Upload
lythuy
View
235
Download
4
Embed Size (px)
Citation preview
i
ABSTRAK
KONSTRUKSI DAN EKSPRESI HETEROLOG
KLON REKOMBINAN LEVANSUKRASE DARI
BAKTERI HALOFILIK Bacillus licheniformis BK1 dan BK2
UNTUK DIGUNAKAN SEBAGAI BIOKATALIS
DALAM PRODUKSI LEVAN SECARA IN VITRO
Oleh
Nur Umriani Permatasari
NIM: 30514003
(Program Studi Doktor Kimia)
Bakteri halofilik adalah salah satu jenis bakteri ekstremofil yang mampu bertahan
hidup dan berkembang dalam lingkungan dengan tingkat salinitas tinggi walau
dalam kondisi nutrisi yang rendah. Bakteri halofilik banyak dimanfaatkan di
bidang bioteknologi antara lain karena bakteri ini diketahui memiliki potensi
sebagai penghasil biomolekul bernilai ekonomi tinggi seperti biosurfaktan,
bioplastik, levan, inulin, dan bahan aktif kosmetik seperti ektoin. Sebagai negara
kepulauan, Indonesia banyak memiliki habitat halofil laut. Disamping itu,
Indonesia juga memiliki habitat halofil darat yang potensial, seperti danau air asin
di beberapa wilayah Indonesia dan satu habitat unik, yaitu kawah lumpur asin di
desa Bledug Kuwu, Purwodadi, Jawa Tengah. Hasil eksplorasi potensi bakteri
halofilik asal kawah lumpur asin Bledug Kuwu diketahui bahwa sebagian bakteri
halofilik alaminya memiliki potensi sebagai produsen levan, yaitu kelompok
fruktan atau polimer fruktosa yang banyak dimanfaatkan untuk antioksidan,
antibakteri, bahan pembuat nanopartikel, dan suplemen makanan penderita
diabetes. Levan dihasilkan dari biokonversi sukrosa melalui peran levansukrase
sebagai biokatalis. Hasil studi pada beberapa bakteri halofilik isolat Bledug Kuwu
diketahui bahwa levansukrase dapat dihasilkan secara ekstrasel ataupun intrasel.
Penelitian ini bertujuan untuk melakukan peningkatan entitas levansukrase bakteri
halofilik asal kawah lumpur Bleduk Kuwu dengan memanfaatkan teknologi DNA
rekombinan agar dapat dimanfaatkan sebagai biokatalis untuk produksi levan
secara in vitro.
Pada penelitian ini, enam isolat bakteri asal Bledug Kuwu telah diidentifikasi
sebagai bakteri halofilik potensial penghasil levansukrase dan dapat menghasilkan
levan. Keenam isolat tersebut adalah Halomonas salina, Halomonas symrnensis,
Halomonas elongata BK1, Halomonas elongata BK2, Bacillus licheniformis
BK1, dan Bacillus licheniformis BK2. Berdasarkan profil pertumbuhan dan
aktivitas levansukrase yang ditunjukkan oleh keenam isolat tersebut, dua isolat B.
licheniformis mempunyai aktivitas levansukrase paling tinggi dibandingkan
keempat isolat yang lain yaitu 111,14-116,47 U/mg. Kedua strain ini, dipilih
untuk penelitian selanjutnya.
ii
Isolasi gen levansukrase dari B. licheniformis BK1 dan B. licheniformis BK2 telah
berhasil dilakukan menggunakan pendekatan PCR. Amplifikasi gen pengkode
levansukrase dilakukan menggunakan primer spesifik
5’GGATCCATGAACATCAAAAACATYGCT-3’ sebagai primer maju dan 5’-
GAATTCTTATTWGTTTACCGTTARTTG-3’ sebagai primer mundur. Kloning
awal dilakukan menggunakan vektor pGEM-T Easy dengan sel inang E. coli
TOP10 untuk memperbanyak molekul DNA target dan konfirmasi melalui
sekuensing. Ekspresi klon rekombinan dilakukan dengan memindahkan fragmen
gen levansukrase ke vektor ekspresi pET-30a(+) dengan sel inang E. coli
BL21(DE3)pLysS. Penambahan sisi restriksi BamHI pada primer maju dan EcoRI
pada primer mundur dimaksudkan untuk mengarahkan orientasi kloning dalam
vektor pET-30a(+).
