Laporan Tetap Biokimia Kelompok 22 d

8/18/2019 Laporan Tetap Biokimia Kelompok 22 d

1/83

LAPORAN TETAPPRAKTIKUM BIOKIMIA UMUM

Oleh

KELOMPOK XXII

PROGRAM STUDI TEKNIK PERTANIANFAKULTAS TEKNOLOGI PANGAN DAN AGROINDUSTRI

UNIVERSITAS MATARAMMATARAM

2014


2/83

ii


3/83

iii

Kata Pengantar

Puji syukur kami panjatkan atas kehadirat allah SWT , karena dengan

rahmatNya kami dapat diberikan kesehatan dan kesempatan untuk

menyelesaikan Laporan Tetap Praktikum Biokimia Umum. Sebagai seorang

mahasiswa yang mengambil mata kuliah Biokimia tentunya harus dapat

memahami mata kuliah ini dan terutama kami tentu saja harus lebih memahami

mengenai praktikum ini. Semoga dengan selesainya laporan ini, dapat pula

memberikan hasil yang maksimal. Harapan kami, semoga yang sudah dipraktikan

dan laporan yang telah kami susun dapat juga memberikan hasil yang terbaik .

Tak lupa ucapan terima kasih kami kepada Coass karena telah

berkesempatan untuk memberikan bimbingan agar pengetahuan kami

bertambah. dengan segala kerendahan hati, kami mengharap kritik dan saran

atas laporan yang telah kami susun ini, karena kesempurnaan hanyalah milik

Allah SWT. Akhir kata saya ucapkan terima kasih .

Mataram , 16 Desember 2014

Penyusun


4/83

iv

DAFTAR ISI

HalamanHALAMAN PENGESAHAN ...................................................................... iiKATA PENGANTAR ................................................................................ iiiDAFTAR ISI .......................................................................................... ivDAFTAR TABEL ..................................................................................... v

ACARA I. PENGENALAN ALAT DAN BAHAN LABORATORIUM .............. 1Pendahuluan ............................................................................. 1Tinjauan Pustaka ....................................................................... 2Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 4Hasil Pengamatan dan Pembahasan ............................................ 5Kesimpulan ............................................................................... 9

ACARA II. PENGUJIAN KARBOHIDRAT ............................................... 10Pendahuluan ............................................................................. 10Tinjauan Pustaka ....................................................................... 11Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 12Hasil Pengamatan ...................................................................... 14Pembahasan .............................................................................. 18Kesimpulan .............................................................................. 19

ACARA III. PENGUJIAN PROTEIN ........................................................ 20Pendahuluan ............................................................................. 20Tinjauan Pustaka ....................................................................... 21

Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 22Hasil Pengamatan ...................................................................... 25Pembahasan .............................................................................. 27Kesimpulan ............................................................................... 30

ACARA IV.PENGUJIAN LEMAK .............................................................. 31Pendahuluan ............................................................................. 31Tinjauan Pustaka ....................................................................... 32Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 33Hasil Pengamatan ...................................................................... 37Pembahasan .............................................................................. 38Kesimpulan ............................................................................... 40

ACARA V. LARUTAN ENZIM .................................................................. 41Pendahuluan ............................................................................. 41Tinjauan Pustaka ....................................................................... 42Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 44Hasil Pengamatan ...................................................................... 46Pembahasan .............................................................................. 47Kesimpulan ............................................................................... 49

ACARA VI.LARUTAN BUFFER................................................................50Pendahuluan ............................................................................. 50Tinjauan Pustaka ....................................................................... 51Pelaksanaan Praktikum ............................................................... 54

Hasil Pengamatan ...................................................................... 55


5/83

v

Pembahasan .............................................................................. 57Kesimpulan ............................................................................... 58

DAFTAR PUSTAKA ................................................................................ 59DAFTAR LAMPIRAN...............................................................................64


6/83

vi

DAFTAR TABEL

Tabel Halaman1.1. Pengamatan Alat-alat Praktikum dan Fungsinya ...................................... ..9

1.2. Hasil Pengamatan Analisis MSDS Kimia .................................................. ..9

2.1. Hasil Uji Kualitatif Berbagai Jenis Karbohidrat Berdasarkan Sifat ............... 22

2.2. Hasil Uji Kualitatif Berbagai Jenis Karbohidrat Berdasarkan

Terbentuknya Furfural .......................................................................... 22


Terbentuknya Furfural ......................................................................... 22


Terbentuknya Iodin ............................................................................. 22

3.1. Hasil Uji Kualitatif Asam Amino Dengan Uji Ninhidrin .............................. 34

3.2. Hasil Uji Kualitatif Asam Amino Dengan Uji Biuret ................................... 34

3.3. Hasil Uji Pengamatan Uji Sulfur Beberapa Jenis Larutan .......................... 34

3.4. Hasil Pengamatan Pengendapan Susu Segar Pada Berbagai pH ................ 45

4.1. Hasil Pengamatan Uji Sifat Kelarutan Lemak ........................................... 45

4.2.Hasil Pengamatan Uji Penyabunan Lemak. .............................................. 54

4.3. Hasil Pengamatan Uji Tingkat Ketidak Jenuhan Lemak ............................ 54

5.1. Hasil pengamatan Perubahan Warna Larutan pH nya Dipanaskan

selama 30 menit pada suhu 38 .......................................................... 34

5.2. Hasil Pengamatan Perubahan Warna Larutan Pati Pada pH

Berbeda............................................................................................... 34

6.1. Hasil Pengamatan pH Larutan HCl 0,1 M Dengan Penambahan

NaOH 0,01 N ....................................................................................... 34

6.2. Hasil Pengamatan Perubahan pH Larutan H3PO4 0,05 M DenganPenambahan NaOH 0,05 N .................................................................... 45


7/83

vii

DAFTAR GRAFIK

Grafik Halaman6.1. Titrasi Larutan HCl 0,1 M ………………………………………………………………….…55 6.2. Titrasi Larutan H3SO4 0,01 M…………………………………………………………..……55


8/83

1

ACARA I PENGENALAN ALAT LABORATORIUM

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Pengenalan alat merupakan langkah pertama sebelum kita melakukan

percobaan atau penelitian. Dengan mengenal alat kita dapat mengetahui fungsi

masing-masing bagian dari alat tersebut serta cara pengoperasian atau

penggunaan alat-alat yang akan digunakan dalam percobaan atau penelitian

yang dilakukan dan dengan kita mengetahui akan fungsi dan juga cara

penggunaan alat-alat yang akan digunakan dapat memperlancar jalannya suatu

percobaan atau penelitian. Sehingga dengan berbekal pengetahuan pemahaman

akan fungsi dan cara kerja dari alat yang akan digunakan kita dapat memperoleh

hasil suatu percobaan atau penelitian yang maksimal. Selain pengetahuan

pemahaman akan alat, kita juga di tuntut untuk terampil dalam alat-alat yang

kita gunakan. Hal ini harus dibarangi dengan ketelitian dalam melakukan suatu

percobaan atau pun penelitian, sehingga didapatkan hasil yang maksimal,

(Abynoel, 2008). Oleh karena itu, dilakukanlah praktikum ini agar mengenal alat

dan bahan didalam laboratorium.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari praktikum ini adalah untuk dapat mengenal alat-alat

dan bahan kimia serta mengetahui fungsi dari alat-alat dilaboratorium Kimia dan

Biokimia Umum.

Syaiful Islam


9/83

2

TINJAUAN PUSTAKA

Laboratorium merupakan tempat melakukan penelitian dan berbagai

percobaan. Dalam penggunaan alat-alat di laboratorium tidaklah semudah

mempergunakan peralatan rumah tangga, walaupun keduanya memiliki fungsi

yang tidak jauh berbeda jika tidak berhati-hati dalam penggunaanya, peralatan

laboratorium dapat rusak, hasil penelitian gagal atau kurang memuaskan dan

bahkan dapat menyebabkan dampak negatif padakeselamatan diri kita sendiri

(Answono, 2010).

Alat-alat dalam laboratorium perlu kita rawat dan perhatikan karena akan

sangat berguna. Setiap alat memiliki fungsi dan prosedur keerja yang berbeda-

beda , oleh karena itu penting bagi kita untuk mengenal prosedur kerja setiap

alat dan fungsinya masing-masing. Suatu laboratorium harus merupakan tempat

yang aman bagi para pekerja atau pemakai yaitu para praktikum. Aman

terhadap kemungkinan kecelakaan fatal maupun sakit atau gangguan kesehatan

lainnya. Hanya didalam laboratorium yang aman, bebes dari rasa khawatir akan

kecelakaan dan keracunan. Seseorang dapat bekerja dengan aman,produktif dan

efisien (Sutrisno dan Numinabari, 2013).

Pada dasarnya setiap alat memiliki nama yang menunjukan kegunaan

alat, prinsip kerja atau proses berlangsungnya ketika alat digunakan. Beberapa

kegunaan dapat dikenali berdasarkan namanya. Penamaan alat-alat yang

mengukur biasanya diakhiri dengan kata meter seperti thermometer,

spektometer dan lain-lain (Answono, 2010).

Secara umum fungsi setiap alat diberikan secara umum karena mungkin

tidak semua fungsi diutarakan,dalam melakukan kegiatan dilaboratorium untuk


10/83

3

memudahkan dalam memahami alat-alat laboratorium dapat digunakan dalam

waktu relatif lama dan dalam keadaan baik, perlu pemeliharaan dan

penyimpanan yang memadai (Choudhary, 2008).

Melakukan suatu percobaan dilaboratorium,kadang-kadang harus di pilih

bahan-bahan, peralatan yang cocok sehingga tidak keliru atau salah pengertian

mengenai sifat dari bahan tersebut. Pemakaian bahan kimia akan sangat

berpengaruh terhadap alat-alat yang akan digunakan, ada yang terbuat dari

gelas, porselen, kayu, alumunium, plastik, dan lain-lain sesuai dengan fungsinya

masing-masing (Anonim, 2010).

Alat tersebut ada yang tahan terhadap basah, tahan terhadap kondisi

asam, tahan terhadap panas, dan ada yang hanya tahan terhadap kondisi

normal. Oleh karena itu, penggunaan alat dan bahan kimia sangat menentukan

keberhasilan suatu penelitian (Ferrenda, 2010).


11/83

4

PELAKSANAN PRAKTIKUM

Waktu dan Tempat Praktikum

Praktikum ini dilaksanakan pada hari Selasa, 14 Oktober 2014 di

Laboratorium Kimia dan Biokimia Pangan Fakultas Teknologi Pangan dan

Agroindustri Universitas Mataram.

Alat dan Bahan Praktikum

a.

Alat-alat dan Bahan Praktikum

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah gelas

kimia, erlemeyer , labu destilasi, tabung reaksi, filler (karet pengisap), pipet

ukur, pipet tetes ,gelas ukur, hot plate dan spatula.

b. Bahan-bahan praktikum

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum kali ini adalah

Asam nitrat (HNO3), Sodium hydroxide (NaOH), Ethanol (C2H5OH), Asam

klorida (HCL), Natrium klorida (NaCL).


12/83

5

PEMBAHASAN

Table 1.1 Pengamatan Alat-alat Praktikum dan Fungsinya

NO Nama dan Gambar alat Fungsi alat

1

Gelas kimia

- untuk mengukur volume larutanmemerlukan tingkat ketelitian yangtinggi.

