janke, D. y Fristche. W. 1985. Nature and significance of microbial cometabolism of

xenobiotics. Journal of Basic Microbiology

Lal, R y Saxena, D. (1982). Accumulation, Metabolism and Effects of Organochlorine

Insecticides on Microorganisms. Microbiological Reviews 46 (1): 95- 127.

Larkin, M. J., Day, M. J. 1984. The effect of pH on the selection of carbaryl-degrading

bacteria from garden soil. Applied Bacteriology. 1985: 58: 175-185.

Larkin, M.J., Day, M. J. 1985. The metabolismo f carbaryl by three bacterial isolates,

Pseudomonas spp. (NCIB 12042 & 12043) and Rhodococcus sp. (NCIB 12038)

from garden soil. Applied Bacteriology. Mar. 1986; 60(3): 233-42.

Leadbetter, E.R. y Foster, J. W. 1959. Oxidation products formed from gaseus

alkanes by the bacterium Pseudomonas methanica. Archives of Biochemistry and

Biophysics 82: 491 – 492.

Lodeiro, A.R., López García, S., Mongiardini, E., Quelas, J. I. y Perticari, A. 2003. Los

Rizobios y la Inoculación de las Leguminosas para la Fijación Simbiótica de

Nitrógeno. En: Microbiología Agrícola. Un aporte de la investigación argentina.

Albanesi, A., Anriquez, A., Luna, S., Kunst, C., Ledesma, R. (eds.). Universidad

Nacional de Santiago del Estero. ISBN: 987-99083-5-X. pp. 159-193.

Page 56: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

99  

Longnecker, MP., Rogan, WJ., Lucier, G. (1997). The human effects of DDT

(dichloro diphenyl trichloroethane) and PCBs (polychlorinated bisphenyls) and an

overview of organochlorines un public health. Annu Rev Public Health 18: 211-244.

Luo, W., Zhao, Y., Ding, H., Lin, X., Zheng, H. 2008. Co-metabolic degradation of

bensulfuron-methyl in laboratory conditions. Journal of Hazardous Materials 158

(2008) 208–214.

Macbride, J. F. 1943. Flora of Peru. Botanical Series Field Museum of Natural

History, Volume XIII, Part III, Number 1. United States of America. October, 1943

publicación 531. p.p 356.

Machado, D. 2005. Un Enfoque Agroecosistémico para el Manejo Eficiente de

Nitrógeno en el Cultivo de Papa en los Andes Venezolanos. Tesis Doctoral.

Universidad de Los Andes, Instituto de Ciencias Ambientales y Ecológicas,

Postgrado en Ecología Tropical. Mérida, Venezuela. 233p.

Madigan, M. T., Martinko, J. M., Parker, J. 2000. Brock Biology of Microorganisms.

(Bergey’s Manual of Systematic Bacteriology 2da Ed. A-8). Prentice Hall 9ed.

United States of America.

Malagón, D. 1982. Caracterización de suelos (Interpretación integral en función de

su evolución). Serie Suelo y Clima SC – 55 CIDIAT – Mérida.

Mápula-Larraeta, M., López-Upton, J., Vargas-Hernández, J. y Hernández-Livera, A.

2008. Germinación y Vigor de semillas de Pseudotsuga menziesii de México. Ra

Ximhai Vol. 4. Número 1, enero.abril 2008, p.p 123.

Maroni, M., Fait, A. (1993). Health Effects in Men from Long-term Exposure to

Pesticides. Toxicology 78:1-180.

Page 57: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

100  

Marquina, M. 2006. Caracterización Fenotípica y Genotípica de Rizobios

Autóctonos, Provenientes de Diversas Regiones de Venezuela. Tesis de

Maestría para optar al Título de Magister Scientiae en Biotecnología de

Microorganismos. Departamento de Biología, Facultad de Ciencias, Universidad

de Los Andes. Mérida- Venezuela. p.p 1-2, 9-10, 62, 82, 130.

Martinez-Romero, E. 2003. Diversity of Rhizobium Taxonomy. Plant and Soil 161:

11-20.

Matos – Cuzcano, G., Ormeño – Orillo, E., Zúñiga – Dávila, D. 2004.

Diversidad de los rizobios que nodulan el cultivo de Pallar (Phaseolus lunatus L.)

En la Costa Central del Perú. Disponible en

http://www.lamolina.edu.pe/ciencias/ecologia/revistas5.htm.

Michiels, J., Dombrecht, B., Vermeiren, N., Xi, Ch., Luyten, E. y Vanderleyden, J.

