i

KARYA TULIS ILMIAH

PERBANDINGAN HASIL PEMERIKSAAN MALARIA

MENGGUNAKAN METODE MIKROSKOPIS DENGAN

METODE IMMUNOCHROMATOGRAPHY TEST/ICT 2

PRODUK

Disusun Oleh :

Muhammad Hendri Januri

NIM : 11.0578.86.03

PROGRAM STUDI D-III ANALIS KESEHATAN

SEKOLAH TINGGI ILMU KESEHATAN WIYATA HUSADA

SAMARINDA

2013

i

KARYA TULIS ILMIAH

PERBANDINGAN HASIL PEMERIKSAAN MALARIA

MENGGUNAKAN METODE MIKROSKOPIS DENGAN

METODE IMMUNOCHROMATOGRAPHY TEST/ICT 2

PRODUK

Disusun Sebagai Persyaratan Mencapai Gelar Diploma III

Program Studi Analis Kesehatan

Disusun Oleh :

Muhammad Hendri Januri

NIM : 11.0578.86.03

PROGRAM STUDI D-III ANALIS KESEHATAN

SEKOLAH TINGGI ILMU KESEHATAN WIYATA HUSADA

SAMARINDA

2013

ii

HALAMAN PENGESAHAN

KARYA TULIS ILMIAH

PERBANDINGAN HASIL PEMERIKSAAN MALARIA MENGGUNAKAN

METODE MIKROSKOPIS DENGAN METODE

IMMUNOCHROMATOGRAPHY TEST/ICT 2 PRODUK

Disusun oleh :

MUHAMMAD HENDRI JANURI

NIM : 11.0578.86.03

Telah Di Pertahankan Didepan Dewan Penguji

Pada Tanggal :

SUSUNAN DEWAN PENGUJI

1. Rikawati S.ST (.)

NIP : 19710711

2. Kamil SKM (.)

NIDN : 11.1508.75.01

3. Khoirul Anam M.Biomed (.)

NIDN: 11.1410.84.01

Mengetahui

Ketua program studi DIII analis kesehatan

STIKES Wiyata Husada Samarinda

Siti Raudah S,Si

NIDN : 11.2112.85.01

Ketua

STIKes Wiyata Husada Samarinda

Anik Puji Rahayu, S.Kp,M.Kep

NIDN : 11.170472.01

iii

ABSTRAK

Penyakit malaria merupakan penyakit yang disebabkan parasit plasmodium

yang ditularkan oleh nyamuk Anopheles betina. Secara umum penelitian ini

bertujuan untuk mengetahui perbandingan pemeriksaan malaria menggunakan

metode Mikroskopis dan metode Immunochromatography Test.

Penelitian ini merupakan penelitian deskriptif analitik menggunakan data

hasil pemeriksaan malaria melalui pemeriksaan mikroskop dan RDT selama bulan

Maret - April 2014 dengan pendekatan cross sectional. Jumlah sampel yang

digunakan sebanyak 15 sampel dengan pengerjaan duplo. Penelitian dilakukan di

RSUD Abdul Rivai Berau.

Hasil pemeriksaan malaria menggunakan metode Mikroskopis yaitu terdapat

5 sampel positif malaria dan 10 sampel negatif malaria. Hasil pemeriksaan

malaria menggunakan metode ICT produk Abon terdapat 4 sampel positif malaria

dan 11 sampel negatif malaria, sedangkan merk lainnya yaitu ICT produk

Carestart terdapat 5 sampel positif malaria dan 10 sampel negatif malaria. Hasil

uji hipotesis dengan uji Cochran ,dimana didapat nilai p Signifikansi 0,135 yang

lebih besar (>) dari nilai batas kritis sebesar 0,05. Hal ini menunjukkan tidak

ada perbedaan pemeriksaan malaria menggunakan metode Mikroskopis dengan

metode Immunochromatography Test.

Kata kunci : Malaria, Mikroskopis, Immunochromatography Test

iv

RIWAYAT HIDUP

Muhammad Hendri Januri, lahir pada tanggal 20 Januari 1993

di Tanjung Redeb, Kab. Berau, adalah anak kedua dari Bapak

Witir dan Ibu Jamilah. Bertempat tinggal di Jl. Karang Mulyo,

Gg. Januari RT.14 Kel. Karang Ambun, Kec. Tanjung Redeb,

Kab. Berau.

Menempuh pendidikan pertama di Sekolah Dasar Negeri 017

Tanjung Redeb pada tahun 1998, kemudian melanjutkan ke Sekolah Menengah

Pertama di SMPN 09 Berau pada tahun 2005. Pada tahun 2008 melanjutkan ke

Sekolah Menengah Atas di SMAN 04 Berau. Memasuki jenjang pendidikan

Diploma III Analis Kesehatan di Sekolah Tinggi Ilmu Kesehatan Wiyata Husada

Samarinda pada tahun 2011.

Selama perkuliahan pernah melakukan Praktek Belajar Klinik I (PBK I) di

Puskesmas Temindung Samarinda dari bulan Februari Maret 2012, melakukan

Praktek Belajar Klinik II (PBK II) di Rumah Sakit Ince Abdoel Moeis Samarinda

dari bulan Agustus September 2013, kemudian pernah melakukan Praktek

Belajar Klinik III (PBK III) di Rumah Sakit Umum Daerah Abdul Wahab

Syahranie dari bulan Januari Maret 2014.

v

KATA PENGANTAR

Segala puji syukur penulis panjatkan ke hadirat Allah SWT karena atas

rahmat dan hidayah-Nya sehingga tugas penyusunan Karya Tulis ilmiah yang

berjudul Perbandingan Hasil Pemeriksaan Malaria Menggunakan Metode

Mikroskopis Dengan Metode Immunochromatography Test/ICT 2 Produk dapat

terselesaikan. Penyusunan Karya Tulis Ilmiah ini dimaksudkan untuk memenuhi

persyaratan memperoleh gelar Diploma III Analis kesehatan Sekolah Tinggi Ilmu

Kesehatan Wiyata Husada Samarinda.

Karya Tulis ilmiah ini terwujud atas bimbingan, pengarahan dan bantuan dari

para pembimbing, yaitu Bapak Kamil SKM selaku pembimbing I, dan Bapak

Khoirul Anam M.Biomed selaku pembimbing yang telah membimbing dan

membantu dalam penyusunan dan penyelesaian Karya Tulis Ilmiah ini.

Pada kesempatan ini penulis menyampaikan penghargaan dan terima kasih

juga kepada:

1. Ibu Anik Puji Rahayu, M.Kep selaku ketua STIKES Wiyata Husada

Samarinda.

2. Ibu Siti Raudah S.Si selaku Ketua program studi DIII Analis Kesehatan

STIKES Wiyata Husada Samarinda

3. Ibu Rikawati S.ST selaku Tim Penguji Karya Tulis Ilmiah ini.

4. Bapak Kamil SKM dan Bapak Khoirul Anam M.Biomed Selaku

pembimbing I dan II yang sangat membantu dalam penyusunan Karya

Tulis Ilmiah ini.

5. Seluruh staf dan Dosen STIKES Wiyata Husada Samarinda yang telah

terlibat dalam penyusunan dan penyelesaian Karya Tulis ilmiah ini.

6. Ibu dan ayah tercinta yang telah memberikan doa tulus, semangat,

motivasi, maupun bantuan berupa materi.

7. Yang terakhir ucapan terima kasih penulis sampaikan kepada semua

teman-teman yang telah membantu dan memberikan dukungan dalam

proses penyusunan dan menyelesaikan Karya Tulis ilmiah ini.

vi

Penulis menyadari bahwa Karya Tulis ilmiah ini masih jauh dari sempurna

sehingga kritik dan saran yang membangun sangat penulis harapkan demi

perbaikan kelanjutan karya tulis ilmiah kedepan. Semoga Karya Tulis ilmiah ini

dapat bermanfaat bagi para pembaca.

Samarinda, Juni 2014

Penulis

vii

DAFTAR ISI

Halaman

HALAMAN JUDUL ........................................................................................... i

HALAMAN PENGESAHAN ............................................................................. ii

ABSTRAK ........................................................................................................... iii

RIWAYAT HIDUP ............................................................................................. iv

KATA PENGANTAR ......................................................................................... v

DAFTAR ISI ........................................................................................................ vii

DAFTAR GAMBAR ........................................................................................... x

DAFTAR TABEL ............................................................................................... xi

DAFTAR SINGKATAN ..................................................................................... xii

DAFTAR LAMPIRAN ....................................................................................... xiii

BAB I PENDAHULUAN .................................................................................... 1

1.1 Latar Belakang ................................................................................... 1

1.2 Rumusan Masalah .............................................................................. 4

1.3 Tujuan ................................................................................................ 4

1.3.1 Tujuan Umum ........................................................................... 4

1.3.2 Tujuan Khusus .......................................................................... 4

1.4 Manfaat .............................................................................................. 5

1.4.1 Manfaat Bagi Masyarakat ......................................................... 5

1.4.2 Manfaat Bagi Akademik ........................................................... 5

1.4.3 Manfaat Bagi Peneliti ............................................................... 5

BAB II TINJAUAN PUSTAKA ......................................................................... 6

2.1 Definisi Malaria ................................................................................. 6

2.2 Plasmodium ........................................................................................ 8

2.2.1 Plasmodium Falciparum .......................................................... 9

2.2.2 Plasmodium Vivax .................................................................... 10

2.2.3 Plasmodium Ovale .................................................................... 11

2.2.4 Plasmodium Malariae .............................................................. 11

2.3 Patologi Malaria ................................................................................. 12

viii

2.3.1 Stadium Dingin ......................................................................... 12

2.3.2 Stadium Demam ....................................................................... 12

2.3.3 Stadium Berkeringat ................................................................. 13

2.4 Penularan Malaria .............................................................................. 13

2.5 Diagnosa Malaria ............................................................................... 14

2.5.1 Mikroskopis .............................................................................. 15

2.5.2 Rapid Test ................................................................................. 16

2.5.3 PCR (Polymerase Chain Reaction) .......................................... 16

2.5.4 Mikroskop Fluoresensi ............................................................. 17

2.5.5 Hemozoin.................................................................................. 17

2.6 Akurasi dan Presisi ............................................................................. 18

2.6.1 Akurasi...................................................................................... 18

2.6.2 Presisi........................................................................................ 18

2.6 Akurasi dan Presisi ............................................................................. 19

BAB III METODE PENELITIAN .................................................................... 20

3.1 Waktu dan Tempat Penelitian ............................................................ 20

3.1.1 Waktu........................................................................................ 20

3.1.2 Tempat ...................................................................................... 20

3.2 Jenis Penelitian ................................................................................... 20

3.3 Populasi dan Sampel Penelitian ......................................................... 20

3.4 Alur Penelitian ................................................................................... 21

3.5 Variabel Penelitian ............................................................................. 21

3.6 Definisi Operasional........................................................................... 22

3.7 Hipotesis Penelitian ............................................................................ 22

3.8 Teknik Pengambilan Data .................................................................. 23

3.8.1 Pengambilan Sampel ................................................................ 23

3.8.2 Prosedur Penelitian ................................................................... 23

3.9 Kerangka Konsep ................................................................................ 26

3.10 Teknik Analisa Data ........................................................................ . 26

BAB IV HASIL DAN PEMBAHASAN ............................................................ 27

4.1 Hasil ................................................................................................... 27

ix

4.2 Pembahasan ....................................................................................... 34

BAB V PENUTUP ............................................................................................... 43

5.1 Kesimpulan ........................................................................................ 43

5.2 Saran .................................................................................................. 44

DAFTAR PUSTAKA

x

DAFTAR GAMBAR

Halaman

Gambar 2.1 Bagan Kerangka Teori ..................................................................... 19

