Hemograma: Novos parâmetros e recomendações para a ...cfac2017.com.br/.../2017/06/palestra-v-cfac-Novos-Param-Rec-Int.pdf · 03/05/2017 1 Hemograma: Novos parâmetros e recomendações

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Hemograma: Novos parâmetros e

recomendações para a hematoscopia

Marcos [email protected]

Vantagens

• Coeficiente de variação entre 1 e 2%.

• Custo Por Exame.

• Tempo.

• Maior acurácia.

• Maior reprodutibilidade.

Sistemas automatizados. φFl

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Manual Automatizado

Hemácias ± 11% ± 1,0%

Leucócitos ± 16% ± 1,5%

Plaquetas ± 22% ± 2,0%

Reticulócitos ± 34% ± 5,0%

Hemoglobina 1 a 2% < 1,0%

VGM 9,5% < 1,0%

HGM 10,0% 0,6 a 1,2%

CHGM ---- 1,0 a 1,5%


eury

Espectrofotometria

Hemoglobina

Ótica

Leucócitos & diferencial

Plaquetas

Hemácias

Impedância

Hemácias & VGM

Plaquetas & VPM

Leucócitos

Fluorescência

Viabilidade de leucócitos

Eritroblastos

Reticulócitos


eury

Hemácias

Hemoglobina

VGM

Hematócrito

HGM

GHGM

Leucócitos

Plaquetas

Diferencial

IRF (H, M, L)

Reticulócitos / NRBCPDW

RDW


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Variações no número de hemácias

Microcitose ↓ RBC Histograma de hemácias.esquizócitos

Policitemia ↓ RBC Contagem coincidente

Aglutininas frias ↓ RBC Falsa macrocitose.

Leucocitose ↑ RBC Contagem coincidente.


eury

Variações no número de leucócitos e plaquetas.

Leucemias ↓ WBC Fragilidade dos leucócitosInfecções virais

Aglutininas ↑ WBCPlaquetárias Agregados plaquetários.

↓ PLAQ

Quimioterapia ↑ PLAQ Fragmentos celulares.


eury

Parâmetro Linearidade Limites Aceitáveis

WBC (I) 0 a 99,9 K/ml ± 3,0%(O) 0 a 250 K/ml ± 4,0%

RBC 0 a 8 M/ ml ± 2,5%

Hemoglobina 0 a 24 g/dl ± 2,0%

VGM 50 a 200 fl. ± 3,0%

Plaquetas 0 a 2000 K/ml ± 7,0%


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Série vermelha

• Hemácias (Hm)

• Hemoglobina (Hb)

• Hematócrito (Ht)

• Volume Globular Médio (VGM)

• Hemoglobina Globular Média (HGM)

• Concentração de Hemoglobina Globular Média (CHGM)

• Red Cell Distribution Width (RDW) RDW-CV / RDW-SD

• Reticulócitos (Ret) % / #

• Fração de Reticulócitos Imaturos (IRF)

• Hemoglobina Globular Média dos Reticulócitos (HGM-Ret)

• Fração de Hemácias Hipocrômicas (Hipo%)

Parâmetros automatizados. φFl

eury

Parâmetros automatizados

Parâmetro

VGM (fL)

HGM (pg)

CHGM (%)

RDW (%)

Aplicações

Classificação Morfológica

Determinação da hipocromia - (A. Ferropriva)

Detecção de esferócitos – Anemias hemolíticas

Anormalidade morfológica – úWl quando (↑)

Int J Lab Hematol. 2016 May; 38 Suppl 1:123-32

• Volume Globular Médio

VGM (fL) = x 10

• Hemoglobina Globular Média:

HGM (pg) = x 10

• Concentração de Hemoglobina Globular Média:

CHGM (g/dL) = x 100

Ht (%) RBC (x 106µL)

Hb (g/dL) RBC (x 106µL)

Hb (g/dL) Ht (%)

Índices hematimétricos. φFl

eury

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π r2 x h

3,14 x 3,752 x 2 = 88,3 fL

Aumento de 10% no diâmetro

π r2 x h

3,14 x 4,1252 x 2 = 117,6 fL

Failace R, 2009

• O VGM determinado pelo equipamento é muito mais preciso que o avaliado

visualmente.


eury

RDW – Indica a homogeneidade da população eritrocitária.

RDW-CV – SD na posição 60,65%.

Valor de referência -12 a 15%

RDW-SD – SD na posição 20 %.