- menampung zat kimia.- menempung cairan

2

Erlenmeyer

- Untuk menyimpan dan memenaskanlarutan

- Menampung fitrat hasil penyaringan- Menampung titran (larutan yang dititrasi)

3

Labu destilasi

- Untuk memisahkan zat cair dari larutanpadatan maupun larutan cair dalamproses destilasi.

5

Tabung reaksi

- Sebagai tempat untuk mereaksikanbahan kimia.

- Untuk melakukan reaksi klimia dalamskala kecil.

5

Filler (karet penghisap)

Untuk menyedot cairan keatas dari ujungpipet ukur

http://wanibesak.files.wordpress.com/2010/10/clip_image0291.jpg


13/83

6

6

Pipet ukur

Untuk mengambil cairan adalah junlahtertentu secara tepat

7

Pipet tetes

Untuk mengambil atau memindahkancairan dalam bentuk skala tetesan kecil.

8 Pipet gondok/pipet volume Digunakan untuk Mengambil larutandengan volume tepat

9

Hot plate

Untuk memanaskan larutan.biasanyauntuk larutan yang mudah terbakar.

10

Spatula

-Untuk mengambil bahan kimia yangberbentuk padat

-Dipakai untuk mengaduk larutan

http://wanibesak.files.wordpress.com/2010/10/clip_image0271.jpghttp://4.bp.blogspot.com/_uHRfE5hYhkU/S3W8Bj6ih1I/AAAAAAAAABM/lnERH93UWz8/s1600-h/pipet+volum.jpghttp://wanibesak.files.wordpress.com/2010/10/clip_image0251.jpghttp://wanibesak.files.wordpress.com/2010/10/clip_image0221.jpg


14/83

7

Tabel 1.2 Hasil Pengamatan Analisis MSDS Bahan Kimia

No. Nama Bahan Nama

DagangSifat Bahaya Cara Penanganan

1. Asam Nitrat(HNO3)

AsamNitrat,Pupuk

- Bentuk : cair- Warna : tidak berwarna

-

Bau : pedih-

Titik lebur : - 32oc-

Titik didih : 121 oc-

Tekanan uap : 94 Pa (20oc)

- Destinas : 1,90o /cm3 (20oc)- Kelarutan dalam air : 20oc larut

-

Berat molekul :-

63,012 g/mol

- Ph :< 1 (20oc)-

Masa relatif mr : 63,012 g/mol

Asam nitrat tidak stabil terhadap panas danrata-rata hari dan akan terurai sebagai2HNO3+1/2O2 2N3 + Ho2

Sejenis cairan yangtak berwarna danmerupakan sejeniscairan korosit asamberacun yang dapatmenyebabkan luka

bakar.

- P3K- Setelah terhirup dari bahan maka segera hiriupudara segar, kemudian minta bantuan dokter.

-

Kontak dengan kulit segera cuci dengan airdalam jumlah banyak untuk menghindari terjadidampak sistematik, oleh karena itu dengan

polyethylene glycol 1400- Tertelan segera minum air (paling banyak 2

gelas) dan hindari muntah (risiko pecotarasi).-

Segera panggil dokter.

2 SodiumHydroxide (NaOH)

Soda Api -

Masa molar : 39,99HI0/11011-

Penampilan : putih solid-

Kepadatan : 2,13 9?cm3 -

Titik lebur : 318oc 591K 604oF

- Kelarutan dalam air : 1101 9/L (20oc)-

Kelarutan dalam methanol : 238 9/L-

Kelarutan dalam gliiserol : larut

- Keasaman : -13- Tidak berwarna

-

Larut dalam air-

Kepadatan 5% larutan 1,05-

PH : 14,0

-

% Volahi dan volume 21 (70F)- Bentuk : pallet- Sangat basa, keras dan rapuh

-

Mudah larut.

-

Menyebabkan iritasidan luka bakar

-

Berbahaya jikatertelan

- Korosit-

Dapat berakibatfatal bila tertelan

-

Mata : bilas dengan air min 15 menit.-

Kulit : basuh dengan ai + 15 menit.-

Tertelan : jangan dimuntahkan jika dalamkeadaan sadar segera minum.

- Terhirup : jika tidak bernapas beri napas buatan, jika sulit bernapas beri oksigen.-

Tindakan pelepasan darurat : buka ventilasi area

kebocoran/tumpahan jauhkan orang dari daerahtumpahan pakai pelindung peralatan pribadiyang sesuai.

3 Asam Klorida(HCl)

AsamKlorida

-

Bentuk cairan-

Bau menyengat-

Jika terkena mataakan mengalami

-

Mata dibilas dengan air sebanyak –banyaknyasegera lepas pakaian yang terkontaminasi.


15/83

8

-

Warna bening sampai agak kekuningan-

Massa jenis : 2,31

- Titik lebut : -20oc-

Titik didih : 05oc

-

Tekanan uap (20oc – 20m bar)-

Kelarutan dalam air : (20oc) terlarut 82,31?100m

kebutaan -

Tertelan, bila sadar beri minum 1-2 gelas untukpencernaan hindari pemanis buatan.

- Terhirup, beri dia oksigen.

4 Ethano l(C2H3OH)

Etanol -

Bentuk fisik : air-

Bau khas alcohol

- Tak berwarna- Titik didikl :>76oc (168,80F)

-

Titik beku : -113,84oc (-172,9oF)-

Masa jenis : 0,789-0,806

- Destilasi : 1,59-1,62-

Tingkat penguapan :1,7

-

Lof kw :


16/83

9

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pengamatan dan pembahasan dapat disimpulkan

sebagi berikut :

1. Didalam laboratorium kita harus selalu mengikuti petunjuk dari asisten

sebelum melakukan kegiatan praktikum.

2. Sebelum praktikum dimulai kita harus terlebih dahulu mengetahui fungsi

dan peralatan serta cara menggunakan alat yang akan kita gunkan.

3. Penggunaan alat-alat yang tidak steril dapat menyebabkan kegagalan

pada praktikum yang dilakukan.

4. Melakukan suatu percobaan di laboratorium kadang harus dipilih bahan

peralatan yang cocok, sehingga tidak keliru atau salah pengertian

mengenai sifat bahan peralatan tersebut.

5.

Eksperimen merupakan salah satu langkah penting dalam pengembangan

yang berkaitan, oleh karena itu perkuliahan boikimia perlu di barengi

dengan pekerjaan dilaboratorium.


17/83

10

ACARA IIPENGUJIAN KARBOHIDRAT

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Karbohirat atau sakarida adalah polisakarida aldehid polihidroksi keton,

atau senyawa hasil hidrolisis dari keduanya. Penyusun utama karbohidrat adalah

unsur C, H dan O. Perbandingan jumlah atom H dan O adalah 2:1 seperti

molekul air (Handito, 2014). Karbohidrat dari kelompok monosakarida dan

disakarida mempunyai sifat dapat mereduksi, terutama dalam suasana basa.

Sifat mereduksinya itu dapat dijadikan untuk mengidentifikasi dan analisis

kuantitatif karbohidrat. Adanya karbohidrat dalam suatu bahan dapat dideteksi

dengan berbagai jenis uji,diantaranya uji Barfoed, uji Benedict, uji Seliwanoff, uji

Molisch, uji Fermentasi, uji Osazon dan uji Iodin (Anonim, 2010). Oleh karena

itu, dilakukan uji karbohidrat untuk dapat menunjukkan sifat dan struktural

karbohidrat melalui uji-uji kualitatif dan mengamati beberapa struktur

karbohidrat melalui sifat reaksinya dengan beberapa reagen uji.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari praktikum ini yakni untuk mengidentifikasi berbagai

jenis karbohidrat berdasarkan sifat pereduksinya, dan jenis polisakarida

berdasarkan perubahan warna Iodin yang terikat pada molekul polisakarida

sebelum dan sesudah terhidrolisis, serta untuk mengidentifikasi sifat-sifat umum

berbagai jenis karbohidrat berdasarkan terbentuknya furfural.

SYAIFUL ARIFIN


18/83

11

TINJAUAN PUSTAKA

Metode yang sering digunakan dakam analisis kadar gula suatu sampel,

biasanya menggunakan reagen Benedict. Suatu gulall pereduksi dapat dibuktikan

dengan terbentuknya endapan merah bata. Terbentuknya endapan merah bata

ini sebagai hasil reduksi ion Cu+ oleh suatu gugus aldehid atau keton bebas yang

terkandung dalam gula reduksi yang berlangsung dalam suasana Alkalis(basa).

Reagen Benedict mengandung ion Cu

+

yang akan direduksi oleh gula menjadi ion

Cu+ melalui proses pemanasan (Indarti, 2011).

Uji Seliwanoff digunakan untuk menunjukkan adanya ketoheksosa seperti

fruktosa. Pereaksi Seliwanoff adalah resimol dalam asam klorida encer.

Pendidihan fruktosa dengan pereaksi Seliwanoff menghasilkan larutan merah

ceri. Ada dua tahap dalam reaksi pendidihan tersebut, yaitu dehidrasi fruktosa

oleh HCl, membentuk hidroksimetil furful dan kondensasi hidroksimetil furfural

dengan resorsinol membentuk senyawa merah ceri (Sumardjo, 2008).

Pati dan Iodium membentuk ikatan kompleks berwarna biru. Pati dalam

suasana asam bila dipanaskan dapat terhidrolisis menjadi senyawa yang lebih

sederhana, hasil diuji dengan Iodium yang akan membentuk warna biru sampai

tidak berwarna dan hasil ditegaskan dengan uji Benedict (Zulfikar, 2010).

Pereaksi Molisch terdiri atas larutan naftol dalam alkohol. Jika

pereaksi Molisch ditambahkan kedalam larutan glukosa, kemudian ditambahkan

larutan asam sulfat pekat secara hati-hati maka akan terbentuk dua lapisan zat

cair. Pada lapisan batas antara kedua zat cair itu terbentuk warna ungu. Warna

ungu ini merupakan hasil reaksi kondensasi antara furfural dan naftol

(Handito, 2014).


19/83

12

Uji Molisch adalah uji kimia kualitatif untuk mengetahui adanya

karbohidrat. Uji ini didasari oleh reaksi dehidrasi karbohidrat oleh asam sulfat

membentuk cincin furfural yang berwarna ungu. Reaksi positif ditandai dengan

muncuknya cincin ungu dipermukaan antara lapisan asam dan lapisan sampel.

Sampel diuiji dengan dicampurkan dengan reagen Molisch, yaitu naftol yang

terlarut dalam etanol. Setelah pencampuran, H2SO4 pekat perlahan-lahan

dituangkan melalui dinding tabung reaksi agar tidak bercampur dengan larutan

atau hanya membentuk lapisan. H2SO4 pekat berfungsi untuk menghidrolisis

ikatan pada disakarida untuk menghasilkan furfural. Furfural ini kemudian bereksi

dengan reagen Molisch, naftol membentuk cincin berwarna ungu (Riyadi,

2010).


20/83

13

PELAKSANAAN PRAKTIKUM


Praktikum ini dilaksanakan pada hari Selasa, 4 November 2014 di

laboratorium Biokimia Fakultas Teknologi Pangan dan Agroindustri.


a.