Gambar 3.1 Bagan Alur Penelitian ...................................................................... 21

Gambar 3.2 Interpretasi hasil Immunochromatography Test .............................. 25

Gambar 3.3 Kerangka Konsep ............................................................................. 26

Gambar 4.1 Grafik perbandingan hasil jenis plasmodium dari ketiga metode

pemeriksaan malaria ......................................................................... 30

xi

DAFTAR TABEL

Halaman

Tabel 3.1 Definisi Operasional ........................................................................... 22

Tabel 4.1 Hasil Pemeriksaan Malaria Metode Mikroskopis dan ICT ................. 27

Tabel 4.2 Hasil keseluruhan pemeriksaan duplo Malaria menggunakan metode

Mikroskopis dan ICT .......................................................................... 28

Tabel 4.3 Hasil Pemeriksaan Malaria Jenis Plasmodium Metode Mikroskopis

Dan ICT .............................................................................................. 28

Tabel 4.4 Hasil Pemeriksaan Jenis Plasmodium Menggunakan Metode

Mikroskopis dan ICT .......................................................................... 29

Tabel 4.5 Tabel Crosstabs yang Memaparkan Perbandingan antara Metode

Mikroskopis dan Metode ICT ............................................................ 31

Tabel 4.6 Hasil Uji Analisa Cochran pada Data Penelitian ................................ 32

Tabel 4.7 Kesimpulan Uji Analisa Cochran pada Data Penelitian ..................... 32

Tabel 4.8 Hasil Uji Analisa Mcnemar antara Metode Mikroskopis dan ICT

Merk Abon .......................................................................................... 33

Tabel 4.9 Hasil Uji Analisa Mcnemar antara Metode Mikroskopis dan ICT

Merk Carestart .................................................................................... 33

Tabel 4.10 Hasil Uji Analisa Mcnemar antara Metode Ict Merk Abon dan ICT

Merk Carestart .................................................................................... 33

Tabel 4.11 Distribusi Hasil Pemeriksaan antara Metode Mikroskopis dan

Metode ICT Merk Abon.................................................................... 34

Tabel 4.12 Distribusi Hasil Pemeriksaan antara Metode Mikroskopis dan

Metode ICT Merk Carestart .............................................................. 34

xii

DAFTAR SINGKATAN

RDT : Rapid Diagnostic test

ICT : Immunochromatography Test

HRP-2 : Histidine Rich Protein-2

LDH : Lactate Dehydrogenase

KLB : Kejadian Luar Biasa

PCR : Polymerase Chain Reaction

DNA : Deoxyribo Nucleo Acid

RNA : Ribo Nucleo Acid

UV : Ultra Violet

AO : Acridine Orange

BCP : Benzothio Carboxypurine

FBC : Full Blood Count

P : Signifikansi

xiii

DAFTAR LAMPIRAN

Halaman

Lampiran 1 Lembar Hasil Pemeriksaan .............................................................. 48

Lampiran 2 Lembar Tabel Crosstabulation ........................................................ 49

Lampiran 3 Lembar Hasil Analisa Uji Cochran ................................................. 50

Lampiran 4 Lembar Hasil Analisa post hoc ........................................................ 51

Lampiran 5 Lembar Surat Ijin Penelitian ............................................................ 52

Lampiran 6 Dokumentasi Kegiatan Penelitian ................................................... 53

BAB I

PENDAHULUAN

1.1 Latar Belakang

Malaria merupakan salah satu penyakit menular yang sangat dominan di

daerah tropis dan sub tropis serta dapat mematikan atau membunuh lebih dari

satu juta manusia di seluruh dunia disetiap tahunnya. Penyebaran malaria

berbeda-beda dari satu Negara dengan Negara lain dan dari satu kabupaten

atau wilayah dengan wilayah lain (Harijanto, 2009).

Menurut WHO, pada tahun 1990, 80% kasus di Afrika, dan kelompok

potensial terjadinya penyebaran malaria indigenous di Sembilan Negara

yaitu: India, Brazil, Afganistan, Sri Langka, Thailand, Indonesia, Vietnam,

Cambodia dan China. Plasmodium Falciparum adalah spesies paling

dominan dengan 120 juta kasus baru pertahun, dan lebih dari satu juta

kematian pertahun secara global. Dalam tahun 1989 yang lalu WHO kembali

mendeklarasikan penanggulangan malaria menjadi prioritas global (WHO,

1999).

Malaria masih merupakan masalah kesehatan yang serius di Indonesia.

Kejadian luar biasa (KLB) malaria telah menyerang di 15 provinsi yang

meliputi 84 desa endemis dengan jumlah penderita 27.000 dan 368 kematian

(Depkes RI, 2003). Menurut survey Kesehatan Rumah Tangga tahun 2001,

terdapat 15 juta kasus malaria dengan 38.000 kematian setiap tahunnya.

Diperkirakan 35% penduduk Indonesia tinggal di daerah yang beresiko

tertular malaria. Indonesia memiliki 484 Kabupaten/Kota, 338 diantaranya

merupakan wilayah endemis malaria (Depkes RI, 2008).

Berdasarkan data yang bersumber dari Ditjen PP & PL Depkes RI pada

tahun 2009, yang memberikan gambaran mengenai angka API (Annual

Parasite Incidence) di Indonesia, disebutkan bahwa terdapat 12 Provinsi di

Indonesia yang masih berada diatas angka API nasional (yang berada di

kisaran 1,85 angka API per 1.000 penduduk pada tahun 2009). Provinsi

Kaltim (Kalimantan Timur) termasuk kedalam salah satu dari ke-12 provinsi

2

yang memiliki angka API diatas angka API nasional, (angka API provinsi

Kaltim berada di kisaran 2,04 per 1.000 penduduk) bahkan angka ini

merupakan yang tertinggi di wilayah pulau Kalimantan dan satu satunya

provinsi di pulau Kalimantan yang memiliki angka API diatas angka API

nasional (Depkes, 2011).

Di wilayah provinsi Kalimantan timur, berdasarkan data Dinas Kesehatan

Provinsi Kalimantan Timur tahun 2010, penemuan dan pengobatan penderita

positif malaria sebanyak 7.045 orang yang tersebar di 13 kabupaten/kota di

Kalimantan timur (Dinkes Kaltim, 2010). Pada tahun 2010 di Samarinda

terdapat 58 kasus positif malaria sedangkan pada tahun 2011 terdapat 84

kasus positif malaria (Dinkes Kaltim, 2011).

Malaria masih merupakan masalah penyakit endemik di wilayah

Indonesia. Salah satu masalah yang dihadapi adalah kesulitan mendiagnosis

secara cepat dan tepat. Berdasarkan hasil evaluasi Program Pemantapan Mutu

Eksternal Laboratorium Kesehatan pada pemeriksaan mikroskopis malaria,

yang dilakukan oleh Balai Laboratorium Kesehatan Mataram, dari 19

laboratorium di Nusa Tenggara Barat yang men gevaluasi menggunakan

preparat positif malaria, hanya 79% peteknik laboratorium yang dapat

membaca preparat dengan benar. Kepentingan untuk mendapatkan diagnosis

yang cepat pada penderita yang diduga menderita malaria merupakan

tantangan untuk mendapatkan uji/metode laboratorik yang tepat, cepat,

sensitif, mudah dilakukan, serta ekonomis (Arum, 2006).

Diagnosis konvensional dengan pemeriksaan mikroskopik sediaan

malaria, darah tebal maupun tipis, untuk melihat parasit intraseluler dengan

pengecatan Giemsa masih merupakan pilihan utama dan menjadi gold

standard bagi tes diagnostik malaria lain. Dasar pemeriksaan ini adalah

ditemukannya parasit Plasmodia dan karena itu merupakan cara untuk

menegakkan diagnosis definitif malaria. Pemeriksaan sediaan malaria ini

relatif murah, tetapi memerlukan tenaga mikrokopis yang terlatih khusus dan

berpengalaman, serta waktu yang cukup lama untuk pengecatan maupun

interpretasi hasilnya (Harijanto, 2009).

3

Pemeriksaan mikroskopik dengan pewarnaan hanya dapat dipercaya jika

dilakukan oleh seorang yang berpengalaman. Selain untuk menegakan

diagnosis, pemeriksaan mikroskopik dapat digunakan untuk mengevaluasi

hasil pengobatan dan hal ini tidak dapat diterapkan dengan uji cepat

malaria/ICT. Pemeriksaan mikroskopis masih merupakan standar baku (Gold

Standard) untuk tes diagnostik malaria. Pemeriksaan Immuno

Chromatographic (IC) dapat digunakan sebagai pemeriksaan alternatif.

Sampai saat ini ada banyak sekali rapid malaria test yang beredar di pasaran,

tetapi secara garis besar hanya ada 3 macam antigen malaria yang digunakan,

yaitu HRP-2 (hystidine rich protein-2), lactate dehydrogenase (LDH), dan

aldolase (Harijanto, 2009).

Banyak sekali penelitian yang membandingkan antara metode

mikroskopis dengan metode Immunochromatography Test, misalnya

penelitian yang dilakukan oleh Arum, dkk (2006) di Kabupaten Lombok

Timur terhadap 604 responden menunjukkan bahwa RDT memiliki

sensitivitas 100%, spesifitas 96,7%, nilai duga positif 83,2% dan nilai duga

negatif 100%. Hasil penelitian tersebut menunjukkan bahwa RDT memiliki

validitas reliabilitas yang cukup baik untuk digunakan sebagai diagnosa

malaria. Sedangkan berdasarkan penelitian sebelumnya yang dilaksanakan

oleh mahasiswi STIKES Wiyata Husada Samarinda bernama Meri

Rahmawati, diperoleh sensitifitas 100%, spesifisitas 91,3%, nilai prediksi

positif 86,7%, dan nilai prediksi negatif 100 %. Hasil penelitian tersebut

menunjukkan bahwa RDT/ICT cukup reliabel dalam penggunaannya untuk

diagnosis malaria sehari hari (Arum, 2006).

Salah satu alasan yang membedakan penelitian kali ini dengan penelitian

yang dilakukan oleh Meri Rahmawati adalah penelitian kali ini menggunakan

2 produk Rapid Diagnostic Test malaria yang memiliki sensitifitas dan

spesifisitas yang berbeda, sedangkan pada penelitian sebelumnya hanya

menggunakan 1 produk Rapid Diagnostic Test. Selain itu pada penelitian

sebelumnya, penelitian dilakukan dengan menggunakan sampel yang berasal

dari Rumah Sakit Pertamedika Tarakan, sedangkan penelitian kali ini

4

menggunakan sampel yang berasal dari Rumah Sakit Umum Daerah Abdul

Rivai Berau.