Valor de referência - 37 fl


eury

VGMBaixo

VGMNormal

VGMAlto

Histograma de hemácias.

0

10

20

30

40

50

60

70

80

φFl

eury

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Abertura

O eritrócito deve atingir o máximo de deformação.

Disco bicôncavo

Índices hematimétricos. É muito importante a maneira como a hemácia atravessa a abertura de

contagem.

A velocidade do fluxo faz com que as hemácias normais se deformem ao

atingirem a abertura de contagem.

φFl

eury

A capacidade de deformação das hemácias influencia na forma que o

analisador mede o tamanho da célula.

Quanto maior a concentração de hemoglobina menor a deformação

sofrida.

Célula normal – Volume =1x

Esferócitos – Volume =1,5 x

Se atravessa em ângulo reto - Volume = 2x


eury

Hemácias normocrômicas se deformam adequadamente ⇒ Ht exato ⇒ CHGM exato.

CHGM= Hb (g/dL) Ht (%)

Esferócitos (hipercrômicos) não se deformam ⇒ Ht superestimado ⇒ CHGM subestimado.

Hemácias hipocrômicas se deformam em demasia ⇒ VGM subestimado ⇒ Ht subestimado ⇒ CHGM superestimado.

VGM= Ht (%) Hm (x106/ml)


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Os diluentes mais modernos não interferem na membrana eritrocitária e permitem uma pressão hidrodinâmica adequada durante o tempo de contagem.

Hemácias hipocrômicas ou esferócitos se deformam adequadamente ⇒Ht exato ⇒ CHGM exato.


eury

Esferotização – Cell-Dyn Ruby /3200 MCV Field Guideline v 1.0

Esferotização

• Processo isovolumétrico• Elimina os erros de deformação e de orientação


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Histograma de plaquetas. A construção é similar ao histograma de hemácias (RBC).

O discriminador móvel é usado para excluir:

Hemácias microcíticas.

Fragmentos eritrocitários.

Ruído elétrico

φFl

eury

O software busca pelo ponto mais baixo entre as curvas para posicionar o discriminador

HmPlaquetas HmPlaquetas

Tamanho celularTamanho celular

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Histograma de plaquetas. φFl

eury

Hm

Plaquetas

Tamanho celular

Polimetina fluorescente – ligação ao DNA e RNA de organelas citoplasmáticas

• Contagem de reticulócitos• Plaquetas com RNA• Eritroblastos

Análise do DNA/RNA φFl

eury

Plaquetas imaturas – plaquetas reticuladas

% de plaquetas imaturas

Determina a quantidade de plaquetas recentemente lançadas na circulação.

Indica a trombocitopoiese.

Plaq ↓ + IPF ↓= ↓ Produção

Plaq ↓ + IPF ↑ = ↑ Destruição

Plaquetas óticas / IPF. φFl

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Contagem e avaliação de reticulócitos.

Fração de reticulócitos Imaturos IRF % 1,6 – 10,5

Reticulócitos de baixa fluorescência LFR % 89,9 – 98,4Reticulócitos de média fluorescência MFR % 1,6 – 9,5Reticulócitos de alta fluorescência HFR % 0 – 1,7

φFl

eury

Reticulócitos baixos + Baixo IRF Sem produçãoTransfusão

Reticulócitos baixos + Alto IRF ProduçãoSem Transfusão

A determinação da HGM-Ret possibilita a identificação da DF em estágios iniciais quando outros métodos ainda não são informativos

HGM dos Reticulócitos & IRF. φFl

eury

HGM-Ret

Aplicações clínicas

• Quantidade real de Fe disponível para a síntese de hemoglobina

• Detecção precoce da deficiência de ferro quando outros marcadores

bioquímicos podem sofrer interferências de infecções , inflamações ou

gravidez

• Monitora o tratamento com

eritropoietina.

φFl

eury

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Parâmetros Automatizados

Parâmetro

% Hipo

% Hiper

% Micro

IRF

HGM-Ret (pg)

VGM-Ret (fL)

Aplicações

Avalia a disponibilidade de Fe funcional - Status do Fe / 3 meses

Diagnóstico de esferocitose – hereditária / imunológica

Diagnóstico diferencial das A. Microcíticas e Hipocrômicas

Classificação das Anemias e monitoração do tratamento

Diagnóstico da eritropoiese Fe-deficiente – monitoração das A. carenciais. (VR: 28 -35pg)

Diagnóstico da eritropoiese Fe-deficiente – monitoração das A. carenciais.