1998. Phaseolus vulgaris is non-selective host for nodulación. Microbiology

Ecology 26: 193-205.

Miller, J.H. 1972. Experiments in molecular genetics. Cold Spring Harbor Laboratory,

Cold Spring Harbor, N. Y. p.p 431-435.

Miranda, I. (2006). “La estadística del agropecuario. 10 preguntas 10 respuestas”.

Disponible: http://www.monografias.com/trabajos19/estadistica-

agropecuario/estadistica-agropecuario.shtml (visitada en octubre de 2008).

Munns, D. N. 1970. Nodulation of Medicago sativa in solution culture. V. Calcium and

pH requirements during infection. Plant and Soil 32: 90 – 102.

Mutch, L. and Young, J. P. 2004. Diversity and specificity of Rhizobium

leguminosarum biovar viciae on wild and cultivated legumes. Molecular Ecology.

2004; 13: 2435-2444.

Page 58: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

101  

Nan, Z., Ge, G., Li, C. 2002. Effect of pesticides on field-controlling root rot of Vicia

faba. Ying Yong Sheng Tai Xue Bao.. Aug; 13(8): 943-7.

Noel, T. C., Sheng, C. K., Yost, R. P., Pharis and Hynes, M. F. 1996. Rhizobium

leguminosarum as a Plant Growh – Promoting Rhizobacterium. Direct Growth

Promotion of Canola and Lettuce. Can. J. Microbiol. 42: 279-282.

Odee, D.W., Sutherland, E.T., McInroy, S.G. y Sprent, J.I. 1996. Phenotypic

characteistics and composition of rhizobia associated with woody legumes growing in

diverse Kenyan conditions. Plant and Soil 188: 65-75.

Olea, N. y Fernández, M. (2001). Plaguicidas persistentes. Congreso

Implementación del Convenio de Contaminantes Orgánicos Persistentes. Madrid,

26-27 de noviembre.

Pacovsky, R.S., Bayne, H.G and Bethlenfalvay, G.J. 1984. Symbiotic

interaction between strain of Rhizobium phaseoli and cultivars of

Phaseolus vulgaris L. Crop. Sci 24: 105-107.

Perry, J.J. 1979. Microbial cooxidations involving hydrocarbons. Microbiological

Reviews, Mar. 1979; 43(1): 59 – 72.

Primo, E. y Carrasco, J.M. 1980. Química Agrícola II Plaguicidas y Fitorreguladores.

Editorial Alhambra, S.A. Madrid – España. p.p 1, 224 - 225, 228 – 229, 400 –

401.

Ricardi, M. 1992. Familias de Dicotiledóneas venezolanas II. Universidad de Los

Andes. Departamento de Biología. Facultad de Ciencias. Mérida, Venezuela. p.p

26.

Page 59: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

102  

Rodríguez - Mendoza M.N. y Ferrera – Cerrato, R. 1984. Estudio y Caracterización

de la Relación Simbiótica de Rhizobium phaseoli frijol Phaseolus vulgaris de

Distintos Hábitos de Crecimiento. Memorias XII Reunión Latino Americana sobre

Rhizobium, Campinas, Sao Paulo - Brasil. p.p 22.

Sánchez, J., Rodríguez, J. Fundamentos y aspectos Microbiológicos,

Biorremedación. Universidad de Oviedo. Disponible en

http://ingenierosdeminas.org/docu/documentos/fundamentos_%20biorremediacion.pd

f Visitada en Febrero de 2009.

Skwierinski, R. y Marquina, M. 2006. Captura y nodulación de bacterias rizobiales a

partir de muestras de suelos. Prácticas de Simbiosis. Curso de Simbiosis.

Departamento de Biología. Facultad de Ciencias. Universidad de Los Andes.

Mérida. Venezuela.

Smit, G., Tubbing, D. M. J., Jijne, J. W., Lugtenberg, B. J. J. 1991. Role of Ca2+ in the

activity of ricadhesin from Rhizobium leguminosarum biovar viciae, which

mediates the first step in attachment of Rhizobiaceae cells to plant root hair tips.

Arch. Microbiol. 155: 278 – 283.

Smith, R. J. y Gallon, J. R. 1993. Nitrogen Fixation. En: Plant Biochemistry and

Molecular Biology. Edited by P- J. Lea and R. C. Leegood. John Wiley & Sons

Ltd. p.p 131.

Taiz , L., Zeiger, E. 2002. Plant Physiology. 3ed. Ed. Sunderland (USA): Sinauer

Associates Inc. p.p 71.