Pada penelitian ini peneliti bermaksud untuk menggunakan 2 produk

rapid test/ICT malaria yang berbeda dengan fakta kedua produk tersebut

memiliki nilai sensitifitas dan spesifisitas yang berbeda. Oleh karena itu

peneliti ingin meneliti kedua metode baik mikroskopis maupun

Imunochromatography Test apakah terdapat perbedaan hasil diagnosa malaria

disamping untuk mengetahui nilai sensitifitas dan spesifisitas. Melihat latar

belakang diatas maka peneliti ingin melakukan penelitian dengan judul

Perbandingan Hasil Pemeriksaan Malaria Menggunakan Metode

Mikroskopis dengan Metode Imunochromatography Test/ICT 2 Produk

1.2 Rumusan Masalah

Berdasarkan latar belakang di atas maka dapat dirumuskan masalah

Apakah ada perbedaan hasil pemeriksaan malaria menggunakan metode

mikroskopis dengan metode Immunochromatography Test/ICT 2 produk?

1.3 Tujuan Penelitian

1.3.1 Tujuan Umum

Untuk mengetahui perbedaan hasil pemeriksaan malaria dengan

menggunakan metode mikroskopis dengan metode Immuno

chromatography Test/ICT 2 produk.

1.3.2 Tujuan Khusus

- Untuk mengetahui hasil pemeriksaan malaria menggunakan

metode mikroskopis.

- Untuk mengetahui hasil pemeriksaan malaria menggunakan

metode Immunochromatography Test.

- Untuk mengetahui produk Rapid Diagnostic Test yang lebih baik

dalam diagnosa malaria .

5

1.4 Manfaat Penelitian

1.4.1 Bagi Masyarakat

Hasil Penelitian ini bermanfat bagi masyarakat yang melakukan

pemeriksaan malaria menggunakan alat yang telah terstandar, dimana

hasil yang didapatkan sesuai dan dapat dipertanggung jawabkan, dan

membantu memberikan informasi dan pemahaman serta pengetahuan

kepada masyarakat tentang penyakit malaria, sehingga keluarga dapat

memelihara dan meningkatkan status kesehatannya.

1.4.2 Bagi Akademik

Hasil penelitian ini bermanfaat untuk menambah wawasan ilmu

pengetahuan parasitologi khususnya pada pemeriksaan malaria, dan

dapat memberikan masukan bagi lembaga pendidikan untuk

menjadikan suatu bahan acuan dengan masalah malaria.

1.4.3 Bagi Peneliti

Hasil penelitian bermanfaat untuk menambah keterampilan dan

kecakapan dalam bidang parasitologi khususnya tentang malaria, serta

sebagai proses belajar baik dalam penulisan karya tulis ilmiah maupun

dalam melakukan penelitian tentang malaria.

BAB II

TINJAUAN PUSTAKA

2.1 Definisi Malaria

Malaria berasal dari bahasa italia yaitu mal = buruk dan area = udara.

Jadi secara harfiah malaria berarti penyakit yang sering terjadi pada daerah

dengan udara buruk akibat lingkungan yang buruk. Malaria adalah suatu

penyakit infeksi dengan demam berkala yang disebabkan oleh parasit

plasmodium (termasuk protozoa) dan ditularkan oleh nyamuk Anopheles

betina (Zulkoni, 2010). Malaria diduga disebabkan oleh hukuman dewa,

karena pada waktu itu ada wabah di sekitar kota Roma. Penyakit ini banyak

ditemukan di daerah rawa yang mengeluarkan bau busuk ke sekitarnya,

sehingga disebut malaria (malarea = udara buruk = bad air) (Gandahusada,

2008).

Definisi penyakit malaria menurut World Health Organization (WHO)

adalah penyakit yang disebabkan oleh parasit malaria (plasmodium) bentuk

aseksual yang masuk ke dalam tubuh manusia yang ditularkan oleh nyamuk

malaria (Anopheles spp) betina. Definisi penyakit malaria lainnya adalah

suatu jenis penyakit menular yang disebabkan oleh agent tertentu yang

infektif dengan perantara suatu vektor dan dapat disebarkan dari suatu sumber

infeksi kepada host. Penyakit malaria termasuk salah satu penyakit menular

yang dapat menyerang semua orang, bahkan mengakibatkan kematian

terutama yang disebabkan oleh parasit Plasmodium Falciparum (Depkes,

2003). Penyakit malaria telah diketahui sejak zaman Yunani, gejala klinis

penyakit malaria adalah khas, karena demam yang naik turun dan teratur

disertai menggigil, maka pada waktu itu sudah dikenal febris tersiana dan

febris kuartana. Disamping itu terdapat kelainan pada limpa yaitu

splenomegali (limpa membesar dan menjadi keras) sehingga dulu penyakit

malaria disebut demam kura (Gandahusada, 2008).

Malaria adalah suatu penyakit yang disebabkan oleh protozoa obligat

intraseluler dari genus Plasmodium yang ditularkan oleh nyamuk Anopheles

7

betina. Selain oleh gigitan nyamuk, malaria dapat ditularkan secara langsung

melalui transfusi darah atau jarum suntik serta dari ibu hamil kepada bayinya

dengan karakteristik utama dari infeksi malaria ialah demam periodik, anemia

dan splenomegali dengan manifestasi penyakit tergantung dari jenis

Plasmodium yang menyebabkan infeksi, dan Plasmodium falciparum adalah

yang paling berbahaya. Malaria adalah penyakit menular yang disebabkan

oleh parasit (protozoa) dari genus plasmodium, yang dapat ditularkan melalui

gigitan nyamuk anopheles. Penyakit ini merupakan salah satu penyakit

infeksi yang tersebar diseluruh dunia. Penduduk yang berisiko terkena

malaria berjumlah sekitar 2,3 miliar atau 41% dari jumlah penduduk dunia.

Setiap tahun sekitar 300-500 juta penduduk dunia menderita penyakit ini dan

mengakibatkan 1,5-2,7 juta kematian, terutama di negara-negara benua Afrika

(WHO, 2011). Di Indonesia jumlah kabupaten/kota endemik tahun 2004

sebanyak 424 dari 579 kabupaten/kota, dengan perkiraan persentase

penduduk yang beresiko penularan sebesar 42,42%. Masalah malaria di

Indonesia terutama terpusat di wilayah Indonesia bagian Timur, yaitu, Papua,

Irian Jaya Barat, Maluku, Maluku Utara dan NTT (Harijanto, 2009).

Malaria merupakan salah satu penyakit menular yang mempengaruhi

angka kematian bayi, anak dan ibu melahirkan serta dapat menurunkan

produktivitas kerja. Angka kesakitan penyakit ini masih cukup tinggi

terutama dikawasan timur Indonesia. Kejadian luar biasa malaria masih

sering terjadi terutama di daerah yang terjadi perubahan lingkungan, misalnya

tambak udang atau ikan yang tidak terpelihara, penebangan pohon bakau

sebagai bahan bakar untuk memasak garam maupun arang, muara sungai

yang tersumbat yang akan menjadi tempat perindukan nyamuk malaria

(Zulkoni, 2010).

Penderita malaria saat ini didominasi oleh Plasmodium falciparum dan

Plasmodium vivax dengan kisaran prosentase 80-95% dan sisanya disebabkan

oleh Plasmodium malariae dan Plasmodium ovale (Zulkoni, 2010).

Malaria atau disebut pula paludisme, demam intermitens, panas dingin,

demam rawa, demam pantai, demam tropik, dan ague. Disebabkan oleh

8

parasit yang disebut Plasmodium, yang merupakan suatu protozoa darah yang

tergolong ke dalam kelas Sporozoa. Di Indonesia, ditemukan 4 spesies

penyebab penyakit malaria pada manusia yaitu Plasmodium falciparum,

Plasmodium vivax, Plasmodium malariae, dan Plasmodium ovale. Diantara

ke empat macam parasit tersebut yang paling banyak ditemukan yaitu P.

falciparum dan P. vivax, sedangkan yang paling berbahaya adalah

P.falciparum. Terdapat pula jenis lain yaitu P. berghei yang merupakan

parasit dari genus Plasmodium yang bersifat parasitik pada sel darah merah

yang dapat menyebabkan penyakit malaria pada rodent (mencit). P. berghei

mempunyai siklus hidup maupun morfologi sama seperti parasit malaria pada

manusia, dalam hal ini yang berbeda hanya inangnya saja. Selain itu, penyakit

malaria dapat ditemukan pada unggas yang disebabkan oleh berbagai jenis

Plasmodium seperti Plasmodium gallinaceum, P. juxtanucleare, P.

relicticum, P. durae, P. circumflexum, P. fallax, dan P. rouxi. Penyakit

malaria ditularkan oleh vektor seperti nyamuk Anopheles (pada manusia dan

rodent) serta nyamuk agas dan lalat (pada unggas) (Levine 1990).

2.2 Plasmodium

Penyakit malaria adalah infeksi yang disebabkan oleh parasit malaria

(plasmodium), yang merupakan suatu protozoa darah yang klasifikasinya :

Filum : Apicomplexa

Klas : Sporozoa

Sub klas : Cocidiidae

Ordo : Eucoccidiidae

Sub ordo : Haemosporidiidae

Familia : Plasmodiidae

Genus : Plasmodium

Genus plasmodium secara umum dibagi menjadi 3 (tiga) sub genus yaitu

sub genus plasmodium dengan spesies yang menginfeksi manusia adalah

Plasmodium vivax, Plasmodium ovale dan Plasmodium malariae, sub genus

laverania dengan spesies yang menginfeksi manusia adalah Plasmodium

9

falciparum dan sub genus vinckeia yang hanya menginfeksi kelelawar dan

binatang pengerat lainnya (Depkes, 1999).

P. falciparum dan P. malariae umumnya terdapat pada hampir semua

Negara dengan malaria; P. falciparum terdapat di Afrika, Haiti, dan Papua

Nugini. Sedangkan P. vivax banyak terdapat di Amerika Latin. Di Amerika

Selatan, Asia Tengggara, Negara Oceania dan India umumnya P. falciparum

dan P. vivax. Dan P. ovale biasanya hanya terdapat di Afrika. Di Indonesia

timur: Kalimantan, Sulawesi Tengah sampai Utara, Maluku, Papua, dan

Lombok sampai Nusa Tenggara Timur merupakan daerah endemis malaria

dengan P. falciparum dan P. vivax (Krogstad, 2000)

2.2.1 Plasmodium Falcifarum

Plasmodium falciparum, salah satu organisme penyebab malaria,

merupakan jenis yang paling berbahaya dibandingkan dengan jenis

Plasmodium lain yang menginfeksi manusia. Saat ini, P. falciparum

merupakan salah satu spesies penyebab malaria yang paling banyak

diteliti (Harijanto, 2009).

Parasit ini merupakan spesies yang paling berbahaya karena

penyakit yang ditimbulkannya dapat menjadi berat. Menyebabkan

malaria falciparum atau malaria tertiana yang maligna (ganas) atau

dikenal dengan nama lain sebagai malaria tropika yang menyebabkan

demam setiap hari, menyebabkan malaria falsiparum dan Parasit ini

ditemukan didaerah tropik, terutama di Afrika dan Asia Tenggara.

Perkembangan aseksual dalam hati hanya menyangkut fase pra-eritrosit

saja, tidak ada fase eksoeritrosit yang data menimbulkan relaps jangka

panjang (Gandahusada, 2010).

Pada malaria Falsiparum, eritrosit yang diinfeksi tidak membesar

selama stadium perkembangan parasit. Eritrosit yang mengandung

trofozoit tua dan skizon mempunyai titik-titik kasar yang tampak jelas

(titik Maurer) tersebar pada dua per tiga bagian eritrosit (Gandahusada,

2010).