Int J Lab Hematol. 2016 May; 38 Suppl 1:123-32

φFl

eury

Contagem de eritroblastos Correção da leucometriaMenor número de revisões manuais

Reticulócitos Monitoração de TMO, quimioterapia e anemias.

Percentual de células hipocrômicas Deficiência de ferroDisponibilidade de ferro para eritropoese. (s TfR)

Análise ótica da hemoglobina Reduz a inclusão de micrócitos na contagem plaquetária.

Poiquilocitose Alarmes para esquizócitos, e microcitose intensa (URI)

Sistemas automatizados

Intl Jnl Lab Hem.2009; 31: 277-297

φFl

eury

Contagem diferencial. • Elimina a interferência de hemácias por meio da hemólise.

• As células são tratadas para que o citoplasma se retraia ao redor do núcleo.

Leucócito Tratamento Célula p/contar

φFl

eury

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• Os discriminadores são posicionados entre os picos e os vales separando as

células por tamanho.

LD T1 T2 UD

Células mistas

Células grandes

Células pequenas

Contagem diferencial. φFl

eury

Linfócitos

Monócitos Neutrófilos

Tamanho celular

• Impedância elétrica

Granulócitos - grandes células

Linfócitos - pequenas células

Monócitos, eosinófilos e basófilos – células de médio tamanho.

• Funciona bem apontando as amostras que necessitam de revisão manual.

• Na ausência de alarmes (flags) a contagem é liberada e os percentuais de

eosinófilos e basófilos considerados normais.

Diferencial em três partes

Lab Hematol.2001; 7: 89-100

φFl

eury

Regras para a revisão de lâminas hematológicas (ISLH, 2001)

VR Regra

Leucometria (x 109/l) 4,0 – 10,0 < 3,5 ou > 12,0

Hemoglobina (g/dl) 12,0 – 18,0 < 10,0 ou > 18,0

VGM (fl) 80 – 100 < 80 ou > 102

CHGM (g/l) 31 -36 < 31 ou > 36

Plaquetas (x 109/l) 140 – 440 < 100 ou > 500

Linfócitos (%) 16 – 48 < 16 ou > 48

População mista (%) 1 – 10 < 1 ou > 15

Granulócitos (%) 35 – 75 < 45 ou > 78

Falsos negativos – 1,1 a 3,8%Redução do número de lâminas contadas – 30 a 45%


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• Separa os leucócitos em 5 grupos: linfócitos, neutrófilos, monócitos, eosinófilos e basófilos.

• Mais eficiência na separação das amostras que necessitam de revisão manual.

• Redução da quantidade de flags em relação aos sistemas de 3 partes.

• Inclusão de granulócitos imaturos, eritroblastos, linfócitos variantes e, em alguns equipamentos, células blásticas.


eury

• VCS – volume, condutividade e dispersão da luz. (8.000 cel / amostra)

• Medida da impedância – volume celular

• Condutividade (radiofrequência) – estrutura interna , relação N/C, densidade nuclear e granularidade.

• Dispersão da luz – estrutura celular, forma e reflexibilidade.

Diferencial em 5 partes. φFl

eury

Blastos,Pró mielócitos

MielócitosMetamielócitos

Neutrófilos imaturos

Eosi

nó

filo

s Im

atu

rosLinfócitos

Reativos

Restos celulares, NRBC

Absorbância

Vo

lum

e

Diferencial em 5 partes. φFl

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Ângulos de medição

0° indica o tamanho celular.

10° estrutura e complexidade celular.

90° polarizada lobularidade celular.

90° despolarizada diferencia eosinófilos baseado na capacidade

dos grânulos em despolarizar a luz .


eury

Classificação e diferenciação.

Célula Tamanho Complexidade Lobularidade Granularidade Classificação

0o 10o 90o 90o

despolarizada 1ª 2ª 3ª 4ª

1165 162 116 32 Poli Neut - -

260 64 15 6 Mono - - Linfo

3140 79 21 99 Mono - - Mono

4148 182 104 118 Poli Eos - -

590 110 28 8 Mono - Baso -

φFl

eury

Contagem diferencial.