Alat-alat Praktikum

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum kali ini adalah 5

tabung reaksi, penangas air, pipet tetes dan pipet ukur.

b. Bahan – bahan Pratikum

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini yaitu larutan

uji (Aquades, Glukosa 1%, Sukrosa 1%, Fruktosa 1% Dan Pati 1%) dan

beberapa reagen uji (pereaksi Benedict, pereaksi Seliwanoff, pereaksi Molisch,

dan pereaksi Iodin).

Prosedur Kerja

a. Ulji Benediclt

Diisi dengan larutan aquades, glukosa 1%, fruktosa 1%,sukrosa 1%, pati 1%+ 2 ml pereaksi Benedict

5 tabllung reaksi

Panaskan dipenangas air selama 5 menit

Diamati perubahan


21/83

14

b. Uji Molisch

c. Uji Iodin

d. Uji Seliwanoff

5 tabung reaksi

Diisi larutan aquades, glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, pati 1%

+ 2-3 tetes pereaksi Molisch

+2 ml larutan S pekat secara perlahan melalui dinding tabung

Diamati apakah terbentuk cincin ungu

4 tabung reaksi

Diisi aquades, glukosa 1%, sukrosa 1%, dan Pati 1%

+ 1 ml larutan Iodium pada masing-masing tabung, digojog

Amati dan catat warna yang ditunjukkan masing-masing tabung

+ 3-5 tetes larutan HCl encer pada masing-masing tabung

Dipanaskan pada penangas air selama 5-10 menit

Amati perubahan warna

5 tabung reaksi

Diisi Larutan aquades, glukosa 1%, fruktosa 1%, sukrosa 1%, pati 1%

+ 2 ml pereaksi Seliwanoff pada masing-masing tabung, digojog

Dipanaskan selama 5 menit


22/83

15

Amati perubahan warna tiap menit


23/83

16

HASIL PENGAMATAN

Tabel 2.1.Hasil Uji Kualitatif Berbagai Jenis Karbohidrat Berdasarkan SifatPereduksinya

No Larutan Warna awalWarna setelah

ditambah BenedictWarna setelah

dipanaskan

1 Aquades PutihBening Biru Bening Biru Bening

2 Glukosa Putih Bening Biru Bening Merah Bata

3 Fruktosa Putih Bening Biru Bening Merah Bata

4 Sukrosa Putih Bening Biru Bening Biru Bening

5 Pati Putih Bening Biru Bening Biru Bening

Tabel 2.2. Hasil Uji Kualitatif Berbagai Jenis Karbohidrat BerdasarkanTerbentuknya Furfural

No Larutan Warna Setelah ditetesi pereaksiMolisch

Terbentuknya cincingungu

1 Aquades Putih keruh, ada endapan Terbentuk

2 Glukosa Putih keruh, ada endapan Terbentuk

3 Fruktosa Putih keruh, ada endapan Terbentuk

4 Sukrosa Putih keruh, ada endapan Tidak Terbentuk

5 Pati Putih keruh, ada endapan Terbentuk

Tabel 2.3.Hasil Uji Kualitatif Berbagai Jenis Karbohidrat BerdasarkanTerbentuknya Furfural

Larutan Warna setelahDitambahpereaksi

Warna Menit ke-

1 2 3 4 5

Aquades Beningkekuningan

Beningkekuningan

Beningkekuningan

kekuningan Kekuningan Kekuningan

Glukosa Bening

kekuningan

KuningKekuningan kekuningan Merah Kekuningan

Fruktosa Beningkekuningan

KuningOrange Merah Merah bata merah pekat

Sukrosa Beningkekuningan

Beningkekuningan

Orange Merah bata Merah bata Merah bata

Pati Beningkekuningan

Beningkekuningan

kekuningan kekuningan kekuningan kekuningan


24/83

17

Tabel 2.4. Perubahan Warna Larutan Karbohidrat dengan Uji Iodin

No Larutan Warna setelah ditetesi

Iodin

Warna setelah ditambah

HCl1 Aquades Kuning keemasan Kuning keemasan

2 Glukosa Kuning keemasan Kuning keemasan

3 Sukrosa Kuning keemasan Kuning keemasan

4 Pati Biru pekat Biru pekat


25/83

18

PEMBAHASAN

Dikenal beberapa jenis pengujian untuk menentukan kandungan yang

terdapat di dalam karbohidrat . Pada praktikum kali ini, kita melakukan berbagai

jenis pengujian. Pertama adalah uji Benedict. Hal pertama yang dilakukan yaitu

mengisi 5 tabung reaksi dengan larutan yang berbeda, yakni Aquades, Glukosa

1%, Fruktosa 1%, Sukrosa 1% dan Pati 1%. Kemudian seluruh tabung

ditambahkan dengan Reagen Benedict sebanyak 2 ml. Untuk sementara semua

sampel tadi berubah menjadi warna Biru bening dari warna awal putih bening.

Namun setelah dilakukan pemanasan selama 5 menit untuk semua sampel, pada

Glukosa dan fruktosa terbentuk warna merah bata. Sedangkan aquades, sukrosa

dan pati tidak menunjukkan perubahan warna. Warna merah bata

mengindikasikan adanya gugus aldehid atau keton bebas di dalam sampel

larutan.

Suatu gula reduksi dapat dibuktikan dengan terbentuknya warna merah

bata. Terbentuknya warna merah bata ini sebagai hail reduksi ion Cu2+ menjadi

Cu2+ oleh suatu gugus aldehid atau keton bebas yang terkandung dalam gula

reduksi yang berlangsung dalam suasana alkalis (Indarti, 2011).

Uji Molisch Berdasarkan percobaan , maka diperoleh data bahwa semua

larutan uji kecuali Sukrosa dapat membentuk sebuah kompleks warna ungu yang

disebut cincin ungu pada saat ditambahkan dengan larutan H2SO4 pekat. Hal ini

membuktikan adanya karbohidrat dalam larutan tersebut. Namun seharusnya

semua larutan uji kecuali aquades dapat membentuk cincin ungu. Diperkirakan

ada kesalahan pada saat penambahan larutan H2SO4 pada larutan uji. Pada saat

penambahan H2SO4 tidak diperkenankan larutan diaduk atau digoyang-


26/83

19

goyangkan agar larutan tidak tercampur. Jika pereaksi Molisch ditambahkan

dengan larutan asam sulfat pekat secara hati-hati, maka akan terbentuk dua

lapisan zat cair. Pada lapisan batas antara kedua lapisan itu terbentuk warna

ungu. Warna ungu ini merupakan reaksi kondensasi antara furfural dan -naftol

(Handito, 2014).

Uji Iodin adalah uji untuk mengidentifikasi ada tidaknya polisakarida

dalam larutan Aquades, Glukosa 1%, Sukrosa 1% dan Pati 1%. Saat keempat

larutan uji ditambahkan pereaksi Iodin, Pati berubah menjadi warna biru pekat

atau ungu. Sedangkan larutan sisanya semua berwarna kuning keemasan atau

orange. Ketika HCl sudah diteteskan pada semua tabung, tidak terjadi perubahan

warna setelah dipanaskan. Warna biru pada pati menunjukkan bahwa pati adalah

polisakarida.

Terakhir adalah uji dengan menggunakan pereaksi Seliwanoff. Beberapa

karbohidrat memiliki gugus keton. Adanya gugus keton ini dapat dibuktikan

dengan uji Seliwanoff. Pada percobaan ini, digunakan glukosa 1%, pati 1%,

sukrosa 1%, fruktosa 1% dan aquades yang kemudian ditetesi 2 ml pereaksi

Seliwanoff pada masing-masing tabung yang memuat kelima larutan itu lalu

digoyang-goyangkan. Setelah itu semua larutan dipanaskan selama 5 menit .

Perolehan data dari uji ini yaitu bahwa fruktosa dan sukrosa menunjukkan

perubahan warna menjadi merah. Sebagai reaksi positifnya, karbohidrat yang

mengandung gugus keton direaksikan dengan seliwanof akan menunjukkan

warna merah. Jadi dapat dibuktikan bahwa fruktosa dan sukrosa merupakan

karbohidrat yang mengandung gugus fungsi keton.


27/83

20

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pengamatan dan pembahasan, maka dapat diambil

beberapa kesimpulan yaitu sebagai berikut :

1. Karbohidrat merupakan polisakarida aldehid atau polisakarida keton atau

senyawa yang menghasilkan senyawa ini bila dihidrolisis.

2. Dalam melakukan identifikasi karbohidrat dilakukan dengan cara uji molish

yang bereaksi positif dengan adanya endapan berwarna ungu

3. Semua monosakarida dan disakarida adalah gula peruduksi kecuali sukrosa

dimana disakarida dan polisakarida dapat diubah menjadi monosakarida oleh

reaksi hidrolisis pati

4. Hasil hidrolisis sukrosa adalah monosakarida-monosakarida (glukosa dan

fruktosa) yang terdeteksi pada uji Benedict dan seliwanoff, sedangkan uji

iodine dilakukan pada kondisi asam karena akan menghasilkan hasil yang

optimal.

5. Sukrosa, Fruktosa dan Glukosa masing-masing dalam larutan 1% terbukti

positif Karbohidrat.


28/83

21

ACARA IIIPENGUJIAN PROTEIN

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Protein memegang peran penting dalam kehidupan, proses kimia yang

berlangsung dalam tubuh dengan adanya enzim merupakan fungsi dari protein

sebagai biokatalis. Mengingat banyaknya fungsi dan manfaat protein bagi

kehidupan kita, serta pentingnya kita untuk mengetahui berbagai jenis protein.

Protein dapat diperoleh dari hewan dan tumbuhan, protein berasal dari hewan

disebut protein hewani dan protein yang berasal dari tumbuhan disebut protein

nabati. Beberapa makanan sebagai sumber protein ialah daging, telur, susu,

ikan, beras, kacang, kedelai, gandum, jagung dan buah-buahan (Hartono, 2008).

Oleh karena itu, dilakukan praktikum ini untuk mengidentifikasi protein secara

kimia dengan mengenal sifat pengendapan dan perubahan warna yan gterjadi

bila protein tersebut ditambahkan senyawa kimia tertentu.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari praktikum ini adalah agar dapat mengetahui

pengujian protein dari identifikasi gugus R asam amino yang mengandung sulfur

pada uji sulfur, identifikasi adanya gugus - asam amino bebas pada suatu

bahan, identifikasi adanya ikatan peptide pada uji bueret dan identifikasi titik

isoelektrik kasein pada uji sifat isoelektrik protein.

SUHAIDIN


29/83

22

TINJAUAN PUSTAKA

Protein merupakan sebagai besar menu makanan manusia, hampir

semuanya protein berasal dari biji, khususnya dari tanaman serealia seperti padi,

gandum, dan jagung. Protein disini dapat dianalisa secara kualitatif dengan

metode sederhana seperti uji biuret dan sebagiannya (Gilvery, 2009).

Protein merupakan unit penyusun utama tubuh. Protein juga yang

mempunyai monomer suatu asam amino. Asam amino sendiri sendiri merupakan

senyawa kimia yang mengandung 2 gugus fungsi berbeda maka dari itu reaksi

identifikasi suatu protein tidak jauh dari reaksi kedua gugus fungsi tersebut salah

satu identifikasi protein adalah dengan cara denaturasi protein. Denaturasi

protein ini dapat dilakukan dengan penambahan asam atau ion logam berat

(Poedjiadi, 2009).