10

Plasmodium Falciparum mempunyai trofozoit muda yang

berbentuk cincin yang mempunyai inti dan tampak sebagian dari

sitoplasma parasite berada di bagian tepi dari eritrosit. Trofozoit lanjut

pada spesies ini mengandung bintik bintik Maurer (Maurer Dots).

Bentuk skizon P. Falciparum berukuran sekitar 5 mikron mengandung

merozoit yang tidak teratur susunannya dengan eritrosit yang terinfeksi

plasmodium ini tidak membesar ukurannya. Gametosit P. Falciparum

mempunyai bentuk khas seperti pisang dengan ukuran panjang

gametosit lebih besar dari ukuran diameter eritrosit (Soedarto, 2011).

2.2.2 Plasmodium Vivax

Plasmodium vivax menyebabkan penyakit malaria vivaks, dapat

juga disebut malaria tersiana. Spesies ini terdapat didaerah subtropik,

dan juga ditemukan didaerah dingin (Rusia); didaerah trofik Afrika,

terutama di Afrika Barat, spesies ini jarang ditemukan. Di Indonesia

spesies tersebut tersebar di seluruh kepulauan dan pada umumnya di

daerah endemik mempunyai frekuensi tertinggi diantara spesies yang

lain (Gandahusada, 2010).

Pada malaria vivax, mengigau bisa terjadi jika demamnya tinggi,

sedangkan gejala otak lainnya tidak ada. Pada semua jenis malaria,

jumlah sel darah putih total biasanya normal, tetapi jumlah limfosit dan

monosit meningkat (zulkoni, 2010).

Plasmodium mempunyai trofozoit yang berbeda bentuknya antara

stadium muda dan lanjutan. Trofozoit muda Plasmodium Vivax mula

mula berbentuk cincin yang mengandung bintik-bintik basophil,

kemudian berkembang menjadi trofozoit yang berbentuk amuboid yang

mengandung titik Schuffner (Schuffner Dots). Bentuk skizon

Plasmodium Vivax mempunyai ukuran 9-10 mikron yang mengisi

penuh eritrosit yang tampak membesar ukurannya, dengan susunan

merozoit yang tampak tidak teratur. P. Vivax mempunyai bentuk

gametosit yang lonjong atau bulat, dengan eritrosit yang membesar

ukurannya dan mengandung bintik Schuffner (Soedarto, 2011).

11

2.2.3 Plasmodium Ovale

Plasmodium ovale terutama terdapat didaerah tropik Afrika bagian

barat, didaerah Pasifik Barat dan beberapa bagian lain didunia. Di

Indonesia parasit ini terdapat di Pulau Owi sebelah Selatan Biak di Irian

Jaya dan di Pulau Timor (Gandahusada, 2010).

Morforlogi P.ovale mempunyai persamaan dengan P.malariae

tetapi perubahan pada eritrosit yang dihinggapi parasit mirip dengan

P.vivax. Trofozoit muda berukuran kira-kira 2 mikron (1/3 eritrosit).

Titik-titik Schuffner (disebut juga titik james) terbentuk sangat dini dan

sangat jelas. Stadium trofozoit terbentuk bulat dan kompak dengan

granula pigmen yang lebih kasar tetapi tidak sekasar P.malariae. Pada

stadium ini eritrosit agak membesar dan sebagian besar berbentuk

lonjong (oval) dan pinggir eritrosit bergerigi pada salah satu ujungnya

dengan titik-titik Schuffner yang menjadi lebih banyak (Gandahusada,

2010).

2.2.4 Plasmodium Malariae

Plasmodium malariae adalah penyebab malaria malariae atau

malaria kuartana, karena serangan demam berulang pada tiap hari

keempat. Penyakit malaria kuartana meluas meiputi daerah tropik

maupun daerah subtropik, tetapi frekuensi penyakit ini beberapa daerah

cenderung rendah. Penyakit ini, bila ada di suatu daerah di Indonesia

frekuensinya sangat rendah hingga tidak merupakan masalah kesehatan

masyarakat (Gandahusada, 2010).

Daur pra-eritrosit pada manusia belum pernah ditemukan. Inokolasi

sporozoit P.malariae manusia pada simpanse dengan tusukan nyamuk

Anopheles membuktikan adanya stadium pra-eritrosit P.malariae.

Parasit ini dapat hidup pada simpanse yang merupakan hospes reservoir

yang potensial. Plasmodium rodhaini yang hidup pada simpanse

sinonim dengan P.malariae pada manusia (Gandahusada, 2010).

12

2.3 Patologi Malaria

Patogenesis malaria sangat kompleks, dan seperti patogenesis penyakit

infeksi pada umumnya melibatkan faktor parasit, faktor penjamu, dan

lingkungan. Ketiga faktor tersebut saling terkait satu sama lain, dan

menentukan manifestasi klinis malaria yang bervariasi mulai dari yang paling

berat ,yaitu malaria dengan komplikasi gagal organ (malaria berat), malaria

ringan tanpa komplikasi, atau yang paling ringan, yaitu infeksi asimtomatik.

Serangan malaria biasanya berlangsung selama 6-10 jam dan terdiri dari tiga

tingkatan, yaitu: (Harijanto, 2009)

2.3.1 Stadium Dingin

Stadium ini mulai dengan menggigil dan perasaan yang sangat

dingin. Gigi gemeretak dan penderita biasanya menutup tubuhnya

dengan segala macam pakaian dan selimut yang tersedia nadi cepat

tetapi lemah. Bibir dan jari jemarinya pucat kebiru-biruan, kulit kering

dan pucat. Penderita mungkin muntah dan pada anak-anak sering terjadi

kejang. Stadium ini berlangsung antara 15 menit sampai 1 jam.

2.3.2 Stadium Demam

Setelah merasa kedinginan, pada stadium ini penderita merasa

kepanasan. Muka merah, kulit kering dan terasa sangat panas seperti

terbakar, sakit kepala dan muntah sering terjadi, nadi menjadi kuat lagi.

Biasanya penderita merasa sangat haus dan suhu badan dapat meningkat

sampai 41C atau lebih. Stadium ini berlangsung antara 2 sampai 4 jam.

Demam disebabkan oleh pecahnya skizon darah yang telah matang dan

masuknya merozoit darah ke dalam aliran darah.

Pada P. vivax dan P. ovale skizon-skizon dari setiap generasi

menjadi matang setiap 48 jam sekali sehingga demam timbul setiap tiga

hari terhitung dari serangan demam sebelumnya. Nama malaria tertiana

bersumber dari fenomena ini. Pada P. malariae, fenomena tersebut 72

jam sehingga disebut malaria P. vivax/P. ovale, hanya interval

demamnya tidak jelas. Serangan demam diikuti oleh periode laten yang

13

lamanya tergantung pada proses pertumbuhan parasit dan tingkat

kekebalan yang kemudian timbul pada penderita.

2.3.3 Stadium Berkeringat

Pada stadium ini penderita berkeringat banyak sekali sampai-sampai

tempat tidurnya basah. Suhu badan meningkat dengan cepat, kadang-

kadang sampai dibawah suhu normal. Penderita biasanya dapat tidur

nyenyak. Pada saat bangun dari tidur merasa lemah tetapi tidak ada

gejala lain, stadium ini berlangsung antara 2 sampai 4 jam.

Gejala-gejala yang disebutkan diatas tidak selalu sama pada setiap

penderita, tergantung pada spesies parasit dan umur dari penderita, gejala

klinis yang berat biasanya terjadi pada malaria tropika yang disebabkan oleh

Plasmodium falciparum. Hal ini disebabkan oleh adanya kecenderungan

parasit (bentuk trofozoit dan skizon) untuk berkumpul pada pembuluh darah

organ tubuh seperti otak, hati dan ginjal sehingga menyebabkan tersumbatnya

pembuluh darah pada organ-organ tubuh tersebut (Harijanto, 2009).

2.4 Penularan Malaria

Penularan malaria terjadi secara alami dan tidak alami. Penularan secara

alami terjadi melalui gigitan nyamuk Anopheles betina yang infektif. Nyamuk

menggigit orang sakit malaria maka parasit akan ikut terhisap bersama darah

penderita malaria. Di dalam tubuh nyamuk parasit akan berkembang dan

bertambah banyak, kemudian nyamuk menggigit orang sehat, maka melalui

gigitan tersebut parasit ditularkan ke orang lain (Harijanto, 2009).

Proses penularan penyakit malaria dimulai pada saat nyamuk pembawa

parasit malaria menggigit manusia sehat. Setelah itu, parasit mengalami

perubahan bentuk dan masuk ke dalam saluran darah hingga masuk ke dalam

jaringan hati. Parasit ini berkembang biak dengan cara melakukan pembelahan

sel sehingga jumlah parasit dalam tubuh manusia akan berkembang dalam

waktu yang cepat. Parasit tersebut selanjutnya akan tersebar dalam darah dan

di luar darah (Harijanto, 2009).

14

Dalam tubuh manusia, parasit mengalami berbagai perkembangan hingga

menjadi bentuk siap kawin dan seterusnya berubah lagi menjadi bentuk yang

siap dihisap oleh nyamuk. Bentuk ini yang akan ditularkan ke manusia lain

melalui perantaraan nyamuk. Di dalam tubuh nyamuk, parasit mengalami

perkembangan dan menghasilkan bentuk parasit yang siap ditularkan ke tubuh

manusia (Harijanto, 2009).

Malaria ditularkan melalui vektor, yaitu nyamuk Anopheles. Vektor

malaria yang dominan terhadap penularan malaria di Indonesia adalah sebagai

berikut:

i. Wilayah Indonesia Timur, yaitu Papua, Maluku, dan Maluku Utara, di

wilayah pantai adalah An. subpictus, An. farauti, An. koliensis dan An.

punctulatus sedangkan di wilayah pegunungan adalah An. farauti.

ii. Wilayah Indonesia Tengah, yaitu Pulau Sulawesi, Pulau Kalimantan,

NTT dan NTB, vektor yang berperan di daerah pantainya adalah An.

subpictus, An. barbirostris. Khusus di NTB adalah An. subpictus dan

An. sundaicus. Sedangkan di wilayah pegunungan adalah An.

barbirostris, An. flavirostris, An letifer. Khusus wilayah Kalimantan,

selain Anopheles tersebut di atas juga An. balabacencis.

iii. Untuk daerah pantai di wilayah Sumatera, An. sundaicus; daerah

pegunungan An. leucosphyrus, An. balabacencis, An. sinensis, dan An.

maculatus.

iv. Wilayah Pulau Jawa. Vektor yang berperan di daerah pantai adalah An.

sundaicus dan An. subpictus dan di pegunungan adalah An. maculatus,

An. balabacencis dan An. Aconitus (Harijanto, 2009).

