MILDIUS - Universidad de Sevilla...Mildiu de la patata y del tomate Libera esporangios al aire seco...

Downy mildew: PeronosporaceaeBlight: Phytophthora (dispersión aérea)Powdery mildew: Oidios

MILDIUS

• Etiología• Sintomatología y

diagnóstico• Ciclo biológico• Características

patogénicas y epidemilógicas

Mancha de aceiteManchas amarillas que se necrosan

Polvo de azúcar en envés

MILDIUde la

PATATAy del

TOMATE

PODREDUMBRE

HIELO

Esporangios

Esporangióforo

Phytohthora infestans

Alta humedad/Agua libreHR = 100%Temperaturas no elevadasTª óptima 16-22 ºCAbonadoRiego

SolanaceaePatataTomateBerenjena (plántula)M-H y Ornamentales

ResistenciaVerticalHorizontal

Fenología

AMBIENTE

PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)

PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de

Patogénesis (6-7 d.)

Mildiu de la patata y del tomate

Libera esporangios al aire secoEsporangios ger. Directa e IndirectaTipo de apareamiento A1 y A2Patotipos (razas fisiológicas)Infección cruzada patata/tomate

Origen CentroaméricaEntrada en Europa 1840 Bélgica A1A2 Suiza 1984Distribución mundial

CULTIVO SIN SUELO –lana de roca-

Tomate

AMBIENTE

PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)

PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de

Patogénesis (6-7 d.)

Podredumbre de raíz y cuello del tomate

(2003 Bélgica)

Phytophthora infestans

- Como una Phytophthora más -

A1

A2

Ciclo de patogénesis

SupervivenciaMultiplicación

Dispersión

Prepenetración

Penetración

Infección

Enfermedad

Distribución

Multiplicación

Prepenetración

Penetración

DispersiónCicloprimario

Ciclossecundarios

fuente de inóculo primario

inóculo secundario

micelio tuberculos•siembra•deshecho

formación esporangiosHR 100%

varios kmincluso tiempo seco

esporangios no turgentessolo germinan en agua libre >15h

germinación indirecta 12-15 ºCgerminación directa 15-24 ºC 18 ºC y 100% HR en 7-8 días lesión 6 cm2

85000 esporangios

100% HR alta95% HR media60% HR 30 m. nulaU.V.

Eliminación de las fuentes primarias de inóculo•tubérculos de siembra certificados•semillas de tomate tratadas y certificadas o plántulas sanas•eliminación de restos afectados del cultivo y malas hierbas huésped

Reducción de la humedad ambiente•vertilación de invernaderos•densidad de plantación adecuada•evitar riegos copiosos y el riego por aspersión

Control químico (periodos críticos, alternancia de m.a.)•contacto

•sulfato de cobre•DITIOCARBAMATOS (mancozeb, zineb)•TIOIMIDAS (captan, folpet) •diclofuanida, clortalonil

•sistemicos o penetrantes•ACILALANINAS (metalaxil, benalaxil, oxadixil, ofurance)•TIOCARBAMATOS (cimoxanilo)•fosetil-Al, etil-fosfito•dimetomorf•famoxadona

CONTROL

LOS OIDIOSLOS OIDIOS•• EtiologEtiologííaa•• SintomatologSintomatologíía a

y diagny diagnóósticostico•• Ciclo biolCiclo biolóógicogico•• CaracterCaracteríísticas sticas

patogpatogéénicas y nicas y epidemiolepidemiolóógicasgicas

•• Generalidades Generalidades sobre su controlsobre su control

Blumeria graminis

sin. Erysiphe graminis

Oidio

OIDIO

DE

LOS

CEREALES

Alta humedad/xerofitismo-agua libre inhibe lagerminación de conidios-Temperaturas no elevadasTª óptima 11-21 ºCLuz atenuadaexceso de N

Gramineas festucoidesimportante en:Trigo (duros)CebadaCenteno(Avena....)

Genes de resistencia

7 formae speciales: hordei, tritici, avenae, secalis, agropyri, bromi y poaeRazasadaptación preferenteno infección cruzada (excepto sp. muy próximas)Heterotálica

AMBIENTE

PATÓGENO(POBLACIÓN DE AISLADOS)

PLANTA (CULTIVAR)Ciclos de

Patogénesis

Oidio de los cerealesBlumeria graminis(sin. Erysiphe graminis)

Ciclo de patogénesis

SupervivenciaMultiplicación

Dispersión

Prepenetración

Penetración

Infección

Enfermedad

Distribución

Multiplicación

Prepenetración

Penetración

DispersiónCicloprimario

Ciclossecundarios

fuente de inóculo primario

inóculo secundario

puente verdecleistotecios restos no enterrados

vuelo de conidias-larga distancia-

ascosporas-corta distancia-

viento, tiempo semi-seco

humedad y viento

condiciones semi-secas

Tª optima 15-20 ºCHR 98-100%

inhibe agua libre

7-10 días

infecciones tempranasinicio final enero valle del Guadalquivir

se para tras las lluvias de marzo

Prepenetración—Penetración—Infección

germinación del conidio y formación del haustorio

relación diferencial gen-a-gentrigos duros más susceptibles

resistencia erosionable raza específicamapa de razas-análisis de virulencia (anual)

variación de las resistencia en el espacio y/o tiempoaumentar el nivel de resistencia raza no específica

CONTROL

mapa de razas-análisis de virulencia

Cultivares resistentes•ensayos de resistencia locales•mezcla de cultivares•romper el puente verde-distintos genes de resistencia en los cultivos de primavera y otoño-

Siembras tardías

Control químico (aplicación temprana –¿sin saber como irá el cultivo?-, alternancia de m.a.)•sistémicos o penetrantes

CONTROL

-los más utilizados en nuestra zona-triadimenol Bayfidan 25clortalonil Daconilclortalonil + metiltiofanato Talonil Fortebromuconazol Vectradiniconazol Sumiocho 12,5carbendazima + flutriazol Impact Rcarbendazima + fusilazol Punch CStebuconazol Folicur 25

Bibliografía recomendada

AGRIOS G.N., 1985. Fitopatología. Ed. Limusa, Mexico.

LLÁCER G., LÓPEZ M.M., TRAPERO A., BELLO A., 1996. Patología Vegetal. Tomos I y II. Ed. S.E.F. y PHYTOMA-España, Valencia.

ROBERTS D.A., BOOTHROYD C.W., 1978. Fundamentos de patología vegetal. Ed. Acribia, Zaragoza.

SMITH I.M., DUNEZ J., PHILLIPS D.H., LELLIOTT R.A., ARCHER S.A., 1992. Manual de enfermedades de las plantas. Ed. MundiPrensa, Madrid.

Compendium of ……. (APS)