Analisis sekuen gen levansukrase dilakukan baik dalam pGEM-T Easy maupun
dalam pET-30a(+). Hasil analisis menunjukkan bahwa gen lsbl-bk1 dan lsbl-bk2
yang diintegrasikan ke pET-30a(+) telah memiliki orieantasi yang benar dan
disebut sebagai pET-lsbl-bk1 dan pET-lsbl-bk2. Hasil identifikasi pada level DNA
menunjukkan bahwa sekuen gen levansukrase lsbl-bk1 (kode akses MF774877.1)
dan lsbl-bk2 (kode akses MF774878.1) memiliki keidentikan homologi 99%
dengan gen levansukrase lain dari B. licheniformis. Hasil identifikasi pada level
protein menunjukkan bahwa gen lsbl-bk1 menyandi 483 asam amino (kode akses
ATJ00090.1) dan gen lsbl-bk2 menyandi 481 asam amino (kode akses
ATJ00091.1). Hasil penyejajaran dari kedua protein tersebut menunjukkan bahwa
Lsbl-bk1 memiliki homologi identitas 96% dan Lsbl-bk2 memiliki homologi
identitas 99% dengan protein famili glycoside hydrolase 68 dari spesies
B. licheniformis. Analisis prediksi sisi katalitik menggunakan program online
Sequence Annotated by Structure (SAS) menunjukkan bahwa kedua protein
mempunyai tiga residu lestari aktif yang sama yaitu Asp93 dan Asp256 pada
kedua protein, dan Glu352 pada Lsbl-bk1 serta Glu351 pada Lsbl-bk2. Perbedaan
satu asam amino pada Lsbl-bk1 disebabkan oleh adanya insersi tiga basa DNA
pada posisi di antara ke 834 dan 835, 849 dan 850, 881 dan 882. Prediksi struktur
tiga dimensi menggunakan program Swiss model menunjukkan motif pelipatan β
dengan ketiga residu aktif terikat pada β-strand.
Hasil analisis RSM untuk ekspresi gen levansukrase berdasarkan aktivitas
spesifiknya sebagai luaran menunjukkan bahwa pET-lsbl-bk1 dan pET-lsbl-bk2
mengalami overekspresi pada jam keempat setelah induksi IPTG. Kondisi
optimum produksi Lsbl-bk1 dalam sistem heterolog ini terjadi pada konsentrasi
NaCl 0,6% (b/v), induser IPTG 0,6 mM dan temperatur inkubasi 42oC.
Sementara, kondisi optimum produksi Lsbl-bk2 dicapai pada konsentrasi NaCl
1,1% (b/v), induser IPTG 0,7 mM, dan temperatur inkubasi 40oC. Analisis RSM
mengindikasikan bahwa faktor yang pengaruhnya sangat siginifikan dalam sistem
ekspresi adalah temperatur inkubasi.
Analisis SDS-PAGE dan zimografi menunjukkan bahwa levansukrase yang telah
dimurnikan dengan kromatografi penukar anion memiliki ukuran molekul sekitar
50 kDa. Karakterisasi biokimia levansukrase Lsbl-bk1 memiliki aktivitas tertinggi
pada 56oC dan pH 7,5 sedangkan Lsbl-bk2 mempunyai aktivitas spesifik tertinggi
iii
pada 50oC dan pH 7,5. Aktivitas spesifik levansukrase tetap berada pada level
87-100% dengan penambahan 10 mM EDTA atau PMSF. Penambahan ion logam
Co2+
terhadap kedua levansukrase dapat meningkatkan aktivitas spesifiknya
sebesar 14%, oleh sebab itu ion Co2+
dapat diperkirakan sebagai aktivator
levansukrase. Ion-ion logam lain seperti Ti2+
, Mg2+
, Ba2+
, Zn2+
, Fe3+
, Ca2+
tidak
mempengaruhi aktivitas spesifik levansukrase. Aktivitas spesifik levansukrase
tidak berubah dengan penambahan 1-25% (b/v) NaCl. Hasil plot aktivitas spesifik
terhadap konsentrasi sukrosa menunjukkan bahwa kedua levansukrase mengikuti
profil Michaelis-Menten dengan nilai Vmax, KM, Kcat, kcat/KM berturut-turut adalah
22,7 dan 23,8 mM/menit, 272 dan 293,9 mM, 1052 dan 1044 s-1
, 3,9 dan
3,6 s-1
/mM. Data ini mengindikasikan bahwa levansukrase rekombinan dari
bakteri halofilik B. licheniformis BK1 dan B. licheniformis BK2 merupakan
levansukrase non metaloenzim dengan kemampuan afinitas dan laju pengikatan
substrat sukrosa yang cukup tinggi, dengan efisiensi katalitik hidrolisis yang
cukup rendah.