Protein berfungsi sebagai katalisator, sebagai pengangkut dan

penyijmpanan molekul lain seperti oksigen, mendukung secara mekanis sistem

kekebalan (imunitas) tubuh, menghasilkan pergerakan tubuh, sebagai transmitor

gerakan syaraf dan mengendalikan pertumbuhan dan perkembangan. Analisa

elemnter C, H, N dan O sering juga Z dan S. Di samping itu beberapa protein

juga mengandung unsure-unsur lain terutama P, Fe, Zi dan Cu (Katili, 2009).

Protein pada susu tidak selalu aktif dan bermanfaat ketika masih dalam

bentuk aslinya (nativa) namun akan aktif ketika ada aktifitas proteolotik yang

lebih kecil dan aktif (Karitas, 2013). Protein merupakan makromolekul yang

memiliki berat jenis yang sangat tinggi, yaitu sekitar 5.000 sampai dengan

1.000.000 Dalton. Protein terbentuk dari assam amino yang diikat oleh pertida

(Hartono, 2008).


30/83

23



Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 11 November 2014 di




a. Alat-alat Praktikum

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalaah tabung

reaksi, pipet volum, piper tetes, penangas air, penjepit tabung reaksi, karet

gelang dan tissu.

b. Bahan-bahan Praktikum

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah

Aquades, larutan Glisin 1%, Albumin 0,5 ml, CuSO4 0,5% NaOH 10%, Pb-

asetat, Asam asetat 0,1 M, Asam Asetat 0,01 M.

Prosedur Kerja

a. Uji Ninhidrin

Aquades, Glisin 1%, Albumin

1 ml sampel

Tabung reaksi

1 ml Ninhidrin

Dipanaskan 5 menit 1000C


31/83

24

b. Uji Biuret

Aquades, Glisin 1% Albuinin

c. Uji Sulfur

Glisin 1%, Albumin 0,5 ml sampel

d. Uji Isoelektrik Protein

Susu Segar

Diamati perubahan warna

1 ml sampel

Tabung reaksi

1 ml Cu SO4 0,5%, 1 ml NaOH 10%

Panaskan, 100%C, 5 menit

Diamati perubahan warna

Tabung reaksi

+ 2,5 ml aquades

+ 2 tetes NaOH 40% ,Diaduk rata/digojog

+ 2 tetes Pb - asebat

Panaskan 1000C, 5 menitDiamati perubahan

6 tabung


32/83

25

1 ml sampel

Tabung reaksi

1 – 3+ 2,4 ml Aquades

+ 4,2 1 ml Asam Asetat 0,1 m

4 – 6+ 1,3,5 3,7 ml Aquades

+ 5,2,5 1,25 ml Asetat 0,01 m

DiadukDiaduk

Diamati endapanDiamati endapan


33/83

26

HASIL PENGAMATAN

Tabel 3.1. Hasil uji kualitatif asam amino dengan uji ninhidrin

Jenis Larutan Perubahan Warna

AquadesGlisin 1%albimin

BeningUngu pekat

Ungu

Tabel 3.2. Hasil uji kualitatif peptida dengan uji bluret


Aquades

Glisin 1%albimin

Abu-abu

BiruCoklat pekat

Tabel 3.3. Hasil pengamatan uji sulfur beberapa jenis larutan


Glisin 1% Albumin 0,5 ml

BeningCoklat gelap

Tabel 3.4. Hasil pengamatan pengendapan susu segar pada berbagai PH

Jumlah endapan

Nomor Tabung Reaksi1 2 3 4 5 6

PH

4,1 4,4 4,8 5,1 5,4 5,7

2 2 3 3 1 1

Keterangan:1 = Tidak ada endpan2 = Sedikit endapan3 = Banyak endapan


34/83

27

PEMBAHASAN

Protein merupakan polimer dari sekitar 21 asam amino yang berlainan

dengan ikatan peptide, karena keragaman rantai samping yang terbentuk jika

asam-asam amino tersebut disambung-sambungkan. Protein yang berbeda dapat

mempunyai sifat kimia dan struktur sekunder dan tersier yang berbeda pula.

Protein merupakan suatu zat makanan yang sangat penting bagi tubuh, karena

zat ini di samping berfungsi sebagai pembakar dalam tubuh juga berfungsi

sebagai zat pembangun dan pengatur. Protein adalah sumber asam-asam yang

mengandung unsure C, H, O dan N yang tidak dimiliki oleh lemak

maupunkarbohidrat. Protein merupakan kumpulan dari beberapa asam amino

atau lebih yang dihubungkan dengan suatu ikatan peptide (Hartono, 2008).

Praktikum kali ini akan dilakukan berbagai pengujian terhadap protein.

Pengujian ini diantaranya adalah uji Ninhidrin, Biuret, Sulfur, dan Sifat Isoelektrik

protein. Pengujian pertama uji Ninhidrin yaitu suatu senyawa oksidator kuat yang

apabila bereaksi dengan asam amino amino pada pH 4 – 8 akan menghasilkan

warna ungu. Reaksi ini terjadi dengan senyawa amin primer dan amino tanpa

pembebasan CO, Reaksi Ninhidrin digunakan untuk mengetahui adanya

kandungan asam - amino. Pada asam amino terdapat gugus karboksil yang

dapat dilepaskan dengan proses dekar boksilasi dan menghasilkan suatu amina.

Gugus amino pada asam amino dapat bereaksi dengan asam nitrit dan kemudian

melepaskan gas nitrogen warna ungu (Ruthemanin = 570 nm) akan terbentuk

kembali apabila suatu asam amino, amonia dan gugus amino dididihkan dalam

larutan dimana di dalamnya juga terdapat ninhidrin (Tjahjadi, 2008).


35/83

28

Berdasarkan hasil pengamatan uji kualitatif asam amino dengan uji

Ninhidrin pada Albumin mengalami perubahan warna menjadi warna ungu dan

pada glisin berubah menjadi warna ungu pekat yang dapat disimpulkan bahwa

albumin dan glisin mengandung asam-asam amino. Protein pada albumin dan

glisin dapat dipisahkan dengan asam sehingga asam aminonya dapat terlepas

dan berikatan dengan Ninhidrin lalu membentuk warna ungu muda untuk

albumin dan pada glisin ungu pekat. Sedangkan pada sampel Aquades tidak

terjadi perubahan warna dapat disimpulkan bahwa dalam aquades tidak

terkandung -asam amino. Protein pada aquades tidak dapat dipisahkan dengan

asam sehingga asam aminonya dapat terlepas dan berikatan dengan ninhidrin.

Biuret adalah senyawa dengan dua ikatan peptide yang terbentuk pada

pemanasan dua mulekul urea. Uji biuret bertujuan untuk menentukan adanya

senyawa-senyawa yang mengandung gugus amida asam. ion Cu2+ dari pereaksi

biuret dalam suasana basa akan bereaksi denga polipeptida atau ikatan-ikatan

peptide yang menyusun protein membentuk senyawa kompleks berwarna ungu.

Prinsip uji biuret ini adalah pembentukan kompleks Cu2+ dengan gugus - CO dan

–NH dari rantai peptide dalam suasana basa. Pada reaksi ini positif untuk zat

yang mengandung dua atau lebih ikatan peptide. Reaksi ini negatif untuk asam

amino yang tidak mempunyai ikatan peptide atau yang hanya mengandung 111

ikatan peptide (Tejasari, 2005). Hasil pengamatan pada uji kualitatif peptide

dengan uji biuret ini mengalami perbedaan. Sampel pertama Aqades terjadi

perubahan warna menjadi abu-abu setelah ditetesi dengan CuSO4 0,5%. Oleh

karena itu dapat disimpulkan bahwa pada Aquades mengandung sedikit ikatan

peptida. Berbeda dengan sampel 1 dan 3 yaitu mengalami perubahan warna biru


36/83

29

pada Glisin 1% dan coklat pekat pada Albumi yang menandakan bahwa Glisin

1% dan Albumin memiliki ikatan peptide tetapi tidak positif. Perubahan warna

terjadi dikarenakan albumin dan glisin 1% satu ikatan peptide. Albumin yang

sering ditemui sehari-hari adalah pada putih telur. Telur merupakan salah satu

sumber protein hewani yang baik untuk dikonsumsi oleh manusia.

Uji Sulfur memberikan hasil positif terhadap protein yang mengandung

gugus R asam amino yang memiliki gugus (Winarno, 2005). Dari hasil percobaan

didapat hasil pada sampel pertama Glisin 1% tidak berubah warna yang

menunjukkan pada larutan glisin 1% tidak menunjukkan adanya kandungan

sulfur dalam protein. Sedangkan pada albumin terjadi perubahan warna menjadi

coklat gelap dan larutan tersebut menunjukkan adanya kandungan sulfur dalam

protein.

Adanya gugus amino bebas pada gugus karboksil bebas pada ujung-

ujung rantai molekul protein menyebabkan protein bersifat amfoter yaitu dapat

bereaksi dengan asam amino basa. Pada pH tertentu muatan gugus amino dan

karboksilat saling menetralkan sehingga molekul protein tidak bermuatan.

Dimana Nilai pH molekul protein tidak bermuatan disebut titik Iso elektris. Jika

pH berada pada kondisi di bawah titik isoelektrik yaitu harga ph sebesar 6,1,

maka muatan partikel koloid akan bermuatan positif. Sebaliknya jika pH berada

di atas titik isoelektrik maka muatan koloid akan berubah menjadi netral atau

bahkan menjadi negative. Endapan akan larut dengan penambahan Asam asetat.

Terjadinya endapan menandakan bahwa gugus amino dan karboksil saling

menetralkan, sedangkan pada larutan yang tidak mengalami endapat ataupun

mengalami kekeruhan ini berarti gugus asam amino dan karboksilnya tidak saling


37/83

30

menetralkan (Tjahjadi, 2008). Berdasarkan hasil pengamatan pada uji

pengendapan susu segar pada berbagai pH dapat diketahui titik Isoelektriknya

karena hampir semua tabung mengalami perubahan kekeruhan dan endapan

yang terbentuk karena pada titik isoelektriknya akan terjadi gaya tolak menolak

elektrostatik. Gaya tolak menolak tersebut akan menyebabkan kelarutan menjadi

minimum lalu terbentuk keruh, setiap jenis protein memiliki titik isoelektrik yang

berbeda-beda.


38/83

31

KESIMPULAN


sebagai berikut:

1. Protein merupakan polimer saam amino dan pada pH tertentu muatan gugus

amino atau karboksilat saling menetralkan sehingga molekul protein tidak

bermuatan

2.

Reaksi Bluret merupakan metode yang digunakan untuk menentukan jumlah

protein terlarut dari larutan, uji biuret pada larutan yang mengandung protein

paling tinggi dihasilkan pada larutan albumin, pada uji sulfur larutan

ditentukan dengan larutan fohl sedangkan reaksi Ninhidrin dilakukan untuk

mengetahui apakah dalam suatu zat terkandung asam amino.