Vandana P., S., y Prashant S., P. 2005. Metabolism of Carbaryl via 1,2-

dihydroxynaphthalene by Soil Isolates Pseudomonas sp. Strain C4, C5 and C6.

Applied and Environmental Microbiology, Oct. 2005; 71(10): 5951-5956.

Page 60: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

103  

Vincent, JM. 1975. Manual Práctico de Rizobiología. Editorial Hemisferio Sur. Buenos

Aires. Argentina. p.p. 4.

Wang, T., Romero-Martínez, J., López-Lara, I. 2001. Rhizobium y su Destacada

Simbiosis con Plantas. En Microbios en Línea (Editrs. Martínez-Romero, E. y

Martínez-Romero, J). cap 8. Disponible en:

(http://biblioweb.dgsca.unam.mx/libros/microbios/index.html).

Werner, D. 1992. Symbiosis of Plants and Microbes. Chapman & Hall. Great Britain.

p.p 82.

Young, J. M. 2003. The Genus Ensifer Casida 1982. Take Priority Over

Sinorhizobium Chen et a. 1988, and Sinorhizobium morelense Wang et al., 2002 is a

Later Synonym of Ensifer adhaerens (Casida 1982). Is the Combination

‘Sinorhizobium adhaerens’ (Casida 1982) Willems et al. 2003 Legitimate? Request

For an Opinion. Int. J. Sust. Evolu. Microbiol. 53: 2107-2110.

Page 61: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

104  

ANEXOS

a) b) c)

Anexo 1. Parcelas de donde fueron tomadas las muestras de suelo. a) Parcela cultivada con Solanum tuberosum L. (papa) tratada con agroquímicos; b) Parcela cultivada con Allium sativum L. (ajo) tratada con agroquímicos; c) Parcela natural o no cultivada sin tratamiento agroquímico.

Anexo 2. Parcela cultivada con Vicia faba L. (haba) sin tratamiento agroquímico y que fue tomada como control.

Page 62: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

105  

a) b)

Anexo 3. Captura de rizobios con cultivos trampa. a) Plantas de Phaseolus vulgaris L. (caraota); b) Plantas de Macroptilium lathyroides L. (siratro).

a) b)

Anexo 4. Nódulos de donde fueron aislados los rizobios. a) Nódulos formados en plantas de Phaseolus vulgaris L.; b) Nódulos de las plantas de Vicia faba L.

Page 63: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

106  

a) b)

Anexo 5. Bacterias rizobiales aisladas creciendo en medio YMAmrc. a) Aislado ES1 proveniente del suelo cultivado con Solanum tuberosum L. tratado con carbamatos; b) Aislado EV1 proveniente del suelo cultivado con Vicia faba L. no tratado con carbamatos (control).

a) b) c)

Anexo 6. Prueba cualitativa de discos de papel impregnados con las distintas concentraciones de los carbamatos para observar la viabilidad de los rizobios en presencia de estos compuestos. a) Aislado ES1 en YMA + Carbodan ½ (hubo crecimiento); b) Aislado ES1 en YMA + Vondozeb 1/6 (mostrando halo de inhibición); c) Aislado EV1 en YMA + Vondozeb 1/6 (no hubo crecimiento).

Page 64: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

107  

Anexo 7. Trabajo experimental en el laboratorio realizando las curvas de crecimiento de rizobios en presencia de carbamatos.

Anexo 8. Prueba de germinación de semillas de Vicia faba L. en presencia de carbamatos.

a) b) c) d)

Anexo 9. Preparación de la prueba de nodulación y crecimiento de Vicia faba L.; a) Lavado de la arena nueva; b) Secado de la arena en estufa a 120ºC; c) Llenado y preparación de los potes; d) Esterilización de los potes 1,5 Psi (1Atm)x1h/3 días.

Page 65: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

108  

Anexo 10. Plantas de Vicia faba L. en el invernadero en la prueba de nodulación y crecimiento de esta especie.

Anexo 11. Plantas de Vicia faba L. nodulada (ES1) y no nodulada (control) en el desmontaje de la prueba de nodulación y crecimiento de esta especie.

ES Control

Page 66: 10. Composición de medios de cultivo utilizados Medio YMA

 

109  

a) b) c)

Anexo 12. Medición de algunas de las variables en la prueba de nodulación y crecimiento de Vicia faba L. a) Longitud de raíz (cm); b) Peso fresco del vástago (g); c) Peso fresco de nódulos (g).

Anexo 13. Preparación de las muestras para el análisis de nitrógeno foliar.