Anticorpos monoclonais Imunofenotipagem de células malignas

Conteúdo de DNA

Contagem de plaquetas (CD61)

Populações linfocitárias CD4 CD8

Fluorescência Maturidade de reticulócitos (IRF)

Plaquetas reticuladas (IPF)

Laser Hemácias fragmentadas

Contagem de plaquetas (RBC/PLT)

φFl

eury

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Regras para a revisão de lâminas hematológicas

Diferencial em 5 partes ou estendida. Consenso Internacional em Hematologia. (2009) - 41 regras

1. Linearidade do equipamento

2. Valores de referência segundo a idade

3. Tempo de coleta

4. Status da amostra (1ª vez / internado)

5. Indicação clínica

Falsos negativos – 2,9%Redução do número de lâminas contadas – 30%


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Validação do critério de exclusão

1. Durante 30 dias (1000 amostras) examinar todas as lâminas comparando-as com os resultados automatizados.

2. Dividir os resultados em 4 grupos:

Positivo - flag (+) e hematoscopia positiva

Falso positivo - flag (+) e hematoscopia negativa

Negativo - flag (-) e hematoscopia negativa

Falso negativo - flag (-) e hematoscopia positiva

3. Estabelecer os percentuais de cada grupo em relação ao total de amostras examinadas.


eury

Análise dos falsos negativos

Granulócitos imaturos 52%

Blastos 1,3%

Linfócitos atípicos 3,1%

Eritroblastos 6,6%

Morfologia eritrocitária 18,5%

Morfologia plaquetária 14,5%

Morfologia leucocitária 4,0%

Lab Hematol.2005; 11: 83-90


eury

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Alarme

Leucometria

Células imaturas

Hemácias

Número de plaquetas

Pedido médico

Morfologia de plaquetas

Falha do equipamento

Concentração de hemoglobina

Outras

Hematoscopia positiva

% de revisões

36,7

25,5

13,0

5,9

3,7

3,5

2,5

1,9

7,3

35,7

Arch Pathol Lab Med. 2006; 130: 596-601


eury

Lab Hematol.2001; 7: 89-100

Diferencial automatizada x Revisão manual

Tipo celular

Basófilos

Eosinófilos

Monócitos

Linfócitos

Neutrófilos

Número

1

4

9

45

60

100

0 - 5,4

1,1 – 9,9

4,2 – 16,4

35 – 55,3

49,7 – 69,7

500

0,3 - 2,3

2,5 – 6,1

6,6 – 11,9

40,6 – 49,5

55,6 – 64,3

1000

0,5 – 1,8

2,9 – 5,4

7,3 – 10,9

41,9 – 48,1

56,9 – 63,1

10000

0,8 – 1,3

3,6 – 4,5

8,4 – 9,6

44,0 – 46,0

59,0 – 61,0


eury

• Citometria de fluxo

Células grandes imaturas (blastos e granulócitos imaturos)

Linfócitos atípicos (incluindo blastos pequenos).

Diferencial em 7 partes φFl

eury

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Granulócitos imaturos


eury

Granulócitos imaturos / diferenciação mielóide

• Os leucócitos maduros lisados –cluster azul

• O efeito do agente lisante é diferente nas células mielóides imaturas que não são completamente lisadas.


eury

• Mais sensíveis / específicos para diagnóstico de infecção que a leucometria.

• A contagem de IG pode identificar infecção aguda ou resposta inflamatória em estágio inicial.

• Valores de IG > 3% em conjunto com outros testes podem compor um algoritmo para indicar infecção.

• IGs > 3% indicam hemoculturas positivas com 92% de especificidade.

Granulócitos imaturos (IG) φFl

eury

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Amostra normal φFl

eury

Recomendações do ICSH para a Padronização da Nomenclatura e da Graduação das Alterações Morfológicas no Sangue Periférico. Int J Lab Hematol. 2015 Jun;37(3):287-303.

Marcos [email protected]

φFl

eury

Recomendações do ICSH • O objetivo do Grupo de Trabalho foi o de proporcionar um conjunto de

recomendações para o relato e quantificação de alterações em hemácias, leucócitos e plaquetas.

• É responsabilidade do Laboratório relatar as características morfológicas que contribuam para o diagnóstico diferencial.

• As alterações morfológicas devem ser informadas quando presentes em quantidade moderada ou intensa. (Exceção – esquistócitos).

• Os valores do VGM devem ser considerados para a determinação das alterações de tamanho (Micro, macro e normocitose).

• Os valores da HGM devem ser utilizados para a avaliação da hipocromia ou da presença de células hipercrômicas

• Os laboratórios devem realizar um exame mais detalhado dos casos duvidosos.