3. setiap jenis protein memiliki titik isoelektrik yang berbeda-beda, Jika pH

berada pada kondisi di bawah titik isoelektrik yaitu harga ph sebesar 6,1 maka

muatan partikel koloid akan bermuatan positif. Sebaliknya jika pH berada di

atas titik isoelektrik maka muatan koloid akan berubah menjadi netral atau

bahkan menjadi negative

4. Dari hasil percobaan Glisin 1% tidak berubah warna menunjukkan adanya

kandungan sulfur dalam protein. Sedangkan pada albumin terjadi perubahan

warna menjadi coklat gelap dan larutan tersebut menunjukkan adanya

kandungan sulfur dalam protein.

5. Endapan menandakan bahwa gugus amino dan karboksil saling menetralkan,

sedangkan yang tidak mengalami endapat ataupun mengalami kekeruhan ini

berarti gugus asam amino dan karboksilnya tidak saling menetralkan.


39/83

32

ACARA IVPENGUJIAN LEMAK

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Lipid adalah senyawa organik berminyak atau berlemak yang tidak larut

dalam air, dapat diekstrak dari sel dan jaringan oleh pelarut nonpolar, seperti

kloroform dan eter. Asam lemak adalah komponen unit pembangun pada hampir

semua lipid. Asam lemak juga adalah asam organik berantai panjang yang

mempunyai atom karbon dari 4 sampai 24. Asam lemak memiliki gugus karboksil

tunggal dan ekor hidrokarbon nonpolar yang panjang. Hal ini membuat

kebanyakan lipid bersifat tidak larut dalam air dan tampak berminyak atau

berlemak. Lipid secara umum dapat dibagi ke dalam dua kelas besar, yaitu lipid

sederhana dan lipid kompleks (Lehninger 1982). Oleh karena itu perlu dilakukan

praktikum uji lemak ini untuk membuktikan adanya kandungan lemak dalam

bahan makanan.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari praktikum ini adalah untuk mengetahui pengaruh

jenis pelarut terhdap sifat kelarutan lemak, mengetahui tingkat ketidak jenuhan

berbagai jenis lemak, dengan uji sifat penyubuhan lemak bertujuan untuk

mangetahui sifat penyubuhan dua jenis garam asam lemak (sabun).

TITIAN FATIMAH


40/83

33

TINJAUAN PUSTAKA

Lemak dan minyak adalah salah satu kelompok yang termasuk pada

golongan lipida, yaitu senyawa organik yang terdapat dialam serta tidak larut

dalam air, tetapi larut dalam pelarut organik non-polar, misalnya dietileter (C2 H50

C2 H5), kloroporm (CHC13), benzena dan hidrokarbon lainnya, lemak dan minyak

dapat larut dalam pelarut yang disebutkan diatas karena lemak dan minyak

mempunyai polaritas yang sama dengan pelarut tersebut. Bahan-bahan dan

senyawa kimia akan mudah larut dalam pelarut yang sama dengan polaritasnya

dengan zat tersebut. Tetapi polaritas bahan dapat berubah karena adanya proses

kimiawi (Sridianti, 2012).

Lipida atau lemak yang terdapat pada tubuh kita harus seimbang, artinya

kandungannya tidak lebih berlebihan ataupun kekurangan. Jika kita kelebihan

lemak, maka kita akan mengalami berbagai macam penyakit seperti obesitas

atau kegemukan, serangan jantung, hipertensi dan penykit berbahaya lainnya.

Sebaliknya jika kita kekurangan lemak, kita juga dapat terkena penyakit seperti

kekurangan gizi pada saat dingin lemak terbakar oleh tubuh untuk menghasilkan

energi atau pada saat kita tidak makan dan membutuhkan energi. Tubuh kita

mempunyai sistem kerja yang kompleks, sehingga dapat melakukan kegiatan

metabolisme dengan baik selama tubuh kita sehat. Termasuk kegiatan lemak

membakar lemak menjadi energi (Asrul, 2013).

Lemak tidak larut dalam air, tetapi larut dalam pelarut organik. Lemak

sama halnya denga zat-zat tubuh lainnya, lemak juga tersusun dari unsur seperti

Karbon (C), Nitrogen (N), Oksigen (O), Fosfor (P), dan Hidrogen (H). Semua


41/83

34

unsur-unsur ini bergabung dan membentuk ikatan yang merupakan ikatan dari

lemak (Anang, 2013).

Steroid berasal dari kolesterol. Steroid adalah zat yang yang sangat

penting dan tersebarr luas dalam tubuh hewan. Steroid meliputi sterol, asam

empedu, dan hormon adrenal. Steroid mempunyai sifat yang sangat luas di

dalam tubuh dan mempunyai unit struktur dasar yang bergabung dengan cincin

siklopetena. Masing-masing senyawa berbeda dalam jumlah dan posisi ikatan

rangkapnya dan biasanya terdapat pada sisi cincin atom karbon ke 17 (Supardan,

2010)

Lemak dan minyak adalah suatu trigliserida atau trigliserol. Perbedaan

antara suatu lemak dan minyak adalah lemak berbentuk padat dan minyak

berbentuk cair pada suhu kamar. Lemak tersusun oleh asam lemak jenuh

sedangkan minyak tersusun oleh asam lemak tak jenuh. Lemak dan minyak

adalah bahan-bahan yang tidak larut dalam air (Almunady, 2011)


42/83

35

PELKSANAAN PRAKTIKUM


Praktikum ini dilaksanakan pada hari Selasa 18 November 2014

bertempat di Laboratorium Kimia dan Biokimia Pangan Fkultas Teknologi Pangan

dan Agroindustri Universitas Mataram.

Bahan dan Alat Praktikum

a. Alat-alat Praktikum

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah tabung

reaksi, gelas piala, pipet tetes, rak tabung

b. Alat-Alat

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah pelarut

Kloroform, Etanol, Aquades, larutan Deterjen 1%, larutan Sabun 1%, CaCl2

0,5%, MgCl2 0,5%, FeCl2 0,5%, asam Asetat Kloroform, Minyak baru, Minyak

bekas.

Prosedur Kerja

a. Uji Sifat kelarutan lemak

3 tabung reaksi

Ditambahkan 2 ml minyak baru pada setiap tabung

Digoyangkan agar tercampur rata dan diamati kelarutan minysk tersebut

Dicatat hasil yang diperoleh

Siapkan bahan(Kloroform,aquades, etanol)


43/83

36

Tabung 6-10 diisi dengan

larutan deterjen 1%

b. Uji Sifat penyabunan lemak

c. Uji ketidakjenuhan lemak

Ditambahkan 5ml Cacl2 0,5% kedalam tabung no 1 dan 6

Ditambahkan 5 ml Mgcl2 0,5% kedalam tabung no 2 dan 7

Ditanbahkan 5 ml Fecl2 0,5% kedalam tabung 3 dan 8

Ditambahkan 5 ml aquades pada tabung 5 dan 10

Ditambahkan 10 tetes minyak kedalam tabung no 4dan 9

Amati dan bandingkan sifat penyabunan dari larutandidalam gelas piala.

Tabung 1-5 disi 25 Ml larutan

sabun 1%

10 gelas piala(diberi kode 1-10)

Dimasukkan 1 ml campuran Asam asetat Kloroform

3 tabung reaksi


44/83

37

Tabing 1 diisi 2 tetes aquades

Tabung 2 diisi 2 tetes minyak baru

Tabung 3 diisi 3 tetes minyak bekas

Ditambahkan ke dalam masing-masing tabung dengan 1 tetes I2 dandigoyangkan agar tercampur rata

Dibiarkan pada suhu kamar selama 5 menit dan amati perubahan warnaiodium setiap tabung dan bandingkan dengan tabung no 1


45/83

38

HASIL PENGAMATAN DAN PERHITUNGAN

Tabel 4.1. Hasil Pengamatan Uji Sifat Kelarutan Lemak

BAHAN MINYAK GORENG

AquadesEtanolKloroform

Atas kuning keruh, bawah putih bening (tidak menyatu) Atas putih keruh, bawah kuning bening (tidak menyatu)Tercampur (menyatu)

Tabel 4.2. Hail Pengamatan Uji sifat penyabunan lemak

Larutan UjiBanyaknya basa

Sabun DeterjenCa CL2 0,5%Mg C12 0,5% Fe C12 0,5%Minyak Aquades

+ 2+ 2+ 1+ 2+ 3

+ 2+ 2+ 1+ 1+ 3

Ket :+ 1 : Sedikit busa+ 2 : Banyak busa+ 3 : Sangat banyak busa

Tabel 4.3. Hail Pengamatan Uji tingkat ketidak jenuhan lemak

BAHAN TETES I2 WARNA IODIN

AquadesMinyak baruMinyak bekas

+++ Putih bening+ Pink bening++ Pink bening

Sebagai kontrolIntensitas kejenuhan menurun

Iodin tidak diikat ikatan rangkap


46/83

39

PEMBAHASAN

Lipida merupakan senyawa organik yang terdapat dialam serta tak larut

dalam air, tetapi mudah larut dalam pelarut organik seperti eter,benzena atau

kloroform. Lipid yang paling bayak adalah lemak dan minyak yaitu trimester dan

gliserol. Perbedaan yang tampak jelas antara lemak dan minyak terletak pada

sifat fisiknya dimana pada suhu kamar lemak bersifat padat, sedangkan minyak

bersifat cair, pada tiap 1 gram lemak, terdapat kandungan kalori sebesar 9 kalori,

lemak juga perfungsi sebagai pelarut vitamin A, D, E, K dan sebagai pelindung

alat-alat tubuh (Wisman, 2013).

Praktikum kali ini dilakukan berbagai pengujian diantaranya yaitu

pengujian sifat kelarutan lemak, uji tingkat ketidak jenuhan lemak dan pengujian

sifat penyabunan pada lemak. Pengujian pertama sifat kelarutan lemak yaitu

ketidak jenuhannya atau sedikit daya larutnya dalam pelarut organic seperti

Diethly eter, petrilium bensin, n-hexane, Cloroform dari kutub kelarutan bahan

dalam air disatu sisi dan pelarut organik disisi lain yang berlawanan yang

cenderung larut dalam air disebut sifat polar atau hidrofik dan sebaliknya sifat

yang tidak dapat larut dalam air atau mudah dalam pelarut organik disebut non-

polar atau hidrophobik (Sudarmadji,2009). Uji kelarutan lemak ini digunakan

minyak nabati jenis larutan yang digunakan antara lain Etanol, Kloroform dan

Aquades. Hasil didapat pada minyak nabati dengan jenis pelarut kloroform

tercampur dengan minyak, berarti pelarut ini merupakan jenis non-polar,

sedangkan jenis pelarut Etanol merupakan pelarut jenis semi polar kerena

mengalami dua fase yang minyaknya berada di bagian bawah sedangkan

aquades minyak berada diatas sehingga pelarut aquades disebut pelarut polar.


47/83

40

Asam lemak tak jenuh adalah asam yang mempunyai ikatan rangkap.