2.5 Diagnosa Malaria

Diagnosis malaria yang cepat dan tepat merupakan hal yang sangat

diperlukan dalam penatalaksanaan kasus malaria. Hal tersebut terutama

berhubungan dengan infeksi P. Falcifarum yang dapat menyebabkan malaria

berat atau malaria dengan komplikasi. Untuk dokter yang bekerja di kota,

anamnesis adanya riwayat bepergian ke daerah endemis malaria lebih kurang

15

2 minggu sebelum timbulnya gejala klinis, merupakan hal yang sangat

penting. Gejala klinis berupa demam tinggi yang dapat disertai gangguan

kesadaran atau gangguan lain. Setelah penderita dicurigai secara klinis

menderita malaria, pemeriksaan laboratorium untuk menemukan parasit harus

secepatnya dilakukan. Berbagai cara dapat dilakukan dari pemeriksaan

konvensional dengan mikroskop cahaya, untuk mengevaluasi sediaan darah

yang diwarnai dengan Giemsa sampai berbagai pemeriksaan yang lebih

modern dengan menggunakan mikroskop fluoresensi, flow cytometri,

automated blood cell analyzer, pemeriksaan serologi, berbagai metode

molekular maupun dengan laser desorption mass spectrometry (Harijanto,

2009).

Beberapa pemeriksaan untuk mendiagnosa malaria sebagai berikut:

2.5.1 Mikroskopis

Diagnosis konvensional dengan pemeriksaan mikroskopik sediaan

malaria,darah tebal maupun tipis, untuk melihat parasit intraseluler

dengan pengecatan giemsa masih merupakan pilihan utama dan menjadi

gold standard bagi tes diagnostik malaria lain. Dasar pemeriksaan ini

adalah ditemukannya parasit Plasmodia dan karena itu merupakan cara

untuk menegakkan diagnosis definitif malaria. Pemeriksaan sediaan

malaria ini relatif murah, tetapi memerlukan tenaga mikrokopis yang

terlatih khusus dan berpengalaman, serta waktu yang cukuplama untuk

pengecatan maupun interpretasi hasilnya (Gasem, 2004).

Membuat sediaan yang akan digunakan dalam pemeriksaan

mikroskopis dibuat terlebih dahulu apusan darah tipis dan tebal. Sediaan

tersebut kemudian difiksasi menggunakan larutan methanol. Sediaan

darah apus yang sudah difiksasi kemudian ditetesi larutan giemsa yang

sudah dilarutkan dengan larutan buffer pH 7,2 sampai larutan menutupi

seluruh permukaan sediaan darah. Lama pemulasan adalah 25-30 menit.

Kemudian darah dicuci dengan air keran yang mengalir sehingga larutan

giemsa turut mengalir dengan air. Dengan demikian tidak ada sisa zat

warna yang mengendap pada sediaan darah. Cara mencuci sediaan darah

16

ini penting demi memperoleh sediaan darah yang bersih tanpa ada

kotoran dan endapan giemsa yang menganggu pemeriksaan (Hadidjaja,

1994).

2.5.2 Rapid Test

Seringkali pada KLB, diperlukan tes yang cepat untuk

menanggulangi malaria dilapangan dengan cepat. Metode ini mendeteksi

adanya antigen malaria dalam darah dengan cara imunokromatografi,

dibandingkan uji mikroskopis, test ini mempunyai kelebihan yaitu hasil

pengujian dengan cepat dapat diperoleh, tetapi lemah dalam hal

spesifisitas dan sensitifitasnya (Riyanto, 2000).

Immunochromatographic Test (ICT) merupakan salah satu cara

pemeriksaan rapid manual test. Uji ICT ini berdasarkan kepada deteksi

antigen yang dikeluarkan oleh parasit malaria, yang spesifik terhadap

Plasmodium falciparum Histidine Rich Protein II (PfHRP II) dapat

melisiskan darah dengan menggunakan metoda immuno

chromatographic (WHO, 1999).

Diagnosis malaria yng didasarkan pada deteksi antigen yang spesifik

dalam darah penderita mulai diperkenalkan pada permulaan tahun 1990.

Cara ini dapat dikerjakann secara sederhana, cepat (kurang dari 1 jam)

dan hasilnya mudah diinterpretasikan (Harijanto, 2009).

2.5.3 PCR (Polymerase Chain Reaction)

Diagnosis parasit berdasarkan asam nukleat menggunakan molekul

DNA reporter untuk mendeteksi rangkaian DNA atau RNA spesifik

yang dimiliki parasit tertentu. Spesimen parasit yang merupakan target

diagnostik dilisiskan dengan merusak membran parasit dengan berbagai

cara, seperti penggunaan larutan bersifat basa, deterjen, panas, urea, dan

guanidine atau gelombang suara sehingga asam nukleat akan

dikeluarkan dan kemudian didenaturasikan. Molekul yang digunakan

sebagai reporter dapat berupa oligonukleotida, fragmen DNA, DNA

rantai tunggal atau DNA plasmid (Harijanto, 2009).

17

2.5.4 Mikroskop Fluoresensi

Sensitivitas diagnosis malaria pada sediaan darah dapat ditingkatkan

dengan menggunakan zat fluoresensi yang dapat berikatan dengan

parasit. Asam nukleat dalam inti parasit akan berikatan dengan zat

tersebut dan berfluoresensi jika disinari dengan sinar UV yang

mempunyai panjang gelombang tertentu. Mula mula digunakan acridine

orange (AO) dan benzothio carboxypurine (BCP). Keduanya dieksitasi

pada panjang gelombang 490 nm dan akan berfluoresensi dengan warna

kehijauan atau kekuningan (Harijanto, 2009).

Acridine Orange dapat digunakan langsung pada sediaan darah di

kaca objek atau dengan menggunakan capillary tubes, yang bagian

dalamnya dilapisi dengan zat warna acridine orange. Pada waktu

sentrifugasi, capillary tubes yang berisi darah pasien dan terdiri dari

berbagai sel, yaitu leukosit, trombsosit, dan eritrosit akan berpisah.

Parasit malaria akan terkonsentrasi di bawah berbagai lapisan sel,

terutama di bagian atas lapisan eritrosit dan kadang kadang ditemukan

dalam lapisan trombosit dan leukosit. parasit dapat dilihat dengan

menggunakan mikroskop fluoresensi (Harijanto, 2009).

2.5.5 Hemozoin

Deteksi pigmen malaria, yaitu hemozoin merupakan salah satu cara

otomatis yang dikembangkan dengan menggunakan alat FBC (Full

Blood Count) analyzer dengan nama CellDyn 3500 atau CellDyn

4000.alat ini sebenarnya digunakan untuk melakukan analisis

hematologi secara rutin seperti melakukan hitung jenis leukosit, eritrosit,

dan hitung trombosit. Prinsip kerja sama dengan flow cytometry, yaitu

dengan mengukur jumlah sinar laser yang dipantulkan suatu sel dari

berbagai sudut. Pantlan sinar depolarisasi pada 90 memungkinkan

identifikasi dan hitung eosinofil karena sel ini dapat mendepolarisasikan

sinar melalui granula dalam sitoplasmanya. Leukosit penderita malaria

mempunyai kemampuan untuk melakukan fagositosis pigmen hemozoin

yang dihasilkan parasit dengan memetabolisme heme dari hemoglobin.

18

Pigmen ini dapat ditemukan pada berbagai spesies plasmodium dan

berbagai stadium (Harijanto, 2009).

2.6 Akurasi dan Presisi

2.6.1 Akurasi

Akurasi menyatakan seberapa dekat nilai hasil pengukuran dengan

nilai hasil sebenarnya (true value atau nilai yang dianggap benar

(accepted value). Jika tidak ada data sebenarnya atau nilai yang

dianggap benar tersebut maka tidak mungkin untuk menentukan berapa

akurasi tersebut. Pada suatu pemeriksaan umumnya dinyatakan

ketidaktepatan (inakurasi) daripada ketepatan (akurasi). Inakurasi

adalah suatu perbedaan nilai yang diperoleh dengan nilai yang

sebenarnya (true value). Ketepatan pemeriksaan terutama dipengaruhi

oleh spesifisitas metode pemeriksaan dan larutan standar. Agar

pemeriksaan hasilnya tepat, maka harus dipilih metode pemeriksaan

yang memiliki spesifisitas analisis yang tinggi. Pada uji ketepatan ini

dipakai serum kontrol yang telah diketahui nilai rentang kontrolnya

(assayed). Hasil pemeriksaan uji ketepatan ini dilihat apakah terletak

didalam atau diluar nilai rentang kontrol menurut metode pemeriksaan

yang sama. Bila terletak didalam rentang nilai kontrol, maka dianggap

hasil pemeriksaan bahan kontrol masih tepat sehingga dianggap

pemeriksaan terhadap spesimen juga tepat. Bila terletak diluar rentang

nilai kontrol, maka dianggap hasil pemeriksaan bahan kontrol kurang

tepat, sehingga dianggap pemeriksaan terhadap specimen juga kurang

tepat (Riwidikdo, 2007).

2.6.2 Presisi

Presisi menyatakan seberapa dekat nilai hasil dua kali atau lebih

pengulangan pengukuran. Semakin nilai pengulangan pengukuran maka

semakim presisi pengukuran tersebut. Suatu pemeriksaan umumnya

lebih mudah dilihat ketidaktelitian (impresisi) daripada ketelitian

(presisi). Impresisi dapat dinyatakan dengan besarnya SD (Standart

19

Deviasi) atau CV (Koefesiensi Variasi). Makin besar nilai SD dan CV

maka tidak teliti. Faktor-faktor yang mempengaruhui ketelitian, yaitu:

alat, metode pemeriksaan, volume atau kadar bahan yang diperiksa,

waktu pengulangan dan tenaga pemeriksa. Hasil laboratorium

digunakan untuk menentukan diagnosis, pemantauan pengobatan dan

meramalkan prognosis, maka amatlah perlu untuk menjaga mutu hasil

pemeriksaan, dalam arti mempunyai tingkat akurasi dan presisi yang

tepat untuk dipertanggungjawabkan. Dalam melaksanakan uji ketelitian

ini dapat digunakan bahan kontrol assayed dan unassayed (Riwidikdo,

2007).

2.7 Kerangka Teori

Keterangan : Dilakukan penelitian

Tidak dilakukan penelitian

Gambar 2.1 Bagan Kerangka Teori

Gejala Klinis

Malaria

Stadium Dingin

Stadium Demam

Stadium

Berkeringat

Plasmodium

Falciparum

Plasmodium

Vivax

Plasmodium

Ovale

Plasmodium

Malariae

Malaria

Jenis

Plasmodium

Pemeriksaan

Malaria

Mikroskopis

PCR

Hemozoin

ICT/Rapid

test

Mikroskop

fluoresensi

Akurasi dan

Presisi

20

BAB III

METODE PENELITIAN

3.1 Waktu dan Tempat Penelitian

3.1.1 Waktu

Penelitian dilakukan pada bulan Maret - April 2014.

3.1.2 Tempat

Tempat penelitian pemeriksaan malaria yaitu di Laboratorium

Patologi Klinik RSUD Abdul Rivai Berau.

3.2 Jenis Penelitian

Penelitian ini bersifat deskriptif analitik dengan pendekatan cross

sectional. Penelitian yang dilakukan dalam penelitian ini bersifat studi

diagnostik. Maksud penelitian ini adalah untuk melakukan perbandingan

pemeriksaan malaria metode mikroskopis dengan metode ICT, dimana peneliti

pada penelitian ini tidak menambahkan perlakuan pada sampel yang diteliti.

3.3 Populasi dan Sampel Penelitian

3.3.1 Populasi

Populasi dalam penelitian ini adalah pasien yang melakukan

pemeriksaan malaria di Laboratorium Patologi Klinik RSUD Abdul

Rivai Berau.