φFl

eury

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Recomendações do ICSH As anormalidades morfológicas podem ser expressas de várias formas:

• Descrição simples

Presença ou ausência

• Determinação semi-quantitativa

Discreta (+)

Moderada (++)

Intensa (+++)

• Determinação quantitativa

Normal (< 5%)

Discreta (5 – 25%)

Moderada (25 – 50%)

Intensa (>50%)

φFl

eury

Quantificação

NomenclaturaDiscreta (+)

(%)

Moderada (++)

(%)

Intensa (+++)

(%)

HEMÁCIAS

Anisocitose NA 11 – 20 >20

Macrócitos NA 11 - 20 >20

Micrócitos NA 11 - 20 >20

Células hipocrômicas NA 11 - 20 >20

Policromasia NA 5 - 20 >20

Acantócitos NA 5 - 20 >20

Eliptócitos NA 5 - 20 >20

Ovalócitos NA 5 - 20 >20

Esquistócitos < 1 1 - 2 >2

Hemácias em foice NA 1 - 2 >2

Esferócitos NA 5 - 20 >20

Estomatócitos NA 5 - 20 >20

Hemácias em alvo NA 5 - 20 >20

Hemácias em lágrima NA 5 - 20 >20

Recomendações do ICSH φFl

eury

Anormalidades no tamanho das hemácias

ANISOCITOSE – é definida como um aumento na variabilidade do tamanho das hemácias.

Não é específica e pode ser refletida no aumento do RDW nos contadores automatizados.

A recomendação é a de utilizar o valor RDW para estabelecer o grau de variação de

tamanho das hemácias.

A anisocitose pode ser quantificada mesmo quando o RDW não está disponível.

Recomendações do ICSH – SV φFl

eury

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DIMORFISMO – presença de duas populações distintas de hemácias podendo ser

claramente vista na análise do histograma de hemácias com correspondente

aumento do RDW. O termo é comumente utilizado quando existe uma população

microcítica e hipocrômica e outra normocrômicas e normocítica. Entretanto, o termo

pode também ser usado para descrever a coexistência de populações macrocítica e

normocítica.


eury


MACRÓCITOS – hemácias maiores com diâmetro superior a 8,5 µm (VGM > 100 fL).

HGM N ou ↑; Prematuros e recém-nascidos; Reticulocitose pode causar macrocitose.

MICRÓCITOS – hemácias menores com diâmetro inferior a 7,0 µm (VGM < 80 fL).

Podem estar associados à hipocromia. Interpretar o VGM de acordo com a idade.

Um RDW aumentado ou um histograma de hemácias que sugira a presença de micrócitos

ou de macrócitos, mesmo quando o VGM estiver normal, deve indicar a avaliação da

lâmina.

A recomendação é que o valor do VGM seja utilizado para balizar a variabilidade de

tamanho (grau de anisocitose) preferivelmente à avaliação visual.


eury

Anormalidades na cor das hemácias

HIPOCROMIA – é a diminuição da coloração da hemácia com aumento do halo claro

central superior a 1/3 do diâmetro celular. O HGM e o CHGM estarão diminuídos nos casos

de hipocromia grave.

As condições clínicas que causam a hipocromia estão sempre associadas à microcitose.

A recomendação é que o valor do HGM seja utilizado para balizar a intensidade da

hipocromia preferivelmente à avaliação visual.

POLICROMASIA – se refere a aparência mais azulada das hemácias causada pela presença

de restos de RNA ribossomal. São maiores que as hemácias normais.

A recomendação é quantificar a policromasia e proceder à contagem de reticulócitos.


eury

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Inclusões eritrocitárias

ERITROBLASTOS - São precursores eritrocitários descritos normalmente apenas como

eritroblastos quando encontrados no sangue periférico.

A recomendação é a de reportar o valor absoluto de eritroblastos em 100 leucócitos

contados na diferencial ou incluir sua quantidade na contagem diferencial após corrigir a

leucometria.

J. Burthem, M. Brereton

Recomendações do ICSH – SV

Se mais de 10 / 100 leucócitos.

leucócitos x 100 = Leucometria corrigida

eritroblastos + 100

φFl

eury

Equipamentos automatizados

• Os equipamentos automatizados não são capazes de enumerar ou classificar populações

de células anormais ou de reconhecer anormalidades morfológicas.

• Essas amostras necessitam de um exame microscópico realizado em lâmina bem

confeccionada e bem corada, condição imprescindível para a correta identificação celular.

• A diferenciação celular é um processo que envolve a identificação de características

relativas ao tamanho e forma do núcleo, padrão de cromatina e tamanho e aspecto do

citoplasma.