Jenis asam lemak ini dapat diidentifikasi dengan reaksi adisi, dimana ikatan

rangkap akan terputus sehingga terbentuk asam lemak jenuh. Dengan reagen

HubIs Iod yang berupa larutan iod dalam alcohol dan mengandung sedikit HgCl,

maka kemungkinan hilangnya warna iod akan berbeda untuk penambahan jenis

minyak yang berbeda karena kandungan ikatan rangkap setiap jenis minyak

memang berbeda, semakin banyak ikatan rangkap semakin cepat warna iod

hilang. Karena berarti seluruh I2 telah digunakan untuk memutuskan ikatan

rangkap (Sudarmadji,2009). Uji tingkat ketidak jenuhan lemak diketahui jika

suatu sampe diteteskan pada lemak lalu dikocok, bila warna sampel lenyap berati

sampel mengandung asam lemak tak jenuh, sampel yang digunakan adalah

aquades, minyak bekas dan minyak baru dengan iodine sebagai pereaksinya.

Pada sampel aquades yang ditambahkan iodine terlihat warna terang yang

berarti sampel sebagai kontrol, sampel minyak bekas menunjukan warna pink

lebih pekat yang menunjukkan sampel ini mengandung asam lemak tidak jenuh,

pada sampel minyak baru warna pink menurun (intensitas kejenuhan menurun)

ini menunjukkan bahwa sampel ini mengandung asam lemak jenuh. Jadi sampel

dengan tingkat ketidak jenuhan tertinggi ada pada sampel minyak bekas.

Proses hidrolisis yang menggunakan basa disebut proses penyabunan

jumlah mol basa yang digunakan dalam proses penyabunan ini tergantung pada

mol asam lemak. Untuk lemak dengan jumlah tertentu, jumlah mol asam

tergantung panjang rantai karbon pada asam lemak tersebut, dimana

penyabunan adalah untuk mengemulsikan kotoran yang bersifat minyak

(Sudarmadji,2009). Pada uji ini larutan yang digunakan adalah CaCl2, MgCl2,FeCl3


48/83

41

dan minyak nabati sebanyak 10 tetes dan dua jenis garam asam lemak yaitu

sabun dan detegen. Dari percobaan dihasilkan bahwa sabun yang direaksikan

dengan larutan Cacl2, Minyak dan Aquades mengandung paling banyak busa. Ini

menandakan daya ikat kuat satu sama lain, sementara larutan FeCl 3 memiliki

busa paling sedikit berarti daya ikatnya kurang kuat, sedangkan pada larutan

Minyak Nabati memiliki busa banyak berarti daya ikatnya kuat. Hasil pada sabun

ini berbanding terbalik dengan detergen dimana pada larutan CaCl, FeCl dan

minyak justru mengandung sedikit busa yang berarti mempunyai daya ikat yang

lemah, sedangkan pada larutan MgCl2 busanya banyak yang menunjukkan daya

ikat yang kuat. Dari kedua hasil terlihat bahwa satuan memiliki gaya tolak dan

diketahui yang lebih kuat adalah sabun.


49/83

42

KESIMPULAN


sebagai berikut :

1. Minyak larut dalam kloroform dan benzene karena sifatnya non polar,

sedangkan Lipid adalah senyawa organic yang tidak larut dalam air, tetapi

dapat larut dalam pelarut non polar seperti ester dan benzena

2.

Pada penyabunan aquades mendapatkan busa yang sangat banyak karena

aquades bersifat elmugator, antara sabun dan detergen yang hasil

penyabunannya paling banyak adalah sabun.

3. Minyak baru ditambahkan iodine maka derajat kejenuhan intensitas turun

sedangkan pada minyak bekas iodine diikat ikatan rangkap

4. Pelarut jenis Klorofom merupakan non-polar karena menyatu dengan

minyak, pelarut jenis Etanol merupakan pelarut semi polar kerena mengalami

dua fase yang minyaknya berada di bagian bawah sedangkan aquades,

minyak berada diatas sehingga pelarut aquades disebut pelarut polar

5. Asam lemak penyususn minyak atau lemak ada dua jenis yaitu asam lemak

jenuh dan asam lemak tak jenuh


50/83

43

ACARA VPENGUJIAN ENZIM

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Enzim berfungsi sebagai biokatalisator reaksi-reaksi biokimia pada

mahkluk hidup biologi. Hampir semua enzim dalam tubuh merupakan protein.

Enzim sangat penting dan berpengaruh dalam tubuh mahluk hidup. Karena

hampir semua proses biologis sel memerlukan enzim agar dapat berlangsung

dengan cepat. Enzim memegang peranan yang sangat penting dalam reaksi

metabolisme dalam tubuh dan akan berlangsung sangat lambat jika tanpa enzim.

Enzim ini bekerja dalam cairan larutan encer, suhu dan pH yang sesuai dengan

kondisi fisiologis biologis melalui aktifitasnya, system enzim terkordinasi dengan

baik sehingga mnghasilkan hubungan yang harmonis dintara sejumlah aktifitas

metabolic yang berbeda (Yuanita, 2010). Oleh karena itu, dilakukanlah pengujian

enzim ini yang diantaranya pembuatan aktifitas amylase air liur, dan pengujian

pengaruh pH terhadap aktifitas enzim.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan dari praktikum ini yaitu mengetahui kemampuan minimal

enzim amylase air liur memecahkan pati per-satuan waktu dan mengetahui

pengaruh pH terhadap aktifitas dan menentukan pH optimum enzim milase air

liur.

TITIN INDRAWATI


51/83

44

TINJAUAN PUSTAKA

Enzim merupakan suatu protein, maka sintesisnya dalam tubuh diatur

dan dikendalikan oleh system genetic , seperti halnya dengan sintesis protein

pada umumnya. Pada setiap enzim memiliki pH dan suhu yang berbeda-beda

untuk dapat bekerja secara optimal, tidak aktif bahkan mengalami kerusakan

yang dalam istilah biologis disebut denaturasi. Enzim dalam proses metabolisme

yang terjadi pada setiap mahluk hidup dalam aktifitas enzim ini dipengaruhi oleh

berbagai faktor seperti konsentrasi, suhu, maupun pH (Yuanita, 2010).

Enzim adalah molekul protein yang berperan sebagai biokatalisator dan

berfungsi untuk mengkatalis reaksi-reaksi metabolism yang berlangsung pada

mahluk hidup. Fungsi ini dipengaruhi oleh faktor lingkungannya seperti

temperatur, keasaman (pH), konsentrasi substrat, konsentrasi enzim dan

aktifator. Pada kondisi optimum sehingga diperoleh produk yang lebih banyak,

laju reaksi enzimatik akan bertambah dengan bertambahnya konsentrasi enzim,

akan tetpi laju reaksi dapat mencapai konstan bila jumlah subsratnya bertambah

terus sampai melewati batas kemampun enzim (Bahri, 2012).

Aktifitas enzim dipengaruhi oleh beberapa faktor salah satunya inhibitor.

Terbentuknya kompleks enzim inhibitor (EI) akan menurunkan aktifitas enzim

terhadap substratnya. Logam transisi dapat digoongkan sebagi inhibitor enzim

sehingga enzim dikatakan sebagai suatu kelompok protein yang berperan

penting dalam proses aktivitas biologis. Enzim ini berfungsi sebagai katalisator

dalam sel dan sifatnya sangat khas. (Rejeki,2009).

Pada suatu enzim tidak boleh terlalu asam atau pun basa karena akan

menurunkan kecepatan reaksi dengan terjadinya denaturasi pada kisaran pH


52/83

45

tertentu dan umumnya suhu, pH konsentrasi substrat. Dalam jumlah yang sangat

kecil, enzim dapat mengatur reaksi tertentu sehingga dalam keadaan normal

tidak terjadi penyimpangan-penyimpangan hasil akhir reaksinya. Enzim ini akan

kehilangan aktivitasnya akibat panas, asam atau basa kuat, pelarut organik, atau

apa saja yang menyebabkan denaturasi protein. Enzim dikatakan mempunyai

sifat khas, karena hanya bekerja pada substrat tertentu dan bentuk

reaksi_tertentu (Pratama,2009)

Amylase adalah enzim pemecah karbohidrat dari kelompok majemuk

menjadi bentuk yang lebih sederhana, misalnya pati dan glikogen dipecah

menjadi matosa, matosa atau oligosakarida. Enzim ini terdapat dalam air liur

(ptyalin) dan getah pancreas yang mampu membantu pencernaan karbohidrat

dalam makan (Ruddin, 2010).


53/83

46

PELAKSANAAN PRAKTIUM


Praktikum ini dilaksanakan pada hari Selasa, 11 November 2014 di



Alat dan Bahan Praktium

a. Alat-alat praktikum

Adapun alat-ala yang digunakan dalam praktikum ini adalah tabung

reaksi, pipet ukur, pipet tetes, gelas pengaduk, stopwatch dan bulp .

b. Bahan-bahan Praktikum

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah air liur,

Aquades, larutan NaCl 1%, CuSO4 1%, Pati 1%, larutan Iodine, Asam Sistrat

0,1 M, Na2HPO4 0,2 M dan Pati 0,5%.

Proseedur Kerja

a. Penentuan aktifitas amylase air liur

10 tabung reaksi

+ aquades 1 ml

+ tabung reaksi 1ml NaCl 1% dan 1ml aquades (digojog)

+ 2ml pati1 % masing-masing tabung reaksi

digojok

(1 tabung diisi 1 ml air liur) + 9 ml Aquades (dilakukan pengenceran 10 kali)digojog


54/83

47

b. Penentuan pati terhadap aktivitas enzim

Panaskan dalam penangas air bersuhu 30 selama 30 menit

Keluarkan tabung alir dipenangas dan dininkan pada air yang mengalir

Jika larutan berwarna biru,berarti pati tidak / belum

sempurna terhirolisis oleh amylase.

Jika larutan berarna coklat, berarti pati terhidrolisi

8 tabung reaksi

+ 5 ml larutan pati 0,5 % dan 25 ml air liur yang telah diencerkan 250 ml

Atur waktu tabung selama 15 menit (saat ditetesi air liur)

Ambil beberapa tetes larutan jika menunjukan warna coklat, maka semua

tabung reaksi 1 diambahkan dengan 2tetes iodine dan dicampur rata

Jika tidak menunjukan warna coklat, prosedur 3 diulang

sampai terbentuk warna coklat diamati warnanya.


55/83

48

HASIL PENGAMATAN

Table 5.1 Hasil Pengamatan Perubahan Warna Larutan pH yan Dipanaskanselama 30 menit pada suhu 38

No Warna larutan menit ke- Penambahanoidin

1 5 10 15 20 25 30

1 Bening Putihkeruh

Bening Keruh Keruh Keruh Keruh Kening bening

2 Bening Bening Bening Keruh Keruh Keruh Keruh Kening bening



5 Bening Bening Keruh Keruh Keruh Keruh Keruh Kening bening6 Bening Bening Keruh Keruh Keruh Keruh Keruh Kening bening


8 Bening Bening Bening Bening Bening Bening Keruh Kening bening


10 Bening Bening Bening Bening Keruh Keruh Keruh Kening bening

Table 5.1 Hasil Pengamatan Perubahan Warna Larutan pati pada pH berbeda

Tabung No. pH Perubahan Warna larutan pati

1 5,0 Ungu

2 5,6 Kuning3 6,2 Coklat

4 6,6 Kuning Kecokla tan

5 6,8 Coklat

6 7,0 Kuning

7 7,4 Coklat

8 8,0 Coklat Pekat


56/83

49

PEMBAHASAN

Sebagai katalisator enzim, enzim berbeda dengan katalisator anorganik

dan organk sederhana yang umumnya dapat mengkatalis berbagai reaksi kimia.