3.3.2 Sampel

Sampel dalam penelitian ini adalah 15 sampel darah pasien dengan

pemeriksaan duplo, tanpa memperhatikan hasil positif maupun negatif.

21

3.4 Alur Penelitian

Gambar 3.1 Rancangan Penelitian

Gambar 3.1 Bagan Alur Penelitian

3.5 Variabel Penelitian

Variabel yang digunakan pada penelitian ini adalah hasil pemeriksaan

malaria metode mikroskopis dan Immunochromatography Test/ICT.

Observasi awal

Menentukan populasi dan sampel

Pengambilan sampel darah

Perlakuan pemeriksaan

ICT/Rapid test

merk B (Carestart)

Bioline)

ICT/Rapid test

merk A (Abon)

Pemeriksaan

Mikroskopis

Hasil

Analisa data menggunakan

statistik uji Cochran

22

3.6 Definisi Operasional

Tabel 3.1 Pembagian Definisi Operasional

3.7 Hipotesis Penelitian

H0 : Tidak ada perbedaan hasil antara pemeriksaan malaria metode

Mikroskopis dan metode Immunochromatography Test

Ha : Ada perbedaan hasil antara pemeriksaan malaria metode Mikroskopis

dan metode Immunochromatography Test

Variabel Definisi

Operasional

Metode

Ukur

Alat Ukur Hasil Skala

Malaria

Pemeriksaan

Mikroskopik

Pemeriksaan

Rapid

Test/ICT

Penyakit yang

disebabkan oleh

parasit

plasmodium

yang ditularkan

oleh nyamuk

anopheles

Pemeriksaan

diagnostik

malaria dengan

metode

mikroskopis

Pemeriksaan

diagnostik

malaria dengan

metode ICT

Mikroskopis

Immunochro

matography

Test

Mikroskopis

Immunochro

matography

Test

Mikroskop

Rapid Test

Device

Mikroskop

Rapid Test

Device

Positif/

Negatif

Positif/

Negatif

Positif/

Negatif

Nominal

Nominal

Nominal

23

3.8 Teknik Pengambilan Data (alat, bahan, prosedur)

3.8.1 Pengambilan Sampel

Sampel diperoleh dengan cara pengambilan darah dengan prosedur

flebotomi.

Peneliti memberikan pengarahan tentang pengumpulan sampel

tersebut.

Sampel diserahkan kepada peneliti untuk dilakukan pemeriksaan di

Laboratorium Patologi Klinik RSUD Abdul Rivai Berau.

3.8.2 Prosedur Penelitian

3.8.2.1 Metode Mikroskopis

a. Prinsip

Pemeriksaan dengan melakukan pembacaan langsung terhadap

sediaan darah yang terlebih dahulu sudah diwarnai dengan larutan

giemsa. Pemeriksaan bertujuan untuk mengetahui adanya parasit

plasmodium yang terdapat pada sediaan darah.

b. Alat

Alat yang digunakan yaitu, objek glass, mikroskop, cover

glass, tabung reaksi,

c. Bahan

Larutan Giemsa dan Sampel darah

d. Cara Kerja

Dibuat apusan darah tipis sampel pada kaca objek

Difiksasi dengan metanol selama 5 detik

Diwarnai dengan larutan giemsa selama 30 menit.

Dicuci dengan air mengalir, dikeringkan

Dilihat dibawah mikroskop cahaya untuk identifikasi

spesies plasmodium (Gasem, 2004).

e. Interpretasi Hasil

Interpretasi hasil merupakan data kualitatif yang dinyatakan

dengan:

24

Positif : apabila ditemukan parasit plasmodium

Negatif : apabila tidak ditemukan parasit plasmodium

3.8.2.1 Metode Immunochromatography Test

a. Prinsip

Prinsip kerjanya adalah imunokromatografi yang cairannya

akan naik sepanjang kertas nitroselulosa. Pada beberapa titik di

kertas nitroselulosa diletakkan antibodi monoklonal terhadap

beberapa antigen malaria yang spesifik sehingga pada penderita

positif akan terjadi reaksi antigen-antibodi yang tervisualisasi

dalam bentuk garis (Harijanto, 2009).

b. Alat

Alat yang digunakan diantaranya adalah Pipet tetes, Rapid

Test Device

c. Bahan

Bahan yang digunakan diantaranya adalah sampel darah,

reagen Buffer.

d. Cara Kerja

1. Produk Abon

Diletakkan alat rapid test diagnostic pada permukaan

mendatar

Dimasukkan 10 l sampel darah kedalam wadah W1 pada

alat RDT

Dimasukkan 3 tetes reagen Buffer kedalam wadah W2

pada alat RDT

Setelah 5 menit, dimasukkan 1 tetes reagen buffer

kedalam wadah W1

Dibaca hasilnya setelah 15 menit, jangan dibaca setelah

20 menit (Abon, 2011)

2. Produk Carestart

Diletakkan alat rapid test diagnostic pada permukaan

mendatar

25

Positif Positif Vivax Mixed Negatif

Falciparum Infections

Dimasukkan 5 l sampel darah kedalam wadah sampel (S)

Dimasukkan 3 tetes reagen Buffer kedalam wadah buffer

(A)

Dibaca hasilnya setelah 20 menit (Carestart, 2011)

e. Interpretasi hasil

Gambar 3.2 Interpretasi hasil Immunochromatography Test

Keterangan:

- [+] Falciparum : Terlihat 2 Garis, 1 garis kontrol (C)

dan 1 garis T1

- [+] Vivax : Terlihat 2 Garis, 1 garis kontrol (C)

dan 1 garis T2

- [+] Mixed Infections : Terlihat 3 Garis, 1 garis kontrol (C)

dan 2 garis T1 dan T2

- [-] Negatif : Terlihat 1 garis kontrol (C)

- Invalid : Tidak terlihat garis sama sekali

(Moody, 2002)

S

C

T

1

T

2

A

S

C

T

1

T

2

A

S

T

1

T

2

C

A

S

C

T

1

T

2

A

26

3.9 Kerangka Konsep

Gambar 3.3 Kerangka Konsep

3.10 Teknik Analisa Data

Data yang telah didapat dari melakukan pemeriksaan malaria di RSUD.

Abdul Rivai Berau, di analisis untuk menguji adanya perbandingan hasil

pemeriksaan malaria antara metode Mikroskopis dan Metode

Immunochromatography Test.

Analisa data deskriptif yang digunakan dengan menggunakan tabel

Crosstabulation antara hasil pemeriksaan dan metode pemeriksaan yang

menunjukkan persentase dari ketiga metode yang digunakan.

Sedangkan teknik analisa data dari ketiga metode yang digunakan

menggunakan uji statistik Cochran menggunakan program SPSS Statistics 20

for Windows. Uji Cochran digunakan untuk menguji sebuah rancangan

eksperimen dengan rancangan lebih dari dua. Uji Cochran digunakan untuk

uji hipotesa dimana data yang digunakan bersifat kategorik (skala data

nominal/ordinal) berpasangan dengan prinsip (>2) x 2.

Untuk mengetahui perbandingan hasil antara dua dari ketiga metode

pemeriksaan secara lebih rinci, dilakukanlah uji statistik McNemar

menggunakan program SPSS Statistics 20 for Windows. Uji McNemar

digunakan untuk uji hipotesa dimana data yang digunakan bersifat kategorik

(skala data nominal/ordinal) berpasangan dengan prinsip 2 x 2 (Dahlan, 2013).

Pemeriksaan Malaria

Metode

Mikroskopis

Metode Immunochromatography

Test

Lihat Hasil Perbedaan

Kesimpulan

27

BAB IV

HASIL DAN PEMBAHASAN

4.1 Hasil

Data didapat berdasarkan penelitian yang telah dilakukan pada tanggal 12

Maret hingga 12 April 2014 dengan pengambilan sampel di RSUD Abdul

Rivai Berau dan dianalisa di Laboratorium Patologi Klinik RSUD Abdul Rivai

Berau dengan menggunakan sampel darah vena. Sampel penelitian sebanyak

15 sampel darah pasien, dengan pengerjaan duplo. Pengerjaan sampel secara

duplo untuk memastikan validasi hasil antara pengerjaan yang satu dan

lainnya. Hasil penelitian disajikan dalam bentuk tabel sebagai berikut:

Tabel 4.1 Hasil keseluruhan pemeriksaan Malaria menggunakan metode

Mikroskopis dan ICT

No Kode Sampel Mikroskopis ICT A (Produk

Abon)

ICT B (Produk

Carestart)

1 P300314A1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

2 R300314R1 (+) Falciparum (+) Vivax (+) Vivax

3 R010414S1 (+) Falciparum (-) Negatif (+) Falciparum

4 R010414R1 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

5 R010414B1 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

6 P040414K1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

7 R080414M1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

8 R080414D1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

9 R080414P1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

10 R080414S1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

11 R080414R1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

12 R100414I1 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

13 R100414A1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

14 R100414S1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

15 R100414R1 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

28

Tabel 4.2 Hasil keseluruhan pemeriksaan duplo Malaria menggunakan

metode Mikroskopis dan ICT

No Kode Sampel Mikroskopis ICT A (Produk

Abon)

ICT B (Produk

Carestart)

1 P300314A2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

2 R300314R2 (+) Falciparum (+) Vivax (+) Vivax

3 R010414S2 (+) Falciparum (-) Negatif (+) Falciparum

4 R010414R2 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

5 R010414B2 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

6 P040414K2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

7 R080414M2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

8 R080414D2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

9 R080414P2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

10 R080414S2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

11 R080414R2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

12 R100414I2 (+) Falciparum (+) Falciparum (+) Falciparum

13 R100414A2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

14 R100414S2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

15 R100414R2 (-) Negatif (-) Negatif (-) Negatif

Berdasarkan hasil pemeriksaan antara metode mikroskopis dan ICT

dengan pengerjaan duplo, yang dapat dilihat pada tabel 4.1 dan tabel 4.2

menunjukkan bahwa tidak adanya perbedaan antara kedua pengerjaan secara

duplo tersebut.

Tabel 4.3 Hasil kualitatif pemeriksaan Malaria menggunakan metode

Mikroskopis dan ICT

Metode Hasil

Total positif negatif

Mikroskopis 5 10 15

ICT produk abon 4 11 15

ICT produk carestart 5 10 15

Total 14 31 45

29

Berdasarkan tabel 4.3 menunjukan bahwa hasil pemeriksaan Malaria

menggunakan metode Mikroskopis dengan hasil sebanyak 5 sampel positif

dan 15 sampel negatif, dan pada pemeriksaan malaria menggunakan metode

ICT produk Abon didapat hasil sebanyak 4 sampel positif dan 11 sampel

negatif. Sedangkan pada pemeriksaan malaria metode ICT produk Carestart

didapat hasil sebanyak 5 sampel positif dan 10 sampel Negatif. Dari

keseluruhan pemeriksaan terdapat 31 sampel Negatif dan 14 sampel Positif.