Optimasi produksi levan secara in vitro dengan metode RSM, menggunakan
levansukrase rekombinan Lsbl-bk1 memberikan kondisi optimum pada
konsentrasi sukrosa 12% (b/v) dengan inkubasi pada 36oC dan pH 7 dimana
konsentrasi levan mencapai 96,117 mg/mL. Selain itu, kondisi optimum untuk
Lsbl-bk2 adalah pada konsentrasi sukrosa 12% (b/v) dengan inkubasi 32oC pada
pH 8 dimana konsentrasi levan adalah 94,134 mg/mL. Analisis RSM
menunjukkan bahwa faktor yang paling berpengaruh terhadap produksi levan
adalah kadar sukrosa dalam medium.
Karakterisasi FTIR terhadap levan yang diproduksi secara in vitro menunjukkan
adanya serapan di daerah 925,83-1271,09 cm-1
yang merupakan daerah sidik jari
molekul karbohidrat. Spektrum 1H-NMR levan ini menunjukkan karakteristik
sinyal dengan nilai geseran kimia di antara 3,4 dan 4,3 ppm, yang berkorelasi
dengan proton golongan monosakarida. Perolehan spektrum 13
C-NMR
memperlihatkan 6 puncak pada 104,1 (C2), 80,2 (C5), 76,2 (C3), 75,1 (C4),
63,3 (C6), 59,8 (C1) ppm yang berkaitan dengan posisi sinyal karbon
β-fruktofuranosa. Data ini mengindikasikan bahwa levan yang disintesis secara
in vitro dengan katalis levansukrase rekombinan menunjukkan karakteristik
tertentu.
Analisis SEM memperlihatkan morfologi padatan putih bulat-bulat membentuk
pori untuk levan yang disintesis dengan katalis Lsbl-bk1 dan morfologi padatan
kuning berbentuk seperti lembaran tanpa adanya pori untuk levan yang disintesis
dengan katalis Lsbl-bk2. Analisis TGA menunjukkan bahwa kedua levan tetap
stabil pada 100-200oC dan mulai terdegradasi pada 208-211
oC. Pada 200-300
oC
kedua levan mengalami penurunan massa sekitar 46- 51% dari massa awal. Hasil
ini menunjukkan bahwa Lsbl-bk1 berbeda dengan Lsbl-bk2, namun keduanya
dapat menghasilkan levan yang cukup stabil secara termal. Adanya pori pada
levan hasil sintesis dengan levansukrase Lsbl-bk1 berpotensi untuk aplikasinya
sebagai resin.
iv
Pengujian levan sebagai antimikroba menunjukkan bahwa levan hasil sintesis
in vitro dengan konsentrasi 10-20% (b/v) memiliki fungsi bioaktif sebagai
antibakteri terhadap S. aureus, E. coli, P. aeruginosa. Selain itu, levan memiliki
fungsi bioaktif sebagai antioksidan dengan kemampuan inhibisi sebesar 75%
dibandingkan inhibisi oleh asam askorbat. Nilai IC50 untuk levan yang disintesis
dengan katalis Lsbl-bk1 adalah 91,73 μg/mL, sedangkan untuk Lsbl-bk2 adalah
76,15 μg/mL, mengindikasikan bahwa kedua levan mampu meredam radikal
bebas dari DPPH sebesar 50%. Hasil ini menunjukkan bahwa levan yang
disintesis secara in vitro memiliki kemampuan bioaktivitas sebagai antibakteri dan
antioksidan.