Enzim mempunyai spesifitas yang sangat tinggi, baik terhadap reaktan

(substrat) maupun jenis reaksi yang dikatalis. Pada umumnya suatu enzim dapat

meningkatkan laju reaksi tanpa pembentukan produk samping dan molekul

berfungsi dalam larutan encer pada keadaan (fisiologis) tekanan, suhu dan pH

normal (Sirajudin, 2012).

Percobaan pertama ,mengetahui pengaruh suhu terhadap aktifitas enzim.

Adapun hasil yang diperoleh ialah larutan amylase air liur (suhu 38), untuk

tabung 1-10 pada menit ke-5 tidak terjadi perubahan warna kecuali tabung 1

berwarna putih keruh pada menit ke-10 masih berwarna bening kecuali tabung

no.8 bening, begitupula untuk menit ke-20 sampai 30 mengalami kekeruhan,

sedangkan untuk penambahan iodine semua tabung yang berisi larutan amylase

air liur berubah menjadi warna kuning bening pada suhu 38. Menurut teori

(Ruddin, 2010) semakin rendah suhu suatu reaksi kimia yang menggunakan

katalis enzim, maka kecepatan reaksinya pun berlangsung semakin lambat.

Peningkatan suhu akan meningkatkan laju reaksi (baik yang dikatalis oleh enzim

maupun yang tidak dikatalis oleh enzim) dengan meningkatkan energy kinetik

dan frekuensi tumbukan molekul-molekul yang bereaksi akan tetapi, jika suhunya

terus menerus dinaikan, akan terjadi denaturasi karena enzim merupakan protein

sangat mudah mengalami pengrusakan struktur (denaturasi) dan salah satu

faktornya ialah suhu yang tinggi. Suhu 60. Terjadinya denaturasi ditandai

dengan terbentuknya endapan (Poedjiadi, 2009). Akan tetapi pada hasil


57/83

50

percobaan tidak mengalami endapan karena suhu yang digunakan pada

percobaan 38 sedangkan proses denaturasi agar menghasilkan endapan pada

suhu diatas 60. Terjadinya tidak kesesuaian percobaan dengan teori

memungkinkan bahwa suhu yang digunakan tidak sesuai dengan proses

denaturasi enzim amylase atau saliva sehingga larutan tidak terjadi endapan.

Percobaan kedua, yaitu membuktikan adanya pengaruh derajat keasaman

(pH) terhadap aktifitas enzim. Adapun hasil yang diperoleh pada percobaan ini

ialah pada keadaan asam (pH=1) dengan bahan asam sitrat 0,1 M, setelah

ditambahkan larutan iodium berubah warna menjadi kuning tanpa disertai

endapan. Pada keadaan netral (pH=7) dengan bahan. Aquades, larutan amylase

tetap bening setelah penambahan iodium pada keadaan asam pH=8 dengan

larutan Na2HPO. Berdasarkan teori yang ada, tinggi rendahnya pH dapat

mempengaruhi struktur ion pada enzim, serta menyebabkan terjadinya proses

denaturasi sehingga mengakibatkan menurunnya aktivitas enzim. Ada suatu pH

tertentu yang menyebabkan kecepatan reaksi paling tinggi, dan pH tersebut

dinamakan pH optimum setiap enzim memiliki pH optimum yang berbeda-beda

(sekitar 6-8). Larutan iodium disini berfungsi menentukan jumlah milligram gula

yang terbentuk dari beberapa reaksi yang menggunakan enzim amylase pada

berbagai harga pH amylase sebagai substratnya. Dari situ dapat dikenal larutan

amylase menjadi warna biru (bereaksi positif) (Yunita, 2010).


58/83

51

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pengamatan dan pembahasan dapat disimpulkan sebagai

berikut :

1. Kerja enzim dipengaruhi oleh suhu,pH,konsentrasi substrat, konsentrasi

enziim dan penghambat

2. Enzim dapat bekerja pada suhu optimum karena bila suhu rendah atau tiinggi

enzim menjadi rusak atau reaksi tidak dapat terjadi secara optimum.

3. Suhu aktifasi enzim amylase optimumal yaitu pada suhu antara 25 sampai

30.

4. pH sangat mempunyai aktivitas enzim karena enzim bekerja pada kisaran pH

tertentu dan menunjukkan aktivitas max pada pH optimum yang berkisar

antara pH 6- pH 8.

5. pH 7 merupakan pH optimum sehingga aktivitas enzim maksimum dan

kecepatan reaksinya pun meningkat.


59/83

52

ACAR VILARUTAN BUFFER

PENDAHULUAN

Latar Belakang

Dalam kehidupan sehari-hari banyak ditemukan berbagai jenis cairan

yaitu khususnya dalam bentuk larutan. Sifat asam dan basa dari larutan

tersebut,perlu dietahui agar dapat diketahui kelayakan dan komposisi

penggunaanya.sifat asam dan basa suatu larutan dapat diketahui dengan

menggunakan alat yang disebut dengan pH meter. Larutan yang distabilkan atau

dipertahankan pH-nya disebut larutan buffer. Dimana larutan buffer merupakan

suatu larutan yang apabila ditambahkan sedikit asam atau basa serta apabila

dilakukan pengenceran maka pH larutan tersebut tidak akan berubah secara

signifikan, ia akan cenderung mempertahankan phnya tanpa disadari, didalam

tubuh juga ditemukan adana larutan buffer yakni cairan yang terdapat didalam

maupun diluar tubuh atau sel. Cairan ini terdiri dari asam dan basa konjugasinya

dimana ph-nya adalah 7,2 (Purba, 2006). Oleh karena itu dilakukanlah pengujian

larutan buffer.

Tujuan Praktikum

Adapun tujuan praktikum ini adalah membandingkan perubahan pH asam

kuat dan lemah yang ditrasi dengan NaOH dan membandingkan kapasitas buffer

fosfat pada berbagai konsentrasi.

TITIN INDRAWATI


60/83

53

TINJAUAN PUSTAKA

Larutan adalah campuran homogen (komposisinya sama), serba sama

(ukuran partikelnya), tidak adanya bidang batas antara zat pelarut dengan zat

terlarut, ukuran-ukuran partikelnya sama. Dalam fase cair, pelarutnya adalah

cairan dan zat yang terlarut didalamnya disebut zat terlarut, bisa berwujud

padat, cair atau gas (Miladi, 2006).

Larutan penyangga atau dikenal dengan larutan buffer adalah larutan

yang dapat mempertahankan nilai pH apabila larutan tersebut. Ditambahkan

sejumlah asam atau basa maupun diencerkan dengan menambahkan sejumlah

air. Adapun sifat yang paling menonjol dari larutan penyangga ini seperti pH

larutan penyangga hanya berubah sedikit pada penambahan sedikit asam

kuat.disamping ini larutan penyangga merupakan larutan yang dibentuk oleh

reaksi suatu asam lemah dengan basa konjugatnya, ataupun basa lemah dengan

basa konjugatnya reaksi ini disebut sebagai asam-basa konjugasi

(Marthoharsono, 2006).

Sifat asam atau basa dapat diuji dengan kertas lakmus biru oleh sesuatu

zat berubah menjadi merah, maka zat tersebut bersifat basa. Sifat asam atau

basa dapat diterangkan dengan teori asam-basa menurut Arhenius, browstan

lowry dan lewis. Sedangkan kekuatan asam dan basa dapat diukur dengan

menggunakan kertas ph-meter atau ph paper universal. Senyawa organic dapat

mempunyai sifat asam atau basa tergantung dari ada tidaknya electron donor

atau aseptor dari senyawa organic (Poedjiadji, 2005).

Larutan penyangga dapat dibedakan atas larutan penyangga asam dan

larutan penyangga basa. Larutan penyangga basa larutan penyangga asam


61/83

54

mempertahankan ph pada daerah asam (pH


62/83

55



Praktikum ini dilaksanakan pada hari selasa, 25 november 2014 di




a. Alat-alat praktikum

Adapun alat-alat yang digunakan dalam praktikum ini adalah gelas piala,

pipet ukur, filler , pH stick dan pengaduk magnetic.

b. Bahan-bahan praktikum

Adapun bahan-bahan yang digunakan dalam praktikum ini adalah larutan

HCl 0,01 M, Aquades, NaOH 0.01 N dan 0,05 N dan H3PO4.

Prosedur Kerja

a. Titrasi Larutan HCl

Diambil 2ml larutan HCl 0,1 M dengan pipet ukur dan dimasukan kedalam

gelas piala berisi 18ml aquades,kemudian diaduk rata dengan pengaduk

Diukur pH dengan pH-Stick

Dititrasi dengan larutan NaOH 0,01 N sebanyak 30 ml dan diukur pH-nya

dengan ph meter dengan selang mengukur ph setiap 5 ml

Gambarlah kurva titrasi hubungan antara perubahan ph dan volume NaOH

Disiapkan larutan HCl 0,1 M, aquades dan NaOH 0,01 N


63/83

56

b. Titrasi Larutan H3PO4

Diambil 20 ml larutan H3SO4 0,05 N dengan pipet ukur dan dimasukkankedalam gelas piala, kemdian di aduk rata dengan pengaduk magnetik

Diukur pH nya dengan pH stick

Dititrasi dengan larutan NaOH 0,05 N sebanyak 30 ml dan di ukur pH setiap5 ml sambil di aduk rata

Gambarlah kurva titrasi hubungan antara perubahan pH dan volume

Disiapkan larutan H3PO4 0,05 larutan NaOH 0,05 N


64/83

57

HASIL PENGAMATAN

Tabel 6.1 Hasil Pengamatan pH larutan HCl 0,1 dengan Penambahan NaOH0,01N

Volume NaOH 0,01 N (ml) yang ditambahkan

0 5 10 15 20 25 30

pH larutan HCl 2 2 3 3 6 8 10

Tabel 6.2. Hasi Pengamatan Perubahan pH Larutan H3PO4 0,05 M denganPenambahan NaOH 0,05 N

Volume NaOh 0,05 N (ml) yang ditambahkan

0 5 10 15 20 25 30pH larutanH3PO4 1 2 2 2 3 5 6

Grafik 6.1. Titrasi Larutan HCl 0,1 M

Grafik 6.2. Titrasi Larutan H3SO4 0,01 M

0

2

4

6

8

10

12

0 5 10 15 20 25 30

p H L

a r u

t a n

Volume NaOH 0,01 N (ml)

0

1

2

3

4

5

6

7

0 5 10 15 20 25 30

p H L

a r u t a n

Volume NaOH 0,05 N (ml)


65/83

58

PEMBAHASAN

Penggunaan larutan buffer Misalnya saja pada cairan didalam tubuh kita

yang mengandung larutan buffer asam berupa H2PO4 dan HPO42. pH larutan

buffer yang ada ditubuh tersebut berubah-ubah maka didalam tubuh akan terjadi

kerusakan fungsi organ-organ tertentu.jadi dapat didefinisikan bahwa larutan

buffer merupakan suatu larutan yang dapat mempertahankan nilai pH apabia

ditambahkan sedikit asam atau basa ataupun diencerkan (Purba, 2006).