Dari tabel 4.1 juga diketahui terdapat beberapa pemeriksaan Malaria yang

mendeteksi parasit Malaria berdasarkan jenis plasmodium. Untuk mengetahui

jenis Plasmodium yang menginfeksi penderita malaria dapat dilihat pada tabel

berikut:

Tabel 4.4 Hasil pemeriksaan Jenis Plasmodium menggunakan metode

Mikroskopis dan ICT

No Hasil Pemeriksaan Metode pemeriksaan

Mikroskopis ICT Abon ICT Carestart

1 P. Falciparum 5 3 4

2 P. Vivax 0 1 1

3 Mixed Infections 0 0 0

4 Negatif 10 11 10

Total 15 15 15

Berdasarkan tabel 4.4 menunjukan bahwa hasil pemeriksaan malaria pada

ketiga metode tersebut mempunyai hasil yang berbeda. Pada metode

Mikroskopis didapatkan hasil yaitu didapat 5 infeksi P. Falciparum dari 5

sampel positif, pada metode ICT dengan produk Abon didapat 3 infeksi p.

Falciparum dan 1 infeksi P. Vivax dari 4 sampel positif, sedangkan pada

metode ICT dengan produk Carestart didapat 4 infeksi P. Falciparum dan 1

infeksi P. Vivax. Untuk lebih jelasnya bisa dilihat dari gambar berikut:

30

Gambar 4.1 Grafik perbandingan hasil jenis plasmodium dari ketiga metode

pemeriksaan malaria

Berdasarkan Gambar 4.1 dapat dilihat jumlah pemeriksaan dari metode

mikroskopis sebanyak 10 sampel pemeriksaan negatif yang ditandai dengan

grafik warna merah dan 5 sampel pemeriksaan positif yang ditandai dengan

grafik warna biru. Jumlah pemeriksaan dari metode ICT produk Abon

sebanyak 11 sampel pemeriksaan negatif yang ditandai dengan grafik warna

merah, 1 sampel pemeriksaan positif P. Vivax yang ditandai dengan grafik

warna hijau dan 3 sampel pemeriksaan positif P. Falciparum yang ditandai

dengan grafik warna biru. Sedangkan Jumlah pemeriksaan dari metode ICT

produk Carestart sebanyak 10 sampel pemeriksaan negatif yang ditandai

dengan grafik warna merah, 1 sampel pemeriksaan positif P. Vivax yang

ditandai dengan grafik warna hijau dan 4 sampel pemeriksaan positif P.

Falciparum yang ditandai dengan grafik warna biru.

Data yang telah didapat selama penelitian dapat dilihat dari tabel berikut:

5 3

4

1 1

10 11

10

Metode Mikroskopis Metode ICT Merk Abon Metode ICT Merk Carestart

P. Falciparum P. Vivax Mixed Infections Negatif

31

Tabel 4.5 Tabel Crosstabs yang memaparkan perbandingan antara metode

mikroskopis dan metode ICT

Metode * Hasil Crosstabulation

Hasil Total

negatif positif

Metode

Mikroskopis

Count 10 5 15

Expected

Count 10.35 4.65 15.0

% of Total 22.2% 11.1% 33.3%

ICT Produk

Abon

Count 11 4 15

Expected

Count 10.35 4.65 15.0

% of Total 24.4% 8.9% 33.3%

ICT Produk

Carestart

Count 10 5 15

Expected

Count 10.35 4.65 15.0

% of Total 22.2% 11.1% 33.3%

Total

Count 31 14 45

Expected

Count 31.0 14.0 45.0

% of Total 68.9% 31.1% 100.0%

Berdasarkan tabel 4.5 dapat dilihat jumlah pemeriksaan dari masing

masing metode yang digunakan sebanyak 15 pemeriksaan. Persentase hasil

dari pemeriksaan metode mikroskopis sebesar 22,2% sampel negatif dan

11,1% sampel positif dari total keseluruhan 45 sampel dari 3 metode

pemeriksaan. Dari pemeriksaan metode ICT produk Abon sebesar 24,4%

sampel negatif dan 8,9% sampel positif dari total keseluruhan 45 sampel dari 3

metode pemeriksaan, sedangkan dari pemeriksaan metode ICT produk

Carestart sebesar 22,2% sampel negatif dan 11,1% sampel positif dari total

keseluruhan 45 sampel dari 3 metode pemeriksaan.

Data yang telah didapat di analisa menggunakan uji statistik Cochran

menggunakan Aplikasi SPSS, dan hasilnya dapat dilihat pada tabel berikut ini:

32

Tabel 4.6 Hasil uji analisa Cochran pada data penelitian

Cochran Test Statistics

N 15

Cochran's Q 2.000a

df 2

Asymp. Sig. .368

a. 2 is treated as a success.

Berdasarkan dari tabel 4.6 diatas dapat dilihat bahwa nilai signifikansi

adalah sebesar 0,368 Apabila taraf signifikansi yang digunakan adalah 95%

maka batas kritis = 0,05. Untuk menguji hipotesis, aturan yang berlaku adalah:

Hipotesis nol (H0) diterima apabila nilai signifikansi Uji Cochran lebih besar

(>) dari batas kritis 0,05. Karena nilai signifikansi 0,368 lebih besar (>) dari

0,05 maka H0 diterima (lihat tabel 4.7 untuk lebih jelasnya). Jadi dapat

disimpulkan bahwa Tidak ada perbedaan hasil antara pemeriksaan malaria

metode Mikroskopis dan metode Immunochromatography Test.

Tabel 4.7 Kesimpulan uji analisa Cochran pada data penelitian

Nilai

Signifikansi

Nilai Batas

Kritis kondisi Kesimpulan

0,368 0,05

Nilai Signifikansi lebih

besar (>) dari Nilai Batas

Kritis

H0 Diterima

Penjelasan diatas membuktikan bahwa antara pemeriksaan metode

mikroskopis dan metode ICT tidak terdapat perbedaan yang signifikan.

Tabel 4.7 hanya menjelaskan tentang uji hipotesis secara keseluruhan antara

metode mikroskopis dan metode Immunochromatography Test tanpa

membandingkan masing masing alat RDT. Lalu, bagaimana cara untuk

melihat perbandingan dari ketiga metode pemeriksaan? diperlukan analisis

post hoc untuk mengetahui masing masing ketiga alat pemeriksaan tersebut,

mana yang memiliki perbedaan yang lebih signifikan. Untuk itu dilakukan uji

33

McNemar untuk menguji perbedaan signifikan dari ketiga alat pemeriksaan

tersebut. Hasil uji McNemar dapat dilihat dari tabel berikut:

Tabel 4.8 Hasil uji analisa McNemar antara metode Mikroskopis dan ICT

produk Abon

Uji McNemar

ICT produk abon

Total p positif negatif

Mikroskop positif 4 1 5

1,000 negatif 0 10 10

Total 4 11 15

Tabel 4.9 Hasil uji analisa McNemar antara metode Mikroskopis dan ICT

produk Carestart

Uji McNemar

ICT produk

Carestart Total p

positif negatif

Mikroskop positif 5 0 5

1,000 negatif 0 10 10

Total 5 10 15

Tabel 4.10 Hasil uji analisa McNemar antara metode ICT produk Abon dan

ICT produk Carestart

Uji McNemar

ICT produk

Carestart Total p

positif negatif

ICT produk Abon positif 4 0 4

1,000 negatif 1 10 11

Total 5 10 15

Tabel 4.8, 4.9, dan 4.10 menunjukkan bahwa antara ketiga metode

memiliki signifikansi yang sama sebesar 1,000. Dengan kata lain tidak ada

perbedaan hasil antara ketiga metode tersebut, mengingat nilai signifikansi

1,000 masih lebih besar dari nilai batas kritis 0,05..

Dari ketiga tabel diatas juga dapat diketahui bahwa antara ketiga metode

Mikroskopis, metode ICT produk Abon, dan metode ICT produk Carestart

memiliki nilai uji signifikansi sebesar 1,000. Dengan kata lain menurut uji

34

statistik McNemar ketiga metode tersebut memiliki tingkat perbedaan hasil

yang nihil (tingkat kesamaan hasil yang absolut) walaupun terdapat beberapa

perbedaan hasil antara Metode ICT produk Abon dengan metode lainnya.

Untuk mengetahui performa alat RDT tersebut, maka dilakukan

perhitungan untuk mendapatkan nilai sensitivitas, spesifisitas, nilai prediksi

positif, dan nilai prediksi positif.

Tabel 4.11 Distribusi hasil pemeriksaan antara metode Mikroskopis dan

metode ICT produk Abon

abon Mikroskopis (+) Mikroskopis (-) total

ICT (+) 4 0 4

ICT (-) 1 10 11

total 5 10 15

Berdasarkan tabel 4.10 diatas, dilakukan perhitungan ICT produk Abon

terhadap nilai sensitivitas, spesifisitas, nilai prediksi positif, dan nilai prediksi

negatif. Sehingga diperoleh hasil: Nilai sensitivitas sebesar 80%, nilai

spesifisitas sebesar 100%, nilai prediksi positif sebesar 100%, dan nilai

prediksi negatif sebesar 90,9%.

Tabel 4.12 Distribusi hasil pemeriksaan antara metode Mikroskopis dan

metode ICT produk Carestart

carestart Mikroskopis (+) Mikroskopis (-) total

ICT (+) 5 0 5

ICT (-) 0 10 10

total 5 10 15

Berdasarkan tabel 4.11 diatas, dilakukan perhitungan pada ICT produk

Carestart terhadap nilai sensitivitas, spesifisitas, nilai prediksi positif, dan nilai

prediksi positif. Sehingga diperoleh hasil: Nilai sensitivitas sebesar 100%,

nilai spesifisitas sebesar 100%, nilai prediksi positif sebesar 100%, dan nilai

prediksi negatif sebesar 100%.

4.2 Pembahasan

Penelitian kali ini membandingkan hasil antara metode mikroskopis dan

metode Immunochromatography Test dengan 2 produk RDT. Adapun

penggunaan sampel penelitian kali ini yaitu sebanyak 15 sampel darah pasien

dengan pengerjaan sampel duplo, tanpa memperhatikan hasil positif dan

35

negatif, dengan total seluruh pemeriksaan sebanyak 45 kali pemeriksaan dari

ketiga metode yang dilakukan. Alasan dilakukannya pemeriksaan dengan

pengerjaan duplo ialah terbatasnya waktu penelitian yang ada menyebabkan

kurang tersedianya sampel pemeriksaan malaria yang bisa digunakan untuk

dilakukan pemeriksaan, sehingga menuntut peneliti untuk melakukan

pengerjaan sampel secara duplo. Selain itu pengerjaan sampel secara duplo

juga bermaksud untuk melakukan pengecekan dan validasi hasil antara

pemeriksaan dengan pengerjaan duplo.

Berdasarkan hasil pemeriksaan malaria menggunakan metode

Mikroskopis dan Immunochromatography Test dapat dilihat pada tabel 4.1

yang menunjukkan bahwa hasil pemeriksaan kedua metode tersebut tidak jauh

berbeda dari segi deteksi keberadaan parasit plasmodium. Perbedaan kecil

terletak pada deteksi jenis plasmodium yang berbeda antara metode

mikroskopis dan metode ICT. Pada pemeriksaan menggunakan metode

mikroskopis tidak ditemukan satupun sampel positif P. Vivax, sedangkan pada

pemeriksaan menggunakan metode ICT produk Abon dan Carestart, masing

masing mendeteksi P. Vivax sebanyak 1 sampel.