Kata kunci: Levansukrase, sintesis in vitro levan, bakteri halofilik, kawah lumpur
Bledug Kuwu, Bacillus licheniformis, analisis RSM.
v
ABSTRACT
CONSTRUCTION AND HETEROLOGOUS EXPRESSION OF
LEVANSUCRASE RECOMBINANT CLONED FROM
HALOPHILIC BACTERIA Bacillus licheniformis BK1 AND BK2
TO BE USED AS BIOCATALYST FOR IN VITRO
LEVAN PRODUCTION
By
Nur Umriani Permatasari
NIM: 30514003
(Doctoral Program of Chemistry)
Halophilic bacteria are one type of extremophilic bacteria that survive and evolve
in high salinity environment under low nutritional level. Halophilic bacteria have
been widely employed in many biotechnological fields due to its potential
characteristic in producing commercial biomolecules such as biosurfactants,
bioplastics, levan, inulin, and cosmetics active compound as ectoine. As
archipelagos country, Indonesia owns many potential marine habitats for
halophiles. In addition, Indonesia also has potential terrestrial halophilic habitats
such as salt lakes in several regions and unique salty mud craters such as Bledug
Kuwu in Purwodadi, Central Java. The result of previous studies showed that
several wildtype halophilic bacteria from Bledug Kuwu are able to produce levan,
which is a fructant or fructose polymer used as antioxidant, antibacterial,
material for nanoparticle, and as food supplement for diabetics. Levan is
produced by sucrose bioconversion using levansucrase biocatalyst. Studies on
several halophilic bacterial isolates from Bledug Kuwu have shown that
levansucrase can be produced either extracellularly or intracellularly. The
present study is aimed to enhance the entity of levansucrase produced by
halophilic bacteria indigenous from Bledug Kuwu’s mud crater through the
application of recombinant DNA technology and utilized the recombinant
levansucrase for in vitro production of levan.
In this research, six bacterial isolates from Bledug Kuwu were identified as
potential halophilic bacteria to produce levan. These six bacterial isolates were
Halomonas salina, Halomonas symrnensis, Halomonas elongata BK1,
Halomonas elongata BK2, Bacillus licheniformis BK1, and Bacillus licheniformis
BK2. Based on the growth profile and levansucrase activity shown by these six
isolates, two bacterial isolates of B. licheniformis have the highest levansucrase
activity compared to other that are 111,14-116,47 U/mg. These two strains were
then chosen for further studies.
vi
Levansucrase gene from B. licheniformis BK1 and B. licheniformis BK2 have
been successfully isolated using PCR approach. Amplification of levansucrase
genes from these two strains were performed using spesific forward primer
5'-GGATCCATGAACATCAAAAACATYGCT-3' and spesific reverse primer
5'-GAATTCTTATTWGTTTACCGTTARTTG-3'. Initial cloning was carried out
using pGEM-T vectors with E. coli TOP10 host cells to multiply the target DNA
molecules and to confirm them through squencing. Expression of recombinant
cloned were carried out by transferring the confirmed levansucrase gene
fragment to pET-30a(+) expression vector with E. coli BL21(DE3)pLysS host cell.
Addition of BamHI and EcoRI restriction sites at forward and reverse primers
was aimed to direct the cloning orientation in the pET-30a(+) vector.
Sequence analysis of the levansucrase gene were carried out both in pGEM-T
Easy and in pET-30a(+). The analysis showed that the lsbl-bk1 and lsbl-bk2
genes have been integrated in pET-30a(+) vectors with correct cloning direction
resulting recombinant plasmid expression systems of pET-lsbl-bk1 and
pET-lsbl-bk2. Identification at DNA levels showed that the sequence of
levansucrase lsbl-bk1 gene (accession number MF774877.1) and lsbl-bk2 gene
(accession number MF774878.1) had 99% identity with other levansucrase genes
from B. licheniformis. Identification at the protein level showed that the lsbl-bk1
gene encoded for 483 amino acids (accession number ATJ00090.1) and the
lsbl-bk2 gene encoded for 481 amino acids (accession number ATJ00091.1). The
alignment of the two proteins showed that Lsbl-bk1 had 96% identity and
Lsbl-bk2 had 99% identity with glycoside hydrolase 68 family protein from
B. licheniformis species. Prediction of catalytic site using Sequence Annotated by
Structure (SAS) online program showed three conserved residues on its active
sites, namely Asp93 and Asp256 of the two proteins, and Glu352 of Lsbl-bk1 and
Glu351 of Lsbl-bk2. The shifting of one amino acid in Lsbl-bk1 is probably due to
the insertion of three bases in the lsbl-bk1 gene at the position between 834 and
835, 849 and 850, as well as between 881 and 882. Prediction of protein three-
dimensional structure using Swiss model program showed the presences of β-
folding motive with the three active residues bound to the β-strand.