Dengan mengetahui arti pentin dari larutan buffer ini. Melalui praktikum

ini akan di uji beberapa sifat larutan buffer yang akan ditambahkan beberapa

jenis larutan penguji dengan berbagai konentrasi untuk melihat perubahan pH

yang akan terjadi dalam larutan buffer tersebut. Pada praktikum ini, ada dua

percobaan yang dilakukan terhadap larutan buffer asam HCl dan NaOH kedalam

larutan Buffer yang akan di amati perubahan pH yang terjadi pada percobaan

yang pertama, larutan buffer asam HCl mempunyai pH awal 2 sebgai mana

diketahui bahwa HCl merupakan senyawa asam kuat. pH suatu asam menurut

Martoharsono ((2006) adalah yang berkisar 7. Semakin kecil nilai pHnya maka

semakin kuat sifat asamnya. Asam kuat HCl 0,1 N yang ditambahkan NaOH 0,1 N

yang dilakukan secara bertahapyakni dengan penambahan 5 ml NaOH 0,01 N

sebanyak enam kali. Pada penambahan 5 ml NaOH 0,01 N yang petama pH

larutan buffer asam HCl ,1 N tersebut naik menjadi 3. Hal ini dapat karena

larutan NaOH 0,01 N yang ditambahkan kedalam larutan buffer asam HCl

tersebut bersifat basa. Dimana suatu pH larutan basa menurut Martoharsono

(2006) berkisar di atas 7. Jadi basa NaOH yang ditambahkan kedalam larutan

asam HCl ini disebabkan karena volume basa NaOH yang dicampurkan ke dalam


66/83

59

larutan HCl lebih banyak sehingga kondisi awal terjadi sedikit perubahan pH pada

larutan buffer asam HCl 0,1 N, yang kedua dan ketiga sebanyak 5ml pH menjadi

3 dan pada penambahan volume NaOH 0,01 yang ke 4,5,6, yakni pH berubah

menjadi 6,8 dan 10 berturut-turut, pH larutan buffer berubah relatif konstan. Ini

terlihat jelas karena kurva menunjukkan hubungan antara volume NaOH 0,1 N

kedalam larutan buffer dengan perubahan pH yang terjadi pada larutan buffer

tersebut. Pada kurva terlihat adanya garis lurus pada perubahan pH saat volume

NaOH 0,1 N yang ditambahkan yaitu 5 ml sampai 30 m. Dari kurva tersebut

dapat dilihat bahwa ph larutan buffer cenderung naik tetapi pada volume

tertentu ia akan konstan. Naiknya sedikit ph larutan buffer asam ini bersifat

basa. Menurut Purba (2007) apabila dalam suatu larutan buffer asam

ditambahkan dengan basa kuat maka larutan tersebut akan membntuk campuran

yang menhasilkan basa konjugasinya. Jadi pada suatu larutan buffer, akan

terbentuk larutan asam dan basa konjugasinya. Sehingga larutan buffer asam di

bentuk dari basa dan asam konjugasinya.


67/83

60

KESIMPULAN

Berdasarkan hasil pngamatan dan pembahasan maka dapat disimpulkan

sebagai berikut :

1. Larutan buffer adalah larutan yang dapat mempertahankan pH-nya pada

penambahan sedikit asam dan basa atau ketika diencerkan.

2. pH larutan asam bekisar dibawah 7 sedangkan pH larutan basa lebih dari 7

3.

Larutan penyangga asam terdiri dari asam dan basa konjugasinya dan begitu

pula sebaliknya pada larutan penyangga basa.

4. Larutan buffer asam akan senantiasa mempertahankan pH-nya walaupun

ditambahkan seberapa ml larutan basa kuat dan larutan buffer tidak

mengalami perubahan pHnya cukup berarti (memperthankan pHnya)

walaupun ditambahkan larutan sam kuat dan basa kuat dengan berbagai

konsentrasi.

5. Kedua kurva menunjukan garis konstan karena pada setia penambahan 5 ml

volume NaOH maka pH hanya bertambah sedikit sehingga di katakana

konstan.


68/83

61

DAFTAR PUSTAKA

Abynoel, 2008. Pengenalan Alat Laboratorium. http;//abynoel.wordpress.com.(diakses pada tanggal 13 0ktober 2013).

Almatsier. S., 2010. Prinsip Dasar Ilmu Gizi. Gramedia Pustaka Utama. Jakarta

Almunady, Dkk.2011. Analisis Kualitatif dan Kuantitatif Asam Lemak Tak Jenuh Anang, 2013. Unsur Lemak . http://aghnianet.blogspot.in/2013/10. (diakses

tanggal 19/11/2014).

Anonim, 2010. Alat-alat Praktikum. www.antisera.wen.su/alkes.html. (diakses

pada tanggal 13 oktober 2013).

Anonim, 2010. Seliwanoff test . En. Wikipedia.com/Seliwanoff-test (Diakses pada5 November 2014)

Anonim, 2011. Uji Kualitatif untuk identifikasi Karbohidrat . Arifabio.Multyplecontent.com (Diakses pada tanggal 5 November 2014).

Anonim, 2013. Teori Analisis Kualitatif Karbohidrat . Www.Ilmu kimia.Org.(diakses pada tanggal 5 November 2014).

Answono, Djoko dan Yasa, 2010. Alat-alat Laboratorium Grafindo Gramedia.Pertama. Jakatra.

Asrul, 2013. Lipid . (http://pertanianmeranti.wordpress.com). (diakses tanggal19/11/2014).

Bahri., S, dkk,2012.Karakteristik Enzim Amilase Dari Kecambah Biji Jagung Ketan. Jurnal Natural Scrence. (1) 1 :132-143

Choudhary, MI., 2008. Keselamatan dan Keamanan Laboratorium Kimia. Yudistira. Jakarta.

Gillvery, 2009. Dasar-Dasar Biokimia. Maggy Thenawijaya. Jakarta.

Hartono, S. 2008. Prinsip-Prinsip Dasar Pangan dan Gizi. PT Gramedia. Jakarta

Irawan, M.A., 2007. Karbohidrat . Sport Schien Brief. 01 (03) : 01

Karitas, 2003. Profil Protein 30 – 60 KDa pada Yogurt Hasil Fermentasi SusuKambing Peranakan Etawa dengan Kultur Tunggal. Jurnal Biotropikal.1(2):65-73.

Katili, A.S, 2009. Struktur dan Fungsi Protein Kolagen. Jurnal Pelangi Ilmu. Volume 2 no. 5 Halaman 19 – 29.

http://aghnianet.blogspot.in/2013/10.%20(diakseshttp://www.antisera.wen.su/alkes.htmlhttp://www.ilmu/http://pertanianmeranti.wordpress.com/http://pertanianmeranti.wordpress.com/http://www.ilmu/http://www.antisera.wen.su/alkes.htmlhttp://aghnianet.blogspot.in/2013/10.%20(diakses


69/83

62

Martoharsono, 2006. Biokimia I . Gadjah Mada University.Press.Yogyakarta.

Miladi,2006. Larutan Buffer . Rajawali. Jakarta.

MSDS Asam klorida :http://kimorg7.blogspot.com/2012?05/msds-asamnitrat.html.(Diakses diakses pada tanggal 12 oktober 2012)

MSDS Asam Nitrat : http://mbingboo29.Blokspot.com/2013/01/msds-asamnitrat.html. (Diakses diakses pada tanggal 15 oktober 2013 )

MSDS Ethanol : http://mbingboo29.blokspot.com /2013/05 /msds-ethanol.html(Diakses diakses pada tanggal 15 oktober 2013)

MSDS Natrium klorida :http://khoirula89.blogspot.com/2012/03/msds-natriumkloorida.html. (Diakses diakses pada tangga 13 oktober 2012 )

MSDS Sodium Hidroxide :http://mblogboo29.blogspot.com/2013/08/msds-sodium.hidroxide.html. (Diakses pada tangga 11 oktober 2013)Omega 3 dari Minyak Ikan Patin dengan Metoda Kromatografi Gas .

Poedji, 2005. Jenis Larutan . Gramedia. Jakarta.

Poedjiadi, 2009. Dasar-Dasar Biokimia. UI. Press. Gizi dan Pangan Binarupa

Aksara. Jakarta.

Poedjiadi, Anna dan F.M.Titin Supriyanti., 2009. Dasar-dasar Biokimia.Jakarta.

Pratama, A.P., 2009. Pengaruh Suhu dan pH Terhadap Aktifitas Enzim. Jurnaldan Teknologi. 5(IV) :37-47.

Purba,2006. Kimia Analitik . Erlangga. Jakarta.

Rejeki.,D.S.,dkk,2009.Pengaruh Ion Zn2+ Terhadap Aktifitas ProtaseEkstraseluler Bakteri Halofilik Isolat Bittern Tambak Garam

Madura.Jurnal.pdf.eprints.undip.ac.id?a905/1 .hal.1-17

Riyadi, dkk., 2010. Uji pada Karbohidrat . Jurnal Penelitian. 29 (1) : 2

Ruddin, Choi., 2010. LAPORAN Praktikum Biokimia II”Percobaan II Enzim” .Universitas Cendrawasih. Jayapura.

Sridianti, 2012. Pengertian Lipid . (http://sridianti.teachnologi.com).(diaksestanggal 19/11/2014).

Sumardjo, 2008. Pengantar Kimia Buku Pedoman Kuliah Mahasiswa Kedokteran .

EGC. Jakarta

http://mbingboo29.blokspot.com/2013/01/msds-asam%20nitrat.htmlhttp://mbingboo29.blokspot.com/2013/01/msds-asam%20nitrat.htmlhttp://sridianti.teachnologi.com/http://sridianti.teachnologi.com/http://mbingboo29.blokspot.com/2013/01/msds-asam%20nitrat.htmlhttp://mbingboo29.blokspot.com/2013/01/msds-asam%20nitrat.html


70/83

63

Supardan, 2010. Steroid . (http://miswanditendrita.wordpress.com).(diaksestanggal 19/11/2014).

Sutrisno, E.T. dan Numinabati, I.S, 2013. Penunutun Praktikum Ilmu Biokimia. Universitas Pasundan. Bandung.

Tejasari, 2005. NIlai Gizi – Pangan. Graha Ilmu. Yogyakarta. ThenawidjaErlangga. Jakarta.

Tensiska, dkk., 2009. Pengantar dan Penjelas Biokimia Pangan . WidyaPadjajaran. Bandung

Tjahjadi. C. 2008. Pengantar Teknologi Pangan. Universitas Padjajaran.

Jatinangor.

Winarno, F.G, 1995. Kimia Pangan dan Gizi. PT Gramedia. Jakarta

Yunita,Lenny., 2010.Perangkat Pembelajaran Biokimia Petunjuk Praktikum .(Karbohidrat-Lipid-Protein-dan-Enzim).Unesa Press.Surabaya.

http://miswanditendrita.wordpress.com/http://miswanditendrita.wordpress.com/


71/83

64

LAMPIRAN


72/83

65


73/83

66


74/83

67


75/83

68


76/83

69


77/83

70


78/83

71


79/83

72


80/83

73


81/83

74

Documents

Laporan Tetap Biokimia Kelompok 22 d