Pada tabel 4.1 dapat kita lihat pada sampel pemeriksaan nomor 2,

memiliki perbedaan hasil antara metode mikroskopis dan metode

Immunochromatography test. Pada metode ICT baik produk Abon maupun

produk Carestrart, mendeteksi hasil [+] positif P. Vivax berbeda dengan

pemeriksaan metode mikroskopis sebagai gold standard pemeriksaan malaria,

hasil yang didapat menggunakan metode mikroskopis justru menunjukkan

hasil [+] positif P. Falciparum. Ada kemungkinan terdapat hasil mixed

infections, dari hasil pemeriksaan kedua metode tersebut. Hal ini

kemungkinan disebabkan karena rusaknya beberapa alat RDT atau ada

beberapa komponen RDT yang tidak bisa digunakan. Hal ini dapat dimaklumi

karena penyimpanan alat RDT yang kurang tepat dan proses transpor yang

kurang baik selama penelitian berlangsung.

Analisa data menggunakan uji cochran yang dapat dilihat pada tabel 4.6

memperkuat hipotesis peneliti yang menduga tidak adanya perbedaan antara

36

metode mikroskopis dan metode Immunochromatography Test. walaupun

terdapat beberapa pemeriksaan yang tidak sesuai antara metode mikroskopis

dan ICT, tapi hal tersebut masih dalam batas taraf yang wajar dan kejanggalan

tersebut juga disebabkan oleh terdapat kurang-baiknya performa alat RDT

dalam mendeteksi parasit plasmodium yang spesifik.

Hasil uji hipotesis yang telah dilakukan diatas sejalan dengan penelitian

yang dilakukan oleh Arum dkk pada tahun 2005 dan Aulia dkk pada tahun

2012, dimana tidak terdapat perbedaan efektifitas pemeriksaan RDT dan

mikroskopik pada penderita malaria klinis secara bermakna. Pada penelitian

Arum dkk pada tahun 2005, yang dilakukan selama bulan Januari sampai Juli

2005, metode imunokromatografi dibandingkan dengan pemeriksaan

mikroskopis dan diperoleh nilai sensitivitas sebesar 100%, nilai spesifisitas

sebesar 96,99%. Nilai prediksi positif sebesar 83,2% dan nilai prediksi negatif

sebesar 100%, sedangkan Pada penelitian Aulia dkk pada tahun 2012, yang

dilakukan selama bulan Januari sampai Juni 2012 didapatkan nilai sensitivitas

sebesar 98%, nilai spesifisitas sebesar 100%, nilai prediksi positif sebesar

100%, sebesar nilai prediksi negatif 98%. Dari kedua penelitian diatas dapat

disimpulkan bahwa uji diagnostik dengan metode ICT reliabel dan dapat

dijadikan sebagai alat diagnostik alternatif pada penderita malaria.

Pada tabel 4.8 hingga 4.10, Jika kita telaah lebih lanjut beberapa

perbedaan tersebut kemungkinan terjadi karena beberapa alat RDT tersebut

memiliki beberapa ketidaksesuaian hasil antara metode ICT terhadap metode

Mikroskopis sebagai gold standard pemeriksaan malaria. Hal ini menunjukkan

performa alat RDT yang kurang baik, sehingga mempengaruhi perbedaan

hasil antara kedua metode tersebut.

Ditemukannya beberapa hasil pemeriksaan yang berbeda antara produk

RDT yang digunakan kemungkinan disebabkan oleh kandungan reagen yang

berbeda antara kedua produk tersebut. Berdasarkan data yang didapat, ICT

produk Abon mengandung reagen anti-HRP2 dan anti-aldolase. Sedangkan

ICT produk carestart mengandung reagen anti-HRP2 dan anti-pLDH.

Perbedaan kedua reagen tersebut memungkinkan terjadinya perbedaan hasil

37

antara kedua produk ICT tersebut. Selain itu, kondisi alat RDT yang

digunakan juga berpengaruh terhadap perbedaan hasil. Kondisi RDT yang

buruk bisa disebabkan oleh beberapa faktor, misalnya penyimpanan alat RDT

yang kurang tepat. Penyimpanan RDT yang baik ialah dengan menyimpannya

pada lemari penyimpanan dengan suhu antara 2 30 C dalam kondisi kering.

Selain itu, proses analitik yang kurang cermat pada tahap pra-analitik, analitik,

dan pasca-analitik.

Menurut Utami, dkk ada beberapa antigen malaria yang dapat digunakan

sebagai sasaran (target) pemeriksaan RDT, yaitu: Histidine Rich Protein 2

(HRP-2), Parasite Lactate Dehydrogenase (p-LDH) , dan Plasmodium

aldolase. HRP-2 adalah protein larut air yang dihasilkan pada tahap aseksual

dan gametosit Plasmodium falciparum dan diekspresikan di membran sel

eritrosit. HRP-2 banyak dihasilkan oleh Plasmodium falciparum, sehingga

merupakan sasaran (target) antigen utama dalam membuat uji diagnostik cepat

malaria. pLDH adalah enzim glikolitik di Plasmodium sp, yang dihasilkan

pada tahap seksual dan aseksual parasit.

Prinsip RDT adalah menangkap target antigen yang diproduksi oleh

Plasmodium falciparum (HRP-2) dan Plasmodium vivax (pLDH) dalam darah

penderita, dengan antibodi klon tunggal spesifik (anti-HRP-2, anti-pLDH dan

kontrol), yang ditempelkan pada kertas nitrocellulose. Apabila darah penderita

mengandung HRP-2 dan atau mengandung pLDH, antigen tersebut akan

ditangkap oleh anti-HRP-2 atau anti-pLDH pada kertas nitrocellulose,

sehingga pada hasil positif akan menimbulkan warna merah pada kertas

nitrocellulose.

Berdasarkan gambar 4.1, dapat dilihat jenis plasmodium yang sering

menginfeksi manusia adalah dari jenis Plasmodium Falciparum. Hal ini

berhubungan erat dengan kawasan daerah Kabupaten Berau yang dominan

menyebabkan penyakit malaria berasal dari spesies P. Falciparum. Hal ini

diperkuat dengan fakta dalam dua bulan terakhir, hampir semua pemeriksaan

penyakit malaria di RSUD Abdul Rivai Berau yang ditemukan hanya spesies

P. Falciparum.

38

Pada laporan WHO tentang New Perspective: Malaria Diagnosis 1999,

tes diagnosa cepat (Rapid Diagnostic Test - RDT) dalam hal ini termasuk

dengan metode ICT harus menyediakan hasil setidaknya seakurat hasil hasil

yang diberikan oleh pemeriksaan mikroskopis yang dilakukan oleh seorang

teknisi menengah (rata rata) dalam kondisi-kondisi lapangan yang umum.

Maka dari itu RDT diharuskan mencapai karakteristik teknis yang spesifik

sebagai berikut:

Sensitivitas adalah ukuran keakuratan tes, yaitu seberapa besar

kemungkinan untuk mendeteksi positif orang-orang yang memiliki

penyakit atau kondisi. ICT produk abon memiliki tingkat sensitivitas

sebesar 80% sedangkan ICT produk Carestart memiliki tingkat sensitivitas

100%, artinya performa ICT produk Carestart lebih baik.

Spesifisitas adalah ukuran mengenai akurasi tes, yaitu seberapa besar

kemungkinan alat tes untuk mendeteksi negatif orang orang yang tidak

memiliki penyakit atau kondisi. Baik produk Carestart maupun produk

Abon memiliki nilai spesifisitas sebesar 100%.

Nilai prediksi positif adalah kemungkinan bahwa orang dengan hasil tes

positif akan benar benar memiliki kondisi yang diuji. Semakin tinggi nilai

prediksi positif, semakin rendah tingkat deteksi positif palsu. Baik produk

Carestart maupun produk Abon memiliki nilai prediksi positif sebesar

100%.

Nilai prediksi negatif adalah kemungkinan bahwa orang dengan hasil tes

negatif akan benar benar tidak memiliki kondisi yang diuji. Semakin tinggi

nilai prediksi negatif, semakin rendah tingkat deteksi negatif palsu. ICT

produk Abon memiliki nilai prediksi negatif sebesar 90,9% sedangkan ICT

produk Carestart memiliki nilai prediksi negatif sebesar 100%, artinya

performa ICT produk Carestart lebih baik.

Dari uraian diatas dapat disimpulkan bahwa antara kedua alat RDT

tersebut berbeda secara kualitas. Salah satu produk RDT yang digunakan

memiliki nilai sensitivitas dan spesifisitas yang lebih tinggi daripada produk

yang lainnya. Hal ini sejalan dengan apa yang dialami oleh peneliti pada saat

39

penelitian berlangsung, produk RDT yang memiliki tingkat sensitivitas dan

spesifisitas yang lebih rendah cenderung susah untuk dilakukan pembacaan

karena tingkat warna pada garis yang dihasilkan tidak terlihat dengan jelas

atau samar, terlebih pada sampel pemeriksaan yang memiliki tingkat

kepadatan parasit yang rendah. Hal ini berbanding terbalik dengan produk

RDT yang memiliki tingkat sensitivitas dan spesifisitas yang lebih tinggi

daripada produk lainnya, alat RDT tersebut cenderung mudah untuk dibaca,

karena garis yang terlihat lebih jelas. Namun nilai nilai tersebut tidak bersifat

mutlak karena sifatnya tergantung dengan jumlah sampel dan memiliki

keterbatasan waktu dan biaya dari penelitian ini.

Hasil positif palsu dapat terjadi pada penderita dua minggu pasca

pengobatan, yaitu ketika dalam peredaran darahnya masih megandung

antigen, sehingga masih memberikan hasil positif pada hasil RDT meskipun

secara mikroskopis sudah negatif, sehingga RDT tidak dianjurkan untuk

dipakai dalam evaluasi uji efikasi obat. Hasil negatif palsu dapat terjadi

apabila densitas dari parasitemia rendah, hal ini dapat memberikan dampak

penularan yang berlanjut. Akan tetapi kedua kesalahan tersebut masih dalam

batas-batas yag diterima.

Pemantapan mutu pada pemeriksaan malaria meliputi segala aspek

pemeriksaan mulai dari pengumpulan sampel, penyimpanan, penanganan,

penggunaan dan perawatan alat, kualitas reagensia serta persiapannya hingga

keterampilan dan pengetahuan analisis laboratorium klinik. Dalam

pemeriksaan malaria perlu diperhatikan dari tahap pra analitik, analitik, dan

pasca-analitik. Pada tahap pra analitik yang harus diperhatikan dalam proses

pengumpulan bahan sampel adalah menggunakan wadah atau botol yang

berisi antikoagulan. Antikoagulan yang dipakai tergantung dari kebutuhan

masing masing. Jika sampel darah tidak segera diperiksa, maka sampel

tersebut harus disimpan pada kulkas pada suhu 2 8 C. Selanjutnya bila

sampel yang disimpan akan diperiksa, biarkan pada suhu kamar terlebih

dahulu. Alat RDT yang akan digunakan harus disimpan dengan baik agar

40

tidak rusak. Cara penyimpanan alat RDT yang baik yaitu hindari alat RDT

dari keadaan basah dan simpan pada suhu 2 30 C.

Pada tahap analitik, hal yang perlu diperhatikan adalah cara pemeriksaan

dengan menggunakan Alat RDT. Penggunaannya harus sesuai dengan yang

dianjurkan oleh perusahaan pembuat alat tersebut. Terlalu cepat melakukan

pembacaan akan menghasilkan negatif palsu, apabila terlalu lama menunda

pembacaan akan menghasilkan positif palsu.

Pada tahap pasca-analitik, dalam penelitian ini pelaporan dan pencatatan

hasil disesuaikan