• A contagem diferencial de leucócitos pode ser realizada por métodos automatizados ou

manuais.

Recomendações do ICSH – SB φFl

eury

Equipamentos automatizados

• A contagem automatizada analisa alguns milhares de células em contraste com a

contagem manual que identifica de 100 a 200 células.

• Por este motivo, na ausência de células anormais, a contagem automatizada é

mais precisa. Valores muito baixos ou muito elevados de leucócitos tornam a

contagem manual menos acurada e menos reprodutível.

É recomendado que a contagem automatizada seja considerada sem revisão manual

somente nos casos em que não existam alterações quantitativas nem a presença de

alarmes (flags).

A contagem automatizada também pode ser liberada depois da revisão da lâmina e

da confirmação dos alarmes.


eury

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Anormalidades citoplasmáticas

HIPERGRANULAÇÃO DOS NEUTRÓFILOS, GRANULAÇÕES TÓXICAS.

São grânulos grosseiros de coloração roxa que ocorrem como resposta a infecções e

inflamações.

A recomendação é de citar e quantificar a presença da hipergranulação sempre que vista.



eury

Anormalidades citoplasmáticas

VACUOLIZAÇÃO NOS NEUTRÓFILOS

A vacuolização em neutrófilos durante uma infecção é causada pela fusão entre o

grânulo e o vacúolo fagocítico e a liberação do conteúdo lisossomal a fim de destruir

a bactéria. Podem parecer como buracos de agulha – vacúolos pequenos e discretos

ou podem ser maiores. Outras causas de vacuolização pode ser a toxicidade alcoólica

ou a exposição prolongada ao EDTA (artefato de conservação).

A recomendação é a de relatar a presença de vacúolos sempre que presentes.

Recomendações do ICSH – SB

LACFAR - UFRJ

φFl

eury

GRANDES LINFÓCITOS GRANULARES (GLG)

São semelhantes aos linfócitos grandes, mas o citoplasma exibe alguns grânulos bem

visíveis de coloração vermelho-arroxeada.

Podem representar de 10 a 20% dos linfócitos em indivíduos normais.


eury

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Embora os GLG devam ser contados como linfócitos, quantidades aumentadas deste tipo celular devem ser descritas no laudo e a investigação por imunofenotipagem recomendada.Nota: Os linfócitos predominam nas amostras de crianças até os 4 anos. Estas células são mais pleomórficas que as encontradas em amostras de adultos normais.


Recomendações do ICSH – SB GRANDES LINFÓCITOS GRANULARES (GLG)

Os GLG não devem ser contados separadamente dos linfócitos.

φFl

eury

MONONUCLEOSE INFECCIOSA

As anormalidades incluem o aumento do tamanho da célula, imaturidade do núcleo

com a presença de nucléolo e cromatina sem condensação, contorno nuclear

irregular ou lobulação, basofilia ou vacuolização do citoplasma e contorno irregular

da célula. O citoplasma pode ser abundante com uma variação de cores desde o azul

pálido até o azul intenso principalmente nos pontos de contato com as células

adjacentes.

A recomendação é de comentar a presença de linfócitos reativos podendo ser

contados como uma população distinta na diferencial.



eury

CÉLULAS PLASMÁTICAS

A célula plasmática é maior que o pequeno linfócito, apresenta citoplasma

profundamente azul, núcleo excêntrico, redondo ou oval com cromatina condensada

e a zona de Golgi ou halo perinuclear adjacente ao núcleo.

A recomendação é de contar as células plasmáticas como uma população distinta na

diferencial.



eury

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As plaquetas gigantes podem ser maiores que as hemácias (10 – 20 mm) e podem ser

identificadas pelos alarmes dos equipamentos automatizados. Em indivíduos normais, de

modo geral, menos de 5% das plaquetas são maiores que o normal. O tamanho das

plaquetas aumenta gradualmente de acordo com o tempo de armazenamento em EDTA.

Recomendações do ICSH – Plaquetas


φFl

eury

Recomendações do ICSH – Plaquetas A recomendação é que as plaquetas gigantes sejam relatadas.

Um comentário sobre o número de plaquetas e a presença de plaquetas grandes ou

gigantes pode ser feito.


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ObrigadoMarcos Fleury

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Hemograma: Novos parâmetros e recomendações para a ...cfac2017.com.br/.../2017/06/palestra-v-cfac-Novos-Param-Rec-Int.pdf · 03/05/2017 1 Hemograma: Novos parâmetros e recomendações