RSM analysis on levansucrase gene expression, based on its specific activity as
output, indicated that pET-lsbl-bk1 and pET-lsbl-bk2 were overexpressed at four
hours after IPTG induction. The optimum conditions of Lsbl-bk1 production in
this heterologous expression system was occur at 0.6% (w/v) NaCl, 0.6 mM IPTG
inducer, and 42oC incubation temperature. On the other hand, the optimum
conditions of Lsbl-bk2 production were achieved at 1.1% (w/v) NaCl, 0.7 mM
IPTG inducer, and 40oC incubation temperature.
Zymography and SDS PAGE analysis showed that ion exchange chromatography
purified levansucrase has a molecular size of around 50 kDa. Biochemical
characterization of Lsbl-bk1 levansucrase showed the highest specific activity at
56oC and pH 7.5 whereas the Lsbl-bk2 levansucrase had the highest specific
activity at 50oC and pH 7.5. Specific activity of levansucrase remained in the level
87-100% with addition of 10 mM EDTA or PMSF. Addition of Co2+
metal ion to
both levansucrases increased its spesific activity by 14%, so that cobalt metal ion
vii
was considered as activator. Other metal ions such as Ti2+
, Mg2+
, Ba2+
, Zn2+
,
Fe3+
, Ca2+
did not show any effect on levansucrase specific activity. In addition,
specific activity of levansucrase was also not changed by the addition of 1-25%
(w/v) NaCl. The plot results of levansucrase specific activities toward sucrose
concentration showed that both levansucrases follow Michaelis-Menten profile
with Vm, Km, kcat, and kcat / Km values were 22.7 and 23.8 mM/min, 272 and
293.9 mM, 1052 and 1044 s-1
, and 3,8 and 3,6 s-1
/mM respectively. These data
indicated that the recombinant levansucrases from halophilic bacteria
B. licheniformis BK1 and B. licheniformis BK2 are a non metaloenzyme with high
affinity and binding rate to sucrose substrate, in which the catalytic efficiency on
hydrolysis reactions is quite low.
RSM optimation on in vitro levan production resulted that the optimum condition
for Lsbl-bk1 levansucrase catalysis was 12% (w/v) sucrose at pH 7 and 36oC
incubation temperature, where the levan concentration was 96.117 mg/mL. On
the other hand, the optimum condition of Lsbl-bk2 levansucrase catalysis
obtained at 12% (w/v) sucrose at pH 8 and 32oC incubation temperature, where
the concentration of levan was 94.134 mg/mL. This RSM analysis showed that the
most influential factor in levan production was sucrose concentration in medium.
FTIR characterization on in vitro produced levan showed clear absorption band
at 925.83-1271.09 cm-1
which corresponds to the finger print region of
carbohydrate molecules. The 1H-NMR spectrum of levan showed signal
characteristics at chemical shift between 3.4 and 4.3 ppm, which correlates to the
proton group of monosaccharide. The 13
C-NMR spectrum of levan showed six
peaks at 104.1 (C2), 80.2 (C5), 76.2 (C3), 75.1 (C4), 63.3 (C6), 59.8 (C1) ppm
which are related to the position of carbon signals from β-fructofuranose. These
data indicated that in vitro produced levan utilizing the recombinant levansucrase
as catalyst possesed normal levan characteristic.
SEM analysis on the in vitro produce levan showed round solid white pores
morphology for those synthesized using Lsbl-bk1 catalyst and yellow solids
shaped like sheets morphology without any pores for those synthesized using
Lsbl-bk2 catalyst. TGA analysis indicated that these levans were stable until 100-
200oC and degraded at 208-211
oC. At 200-300
oC, both levans were decreased in
mass at about 46-51.18% from its initial mass. These results showed that Lsbl-bk1
was difference with Lsbl-bk2, however both enzymes were able to produce
thermally stable levan. Porous levan synthesized with Lsbl-bk1 levansucrase has
potency to be applied as resin.
Levan testing as antimicrobial agent showed that the in vitro synthesized levan at
concentration of 10-20% (w/v) had a bioactive function towards S. aureus, E. coli,
and P. aeruginosa. Furthermore, the in vitro synthesized levan also has an
antioxidant activity with inhibition ability of 75% compared to ascorbic acid
inhibition. IC50 values of levan synthesized with Lsbl-bk1 catalyst was
91.73 μg/mL, while levan synthesized with Lsbl-bk2 catalyst had an IC50 of
76.15 μg/mL, indicating that both levans able to reduce free radical of DDPH by